RICERCA DI ECTOPARASSITI NEI TESSUTI - italbioforma

METODO NAZIONALE STANDARD 

RICERCA DI ECTOPARASSITI 

NEI TESSUTI 

BSOP 36 

Emesso da Standards Unit, Evaluations and Standards Laboratory 

Centre for Infections 

RICERCA DI ECTOPARASSITI NEI CAMPIONI 

Revisione no: 1 Data di revisione: 26.06.06 Emesso da: Standards Unit, Evaluations and Standards Laboratory Pagina no: 1 di 43 

Riferimento no: BSOP 36i1 

Questa POS deve essere usata congiuntamente alle altre POS emesse dalla Health Protection Agency 

www.evaluations-standards.org.uk 

Email: standards@hpa.org.uk

STATO DEI METODI NAZIONALI STANDARD 

I Metodi Nazionali Standard, che includono le procedure operative standard (POS), algoritmi e linee guida, 

promuovono l’adozione di elevati livelli di qualità, contribuendo ad assicurare la possibilità di confronto delle 

informazioni diagnostiche ottenute in laboratori diversi. Ciò consente la standardizzazione della sorveglianza 

sostenuta dalla ricerca, sviluppo e verifica, promovendo nello stesso tempo la salute pubblica e la fiducia del paziente 

nelle proprie strutture sanitarie. I metodi sono ben referenziati e rappresentano un buon standard minimo per la 

microbiologia clinica e per la salute pubblica. Comunque, utilizzando i Metodi Nazionali Standard, i laboratori 

dovranno tenere in considerazione le esigenze locali e potranno intraprendere ricerche addizionali. I metodi 

forniscono inoltre un punto di riferimento per un loro ulteriore sviluppo. 

I Metodi Nazionali Standard sono stati sviluppati, revisionati ed aggiornati con una procedura aperta di consenso ove 

le opinioni di tutti i partecipanti sono state tenute in adeguata considerazione ed i documenti elaborati riflettono il 

consenso della maggior parte degli stessi. 

I rappresentanti di alcune organizzazioni professionali, incluse quelle il cui logo appare sulla prima pagina, sono 

membri dei gruppi di lavoro che sviluppano i Metodi Nazionali Standard. L’inclusione del logo di una organizzazione 

nella prima pagina implica sostegno agli obiettivi ed al processo di preparazione dei metodi standard. I componenti di 

queste organizzazioni scientifiche hanno partecipato allo sviluppo dei Metodi Nazionali Standard ma le loro opinioni 

personali non rispecchiano necessariamente quelle dell’organizzazione di cui sono membri. L’elenco attuale delle 

organizzazioni professionali partecipanti può essere ottenuto tramite e-mail all’indirizzo standards@hpa.org.uk. 

Le prestazioni dei metodi standard sono condizionate dalla qualità di reagenti, strumentazione, procedure 

commerciali o prove messe a punto in loco. I laboratori dovrebbero assicurare che queste siano state validate e 

dimostrate idonee allo scopo prefissato. Devono essere adottate procedure di controllo di qualità interno ed esterno. 

Nonostante siano state osservate le più scrupolose attenzioni nella preparazione di questa pubblicazione, la Health 

Protection Agency o qualsiasi organizzazione di sostegno non può essere ritenuta responsabile dell’accuratezza o 

dell’utilizzo o di qualsiasi conseguenza derivante dall’uso o da modifiche delle informazioni contenute in questo 

documento. Queste procedure sono intese solamente come una risorsa generale per i professionisti che esercitano 

in questo settore, operanti nel Regno Unito, pertanto si dovrà ricorrere ad altri consulenti quando ritenuto necessario. 

Se si apportano modifiche a questa pubblicazione, si deve porre in evidenza dove sono state apportate modifiche al 

documento originale. La Health Protection Agency (HPA) dovrà essere informata in ogni circostanza. 

La HPA è una organizzazione indipendente che ha lo scopo di proteggere la salute della popolazione. Ad essa 

confluiscono esperienze professionali già appartenenti ad organizzazioni ufficiali. Maggiori informazioni riferibili alla 

HPA possono essere ottenute al sito www.hpa.org.uk 

La HPA è un’organizzazione che mira ad essere completamente in accordo con le direttive Caldicott. Ciò significa 

prendere ogni possibile precauzione per prevenire la diffusione non autorizzata di informazioni sui pazienti e di 

garantire che le informazioni relative agli stessi siano mantenute in condizioni di sicurezza 1 . 

Maggiori dettagli possono essere ottenuti dal sito web www.evaluations-standards.org.uk. Contributi allo sviluppo dei 

documenti possono essere forniti contattando l’indirizzo standards@hpa.org.uk. 

Per cortesia prendere nota che la bibliografia è attualmente formattata con il software Reference Manager. Se si 

modifica o si cancella il testo senza avere installato nel computer il Reference Manager; la bibliografia non sarà 

aggiornata automaticamente. 

Riferimento suggerito per questo documento: 

Health Protection Agency (2006). Investigation of specimens for ectoparasites. National Standard Method Emissione 

1. http://www.hpa-standardmethods.org.uk/pdf_sops.asp. 


Revisione no: 1 Data di revisione 26.06.06 Emesso da: Standard Unit, Evaluations and Standards Laboratory Pagina 2 di 43 

Riferimento BSOP 36i1 

Questa POS deve essere usata congiuntamente con le altre POS emesse dalla Health Protection Agency 



INDICE 

INDICE ............................................................................................................................................. 3 

PROCEDURA DI MODIFICA ........................................................................................................... 4 

SCOPO DEL DOCUMENTO ............................................................................................................ 5 

INTRODUZIONE .............................................................................................................................. 5 

1.0 CONSIDERAZIONI SULLA SICUREZZA ............................................................................. 39 

2.0 PRELIEVO DEL CAMPIONE .…............................................................................................ 39 

3.0 TRASPORTO E CONSERVAZIONE DEL CAMPIONE ........................................................ 39 

4.0 PROCEDURA SUL CAMPIONE .......................................................................................... 40 

5.0 PROCEDURA DI REFERTAZIONE ..................................................................................... 40 

6.0 LIMITI .................................................................................................................................... 41 

7.0 SEGNALAZIONI ALL’HPA (SERVIZI LOCALI E GENERALI CDSC ED AL CENTRO 

CDSC PER LE INFEZIONI) ………………………….………………………………………….… 

8.0 RINGRAZIAMENTI E CONTATTI ………………………………………………………….…… 41 

BIBLIOGRAFIA …………………………………………………………………………………………..… 42 






Email: standards@hpa.org.uk 

41

PROCEDURA DI MODIFICA 

Documento di riferimento 

controllato 

Titolo del documento 

controllato 

BSOP 36 

Ricerca di ectoparassiti nei campioni 

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Tipo(i) di campione(i): Artropodi ectoparassiti 

RICERCA DI ECTOPARASSITI 

NEI CAMPIONI 

Sanguisughe 

SCOPO DEL DOCUMENTO 

Questa POS descrive l’infezione originata da artropodi, più precisamente da ectoparassiti e sanguisughe. Sono 

riportate descrizioni ed illustrazioni che differenziano gli ectoparassiti di comune riscontro nel Regno Unito da quelli 

associati a viaggi all’estero. 

INTRODUZIONE 

E’ importante accertare se nel paziente un ectoparassita causa i sintomi dell’infezione o funge da potenziale vettore 

della malattia. Gli ectoparassiti sono riconoscibili per dimensioni, colore ed aspetto. Il ricorso ad un’appropriata 

classificazione può essere utile all’identificazione di un ectoparassita2 . 

Questa POS descrive i più importanti ectoparassiti umani: pulci, pidocchi, cimici dei letti, zecche ed acari. Sono 

incluse anche larve di mosche, sebbene solo poche specie siano parassiti obbligati dei mammiferi. 

Gli artropodi ectoparassiti non sono correlati strutturalmente fra loro e formano un gruppo biologico più che 

tassonomico. Per la maggior parte gli artropodi parassiti sono ectoparassiti (vivono al di fuori dei loro ospiti), ma 

alcune specie sono associate più strettamente al proprio ospite umano ed agli animali. 

La morfologia di pulci, pidocchi, cimici dei letti, zecche ed acari presenta alcune caratteristiche specifiche di 

adattamento alla vita da ectoparassita. Queste comprendono assenza di ali, presenza di setole e protuberanze 

appuntite, strutture terminali sulle zampe atte ad avvinghiarsi a peli/piume dell’ospite ed una struttura corporea 

chitinizzata resistente. Tali caratteristiche riducono la possibilità di allontanamento del parassita da parte dell’ospite 

(l’ospite può infatti procedere ad accurata pulizia o a grattamenti in risposta a qualsiasi infestazione). 

BIOLOGIA DEL VETTORE ECTOPARASSITA 

In generale pulci, cimici dei letti, zecche ed acari di importanza clinica non sono ospite specifici. Sono principalmente 

zoofili ma si comportano da opportunisti nell’uomo. 

Al contrario, i pidocchi sono estremamente ospite specifici e trascorrono il loro intero ciclo vitale sull’ospite. Essi sono 

trasmessi per contatto fisico ravvicinato o tramite indumenti infestati. Sono i vettori del classico tifo epidemico, della 

febbre da trincea e di una tipica febbre ricorrente detta da pidocchio. 

Per completare il loro ciclo vitale tutti questi ectoparassiti possono richiedere un unico abbondante pasto o piccole e 

regolari assunzioni di sangue. Oltre alla trasmissione della malattia, i loro morsi causano sulla cute lesioni a lenta 

guarigione, che possono poi infettarsi con batteri. Si deve inoltre ricordare il ruolo delle feci e dei corpi stessi degli 

ectoparassiti come causa di risposte allergiche, quali asma, dermatite e rinite allergica, patologie in continuo 

aumento. 

TRASMISSIONE DELLA MALATTIA 

Gli ectoparassiti rappresentano vettori di malattia particolarmente efficienti perché trascorrono prolungati periodi in 

contatto con l’ospite. La trasmissione può avvenire: per inoculazione tramite saliva, come nella febbre della boscaglia 

originata dall’acaro; per inoculazione da rigurgito, come nella peste; per contaminazione fecale, come nel tifo 

petecchiale; per contaminazione da secrezione, come nella febbre ricorrente prodotta da zecche; per contaminazione 

da schiacciamento del vettore, come nella febbre ricorrente causata da pidocchi. 

Pulci, zecche ed acari trasmettono una varietà di patogeni animali e le malattie trasmesse all’uomo sono 

prevalentemente delle zoonosi. Gli ectoparassiti artropodi sono vettori di virus (arbovirus), rickettsie (febbri tifoidee), 







infezioni batteriche (febbre ricorrente, peste) e da protozoi (babesiosi, febbre della Costa dell’Est). La maggior parte di 

queste malattie è diffusa in tutto il mondo e molte di loro, come la peste o le infezioni correlate alla zecca o all’acaro, 

sono localizzate, causando focolai ristretti che non coinvolgono l’uomo. Non è documentato che le cimici siano 

importanti vettori di patogeni per l’uomo. 

La trasmissione di patogeni da ectoparassiti può avvenire con modalità diverse e fra queste sono di particolare 

interesse quelle trans-stadio e trans-ovarica. La trasmissione trans-stadio si manifesta quando un patogeno è 

conservato in un vettore durante gli stadi successivi della sua evoluzione (vale a dire, acquisito allo stadio larvale, 

passato alla ninfa e trasmesso alla forma adulta). Nella trasmissione trans-ovarica il patogeno è trasmesso alla 

generazione successiva attraverso l’uovo. Entrambi i tipi sono esempi di trasmissione verticale attraverso la 

popolazione del vettore ed in queste circostanze una malattia può essere mantenuta in un’area senza il passaggio 

all’ospite umano. 

PULCI 

Le pulci (ordine: Siphonaptera) sono veri insetti (Classe Insecta) e come tali hanno un corpo segmentato, 

chiaramente suddiviso in testa, torace, ed addome. Nello stadio adulto il torace è dotato di sei zampe. 

Sono parassiti obbligati degli animali vertebrati. Di solito non sono ospite specifico e, quando sono affamate, si 

procurano un pasto di sangue da qualsiasi ospite presente. In ogni modo, per sviluppare con successo le proprie 

uova la pulce femmina richiede nutrimento ematico ottenuto dall’ospite primario. Fra le numerose specie di pulci solo 

un numero ridotto è di qualche importanza clinica ed occorre notare che le malattie da loro trasmesse sono 

principalmente zoonosi (malattie degli animali). Se fungono da vettori di malattia, le pulci devono accedere pertanto 

alla popolazione umana ed animale. 

Descrizione: le pulci sono insetti piccoli (1-8mm di lunghezza), ovali, privi di ali, con colore variabile dal giallo scuro al 

nero. Il corpo è appiattito lateralmente, possiede una cuticola brillante, cerea, dotata di setole e numerose spine 

robuste. La maggior parte delle specie presenta due di occhi ben sviluppati ed un paio di antenne claviformi inserite in 

pieghe dietro gli occhi. Alcune pulci sono dotate di pettini: aculei digitiformi della cuticola periorale (pettine genale) o a 

collare sul primo segmento toracico (pettine pronotale). In alcune specie è presente una serie di spine nel secondo 

segmento toracico (serie mesopleurica). 

Disegno schematico di femmina di pulce (Illustrazione da C. 

Whitehorn) 

Ciclo vitale: Le pulci presentano una metamorfosi completa; gli stadi immaturi non assomigliano alla forma adulta, ed 

occupano nicchie ecologiche molto diverse. In media la forma adulta vive 6 – 12 mesi e si suppone possa vivere 2 

anni. Se una femmina di pulce incontra un ospite primario, può maturare le uova e durante il ciclo vitale ne può 

deporre 300 -1000 (in media 3 – 25 al giorno). Le uova si schiudono dopo 2 – 14 giorni, con uscita di larve simili a 

bruchi. Le larve delle pulci sono allungate, prive di arti e coperte di rade e lunghe setole. Il loro addome è dotato di un 

paio di processi anali digitiformi. Si nutrono di detriti organici presenti nel nido (o casa) dell’ospite. L’alimento della 

forma larvale include spesso sangue parzialmente digerito presente nelle feci delle pulci adulte. Le larve presentano 

due mute e maturano dopo 2 – 3 settimane. Producono seta e si avvolgono in un bozzolo all’interno del quale vanno 

incontro alla successiva mutazione in pupa. Lo stadio di pupa dura 1 – 2 settimane; la pulce adulta perde l’involucro 

pupale e resta inattiva all’interno del bozzolo finché viene indotta ad emergere da stimoli specifici. Dopo la loro 

fuoruscita le pulci adulte possono copulare immediatamente e la produzione di uova può iniziare entro 1 – 2 giorni dal 

pasto ematico. 







