ricerca su tamponi oculari e pus canalicolare - italbioforma

METODO STANDARD NAZIONALE 

RICERCA SU 

TAMPONI OCULARI E 

PUS CANALICOLARE 

BSOP 2 

Emesso dalla Standards Unit, Evaluations and Standards Laboratory 

Specialist and Reference Microbiology Division 

INVESTIGATION OF EYE SWABS AND CANALICULAR PUS 

Riferimento no: 4.1 Data di emissione: 03.05.05 Emesso da: Standards Unit, Evaluations and Standards Laboratory Pagina 1 di 14 

Riferimento no: BSOP 2i4.1 

Questa SOP deve essere usata congiuntamente alle altre SOPs emesse dalla Health Protection Agency 

www.evaluations-standards.org.uk 

E-mail: standards@hpa.org.uk

STATO DEI METODI STANDARD NAZIONALI 

I Metodi Standard Nazionali, che includono le standard operating procedures (SOPs), algoritmi e linee guida, 

promuovono l’adozione di elevati livelli di qualità, contribuendo ad assicurare la possibilità di confronto delle 

informazioni diagnostiche ottenute in laboratori diversi Ciò consente la standardizzazione della sorveglianza sostenuta 

dalla ricerca, sviluppo e verifica, promovendo nello stesso tempo la salute pubblica e la fiducia del paziente nelle 

proprie strutture sanitarie. I metodi sono ben referenziati e rappresentano un buon standard minimo per la 

microbiologia clinica e per la salute pubblica. Comunque, utilizzando i Metodi Standard Nazionali, i laboratori dovranno 

tenere in considerazione le esigenze locali e potranno intraprendere ricerche addizionali. I metodi forniscono inoltre un 

punto di riferimento per un loro ulteriore sviluppo. 

I Metodi Standard Nazionali sono stati sviluppati, revisionati ed aggiornati con una procedura aperta di consenso ove le 

opinioni di tutti i partecipanti sono state tenute in adeguata considerazione ed i documenti elaborati riflettono il consenso della 

maggior parte degli stessi. 

I rappresentanti di alcune organizzazioni professionali, incluse quelle il cui logo appare sulla prima pagina, sono membri dei 

gruppi di lavoro che sviluppano i Metodi Nazionali Standard. L’inclusione del logo di una organizzazione nella prima pagina 

implica sostegno agli obiettivi ed al processo di preparazione dei metodi standard. I componenti di queste organizzazioni 

scientifiche hanno partecipato allo sviluppo dei Metodi Nazionali Standard ma le loro opinioni personali non rispecchiano 

necessariamente quelle dell’organizzazione di cui sono membri. L’elenco attuale delle organizzazioni professionali 

partecipanti può essere ottenuto tramite e-mail all’indirizzo standards@hpa.org.uk. 

Le prestazioni dei metodi standard sono condizionate dalla qualità di reagenti, strumentazione, procedure commerciali o 

prove messe a punto in loco. I laboratori dovrebbero assicurare che queste siano state validate e dimostrate idonee allo 

scopo prefissato. Devono essere adottate procedure di controllo di qualità interno ed esterno. 

Nonostante siano state osservate le più scrupolose attenzioni nella preparazione di questa pubblicazione, la Health 

Protection Agency o qualsiasi organizzazione di sostegno non può essere ritenuta responsabile dell’accuratezza o dell’utilizzo 

o di qualsiasi conseguenza derivante dall’uso o da modifiche delle informazioni contenute in questo documento. Queste 

procedure sono intese solamente come una risorsa generale per i professionisti che esercitano in questo settore, operanti nel 

Regno Unito, pertanto si dovrà ricorrere ad altri consulenti quando ritenuto necessario. Se si apportano modifiche a questa 

pubblicazione, si deve porre in evidenza dove sono state apportate modifiche al documento originale. La Health Protection 

Agency (HPA) dovrà essere menzionata in ogni circostanza. 

