La fuerza protón-motriz
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CAPíTULo 21<br />
21.1 Un gradiente de protones<br />
impulsa la síntesis de ATP<br />
21.2 <strong>La</strong>s lanzaderas permiten el<br />
movimiento a través de las<br />
membranas mitocondriales<br />
21.3 <strong>La</strong> respiración celular<br />
está regulada por la<br />
necesidad de ATP<br />
<strong>La</strong> <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong><br />
Itaipu Binacional, en la frontera entre Brasil y Paraguay, es una de las centrales hidroeléctricas<br />
más grandes del mundo. <strong>La</strong> presa transforma la energía del agua que cae en energía eléctrica.<br />
Análogamente, la enzima ATP sintasa mitocondrial transforma la energía de los protones que<br />
caen a favor de un gradiente en ATP. [Christian Heeb/AgeFotostock.]<br />
En el capítulo 20 consideramos el flujo de electrones desde el NADH al O2, un proceso<br />
exergónico.<br />
NADH 1 ½ O2 1 H1 N H2O 1 NAD1 DG° 5 2 220,1 kJ mol 21 (2 52,6 kcal mol 21 )<br />
Durante el flujo de electrones se bombean protones desde la matriz mitocondrial<br />
hacia el exterior de la membrana mitocondrial interna, creando un gradiente de protones.<br />
Básicamente, la energía se transforma. Esta situación es rica en energía porque<br />
la entropía de los protones se reduce. A continuación, veremos cómo la energía del<br />
gradiente de protones impulsa la síntesis de ATP.<br />
ADP 1 P i 1 H 1 N ATP 1 H 2O<br />
DG° 5 1 30,5 kJ mol 21 (1 7,3 kcal mol 21 )<br />
367
368 21 <strong>La</strong> <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong><br />
✓✓3 Describir cómo se convierte<br />
la <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong> en ATP.<br />
Hay quien piensa que, junto con la<br />
determinación de la estructura del DNA,<br />
el descubrimiento de que la síntesis de<br />
ATP está impulsada por un gradiente<br />
de protones es uno de los dos mayores<br />
avances de la biología en el siglo XX.<br />
Sin embargo, el postulado inicial<br />
de la teoría quimiosmótica de Mitchell<br />
no tuvo un caluroso recibimiento,<br />
ni mucho menos. Efraim Racker,<br />
uno de los primeros investigadores<br />
de la ATP sintasa, recuerda que<br />
algunos consideraban a Mitchell como<br />
un bufón de la corte cuyo trabajo era<br />
intranscendente. En 1978, Peter Mitchell<br />
fue galardonado con el Premio Nobel<br />
de Química por sus contribuciones<br />
al conocimiento de la fosforilación<br />
oxidativa.<br />
21.1 Un gradiente de protones impulsa la síntesis de ATP<br />
<strong>La</strong> síntesis de ATP se lleva a cabo mediante un ensamblaje molecular localizado en la<br />
membrana mitocondrial interna. En un principio, a este complejo enzimático se le denominó<br />
ATPasa mitocondrial o F 1F 0ATPasa porque se descubrió gracias a su catálisis de la reacción<br />
inversa, la hidrólisis de ATP. Es mejor denominarla ATP sintasa, ya que este nombre<br />
pone de relieve su función real en la mitocondria. También se la denomina Complejo V.<br />
¿Cómo se acopla la oxidación del NADH a la fosforilación del ADP? Primero<br />
se sugirió que la transferencia de electrones daba lugar a la formación de un intermediario<br />
covalente rico en energía que actuaba como un compuesto con un elevado<br />
potencial de transferencia de fosforilos. Este compuesto podría, de forma análoga a<br />
la fosforilación a nivel de sustrato que tiene lugar en la glicolisis (p. 277), transferir<br />
un grupo fosforilo al ADP para formar ATP. Una propuesta alternativa establecía que<br />
la transferencia de electrones ayuda a la formación de una conformación proteica<br />
activada que, posteriormente, impulsaría la síntesis de ATP. Durante décadas, la búsqueda<br />
de este tipo de intermediarios ha resultado infructuosa.<br />
En 1961, Peter Mitchell sugirió un mecanismo radicalmente distinto, la hipótesis<br />
quimiosmótica. Propuso que el transporte de electrones y la síntesis de ATP están<br />
acoplados por medio de un gradiente de protones a través de la membrana mitocondrial<br />
interna. En su modelo, la transferencia de electrones a través de la cadena respiratoria<br />
provoca el bombeo de protones desde la matriz al lado citoplasmático de la membrana<br />
mitocondrial interna. <strong>La</strong> concentración de H 1 en la matriz disminuye y se genera<br />
un campo eléctrico que es negativo en el lado de la matriz (Figura 21.1). Posteriormente,<br />
los protones retornan a la matriz para igualar la distribución. <strong>La</strong> idea de Mitchell<br />
era que este flujo de protones es el que impulsa la síntesis de ATP por parte de<br />
la ATP sintasa. <strong>La</strong> desigual distribución de los protones, rica en energía, se denomina<br />
<strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong> y se puede considerar que consta de dos componentes: un gradiente<br />
químico y un gradiente de carga. El gradiente químico de protones se puede<br />
representar en forma de un gradiente de pH. El gradiente de carga se crea gracias a las<br />
cargas positivas de los protones desigualmente distribuidos que forman el gradiente<br />
químico. Mitchell propuso que ambos componentes impulsan la síntesis de ATP.<br />
Fuerza <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong> (Dp) 5 gradiente químico (DH) 1 gradiente de carga (D)<br />
Hoy en día, numerosas evidencias respaldan la muy innovadora hipótesis de<br />
Mitchell de que la oxidación y la fosforilación están acopladas por medio de un gradiente<br />
de protones, entre las que se incluye una muy importante: para que exista<br />
este acoplamiento se necesita una membrana intacta e impermeable a los protones.<br />
De hecho, el transporte de electrones genera un gradiente de protones a través de la<br />
membrana mitocondrial interna. El pH en el exterior es 1,4 unidades más bajo que en<br />
el interior y la diferencia de voltaje, o potencial de membrana, es de 0,14 V, positivo en<br />
el exterior. Este potencial de membrana equivale a una energía libre de 20,89 kJ (5,2<br />
kcal) por mol de protones.<br />
+<br />
−<br />
−<br />
−<br />
+<br />
A medida que los electrones fluyen<br />
a través de la cadena respiratoria se bombean<br />
protones a través de esta membrana.<br />
−<br />
+<br />
−<br />
+<br />
Alta [H + ] H +<br />
+ +<br />
− −<br />
−<br />
+<br />
−<br />
+<br />
Baja [H + ]<br />
−<br />
−<br />
−<br />
+<br />
+<br />
+<br />
Membrana<br />
mitocondrial externa<br />
Membrana<br />
mitocondrial interna<br />
Espacio intermembrana<br />
Matriz<br />
Figura 21.1 Hipótesis quimiosmótica. <strong>La</strong> transferencia de electrones a través de la cadena<br />
respiratoria da lugar al bombeo de protones desde la matriz al lado citoplasmático de la<br />
membrana mitocondrial interna. El gradiente de pH y el potencial de membrana constituyen<br />
una <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong> que se utiliza para impulsar la síntesis de ATP.