Patologia da morsi di pulce: Quando si alimenta, la pulce inietta nel derma saliva per prevenire la coagulazione del 

pasto ematico. Ciò determina nel sito del morso un prurito intenso che dura alcuni giorni. Si manifesta una tipica 

ipersensibilità nelle persone esposte a morsi ripetuti. Il morso della pulce è caratterizzato da una sottile macchia scura 

circondata da cute rossastra edematosa. 

Pulci clinicamente importanti: Le specie che hanno la maggior importanza per l’uomo sono; Xenopsylla cheopis 

(pulce della peste), Pulex irritans (pulce umana) e Tunga penetrans (pulce penetrante). Esistono inoltre numerose 

pulci di animali e volatili che si nutrono in modo opportunistico sull’uomo ed i cui morsi possono provocare gravi 

disturbi. Consultare Lane e Crosskey 2 per la definizione dei generi e delle specie di pulci clinicamente importanti. 

Preparazione del materiale: Prima della preparazione le pulci adulte devono essere uccise e conservate in etanolo 

70%. Trasferire la pulce in un vetrino da orologio contenente una soluzione di idrato di potassio (KOH) al 10% per 24 

ore o più, fino a rischiaramento del contenuto corporeo. Trasferire la pulce direttamente in un vetrino da orologio 

contenente acido acetico glaciale per almeno 2 ore, poi in olio di garofano per 2 – 24 ore fino allo schiarimento delle 

cavità corporee ed alla visualizzazione dei genitali. Montare il campione intero in Euparal ed aggiungere il 

coprioggetto. Con molta delicatezza si può esaminare immediatamente il campione. Per ottenere un preparato 

permanente, il campione deve essere posto in un essiccatore per 4–6 settimane a 55°C. Etichettare il vetrino con: 

identificazione, numero di riferimento e dati di raccolta. 

Xenopsylla cheopis (pulce della peste o del ratto tropicale) 

A distribuzione cosmopolita, la pulce è principalmente un ectoparassita dei ratti. E’ il vettore della peste e del tifo 

murino. 

Descrizione: Questa pulce si distingue dagli altri generi per l’assenza del pettine genale e pronotale e la presenza di 

una sutura mesopleurica nel secondo segmento toracico. 

Xenopsylla cheopis Xenopsylla cheopis 

Fotografia (Illustrazione da C. Whitehorn). 

© LSHTM 

Peste: La peste è un’infezione batterica causata dalla Yersinia pestis. E’ una zoonosi e l’infezione ha come serbatoio 

naturale diversi roditori selvaggi (peste silvestre); occasionalmente è trasmessa ai ratti domestici (peste urbana), che 

sono meno resistenti alla malattia ed in gran parte muoiono. Le pulci di questi ultimi, cercano allora ospiti alternativi. 

Le Y. pestis prelevate con un pasto ematico da un ospite infetto si moltiplicano rapidamente nello stomaco della 

pulce. I batteri formano un bolo vischioso, che blocca lo stomaco e impedisce una normale alimentazione alla pulce. 

Quando la pulce tenta di alimentarsi, il sangue viene a contatto con il bolo di batteri e non entra nello stomaco. La 

pulce rigurgita poi il sangue contaminato, infettando il nuovo ospite. 

Tifo murino: Il tifo murino è una rickettsiosi causata dalla Rickettsia mooseri. E’ una zoonosi del ratto e dei topi. Le 

rickettsie sono ingerite con un pasto ematico da un ospite infetto, si moltiplicano nell’intestino delle pulci senza 

causare un’occlusione e le forme infettive sono emesse con le feci. La trasmissione si verifica quando le pulci infettate 

sono schiacciate sulla pelle, strofinate sulle membrane mucose o inalate. Una via di trasmissione dell’infezione può 

essere pure rappresentata dall’ingestione di pulci infette. 







Pulex irritans (pulce umana) 

A distribuzione cosmopolita, la pulce è principalmente un ectoparassita di mammiferi dotati di folta pelliccia, quali 

maiali, cinghiale e cervi, ma si rinviene anche nell’uomo. E’ conosciuta sopratutto per le morsicature fastidiose, 

mentre negli USA è vettore della peste. 

Descrizione: la pulce si differenzia dagli altri generi per la mancanza di pettine genale e pronotale e la presenza di 

una sutura ispessita fra le antenne. P. irritans non è dotata di sutura mesopleurica. 

Pulex irritans Pulex irritans 

Fotografia della testa e del torace © LSHTM (Illustrazione da C. Whitehorn). 

Tunga penetrans (la pulce penetrante) 

Presente in Africa tropicale, America Centrale e Meridionale, questa pulce è un ectoparassita dell’uomo, del bestiame 

domestico e dei roditori. Le infestazioni di questa pulce causano la tungiasi: la femmina scava gallerie nella cute 

dell’ospite e diviene un ospite permanente. 

Descrizione: La pulce si distingue dagli altri generi per le dimensioni ridotte (1 mm) e l’assenza dei pettini genale e 

pronotale; ha segmenti toracici compressi ed una testa dall’aspetto particolare. 

Tunga penetrans Tunga penetrans 

Fotografia della testa e del torace (illustrazione da C. Whitehorn) 

© LSHTM 

Tungiasi: Il maschio e la femmina della pulce penetrante si alimentano di sangue ed il maschio abbandona l’ospite 

dopo il pasto. La femmina (dopo fecondazione) scava una galleria nella cute dell’ospite fino ad essere completamente 







Incastrata, con la sola parte superiore dell’addome esposta. I siti preferiti sono il piede. le dita e le unghie del piede, 

ma può essere interessata qualsiasi altra parte del corpo. Dopo la digestione del pasto ematico, la femmina matura le 

uova e si gonfia assumendo l’aspetto di un piccolo pisello. L’aumento di dimensione crea un considerevole fastidio 

all’ospite. Dopo 8 – 10 giorni le femmine raggiungono la loro massima dimensione e le uova mature sono diffuse 

dall’apertura genitale. Nell’arco di una due settimane sono prodotte circa 20 uova. Le uova cadono nel terreno e si 

schiudono dopo 3 -4 giorni. Le larve e le pupe sono rinvenibili in terreni sabbiosi e ben drenati. L’intero ciclo vitale è 

completato in media in 35 giorni; lo stadio larvale richiede infatti 10 – 14 giorni e la fase di pupa dura 5 – 14 giorni. 

Quando la femmina muore rimane inclusa nella cute, provocando un’infiammazione che può evolvere in infezioni 

secondarie. Si possono manifestare perdita delle dita dei piedi, tetano e gangrena. 

PULCI DI ANIMALI ED UCCELLI 

Numerose pulci di animali e di uccelli possono mordere l’uomo e provocare fastidiose lesioni. Inoltre possono agire 

come ospiti intermedi di tenie. I generi più importanti sono, Ctenocephalides (pulci del gatto e del cane), 

Ceratophyllus (pulci degli uccelli) ed in minor grado Nosopsyllus (pulci del ratto) e Leptopsylla (pulci del topo) 2 . 

Descrizione: Le pulci degli animali e degli uccelli sono tutte dotate di un pettine pronotale. Il numero di spine del 

pettine pronotale è importante per la loro identificazione. Le specie Leptopsylla e Ctenocephalides possiedono anche 

un pettine genale. 

Ctenocephalides felis (pulce del gatto) 

A distribuzione cosmopolita, C. felis è un ectoparassita del gatto e del cane, ed è la pulce che morde più 

frequentemente l’uomo nel Regno Unito. Può essere distinta dalla pulce del cane per la testa allungata 2 della forma 

adulta e per la distribuzione delle setole nella parte posteriore della tibia. C. felis può fungere anche da ospite 

intermedio delle tenie del cane (Dipylidium caninum) e del topo (Hymenolepis diminuta). 

Descrizione: La pulce del gatto si distingue dagli altri generi per la presenza di un pettine genale (di 7 -8 elementi), 

un pettine pronotale e la presenza di una sutura mesopleurica. La sua testa è doppia in lunghezza e in altezza ed 

appuntita anteriormente. La parte posteriore della tibia è dotata di sei protuberanze setolose lungo il margine dorsale 2 . 

Ctenocephalides felis Ctenocephalides felis 

Fotografia della testa, primo e secondo Riproduzione della testa e del primo segmento 

segmento toracico. Nota i pettini visibili toracico. 

© LSHTM (Illustrazione da C. Whitehorn) 







Ctenocephalides canis (pulce del cane) 

Ctenocephalides felis 

Riproduzione della tibia posteriore. 

(Illustrazione da C. Whitehorn). 

Le formazioni circolari illustrano l’origine di 

setole addizionali non rappresentate 

A distribuzione cosmopolita, C. canis è presente nei gatti e nei cani, e può morsicare anche l’uomo. E’ meno diffusa 

nel Regno Unito rispetto alla pulce del gatto, dalla quale si distingue per la testa rotondeggiante e la disposizione 

delle setole sulla parte posteriore della tibia. C. canis può fungere da ospite intermedio della tenia Dipylidium 

caninum. 

Descrizione: La pulce del cane si distingue dagli altri generi per la presenza di un pettine genale (7 -8 elementi), un 

pettine pronotale e la presenza di una sutura mesopleurica. La testa della C. canis è meno del doppio in lunghezza 

rispetto altezza e anteriormente è rotondeggiante. La parte posteriore della tibia è dotata di otto protuberanze 

setolose lungo il margine dorsale 2 . 

Ctenocephalides canis Ctenocephalides canis 

Fotografia della testa, primo e (Illustrazione da C. Whitehorn) 

secondo segmento toracico. 

© LSHTM 







Ceratophyllus (pulce dell’uccello) e Nosopsyllus (pulce del ratto) 

Ctenocephalides canis 

Riproduzione della tibia posteriore. 


Le formazioni circolari illustrano l’origine di 

setole addizionali non rappresentate 

Entrambi questi generi sono assegnati alla famiglia Ceratophillidae e condividono un certo numero di caratteristiche 

morfologiche. Possono essere distinti solo dall’esame dei genitali. La pulce comune del pollo (Ceratophyllus gallinae) 

è presente ovunque ed è un ectoparassita del pollame domestico e degli uccelli selvatici (quali piccioni, storni e 

passeri). Queste specie possono opportunisticamente mordere l’uomo e provocare lesioni particolarmente fastidiose. 

La pulce del ratto (specie Nasopsyllus) ha anch’essa una corologia cosmopolita ed è un ectoparassita per un certo 

numero di specie dei roditori. 

Descrizione: Queste pulci si distinguono dagli altri generi di rilievo medico per la presenza di un pettine pronotale, di 

una sutura mesopleurica e di un arco pleurico ben sviluppato (sito fra il terzo segmento toracico e l’addome 

Specie Nasopsyllus 

Fotografia della testa, primo e 


© LSHTM 

Specie Nasopsyllus 

Rappresentazione della testa e del torace 

Nota l’arco pleurico nel terzo segmento toracico. 

(Illustrazione da C. Whitehorn) 







Leptopsylla (pulce del topo) 

Presenti nelle Regioni Paleartica, Neartica ed Afrotropicale i membri del Genere Leptopsylla sono ectoparassiti 

principalmente per i piccoli roditori. 

Descrizione: Queste pulci si distinguono dagli altri generi per una posizione caratteristica della testa (che appare 

ripiegata), per la presenza di un pettine pronotale, di un ridotto pettine genale e per l’assenza degli occhi. 

Specie Leptopsylla 

Fotografia della testa, primo e 


© LSHTM 

Tabella 1: Pulci associate all’uomo 

Genere Ospite Testa Pettine 

genale 

Pulex 

Xenopsylla 

Tunga 

Uomo & 

animali 

Specie Leptopsylla 

Rappresentazione della testa, primo, secondo 

e parte del terzo segmento toracico. 


Pettine 

pronotale 

Occhi Sutura 

mesopleurica 

normale assente assente presente assente 

Ratti normale assente assente presente presente 

Uomo e animali 

domestici 

rivoltata 

all’insù assente assente presente assente 

Ctenocephalides Gatto/cane normale presente presente presente presente 

Ceratophyllus 

Nasopsyllus 

Uccelli normale assente presente presente presente 

Ratti normale assente presente presente presente 

Leptopsylla Topi ripiegata presente presente assente presente 

Ceratophyllus e Nasopsyllus possiedono anche un arco pleurico localizzato fra il terzo segmento toracico e l’addome. 







PIDOCCHIO UMANO 

I pidocchi (Ordine Anoplura) sono veri insetti (Classe Insecta) e come tali possiedono un corpo segmentato 

chiaramente suddiviso in testa, torace ed addome. Negli stadi di ninfa e di adulto il torace è dotato di sei zampe. 

Durante il loro ciclo vitale i pidocchi sono parassiti obbligati di ospiti vertebrati. Sono specifici per ospite, per il quale 

possono manifestare preferenze regionali. Tre sono le specie riscontrate nell’uomo e di queste solo una, il Pediculus 

humanus, è vettore di malattia. 

Descrizione: I pidocchi umani sono piccoli insetti privi di ali (lunghezza 2 – 3,5 mm), col colore che varia dal crema al 

marrone scuro in funzione dell’ospite. Il corpo, appiattito a livello dorso-ventrale, ricoperto da un tegumento coriaceo, 

è distintamente suddiviso in testa, torace e addome, ma il torace e l’addome sono fusi fra loro. La testa è dotata di 

due piccoli occhi e di un paio di corte antenne, il torace di tre paia di zampe con potenti unghie per avvinghiarsi 

all’ospite. I pidocchi umani sono classificati in due generi, specie Pediculus (pidocchio del corpo e del capo) e specie 

Pthirus (pidocchio del pube o piattola). 

