ricerca con tamponi su cute, ferite superficiali, e non ... - italbioforma

METODO NAZIONALE STANDARD 

RICERCA CON TAMPONI SU 

CUTE, FERITE SUPERFICIALI, 

E NON CHIRURGICHE 

BSOP 11 

Emesso da Standards Unit, Evaluations and Standards Laboratory 

Centre for Infections 

RICERCA CON TAMPONI SU CUTE, FERITE SUPERFICIALI, E NON CHIRURGICHE 

Revisione no: 4 Data di revisione 30.08.06 Emesso da: Standard Unit, Evaluation and Standards Laboratory Pagina 1 di 24 

Riferimento no: BSOP 11i4.1 

Questa POS deve essere usata congiuntamente con le altre POS emesse dalla Health Protection Agency 

www.evaluations-standards.org.uk 

Email: standards@hpa.org.uk

STATO DEI METODI NAZIONALI STANDARD 

I Metodi Nazionali Standard, che includono le procedure operative standard (POS) algoritmi e linee guida, 

promuovono l’adozione di elevati livelli di qualità, contribuendo ad assicurare la possibilità di confronto delle 

informazioni diagnostiche ottenute in laboratori diversi. Ciò consente la standardizzazione della sorveglianza 

sostenuta dalla ricerca, sviluppo e verifica, promovendo nello stesso tempo la salute pubblica e la fiducia del 

paziente nelle proprie strutture sanitarie. I metodi sono ben referenziati e rappresentano un buon standard 

minimo per la microbiologia clinica e per la salute pubblica. Comunque, utilizzando i Metodi Nazionali Standard, i 

laboratori dovranno tenere in considerazione le esigenze locali e potranno intraprendere ricerche addizionali. I 

metodi forniscono inoltre un punto di riferimento per un loro ulteriore sviluppo. 

I Metodi Nazionali Standard sono stati sviluppati, revisionati ed aggiornati con una procedura aperta di consenso 

ove le opinioni di tutti i partecipanti sono state tenute in adeguata considerazione ed i documenti elaborati 

riflettono il consenso della maggior parte degli stessi. 

I rappresentanti di alcune organizzazioni professionali, incluse quelle il cui logo appare sulla prima pagina, sono 

membri dei gruppi di lavoro che sviluppano i Metodi Nazionali Standard. L’inclusione del logo di una 

organizzazione nella prima pagina implica sostegno agli obiettivi ed al processo di preparazione dei metodi 

standard. I componenti di queste organizzazioni scientifiche hanno partecipato allo sviluppo dei Metodi Nazionali 

Standard ma le loro opinioni personali non rispecchiano necessariamente quelle dell’organizzazione di cui sono 

membri. L’elenco attuale delle organizzazioni professionali partecipanti può essere ottenuto tramite e-mail 

all’indirizzo standards@hpa.org.uk. 

Le prestazioni dei metodi standard sono condizionate dalla qualità di reagenti, strumentazione, procedure 

commerciali o prove messe a punto in loco. I laboratori dovrebbero assicurare che queste siano state validate e 

dimostrate idonee allo scopo prefissato. Devono essere adottate procedure di controllo di qualità interno ed 

esterno. 

Nonostante siano state osservate le più scrupolose attenzioni nella preparazione di questa pubblicazione, la 

Health Protection Agency o qualsiasi organizzazione di sostegno non può essere ritenuta responsabile 

dell’accuratezza o dell’utilizzo o di qualsiasi conseguenza derivante dall’uso o da modifiche delle informazioni 

contenute in questo documento. Queste procedure sono intese solamente come una risorsa generale per i 

professionisti che esercitano in questo settore, operanti nel Regno Unito, pertanto si dovrà ricorrere ad altri 

consulenti quando ritenuto necessario. Se si apportano modifiche a questa pubblicazione, si deve porre in 

evidenza dove sono state apportate modifiche al documento originale. La Health Protection Agency (HPA) dovrà 

essere informata in ogni circostanza. 

La HPA è una organizzazione indipendente che ha lo scopo di proteggere la salute della popolazione. Ad essa 

confluiscono esperienze professionali già appartenenti ad organizzazioni ufficiali. Maggiori informazioni riferibili 

alla HPA possono essere ottenute al sito www.hpa.org.uk 

La HPA è un’organizzazione che mira ad essere completamente in accordo con le direttive Caldicott. Ciò 

significa prendere ogni possibile precauzione per prevenire la diffusione non autorizzata di informazioni sui 

pazienti e di garantire che le informazioni relative agli stessi siano mantenute in condizioni di sicurezza 1 . 

Maggiori dettagli possono essere ottenuti dal sito web www.evaluations-standards.org.uk. Contributi allo 

sviluppo dei documenti possono essere forniti contattando l’indirizzo standards@hpa.org.uk. 

Per cortesia prendere nota che la bibliografia è attualmente formattata con il software Reference Manager. Se si 

modifica o si cancella il testo senza avere installato nel computer il Reference Manager; la bibliografia non sarà 

aggiornata automaticamente. 

Riferimento suggerito per questo documento: 

Health Protection Agency (2006). Investigation of skin, superficial and non-surgical wound swabs. 