Bacteriorrodopsina en<br />
una vesícula sintética<br />
ATP<br />
sintasa<br />
H +<br />
H +<br />
ADP + P i<br />
ATP<br />
Figura 21.2 Comprobación de la hipótesis<br />
quimiosmótica. Cuando se iluminan vesículas<br />
de membrana reconstituidas que contienen<br />
bacteriorrodopsina (una bomba de protones<br />
impulsada por la luz) y ATP sintasa se sintetiza ATP.<br />
En estas membranas reconstituidas, la orientación<br />
de la ATP sintasa es la opuesta a la que se observa<br />
en las mitocondrias.<br />
Para demostrar de forma elegante el principio básico de la hipótesis quimiosmótica<br />
se creó un sistema artificial que representaba el sistema de respiración celular. El<br />
papel de la cadena transportadora de electrones lo desempeñaba la bacteriorrodopsina,<br />
una proteína de la membrana púrpura de halobacterias que bombea protones cuando<br />
se la ilumina. Se prepararon vesículas sintéticas que contenían bacteriorrodopsina<br />
y ATP sintasa purificada a partir de corazón de buey (Figura 21.2). Cuando se iluminaron<br />
las vesículas se formó ATP. Este experimento calve demostraba claramente que<br />
la cadena respiratoria y la ATP sintasa son sistemas bioquímicamente distintos conectados<br />
únicamente por una <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong>.<br />
<strong>La</strong> ATP sintasa está formada por una unidad<br />
que canaliza los protones y por una unidad catalítica<br />
Dos aspectos del misterio de cómo se acoplan la oxidación del NADH y la síntesis<br />
de ATP quedan ahora claros: (1) el transporte de electrones genera una <strong>fuerza</strong><br />
<strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong>; (2) la síntesis de ATP por parte de la ATP sintasa se puede impulsar<br />
mediante una <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong>. ¿Cómo se convierte la <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong> en<br />
el elevado potencial de transferencia de fosforilos del ATP?<br />
<strong>La</strong> ATP sintasa es un complejo enzimático de gran tamaño ubicado en la membrana<br />
mitocondrial interna que parece una bola colocada sobre un palo (Figura<br />
21.3). Gran parte de la parte que corresponde al “palo”, la denominada subunidad<br />
F0, está integrada en la membrana mitocondrial interna. <strong>La</strong> bola de 85 Å de diámetro,<br />
denominada subunidad F1, se proyecta hacia la matriz mitocondrial. <strong>La</strong> subunidad<br />
F1 contiene la actividad catalítica de la sintasa. De hecho, las subunidades F1 aisladas<br />
presentan actividad ATPasa.<br />
<strong>La</strong> subunidad F1 consta de cinco tipos de cadenas polipeptídicas (a3, b3, g, d y<br />
). <strong>La</strong>s tres subunidades a y las tres subunidades b, que constituyen el grueso de F1, se disponen de forma alternada formando un anillo hexamérico. Los centros activos<br />
se encuentran en las subunidades b. Justo por encima de las subunidades a y b hay<br />
un tallo central que está formado por las proteínas g y . <strong>La</strong> subunidad g contiene<br />
un largo helicoide enrollado que ocupa el centro del hexámero a3b3. Cada una de<br />
las subunidades b es distinta porque cada una interacciona con una cara distinta de la<br />
subunidad g. Para comprender el mecanismo de la síntesis de ATP es esencial poder<br />
distinguir cada una de las tres subunidades b.<br />
<strong>La</strong> subunidad F0 es un segmento hidrofóbico que atraviesa la membrana mitocondrial<br />
interna. F0 contiene el canal de protones del complejo. Este canal consta de un<br />
anillo que está formado por entre 8 y 15 subunidades c, según el organismo donde<br />
se encuentre la enzima, que están integradas en la membrana. Una única subunidad<br />
a se une a la parte externa del anillo. <strong>La</strong> subunidades F0 y F1 están conectadas de dos<br />
formas: mediante el tallo central g y mediante una columna externa. <strong>La</strong> columna<br />
externa consta de una subunidad a, dos subunidades b y la subunidad d.<br />
b 2<br />
δ<br />
a<br />
21.1 Síntesis de ATP 369<br />
γ<br />
α β<br />
ε<br />
anillo c<br />
Figura 21.3 Estructura de la ATP<br />
sintasa. Se muestra la estructura<br />
esquemática de la ATP sintasa. Observe que<br />
parte del complejo enzimático (la subunidad<br />
F 0) está integrada en la membrana<br />
mitocondrial interna, mientras que el resto<br />
(la subunidad F 1) reside en la matriz.<br />
[Elaborada a partir de 1E79.pdb and 1COV.pdb.]<br />
F 0<br />
F 1
370 21 <strong>La</strong> <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong><br />
? PREGUNTA RÁPIDA 1 ¿Por qué las<br />
subunidades F1 de la ATP sintasa<br />
aisladas catalizan la hidrólisis de ATP?<br />
O<br />
ADP + P i<br />
α<br />
β β<br />
γ<br />
α α<br />
β<br />
ATP<br />
ADP + P i<br />
T<br />
ADP + P i<br />
Figura 21.4 Los lugares de unión a<br />
nucleótidos de la ATP sintasa no son<br />
equivalentes. <strong>La</strong> subunidad g ocupa el<br />
centro del hexámero a 3b 3 y hace que los<br />
lugares de unión a nucleótidos de las<br />
subunidades b sean distintos entre sí.<br />
L<br />
El flujo de protones a través de la ATP sintasa<br />
da lugar a la liberación del ATP fuertemente unido<br />
<strong>La</strong> ATP sintasa cataliza la formación de ATP a partir de ADP y ortofosfato.<br />
ADP 32 1 HPO 4 22 1 H 1 N ATP 42 1 H2O<br />
Hay tres centros activos en la enzima y, en todo momento, cada uno está llevando a cabo<br />
una de las tres funciones distintas. <strong>La</strong> <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong> hace que los tres centros activos<br />
cambien de función de manera secuencial, a medida que los protones fluyen a través<br />
del componente de la enzima que está integrado en la membrana. De hecho, se puede<br />
considerar que la enzima está formada por una parte móvil y una parte estacionaria:<br />
(1) la parte móvil, también llamada rotor, está formada por el anillo c y el tallo g y (2)<br />
la parte estacionaria, también llamada estátor, está formada por el resto de la molécula.<br />
¿Cómo responde cada uno de los tres centros activos de la ATP sintasa al flujo<br />
de protones? Una serie de observaciones experimentales sugirieron un mecanismo de<br />
cambio de unión para la síntesis de ATP impulsada por los protones. Esta propuesta<br />
establece que, mediante un cambio de conformación, una subunidad b puede realizar<br />
cada uno de los tres pasos secuenciales del proceso de síntesis de ATP. Estos pasos son<br />
(1) la captura del ADP y del P i, (2) la síntesis de ATP y (3) la liberación del ATP y la<br />
unión del ADP y del P i. Como ya se ha comentado, las interacciones con la subunidad<br />
g hacen que las tres subunidades b no sean equivalentes (Figura 21.4). En un momento<br />
dado, habrá una subunidad b que estará en la conformación L, relajada. Esta<br />
conformación se une al ADP y al P i. Una segunda subunidad b estará en la conformación<br />
T, tensa. Esta conformación se une al ATP con gran avidez, hasta tal punto que<br />
convertirá al ADP y al P i unidos en ATP. Tanto la conformación L como la T se encuentran<br />
lo suficientemente constreñidas como para no ser capaces de liberar los nucleótidos<br />
unidos. <strong>La</strong> última subunidad b estará en la forma O, abierta. Esta forma adopta<br />
una conformación más abierta y se puede unir a nucleótidos de adenina o liberarlos.<br />
<strong>La</strong> rotación de la subunidad g impulsa la interconversión de estas tres formas<br />
(Figura 21.5). El ADP y el P i unidos a la subunidad b en la forma T se combinan para<br />
formar ATP. Supongamos que la subunidad g gira 120 grados en sentido contrario<br />
a las agujas del reloj (si miramos desde la matriz). Esta rotación convierte al centro<br />