La Health Protection Agency è una organizzazione indipendente che ha lo scopo di proteggere la salute della popolazione. 

Ad essa confluiscono esperienze professionali già appartenenti ad organizzazioni ufficiali. Maggiori informazioni riferibili alla 

HPA possono essere ottenute al sito www.hpa.org.uk. 

La Health Protection Agency è un’organizzazione che mira ad essere completamente in accordo con le direttive Caldicott. 

Ciò significa prendere ogni possibile precauzione per prevenire la diffusione non autorizzata di informazioni sui pazienti e di 

garantire che le informazioni relative agli stessi siano mantenute in condizioni di sicurezza 1 . 

Maggiori dettagli possono essere ottenuti dal sito web www.evaluations-standards.org.uk. Contributi allo sviluppo dei 

documenti possono essere forniti contattando l’indirizzo standards@hpa.org.uk. 

Per cortesia prendere nota che la bibliografia è attualmente formattata con il software Reference Manager. Se si modifica o si 

cancella il testo senza avere installato nel computer il Reference Manager, la bibliografia non sarà aggiornata automaticamente. 

Riferimento suggerito per questo documento: 

Health Protection Agency (2004). Investigation of eye swabs and canalicular pus. National Standard Method BSOP 2 

Emissione 4. http://www.hpa-standardmethods.org.uk/pdf_bacteriology.asp. 







INDICE 

STATO DEI METODI NAZIONALI STANDARD ………......................................……………..……………. 2 

INDICE ……………………………………….....……............................…………...................................….... 3 

PROCEDURA DI MODIFICA ……………………………………….....……............................…………….... 4 

SCOPO DEL DOCUMENTO ……………………………………………...........................……………........... 5 

INTRODUZIONE ……………………………………………………............................…………………………. 5 

INFEZIONI …………………………………………………………………............................……….............…. 5 

LIMITAZIONI ……………………………………………………….................................………………………. 7 

1.0 CONSIDERAZIONI SULLA SICUREZZA …………….........................…………………………..… 8 

1.1 RACCOLTA DEL CAMPIONE……………... ………………………………………………………..... 8 

1.2 TRASPORTO E CONSERVAZIONE DEL CAMPIONE……………………………………………... 8 

1.3 PROCEDURA ANALITICA SUL CAMPIONE ………..…………………………………………....... 8 

2.0 PRELIEVO DEL CAMPIONE ………...................…………………………...........................……..… 8 

2.1 TEMPO OTTIMALE PER IL PRELIEVO DEL CAMPIONE ……………………………………..... 8 

2.2 TIPO DI CAMPIONE APPROPRIATO E METODO DI PRELIEVO ...………………………....... 8 

2.3 QUANTITA’ E NUMERO APPROPRIATO DI CAMPIONI …………… ……………………......... 8 

3.0 TRASPORTO E CONSERVAZIONE DEL CAMPIONE ……………………............................…….. 9 

3.1 TEMPO FRA PRELIEVO DEL CAMPIONE E PROCEDURA ANALITICA ………...…..……… 9 

3.2 ACCORGIMENTI PARTICOLARI PER RIDURRE IL DETERIORAMENTO ……....……………. 9 

4.0 PROCEDURA SUL CAMPIONE ..………………………………………...........................…………… 9 

4.1 SELEZIONE DELLA PROVA ………….………………………………………………….………..... 9 

4.2 ASPETTO ………………..………………………………………………………………..………….... 9 

4.3 MICROSCOPIA ……………….………………………………………………………..…………..…. 9 

4.4 COLTURA E MODALITA’ DI RICERCA …………………………………………..……………...…. 8 

4.5 IDENTIFICAZIONE ………………………………………………………………...……………......… 11 

4.6 PROVE DI SENSIBILITA’ AGLI ANTIBIOTICI ……………......…………………………………..... 11 

5. 0 PROCEDURA DI REFERTAZIONE ……………………………...........................…………..………. 12 

5.1 MICROSCOPIA ………………. ………………………………………………………….…...……… 12 

5.2 TEMPO PER REFERTO MICROSCOPICO ………………………………………………………… 12 

5.3 COLTURA ……………………..............................................................…….……………………... 12 

6. 0 SEGNALAZIONI ALLA HPA (LOCALE ED AI SERVIZI NAZIONALI ED AL CENTRO CDSC 

PER LE INFEZIONI) ..…………………............................................................................................ 12 