National Standard Method BSOP 11 Emissione 4. http://www.hpa-standardmethods.org.uk/pdf_sops.asp 

RICERCA CON TAMPONI SU CUTE, FERITE SUPERFICIALI, E DI TIPO NON CHIRURGICO 

Revisione no: 4 Data di revisione 30.08.06 Emesso da: Standard Unit, Evaluations and Standards Laboratory Pagina 2 di 24 

Riferimento BSOP 11i4.1 




INDICE 

STATO DEI METODI NAZIONALI STANDARD ..................................................................................... 2 

INDICE .................................................................................................................................................... 3 

PROCEDURA DI MODIFICA .................................................................................................................. 4 

SCOPO DEL DOCUMENTO .................................................................................................................... 5 

INTRODUZIONE ....................................................................................................................................... 5 

INFORMAZIONI TECNICHE ..................................................................................................................... 11 

1.0 CONSIDERAZIONI SULLA SICUREZZA .................................................................................. 12 

1.1 RACCOLTA DEL CAMPIONE ...................................................................................................................................... 12 

1.2 TRASPORTO E CONSERVAZIONE DEL CAMPIONE……………………..……………….…….………………………... 12 

1.3 PROCEDURA ANALITICA SUL CAMPIONE …………..……..…………………………………………………………….. 12 

2.0 PRELIEVO DEL CAMPIONE ..................................................................................................... 12 

2.1 TEMPO OTTIMALE PER IL PRELIEVO DEL CAMPIONE …………………………………………………………………. 12 

2.2 TIPO DI CAMPIONE APPROPRIATO E METODO DI PRELIEVO ………………………………………………………... 12 

2.3 QUANTITA’ E NUMERO APPROPRIATO DI CAMPIONI ………...……………………………………………………….I 13 

3.0 TRASPORTO E CONSERVAZIONE DEL CAMPIONE ............................................................ 13 

3.1 TEMPO FRA PRELIEVO DEL CAMPIONE E PROCEDURA ANLITICA …………...………………………………..………… 13 

3.2 ACCORGIMENTI PARTICOLARI PER RIDURRE IL DETERIORAMENTO …….……………………………...……..………. 13 

4.0 PROCEDURA SUL CAMPIONE ................................................................................................ 13 

4.1 SELEZIONE DELLA PROVA ….……….…………………………………………..…………………………………………... 13 

4.2 ASPETTO ………………..………………………...…………………………………………………………………………….. 13 

4.3 MICROSCOPIA ……………..….…………………………………..……………..……………………………………………. 13 

4.4 COLTURA E MODALITA’ DI RICERCA ………………………..…...……………………..……………………………… 13 

4.5 IDENTIFICAZIONE ………………...……………………………………………………………………………………………. 15 

4.6 PROVE DI SENSIBILITA’ AGLI ANTIMICROBICI ………………………………………...……………………………….. 16 

5.0 PROCEDURA DI REFERTAZIONE ........................................................................................... 16 

5.1 MICROSCOPIA …………...……………………………………………………………………………………………………… 16 

5.2 COLTURA ………………………………………………………………….………………..……………………………………. 16 

6.0 SEGNALAZIONE ALLA HPA (LOCALE E SERVIZI REGIONALI ED AL CDSC CENTER 

FOR INFECTIONS) .................................................................................................................... 16 

7.0 RINGRAZIAMENTI E CONTATTI ……………………………………………………………………. 17 

BIBLIOGRAFIA ....................................................................................................................................... 18 







PROCEDURA DI MODIFICA 

Documento di riferimento 

controllato 

Titolo del documento 

controllato 

BSOP 11 

Ricerca con tamponi su cute, ferite superficiali, e non chirurgiche 

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Numero/ 

Data 

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interessate 

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4 4.1 15 4.5.1 Cancellato dalla Nota 

S. schenckii. 







RICERCA CON TAMPONI SU CUTE, FERITE 

SUPERFICIALI, E NON CHIRURGICHE 

Tipologia dei campioni Tamponi cutanei 

Tamponi da ferite superficiali 

Tamponi da ferite non chirugiche 

SCOPO DEL DOCUMENTO 

Questo documento descrive la procedura per la ricerca batteriologica con tamponi su cute, ferite superficiali e di 

tipo non chirurgico. Si deve ricordare che molti casi sono meglio diagnosticati inviando una biopsia cutanea per 

l’esame colturale ed istologico. 

INTRODUZIONE 

Le infezioni della cute e dei tessuti sottocutanei sono causate da un ampio spettro di microrganismi 2-4 e possono 

essere meglio diagnosticate esaminando le biopsie invece dei tamponi. I microrganismi di comune riscontro 

includono: 

• Staphylococcus aureus 

• Streptococchi di gruppo A, B, C e G di Lancefield 

• Specie Bacteroides 

• Specie Clostridium 

• Cocchi anaerobi 

• Stafilococchi coagulasi-negativi 

• Specie Corynebacterium 

• Enterobacteriaceae 

• Pseudomonadi 

I microrganismi isolati da ferite infette possono essere clinicamente importanti, ma il loro significato clinico deve 

essere attentamente valutato. Come di seguito descritto, specifici microrganismi spesso sono tipicamente 

associati a particolari condizioni cliniche. I Virus, quali l’Herpes simplex e Varicella-zoster, ed altri agenti non 

microbici, possono determinare lesioni cutanee, ma non sono argomenti di questa POS. 

Infezioni causate da Staphylococcus aureus meticillino-resistente (MRSA methicillin-resistant 

Staphylococcus aureus). Come lo Staphylococcus aureus meticillino-sensibile (MSSA), l’MRSA può 

colonizzare e/o infettare le ferite ed i tessuti molli. I nuovi ceppi MRSA emergenti nella comunità (mecIV) 

possiedono fattori di virulenza quali PVL* o SST** e causano infezioni particolarmente contagiose (follicolite) nei 

bambini e nei giovani adulti; spesso sono diffusi per scarsa igiene. Sono sempre più spesso segnalate infezioni 

gravi, come la fascite necrotizzante e la polmonite. I laboratori sono attualmente impegnati per soddisfare il 

considerevole aumento delle richieste di analisi di screening per identificare i portatori di MRSA. Queste 

comprendono tamponi da cute lesionata od integra (ascella, perineo, ombelico). 

