o Manuel de procédures techniques - Direction des laboratoires
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Matériel<br />
La ponction est réalisée à l’ai<strong>de</strong> d’un trocart : le trocart <strong>de</strong> Mallarmé qui est composé <strong>de</strong> 2 éléments<br />
distincts :<br />
- une aiguille creuse, à l’extrémité inférieure effilée. Sa partie supérieure est composée <strong>de</strong> 2 branches<br />
perpendiculaires à l’axe <strong>de</strong> l’aiguille, branches permettant une bonne prise en main par l’opérateur ;<br />
- un mandrin à l’extrémité supérieure aplatie afin <strong>de</strong> pouvoir exercer une pression suffisante. Le<br />
mandrin traverse l’aiguille creuse.<br />
Aiguille et mandrin doivent avoir une extrémité pointue, tranchante et non émoussée.<br />
Prélèvement<br />
Au site <strong>de</strong> la ponction :<br />
- la peau est soigneusement désinfectée<br />
- le trocart tenu fermement par l’opérateur, est enfoncé perpendiculairement à la peau et à la surface<br />
osseuse avec un mouvement <strong>de</strong> rotation jusqu’à ce que l’on franchisse la corticale osseuse<br />
- après pénétration, le mandrin est retiré et remplacé par une seringue qui aspire <strong>de</strong> la substance<br />
médullaire (volume prélevé est inférieur à 0,5cc)<br />
- enlever la seringue et replacer le mandrin<br />
- le contenu <strong>de</strong> la seringue est déposé directement sur la lame pour un frottis médullaire réalisé <strong>de</strong> la<br />
même façon qu’un frottis sanguin<br />
NB : si la première aspiration a ramené du matériel, l’aiguille peut être retirée et un pansement légèrement<br />
compressif est appliqué au point <strong>de</strong> ponction.<br />
Coloration<br />
Les frottis confectionnés sont séchés à l’air et colorés au May Grunwald Giemsa mais éventuellement avec<br />
<strong>de</strong>s colorants cytochimiques.<br />
Lecture<br />
Elle se fera d’abord au faible grossissement pour apprécier la richesse cellulaire puis au fort grossissement<br />
pour l’étu<strong>de</strong> <strong>de</strong>s différentes lignées.<br />
3.2.2. Hémostase<br />
L’exploration <strong>de</strong> la coagulation doit se faire sur <strong>de</strong>s prélèvements avec comme anticoagulant le citrate<br />
trisodique à raison d’un volume d’anticoagulant pour 9 volumes <strong>de</strong> sang.<br />
Les tests doivent être réalisés dans les 4 heures qui suivent le prélèvement.<br />
Les outils du contrôle <strong>de</strong> qualité reposent sur <strong>de</strong>ux types d’échantillons biologiques :<br />
- <strong>de</strong>s pools <strong>de</strong> plasmas normaux ou anormaux préparés localement et aliquotés<br />
- <strong>de</strong>s plasmas lyophilisés préparés industriellement par différentes firmes pharmaceutiques qui<br />
sont soit <strong>de</strong>s plasmas étalons ou standards <strong>de</strong> calibration ou alors <strong>de</strong>s plasmas <strong>de</strong> « contrôle »<br />
ayant une valeur moyenne et un intervalle <strong>de</strong> confiance déterminée selon la technique utilisée.<br />
Ces différents échantillons sont utilisés pour le contrôle <strong>de</strong> qualité journalier qui permet la validation<br />
quotidienne <strong>de</strong>s résultats. Il est préférable <strong>de</strong> passer ces contrôles en début et en cours <strong>de</strong> série et <strong>de</strong><br />
mentionner les résultats sur un graphe. L’ensemble <strong>de</strong>s <strong>procédures</strong> <strong>de</strong> contrôle <strong>de</strong> qualité interne doit être<br />
clairement décrit dans un cahier technique qui doit être régulièrement mis à jour. Le contrôle <strong>de</strong> qualité<br />
RNL Sénégal : <strong>Manuel</strong> <strong>de</strong> Procédures <strong>techniques</strong> (Page 44)