activo de la forma T en un centro activo de la forma O con el nucleótido unido en forma<br />
de ATP. Al mismo tiempo, el centro activo de la forma L se convierte en un centro<br />
activo de la forma T, lo que permite la transformación de otro ADP y otro P i en ATP.<br />
El ATP que se encuentra en el centro activo de la forma O puede ahora abandonar la<br />
enzima para ser sustituido por ADP y P i. Una nueva rotación de 120 grados convierte<br />
este centro activo de la forma O en un centro activo de la forma L, con lo que estos<br />
sustratos quedan atrapados. Cada subunidad pasa de la forma T a la forma O y, posteriormente,<br />
a la forma L sin que en ningún momento haya dos subunidades que estén<br />
en la misma conformación. Este mecanismo sugiere que el ATP se puede sintetizar<br />
y liberar impulsando la rotación de la subunidad g en el sentido correcto. Hay que<br />
O L<br />
Rotación de<br />
120° de γ L ATP T L ATP T L ATP T<br />
ADP + Pi γ<br />
ADP + Pi (en sentido<br />
antihorario)<br />
ADP + Pi γ<br />
ADP + Pi ADP + Pi γ<br />
ADP + Pi ADP + Pi γ<br />
ADP + Pi ATP ATP ADP<br />
ATP<br />
+<br />
ADP + P P<br />
i<br />
i<br />
T O<br />
ADP + P i<br />
O O<br />
Figura 21.5 Mecanismo de cambio de unión para la ATP sintasa. <strong>La</strong> rotación de la subunidad g<br />
interconvierte las tres subunidades b. <strong>La</strong> subunidad en la forma T (tensa) convierte el ADP y el P i en<br />
ATP, pero no permite que se libere el ATP. Cuando la subunidad g rota 120° en sentido antihorario, la<br />
subunidad en forma T se convierte en la forma O, lo que permite la liberación del ATP. A continuación,<br />
nuevas moléculas de ADP y de Pi pueden unirse a la subunidad en forma O. Otra rotación de 120°<br />
(que no se muestra en la figura) atrapa estos sustratos en una subunidad en forma L
señalar que el papel del gradiente de protones no consiste en participar directamente<br />
en la formación de ATP sino en impulsar la disociación del ATP del enzima.<br />
<strong>La</strong> catálisis rotativa es el motor molecular más pequeño del mundo<br />
¿Es posible observar directamente la rotación propuesta? Ingeniosos experimentos<br />
han demostrado la rotación utilizando un sencillo sistema experimental formado<br />
únicamente por las subunidades a 3b 3g clonadas (Figura 21.6). <strong>La</strong>s subunidades b<br />
se modificaron por ingeniería genética para que presenten colas de polihistidina en<br />
su extremo amino, que tienen una elevada afinidad hacia los iones níquel. Gracias<br />
a esta propiedad de las colas de polihistidina, se pudo inmovilizar el complejo a 3b 3<br />
sobre una superficie de vidrio recubierta de iones níquel. <strong>La</strong> subunidad g estaba unida<br />
a un filamento de actina marcado fluorescentemente para proporcionar un largo<br />
segmento que pudiese ser observado mediante un microscopio de fluorescencia. Curiosamente,<br />
la adición de ATP hacía que el filamento de actina rotase en una dirección<br />
contraria a las agujas del reloj. <strong>La</strong> subunidad g estaba girando, impulsada por la hidrólisis<br />
del ATP. De este modo, se podía observar la actividad catalítica de una molécula<br />
individual. <strong>La</strong> rotación en sentido antihorario es consistente con la dirección que<br />
cabría esperar para la hidrólisis porque la molécula se estaba observando desde abajo<br />
si tomamos como referencia la perspectiva mostrada en la Figura 21.5.<br />
Un análisis más detallado en presencia de concentraciones menores de ATP puso<br />
de manifiesto que la subunidad g gira en incrementos de 120 grados. Cada incremento<br />
corresponde a la hidrólisis de una única molécula de ATP. Además, a partir de los<br />
resultados obtenidos con filamentos de actina de distinta longitud (lo que contribuye<br />
a incrementar la resistencia al giro) y midiendo la velocidad de rotación, parece ser<br />
que la enzima funciona con una eficacia cercana al 100%; es decir, prácticamente toda<br />
le energía liberada por la hidrólisis del ATP se convierte en movimiento rotacional.<br />
Filamento de actina<br />
γ<br />
α β<br />
ATP + H 2 O<br />
ADP + P i<br />
Figura 21.6 Observación directa de la rotación de la ATP sintasa impulsada por el ATP. Se<br />
fija el hexámero a3b3 de la ATP sintasa sobre una superficie, con la subunidad g proyectándose<br />
hacia arriba y unida a un filamento de actina marcado fluorescentemente. <strong>La</strong> adición y posterior<br />
hidrólisis de ATP da lugar a la rotación de la subunidad g en sentido antihorario, que puede<br />
observarse directamente a través de un microscopio de fluorescencia.<br />
El flujo de protones en torno al anillo c impulsa la síntesis de ATP<br />
<strong>La</strong> observación directa del movimiento rotatorio de la subunidad g es una sólida<br />
evidencia a favor del mecanismo rotacional para la síntesis de ATP. <strong>La</strong> última pregunta<br />
que queda por responder es: ¿cómo impulsa el flujo de protones a través de F0 la<br />
rotación de la subunidad g? Howard Berg y George Oster propusieron un elegante<br />
mecanismo que ofrece una clara respuesta a esta cuestión. El mecanismo depende de<br />
la estructura de las subunidades a y c y de F0 (Figura 21.7). <strong>La</strong> subunidad a se apoya<br />
directamente en el anillo formado por entre 8 y 15 subunidades c que atraviesa la<br />
membrana. <strong>La</strong>s evidencias experimentales relacionadas con la estructura de la subunidad<br />
a son consistentes con un modelo que presenta dos semicanales hidrofílicos<br />
que no atraviesan por completo la membrana (ver la Figura 21.7). Por tanto, los protones<br />
son capaces de introducirse en cualquiera de estos dos canales pero no pueden<br />
atravesar completamente la membrana. <strong>La</strong> subunidad a está colocada de forma que<br />
cada semicanal interacciona directamente con una subunidad c.<br />
Cambios secuenciales de las formas que<br />
adoptan los tres centros activos de la<br />
ATP sintasa<br />
Subunidad 1 L S T S O S L S T S O…<br />
Subunidad 2 O S L S T S O S L S T…<br />
Subunidad 3 T S O S L S T S O S L…<br />
Ácido<br />
aspártico<br />
Semicanal<br />
del lado<br />
citoplasmático<br />
Semicanal<br />
del lado<br />
de la matriz<br />
Subunidad c<br />
Subunidad a<br />
Figura 21.7 Componentes de la unidad<br />
transportadora de protones de la ATP<br />
sintasa. <strong>La</strong> subunidad c está formada por<br />
dos hélices que atraviesan la membrana.<br />
En una de las hélices hay un residuo de<br />
ácido aspártico situado en el centro de la<br />
membrana. <strong>La</strong> estructura de la subunidad a<br />
parece incluir dos semicanales que permiten<br />
la entrada de los protones, que sólo pueden<br />
atravesar parte de la membrana, no toda.<br />
371
372 21 <strong>La</strong> <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong><br />
H +<br />
H<br />
Espacio<br />
intermembrana<br />
+<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H + H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
Matriz<br />
Figura 21.9 Trayectoria de los protones<br />
a través de la membrana. Cada <strong>protón</strong><br />
se introduce en el semicanal del lado<br />
citoplasmático, da una vuelta completa<br />
al anillo c y sale hacia la matriz a través<br />
del otro semicanal<br />
H +<br />
H + H +<br />
H + H +<br />
H<br />
H +<br />
H+<br />
+<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H<br />
No puede rotar<br />
en ninguna<br />
dirección<br />
+<br />
H + H + H+<br />
H<br />
H+<br />
+<br />
H +<br />
H + H +<br />
H +<br />
H<br />
H +<br />
H+<br />
+<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H + H+<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H + H +<br />