Cellulite: è un’infezione estesa che si diffonde nei tessuti connettivi molli e negli strati più profondi della cute e 

dei tessuti sottocutanei. L’emocoltura è l’accertamento più appropriato (consultare BSOP 37 Ricerca nelle 

emocolture di microrganismi diversi da Mycobacterium spp.) mentre, in assenza di lesioni, non sono indicati 

tamponi cutanei. Le celluliti ricorrenti possono danneggiare i sistemi di drenaggio venoso o linfatico 5 . 

*PVL Panton-Valentine leukocidin (leucocidina Panton-Valentine) 

**Scalded skin toxin (tossina epidermolitica) 







La cellulite è caratterizzata da dolore locale, ipersensibilità, eritema e edema. I margini delle aree infette sono 

mal definiti, non essendo rilevati e chiaramente demarcati. I microrganismi principalmente coinvolti sono gli 

streptococchi -emolitici e Staphylococcus aureus 6, 7 . E’ stato isolato anche l’Arcanobacterium haemolyticum 8 . 

La cellulite da Haemophilus influenzae si manifesta nei bambini di età superiore a tre anni, principalmente in 

sede orbitale. Le infezioni invasive da H. influenzae sono divenute rare dopo l’adozione del vaccino H. 

influenzae di tipo B. 

E’ stata pure descritta la cellulite facciale da Streptococcus pneumoniae che si manifesta prevalentemente nei 

bambini 11 . Celluliti da S. pneumoniae insorgono nei pazienti con condizioni cliniche precarie, quali alcolismo, 

diabete mellito, abuso di droga per via endovenosa o lupus eritematoso sistemico. 

La cellulite successiva ad infezioni della ferita può essere causata da: 

• Streptococchi -emolitici 

• S. aureus 

• Specie Bacteroides 

• Cocchi anaerobi 

Nell’uomo e negli animali le ferite da morso possono essere contaminate da microrganismi della flora orale. I 

più frequentemente isolati includono 12 - 14 : 

• Pasteurella multocida 

• S. aureus 

• Streptococchi emolitici 

• Anaerobi 

DF-2 (Capnocytophaga canimorsus) 

• Eikenella corrodens 

• Specie Haemophilus 


• Streptobacillus moniliformis 

• S. intermedius 

La Capnocytophaga canimorsus è associata al morso del cane e causa setticemia, specialmente nei pazienti 

spenectomizzati. Questo microrganismo è isolato di consuetudine solo dalle emocolture 12,15-17 . 

Lo Streptobacillus moniliformis è associato al morso del ratto e la diagnosi è confermata con l’isolamento 

colturale dal sangue o dal liquido articolare 18-21 . 

Altri microrganismi d’insolito isolamento includono Weeksella zoohelcum, specie Actinobacillus e Neisseria 

canis 22-24 . 

Punture di insetti sono spesso associate ad infezione secondaria da streptococco di Gruppo A di Lancefield e S. 

aureus. 

Nei pazienti ustionati le sepsi sono una importante causa di decesso. I microrganismi isolati includono 25-28 : 

• Staphylococcus aureus 

• Streptococchi -emolitici 

• Pseudomonadi, specialmente Pseudomonas aeruginosa 

• Specie Acinetobacter 

• Specie Bacillus 

• Enterobacteriaceae 

• Funghi filamentosi, quali: specie Fusarium 

• Candida albicans ed altri lieviti 








Eritema gangrenoso: è una lesione cutanea localizzata, caratterizzata da emorragia, necrosi ed eritema 

circostante. E’ di solito causato da P. aeruginosa 29 , occasionalmente da Stenotrophomonas maltophilia 30 o da 

disseminazione ematogena di un’infezione fungina (specie Candida o funghi appartenenti alle specie 

Mucoraceae) 31 

Lesioni simili sono comunque riscontrate in pazienti neutropenici per infezioni da Aspergillus o specie 

Fusarium 32 

Erisipela: è un’infezione cutanea superficiale. Localizzata principalmente nel derma e nelle parti più superficiali 

dei tessuti sottocutanei, con interessamento preminente dei vasi linfatici superficiali. Si manifesta con un’area 

cutanea dolente, arrossata e edematosa, talvolta con piccole vescicole superficiali. I margini sono scarsamente 

definiti, i bordi rilevati. L’agente causale è di solito lo streptococco di Gruppo A di Lancefield 33,34 . L’Erisipela può 

anche essere causata dagli streptococchi del Gruppo G di Lancefield e dallo S. aureus 34-36 . 

Erisipeloide è una cellulite cronica non suppurativa causata dall’Erysipelothrix rhusiopathiae 2 . Può essere una 

malattia occupazionale dei pescatori, lavoratori ittici, macellai, addetti al mattatoio. Si localizza alle mani ed alle 

dita provocando lesioni che presentano aree dolenti di colore violaceo e zone d’infiammazione con lembi 

eritematosi penetranti. 

Eritrasma è un’infezione cutanea cronica dello strato corneo della cute superficiale causata da 

Corynebacterium minutissimum. Di solito si presenta in sede ascellare con desquamazioni sottili e placche rosso 

scure 37 . La diagnosi è spesso ottenuta più con i rilievi clinici che con l’esame colturale. 

Follicolite: è un’infezione ed infiammazione dei follicoli dei capelli 2 . Forma papule cupuliformi o pustole. 