Specie Pediculus 

Rappresentazione di un maschio di pidocchio 

(Illustrazione da Whitehorn) 

Ciclo vitale 3,4 : I pidocchi presentano una metamorfosi incompleta, con stadi immaturi che assomigliano all’adulto, ed 

occupano la stessa nicchia ecologica. Trascorrono il loro intero ciclo sull’ospite e si allontano solo per trasferirsi su un 

nuovo ospite. L’adulto del pidocchio del capo vive in media 22 giorni e, nel corso della vita, le femmine depositano 

circa 50 uova; quello del corpo vive in media 30 giorni e le femmine depositano circa 100 uova; le piattole adulte 

vivono in genere 22 giorni e le femmine depositano circa 50 uova. In tutti i casi, le uova si schiudono dopo 6 – 8 giorni 

(a 35°C) e fuoriesce una piccola ninfa. Gli stadi ninfali sono tre e per il pidocchi del capo e del corpo richiedono circa 

9 giorni. Per la piattola lo sviluppo della ninfa richiede 15 – 17 giorni. Durante il giorno i pidocchi che infestano l’uomo 

necessitano di pasti regolari e sono molto sensibili alle variazioni della temperatura e dell’umidità. 

Patologia da morso di pidocchio 3, 4 : I pidocchi sono dotati di organi buccali distinti contenuti in una borsa ventrale. 

Quando un pidocchio si alimenta si attacca alla cute utilizzando una proboscide munita di denti e trafigge la cute con 

stili aghiformi. La saliva è inoculata nella ferita per prevenire la coagulazione ed il sangue è succhiato attraverso una 

bocca simile ad un tubo flessibile. I morsi dei pidocchi umani provocano un arrossamento puntiforme di 2 – 3 mm di 

diametro. La sensibilità ai morsi dei pidocchi si sviluppa in settimane o mesi (in funzione del livello di esposizione) e, 

una volta consolidata, l’irritazione cutanea può diventare grave. L’abitudine dei pidocchi di alimentarsi regolarmente 

espone l’ospite a ripetute dosi di saliva e in alcuni soggetti si potranno manifestare reazioni tossiche e sintomi di 

affaticamento, irritabilità e depressione (la persona si sente ammalata). 







Pidocchi di importanza clinica: Solo il pidocchio del corpo Pediculus humanus è vettore di malattia, infatti, 

trasmette il tifo esantematico, la febbre quintana e la febbre ricorrente. La necessità dei pidocchi di nutrirsi 

regolarmente comporta comunque un grande disturbo da morsicature associato a tutte tre le specie. 

Preparazione del materiale: I pidocchi devono essere uccisi in acqua calda (85°C) e conservati in etanolo 70% 

prima della preparazione. Trasferire i pidocchi in un vetrino di orologio contenente 10% di soluzione di idrato di 

potassio (KOH), Trafiggere le membrane inter-segmentali dorsali con un sottile ago e lasciare i pidocchi nella 

soluzione per 24 ore. Il KOH penetra e dissolve i tessuti corporei. Esercitare poi una lieve pressione sul corpo 

utilizzando un ago smussato per rimuovere i contenuti liquefatti. Lavare per tre volte i pidocchi in acqua distillata (10 

minuti per lavaggio). Disidratare con etanolo a concentrazione progressiva: 80% (5 minuti), 90% (5 minuti) 100% (5 

minuti) ed infine trasferire in un vetrino di orologio contenente cellosolve per 15 minuti. Montare il campione intero in 

Euparal e coprire accuratamente con coprioggetto. Il campione può essere esaminato immediatamente facendo 

attenzione. Per ottenere una preparazione permanente su vetrino il campione deve essere inserito in un essiccatore 

per 4 settimane a 55°C. 

Pediculus humanus (pidocchio del corpo) 

Il pidocchio del corpo, a distribuzione geografica cosmopolita, è frequente in popolazioni migranti, dove le persone 

non sono in grado di lavarsi o cambiare frequentemente gli indumenti. I pidocchi umani dotati di maggior resistenza 

possono sopravvivere alcuni giorni lontano dall’ospite negli abiti infestati. 

Descrizione 

Adulto: Le specie di Pediculus del corpo sono insetti di forma allungata, che crescono all’incirca sino a 4 mm. Le 

regioni corporee sono distintamente differenziate e le zampe sono dotate di unghie di moderate dimensioni. Le 

femmine sono lievemente più larghe dei maschi. I pidocchi del capo e del corpo sono praticamente identici e sono 

differenziabili per il loro posizionamento sull’ospite. I pidocchi del corpo si rinvengono negli indumenti, in modo 

particolare nelle cuciture a contatto con pieghe inguinali, ascelle, fianchi, collo e spalle. Si attaccano ai peli solo 

quando si nutrono e non si riscontrano mai sulla testa. 

Pediculus humanus 

Rappresentazione del corpo di 

femmina di pidocchio. Nota: 

apice addominale biforcato. 


Pediculus humanus 

Rappresentazione di uovo 

incollato a materiale fibroso. 


Uovo: Le uova delle specie Pediculus sono piccole (lunghezza 0.8 mm), di color crema5 e di aspetto ovale. Nella 

parte distale dell’uovo è presente un opercolo perforato, che consente scambi gassosi per l’embrione. Le uova dei 

pidocchi del corpo e della testa sono così simili che la loro sede sull’ospite rappresenta il metodo principale di 

differenziazione delle due specie. Le uova del pidocchio del corpo si rinvengono sugli indumenti aderenti a materiale 

fibroso, specie nelle cuciture della biancheria. Sono occasionalmente incollate ai peli del corpo, ma le uova del 

pidocchio del corpo non si rinvengono mai sulla testa. 

Tifo epidemico originato dal pidocchio: Il tifo originato dal pidocchio è una malattia causata dalla Rickettsia 

prowazekii. Le rickettsie sono ingerite dall’ospite tramite pasto ematico e si moltiplicano nel lume e nelle cellule 

epiteliali dell’intestino del pidocchio. Queste occasionalmente si rompono, rilasciando gli agenti infettivi che sono 

immessi nelle feci. Le rickettsie presenti nelle feci emesse rimangono infettive per l’uomo per più di tre mesi e la 







trasmissione della malattia si verifica quando vengono graffiate all’interno della cute, oppure sfregate sulle mucose o 

inalate. Persone prive di pidocchi possono quindi essere infettate dalla forma tifoidea. R. prowazekii è stata isolata 

anche dallo scoiattolo volante Americano, ma la sua rilevanza nella trasmissione dell’infezione rimane incerta. 

Febbre quintana: La febbre quintana è una malattia di tipo batterico causata dalla Bartonella quintana. I batteri sono 

ingeriti dall’ospite con pasto ematico e si moltiplicano nel lume dell’intestino, ma non invadono le cellule epiteliali. 

Dopo 5 – 10 giorni gli agenti infettivi contaminano le feci ed abbandonano il vettore. La modalità di trasmissione ed i 

sintomi sono simili a quelli della forma tifoidea, ma la malattia è meno grave. Volatili selvatici ed altri roditori possono 

essere serbatoi di malattia. 

Febbre ricorrente epidemica del pidocchio: La malattia è causata dalla spirocheta Borrelia recurrentis. L’uomo è la 

sola riserva della malattia. Le spirochete sono ingerite dal pidocchio con pasto ematico e penetrano nell’intestino per 

moltiplicarsi nel sistema emolinfatico. La trasmissione si realizza quando i pidocchi sono ingeriti dall’uomo o sono 

schiacciati sull’epidermide escoriata o fra i denti. La malattia è talvolta riscontrata in soggetti che non sono infestati da 

pidocchi. 

Pediculus capitis (pidocchio della testa) 

A distribuzione cosmopolita, l’infestazione è riscontrata principalmente negli asili e nelle scuole elementari. La 

trasmissione dei pidocchi avviene per contatto da testa a testa. I pidocchi non sono in grado di sopravvivere se 

rimossi dall’ospite. 

Descrizione 

Adulto: Sono poche le differenze morfologiche fra i pidocchi del capo 

e quelli del corpo, comunque possono essere distinti grazie alla loro 

localizzazione sull’ospite. I pidocchi del capo sono rinvenibili solo sui 

peli del cuoio capelluto. 

Pediculus capitis - maschio 

Fotografia della testa e del torace 

© LSHTM 

Uova: Le uova della specie Pediculus sono piccole (0.8 mm di lunghezza) di 

colore crema 5 e di aspetto ovale. Nella parte distale presentano un opercolo 

superficiale perforato, che consente scambi gassosi per l’embrione. Le uova del 

pidocchio della testa si differenziano da quelle del pidocchio del corpo per 

localizzazione; le prime si trovano solo sui peli del cuoio capelluto e non sono 

rilevabili in altre parti del corpo. 

Pediculus capitis - uovo 

Rappresentazione di uovo aderente allo stelo di un capello 








Pthirus pubis (pidocchio del pube) 

A distribuzione cosmopolita, l’infestazione è principalmente riscontrata negli adulti sessualmente attivi. Si manifesta 

sui peli più grossi del corpo quali quelli del pube, ciglia, barba e baffi. La trasmissione del pidocchio del pube si 

realizza per stretto contatto fisico. 

Descrizione 

Pthirus pubis 

Fotografia di piattola 

© LSHTM 

Pthirus pubis 

Rappresentazione di femmina di piattola 

Adulto: Il Pthirus pubis è un insetto rotondeggiante, compatto (1.0 – 1.4 mm di diametro), dotato di grandi unghie sul 

secondo e terzo paio di zampe. L’addome è ridotto come dimensione e numero di segmenti, e non si distingue bene il 

torace dall’addome. Pthirus assomiglia ad un minuscolo granchio e da ciò il suo nome comune di “pidocchio 

granchio”. 

Uova: Le uova del Pthirus pubis sono piccole (0.8 mm di lunghezza), di color crema 5 e di aspetto ovale. Nella parte 

distale è presente un opercolo perforato rilevato che consente scambi gassosi per l’embrione. L’aspetto dell’opercolo 

permette di differenziare le uova del pidocchio del pube da quelle del pidocchio delle testa e del capello. 

Pthirus pubis – uovo 

Fotografia di uovo aderente 

al pelo. 

Nota: opercolo rilevato 

Pthirus pubis – uovo 

Rappresentazione di uovo 

aderente al pelo 


Anche se le uova della piattola si possono rinvenire sulla testa dell’ospite, solitamente sono presenti nelle sole aree 

con peli più grossi, quali sopracciglia, ciglia, barba e baffi. Le uova della piattola non sono riscontrate sui peli del cuoio 

capelluto. 







CIMICI 

Le cimici, (Ordine Hemiptera) sono veri insetti (classe: Insecta) e come tali possiedono un corpo segmentato 

chiaramente suddiviso in testa, torace ed addome. Negli stadi di ninfa e di adulto il torace è dotato di sei zampe. 

Le cimici sono parassiti ematofagi obbligati degli animali vertebrati. Sono principalmente insetti notturni e durante il 

giorno si nascondono nelle fenditure e negli interstizi. Solo due specie sono associate all’uomo. Cimex lectularius 

(cimice comune) e Cimex hemipterus (cimice tropicale). Sebbene queste due specie si nutrano principalmente del 

sangue dell’uomo possono mordere anche mammiferi e uccelli. L’importanza sanitaria delle cimici è controversa, ma 

comunque esse sono responsabili di morsicature moleste. 

Descrizione: Le cimici adulte sono piccole (lunghezza 5 mm, larghezza 3 mm), 

ovali,di colore variabile dal giallastro al marrone, che diventa colore rosso scuro 

dopo un pasto recente. Il corpo è appiattito dorso ventralmente e suddiviso 

distintamente in testa, torace ed addome. La testa è piccola, dotata di due occhi 

e di due antenne divise in 4 segmenti. Ripiegata sotto la testa c’è una 

proboscide (un rostro diviso in tre segmenti), che viene ruotata anteriormente 

quando la cimice si nutre. Il torace è suddiviso in tre segmenti e l’aspetto del 

primo (pronoto) consente di distinguere la cimice comune da quella tropicale. 

Nella parte dorsale il secondo e terzo segmento sono parzialmente nascosti da 

due strutture simili ad ali prive di funzione. Le zampe sono ben sviluppate. Se 

disturbate, le pulci possono muoversi molto rapidamente. 

Fotografia di Cimex 

lectularius (Ventrale). 

© LSHTM 

Si può distinguere il maschio dalla femmina esaminando l’addome. Quello del maschio è più ristretto, lievemente 

appuntito, con contorno asimmetrico. L’addome della femmina è arrotondato e simmetrico. 

Cimex lectularius 

Rappresentazione del maschio della cimice 

Visione dorsale 



Rappresentazione della femmina della cimice 

Visione ventrale 


Con l’osservazione ventrale, il segmento terminale del maschio è dotato di un paramero ricurvo a forma di uncino (o 

pene), i genitali esterni. Nella femmina, il quarto segmento addominale è dotato di una distinta fessura nella parte 

sinistra della linea mediana che si apre nella tasca copulatoria. 







Ciclo vitale: Le cimici vanno incontro ad una metamorfosi incompleta e gli stadi immaturi e le forme adulte occupano 

nicchie ecologiche identiche. Le femmine delle cimici incollano le uova nelle fenditure e negli interstizi delle pareti e 

dei mobili. Durante il ciclo vitale ogni femmina può deporre fino a 300 uova, in funzione delle condizioni ambientali e 

della disponibilità di pasti ematici. Le uova hanno forma allungata, sono di colore dal crema al rosato, dotate di 

opercolo con lunghezza di circa 1 mm. Si schiudono dopo circa 10 giorni e ne fuoriesce la ninfa del primo stadio. Gli 

stadi delle ninfe sono 5 e ciascuno richiede un pasto ematico per facilitare la trasformazione nello stadio successivo. 