H +<br />
H<br />
H +<br />
H+<br />
+<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H+<br />
H +<br />
H +<br />
H + H +<br />
H +<br />
H<br />
H +<br />
H+<br />
+<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
Puede<br />
rotar en<br />
sentido<br />
horario<br />
H +<br />
H + H +<br />
H +<br />
H<br />
H +<br />
H+<br />
+<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
H +<br />
Figura 21.8 El movimiento de los protones a través de la membrana impulsa la rotación del<br />
anillo c. Un <strong>protón</strong> del espacio intermembrana se introduce en el semicanal del lado citoplasmático<br />
para neutralizar la carga de un residuo de aspartato de una subunidad c. Cuando esta carga está<br />
neutralizada, el anillo c puede girar en sentido horario el sector correspondiente a una subunidad c,<br />
permitiendo que un residuo de ácido aspártico abandone la membrana para alojarse en el semicanal<br />
que comunica con la matriz. Este <strong>protón</strong> puede desplazarse hacia la matriz, con lo que el sistema<br />
vuelve a su estado inicial.<br />
Cada cadena polipeptídica de la subunidad c forma un par de hélices a que atraviesan<br />
la membrana. Un residuo de ácido aspártico (Asp 61) se encuentra en mitad de<br />
una de las hélices, En un ambiente rico en protones, como el lado citoplasmático de la<br />
membrana mitocondrial, es probable que un <strong>protón</strong> se introduzca en el semicanal y se<br />
una al residuo de aspartato, neutralizando su carga. A continuación, la subunidad con<br />
el <strong>protón</strong> unido gira en el interior de la membrana hasta que el ácido aspártico se encuentre<br />
con el ambiente pobre en protones del otro semicanal, y es aquí donde se libera<br />
el <strong>protón</strong> (Figura 21.8). El movimiento de protones a través de los semicanales desde el<br />
espacio intermembrana, donde la concentración de protones es alta, hacia la matriz, donde<br />
la concentración de protones es baja, impulsa la rotación del anillo c. Su rotación está favorecida<br />
por interacciones hidrofóbicas. Cuando un residuo de ácido aspártico se neutraliza<br />
con un <strong>protón</strong> puede interaccionar con el entorno hidrofóbico de la membrana.<br />
Por tanto, la subunidad c con el ácido aspártico recién protonado se mueve, con lo que<br />
deja de estar en contacto con el semicanal del lado citoplasmático y se adentra en el<br />
interior de la membrana, al tiempo que las demás subunidades c se mueven al unísono.<br />
Cada <strong>protón</strong> que entra en el semicanal citoplasmático atraviesa la membrana dejándose<br />
llevar por el giro del anillo c hasta encontrar la salida por el semicanal de la matriz, que<br />
le conecta con el ambiente pobre en protones de la matriz (Figura 21.9). <strong>La</strong> velocidad<br />
de giro del anillo c es extraordinaria, de casi 100 revoluciones por segundo.<br />
¿Cómo induce la rotación del anillo c la síntesis de ATP? El anillo c está íntimamente<br />
asociado a las subunidades g y . Por tanto, a medida que el anillo c gira, las<br />
subunidades g y dan vueltas en el interior del hexámero a 3b 3 de F 1. A su vez, la<br />
rotación de la subunidad g promueve la síntesis de ATP por medio del mecanismo de<br />
cambio de unión. <strong>La</strong> columna exterior formada por las dos cadenas b y la subunidad<br />
d evitan la rotación del hexámero a 3b 3. Cada rotación de 360º de la subunidad g da<br />
H+<br />
H +
lugar a la síntesis y liberación de 3 moléculas de ATP. El número de subunidades c<br />
determina la eficiencia con la que el gradiente de protones se convierte en síntesis de<br />
ATP. Por ejemplo, si hay 10 subunidades c en el anillo (tal y como se ha observado<br />
en una estructura cristalina de la ATP sintasa de mitocondrias de levadura), cada<br />
molécula de ATP generada requiere el transporte de 10/3 5 3,33 protones. Evidencias<br />
recientes demuestran que los anillo c de todos los vertebrados están formados por<br />
8 subunidades, lo que convierte a la ATP sintasa de vertebrados en la ATP sintasa más<br />
eficiente conocida, ya que sólo requiere el transporte de 2,7 protones para la síntesis<br />
de ATP. Para simplificar, asumiremos que se tienen que desplazar 3 protones hacia la<br />
matriz por cada molécula de ATP formada. Como veremos más adelante, los electrones<br />
del NADH bombean protones suficientes como para generar 2,5 moléculas de<br />
ATP, mientras que los procedentes del FADH 2 generan 1,5 moléculas de ATP.<br />
Volvamos por un momento al ejemplo con el que empezamos esta sección. Si un<br />
ser humano en reposo necesita 85 kg de ATP diarios para desempeñar las funciones<br />
del organismo, 3,3 3 12 25 protones tendrán que atravesar la ATP sintasa cada día, lo<br />
que equivale a 3,3 3 12 21 protones por segundo. <strong>La</strong> Figura 21.10 resume el proceso<br />
de la fosforilación oxidativa.<br />
I<br />
Matriz<br />
Espacio<br />
intermembrana<br />
II<br />
ADP + P i<br />
H +<br />
III<br />
H +<br />
ATP<br />
ATP sintasa<br />
Fuerza<br />
<strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong><br />
Cadena transportadora de electrones<br />
IV<br />
O 2 H2 O<br />
Figura 21.10 Esquema general de la fosforilación oxidativa. <strong>La</strong> cadena transportadora<br />
de electrones genera un gradiente de protones que se utiliza para sintetizar ATP.<br />
21.2 <strong>La</strong>s lanzaderas permiten el movimiento<br />
a través de las membranas mitocondriales<br />
<strong>La</strong> membrana mitocondrial interna tiene que ser impermeable a la mayoría de las<br />
moléculas, a pesar de que tienen que producirse numerosos intercambios entre el<br />
citoplasma y las mitocondrias. Estos intercambios están mediados por una serie de<br />
proteínas transportadoras que atraviesan la membrana (p. 205).<br />
Los electrones del NADH citoplasmático<br />
entran en las mitocondrias gracias a lanzaderas<br />
Una de las funciones de la cadena respiratoria consiste en regenerar el NAD 1 para que<br />
se utilice en la glicolisis. ¿Cómo se reoxida el NADH citoplasmático a NAD 1 en condiciones<br />
aeróbicas? El NADH no puede sencillamente entrar en las mitocondrias para ser<br />
Sorprendentemente, un ser humano<br />
en reposo consume poca potencia.<br />
Aproximadamente 116 vatios,<br />
el consumo energético de una típica<br />
bombilla incandescente, proporcionan<br />
la energía suficiente para sustentar<br />
a una persona en reposo.<br />
? PREGUNTA RÁPIDA 2 A menudo,<br />
las ATP sintasas purificadas a partir de<br />
distintas fuentes presentan distinto número<br />
de subunidades c. ¿Qué efecto tendría una<br />
modificación en el número de subunidades c<br />
sobre el rendimiento de ATP en función del<br />
flujo de protones?<br />
373
O<br />
Citoplasma<br />
Matriz<br />
NADH + H +<br />
NAD +<br />
CH2OH Glicerol 3-fosfato<br />
deshidrogenasa<br />
citoplasmática CH2OH C HO C H<br />
CH2OPO 3 2– CH 2OPO 3 2–<br />
Dihidroxiacetona<br />
fosfato<br />
E-FADH 2<br />
E-FAD<br />
Q QH 2<br />
Glicerol<br />
3-fosfato<br />
Glicerol 3-fosfato<br />
deshidrogenasa<br />
mitocondrial<br />
Figura 21.11 <strong>La</strong>nzadera de glicerol 3-fosfato. Los electrones<br />
procedentes del NADH pueden incorporarse a la cadena<br />
transportadora de electrones mitocondrial reduciendo la<br />
dihidroxiacetona fosfato a glicerol 3-fosfato. <strong>La</strong> transferencia<br />
de electrones a un grupo prostético FAD de una glicerol 3-fosfato<br />
deshidrogenasa unida a membrana vuelve a oxidar el glicerol<br />
3-fosfato. <strong>La</strong> posterior transferencia de electrones a Q para<br />
formar QH 2 permite a estos electrones incorporarse a la cadena<br />
transportadora de electrones.<br />
374<br />
H<br />
