Estación Experimental de Aula Dei - CSIC - Consejo Superior de ...
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2.8.2 Fluorescencia<br />
87<br />
Materiales y Métodos<br />
Los fluoróforos <strong>de</strong> la ca<strong>de</strong>na peptídica <strong>de</strong> las proteínas son el triptófano y, en<br />
menor medida, la tirosina y la fenilalanina. Al irradiar la proteína a la longitud <strong>de</strong> onda<br />
a<strong>de</strong>cuada estos residuos absorben energía (se excitan), relajándose a continuación por<br />
diversos mecanismos, en particular por emisión <strong>de</strong> luz <strong>de</strong> menor frecuencia<br />
(fluorescencia). Esta diferencia entre la frecuencia <strong>de</strong> absorción y <strong>de</strong> emisión se<br />
<strong>de</strong>nomina “Stokes shift”. Algunos cofactores <strong>de</strong> las cromoproteínas también pue<strong>de</strong>n<br />
absorber luz y emitirla en forma <strong>de</strong> fluorescencia.<br />
La afinidad <strong>de</strong> la unión <strong>de</strong> Cu + a la proteína recombinante pura GmCCS (2 μM)<br />
se analizó también mediante fluorescencia. La titulación se llevó a cabo en tampón A<br />
(apartado 2.8.1). Antes <strong>de</strong> la titulación, las disoluciones <strong>de</strong> trabajo se incubaron varios<br />
min bajo una atmósfera <strong>de</strong> argón. Se midió la fluorescencia intrínseca <strong>de</strong>l triptófano<br />
excitando a 290 nm y registrando el espectro <strong>de</strong> 300 a 400 nm. Como blanco se utilizó<br />
el tampón. Los espectros <strong>de</strong> fluorescencia se obtuvieron a 25 ºC en un<br />
espectrofluorímetro Aminco-Bowman Series 2. Este trabajo se ha realizado en<br />
colaboración con la profesora Milagros Medina <strong>de</strong>l Departamento <strong>de</strong> Bioquímica y<br />
Biología Molecular y Celular <strong>de</strong> la Universidad <strong>de</strong> Zaragoza.<br />
2.8.3 Dicroísmo circular<br />
La técnica <strong>de</strong> dicroísmo circular (DC) mi<strong>de</strong> la diferencia entre la absorbancia <strong>de</strong><br />
luz polarizada circularmente a la izquierda y a la <strong>de</strong>recha. Cualquier región <strong>de</strong>l espectro<br />
don<strong>de</strong> la proteína o sus cofactores absorban luz pue<strong>de</strong> presentar, en principio, señal <strong>de</strong><br />
DC. En el UV-lejano se pue<strong>de</strong> observar la organización espacial <strong>de</strong> los enlaces<br />
peptídicos (los distintos elementos <strong>de</strong> estructura secundaria presentan espectros<br />
diferentes en la zona <strong>de</strong> 200 a 250 nm). En el UV-cercano se mi<strong>de</strong> la asimetría <strong>de</strong> los<br />
residuos aromáticos inducida por el entorno. Por último, en el Vis se pue<strong>de</strong>n observar<br />
los cambios en el entorno <strong>de</strong> los cofactores que absorban en esta zona <strong>de</strong>l espectro.<br />
Se midió el DC en el UV-lejano entre 190 y 250 nm, utilizando una cubeta <strong>de</strong><br />
0´1 cm a 25 ºC en un espectropolarímetro Chirascan (Applied Photophysics Ltd). Este<br />
trabajo se ha realizado en colaboración con la profesora Milagros Medina <strong>de</strong>l<br />
Departamento <strong>de</strong> Bioquímica y Biología Molecular y Celular <strong>de</strong> la Universidad <strong>de</strong><br />
Zaragoza. Para ello, se dializó la proteína recombinante pura GmCCS (14 μM) en<br />
tampón C. Las disoluciones utilizadas se incubaron durante varios min bajo una