Le ninfe possono sopravivere per 4 mesi senza pasto ematico e la forma adulta più di un anno. Il tempo medio per il 

completamento del ciclo è di 10 settimane, ma lo sviluppo delle cimici è in gran parte condizionato da temperatura, 

umidità, disponibilità di un ospite ed habitat. 

Segni e sintomi 6 : Si ritiene che le cimici siano trasportate nelle abitazioni da mobili ed effetti letterecci infestati. Si 

rinvengono nelle locazioni più disparate, da quelle di lusso ad alloggi di scarsa qualità, e principalmente, in quelli a 

destinati a brevi periodi di residenza, quali gli alberghi e gli ostelli. La diffusione locale avviene quando le cimici 

possono transitare su condutture, rampe e tubature del riscaldamento centrale che congiungono ambienti adiacenti. 

Sono richieste in media 7 settimane perché l’infestazione di un locale sia rilevabile anche in quelli adiacenti. Questo 

tipo di diffusione può manifestasi in assenza di pressione competitiva. 

La reazione ai morsi delle cimici varia molto da individuo ad individuo. 

Alcune persone non sono sensibili alla loro saliva e non si accorgono 

neppure di essere state morsicate. Ma nella maggior parte dei casi, circa 

15 – 30 minuti dopo la suzione, si manifesta nella sede del morso un 

gonfiore pruriginoso che dura alcuni giorni. L’intervallo fra il momento della 

suzione e la comparsa della reazione dipende dalla condizione 

immunologica dell’ospite. Durante la fase di suzione l’ospite non avverte 

generalmente alcuna sensazione nella sede del morso. 

. 

Fotografia della specie Cimex 

durante il pasto. 

© LSHTM 

Di solito le morsicature si trovano sulla testa e sulle spalle della persona, in quanto aree esposte fuori da lenzuola e 

coperte strettamente rimboccate. L’area è più diffusa se si utilizzano piumini scarsamente aderenti o se le cimici sono 

presenti in altro tipo di arredamento. 

Le cimici adulte, se disturbate, secernono odori da apposite ghiandole. Le locazioni molto infestate possono essere 

riconosciute per il tanfo dolciastro e di muffa proprio di queste secrezioni. Ulteriori segni di infestazione possono 

essere le deposizioni puntiformi di feci in prossimità dei luoghi di riposo e la presenza di esuvie (cuticole larvali). 

Importanza clinica: In laboratorio, le cimici sono state infettate con virus di epatite B, HIV e Trypanosoma cruzi, ma 

le possibilità che le cimici siano vettori effettivi di patogeni per l’uomo sono scarse. 

Preparazione del materiale: Le cimici devono essere uccise in acqua calda (85°C) e poi conservate in etanolo 70%. 

Per l’identificazione non è richiesto il montaggio su vetrino, ma è sufficiente collocarle in un vetrino d’orologio 

contenente etanolo 70% e l’osservarle al microscopio di dissezione (stereomicroscopio). 

Cimex lectularius (Cimice comune) 

Nel Regno Unito la cimice comune è la specie maggiormente responsabile delle infestazioni domestiche. Negli ultimi 

cinque anni c’è stato un incremento significativo dei casi in questo campo senza capirne le cause. Le cimici 

continuano ad essere associate alla miseria o alla scarsa igiene, fattori da approfondire in merito a questa 

problematica pestilenza. 







Descrizione: Le cimici comuni sono lunghe circa 4.5 mm e larghe 3 

mm. Sono decisamente più piccole delle cimici tropicali ed hanno un 

addome più arrotondato. L’osservazione della superficie dorsale del 

corpo evidenzia il pronoto (primo segmento toracico) espanso 

lateralmente in un margine concavo. 

Cimex hemipterus (cimice tropicale) 


Rappresentazione della testa e 

pronoto x 30 

Illustrazione da C. Whitehorn) 

Questa specie è diffusa ai tropici e, come conseguenza dell’aumento del turismo internazionale, ci si aspetta sempre 

la possibilità di un suo ingresso nel Regno Unito. Negli anni recenti è stato segnalato un numero ristretto di casi di 

infestazione domestica di cimici tropicali. 

Descrizione: Le cimici tropicali sono lunghe circa 5 mm e larghe 

2,5 mm. Sono lievemente più larghe delle cimici comuni ed hanno 

un addome lievemente più allungato. L’osservazione della 

superficie dorsale del corpo rileva un pronoto (primo segmento 

toracico) arrotondato e privo del solco laterale. 

Cimex hemipterus 

Rappresentazione della testa e 

pronoto x 30. 








ACARI 

Gli acari (Sottoclasse Acari) sono aracnidi (Classe Aracnidi) e, come tali, sono dotati di un corpo affusolato privo di 

segmentazioni fra collo, torace ed addome. Nelle forme adulte il corpo è dotato di otto zampe. 

Sono aracnidi microscopici, ritrovabili in nicchie ecologiche diverse. Si ritrovano nel suolo, nell’aria e nell’acqua e si 

alimentano di piante, materiale organico, vari microrganismi ed occasionalmente anche di vertebrati. Il numero degli 

acari di importanza clinica associati all’uomo è particolarmente ristretto. Per la loro identificazione richiedono il 

montaggio su vetrino e l’osservazione con microscopio composto. 

Descrizione: Gli acari sono molto piccoli e la loro dimensione varia da 

0.09 ad 1.0 mm di lunghezza (un numero ridotto di specie può 

raggiungere 15 mm di lunghezza). Il corpo è ricoperto di una cuticola 

flessibile, dotata di numerose setole spesso raggruppate in modo 

caratteristico. Non si osserva alcuna suddivisione del corpo in testa 

torace ed addome, ed il cospicuo apparato buccale può essere confuso 

con la testa. La sua struttura è costituita da palpi e da cheliceri, 

(apparati di taglio e penetrazione). Gli stadi adulti e quelli di ninfa hanno 

otto zampe, quelli larvali sei. Pertanto le larve possono essere confuse 

con gli insetti, tranne che per l’assenza di segmentazione corporea. Gli 

acari possono essere distinti dalle zecche perché sono privi di ipostoma 

dentato prominente nell’apparato buccale e dell’organo di Haller sui 

tarsi delle zampe anteriori. Anche se sono generalmente molto più 

piccoli delle zecche, non sono le dimensioni la caratteristica principale 

per differenziare i due gruppi (consultare Zecche). Sulla superficie del 

corpo gli acari presentano regioni sclerotizzate, chiamate scudi che, 

associate alle setole che da loro protrudono, rappresentano caratteri 

utili all’identificazione. 

Ciclo vitale: Gli acari si sviluppano con un ciclo vitale incompleto, e gli 

stadi immaturi ed adulti possono occupare nicchie ecologiche 

completamente differenti. I cicli vitali sono descritti in sezioni specifiche 

per ciascun acaro di importanza clinica, ma qui di seguito vengono 

elencate le loro caratteristiche comuni: evoluzione dall’uovo alla larva a 

sei zampe, dalla larva allo stadio/i di ninfa ad otto zampe, dalla ninfa 

all’adulto. Le femmine degli acari producono un numero limitato di uova, 

relativamente voluminose, che si schiudono per far nascere la larva. 

Dopo essersi nutrita, la larva si trasforma per dare origine alla ninfa e 

questa può andare incontro ad 1 – 3 stadi di sviluppo, di protoninfa, 

deutoninfa e tritoninfa a seconda delle specie. Almeno una stadio della 

ninfa è inattivo. La ninfa può eventualmente trasformarsi nella forma 

adulta. 

Ciclo vitale semplificato dell’acaro 

Generalità dell’acaro 



Acari di importanza clinica: Gli acari ectoparassiti di importanza clinica sono il Sarcoptes scabiei (acaro della 

scabbia, acaro pruriginoso), le specie di Demodex (acari dei follicoli) e gli acari trombiculidi (chiggers). Alcuni acari 

degli animali e degli uccelli possono mordere l’uomo in assenza del loro ospite primario, come ad esempio il 

Dermanyssus gallinae (acaro del pollo). Fare riferimento a Lane, Crosskey e Baker per la classificazione in famiglie e 

generi degli acari parassiti 7 . 

Preparazione del materiale: Prima della preparazione gli acari devono essere uccisi e conservati in etanolo 70% o in 

soluzione di Oudeman*. Trasferire gli acari con corpo molle, o scarsamente sclerotizzato, su vetrino in una goccia di 

liquido di Hoyer**, aggiungere il coprioggetto ed esaminare con cautela. Prima del loro montaggio su vetrino gli acari 

sclerotizzati devono essere trasferiti in lattofenolo per 4 -72 ore fino a chiarificazione. 







Raggiunta questa condizione, gli acari devono essere risciacquati in acqua distillata per tre volte (10 minuti per ogni 

risciacquo) e montati in terreno di Hoyer secondo la procedura prima descritta. Oppure, per una preparazione 

permanente, inserire il vetrino in termostato a 50°C per 4 giorni e sigillare il coprioggetto con smalto chiaro per 

unghie. Contrassegnare il vetrino con identificazione, numero di riferimento e data di raccolta 7 . 

Per conservazioni a lungo termine, prevenire la disidratazione del campione con la soluzione di Oudeman, costituita 

da 87 parti di etanolo 70%, 5 parti di glicerina e 8 parti di acido acetico glaciale. 

**Il terreno di Hoyer è costituito da 50 ml di acqua distillata, 30 g di gomma Arabica cristallina, 200 g di idrato di 

cloralio e 20 mL di glicerina. 

*** Il lattofenolo è costituito da 50 parti di acido lattico, 25 parti di cristalli di fenolo e 25 parti di acqua distillata. 

Sarcoptes scabiei (acaro mite) 

A distribuzione cosmopolita, il Sarcoptes scabiei causa la scabbia nell’uomo e può attaccare persone appartenenti a 

qualsiasi condizione socio-economica. Numerose altre specie di Sarcoptes provocano la scabbia negli animali da 

compagnia ed in quelli domestici, ma non vivono sull’uomo. Gli acari della scabbia scavano gli strati superiori della 

cute nutrendosi di tessuti del derma. I sintomi clinici sono determinati dalla sensibilizzazione nei confronti loro e delle 

loro feci. Gallerie lunghe e permanenti sono prodotte solo dalla femmina dell’acaro, che è in grado di vivere sull’uomo 

sino a due mesi. La scabbia è trasmessa da persona a persona esclusivamente per contatto fisico stretto e 

prolungato. 

Descrizione: Gli acari della scabbia sono molto piccoli; i maschi misurano 0.2 mm e le femmine 0.3 – 0.4 mm. Hanno 

una cuticola striata con squame e setole dotate di particolari funzioni. Le zampe sono corte e quelle anteriori 

possiedono setole (pulvilli) atte ad avvinghiarsi alla cute dell’ospite. 

Sarcoptes scabiei 

Rappresentazione della femmina dell’acaro 



Rappresentazione del maschio dell’acaro 


I maschi possono essere distinti dalle femmine per la presenza di pulvilli sulle zampe anteriori, utilizzati per 

mantenersi sulla femmina durante l’accoppiamento. 

Ciclo vitale: La femmina dell’acaro depone le uova nel solco mentre scava gallerie nella cute. Le uova sono ovali e 

lunghe da 0.1 a 0.15 mm. Si schiudono dopo 3 – 8 giorni e ne escono larve a sei zampe. Queste migrano sulla 

superficie cutanea e penetrano in un follicolo pilifero, oppure scavano nello strato corneo e danno luogo ad una 

“nicchia di muta”. Dopo 2 -3 giorni la larva si muta in ninfa a otto zampe. Due stadi da ninfa precedono la forma 

adulta. L’accoppiamento avviene quando il maschio adulto penetra nella “nicchia di muta” della femmina, che, 

fecondata, ingrandisce la nicchia ed inizia la sua migrazione scavando nella cute. Il ciclo completo richiede 10 – 14 

giorni e gli acari adulti vivono 4-5 settimane. Necessitano 2 – 4 mesi ad una popolazione media di 20 acari adulti per 

sviluppare un caso clinico di scabbia. 

. 

Patologia: Quando un soggetto è infestato per la prima volta dal Sarcoptes, i sintomi compaiono raramente nel primo 

mese (2 -6 settimane). La sintomatologia clinica insorge solo quando i pazienti si sono sensibilizzati agli acari e si può 







sviluppare rapidamente (1-4 giorni) dopo la sensibilizzazione e nelle infestazioni successive. La scabbia esordisce 

con un’eruzione cutanea generalizzata, rappresentata da papule rilevate pruriginose in corrispondenza di ogni galleria 

dell’acaro. Il prurito intenso può essere uno dei sintomi più frequenti e si manifesta sulla maggior parte del corpo 

soprattutto di notte. Il grattamento può comportare la rottura della cute e la formazione di pustole. La maggior parte 

delle gallerie è situata fra le dita dei piedi e le pieghe delle ginocchia e dei gomiti. Può anche essere coinvolta la cute 

di scroto, pene, ginocchia, natiche e mammella. Sul corpo può comparire un esantema allergico simmetrico a partire 

dalla parte inferiore delle braccia fino ai polpacci ed attorno alla vita, ma non nella parte superiore del dorso. Negli 

immunodepressi si può manifestare una condizione, nota come scabbia crostosa “Norvegese”, in cui il paziente non 

reagisce agli acari presenti nella cute ed il loro numero aumenta in modo incontrollato. Questa situazione produce un 

ispessimento squamoso della cute ed una forma clinica molto contagiosa. Nei bambini e negli anziani la scabbia può 

presentarsi in modo atipico, con coinvolgimento del viso e del cuoio capelluto e rare gallerie. 


Fotografia di femmina di acaro in preparazione su vetrino 

Nota: uovo di grandi dimensioni fra le zampe posteriori. 

© LSHTM 

Diagnosi: La diagnosi di scabbia si basa sull’aspetto e distribuzione dell’esantema e sulla presenza di gallerie. 

Quando possibile, la diagnosi deve essere confermata con l’isolamento da raschiamento cutaneo di acari, uova o 

depositi fecali. Osservare con lente d’ingrandimento la superficie della cute per il rilievo di gallerie. Rivolgere 

particolare attenzione a mani, pieghe fra le dita e pieghe del polso. Deporre una goccia di olio minerale sulla cute ove 

sia evidente una galleria. Utilizzando un bisturi sterile raschiare lo strato corneo della cute e raccogliere il materiale su 

un vetrino da microscopio in una goccia d’olio. Esaminare il preparato con obiettivo 10x. 