Citoplasmático Mitocondrial<br />
+ NADH + + E–FAD<br />
NAD E–FADH2 Citoplasmático Mitocondrial<br />
<strong>La</strong>nzadera de glicerol 3-fosfato<br />
+ +<br />
NADH<br />
Citoplasma<br />
Matriz α-Cetoglutarato Aspartato<br />
Malato<br />
NAD +<br />
Malato<br />
NAD +<br />
NADH<br />
oxidado por la cadena respiratoria porque la membrana mitocondrial<br />
interna es impermeable tanto al NADH como al NAD 1 . <strong>La</strong><br />
solución consiste en que sean los electrones del NADH, en vez del propio<br />
NADH, los que sean transportados a través de la membrana mitocondrial.<br />
Una de las diversas formas de incorporar los electrones del<br />
NADH a la cadena transportadora de electrones es la lanzadera de<br />
glicerol 3-fosfato (Figura 21.11). El primer paso de esta lanzadera<br />
consiste en la transferencia de un par de electrones desde el NADH<br />
a la dihidroxiacetona fosfato, un intermediario de la glicolisis, para<br />
formar glicerol 3-fosfato. Esta reacción está catalizada por una glicerol<br />
3-fosfato deshidrogenasa del citoplasma. El glicerol 3-fosfato<br />
se reoxida a dihidroxiacetona fosfato en la superficie externa de la<br />
membrana mitocondrial interna por medio de una isozima de la<br />
glicerol 3-fosfato deshidrogenasa que se encuentra unida a la membrana.<br />
Se transfiere una pareja de electrones del glicerol 3-fosfato a<br />
un grupo prostético FAD de esta enzima para formar FADH 2. Esta<br />
reacción también regenera la dihidroxiacetona fosfato.<br />
<strong>La</strong> flavina reducida transfiere sus electrones al transportador<br />
de electrones Q que, a continuación, se incorpora a la cadena respiratoria<br />
en forma de QH 2. Cuando el NADH citoplasmático transportado<br />
por la glicerol 3-fosfato deshidrogenasa se oxida por medio<br />
de la cadena transportadora, en vez 2,5 moléculas de ATP se forman<br />
1,5. El rendimiento es menor porque los electrones del NADH citoplasmático<br />
se incorporan a la cadena transportadora de electrones<br />
por medio del FAD. El uso del FAD permite que se transporten los<br />
electrones del NADH citoplasmático a las mitocondrias en contra<br />
de un gradiente de concentración de NADH, que se forma porque<br />
cuando la demanda de oxígeno es elevada los cofactores reducidos se van acumulando<br />
en las mitocondrias. El precio de este transporte es de una molécula de ATP por cada<br />
dos electrones. Esta lanzadera de glicerol 3-fosfato es especialmente importante en el<br />
músculo y le permite mantener una velocidad de fosforilación oxidativa muy alta. De<br />
hecho, algunos insectos carecen de la lactato deshidrogenasa y dependen por completo<br />
de la lanzadera de glicerol 3-fosfato para la regeneración del NAD 1 citoplasmático.<br />
En el corazón y en el hígado, los electrones del NADH citoplasmático son<br />
transportados a las mitocondrias por medio de la lanzadera malato-aspartato (Figura<br />
21.12). Los electrones se transfieren desde el NADH del citoplasma al oxalacetato,<br />
formando malato, que atraviesa la membrana mitocondrial interna a cambio<br />
de a-cetoglutarato por medio de un antiporte (p. 205). A continuación, el malato se<br />
Oxalacetato Glutamato<br />
α-Cetoglutarato<br />
Oxalacetato<br />
Figura 21.12 <strong>La</strong>nzadera malato-aspartato.<br />
Aspartato<br />
Glutamato
vuelve a oxidar a oxalacetato por el NAD 1 de la matriz para formar NADH, en una<br />
reacción catalizada por la malato deshidrogenasa, una de las enzimas del ciclo del<br />
ácido cítrico. El oxalacetato resultante no atraviesa fácilmente la membrana mitocondrial<br />
interna, de manera que hace falta una reacción de transaminación (Capítulo 30)<br />
para formar aspartato, que se puede transportar al citoplasma por medio de otro<br />
antiporte, a cambio de glutamato. El glutamato cede un grupo amino al oxalacetato<br />
para formar aspartato y a-cetoglutarato. En el citoplasma, el aspartato pierde su grupo<br />
amino para formar oxalacetato, con lo que se vuelve a iniciar el ciclo.<br />
<strong>La</strong> entrada del ADP a las mitocondrias está acoplada a la salida del ATP<br />
<strong>La</strong> principal función de la fosforilación oxidativa consiste en generar ATP a partir de<br />
ADP. Sin embargo, estos nucleótidos no difunden libremente a través de la membrana<br />
mitocondrial interna. ¿Cómo atraviesan estas moléculas tan cargadas la membrana<br />
mitocondrial interna? Una proteína transportadora específica, la ATP-ADP translocasa,<br />
permite que estas moléculas atraviesen esta barrera de permeabilidad. Y, lo que<br />
es más importante, el flujo de ATP y el del ADP están acoplados. El ADP entra en la<br />
matriz mitocondrial únicamente si sale ATP, y viceversa. Este proceso lo lleva a cabo un<br />
antiporte, la translocasa.<br />
ADP32 citoplasma 1 ATP 42<br />
matriz h ADP32 matriz 1 ATP42 citoplasma<br />
<strong>La</strong> ATP-ADP translocasa es muy abundante, ya que representa aproximadamente el<br />
15% de las proteínas de la membrana mitocondrial interna. <strong>La</strong> abundancia es una manifestación<br />
del hecho de que, cada día, los seres humanos intercambian el equivalente a<br />
su peso en ATP. <strong>La</strong> translocasa de 30 kd contiene un único lugar de unión a nucleótidos<br />
que se orienta alternativamente hacia el lado de la matriz o hacia el lado citoplasmático<br />
de la membrana (Figura 21.13). <strong>La</strong> clave para el transporte es que el ATP tiene una<br />
carga negativa más que el ADP. Por tanto, en una mitocondria que está respirando activamente<br />
con un potencial de membrana positivo, el transporte de ATP hacia el exterior<br />
de la matriz mitocondrial y el transporte de ADP hacia el interior están favorecidos.<br />
Este intercambio ATP-ADP no está exento de un significativo coste energético; aproximadamente<br />
la cuarta parte del rendimiento energético del transporte de electrones a<br />
través de la cadena respiratoria se consume en regenerar el potencial de membrana que<br />
se pierde durante este proceso de intercambio. <strong>La</strong> inhibición de la ATP-ADP translocasa<br />
también da lugar a la ulterior inhibición de la respiración celular (p. 380).<br />
ATP<br />
6<br />
Citoplasma<br />
Eversión 5<br />
2 Eversión<br />
4<br />
ATP<br />
Matriz<br />
Figura 21.13 Mecanismo de la ATP-ADP translocasa mitocondrial. <strong>La</strong> translocasa cataliza<br />
la entrada de ADP a la matriz acoplada a la salida del ATP. En el citoplasma, la unión del ADP (1)<br />
favorece la eversión del transportador (2) para que libere el ADP en la matriz (3). <strong>La</strong> posterior<br />
unión del ATP de la matriz a la forma evertida (4) favorece el retorno a la conformación original<br />
(5), Tymoczko: liberando Biochemistry: ATP en el citoplasma A Short Course, (6). 2E<br />
Perm. Fig.: 21014 New Fig.: 21-13<br />
First Draft: 2011-08-15<br />
2nd Pass: 2011-08-29<br />
3rd Pass: 2011-09-09<br />
ADP<br />
1<br />
3<br />
ADP<br />
NAD<br />
Citoplasmático Mitocondrial<br />
+<br />
NADH +<br />
NAD NADH<br />
Citoplasmático Mitocondrial<br />
<strong>La</strong>nzadera malato-aspartato<br />
+ +<br />
375
376 21 <strong>La</strong> <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong><br />
✓✓4 Identificar qué es lo que determina,<br />
en última instancia, la velocidad de<br />
respiración celular.<br />
Los transportadores mitocondriales permiten el intercambio<br />
de metabolitos entre el citoplasma y las mitocondrias<br />
<strong>La</strong> ATP-ADP translocasa es tan sólo uno de los muchos transportadores de iones y de<br />
moléculas cargadas de las mitocondrias (Figura 21.14). El transportador de fosfato,<br />
que opera de forma coordinada con la ATP-ADP translocasa, interviene en el intercambio<br />
