Info - Leica Biosystems

• Preparater (før og etter fiksering) og alt materiale som eksponeres for dem, skal behandles som potensielt smittefarlig og kasseres isamsvar med gjeldende forholdsregler 2 . Hold aldri pipetter med reagens i munnen, og unngå at hud og slimhinner kommer i kontaktmed reagenser og prøver. Hvis reagenser eller prøver kommer i kontakt med følsomme områder, skal de skylles med rikelig vann.Kontakt lege.• Følg nasjonale og lokale forskrifter for kassering av komponenter som kan være giftige.• Reduser mikrobiell kontaminering av reagensene til et minimum, ellers kan det forekomme økt uspesifisert farging.• Gjenfinning, inkubasjonstider eller temperaturer som er annerledes enn det som er angitt, kan gi unøyaktige resultater. Slikeendringer må valideres av brukeren.BruksanvisningDet primære antistoffet CD10 (56C6) er blitt utviklet for bruk med det automatiserte BOND-systemet (herunder Leica BOND-MAXsystemetog Leica BOND-III-systemet) i kombinasjon med Bond Polymer Refine Detection. Anbefalt fargeprotokoll for Product nameprimært antistoff er IHC Protocol F. Varmeindusert epitop gjenvinning er anbefalt ved bruk av Bond Epitope Retrieval Solution 2 i 20minutter.Forventede resultaterNormalt vevKlon 56C6 detekterer CD10-antigenet på overflaten av normale tidlige stamceller, umodne B-celler i benmarg og germinale sentre medB-celler i lymfevev. CD10 er også oppdaget på ulike ikke-lymfoide celler og vev, for eksempel myoepitelceller i bryst, gallekapillærer,fibroblaster, med spesielt stor ekspresjon på børstesøm i nyre-og tarmepitel. (Totalt antall evaluerte normale tilfeller = 85).TumorvevKlon 56C6 farget 26/116 diffuse storcellede B-cellelymfomer, 10/15 follikulære lymfomer, 1/12 kroniske lymfocytære lymfomer, 1/1 akuttB-lymfoblastisk lymfom, 2/2 seminomer, 2/2 adenokarsinomer i kolon, 1/2 adenokarsinomer i rektum, 1/2 nyrecellekarsinomer, 1/1choroid plexus papillom i hjernen, 1/1 plateepitelkarsinom i larynx, 1/1 fibromatose i bløtvev, 1/1 ikke-småcellet karsinom i lunge, 1/1metastatisk karsinom i lever og 1/1 dermatofibrosarkom. Ingen farging ble observert ved Hodgkins sykdom (0/27), mantelcellelymfomer(0/7), anaplastiske storcellede T-cellelymfomer (0/7), angioimmunoblastiske T-cellelymfomer (0/4), T/NK-cellelymfomer (0/3), diffuseT-cellelymfomer (0/2), et primitivt akutt B/T-lymfoblastisk lymfom (0/1), et perifert T-cellelymfom (0/1), et T-cellelymfom (0/1), etmarginalsonelymfom (0/1), ovarietumorer (0/4), thyroideatumorer (0/4), tumorer i livmorhals (0/2), plateepitelkarsinomer i tunge (0/2),plateepitelkarsinomer i spiserør (0/2), infiltrerende duktale brystkarsinomer (0/2), adenokarsinomer i mage (0/2), metastatiske karsinomerav ukjent opprinnelse (0/2), hepatocellulære karsinomer i lever (0/2), et kolangiokarsinom i lever (0 / 1), et anaplastisk astrocytom ihjernen (0/1), et atypisk karsinoid i thymus (0/1), et ganglionevrom i bløtvev (0/1), et adenokarsinom i lunge (0/1), et plateepitelkarsinom ilunge (0/1), et storcellet karsinom i lunge (0/1) eller et plateepitelkarsinom i hud (0/1). (Totalt antall evaluerte unormale tilfeller = 242).CD10 (56C6) anbefales til bruk som en del av et antistoffpanel for å avhjelpe diagnostisering av lymfomer.Produktspesifikke BegrensningerCD10 (56C6) er optimalisert av Leica Biosystems til bruk sammen med Bond Polymer Refine Detection og BOND tilleggsreagenser.Brukere som avviker fra de anbefalte testprosedyrene, må selv ta ansvar for tolkningen av pasientresultater i slike situasjoner.Protokolltidene kan variere grunnet variasjon i vevsfiksering og effektiviteten til antigenforsterkningen, og må dermed bestemmesempirisk. Negative reagenskontroller bør brukes ved optimalisering av gjenvinningsforhold og protokolltider.FeilsøkingSe referanse nr. 3 for opprettingstiltak.Ta kontakt med den lokale forhandleren eller regionkontoret til Leica Biosystems for å rapportere om unormal farging.Ytterligere opplysningerDu finner mer informasjon om immunfarging med BOND-reagenser i “Bruk av BOND-reagenser” i brukerdokumentasjonen for BONDsystemetunder overskriftene Testprinsipper, Materiell som kreves, Preparering av prøver, Kvalitetskontroll, Analysekontroll, Tolkning avfarging, Oversikt over symboler og Generelle begrensninger.Bibliografi1. Clinical Laboratory Improvement Amendments of 1988, Final Rule 57 FR 7163 February 28, 1992.2. Villanova PA. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectiousdiseases transmitted by blood and tissue; proposed guideline. 1991; 7(9). Order code M29-P.3. Bancroft JD and Stevens A. Theory and Practice of Histological Techniques. 4th Edition. Churchill Livingstone, New York. 1996.4. Ordi J, Romagosa C, Tavassoli FA et al. CD10 expression in epithelial tissues and tumours of the gynecologic tract: a useful markerin diagnosis of mesonephric, trophoblastic and clear cell tumors. American Journal of Surgical Pathology 2003 27(2), 178–186.5. Kristiansen G, Schluns K, Yongwei Y et al. CD10 expression in non-small cell lung cancer. Annals of Cellular Pathology 2002 24(1),41–46.6. Sumathi V P and McCluggage WG. CD10 is useful in demonstrating endometrial stroma at ectopic sites and in confirming diagnosisof endometriosis. Journal of Clinical Pathology 2002 55, 391–392.7. Dunphy CH, Polsky JM, Lance Evans H et al. Paraffin immunoreactivity of CD10, CDw75 and Bcl-6 in follicle center cell lymphoma.Leukaemia and Lymphoma 2001 41(5–6), 585–592.8. Eshoa C, Perkins S, Kampalath et al. Decreased CD10 expression in grade III and in interfollicular infiltrates of follicular lymphomas.American Journal of Clinical Pathology 2001 115(6), 862–867.9. Tajima Y, Shimoda T, Nakanishi Y et al. Gastric and intestinal phenotypic marker expression in gastric carcinomas and its prognosticsignificance: immunohistochemical analysis of 136 lesions. Oncology 2001 61(3), 212–220.10. Bavikatty NR, Ross CW, Finn WG et al. Anti-CD10 immunoperoxidase staining of paraffin-embedded acute leukemias: comparisonwith flow cytometric immunophenotyping. Human Pathology 2000 31(9), 1051–1054.PA0270Page 33