BIBLIOGRAFIA ……………………………………………………………….............................……………… 13 







PROCEDURA DI MODIFICA 

Documento di riferimento controllato BSOP 2 

Titolo del documento controllato Procedura Operativa Standard per la ricerca su 

tamponi oculari e pus canalicolare 

Ciascun documento controllato possiede una registrazione separata con le correzioni specificate in modo 

dettagliato in questa Procedura di Modifica. Le precedenti modifiche sono disponibili presso la 

standards@hpa.org.uk. 

Sull’emissione di pagine nuove o rivedute ciascun documento controllato deve essere aggiornato dal proprietario 

del Laboratorio 

Modifica 

Numero/ 

Data 

5/ 

03.05.05 

Emissione no. 

Scartata 

Inserita 

Emissione no. 

4 4.1 1 

Pagina Sessione(i) interessate Modifica 

2 

4 

Prima pagina 

Stato del Documento 

Pagina della procedura di modifica 






E-mail: standards@hpa.org.uk 

Ridisegnata 

Revisionato 

Ridisegnata

PROCEDURE OPERATIVE STANDARD 

PER LE RICERCHE SU TAMPONI OCULARI 

E PUS CANALICOLARE 

Tipo di campione: Tamponi oculari 

Pus canicolare 

SCOPO DEL DOCUMENTO 

Questa SOP descrive le procedure e la ricerca batteriologica di campioni oculari con eccezione di quelli 

provenienti da casi di cheratite, endoftalmite, ipopion e da infezioni post chirurgiche: per questi campioni fare 

riferimento alla BSOP 52. Nuove tecniche di biologia molecolare sono attualmente disponibili per la diagnosi di 

infezione da Clamidia su tamponi oculari. Queste non sono comprese in questa SOP 

INTRODUZIONE 

Le infezioni dell’occhio sono causate da un’ampia varietà di microrganismi. Sebbene i tamponi oculari possono 

essere contaminati da organismi di origine cutanea, ogni microrganismo dovrebbe essere singolarmente valutato 

per successivi approfondimenti su indicazione clinica. 

Microrganismi esogeni possono giungere all’occhio con le mani, veicoli (lenti a contatto) danneggiamenti di tipo 

traumatico da corpo estraneo 2 , dopo intervento chirurgico 3 , o semplicemente per diffusione da zone adiacenti. 

INFEZIONI 

Le infezioni di media entità includono le congiuntiviti (infiammazione della congiuntiva) e le blefariti 

(infiammazione delle palpebre). Le congiuntiviti possono manifestarsi associate a blefariti (blefarocongiuntivite) o 

della cornea (cheratocongiuntiviti). Infezioni meno comuni e più severe includono le cheratiti (infiammazione della 

cornea) e le endoftalmiti (infezioni interne dell’occhio stesso). Si possono manifestare inoltre infezioni ematogene 

che diffondono da un focus sito altrove 4 Altre infezioni perioculari includono le dacrioadeniti (infiammazione delle 

ghiandole lacrimali) le dacriocistiti (infiammazione del sacco lacrimale) 5 , le canaliculiti (infezione dei punti e 

canalicoli lacrimali e le celluliti presettali ed orbitali. In caso di grave infezione oculare, per indagini accurate, 

possono essere richiesti campioni ottenuti con tecniche invasive; queste ultime sono riportate nella BSOP 52. 

Per la diagnosi di infezioni virali e da Clamidia sono richiesti tamponi separati in appropriati terreni di trasporto. 