de H 2PO 4 2 por OH 2 . <strong>La</strong> acción combinada de estos dos transportadores da<br />
lugar al intercambio de ADP y P i citoplasmático por ATP de la matriz, lo que supone<br />
un coste equivalente a la entrada un H 1 (ya que se transporta un OH 2 al exterior de<br />
la matriz que, al unirse a un H 1 para formar H 2O, reduce el gradiente de protones).<br />
Estos dos transportadores, que proporcionan los sustratos a la ATP sintasa, están asociados<br />
con la sintasa para formar un gran complejo denominado ATPsintatosoma.<br />
También hay otros transportadores en la membrana mitocondrial interna. El<br />
transportador dicarboxilato permite que el malato, el succinato y el fumarato salgan<br />
de la matriz mitocondrial a cambio de P i. El transportador tricarboxilato intercambia<br />
citrato y H 1 por malato. El piruvato del citoplasma atraviesa la membrana mitocondrial<br />
a cambio de OH 2 gracias al transportador de piruvato. En total, el genoma<br />
humano codifica más de 40 transportadores de este tipo.<br />
Citoplasma<br />
Membrana<br />
mitocondrial<br />
interna<br />
Matriz<br />
ATP Malato Citrato + H + OH − OH −<br />
ADP Fosfato Malato Piruvato Fosfato<br />
Translocasa<br />
de ADP-ATP<br />
Transportador<br />
de dicarboxilato<br />
Transportador<br />
de tricarboxilato<br />
Transportador<br />
de piruvato<br />
Figura 21.14 Transportadores mitocondriales. Los transportadores son proteínas<br />
transmembrana que transportan determinados iones y metabolitos cargados a través<br />
de la membrana mitocondrial interna.<br />
21.3 <strong>La</strong> respiración celular está regulada<br />
por la necesidad de ATP<br />
Transportador<br />
de fosfato<br />
En muchas ocasiones hemos observado que muchas rutas catabólicas están reguladas,<br />
de alguna forma, por la concentración de ATP. Como el ATP es el producto final<br />
de la respiración celular, las necesidades de ATP de las células son las que, en última<br />
instancia, determinan la velocidad de las rutas respiratorias y sus componentes.<br />
<strong>La</strong> oxidación completa de la glucosa produce<br />
aproximadamente 30 moléculas de ATP<br />
Ahora podemos hacer una estimación de cuántos moléculas de ATP se forman cuando<br />
la glucosa se oxida completamente a CO2. Se trata de una “estimación” porque, a<br />
diferencia del ATP que se produce en la glicolisis o en el ciclo del ácido cítrico (que<br />
generan 4 moléculas de ATP por cada molécula de glucosa y una molécula de ATP,<br />
o de GTP, por cada molécula de piruvato, respectivamente), las estequiometrías del<br />
bombeo de protones, de la síntesis de ATP y de los procesos de transporte de metabolitos<br />
no tienen por qué ser número enteros ni incluso tener un valor fijo. Como ya se<br />
ha comentado anteriormente, a día de hoy, las mejores estimaciones sobre el número<br />
de protones que se bombean al exterior de la matriz por parte de la NADH-Q oxidorreductasa,<br />
de la Q-citocromo c oxidorreductasa y de la citocromo c oxidasa por<br />
cada pareja de electrones son de cuatro, cuatro y dos, respectivamente. <strong>La</strong> síntesis de<br />
una molécula de ATP está impulsada por el flujo de, aproximadamente, tres protones<br />
a través de la ATP sintasa. Se consume un <strong>protón</strong> adicional para transportar el
ATP desde la matriz al citoplasma. Por tanto, como resultado del flujo de un par de<br />
electrones desde el NADH al O 2 se generan alrededor de 2,5 moléculas de ATP citoplasmático.<br />
En el caso de los electrones que se incorporan a través de la Q-citocromo<br />
c oxidorreductasa, como los que proceden de la oxidación del succinato o del NADH<br />
citoplasmático, el rendimiento es de alrededor de 1,5 moléculas de ATP por cada par<br />
de electrones. Por tanto, tal y como se ha contabilizado en la Tabla 21.1, cuando la<br />
glucosa se oxida completamente a CO 2 se producen alrededor de 30 moléculas de ATP.<br />
<strong>La</strong> mayor parte del ATP, 26 de las 30 moléculas que se forman, se genera mediante la<br />
fosforilación oxidativa. Recordemos que el metabolismo anaerobio de la glucosa sólo<br />
produce 2 moléculas de ATP. <strong>La</strong> eficiencia de la respiración celular se pone de manifiesto<br />
al observar que uno de los efectos de los ejercicios de resistencia, una práctica<br />
que requiere mucho ATP durante un periodo de tiempo prolongado, consiste en aumentar<br />
el número de mitocondrias y de vasos sanguíneos en el músculo, con lo que<br />
aumenta la cantidad de ATP que se genera por medio de la fosforilación oxidativa.<br />
<strong>La</strong> velocidad de la fosforilación oxidativa<br />
está determinada por la necesidad de ATP<br />
¿Cómo se controla la velocidad de la cadena transportadora de electrones? En las<br />
condiciones fisiológicas más habituales, el transporte de electrones está íntimamente<br />
ligado a la fosforilación. Normalmente, los electrones no se desplazan a través de la<br />
cadena transportadora de electrones hasta el O2 a menos que, al mismo tiempo, el ADP<br />
se fosforile a ATP. Cuando la concentración de ADP aumenta, como ocurriría en un<br />
músculo activo que esté continuamente consumiendo ATP, aumenta la velocidad de<br />
la fosforilación oxidativa para cubrir las necesidades de ATP de la célula. <strong>La</strong> regulación<br />
de la velocidad de la fosforilación oxidativa por el nivel de ADP se denomina<br />
21.3 Regulación de la respiración 377<br />
Tabla 21.1 Producción de ATP durante la oxidación completa de la glucosa<br />
Secuencia de reacciones ATP producido por<br />
molécula de glucosa<br />
Glicolisis: Conversión de glucosa en piruvato (en el citoplasma)<br />
Fosforilación de la glucosa 21<br />
Fosforilación de la fructosa 6-fosfato 21<br />
Desfosforilación de 2 moléculas de 1,3-BPG 12<br />
Desfosforilación de 2 moléculas de fosfoenolpiruvato 12<br />
Durante la oxidación de 2 moléculas de gliceraldehído 3-fosfato se forman 2 moléculas de NADH<br />
Conversión de piruvato en acetil-CoA (en el interior de las mitocondrias)<br />
Se forman 2 moléculas de NADH<br />
Ciclo del ácido cítrico (en el interior de las mitocondrias)<br />
A partir de dos moléculas de succinil-CoA se forman 2 moléculas de ATP (o GTP) 12<br />
Durante la oxidación de 2 moléculas de isocitrato, 2 de a-cetoglutarato<br />
y 2 de malato se forman 6 moléculas de NADH<br />
Durante la oxidación de 2 moléculas de succinato se forman 2 moléculas de FADH2 Fosforilación oxidativa (en el interior de las mitocondrias)<br />
En la glicolisis se forman 2 moléculas de NADH; cada una produce 1,5 moléculas de ATP (suponiendo<br />
13<br />
que el NADH es transportado por la lanzadera de glicerol 3-fosfato)<br />
En la descarboxilación oxidativa del piruvato se forman 2 moléculas de NADH;<br />
15<br />
cada una produce 2,5 moléculas de ATP<br />
En el ciclo del ácido cítrico se forman 2 moléculas de FADH2; cada una produce 1,5 moléculas de ATP 13<br />
En el ciclo del ácido cítrico se forman 6 moléculas de NADH; cada una produce 2,5 moléculas de ATP 115<br />
Rendimiento neto por molécula de glucosa 130<br />
Fuente: El rendimiento de ATP durante la fosforilación oxidativa se basa en los valores aportados por P. C. Hinkle, M. A. Kumar, A. Resetar, y D. L. Harris. Biochemistry<br />
30:3576, 1991.<br />
Nota: El valor actual de 30 moléculas de ATP por molécula de glucosa sustituye al anterior, de 36 moléculas de ATP. <strong>La</strong>s estequiometrías del bombeo de protones,<br />
la síntesis de ATP y el transporte de metabolitos deben considerarse como una estimación. Cuando se utiliza la lanzadera de malato-aspartato en lugar de la lanzadera<br />
de glicerol 3-fosfato se forman, aproximadamente, dos moléculas más de ATP por cada molécula de glucosa oxidada.
