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Estación Experimental de Aula Dei - CSIC - Consejo Superior de ...

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Materiales y Métodos<br />

2.5 TÉCNICAS INMUNOQUÍMICAS<br />

2.5.1 Western Blot<br />

Una vez separadas las proteínas mediante electroforesis SDS-PAGE (apartado<br />

2.4.2), éstas se transfirieron a una membrana <strong>de</strong> nitrocelulosa (Trans-blot transfer<br />

medium, BioRad) para los métodos <strong>de</strong> revelado colorimétricos con la peroxidasa y la<br />

fosfatasa alcalina o a una membrana <strong>de</strong> PVDF (Pall Corporation) para el método <strong>de</strong><br />

revelado quimioluminiscente. La membrana <strong>de</strong> nitrocelulosa se activó sumergiéndose<br />

unos segundos en H2O milliQ antes <strong>de</strong> equilibrarse con el tampón <strong>de</strong> transferencia, la<br />

membrana <strong>de</strong> PVDF se activó <strong>de</strong> la misma manera pero se utilizó metanol en lugar <strong>de</strong><br />

H2O milliQ para su activación. Estas proteínas se <strong>de</strong>tectaron mediante anticuerpos<br />

específicos (Tabla 2-4). Para ello, tras <strong>de</strong>sarrollar la electroforesis, el gel sin teñir se<br />

dispuso junto a la membrana en el equipo <strong>de</strong> transferencia (Mini Trans-blot, BioRad).<br />

Tanto el gel como la membrana, previamente hidratada, se colocaron entre dos papeles<br />

Whatman y dos esponjas, todo ello empapado en tampón TBS. Los papeles Whatman y<br />

la membrana se recortaron con las dimensiones exactas <strong>de</strong>l gel para que la transferencia<br />

transcurriera eficientemente. La transferencia se llevó a cabo a un voltaje constante <strong>de</strong><br />

100 V durante 90 min en presencia <strong>de</strong>l tampón <strong>de</strong> transferencia.<br />

Una vez realizada la transferencia, la membrana se incubó con el anticuerpo<br />

específico para la proteína que se <strong>de</strong>seaba <strong>de</strong>tectar. Este anticuerpo, <strong>de</strong>nominado<br />

anticuerpo primario es reconocido a su vez por un anticuerpo secundario. El anticuerpo<br />

secundario se encuentra conjugado con una molécula que permite la <strong>de</strong>tección <strong>de</strong>l<br />

complejo formado por la proteína <strong>de</strong> interés. En nuestro caso se han utilizado dos tipos<br />

<strong>de</strong> anticuerpos secundarios; conjugados con peroxidasa y conjugados con fosfatasa<br />

alcalina biotinada (Tabla 2-4). El tipo <strong>de</strong> método <strong>de</strong> revelado realizado <strong>de</strong>pendió <strong>de</strong>l<br />

tipo <strong>de</strong> anticuerpo secundario utilizado y <strong>de</strong> la sensibilidad requerida. Para el anticuerpo<br />

secundario conjugado con peroxidasa se realizaron el método <strong>de</strong> revelado colorimétrico<br />

y el quimioluminiscente, siendo este segundo más sensible. Para el anticuerpo<br />

secundario conjugado con la fosfatasa alcalina biotinada se realizó el método <strong>de</strong><br />

revelado colorimétrico correspondiente. A continuación, se <strong>de</strong>tallan los protocolos<br />

seguidos para cada uno <strong>de</strong> estos revelados.<br />

Tampón <strong>de</strong> transferencia: 14´4 g/l Glicina, 3´03 g/l Tris-HCl, 200 ml Metanol.<br />

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