Le infezioni oculari che si manifestano nelle prime quattro settimane di vita causate da Chlamydia trachomatis o 

Neisseria gonorrhoeae sono denunciate come ophtalmia neonatorum. 

I tamponi oculari possono provenire da pazienti che manifestano ogni tipologia clinica precedentemente 

descritta, ma possono richiedere manipolazioni differenti in funzione del tipo e della gravità dell’infezione. 

Blefarite: è associata a 6, 7 

• Staphylococcus aureus 

• Staphylococcus epidermidis 

• Specie Corynebacterium 

• Propionibacterium acnes 







Questi microrganismi possono comunque essere isolati da palpebre di individui sani e queste colture 

necessitano di una accurata interpretazione. 

Congiuntiviti: possono essere acute o croniche. La congiuntiva è il tessuto oculare più frequentemente infettato 

e le sue infezioni sono una delle cause più comuni di arrossamento o di occhi appiccicosi. L’eziologia batterica 

comune include: 

• S. aureus 

• Streptococcus pneumonite 

• Haemophilus influenzae 

Agenti causali meno comuni includono gli streptococchi dei gruppi A, C e G di Lancefield 8 , Neisseria cinerea 9 , 

P. acnes, specie Moraxella ed altri bastoncini Gram negativi ed anaerobi quali specie Eubacterium e specie 

Peptostreptococcus. 10, 11 La Moraxella catarrhalis causa congiuntiviti acute e la Moraxella lacunata infezioni di 

tipo cronico. 10 Molti di questi microrganismi possono comunque essere isolati dalle aree limitrofe (cute) e 

pertanto, l’interpretazione ed il significato della loro presenza è alquanto difficile. 

Le congiuntiviti causate dalla specie Neisseria sono insolite nei Paesi sviluppati. Il patogeno oculare più 

importante appartenente a questo genere è la Neisseria gonorrhoeae. Negli adulti è associata ad una 

contemporanea infezione genitale. Nei neonati rappresenta una importante causa di oftalmite neonatale, che in 

caso di mancato trattamento può condurre alla cecità. La Neisseria meningitidis è risultata inoltre implicata in 

congiuntiviti iperacute. Il trattamento di queste è importante per ridurre il rischio di disseminazione e la profilassi 

con rifampicina può essere indicata per i famigliari esposti a contatto ed i pazienti al fine di eliminare i portatori 

faringei. Tenere conto della immunizzazione contro le malattie infettive 12 . 

La congiuntivite nei neonati è causata dai patogeni comunemente isolati negli adulti 11,13 . Microrganismi 

addizionali includono: 

• N. gonorrhoeae 

• Haemophilus parainfluenzae 

• Streptococchi di gruppo B e D di Lancefield 

• Enterobacteriaceae come Klebsiella pneumoniae e Proteus mirabilis 

• Pseudomonas aeruginosa 

Congiuntiviti da Clamidie e da virus possono essere riscontrate. Le inclusioni congiuntivali ed il tracoma sono 

causati da diversi sierotipi di Chlamydia trachomatis. Il tracoma è associato ai sierotipi A-C. Questa evenienza si 

manifesta nei Paesi sottosviluppati, mentre le inclusioni congiuntivali correlate ai sierotipi D-K, si manifestano 

nelle comunità urbane dei Paesi sviluppati 14 . Questi sierotipi sono associati alla trasmissione sessuale. La causa 

più frequente delle congiuntiviti virali è imputabile agli adenovirurs. 

Le specie di Acanthamoeba possono causare cheratiti severe, di solito in portatori di lenti a contatto o in caso di 

lesioni traumatiche dell’occhio. Questo protozoo può essere isolato con raschiatura della cornea, come anche da 

lenti a contatto e dal loro contenitore (consultare SOP 52 e SOP 31). 