Demodex spp. (acari del follicolo) 

L’acaro del follicolo è ospite della cute nella maggior parte degli adulti, in modo particolare nelle donne, e di solito non 

comporta alcuna conseguenza patologica. E’ ospite specifico e sull’uomo si possono rinvenire due specie: Demodex 

follicularum, isolato dai follicoli dei capelli, e D. brevis, riscontrato nelle ghiandole sottocutanee. L’intero ciclo vitale si 

realizza nel follicolo. 

Descrizione: Le specie Demodex sono molto piccole in lunghezza (0.1 – 0.4 mm) e 

molto atipiche, in quanto presentano un aspetto vermiforme. Il corpo è striato 

trasversalmente e presenta quattro paia zampe tozze, poste anteriormente dietro 

all’apparato buccale. L’acaro vive nel follicolo e nelle ghiandole sebacee con la testa 

rivolta in basso, e si alimenta di tessuti sottocutanei e di essudati. L’infestazione si 

manifesta principalmente nell’area facciale, sulle palpebre e sul naso. 

Specie Demodex 

Rappresentazione di pidocchio adulto 


Patologia: Possono causare dermatite nei soggetti sensibilizzati, che si manifesta 

come acne, acne rosacea, impetigine contagiosa o blefarite. 

: 

Diagnosi: Spremere i contenuti dei pori follicolari attorno alla piega naso-labiale e 

strisciare su vetrino da microscopio. Esaminare il preparato con obiettivo 40x. 







Acari Trombiculidi (chigger/acari della febbre della boscaglia) 

Specie Demodex 

Fotografia di acaro, preparato su vetrino 

a 340 ingrandimenti. 

Diaframma del condensatore in posizione 1 

per ottenere il massimo contrasto. 

© LSHTM 

Le larve degli acari trombiculidi sono parassiti dei vertebrati e sono note come chiggers, cimici della mietitura ed acari 

del graffio pruriginoso. Possono causare dermatiti nell’uomo e nel Sud-Est asiatico sono vettori della ‘rickettsiosi 

“originata dal chigger” (febbre della boscaglia). Le ninfe e le forme adulte sono predatori liberi. 

Descrizione: Le larve sono ovali, dal color bianco crema al rosso-arancio e di dimensioni molto piccole.(0.15 -0.3 mm 

di lunghezza). Sono dotate di tre paia di zampe che terminano con due unghie robuste. I palpi e l’apparto buccale 

sono larghi, di dimensioni notevoli, simili ad una testa. Zampe e corpo sono ricoperti da sottile peluria piumosa. Sulla 

parte dorsale si può osservare uno scudo, nella parte anteriore del corpo, dal quale esce un certo numero di setole. 

Ciclo vitale: Le femmine degli acari depongono le uova su lettiere di foglie o su terreno umido. Le uova si schiudono 

dopo circa una settimana e le larve rimangono all’interno del guscio per altri 5 – 7 giorni prima di fuoriuscire. Sono 

esapodi e cercano un ospite idoneo alla propria nutrizione arrampicandosi su uccelli e mammiferi di passaggio. La 

nutrizione sull’uomo dura 2-10 giorni e poi le larve, sazie, cadono sul terreno, vi penetrano e si mutano in protoninfe 

ad 8 zampe. Lo stadio di protoninfa è inattivo. Nella settimana successiva avviene la trasformazione in deutoninfa, 

stadio di vita libera con nutrizione sugli animali del suolo. Le deutoninfe sono attive per circa 2 settimane e poi vanno 

incontro ad un ulteriore periodo di quiescenza (tritoninfa) prima di trasformarsi nello stadio adulto. L’intero ciclo vitale 

richiede in genere 40 -75 giorni. 

Rappresentazione di acaro trombiculide (larva) 


Leptotrombidium akamushi – larva 

Fotografia di un vettore della febbre della boscaglia 

dal Giappone. 

© LSHTM 







Patologia: Le larve si attaccano alla cute dell’ospite utilizzando il loro potente apparato buccale ed iniettano la saliva 

nei tessuti del derma. La saliva induce la digestione dei tessuti che sono poi ingeriti dalla larva. Le ripetute 

inoculazioni di saliva portano alla formazione di un canale di alimentazione che si estende verticalmente nella cute 

dell’ospite. I morsi producono un’intensa dermatite pruriginosa, con formazione di pustole e papule poche ore dopo 

l’esposizione. Questa condizione è nota come “prurito da cimice del raccolto” o “graffio pruriginoso”. In Asia sono 

presenti acari che sono vettori della “Rickettsia tsutsugamushi”, agente causale della ‘rickettsiosi causata dal chigger’, 

nota anche come febbre della boscaglia. Nei casi in cui l’acaro è infettato, il morso non è doloroso ma si forma 

un’escara nel sito di esposizione. L’escara è una crosta compatta, nera ed aderente, di 3 – 6 mm di diametro, 

circondata da un sottile margine di colore rosso. I sintomi della “rickettsiosi causata dal chigger-” sono tipici anche di 

altre forme tifoidee e comprendono stato febbrile e dolenzia ai linfonodi. 

Diagnosi: si può avvalere della localizzazione e tipologia delle lesioni (stilostomi) sulla superficie cutanea. Gli acari 

attaccano di preferenza le aree attorno ai fianchi ed ai genitali dell’uomo. Se in un ospite sono presenti degli acari, si 

possono rimuovere abbastanza difficilmente e si deve porre particolare attenzione nell’isolare un campione per 

l‘esame microscopico. Per la ricerca degli acari, ogni materiale prelevato dal paziente deve essere sospeso in liquido 

di Berlese su un vetrino da microscopio ed esaminato con obiettivo 10x. Per ottenere il massimo contrasto 

posizionare ad 1 il diaframma del condensatore. Nella definizione diagnostica può essere utile l’anamnesi di eventuali 

viaggi. 







Dermanyssus gallinae (acaro del pollo) 

Noto come acaro rosso del pollo od acaro del pollo, il Dermanyssus gallinae è un parassita del pollame e degli uccelli 

selvatici ed ha una distribuzione cosmopolita. In assenza degli ospiti usuali (quando gli uccelli si ricoprono di piume e 

abbandonano il nido) gli acari cercano attivamente nuovi ospiti e morsicano l’uomo. 

Descrizione: Gli acari, a digiuno, sono lunghi circa 0.7 mm 

e di color grigio. Sono soliti alimentarsi di notte, aumentando 

di volume fino ad 1 mm di lunghezza ed assumendo un 

colore rosso brillante. Sono dotati di zampe ben sviluppate e 

di un grande rostro. 

I cheliceri sono lunghi, a forma di frusta, affusolati verso 

l’estremità, molto fragili e possono rompersi durante la 

procedura di preparazione. La superficie dorsale del corpo è 

dotata di uno scudo. Lo scudo anale della superficie ventrale 

è a forma di coppa. 

Dermanyssus gallinae 

Rappresentazione della superficie dorsale 

di acaro femmina 



Fotografia del rostro e delle zampe anteriori 

© LSHTM 


Rappresentazione della superficie ventrale 

di acaro femmina 


Ciclo vitale: Le uova sono depositate nel materiale del nido dell’ospite e nelle fessure ed interstizi del pollaio. Il ciclo 

vitale è molto rapido e, in condizioni ottimali, può essere completato in una settimana. Sono state riscontrate 

infestazioni in abitazioni, ospedali e stazioni delle metropolitane, originate di solito da nidi abbandonati. 

Patologia: I morsi di D. gallinae sono dolorosi ed irritanti. 

Diagnosi: Gli acari sono visibili ad occhio nudo e possono essere prelevati dall’ospite o dai siti di permanenza 

ambientali (fessure ed interstizi di mobili o pareti). Prima della preparazione per l’identificazione l’acaro del pollame 

richiede un periodo di chiarificazione in lattofenolo. 







ZECCHE 

Le zecche (Sottoclasse: Acari) sono aracnidi (Classe: Arachnida) e come tali sono dotate di un corpo con segmenti 

fusi fra loro, che non presenta alcuna divisione fra testa, torace ed addome. Negli stadi adulti il corpo è dotato di otto 

zampe. 

Le zecche sono parassiti obbligati di ospiti vertebrati ed hanno un notevole impatto economico come ectoparassiti del 

bestiame e come vettori di malattia negli animali e nell’uomo 7 . Molte di loro si alimentano in modo opportunistico 

sull’uomo e possono essere responsabili della trasmissione di zoonosi virali, rickettsiosi, infezioni batteriche e 

protozoarie. 

Descrizione: Le zecche di solito hanno dimensione variabile da 1 a 30 

mm. Il dorso è ricoperto da un robusto tegumento cutaneo. Non è 

suddiviso in testa, torace ed addome, ma il rostro (struttura che 

sostiene l’apparato buccale) è di dimensioni notevoli e può essere 

confuso con la testa. Le zecche sono di solito più grandi degli acari, ma 

ciò non può essere considerato un carattere differenziale fra i due 

gruppi. La presenza di un ipostoma dotato di denti (parte mediana 

dell’apparato buccale) e quella dell’organo di Haller (sui tarsi del primo 

paio di zampe) distinguono in modo netto le zecche dagli acari 

Rappresentazione della visione ventrale del rostro della 

zecca, che ne pone in evidenza la base, l’ipostoma con i 

denti (segnalati dalla freccia) e le appendici dell’apparato 

buccale. 


Rappresentazione di femmina di 

zecca dura 


Rappresentazione della zampa anteriore 

che mostra l’organo di Haller (segnalato 

dalla freccia) di tipo sensoriale 


Le zecche presentano un ciclo vitale incompleto, con forme adulte, ninfe e larve che occupano nicchie ecologiche 

simili. Da adulte e da ninfe le zecche sono dotate di otto zampe, da larve di sei. Gli stadi larvali possono essere 

confusi con gli insetti, tranne che per l’assenza della suddivisione corporea. Due sono le principali famiglie di zecche: 

zecche molli (famiglia Argasidae) e zecche dure (famiglia Ixodidae). 

Zecche molli- Argasidae 

Le zecche molli sono dotate di un tipico corpo dall’aspetto ovale, con dimensione di 4–15 mm. Dispongono di un 

tegumento cutaneo robusto, che può essere di aspetto granulare o con piccoli tubercoli. L’apparato buccale è sito 

nella parte ventrale del corpo e pertanto non è visibile dalla parte superiore. L’assenza dello scudo dorsale e la 

localizzazione ventrale dell’apparato buccale facilitano la differenziazione fra zecche molli e zecche dure. Vi è un 

dimorfismo sessuale minimo nelle zecche molli. 







Ciclo vitale: Il ciclo vitale delle zecche molli è un po’ più complesso di quello 

delle zecche dure a causa di un maggior numero di stadi ninfali ed una vita più 

lunga negli adulti. Le uova si aprono per generare larve a sei zampe, la larva si 

trasforma in ninfa ad otto zampe (sono possibili da 2 a 8 stadi larvali, a seconda 

della specie), per poi dare vita alle forme adulte con otto zampe. Le zecche 

molli ingeriscono un numero di pasti maggiore rispetto a quelle dure ed in un 

tempo inferiore (15–120 minuti), pertanto sono rinvenute raramente adese ai 

pazienti. Le larve assumono solo un pasto ematico, ma nei successivi stadi di 

ninfa e di adulto vengono ingeriti due o più pasti. Le zecche molli sono note 

come zecche di un solo ospite, in quanto sono solitamente associate ad un 

ospite di una sola specie durante tutto il corso della loro vita. Dopo ogni pasto 

ematico le femmine depositano una piccola quantità di uova e possono vivere 

per più di una decade. Le zecche molli trascorrono più del 99% del loro tempo 

lontane dall’ospite. Sono molto resistenti alla disidratazione ed al digiuno ed 

entrano in uno stato di torpore per sopravvivere a condizioni avverse. 

Visione dorsale di una 

zecca molle. 


Importanza clinica delle zecche molli: Le zecche molli di rilevanza medica sono Ornithodoros, Otobius ed 

Argas. 

Ornithodoros moubata 

Vettore della febbre 

ricorrente. 

© LSHTM 

Il genere Ornithodoros comprende un certo numero di importanti e fastidiose 

specie che mordono l’uomo e sette specie riconosciute in grado di trasmettere la 

febbre ricorrente originata dalle zecche. I componenti di questo genere possono 

essere riconosciuti per la cuticola scura mammellonata e l’assenza di una linea 

laterale fra le superfici dorsale e ventrale del corpo. Ornithodoros moubata è 

probabilmente il vettore più importante delle febbre ricorrente da morso di zecca 

nell’Africa tropicale, ma la malattia è presente anche nell’America del Sud e 

Centrale. 

Otobius megnini (zecca spinosa dell’orecchio) è in primo luogo un ectoparassita dei bovini e dei cavalli, ma può 

attaccare l’uomo in modo opportunistico. La cavità dell’orecchio è la sede di attacco preferita della larva e della ninfa, 

e le ninfe vi possono rimanere adese per alcuni mesi. Le ninfe variano di dimensione, da 4 a 8 mm, e possono essere 

riconosciute per la presenza di spine fitte e scure sulla superficie dorsale. La cuticola è priva di una chiara linea 

laterale fra le superfici dorsale e ventrale. L’otobius è riscontrabile solo nelle aree particolarmente calde ed aride 

delle Americhe, Africa ed India. Le forme adulte delle specie di zecche Otobius non si alimentano. 

I componenti del genere Argas sono presenti ovunque e sono associati soprattutto agli uccelli. Queste zecche 

attaccano l’uomo in modo opportunistico e producono morsicature particolarmente dolorose. Possono mordere l’uomo 

in tutti gli stadi vitali (larva, ninfa ed adulto), ma le larve Argas rimangono adese ai loro ospiti e continuano ad 

alimentarsi per un certo numero di giorni. Il corpo della zecca è lievemente levigato, con superfici corporea dorsale e 

ventrale separate da un’evidente striscia di cellule rettangolari appiattite. 