O 2 consumido<br />
ADP añadido<br />
Tiempo<br />
Suministro<br />
de ADP<br />
prácticamente<br />
agotado<br />
Figura 21.15 Control respiratorio.<br />
Sólo se transfieren electrones al O 2 si, al<br />
mismo tiempo, el ADP se fosforila a ATP.<br />
Figura 21.16 <strong>La</strong> carga energética<br />
regula el uso de los combustibles.<br />
<strong>La</strong> síntesis de ATP a partir de ADP y P i<br />
controla el flujo de electrones desde el<br />
NADH y el FADH 2 al oxígeno. A su vez,<br />
la disponibilidad de NAD + and FAD y FAD<br />
controla la velocidad del ciclo del ácido<br />
cítrico (CAC).<br />
Figura 21.17 Acción de una proteína<br />
desacoplante. <strong>La</strong> proteína desacoplante 1<br />
(UCP-1) genera calor permitiendo la entrada<br />
de protones a la mitocondria sin que se<br />
sintetice ATP.<br />
378<br />
control respiratorio o control por medio del aceptor. Experimentos realizados con mitocondrias<br />
aisladas han demostrado la importancia del nivel de ADP (Figura 21.15).<br />
<strong>La</strong> velocidad de consume de oxígeno por parte de las mitocondrias aumenta notablemente<br />
cuando se añade ADP y, a continuación, vuelve a su valor inicial cuando el<br />
ADP añadido se ha convertido en ATP.<br />
Tal y como se comentó en el Capítulo 19, el nivel de ADP también afecta de<br />
forma indirecta a la velocidad del ciclo del ácido cítrico. A concentraciones bajas de<br />
ADP, como cuando el músculo está en reposo, el NADH y el FADH 2 producidos por<br />
el ciclo del ácido cítrico no se oxidan a NAD 1 y FAD por la cadena transportadora de<br />
electrones. El ciclo del ácido cítrico se ralentiza porque hay menos NAD 1 y FAD para<br />
hacer que el ciclo funcione. A medida que el nivel de ADP aumenta y la fosforilación<br />
oxidativa se acelera, el NADH y el FADH 2 se oxidan y el ciclo del ácido cítrico se<br />
vuelve más activo. Los electrones no fluyen desde las moléculas combustible hacia el O 2<br />
a menos que se tenga que sintetizar ATP. Aquí vemos otro ejemplo de la importancia<br />
reguladora de la carga energética (Figura 21.16).<br />
Matriz<br />
Espacio<br />
intermembrana<br />
Acetil CoA<br />
(8 e− FADH2 NADH<br />
)<br />
Aspecto biológico<br />
NAD + , FAD<br />
El desacoplamiento regulado da lugar a la generación de calor<br />
Algunos organismos poseen la capacidad de desacoplar la fosforilación oxidativa de la<br />
síntesis de ATP para generar calor. Este desacoplamiento es una forma de mantener<br />
la temperatura corporal en el caso de los animales que hibernan, en algunos animales<br />
recién nacidos (ser humano incluido) y en mamíferos adaptados al frío. En los<br />
animales, la grasa parda (el tejido adiposo pardo) es un tejido especializado en este<br />
proceso de termogénesis sin tiritera. El tejido adiposo pardo es muy rico en mitocondrias,<br />
las denominadas mitocondrias de la grasa parda. <strong>La</strong> membrana mitocondrial<br />
interna de estas mitocondrias contiene una gran cantidad de proteína desacoplante 1<br />
Los ácido<br />
grasos<br />
activan<br />
el canal<br />
UCP-1<br />
UCP-1<br />
Matriz<br />
CAC<br />
H +<br />
H+<br />
H +H+<br />
H +<br />
H + H +<br />
H +<br />
O 2<br />
OH −<br />
OH −<br />
O 2<br />
H +<br />
P i<br />
H 2 O<br />
ADP<br />
P i + ADP<br />
Transporte<br />
de electrones<br />
H 2O<br />
ADP + P i<br />
H +<br />
ATP<br />
ATP<br />
Gradiente<br />
de protones<br />
ATP
(UCP-1), también denominada termogenina. <strong>La</strong> UCP-1 forma una ruta para el flujo<br />
de protones desde el citoplasma a la matriz. Básicamente, la UCP-1 genera calor cortocircuitando<br />
la batería de protones de la mitocondria. A medida que los protones fluyen<br />
a través de UCP-1 hacia la matriz mitocondrial, la energía del gradiente de protones,<br />
que normalmente se transforma en ATP, se libera en forma de calor. Esta ruta disipadora<br />
de protones se activa cuando la temperatura interna del organismo comienza a<br />
descender. En respuesta a un descenso de la temperatura, se segregan hormonas que<br />
provocan la liberación de los ácidos grasos presentes en los triacilgliceroles que, a su<br />
vez, activan la termogenina (Figura 21.17).<br />
Observando el comportamiento de los cerdos podemos ser testigos de los efectos<br />
de la ausencia de termogénesis sin tiritera. Los cerdos son mamíferos atípicos<br />
porque sus camadas son numerosas y porque son los únicos ungulados (animales<br />
con pezuña) que preparan nidos para el parto (Figura 21.18). Estas características<br />
de su comportamiento parecen ser el resultado de una insuficiencia bioquímica. Los<br />
cerdos carecen de UCP-1 y, por tanto, de grasa parda. Los lechones tienen que recurrir<br />
a otras formas de termogénesis. Hacer un nido, una camada numerosa y tiritar son<br />
métodos que permiten a los cerdos compensar la falta de grasa parda.<br />
Hasta hace poco se creía que los seres humanos adultos carecían de tejido adiposo<br />
pardo. Sin embargo, estudios recientes han demostrado que los adultos, especialmente<br />
las mujeres, poseen tejido adiposo pardo en el cuello y en las regiones superiores<br />
del pecho y que se activa por el frío (Figura 21.19). <strong>La</strong> obesidad da lugar a una<br />
disminución del tejido adiposo pardo. ■<br />
21.3 Regulación de la respiración 379<br />
Figura 21.18 Nido de lechones. <strong>La</strong> figura<br />
muestra un jabalí salvaje, que es un miembro<br />
de la familia de los cerdos, con sus lechones<br />
en un nido. [Cortesía de Annelie Andersson.]<br />
Figura 21.19 <strong>La</strong> exposición al frío<br />
permite visualizar el tejido adiposo<br />
pardo. Los resultados obtenidos con un<br />
escáner de TEP-TC (tomografía de emisión<br />
de positrones y tomografía computarizada)<br />
muestran la absorción y distribución de<br />
18 F-fluorodesoxiglucosa ( 18 F-FDG), un<br />
análogo de la glucosa que no se metaboliza,<br />
en el tejido adiposo. En un mismo sujeto,<br />
los patrones de absorción de 18 F-FDG<br />
son radicalmente distintos en condiciones<br />
térmicas neutras (a la izquierda) y tras<br />
la exposición al frío (a la derecha).<br />
[Cortesía de Wouter van Marken Lichtenbelt.<br />
Copyright 2009 Massachusetts Medical Society.<br />
Todos los derechos reservados.]
NADH<br />
NADH-Q<br />
reductasa<br />
QH2<br />
Q-citocromo c<br />
oxidorreductasa<br />
Bloqueado por<br />
antimicina A<br />
Citocromo c<br />
Bloqueado<br />
por rotenona<br />
y amital<br />
Citocromo c oxidasa<br />
Bloqueado por<br />
CN – –<br />
, N3 , y CO<br />
O 2<br />
Figura 21.20 Lugares de acción de<br />
algunos inhibidores del transporte<br />
de electrones.<br />
380<br />
<strong>La</strong> fosforilación oxidativa se puede inhibir en muchos puntos<br />
Muchos venenos potentes y letales actúan inhibiendo la fosforilación oxidativa en<br />
alguno de los siguientes puntos.<br />
Inhibición de la cadena transportadora de electrones. Los cuatro complejos de<br />
la cadena transportadora de electrones se pueden inhibir mediante diversos compuestos<br />
que bloquean la transferencia de electrones a través de la cadena y, de este<br />
modo, desactivan la fosforilación oxidativa. <strong>La</strong> NADH-Q oxidorreductasa (Complejo<br />
I) se inhibe por la rotenona, que se utiliza como veneno para peces e insectos, y por el<br />
amital, un barbitúrico con efectos sedantes. Los inhibidores del Complejo I evitan la<br />
utilización de NADH como sustrato (Figura 21.20). <strong>La</strong> exposición a la rotenona, junto<br />
con una predisposición genética, se ha relacionado con el desarrollo de la enfermedad<br />
de Parkinson, un trastorno que se caracteriza por temblores en estado de reposo,<br />
lentitud de movimientos, incapacidad de iniciar el movimiento, rigidez e inestabilidad<br />
postural. <strong>La</strong> inhibición del Complejo I no impide el flujo de los electrones procedentes<br />
del FADH 2 porque estos electrones se incorporan a través de QH 2, más allá del<br />
lugar que está bloqueado. <strong>La</strong> Q-citocromo c oxidoreductasa (Complejo III) se inhibe<br />
por antimicina A, un antibiótico que se obtiene a partir de Streptomyces y que se utiliza<br />
como veneno para peces. Además, el flujo de electrones a través de la citocromo c<br />
oxidasa (Complejo IV) se puede bloquear por medio de cianuro (CN 2 ), azida (N 3 2 )<br />
y monóxido de carbono (CO). El cianuro y la azida reaccionan con la forma férrica<br />
(Fe 31 ) del grupo hemo a 3, mientras que el monóxido de carbono inhibe la forma<br />
ferrosa (Fe 21 ). <strong>La</strong> inhibición de la cadena transportadora de electrones también inhibe<br />
la síntesis de ATP porque ya no se puede generar la <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong>.<br />
Inhibición de la ATP sintasa. <strong>La</strong> oligomicina, un antibiótico utilizado como<br />
agente antifúngico, y la diciclohexilcarbodiimida (DCCD), utilizada para la síntesis<br />
de péptidos en el laboratorio, impiden la entrada de protones a través de la ATP sintasa.<br />
Si se exponen mitocondrias que está respirando activamente a un inhibidor de<br />
la ATP sintasa, la cadena transportadora de electrones deja de funcionar. Esta observación<br />