Celluliti orbitali sono infezioni del tessuto orbitale. Possono essere la conseguenza di un trauma, intervento 

chirurgico o estensione di infezioni paranasali. Si tratta di una infezione grave che può produrre cecità, trombosi 

settica del seno cavernoso o infezioni endocraniche. I patogeni di più frequente riscontro negli adulti sono lo S. 

aureus, streptococchi e anaerobi. Nei bambini risulta ancora prevalente l’H. influenzae, ma i ceppi capsulati (tipo 

b) sono di raro isolamento. Streptococchi, stafilococchi, peptostreptococchi e P. aeruginosa possono provocare 

necrosi 15 . I tamponi oculari sono di utilità limitata nella determinazione delle celluliti orbitarie e presettali. 







In condizioni ottimali gli aspirati dai tessuti coinvolti dovrebbero essere prelevati e trattati secondo le procedure 

riportate nella BSOP 26. A fini diagnostici sono utili anche le emocolture (consultare BSOP 37). 

Canaliculiti sono affezioni rare. Le infezioni presentano di solito un andamento cronico e sono causate da 

actinomiceti anaerobi quali Actinomyces israelii o da Propionibacterium propionicus 16, 17 . Per la diagnosi sono 

preferibili i campioni da tamponi di pus canalicolare a quelli prelevati con tampone oculare. 

Per ulteriori informazioni su infezioni di tipo grave, includenti l’accertamento per specie di Acanthamoeba, 

consultare la BSOP 52. 

LIMITAZIONI 

I tamponi superficiali, sebbene non rappresentino la condizione ideale, possono di solito essere la sola soluzione 

disponibile. Dovrebbero essere raccolti, quando possibile, campioni profondi. 







1.0 CONSIDERAZIONII SULLA SICUREZZA 

1.1 RACCOLTA DEL CAMPIONE 

N/D 

1.2 TRASPORTO E CONSERVAZIONE DEL CAMPIONE 

Tamponi 

Contenitori di plastica chiusi 

Pus canalicolare 

Contenitore impermeabile sterile in sacchetto di plastica chiuso 

1.3 PROCEDURA ANALITICA SUL CAMPIONE 

18 - 27 

Livello di contenimento 2, tranne che per infezioni da microrganismi di Gruppo di Rischio 3, quali M. 

tuberculosis, brucellosi, o in caso di sospetta micosi esotica da importazione, in questo caso tutte le 

manipolazioni devono essere eseguite in cabina microbiologica di sicurezza con Contenimento di Livello 

3 

NOTA 1: Tutte le manipolazioni su isolati sospetti per N. meningitidis che si ritiene possano generare 

aerosol devono essere eseguite in cabina microbiologica di sicurezza 18 

Fare riferimento alla linea guida corrente sulla sicurezza delle manipolazioni di tutti i microrganismi 

presentati in questa SOP 

Le linee guida precedentemente esplicitate devono essere supplementate con la COSHH locale e con la 

valutazione del rischio 

E’ essenziale il rispetto delle regolamentazioni postali e di trasporto 

2.0 PRELIEVO DEL CAMPIONE 

2.1 TEMPO OTTIMALE DI PRELIEVO DEL CAMPIONE 

Prima della terapia antimicrobica se possibile e preferibilmente prima dell’applicazione di anestetici locali 

2.2 TIPO DI CAMPIONE E METODO DI PRELIEVO 

Il pus disponibile deve essere raccolto come pure campioni dell’area interessata 

Devono essere raccolti campioni separati in terreni di trasporto idonei per la ricerca di virus e clamidie. 

Strisci fissati in acetone o alcool per esami di immunofluorescenza sono idonei anche per la ricerca 

della clamidia 

Per ricerche di Acanthamoeba consultare BSOP 52 

2.3 QUANTITA’ ADEGUATA E NUMERO APPROPRIATO DI CAMPIONI 

N/D 







3.0 TRASPORTO E CONSERVAZIONE DEL CAMPIONE 

3.1 TEMPO FRA PRELIEVO DEL CAMPIONE E PROCEDURA ANALITICA 

I campioni devono essere trasportati e processati il più presto possibile 

3.2 ACCORGIMENTI SPECIALI PER RIDURRE IL DETERIORAMENTO 

I tamponi devono essere inviati in terreno di trasporto di Amies con carbone 28 

Se la semina è ritardata, si preferisce la conservazione refrigerata alla conservazione a temperatura ambiente. Si 

devono evitare ritardi superiori a 48 ore. 