Inviare tutte le zecche molli ad una struttura di riferimento per l’identificazione. 

Zecche dure - Ixodidae 

Le zecche dure sono riconosciute per la presenza di uno scudo, di apparato buccale visibile dalla superficie dorsale e 

per un evidente dimorfismo sessuale negli adulti. Lo scudo è una piastra rigida posta sulla parte dorsale del corpo. In 

alcune specie può essere colorato. Nei maschi lo scudo ricopre completamente la parte dorsale, mentre nelle 

femmine e negli stadi immaturi si trova sulla parte anteriore del corpo (per consentire il completo riempimento durante 

il pasto). Le femmine sono distinguibili dalle ninfe per la presenza sia di un’apertura genitale sulla superficie ventrale 

che di aree porose sulla base del rostro. 







Amblyomma variegatum 

Fotografia di maschio e di femmina 

© LSHTM 

Ciclo vitale: Il ciclo vitale della zecca dura è relativamente semplice, con uova che si schiudono per rilasciare una 

larva a sei zampe; questa si trasforma in ninfa ad otto zampe, che poi diventa una zecca adulta, sempre ad otto 

zampe. Ogni stadio richiede un solo pasto prima di evolvere, ma possono essere necessari più anni per il 

completamento dell’intero ciclo vitale. Le zecche dure si alimentano lentamente e restano adese all’ospite per alcuni 

giorni. Sono spesso definite zecche multi–ospite, perché, durante il ciclo vitale, sono associate di norma a due o tre 

specie di ospiti (ad esempio, larva–topo, ninfa-coniglio, adulto–pecora). Le femmine producono un singolo 

agglomerato di uova e muoiono dopo breve tempo. Le zecche dure trascorrono il 90% dei loro tempi di quiescenza 

distanti dall’ospite, andando incontro ai vari processi di sviluppo. Sono molto sensibili all’essiccamento ed alle 

temperature estreme. 

Zecche dure di importanza medica: Nel Regno Unito i componenti del genere Ixodes sono ritenuti vettori della 

malattia di Lime. Due delle specie più comunemente segnalate sono Ixodes ricinus e Ixodes hexagonus. Il genere 

può essere riconosciuto dall’esame del solco anale presente sulla superficie ventrale della zecca8 . 

Rappresentazione del solco anale delle 

zecche appartenenti al genere Ixodes 


Solco anale 

Rappresentazione del solco anale di tutte le 

altre zecche dure 


Per le Ixodes il solco anale circonda anteriormente l’ano. Per tutti gli altri generi di zecche il solco anale circonda l’ano 

posteriormente. 

Il rischio di trasmissione di malattia si riduce se il paziente è stato morsicato da una zecca Britannica appartenente ad 

un altro genere. 

Inviare all’appropriata struttura di riferimento qualsiasi specie diversa dalla Ixodes acquisita all’estero. 

Malattia di Lime: La malattia di Lime è un’infezione batterica causata dalla spirocheta Borrelia burgdorferi. Si tratta di 

una zoonosi associata alle foreste e ad habitat di brughiera. Le riserve più importanti sono i roditori (topo della foresta 

e di campagna). Nelle zecche a digiuno le spirochete sono circoscritte all’intestino medio e solo dopo l’inizio del pasto 

migrano verso le ghiandole salivari. La rapida rimozione delle zecche (entro 24 – 48 ore dall’attacco) è pertanto 

importante per la riduzione del rischio di trasmissione della malattia. 

Paralisi da zecca: La paralisi da zecca è causata dall’inoculo nell’ospite di una neurotossina (presente nella saliva) 

durante il pasto della femmina. E’ noto che un certo numero di zecche dure causa questa condizione patologica, ma 

nessuna è originaria del Regno Unito. Cinque, sette giorni dopo l’attacco l’ospite può presentare affaticamento, 

torpore e dolore muscolare, sintomatologia che può evolvere rapidamente verso una paralisi parziale, convulsioni ed 







insufficienza respiratoria, a meno che la zecca sia stata localizzata ed attentamente rimossa. I sintomi permarranno 

fino a quando ogni parte dell’apparato buccale rimarrà nell’ospite. 

Rimozione delle zecche: La rimozione forzata delle zecche determina spesso un danneggiamento dell’apparato 

buccale ed il rischio che alcuni residui restino nella cute del paziente. L’apparato buccale ha inoltre delle 

caratteristiche importanti per l’identificazione delle zecche e pertanto è essenziale che venga rimosso con tecnica 

corretta. Usare con cautela (ma sicurezza) pinze sottili e prelevare l’apparato buccale della zecca il più vicino 

possibile alla cute del paziente. Ruotarlo in senso orario mentre si allontana la zecca dalla cute. Un’azione decisa ma 

appropriata consente la rimozione della zecca senza danneggiarne l’intera parte. Trasferire la zecca in una provetta 

sterile ed inviare per l’identificazione. Sterilizzare le pinze, pulire e disinfettare il sito della ferita. Controllarlo nei giorni 

successivi per verificare la comparsa di qualsiasi manifestazione eritematosa. 

Preparazione del materiale: Le zecche devono essere uccise in acqua calda (85°C) e conservate in etanolo 70%. 

Una volta rimosse dall’etanolo, le forme adulte devono essere esaminate con microscopio da dissezione ed osservate 

in condizione asciutta. La morfologia corporea è più chiara dopo l’evaporazione dell’etanolo. Le ninfe e le larve 

devono essere preparate su vetrino in terreno di Hoyer* ed esaminate con microscopio composto. Fare riferimento 

alle classificazioni in famiglie delle zecche di Lane e Crosskey ed all’intero testo di Hillyard8 per la classificazione delle 

zecche dell’Europa nord-occidentale. 

Il terreno di Hoyer è costituito da 50 ml di acqua distillata, 30 g di gomma Arabica cristallizzata, 200 g di idrato di 

cloralio e 20 ml di glicerina7 . 

Ixodes ricinus (zecca comune della pecora, zecca a seme di ricino o zecca dei boschi) 

Questa zecca è presente nell’Europa nord-occidentale e nella maggior parte della Regione Paleartica Occidentale, in 

modo particolare nei pascoli delle pecore delle Isole Britanniche. 

Descrizione: E’ fornita una descrizione succinta di tutti gli stadi, ma quello della ninfa e della femmina adulta sono i 

più consultati. Si prega di fare riferimento a P. Hillyard (pg. 74–76) per le illustrazioni delle strutture di seguito 

specificate8 . 

Larva: La lunghezza della larva a digiuno è di circa 1 mm. Lo stadio larvale è dotato di sole 3 paia di zampe e lo 

scudo ricopre solo parzialmente la superficie dorsale del corpo. I palpi (segmenti 2 e 3) sono più lunghi della 

larghezza della base del rostro. I denticoli dell’ipostoma sono disposti in due o tre serie, 3/3 nella parte distale, poi sei 

o sette di 2/2. Sulla superficie ventrale della base sono presenti le auricole come proiezioni distinte. Lo scudo è più 

largo che lungo e di aspetto esagonale. Le coxe dalla 1 alla 3 sono dotate di distinti speroni esterni e la coxa 1 di un 

piccolo sperone interno. 

Ninfa8 : La lunghezza della ninfa a digiuno è di 1.3 –1.5 mm. Le ninfe sono dotate di 4 paia di zampe, uno scudo che 

ricopre solo parzialmente la superficie dorsale, e mancano del poro genitale sulla superficie ventrale. I palpi (segmenti 

2 e 3) sono più lunghi della larghezza della base del rostro. Lo scudo è di aspetto quasi circolare, le auricole (strutture 

poste sulla superficie ventrale della base) assomigliano a triangoli divergenti e la coxa 1 (primo segmento della prima 

zampa) è dotata di uno sperone interno (appendice appuntita della coxa) più sviluppato rispetto a quello esterno. 

Rappresentazione della faccia dorsale 

della ninfa di Ixodes ricinus 


Rappresentazione della faccia ventrale 

della ninfa di Ixodes ricinus 








Maschio adulto 8 : La lunghezza del maschio è di 2.4 – 2.8 mm. Lo scudo ricopre la superficie dorsale del corpo. I 

palpi sono corti e larghi. L’ipostoma è dotato di denti prominenti. Lo sperone interno della coxa 1 è tre volte più lungo 

di quello esterno. Il tarso 1 (di profilo) si assottiglia gradualmente. 

Femmina adulta 8 : La lunghezza della femmina a digiuno è di 3.0–3.6 mm. Lo scudo ricopre parzialmente la 

superficie dorsale del corpo; sulla superficie ventrale è presente un’apertura genitale; due aree porose sono 

riscontrabili sulla base dorsale del rostro. I palpi (segmenti 2 e 3) sono più lunghi rispetto alla larghezza della base del 

rostro. Lo scudo è lievemente più lungo che largo e chiaramente rotondeggiante nella parte posteriore. Le auricole 

sono assenti. La coxa 1 è dotata di uno lungo sperone interno. Il tarso 1 (di profilo) si assottiglia gradualmente. 

L’apertura genitale è sita fra le coxe 4. 

Ixodes hexagonus (zecca del riccio) 

Presente in modo diffuso nell’Europa Occidentale, questa zecca è un parassita di ricci, volpi, tassi e cani. 

Frequentemente I. hexagonus morde l’uomo. 

Descrizione: E’ fornita una descrizione succinta di tutti gli stadi, ma, per l’identificazione, quelli di ninfa e di femmina 

adulta sono i più comunemente utilizzati. Si prega di fare riferimento a P. Hillyard (pg. 88 – 90) per le rappresentazioni 

delle strutture di seguito riportate 8 . La descrizione delle larve della zecca è riprodotta da Arthur 9 . In modo particolare 

per le larve di I. ricinus (pg 33) e di I. hexagonus (pg 65). 

Larva: La lunghezza della larva a digiuno è di circa 1 mm. La larva è dotata di sole 3 paia di zampe e lo scudo ricopre 

solo parzialmente la superficie dorsale del corpo. I palpi (segmenti 2 e 3) sono all’incirca lunghi come la larghezza 

della base del rostro. I denticoli sono sistemati distalmente su due o tre file di 3/3, poi in circa quattro file di 2/2. Le 

auricole sono presenti come creste ispessite. Lo scudo è di solito più lungo che largo e a forma di cuore. La coxa 1 è 

dotata di un largo sperone interno, ma mancano altri speroni. 

Ninfa 8 : La lunghezza della ninfa a digiuno è di 1.2–1.4 mm. Le ninfe sono dotate di 4 paia di zampe e di uno scudo 

che ricopre solo parzialmente la superficie dorsale; manca l’apertura genitale sulla superficie ventrale. I palpi 

(segmenti 2 e 3) sono lievemente più corti della larghezza del rostro alla base. Lo scudo è più lungo che largo e di 

aspetto esagonale. Le auricole sono assenti. Lo sperone interno dalla coxa 1 è corto, quelli esterni delle coxe 1 – 4 

sono ridotti od assenti. 

Rappresentazione della superficie dorsale 

di ninfa di Ixodes hexagonus 


Rappresentazione della superficie ventrale 

di ninfa di Ixodes hexagonus 


Maschio adulto 8 : La lunghezza del maschio è di 3.5-3.8 mm. Lo scudo ricopre la superficie dorsale del corpo, che è 

grossolanamente ovale. I palpi sono corti e larghi. L’ipostoma è quasi privo di denti. Lo sperone interno sulla coxa 1 è 

lungo. Il tarso 1 (visto di profilo) è chiaramente scalinato in prossimità dell’apice. 

Femmina adulta 8 : La lunghezza della femmina a digiuno è di 3.5 – 4.0 mm. Lo scudo ricopre parzialmente la 

superficie dorsale; è presente l’apertura genitale sulla superficie ventrale e si riscontrano due aree porose sulla base 

dorsale del rostro; i palpi (segmenti 2 e 3) sono lievemente più corti della larghezza della base (del rostro). Lo scudo 







ha una caratteristica forma a cuore o esagonale. Sono evidenti tracce di auricole. La coxa 1 è dotata di un lungo 

sperone interno. Il tarso 1 (di profilo) è chiaramente scalinato in prossimità dell’apice. L’apertura genitale è localizzata 

fra le coxe 3. 

MIASI DA LARVE DI MOSCA 

La miasi è causata da larve di mosca (larve di Ditteri) che invadono gli animali vertebrati per nutrirsi di tessuti viventi o 

necrotici, di liquidi corporei o di alimenti ingeriti dall’ospite 10 . Nei loro stadi larvali le mosche che provocano la miasi 

sono parassiti obbligati o facoltativi; nel primo caso si possono sviluppare su o in un’ospite vivente, nel secondo 

anche su materiale organico in putrefazione. In funzione della loro capacità di attaccare l’ospite i parassiti facoltativi 

possono essere invasori primitivi, secondari o terziari degli animali vertebrati. Gli invasori primari danno inizio alla 

miasi, quelli secondari o terziari attaccano l’ospite solo dopo che la miasi è stata iniziata da altre specie. Si deve 

comunque notare che gli invasori primari (la mosca verde Lucilia sericata) richiedono sempre condizioni 

predisponenti, quali una ferita o una scarsa igiene, che stimolino la deposizione delle uova. Non inizieranno mai la 

miasi su animali puliti e sani. Una condizione, nota come pseudomiasi, si può manifestare quando le larve o le uova di 

alcune specie sono ingerite accidentalmente o transitano vive attraverso l’intestino dell’ospite. 

Descrizione: Le larve della miasi non hanno un aspetto uniforme perché originano da diverse famiglie di ditteri. 