Ciascuna di queste è perforata da un capello circondato da un alone eritematoso. L’affezione è di solito causata 

da S. aureus 38,39 . Le epidemie da P. aeruginosa sono state associate alla frequentazione delle piscine e delle 

vasche per idromassaggi 40-42 e casi isolati di follicolite da P. aeruginosa si sono manifestati dopo l’uso di spugne 

sintetiche 43 . Possono inoltre causare follicolite le Candida, specialmente nei pazienti a cui sono stati 

somministrati a lungo antibiotici o trattamenti con corticosteroidi e Malassezia furfur, in pazienti diabetici o 

granulocitopenici o che ricevono terapia con corticosteroidi 44 . 

Impetigine: è un’infezione superficiale, intradermica, che causa lesioni eritematose a forma vescicolare o non. 

L’impetigine bollosa è causata da S. aureus 45 . L’impetigine non bollosa è più frequentemente causata dagli 

streptococchi di Gruppo A di Lancefield 46 , sebbene possa essere isolato anche lo S. aureus 47, 48 . Le lesioni 

dell’impetigine bollosa sono rappresentate da vescicole che evolvono in gruppi di bolle superficiali flaccide, prive 

o con ridotto alone eritematoso. Si rompono facilmente. Le lesioni non bollose dell’impetigine iniziano con 

piccole papule eritematose che formano vescicole, si trasformano in pustole e poi si rompono. L’impetigine non 

bollosa può essere occasionalmente causata dagli streptococchi di gruppo C e G di Lancefield. 

Necrolisi epidermica: (La sindrome di Lyell si manifesta in età pediatrica avanzata; la sindrome di Ritter nei 

neonati) è causata da S. aureus, in modo particolare dal fago gruppo II, tipo fagico 71 49 . 

Paronichia: è un’infezione di tipo superficiale del margine dell’unghia che si manifesta in forma acuta o cronica. 

Gli isolati comuni includono 50 . 

• S. aureus 

• Streptococchi di Group A di Lancefield 

• Lieviti 

• Batteri anaerobi 

• H. influenzae 

Micosi superficiali: sono infezioni fungine cutanee che coinvolgono capelli, unghie o parti cheratinizzate dello 

strato corneo (consultare BSOP 39 – Ricerca delle micosi superficiali nei campioni dermatologici). Gli agenti 

causali sono dermatofiti, specie Candida o lieviti lipofili 51 . 







L’infezione cutanea da dermatofiti causata da specie Epidermophyton, Trichophyton o Microsporum provoca 

prurito, desquamazione, lesioni eritematose con aspetto caratteristico di “tricofizia” ( consultare BSOP 39 - 

Ricerca di micosi superficiali in campioni dermatologici). 

Pitiriasi o tigna versicolor: è un’infezione dello strato corneo causata dal lievito lipofilo Malassezia furfur. 

Possono essere isolati funghi rari come Scytalidium dimidiatum e Scytalidium hyalinum. 

Per la diagnosi d’infezione fungina cutanea sono consigliati il raschiamento della cute, il taglio del capello o 

dell’unghia. 

C. albicans: può colonizzare od infettare l’epidermide, specialmente dei pazienti immunodepressi e diabetici. La 

candidosi delle grandi pieghe cutanee (candida intertrigo) 52 si manifesta sotto le mammelle, fra le pieghe 

addominali, all’inguine, nelle aree perineali e nelle ascelle. 

Sono sempre più frequenti le Infezioni cutanee da Cryptococcus neoformans nei pazienti HIV positivi. Si 

manifestano come papule colorate diffuse, rilevate, traslucide. I raschiamenti cutanei rappresentano i campioni 

da indagare. 

Le micosi sistemiche come quelle causate da specie Mucor, Aspergillus, Cryptococcus, Fusarium o Candida e 

possono produrre manifestazioni cutanee quali l’ectima gangrenosa. Sono meglio diagnosticate con l’esame 

colturale delle biopsie (consultare BSOP 17 – Ricerca su tessuti e biopsie). 

Ulcere: quelle della cute sono spesso conseguenti a: insufficienza vascolare, malattie delle arterie, pressione 

esercitata sulle aree sottostanti (ulcere da decubito o piaghe da decubito), affezioni neurologiche o loro 

associazioni 53 . Lesioni cutanee non ulcerate possono essere conseguenti a diverse malattie del collagene - 

vascolari, come l’artrite reumatoide, e possono complicare altre condizioni patologiche, quali una malattia 

infiammatoria intestinale. Nella pratica clinica quelle di più frequente riscontro sono le ulcere degli arti inferiori 

conseguenti all’insufficienza del circolo venoso. 

E’ importante avere una diagnosi eziologia precisa per qualsiasi tipo di ulcera 54,55 , ma può non essere ricercata 

in modo rigoroso dal personale sanitario. Ciò può influire sull’interpretazione dei dati biomedici disponibili in 

letteratura e sui risultati microbiologici 56 con conseguenze negative sulla gestione e sulla prognosi del paziente. 

Ogni lesione dei tegumenti è regolarmente colonizzata (o infettata) da batteri. Questi possono essere ricercati 

con l’esame colturale o con tecniche di amplificazione dell’acido nucleico. Il significato clinico di questi risultati 

dipende tuttavia in modo prevalente da: particolare natura della lesione, situazione clinica predominante al 

momento del campionamento, (stabilità, cronicità, presenza di segni e sintomi d’infezione) e metodo di 

campionamento. 

Alcuni Autori hanno ipotizzato, particolarmente per le ulcere venose degli arti inferiori, una correlazione fra la 

presenza di un’infezione clinicamente evidente, l’allargamento dell’ulcera, o ritardata guarigione, ed il numero di 

differenti specie e generi batterici rilevati all’esame microbiologico 57 . In altre pubblicazioni è stato invece 

segnalato che si deve considerare come flora saprofitica la maggior parte dei batteri isolati da ulcere venose 

degli arti inferiori 56,58 . 