4.0 PROCEDURA SUL CAMPIONE 

4.1 SELEZIONE DELLA PROVA 

N/D 

4.2 ASPETTO 

N/D 

4.3 MICROSCOPIA 

Colorazione Gram dei tamponi oculari (solo per neonati con occhi appiccicosi ed infezioni gravi) e pus 

canalicolare 

Dal tampone o dal pus preparare uno striscio sottile per la colorazione di Gram su un vetrino da 

microscopio pulito 

Nota 2: Il metodo per la procedura di colorazione è riportato in una SOP separata ( BSOP SP 8) 

4.4 COLTURA E RICERCHE 

4.4.1 Pretrattamento 

N/D 

4.4.2 Procedura sul campione 

Inoculare ciascuna piastra con il tampone o con il materiale purulento (consultare BSOP 54) 

Diffondere l’inoculo con un’ansa sterile per ottenere colonie separate 

Per metodi di inoculo approntati al letto del malato fare riferimento ai protocolli locali 







4.4.3 Terreni di coltura, condizioni e microrganismi 

Per tutti i campioni: 

Aspetti clinici/ Terreni 

Incubazione 

condizioni standard 

Temp C° Atmosfera Tempo 

Blefariti 

Congiuntiviti 

Occhio appiccicoso 

Se non ci sono notizie 

cliniche disponibili, 

trattare come un 

“occhio appiccicoso” 

Per tutte queste situazioni aggiungere 

Aspetti clinici/ 

condizioni 

Occhio appiccicoso in 

Consultori per malattie 

genito urinarie 

Neonati 

Immunocompromessi 

Blefarite cronica 

Canaliculite † 

Cellulite orbitale 

Dacriocistite† 

Dacrioadenite† 

Cheratite‡ 

Endoftalmite ‡ 

Ipopion‡ 

Postoperatorio‡ 

Post trauma 

Se il Gram dello striscio 

evidenzia bastoncini 

Gram negativi 

Agar cioccolato 35 -37 5 – 10% CO 2 

Agar sangue 35-37 5 – 10% CO 2 

Terreni 

standard 

Agar selettivo 

GC 

Agar 

Sabouraud 

Agar per 

anaerobi 

esigenti 

Agar 

Sabouraud 

Incubazione 

Temp C° Atmosfera Tempo 

35 -37 5 – 10% CO 2 

Lettura 

colture 






E-mail: standards@hpa.org.uk 

Microrganismo (i) 

ricercati 

40 – 48 ore giornaliera H. influenzae 

Streptococchi di 

gruppo A, C e G di 

Lancefield 

Specie Moraxella 

N. gonorrhoeae 

N. meningitidis 

P. aeruginosa 

S. aureus 

S. pneumoniae 

Altri microrganismi 

(consultare la 

sezione 4.5.1) 

40 – 48 ore giornaliera 

Lettura 

colture 

Microrganismo (i) 

ricercati 

40 – 48 ore ⊇ 40 ore N. gonorrhoeae 

28 - 30 aria 40 – 48* ore ⊇ 40 ore Funghi 

35 -37 anaerobica 40 – 48* ore 

10 giorni 

⊇ 40 ore 

da ⊇ 40 ore 

a 7 – 10 giorni 

Anaerobi 

Actinomiceti 

28 – 30 aria 40 – 48* ore ⊇ 40 ore Funghi 

CLED Agar 35 – 37 aria 16 – 24 ore ⊇ 16 ore Enterobacteriaceae 

Altri microrganismi da considerare – Specie Chlamydia e virus 

* l’incubazione può essere protratta 5 giorni ; in questi casi le piastre devono essere lette a ⊇ 40 ore e poi lasciate 

nell’incubatore fino al 5° giorno 

† Prolungare il periodo di incubazione a 10 giorni se il sospetto clinico o se la colorazione di Gram è positiva per presenza di 

bastoncini Gram positivi ramificati 

‡ Fare riferimento alla BSOP 52

4.5 IDENTIFICAZIONE 

4.5.1 LIVELLO MINIMO IN LABORATORIO 

Actinomycetes Livello “actinomicetes 

Anaerobi Livello “ anaerobi” 