Quelle di importanza clinica hanno comunque due forme principali: la classica cuneiforme e quella più arrotondata 

vermiforme. Il corpo è suddiviso in 12 segmenti, il primo dei quali costituisce la testa, i successivi tre formano il torace 

e gli ultimi otto l’addome. Comunque vi è una scarsa differenziazione fra i segmenti. Il primo contiene lo scheletro 

cefalofaringeo (parti buccali), che presenta caratteri tassonomici importanti per l’identificazione. Il secondo segmento 

è dotato anteriormente di un paio di spiracoli che lo congiungono, per mezzo di due segmenti tracheali, agli spiracoli 

posteriori siti sul 12° segmento corporeo (terminale). Gli spiracoli e le trachee rappresentano l’apparato respiratorio 

della larva della mosca e forniscono inoltre caratteristiche utili per l’identificazione. Le larve della miasi non sono 

dotate di zampe, ma alcune specie presentano rigonfiamenti corporei, formazioni appuntite e strutture che facilitano la 

locomozione e prevengono l’allontanamento dall’ospite. 

Miasi di importanza clinica da larve di mosca: Nel Regno Unito i generi inviati per l’identificazione sono soprattutto 

Lucilia (mosca verde), Calliphora (mosca blu), Oestrus (estro degli ovini) e Sarcophaga (moscone della carne) 11 . 

Cordylobia (mosca di Tumbu e mosca di Lund) e Dermatobia (human bot-fly) sono entrambi generi tropicali, 

riscontrabili occasionalmente in viaggiatori che rientrano dall’estero nel Regno Unito. Alcuni generi sono noti come 

importanti agenti di miasi e molti altri hanno scarso rilievo clinico. Questa POS prenderà in considerazione solo i 

generi inviati di solito per l‘identificazione. Tutte le descrizioni incluse sono riferibili a larve del terzo stadio, tranne 

quella relativa a Oestrus ovis, in cui è descritta la larva del primo stadio. Consultare Lane e Crosskey 2 per le chiavi 

dicotomiche d’identificazione delle famiglie e dei generi delle larve della miasi. 

Preparazione del materiale: Le larve della miasi devono essere uccise con immersione in acqua calda o bollente 

(90° -100°C) per 15–30 secondi e poi conservate in etanolo 70% prima della preparazione. Prendere la larva e 

tagliare l’ultimo segmento, che è dotato di spiracoli posteriori. Porre il segmento ed il corpo in una provetta contenente 

potassa caustica al 5% (KOH), trasferire in bagno di acqua e riscaldare lentamente fino all’ebollizione. Rimuovere dal 

bagno e lasciare raffreddare il contenuto per 10 minuti. Lavare bene in acqua il corpo ed il segmento posteriore (due 

lavaggi di circa 5 minuti ciascuno). Trasferire il corpo della larva su un vetrino ed iniziare a spremere il contenuto del 

corpo fuori dalla cuticola. Per estrarre tutti i tessuti del corpo può essere necessario ripetere la procedura di bollitura 

in KOH per due o tre volte. Disidratare la cuticola corporea ed il segmento posteriore, aumentando la concentrazione 

dell’etanolo (70%, 90% ed assoluto) ogni volta per cinque minuti. Immergere nuovamente in alcool assoluto per 

cinque minuti prima di trasferire in cellosolve (2-etossietanolo) per ulteriori cinque minuti. Montare il campione al 

centro di un vetrino da microscopio direttamente in euparal. La cuticola corporea deve essere posizionata 

lateralmente nella metà superiore del vetrino ed il segmento posteriore al di sotto (cuticola esterna rivolta verso l’alto). 

Posizionare il coprioggetto ed esaminare il campione attentamente. Per ottenere un preparato permanente, porre il 

campione su vetrino in una stufa a 55°C per 4–6 settimane. Etichettare il vetrino con: identificazione, numero di 

riferimento e dati di raccolta. 







Lucilia - Mosca verde 

Le mosche verdi hanno una distribuzione cosmopolita. Le femmine depositano le uova in ferite non curate o su tessuti 

sporchi. Le larve si nutrono direttamente di tessuti o su escare necrotiche. Le femmine depositano le uova anche su 

carni o pesci crudi e cotti e, se queste sono ingerite, si può manifestare una miasi intestinale 5 . 

Descrizione: Le larve del genere Lucilia hanno l’aspetto classico della “larva”, con un segmento anteriore sottile 

dotato di uncini buccali che si allargano fino al segmento posteriore, che appare tronco. 

Specie Lucilia 

Rappresentazione di larva al terzo stadio. 


La larva adulta è lunga circa 14 mm ed è da bianco a crema. Gli spiracoli posteriori sono posti sulla superficie del 

segmento terminale, e ciascuno è costituito da tre sottili fessure circondate da un anello perimetrale dotato di un unico 

occhiello. 

Specie Lucilia 

Visione posteriore del 

segmento terminale 

della larva al terzo stadio. 


Lucilia species 

Fotografia degli spiracoli 

posteriori © LSHTM 

Non sono presenti scleriti orali accessori (un piccolo sclerite addizionale è presente fra i rostri buccali). 

Lucilia spp. 

Fotografia dei segmenti anteriori che evidenziano 

lo scheletro cefalofaringeo e gli spiracoli anteriori. 

© LSHTM 

Lucilia spp. 

Rappresentazione dello scheletro cefalofaringeo 

Notare la mancanza di scleriti orali accessori 

fra i rostri buccali. 








Calliphora – Mosche blu 

Le mosche blu hanno una distribuzione cosmopolita. Le femmine depositano di solito le uova su materiale organico in 

putrefazione e generalmente attaccano l’uomo come invasori secondari. Possono deporre uova anche sulla carne 

fresca e, se questa viene in seguito ingerita, si può sviluppare una miasi. 

Descrizione: Le larve del genere Calliphora sono 

lievemente più larghe di quelle del genere Lucilia, ma 

hanno la stessa conformazione corporea e colore identici. 

La larva matura è lunga circa 17 mm. Gli spiracoli 

posteriori sono localizzati sulla superficie del segmento 

terminale e ciascuno è formato da tre sottili fessure, 

circondate da un anello perimetrale con un distinto 

occhiello. Le specie di Calliphora sono distinguibili da 

quelle di Lucilia per la presenza di uno sclerite orale 

accessorio fra i rostri buccali. 

Calliphora 

Specie Calliphora 

Fotografia dello scheletro cefalofaringeo 

Nota: presenza di sclerite orale 


© LSHTM 

Spiracoli posteriori della specie 


Specie Calliphora 

Rappresentazione dello scheletro cefalofaringeo 

Nota: presenza di sclerite orale 









Cordylobia anthropophaga – Mosca Tumbu 

La mosca Tumbu è presente nell’Africa sub-Sahariana. Le femmine depositano le uova nel suolo sabbioso 

umido o su indumenti stesi all’ombra ad asciugare (siti contaminati da sudore, feci od orina sono particolarmente 

favorevoli). Le larve emergono dopo 2 giorni e formano gallerie nei tessuti sottocutanei quando sono stimolate 

dall’ospite. Rimangono nel derma, formando ciascuna un rigonfiamento simile ad un foruncolo. Sono necessari 3 

stadi larvali, che si completano in 8–12 giorni. La larva matura emerge dal “foruncolo e cade a terra per 

trasformarsi in pupa. 

Descrizione: Le larve del genere Cordylobia hanno un 

aspetto simile ad un bruco, essendo carnose ed 

arrotondante ad entrambe le estremità. Una larva matura di 

C. anthropophaga è lunga all’incirca 12 mm e larga 5 mm. 

Dal terzo all’undicesimo segmento il corpo è densamente 

ricoperto di spine sottili. Gli spiracoli posteriori sono siti sulla 

superficie del segmento terminale. Ogni spiracolo è dotato 

di tre fessure leggermente sinuose, circondate da un anello 

perimetrale che non è dotato d’occhiello. Cordylobia anthropophaga 

Rappresentazione della larva al terzo stadio. 


Cordylobia anthropophaga - Rappresentazione degli 

spiracoli posteriori della larva al terzo stadio. 

Cordylobia rodhaini – Mosca di Lund 

C. anthropophaga 

Fotografia degli spiracoli posteriori. 

© LSHTM 

La mosca di Lund è presente nelle foreste pluviali dell’Africa tropicale; il suo aspetto ed il suo ciclo biologico sono 

simili a quelli della mosca Tumbu. 

Descrizione: La larva di C. rodhaini assume l’aspetto di un verme e, nella forma matura, è lunga 17-33 mm e larga 8 

mm. Il corpo è ricoperto da numerose e grosse spine. Gli spiracoli posteriori sono posti sulla superficie del segmento 

terminale. 

Cordylobia rodhaini – Rappresentazione degli spiracoli 

della larva al terzo stadio. 

C. rodhaini. 

Fotografia degli stigmi posteriori della larva 

al terzo stadio. © LSHTM 

Ogni spiracolo è formato da tre fessure a serpentina, non circondate da un anello perimetrale ma hanno un occhiello 

non ben definito. 







Dermatobia hominis – La bot-fly umana 

La bot-fly umana è presente nell’America Centrale e Meridionale. Le femmine delle mosche depositano gruppi di uova 

su zanzare e altre mosche ematofaghe, ma anche su zecche. Questi “vettori” ricercano un ospite e mentre si nutrono, 

le uova della bot-fly si schiudono (stimolate dalla temperatura e dagli odori dell’ospite). Le larve scavano gallerie nella 

cute, formando singoli rigonfiamenti simili a foruncoli. Sono noti tre stadi larvali che, per il loro completamento, 

richiedono 6 -12 settimane. Le larve mature emergono poi dal ”foruncolo” e cadono sul terreno per diventare pupe. I 

“foruncoli” sono dolorosi per periodi brevi durante la nutrizione della larva, lo sono meno durante le fasi di sviluppo. I 

liquidi che drenano dalla ferita (feci delle larve e liquidi corporei dell’ospite) possono costituire uno stimolo a deporre 

in loco le uova per altre mosche della miasi. 

Descrizione: Le larve hanno un caratteristico “aspetto a pera” con un rigonfiamento anteriore ed una parte posteriore 

assottigliata. L’aspetto corporeo rende particolarmente difficile la loro rimozione quando sono annidate nell’ospite. 

Una larva matura misura circa 20 mm di lunghezza ed 8 mm nella parte più larga. I segmenti anteriori e centrali sono 

dotati di numerose formazioni spinose, quelli posteriori non hanno spine ma su quello terminale sono presenti piccoli 

denti. Gli spiracoli posteriori sono racchiusi in una cavità del segmento terminale e sono formati da tre fessure strette 

prive di anello perimetrale e di occhiello. 

Dermatobia hominis 

Rappresentazione della larva al 

secondo stadio. 


Oestrus ovis –estro nasale della pecora 


Rappresentazione della larva al 

terzo stadio. 



Visione posteriore del 

segmento terminale per 

evidenziare gli spiracoli. 


La larva dell’estro nasale della pecora è diffusa in tutto il mondo ed è presente soprattutto dove sono allevate pecore 

e capre. La femmina di mosca deposita la prima forma larvale viva preferibilmente nella sede nasale dell’ospite, 

seguita da occhi, bocca ed orecchio. Le persone, specie chi lavora con il bestiame, possono essere occasionalmente 

coinvolte. I casi più frequenti sono legati a pazienti che riferiscono di essere stati colpiti all’occhio da un corpo di 

piccole dimensioni, con insorgenza di una condizione infiammatoria dolorosa nelle ore successive. Può essere 

formulata diagnosi di congiuntivite catarrale acuta. L’Oestrus non è di solito invasivo nell’uomo. Il primo stadio larvale 

non è in grado di svilupparsi successivamente, ma può rimanere vitale per dieci giorni, provocando disagio al 

paziente durante questo periodo. La larva deve essere rimossa dal sacco congiuntivale da un oculista. 







Descrizione: Le larve del primo stadio sono molto piccole (lunghezza 1.0 mm), di forma allungata, ovale e 

trasparente; i voluminosi rostri buccali, particolarmente visibili, hanno importanza diagnostica. 

Oestrus ovis 

Fotografia di larva al primo stadio. 

© LSHTM 

Oestrus ovis 

Rappresentazione dei segmenti anteriori 

della larva al primo stadio. 


I poderosi rostri buccali sono ricurvi ad uncino e possono essere retratti nella struttura corporea. Su ogni segmento 

corporeo sono presenti spine di piccole dimensioni; l’ultimo è dotato di due prominenze, entrambe fornite di un certo 

numero di piccoli uncini. 

Sarcophaga – mosconi della carne 

Le mosche della carne hanno una distribuzione cosmopolita. Le femmine depositano le larve al primo stadio 

direttamente su materiale organico o sulle feci, e di solito attaccano l’uomo solo come invasori secondari. L’eccezione 

è rappresentata dalla Wohlfahrtia magnifica, che è un invasore primario obbligato. Le specie di Sarcophaga sono 

conosciute come infestatrici delle piaghe da decubito nei pazienti anziani. Le femmine depongono le uova anche sui 

generi alimentari e, se questi vengono ingeriti, si potrà manifestare una miasi intestinale. 

Descrizione: Le larve del genere Sarcophaga hanno un aspetto classico, con un segmento anteriore sottile, dotato di 

uncini buccali, che si congiunge ad un segmento posteriore tronco. La larva matura è lunga circa 16 -22 mm. 

Specie Sarcophaga 

Rappresentazione di larva al terzo stadio. 

(Illustrazione da C. Whitehorn) Sarcophaga species 

Visione posteriore del segmento terminale. 








Gli spiracoli posteriori sono posti in una cavità profonda del segmento terminale e possono risultare non visibili 

quando questa è chiusa. Gli spiracoli sono costituiti da tre fessure diritte circondate da un anello perimetrale aperto 

privo di occhiello. 


Rappresentazione degli spiracoli posteriori 

della larva di terzo stadio. 

(Illustrazione da C. Whitehorn 

SANGUISUGHE 


Fotografia degli spiracoli posteriori 

© LSHTM 

Descrizione: Le sanguisughe 12-14 (Euhirudinea) sono anellidi ermafroditi, che si alimentano succhiando sangue e 

liquidi tissutali dai loro ospiti. Si conoscono forme acquatiche e terrestri. 

Le sanguisughe acquatiche sono cosmopolite. Le specie terrestri 15 si trovano nel Sud Est Asiatico, nelle isole del 

Pacifico, nel Subcontinente indiano, nel Sud America. Abitano nelle foreste pluviali tropicali e sono particolarmente 

moleste quando si attaccano alla cute dell’uomo e degli animali. I singoli morsi di queste sanguisughe hanno di solito 

scarsa rilevanza clinica e non sono associati ad infezioni o a trasmissione di malattie, anche se numerosi agenti 

patogeni, inclusi virus di origine ematica (virus I e II dell’immunodeficienza, virus dell’epatite B), sono costantemente 

presenti nel corpo delle sanguisughe 16 . 