Hanno una rilevanza clinica discutibile gli esami colturali da tamponi prelevati da ulcere venose croniche e 

stabilizzate degli arti inferiori in assenza di segni o sintomi d’infezione 54, 56 . 

I dati disponibili in letteratura sulla valutazione dei tamponi superficiali sono controversi (diversamente da quelli 

prelevati con biopsie, materiale della parte profonda dell’ulcera o aspirati dei margini principali di qualsiasi 

reazione di cellulite) 59 , ma nella pratica clinica sono frequentemente utilizzati. Di seguito sono descritte le 

tecniche di campionamento. 

Come in altre condizioni cliniche, è probabile che siano stati sottovalutati il ruolo dei batteri anaerobi 

(specialmente cocchi e bastoncini Gram negativi) 60 ed il sinergismo della popolazione patogena batterica (in 

modo particolare fra aerobi ed anaerobi) come causa d’infezioni cliniche evidenti originate da ulcere cutanee 61,62 . 







Le infezioni anaerobiche possono essere associate ad odore putrido o secrezione ed evidenza di necrosi del 

tessuto. 

Come di consuetudine, la diagnosi d’infezione e di la colonizzazione batterica è prevalentemente espressa da 

una valutazione che si avvale dei segni e dei sintomi clinici. Sono indicativi d’infezione: dolore, malessere 

generale, cellulite, linfangite, linfoadenopatia ed aumento delle secrezioni. 

Una revisione accurata 61 offre al clinico la possibilità d’interpretare i risultati microbiologici disponendo di rilievi 

clinici e dei risultati delle ricerche di laboratorio. 

Ulcere tropicali e croniche che non guariscono si possono spesso insorgere dopo traumi in sedi cutanee in 

precedenza sane. I microrganismi responsabili includono gli anaerobi 63 . 

Quando le infezioni si complicano con coinvolgimento dei tessuti molli e dell’osso, gli isolati ottenuti da tamponi 

superficiali prelevati dalle ulcere scarsamente correlano con quelli delle colture dei campioni prelevati in modo 

più invasivo. Questi materiali sono ottenuti con biopsie ed escissione di tessuti, raschiamento chirurgico, 

aspirato da ascessi (consultare BSOP 14 – Ricerca di ascessi e ferite post-operatorie ed infezioni profonde, 

BSOP 17 – Ricerca su tessuti e biopsie). E’ stato consigliato, in sostituzione della biopsia, il campionamento per 

irrigazione ed aspirazione; questi risultati forniscono una buona correlazione con le risposte cliniche al 

trattamento 64 . 

Le ulcere genitali possono derivare da trauma o da malattie sessualmente trasmesse. Le ulcere traumatiche di 

solito guariscono rapidamente e sono associate a microrganismi commensali dl tratto genitale o con lo S. aureus 

o streptococchi -emolitici. Le ulcere causate da microrganismi sessualmente trasmessi tendono a persistere e 

possono essere determinate dal virus herpes simplex (solitamente tipo II) o da molti altri agenti batterici, in 

particolare, nel Regno Unito, dal Treponema pallidum (consultare BSOP 28 – Ricerca sul tratto genitale e 

campioni associati) 

Le lesioni ulcerative della cute possono essere causate da parapoxviruses, come l’orf virus. Queste sono 

acquisite dalle abrasioni cutanee successive a contatto con animali domestici infetti, che comprendono pecore, 

capre e bovini. 

Infezioni d’origine idrica: Le specie Aeromonas e Vibrio non-colera sono prevalentemente isolate da: ferite 

traumatiche correlate all’acqua o lacerazioni provocate durante la balneazione in acque dolci o salate 65-69 , ferite 

con contaminazione ambientale o dopo traumi penetranti durante la pesca o provocati da crostacei 70 . 

Raramente questi microrganismi inducono una necrosi muscolare simile a quella causata dal C. perfringens. 

Aeromonas e stato inizialmente considerato patogeno nei pazienti immunodepressi. Ora è riconosciuto come 

causa di grave malattia nei pazienti immunocompetenti 66 . L’infezione da Aeromonas può anche manifestarsi 

dopo l’uso terapeutico di sanguisughe 71,72 . Lesioni traumatiche imputabili all’acqua possono coinvolgere flora 

polimicrobica gram negativa di tipo ambientale come Edwardsiella tarda 73 e pseudomonadi 74 . 

Ulcere diabetiche: Le infezioni del piede, frequenti nei soggetti diabetici, sono esposte a grave rischio di 

complicanze, con possibile progressione rapida ed irreversibile in gangrena settica che comporta l’amputazione 

del piede 75 . Le specie Corynebacterium, streptococchi, stafilococchi meticillino sensibili e resistenti, 

pseudomonadi, Enterobacter aerogenes, Bacteroides fragilis, Fusobacterium species e Prevotella bivia sono fra 

i microrganismi isolati da ulcere dell’estremità del piede di pazienti diabetici 76 . 

Infezioni cutanee rare 

Il Bacillus anthracis è l’agente causale del carbonchio e si manifesta in due forme cliniche, antrace cutaneo ed 

inalatorio. A seguito del rilascio volontario di B. anthracis negli USA nel 2001, è aumentata la consapevolezza 

che la diffusione di questo e di altri microrganismi può rappresentare una minaccia di tipo biologico77 . Il 

carbonchio cutaneo si manifesta dopo la penetrazione delle spore nella cute o per contaminazione di abrasioni. 