Stafilococchi coagulasi – negativi Livello “ coagulasi – negativo” 

Difteroidi Livello “ difteroide” 

Enterobacteriaceae Livello “coliformi” 

Enterococchi Livello specie 

Funghi Livello genere 

Haemophilus Livello specie 

Streptococchi di gruppo A, B, C e G Livello gruppo di Lancefield 

di Lancefield 

Moraxella Livello specie 

Neisseria Livello specie 

P. aeruginosa Livello specie 

Pseudomonas Livello “pseudomonas" 

S. aureus Livello specie 

S. pneumoniae Livello specie 

Streptococchi α emolitici Livello “α emolitici” 

Leviti Livello “lieviti” 

I microrganismi possono successivamente essere identificati su indicazione clinica od epidemiologica 

Nota 2: Tutte le manipolazioni su isolati sospetti per N. meningitidis che si ritiene possano generare 

aerosol devono essere eseguite in cabine di sicurezza 18 

4.5.2 Inviare a Laboratori di riferimento 

N. meningitidis per la caratterizzazione di ceppo e prove di sensibilità agli antimicrobici 

Actinomiceti per la caratterizzazione di ceppo e prove di sensibilità agli antimicrobici 

Funghi che richiedono l’identificazione e/o prove di sensibilità 

Isolati in corso di epidemie e quando indicato per approfondimenti epidemiologici 

Microrganismi con insolite ed inattese resistenze, ove sussista un problema di laboratorio o clinico o 

anomalie che richiedano approfondimenti 

4.6 PROVE DI SENSIBILITA’ AGLI ANTIBIOTICI 

Fare riferimento al SOP sulle prove di sensibilità (BSOP 45) 







5.0 PROCEDURE DI REFERTAZIONE 

5.1 ESAME MICROSCOPICO 

Descrivere i globuli bianchi ed i microrganismi rilevati. 

5.2 TEMPO PER REFERTO MICROSCOPICO 

Esame microscopico urgente deve essere trasmesso per telefono o per via elettronica 

Referto scritto 16 – 72 ore 

5.3 COLTURE 

Refertare: 

microrganismi isolati clinicamente significativi o 

altri tipi di crescita, come “Nessuna crescita significativa” o 

assenza di crescita 

5.3.1 Tempo di refertazione esame colturale 

Risultati clinicamente urgenti: telefonare quando disponibili o inviare per via elettronica 

Referto scritto: 16 – 72 ore, segnalando, se appropriato, che verrà inviato un referto successivo 

5.3.2 Prove di sensibilità agli antibiotici 

Refertare le sensibilità come clinicamente suggerito 

6.0 SEGNALAZIONI ALLA HPA 29 (LOCALE ED AI SERVIZI 

NAZIONALI ED AL CENTRO CDSC PER LE INFEZIONI) 

Fare riferimento a: 

Singola SOP per l’identificazione del microrganismo 

Pubblicazioni della Health Protection Agency: 

“ Reporting to the CDR: A guide for laboratories" 

“ Hospital infection control: Guidance on the control of infection in hospital” 

Fare riferimento alle linee guida attuali del CDSC ed alle indicazioni del COSURV 

Linee guida locali 

L’isolamento di N. meningitidis deve essere segnalato al CCDC 

L’oftalmite dei neonati è una malattia da notificare 







BIBLIOGRAFIA 

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ricerca su tamponi oculari e pus canalicolare - italbioforma

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