Sono descritte infezioni iatrogene con specie Aeromonas, specialmente nell’utilizzo clinico delle sanguisughe (in 

genere di Hirudo medicinalis, ma non solo 17 ) Queste sanguisughe vivono in simbiosi con batteri del genere 

Aeromonas, che, in coltura pura, colonizzano spesso il loro intestino 18, 19 , dove possono essere presenti anche altri 

potenziali batteri patogeni 17, 20 . 

H. medicinalis può essere applicata per ridurre la congestione da intervento di chirurgia plastica o vascolare, oppure 

dopo interventi ricostruttivi vascolari. I tessuti congesti possono essere particolarmente sensibili all’infezione da 

specie Aeromonas. 

Quando una sanguisuga attaccata alla cute termina il proprio pasto, di solito si stacca in modo spontaneo. La perdita 

di sangue, se non arrestata con fasciatura appropriata (durante la nutrizione la sanguisuga inietta un anticoaugulante, 

l’irudina), può continuare per parecchi minuti o ore. 

Una sanguisuga attaccata deve alimentarsi per un certo periodo, fino a quando dalla ferita esce sangue. Il che 

consente l’allontanamento di ogni microrganismo introdotto nella lesione. 

Le sanguisughe usate a scopi clinici devono essere applicate ad un solo paziente. 

Il primo sospetto di una morso da sanguisuga selvatica è spesso rappresentato dal riscontro di sangue nel vestiario, 

conseguenza di un rigurgito da pasto recente e del distacco dall’ospite. Piuttosto che staccare direttamente dal 

paziente la sanguisuga terrestre, alcuni 15 preferiscono farlo applicando al suo corpo il calore ustionante di una 

sigaretta o di un fiammifero, oppure utilizzando una soluzione salina ad elevata concentrazione, o alcool, evitando in 

tal modo che parti dell’apparato buccale rimangano incastrate nella ferita. La soluzione ottimale è però controversa. 

Alcune sanguisughe dell’America del Sud non hanno mandibole e si nutrono inserendo una proboscide nella parte 

profonda dei tessuti dell’ospite. La loro rimozione forzata può far rimanere una lunga porzione tubulare di tessuto di 

sanguisuga nell’ospite. 







Alcune delle specie acquatiche (nasofaringee) sono in grado di causare gravi malattie nell’uomo e negli animali, 

talvolta ad esito letale. Si possono trovare nelle acque dolci di alcune zone del Medio Oriente e dell’Africa, nel sub 

continente Indiano ed in Cina. 

Queste sanguisughe sono piccole e di aspetto filamentoso quando si attaccano all’ospite, penetrano nei corpi degli 

animali che si abbeverano e dell’uomo che si di disseta, oppure in persone che si bagnano in acque superficiali, 

inserendosi nelle mucose del nasofaringe e della cavità buccale, occasionalmente in quella esofagea o nell’albero 

tracheobronchiale. Prima di emergere completamente sviluppate, le sanguisughe possono rimanere attaccate per 

alcune settimane. La crescita all’interno dell’ospite è talvolta drammatica, ed una specie, la Dinobdella ferox, può 

raggiungere la lunghezza di 250 mm. 

Le sanguisughe acquatiche (nasofaringee) possono penetrare anche nell’uretra o nella vagina di nuotatori e 

bagnanti, oppure attaccarsi alla congiuntiva. 

Di conseguenza possono provocare ostruzioni, epistassi, emottisi, ematemesi ed anemie di grave entità. Possono 

essere rimosse chirurgicamente in visione diretta 15, 21 - l’applicazione di cocaina e di soluzioni saline ipertoniche può 

facilitare il loro distacco. Per raggiungere la loro sede o per migliorare ostruzioni respiratorie che pongono a rischio la 

sopravvivenza dell’ospite, può essere necessario ricorrere ad una tracheostomia. 

Protezione: Una protezione completa contro le sanguisughe è per lo più impossibile. Nei climi tropicali i repellenti 

chimici sono efficaci solo per un periodo limitato a causa della sudorazione. Le sanguisughe terrestri sono molto esili, 

agili, e sono in grado di insinuarsi attraverso gli occhielli di uno stivale e dovunque, tranne che negli indumenti di 

tessuti molto fitti. I viaggiatori dovrebbero comunque indossare pantaloni impermeabili trattati con sostanze repellenti, 

quali il dietil toluamide, infilati in robusti stivali. 

Nei luoghi in cui sono presenti le sanguisughe nasofaringee, l’acqua da bere deve essere filtrata con una rete a 

maglie strette o ancor meglio bollita. 

Per svariati motivi all’estero è’ sempre sconsigliato nuotare o fare il bagno in acque superficiali non trattate. 

La profilassi antibiotica può essere indicata se si applicano sanguisughe a tessuti congesti nell’ambito di un 

trattamento post operatorio 17 . In questa evenienza possono essere indicati la ciprofloxacina 22 ed agenti beta – 

lattamici ad ampio spettro 20 , in funzione della sensibilità agli antibiotici delle specie Aeromonas delle quali la 

sanguisuga è portatrice. 

Le sanguisughe ad uso medico devono essere applicate ad un solo paziente. 

Conservazione dei campioni: Le sanguisughe devono essere narcotizzate in alcool 15% per renderle disponibili alla 

classificazione anatomica. Una volta narcotizzate, devono essere allungate e appiattite per la loro fissazione in alcol 

70% o formalina 5%. I campioni inseriti vivi in formalina o in alcol concentrato si contraggono in modo violento, si 

irrigidiscono e non si può procedere alla loro classificazione. 







1.0 CONSIDERAZIONI SULLA SICUREZZA 23-32 

Il personale deve calzare guanti, protezioni da laboratorio e lavorare in un ambiente pulito e ben illuminato. 

Per il lavoro di routine è richiesto il Livello di Contenimento 2. Se si sospettano organismi del Gruppo di 

Rischio 3, è necessario disporre di una cabina microbiologica di sicurezza e di un ambiente di 

Contenimento di Livello 3. 

Ogni campione contaminato da liquidi corporei o da sangue di pazienti deve essere immerso in formalina 

10%, con un rapporto 1:3 (campione: formalina), per almeno 30 minuti prima dell’inizio della procedura. 

I campioni devono essere manipolati con pinze o spazzole sottili. Durante la lavorazione del materiale è 

preferibile l’uso di forbici sterili al bisturi. 

I campioni vivi devono essere uccisi prima dell’identificazione, tranne che sia richiesto l’isolamento di agenti 

patogeni. Se c’è rischio di fuga durante la lavorazione, si devono manipolare con grande attenzione e 

conservare in frigorifero. L’uccisione avviene con acqua calda (90°C) (zecche, pidocchi, cimici, larve di 

mosche della miasi), con acetato di etile (coleotteri e mosche adulte) o con etanolo 70% (acari). Per 

preparare i campioni da uccidere con vapori di acetato di etile si deve usare una cappa chimica. Fare 

riferimento alle sezioni appropriate per ulteriori approfondimenti. 

Alcuni campioni possono richiedere tempo per lo schiarimento in soluzione di idrato di potassio prima 

dell’identificazione; in questo caso deve essere indossata una protezione idonea. 

L’alcol ed i solventi organici come l’Euparal non devono essere usati in prossimità di una fiamma viva e 

devono essere manipolati in area ben ventilata. Non si devono utilizzare solventi nelle cabine 

microbiologiche di sicurezza, perché comportano rischio di incendio e possono danneggiare i filtri HEPA. 

I contenitori dei campioni in alcol devono essere chiusi in modo ermetico e conservati a loro volta in 

contenitori metallici dotati di chiusura. 

Le manipolazioni che possono generare aerosol infettivi devono essere eseguite in cabina microbiologica di 

sicurezza. 

Le linee guida precedentemente esplicitate devono essere supplementate con la COSHH locale e con la 

valutazione del rischio 

2.0 PRELIEVO DEL CAMPIONE 

I campioni devono essere manipolati con attenzione per evitare danneggiamenti alle strutture tassonomiche 

necessarie per l’identificazione. Quando possibile, i campioni devono essere prelevati direttamente dal 

paziente o dal suo ambiente e poi inseriti in un contenitore asciutto, sterile ed impermeabile. 

3.0 TRASPORTO E CONSERVAZIONE DEL CAMPIONE 

E’ meglio uccidere i campioni prima del loro invio per posta. Tutti i corpi molli (zecche, pidocchi, pulci, 

cimici, larve di mosca della miasi) devono essere immersi in acqua calda, trasferiti e trasportati in etanolo 

70%. Quelli duri (inclusi i coleotteri e le mosche adulte) devono essere esposti a vapori di acetato di etile e 

trasportati asciutti. Gli acari possono essere uccisi e trasportati in etanolo 70%. Per successive informazioni 

fare riferimento alle sezioni appropriate. 

Allegare una breve anamnesi del paziente e dettagli inerenti a qualsiasi viaggio all’estero. 







Prima di aprire la confezione che contiene il campione, controllare al suo interno se l’insetto/aracnide è 

ancora vivo. Prima dell’esame i campioni ancora vivi devono essere uccisi in acqua calda o con vapori di 

acetato di etile,e, se è possibile una loro fuga dopo l’apertura del contenitore, li si deve assiderare in 

frigorifero. 

Per garantirne la classificazione tassonomica, le sanguisughe vive devono essere narcotizzate con etanolo 

al 15% e poi appiattite per la fissazione in alcol 70% o formalina 5%. I campioni vivi, messi a contatto con 

formalina o alcol concentrato, si contraggono in modo violento, si irrigidiscono e non sono classificabili. 

Conservare i campioni originali, il materiale preparato in laboratorio e le copie dei referti seguendo le linee 

guida del laboratorio stesso. 

4.0 PROCEDURA SUL CAMPIONE 

I campioni devono essere manipolati con attenzione, usando pinze o pennellini per evitare danni alle 

strutture anatomiche utili all’identificazione tassonomica. 

I campioni conservati in formalina o lavati in acqua formolata possono essere più rigidi e più difficili da 

manipolare. Si raccomanda di trasferirli in etanolo 70% il più presto possibile. 

Alcuni campioni di pulci possono richiedere un periodo di chiarificazione prima dell’esame. Di solito basta 

immergerli in KOH 5% per alcuni giorni. 

Fare riferimento alla sezione appropriata per ulteriori approfondimenti. 

4.1 IDENTIFICAZIONE 

Classificare il campione nella famiglia tassonomica, e, se possibile, anche nel genere e specie. 

Definire il ciclo vitale. 

Annotare gli aspetti identificativi. 

Segnalare qualsiasi associazione a malattie. 

4.2 INVIARE AL LABORATORIO DI RIFERIMENTO 

Gli ectoparassiti considerati in questa POS rappresentano campioni rari per i laboratori del Regno Unito e 

devono essere inviati ad un laboratorio di riferimento per la conferma. 

5.0 PROCEDURA DI REFERTAZIONE 

5.1 TEMPO DI REFERTAZIONE 

I risultati delle colture clinicamente urgenti devono essere comunicati per telefono o inviati per via 

elettronica. 

Referto scritto: entro 72 ore indicando che, se necessario, verrà inviato un altro referto 

Segnalare al laboratorio di riferimento anche i risultati di ogni ricerca supplementare o di prove addizionali 







6.0 LIMITI 

I parassiti descritti in questa POS rappresentano campioni rari per i laboratori del Regno Unito e devono 

pertanto essere esaminati da personale esperto. L’identificazione è soggettiva, quindi deve essere 

controllata da una seconda persona e confermata da un laboratorio di riferimento. 

7.0 SEGNALAZIONE ALLA HPA (SERVIZI LOCALI E 

NAZIONALI ED AL CENTRO CDSC PER LE INFEZIONI) 33 

Anche se gli insetti e gli aracnidi non hanno rilevanza clinica e non richiedono di per sé denuncia, le 

malattie da loro trasmesse possono esigerla. 

Fare riferimento a: 

Singola POS per l’identificazione dell’agente (Consultare BSOP 31 – Ricerche su campioni diversi dai 

parassiti ematici). 

Pubblicazioni della Health Protection Agency: 

“ Reporting to the CDR: A guide for laboratories” 

“ Hospital infection control: Guidance on the control of infection in hospital” 

Fare riferimento alle Linee guida attuali del CDSC e indicazioni del COSURV 

Linee guida locali 

8.0 RINGRAZIAMENTI E CONTATTI 

Questo Metodo Nazionale Standard è stato sviluppato, revisionato e controllato dallo Standard Method 

Working Group for Bacteriology (http://www.hpa-standardmethods.org.uk/wg_bacteriology.asp). Si 

ringraziano per l’importante collaborazione Cheryl Whitehorn e la London School of Hygiene and Tropical 

Medicine. Si ringraziano inoltre i numerosi operatori dei laboratori di microbiologia, le organizzazioni 

specialistiche che hanno fornito informazioni e commenti durante lo sviluppo di questo documento e il 

Redattore Medico per la revisione finale. 

I National Standard Method sono emessi dalla Standards Unit, Evaluations and Standards Laboratory, 

Centre for Infections, Health Protection Agency London. 

Per altre informazioni prendere contatti con: 

Standards Unit 

Evaluations and Standards Laboratory 

Centre for Infections 

Health Protection Agency 

Colindale 

London 

NW9 5EQ 

E-mail: standards@h 







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Revisione no: 1 Data di revisione: 26.06.06 Emesso da: Standards Unit, Evaluations and Standards Laboratory Pagina no 42 di 43 


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exchanged between purchaser, vendor and installer and recommendations for installation. 

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Revisione no: 1 Data di revisione: 26.06.06 Emesso da: Standards Unit, Evaluations and Standards Laboratory Pagina no: 43 di 43 


Questa POS deve essere usata congiuntamente alle altre POS emesse dalla Health Protection Agency y

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