Le lesioni cutanee sono definite pustole maligne, le ulcerazioni caratteristiche presentano un centro nero78 , 

raramente sono dolenti, ma l’infezione non trattata può diffondere e provocare setticemia. La malattia non curata 

può essere letale nel 5% dei casi; il trattamento con antibiotici consente la guarigione. L’infezione cutanea da B. 







anthracis può verificarsi nei lavoratori dell’industria che utilizzano materiali di origine animale quali lana, pelli, 

setole, pellami o in aziende agricole come le fattorie, coinvolgendo agricoltori, macellai e veterinari. In rari casi il 

B. anthracis può essere trasmesso con morsi di insetti. 

Il Bacillus cereus può causare infezioni gravi. Ciò è dovuto alla produzione di tossina e può verificasi nelle 

ferite traumatiche e nelle ustioni. Il B. cereus può inoltre essere presente nelle aree traumatizzate come 

contaminante 80,81 . 

Il Clostridium tetani è l’agente eziologico del tetano. Questa malattia è di solito causata da contaminazione di 

spore in ferite penetranti, lacerate o in lesioni traumatiche. Dopo la penetrazione in una ferita, C. tetani può 

essere isolato da infezioni miste causate da aerobi ed anaerobi, ma la diagnosi è di solito di tipo clinico. 

Il Corynebacterium diphtheriae ed il Corynebacterium ulcerans possono causare difterite cutanea 82 . Questi 

microrganismi colonizzano sedi traumatiche o morsicature di insetti e pertanto possono essere isolati da ulcere 

cutanee che non guariscono. La maggior parte dei casi è riscontata in pazienti che ritornano dall’estero 83 . 

Le specie Leishmania causano il bottone d’Oriente (leishmaniosi cutanea) e granulomi cutanei cronici o lesioni 

ulcerative. La Leishmaniosi cutanea è più frequente in Sud America, in Estremo Oriente ed in Etiopia. La 

diagnosi è possibile con il rilievo del parassita in strisci preparati per apposizione e colorati e nelle sezioni 

tissutali. Nei centri di riferimento è disponibile la ricerca del parassita con l’amplificazione dell’acido nucleico e 

l’esame colturale. La determinazione della specie di Leishmania è utile per instaurare una terapia appropriata e 

per la valutazione della prognosi. 

Le specie Mycobacterium possono causare infezioni della cute. Queste possono realizzare un’infezione 

sistemica disseminata o localizzata da Mycobacterium non tubercolare (consultare BSOP 40 -Ricerca nei 

campioni per Mycobacterium spp.). Sono segnalati come esempi 84,85 : 

• Mycobacterium tuberculosis causa lesioni di lupus vulgaris in sede periorale 

• Mycobacterium marinum causa granulomi e linfangite acquisita dopo lesioni traumatiche in ambiente idrico 

• Mycobacterium ulcerans causa lesioni cutanee definite come ulcere di Buruli 

• Mycobacterium haemophilum causa lesioni cutanee diffuse nei pazienti immunocompromessi 

• Mycobacterium leprae causa la lebbra (malattia di Hansen) affezione cutanea cronica, sviluppo di membrane 

mucose e interessamento dei tessuti nervosi. 

Sporothrix schenkii causa sporotricosi 86 . La sporotricosi cutanea è acquisita dopo contaminazione con terreno, 

muschio sfagno e altri componenti vegetali e si sviluppa nel sito d’inoculo formando una lesione primaria a 

diffusione linfatica (consultare BSOP 39 – Ricerca su campioni dermatologici di micosi superficiali). E’ più 

frequente nei paesi a clima caldo. 

Sebbene le specie Mycobacterium e S. schenkii illustrate in precedenza possano esser isolate dalla cute, i 

tamponi non rappresentano il metodo di scelta per la raccolta del campione, e si devono consultare le POS 

specifiche (BSOP 17 – Ricerca su tessuti e biopsie e BSOP 40 - Ricerca nei campioni di Mycobacterium spp.) 

La Salmonella enteritidis è stata isolata da ascessi cutanei in pazienti che non presentavano evidenza di 

malattia in altre sedi 87 . La salmonellosi cutanea e la listeriosi si possono manifestare in modo particolare sulle 

braccia di veterinari ed agricoltori, dopo l’assistenza al parto ad animali di fattoria, di solito bovini infettati in 

utero 88,89 . E’ stata inoltre segnalata la listeriosi cutanea in un paziente con AIDS 90 . 

La Yersinia enterocolitica può causare lesioni pustolose, ascessi, cellulite ed infezione delle ferite 91 . 

Gli agenti eziologici delle infezioni della cute e della ferita, diversi dai batteri convenzionali, includono: 

• Virus: enteroviruses, virus del vaiolo, virus del papilloma umano tipo 3 e 10, HSV, VZV, herpes zoster 

• Lieviti : Specie Candida 

• Fungi: Specie Microsporum, Trichophyton and Epidermophyton 

• Spirochete: Treponema pallidum, 

• Artropodi: Sarcoptes scabiei 







INFORMAZIONE TECNICHA 

Il tempo di incubazione raccomandato per le piastre anaerobiche è di 48 ore. Alcuni batteri anaerobi, quali un 

certo numero di specie di Actinomices, richiedono periodi più prolungati (2 -4 giorni) e non possono essere 

rilevate se esaminate più precocemente 92 . Per l’isolamento delle specie Prevotella e Porphyromanas è richiesto 

un periodo di incubazione di 5 – 7 giorni. 93 







1 CONSIDERAZIONI SULLA SICUREZZA 94-104 

1.1 PRELIEVO DEL CAMPIONE 

N/D 

1.2 TRASPORTO E CONSERVAZIONE DEL CAMPIONE 

Contenitori di plastica chiusi per il trasporto e la conservazione dei campioni 

1.3 PROCEDURA ANALITICA SUL CAMPIONE 

Processare tutti i campioni in Livello di Contenimento 2. Se si sospetta un’infezione da microrganismo 

del Gruppo di Rischio 3, la manipolazione deve essere eseguita in una cappa microbiologica di 

sicurezza in ambiente di Livello di Contenimento 3. 

