Etude d'un vaccin contre la rage animale, Ã virus inactivÃ© ... - OIE

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— 800 — ment recommandée, par l'Organisation Mondiale de la Santé, comme « l'une des armes les plus importantes en matière de contrôle de la rage » (7). Mais elle se heurte en pratique à la difficulté d'approvisionnement de certains pays en vaccin antirabique, ou au coût de cet approvisionnement. C'est pourquoi, après avoir envisagé les diverses solutions pratiques à cette difficulté, une des propositions les plus concrètes retenues en commission des experts de l'O.M.S. est celle de favoriser la fabrication, par chacun des pays concernés, des réserves de vaccins antirabiques nécessaires à leurs campagnes de vaccination de masse. Une telle proposition n'est concevable, et acceptable, que si les vaccins ainsi produits sont de prix inférieur à ceux existant sur le marché international, et d'innocuité et efficacité correspondantes aux normes de l'O.M.S. (4). Les types de vaccins qui, techniquement, répondent le mieux à ces exigences du moins dans une première étape sont les vaccins à virus inactivé (plus sûrs) produits sur encéphales d'animaux (moins chers) : souris, rats, lapins, petits ou grands ruminants. Nous avons choisi, dans la présente communication, de rapporter les résultats obtenus avec un vaccin produit sur encéphale d'agneau. C'est cette espèce qui, après d'autres auteurs (2, 3, 5), nous a paru en effet la plus répandue et la moins onéreuse, d'achat ou d'élevage, dans la plupart des pays concernés par la rage canine. Animaux MATÉRIEL ET MÉTHODES MATÉRIEL • Ovins : les ovins utilisés étaient de race croisée Ile-de-France, adultes (mères), jeunes non sevrés (1 mois) ou juste sevrés (2 mois). • Chiens : les chiens utilisés pour le titrage d'anticorps post-vaccinaux étaient des chiens croisés Beagles ou anglo-normands âgés de plus de trois mois. • Souris : les souris Swiss, E.O.P.S. utilisées pour le titrage des virus et des sérums, ou le contrôle des vaccins, étaient de souche OF1 âgées de 3 à 4 semaines achetées aux Etablissements IFFA-CREDO (69210 Saint-Germain-sur- PArbresle, France). Souche de virus Nous avons employé la souche fixe Challenge Virus Standard (C.V.S.) ellemême dérivée de la souche Pasteur isolée d'un bovin français en 1882. Matériel de laboratoire Outre le matériel usuel nécessaire aux manipulations ou titrages des virus, sérums et vaccins, nous avons utilisé, pour le broyage des encéphales, un
— 801 — broyeur Ultra-Turrax Janke et Kunkel KG 170 w, type TP 18-10 à tige 18 K de 220 mm. Pour les injections intradermiques de contrôle d'activité du vaccin a été utilisé pour un groupe de chiens, le « Dermojet » AKRA (23 bis, rue L. Berthou, 64000 Pau, France). Produits chimiques L'agent d'inactivation du virus était la Bêta Propiolactone (« B.P.L. ») pure (OCH2 CH2 CO) Fluka A G Buchs SG (commercialisée par les Etablissements O.S.I., 141, rue de Javel, 75015 Paris). • Le phénol rajouté pour éviter les contaminations bactériennes ultérieures du virus inactivé était du phénol pur, cristallisé, Rhône-Poulenc. • L'hydroxyde d'alumine, agent adsorbant du virus et adjuvant de l'immunité, contenant 2,46 mg/ml d'Al + + + , nous a été aimablement fourni par les Laboratoires R. Bellon (Usine de la Croisette, Villaines-les-Rochers, 37190 Azay-le-Rideau). MÉTHODES Nous ne décrirons ici que la méthode de fabrication des vaccins étudiés, les méthodes de contrôle du vaccin, par le test des National Institutes of Health (N.I.H.) ou des sérums par le test de séro-neutralisation sur souris, étant parfaitement décrites et standardisées par l'O.M.S. (4). La fabrication du vaccin étudié peut être résumée en trois étapes successives : Première étape : Inoculation des ovins Les ovins sont inoculés par trépanation à l'aide d'une chignolle ordinaire, munie d'une mèche à bois de 2 mm de diamètre. La trépanation se fait, après incision et réclinaison et désinfection de la peau et des muscles peauciers sousjacents, en un point défini comme le milieu d'une ligne imaginaire joignant la base de l'oreille au centre d'une autre ligne joignant le sommet des deux arcades osseuses des orbites (Figure 1). L'inoculum est déposé, à travers l'effraction osseuse ainsi réalisée à l'aide d'une aiguille de 16 mm (5/10), dans le cortex cérébral. Cet inoculum est constitué par 0,5 ml de suspension de cerveaux de souris infectées par la souche C.V.S., et titrant au moins 10 5 Doses létales souris par voie cérébrale. Les lésions ainsi créées cicatrisent spontanément dans les jours suivants, où les ovins sont observés quotidiennement. Seconde étape : Récolte du virus rabique Les ovins présentent les premiers symptômes de rage 4 à 7 jours après l'inoculation, et meurent du 5 e au 9 e jour après cette inoculation, selon leur âge. Ils sont sacrifiés en phase agonique (paralysie, dyspnée) par saignée totale et la
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