Estación Experimental de Aula Dei - CSIC - Consejo Superior de ...
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Materiales y Métodos<br />
2.5 TÉCNICAS INMUNOQUÍMICAS<br />
2.5.1 Western Blot<br />
Una vez separadas las proteínas mediante electroforesis SDS-PAGE (apartado<br />
2.4.2), éstas se transfirieron a una membrana <strong>de</strong> nitrocelulosa (Trans-blot transfer<br />
medium, BioRad) para los métodos <strong>de</strong> revelado colorimétricos con la peroxidasa y la<br />
fosfatasa alcalina o a una membrana <strong>de</strong> PVDF (Pall Corporation) para el método <strong>de</strong><br />
revelado quimioluminiscente. La membrana <strong>de</strong> nitrocelulosa se activó sumergiéndose<br />
unos segundos en H2O milliQ antes <strong>de</strong> equilibrarse con el tampón <strong>de</strong> transferencia, la<br />
membrana <strong>de</strong> PVDF se activó <strong>de</strong> la misma manera pero se utilizó metanol en lugar <strong>de</strong><br />
H2O milliQ para su activación. Estas proteínas se <strong>de</strong>tectaron mediante anticuerpos<br />
específicos (Tabla 2-4). Para ello, tras <strong>de</strong>sarrollar la electroforesis, el gel sin teñir se<br />
dispuso junto a la membrana en el equipo <strong>de</strong> transferencia (Mini Trans-blot, BioRad).<br />
Tanto el gel como la membrana, previamente hidratada, se colocaron entre dos papeles<br />
Whatman y dos esponjas, todo ello empapado en tampón TBS. Los papeles Whatman y<br />
la membrana se recortaron con las dimensiones exactas <strong>de</strong>l gel para que la transferencia<br />
transcurriera eficientemente. La transferencia se llevó a cabo a un voltaje constante <strong>de</strong><br />
100 V durante 90 min en presencia <strong>de</strong>l tampón <strong>de</strong> transferencia.<br />
Una vez realizada la transferencia, la membrana se incubó con el anticuerpo<br />
específico para la proteína que se <strong>de</strong>seaba <strong>de</strong>tectar. Este anticuerpo, <strong>de</strong>nominado<br />
anticuerpo primario es reconocido a su vez por un anticuerpo secundario. El anticuerpo<br />
secundario se encuentra conjugado con una molécula que permite la <strong>de</strong>tección <strong>de</strong>l<br />
complejo formado por la proteína <strong>de</strong> interés. En nuestro caso se han utilizado dos tipos<br />
<strong>de</strong> anticuerpos secundarios; conjugados con peroxidasa y conjugados con fosfatasa<br />
alcalina biotinada (Tabla 2-4). El tipo <strong>de</strong> método <strong>de</strong> revelado realizado <strong>de</strong>pendió <strong>de</strong>l<br />
tipo <strong>de</strong> anticuerpo secundario utilizado y <strong>de</strong> la sensibilidad requerida. Para el anticuerpo<br />
secundario conjugado con peroxidasa se realizaron el método <strong>de</strong> revelado colorimétrico<br />
y el quimioluminiscente, siendo este segundo más sensible. Para el anticuerpo<br />
secundario conjugado con la fosfatasa alcalina biotinada se realizó el método <strong>de</strong><br />
revelado colorimétrico correspondiente. A continuación, se <strong>de</strong>tallan los protocolos<br />
seguidos para cada uno <strong>de</strong> estos revelados.<br />
Tampón <strong>de</strong> transferencia: 14´4 g/l Glicina, 3´03 g/l Tris-HCl, 200 ml Metanol.<br />
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