Le procedure di laboratorio che possono generare aerosol infettivi devono essere condotte in cabina 

microbiologica di sicurezza. 

Fare riferimento alle attuali linee guida per la manipolazione sicura di tutti i microrganismi descritti in 

questa POS. 

Le linee guida precedentemente esplicitate devono essere supplementate con la COSHH locale e con la 

valutazione del rischio. 

E’ essenziale il rispetto delle regolamentazioni di spedizione postale e di trasporto. 

2 PRELIEVO DEL CAMPIONE 

2.1 TEMPO OTTIMALE PER IL PRELIEVO DEL CAMPIONE 

Prelevare i campioni prima di iniziare la terapia antimicrobica, quando possibile. 

2.2 TEMPO OTTIMALE DI PRELIEVO DEL CAMPIONE 

Il pus/essudato, se presenti, sono da preferire ai tamponi (consultare BSOP 14 - Ricerca di ascessi e 

ferite post-operatorie ed infezioni profonde). Se si dispone di una piccola quantità di pus o di essudato è 

preferibile il loro invio con tampone inserito in terreno di trasporto per ridurre la possibilità di 

essiccamento durante il trasporto. 

Prelevare una parte rappresentativa della lesione. L’uso del tampone non è ritenuto soddisfacente per le 

aree crostose secche. 

I tessuti devitalizzati presenti nei campioni prelevati da ulcere devono essere rimossi e l’ulcera deve 

essere detersa con soluzione fisiologica. Dal margine della ferita deve essere prelevata una biopsia o, 

preferibilmente, un ago aspirato 105 . 

Può essere preferito un metodo meno invasivo come l’irrigazione-aspirazione. Posizionare sul margine 

dell’ulcera la punta di una piccola siringa priva di ago ed irrigare delicatamente con almeno 1 mL di 

soluzione fisiologica sterile (0.85% di NaCl). Dopo aver massaggiato il margine dell’ulcera, ripetere 

l’irrigazione con un altro mL di soluzione fisiologica sterile. Ripetere il massaggio del margine dell’ulcera, 

aspirare circa 0.25 mL di liquido ed inserirlo in un contenitore sterile e richiudere 64 . 

Campioni per funghi dermatofiti: Consultare SOP 39 – Ricerca di micosi superficiali in campioni 

dermatologici. 







2.3 QUANTITA E NUMERO APPROPRIATO DI CAMPIONI 

N/D 

3 TRASPORTO E CONSERVAZIONE DEL CAMPIONE 

3.1 TEMPO FRA PRELIEVO DEL CAMPIONE E PROCEDURA ANALITICA 

I campioni devono essere trasportati e processati il più presto possibile. 

3.2 ACCORGIMENTI SPECIALI PER RIDURRE IL DETERIORAMENTO 

I tamponi devono essere inviati in terreno di trasporto di Amies con carbone 106 . 

Per prevenire l’essiccamento le biopsie devono inserite in un contenitore sterile, impermeabile, 

contenente una piccola quantità di fisiologica sterile. 

Se la procedura è ritardata la conservazione refrigerata è preferibile a quella a temperatura ambiente. 

Sono da evitare ritardi superiori alle 48 ore. 

4.0 PROCEDURA SUL CAMPIONE 

4.1 SELEZIONE DELLA PROVA 

N/D 

4.2 ASPETTO 

N/D 

4.3 MICROSCOPIA 

4.3.1 Standard 

Solitamente è richiesta la colorazione di Gram. 

4.3.2 Prove supplementari: 

Consultare BSOP 40 – Ricerca nei campioni di Mycobacterium spp. e BSOP TP 39 – Procedure di 

colorazione. 

4.4 COLTURA E MODALITA’ DI RICERCA 

4.4.1 Pre-trattamento 

N/D 

4.4.2 Procedura sul campione 

Consultare BSOP 54 – Semina del terreno di coltura. 







4.4.3 Terreni di coltura, condizioni e microrganismi 

Per tutti i campioni 

Aspetti clinici/ 

condizioni 

Tutti i campioni 

Terreni standard 

Stafil/Strep agar 

selettivo 

Agar neomicina con 

disco di 

metronidazolo da 5 

µg per anaerobi 

esigenti 

Per queste situazioni, aggiungere quanto segue 

Aspetti clinici/ 

condizioni 

Cellulite nei bambini 

Morsi umani 

Ustioni 

Pazienti 

immunocompromessi 

Pazienti diabetici 

Intertrigine 

Paronichia 

Difterite cutanea 

Viaggiatore straniero 

Terreni opzionali 

Terreni 

supplementari 

Incubazione 

Temp C° Atmosfera Tempo 

Lettura 

colture 

Microrganismo(i) 

ricercato 

35-37 aerobica 40 – 48 ore giornaliera S. aureus 

Streptococchi di 

Lancefield di Gruppo 

A, C e G 

35-37 anaerobica 40 – 48 ore* 40 ore Anaerobi 

Incubazione 


Lettura 

colture 


ricercati 

Agar cioccolato† 35 - 37 5 -10% CO2 40 – 48 ore giornaliera Specie Haemophilus 

Agar Sabouraud 35 - 37 aerobica 40 – 48 ore* 40 ore Funghi 

Agar tellurito di 

Hoyle 

35 -37 aerobica 40 – 48 ore giornaliera C. diphtheriae 

C. ulcerans 

Incubazione 


Lettura 

colture 


ricercato 

Ferite diabetiche CLED 35 -37 aerobica 16 – 24 ore 16 ore Enterobacteriaceae 

Pseudomonadi 

Tutti i tamponi Agar sangue 35 -37 5 -10% CO2 40 – 48 ore giornaliera Streptococchi di 

Lancefield Gruppo 

A, C e G 

Specie Pasteurella 

S. aureus 

Specie Vibrio 

Specie Aeromonas 

Altri microrganismi da considerare: Dermatofiti (BSOP 39 – Ricerca in campioni dermatologici di micosi 

superficiali e Mycobacterium spp. (BSOP 40 – Ricerca nei campioni clinici di Mycobacterium spp.) 

Su indicazione clinica l’incubazione può essere prolungata a 5 giorni; in questi casi leggere le colture a 40 ore 

e lasciare nell’incubatore/termostato fino a 5 giorni 

† Può essere usato un disco di bacitracina da 10 unità o agar contenente bacitracina 







4.4.3 Ricerche supplementari 

Prova di tossigenicità del C. diphtheriae 

Consultare BSOP - 40 Ricerca nei campioni clinici di Mycobacterium spp. 

4.5 IDENTIFICAZIONE 

4.5.1 Livello minimo di identificazione in laboratorio 

Anaerobi 

Specie Bacillus 

Streptococchi -emolitici 

Stafilococchi coagulasi-negativi 

C. diphtheriae 

C. minutissimum 

E. corrodens 

Enterobacteriaceae 

E. rhusiopathie 

Haemophilus 

Pasteurella 

Pseudomonadi 

S. aureus 

S. pneumoniae 

Lieviti 

Vibrio 

Aeromonas 

Dermatofiti 

Mycobacterium 

Livello “anaerobi” 

Livello specie 

Livello Gruppo di Lancefield 

Livello “coagulasi-negativi” 

Livello specie e per urgenza, prova di tossigenicità in giornata 



Livello “coliformi” 




Livello “pseudomonadi” 



Livello “lieviti” 



Consultare BSOP 39 

Consultare BSOP 40 

I microrganismi possono essere successivamente identificati su indicazione clinica od epidemiologica 

NOTA: Tutte le manipolazioni eseguite su isolati sospetti di C. diphtheriae, che possono generare 

aerosol, devono essere eseguite in cabina di sicurezza 94 

Il microbiologo clinico deve essere informato il più presto possibile di tutti gli isolati sospetti di C. 

diphtheriae (disponibilità della prova di tossigenicità in giornata presso il laboratorio riferimento) 

Invio ai Laboratori di Riferimento 

Streptococchi di gruppo A per sierotipizzazione 

S. pneumoniae per sierotipizzazione su indicazione clinica (cellulite) 

C. diphtheriae per biotipizzazione e prova di tossigenicità 

Staphylococcus aureus per prova di tossigenicità e tipizzazione fagica, su indicazione clinica. I criteri di 

invio degli isolati per la tipizzazione fagica sono disponibili presso il Laboratory of HealthCare 

Associated Infection CFI, Colindale 

Specie Mycobacterium per identificazione e/o prove di sensibilità 

Specie Leishmania 

Isolati in corso i epidemie e su indicazione epidemiologica 







Microrganismi con resistenze insolite o non attese e ogni volta sussista un problema di laboratorio o 

clinico od un’anomalia che richieda approfondimenti. 

4.6 PROVE DI SENSIBILITA’ AGLI ANTIMICROBICI 

Fare riferimento alla BSOP 45 – Prove i sensibilità. 

5 PROCEDURE DI REFERTAZIONE 

5.1 MICROSCOPIA 

Risultati microscopici urgenti possono essere trasmessi per via telefonica o informatica. 

Referto scritto, deve essere inviato dopo 16 – 72. 

5.2 COLTURE 

Presenza od assenza di microrganismi specificamente indicati, ad esempio S. aureus 

Microrganismi che non sono stati ricercati, quali Enterobatteriaceae pseudomonadi. 

Tempo di refertazione della coltura 

Risultati clinicamente urgenti possono essere trasmessi per via telefonica o informatica. 

Referto scritto deve essere inviato dopo 16 – 72 ore, segnalando, se appropriato, l’ invio di un referto 

successivo. 

5.2.1 Prove di Sensibilità agli Antimicrobici 

Refertare le sensibilità come clinicamente suggerito. 

6.0 SEGNALAZIONI ALLA HPA (LOCALE E SERVIZI 

NAZIONALI ED AL CENTRO CDSC PER LE INFEZIONI) 107 

Fare riferimento a: 

Singole POS per l’identificazione del microrganismo 

Pubblicazioni della Health Protection Agency: 

“ Reporting to the CDR: A guide for laboratories” 

“ Hospital infection control: guidance on the control of infection in hospital” 

Linee guida attuali del CDSC ed alle indicazioni del COSURV 

Linee guida locali 

Isolamento di sospetto C. diphtheriae deve essere segnalato con urgenza al CCDC 

Devono essere segnalati tutti gli isolati di Mycobacterium spp. 







7 RINGRAZIAMENTI ED INDIRIZZI 

Questi Metodi Nazionali Standard sono stati sviluppati, riveduti e revisionati dallo Standard Methods 

Working Group for Bacteriology (http://www.hpa.-tandardmethods.org.uk/wg_bacteriology.asp). Si 

ringraziano le numerose persone appartenenti a laboratori clinici di microbiologia ed alle organizzazioni 

specialistiche che hanno fornito informazioni e commenti nel corso della preparazione di questo 

documento, ed il Redattore Medico per la revisione finale. 

I National Standards Methods sono emessi dalla Standards Unit, Evaluations and Standards Laboratory, 

Centre for Infections, Health Protection Agency London. 

Per ulteriori informazioni contattateci a: 

Standards Unit 

Evaluations and Standards Laboratory 

Centre for Infections 

Health Protection Agency 

Colindale, London 

NW9 5EQ 

e-mail standards@hpa.org.uk 







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