demuestra con claridad que, normalmente, el transporte de electrones y la<br />
síntesis de ATP están estrechamente acoplados.<br />
Desacoplamiento entre el transporte de electrones y la síntesis de ATP. El estrecho<br />
acoplamiento que existe entre el transporte de electrones y la fosforilación en las mitocondrias<br />
se puede desacoplar por medio de 2,4-dinitrofenol (DNP) y otros compuestos<br />
aromáticos ácidos. Estas sustancias transportan protones a través de la membrana mitocondrial<br />
interna, a favor de su gradiente de concentración. En presencia de estos desacoplantes,<br />
el transporte de electrones desde el NADH al O 2 se produce con normalidad<br />
pero la ATP sintasa mitocondrial no forma ATP porque la <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong> que se<br />
establece a través de la membrana mitocondrial interna se está disipando continuamente.<br />
Esta pérdida de control respiratorio da lugar a un incremento en el consumo de<br />
oxígeno y a la oxidación del NADH. De hecho, al ingerir desacoplantes de forma accidental<br />
se consumen grandes cantidades de combustibles metabólicos pero no se recupera<br />
energía en forma de ATP. En vez de ello, la energía se libera en forma de calor. El<br />
DNP es el ingrediente activo de algunos herbicidas y fungicidas. Curiosamente, algunas<br />
personas consumen DNP como fármaco adelgazante a pesar de que la Agencia Federal<br />
de Alimentos y Medicamentos (FDA) prohibió su uso en 1938. También existen informes<br />
de que se administró DNP a los soldados soviéticos para mantenerlos calientes<br />
durante los largos inviernos rusos. Los desacoplantes químicos son los homólogos no<br />
fisiológicos y no regulados de las proteínas desacoplantes.<br />
Inhibición de la exportación del ATP. <strong>La</strong> ATP-ADP translocasa se inhibe de forma<br />
específica por bajas concentraciones de atractilósido (un glicósido de origen vegetal)<br />
o de ácido bongcréquico (un antibiótico extraído de un moho). El atractilósido se<br />
une a la translocasa cuando su lugar de unión a nucleótidos está orientado hacia el<br />
citoplasma, mientras que el ácido bongcréquico se une cuando este mismo sitio está<br />
orientado hacia la matriz mitocondrial. <strong>La</strong> fosforilación oxidativa se detiene poco
después de añadir cualquiera de estos inhibidores, lo que demuestra que la ATP-ADP<br />
translocasa es esencial para el mantenimiento de una cantidad de ADP adecuada para<br />
aceptar la energía asociada a la <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong>.<br />
Asepcto clínico<br />
Se está descubriendo un número cada vez mayor<br />
de enfermedades mitocondriales<br />
El número de enfermedades que se pueden atribuir a mutaciones mitocondriales está<br />
aumentando de forma constante, al mismo ritmo que nuestros conocimientos cada<br />
vez más amplios de la bioquímica y la genética de las mitocondrias. Se ha estimado que<br />
la prevalencia de las enfermedades mitocondriales es de entre 10 y 15 casos por cada<br />
100.000 personas, una frecuencia que es prácticamente equivalente a la de las distrofias<br />
musculares. <strong>La</strong> primera enfermedad mitocondrial conocida fue la neuropatía óptica hereditaria<br />
de Leber (cuyo acrónimo inglés es LHON), una forma de ceguera que aparece<br />
en la madurez como resultado de mutaciones en el Complejo I. Algunas de estas mutaciones<br />
impiden la utilización del NADH, mientras que otras bloquean la transferencia<br />
de electrones a Q. <strong>La</strong>s mutaciones en el Complejo I son la causa más frecuente de las<br />
enfermedades mitocondriales, aunque se han descubierto mutaciones en prácticamente<br />
todos los componentes mitocondriales. <strong>La</strong> acumulación de mutaciones en los genes<br />
mitocondriales durante un periodo de varias décadas puede contribuir al envejecimiento,<br />
enfermedades degenerativas y cáncer. Los defectos en la respiración celular son<br />
doblemente peligrosos. No sólo se reduce la transducción de energía sino que también<br />
aumenta la probabilidad de que se generen especies reactivas del oxígeno. Los órganos<br />
que dependen en gran medida de la fosforilación oxidativa, como el sistema nervioso y<br />
el corazón, son los más vulnerables a las mutaciones en el DNA mitocondrial. ■<br />
<strong>La</strong> transmisión de energía por medio de gradientes<br />
de protones es un concepto clave de la bioenergética<br />
El concepto más importante que se ha expuesto en este capítulo es que, en las mitocondrias,<br />
la transferencia de electrones y la síntesis de ATP están acopladas por medio<br />
de un gradiente de protones a través de la membrana. En bacterias y cloroplastos, la<br />
síntesis de ATP también está impulsada por gradientes de protones. De hecho, los gradientes<br />
de protones impulsan una serie de procesos que requieren energía como, por<br />
ejemplo, el transporte activo de iones calcio por parte de las mitocondrias, la entrada de<br />
algunos aminoácidos y azúcares en las bacterias, la rotación de los flagelos bacterianos<br />
y la transferencia de electrones desde el NADP1 al NADPH. Como ya hemos visto, los<br />
gradientes de protones también se pueden utilizar para generar calor. Resulta evidente<br />
que, en los sistemas biológicos, los gradientes de protones son la principal divisa de energía<br />
libre interconvertible (Figura 21.21). Mitchell se percató de que la <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong><br />
es una forma maravillosamente simple y eficaz de almacenar energía libre porque tan<br />
sólo requiere una fina membrana lipídica cerrada que separe dos fases acuosas.<br />
Transporte<br />
activo<br />
Rotación de<br />
los flagelos<br />
Potencial electrónico<br />
∆E<br />
GRADIENTE DE<br />
PROTONES ∆p<br />
ATP<br />
~P<br />
Producción<br />
de calor<br />
Síntesis<br />
de NADPH<br />
21.3 Regulación de la respiración 381<br />
Figura 21.21 El gradiente de protones<br />
es una forma interconvertible de energía<br />
libre.
382 21 <strong>La</strong> <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong><br />
Términos clave<br />
ATP sintasa (Complejo V,<br />
ATPasa F 1F 0) (p. 368)<br />
<strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong> (p. 368)<br />
cadena transportadora<br />
de electrones (p. 368)<br />
Resumen<br />
21.1 Un gradiente de protones impulsa la síntesis de ATP<br />
El flujo de electrones a través de los complejos I, III y IV de la cadena transportadora<br />
de electrones da lugar a la transferencia de protones desde el lado de la<br />
matriz hacia el lado citoplasmático de la membrana mitocondrial interna. Se<br />
genera una <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong> que está formada por un gradiente de pH<br />
(básico en el lado de la matriz) y un potencial de membrana (negativo en el<br />
lado de la matriz). El retorno de los protones a la matriz a través de la ATP sintasa<br />
impulsa la síntesis de ATP. El complejo enzimático es un motor molecular<br />
formado por dos unidades operacionales: un componente rotatorio y un componente<br />
estático. <strong>La</strong> rotación de la subunidad g provoca cambios estructurales<br />
en la subunidad b que dan lugar a la síntesis y liberación de ATP por parte de la<br />
enzima. <strong>La</strong> entrada de protones proporciona la <strong>fuerza</strong> para la rotación.<br />
El flujo de dos electrones a través de la NADH-Q oxidorreductasa, la Q-citocromo<br />
c oxidorreductasa y la citocromo c oxidasa genera un gradiente capaz<br />
de sintetizar 1, 1 y 0,5 moléculas de ATP, respectivamente. Por tanto, por cada<br />
molécula de NADH que se oxida en la matriz mitocondrial se forman 2,5 moléculas<br />
de ATP mientras que por cada molécula de FADH2 que se oxida sólo se<br />
forman 1,5 moléculas de ATP porque sus electrones se incorporan a la cadena<br />
por medio de QH2, que está después del primer lugar de bombeo de protones.<br />
21.2 <strong>La</strong>s lanzaderas permiten el movimiento<br />
a través de las membranas mitocondriales<br />
<strong>La</strong>s mitocondrias utilizan un conjunto de transportadores para mover moléculas<br />
a través de la membrana mitocondrial interna. Los electrones del NADH<br />
citoplasmático se transfieren a la mitocondria por medio de la lanzadera de glicerol<br />
3-fosfato, con lo que se forma FADH2 a partir de FAD, o por la lanzadera<br />
malato aspartato, con lo que se forma NADH mitocondrial. <strong>La</strong> entrada de ADP<br />
a la matriz mitocondrial está acoplada a la salida de ATP gracias a la ATP-ADP<br />
translocasa, un transportador impulsado por el potencial de membrana.<br />
21.3 <strong>La</strong> respiración celular está regulada por la necesidad de ATP<br />
Cuando una molécula de glucosa se oxida completamente a CO2 y H2O se<br />
generan alrededor de 30 moléculas de ATP. Normalmente, el transporte de<br />
electrones se encuentra íntimamente acoplado a la fosforilación. El NADH y<br />
el FADH2 sólo se oxidan si, al mismo tiempo, el ADP se fosforila a ATP, una<br />
forma de regulación denominada control respiratorio o control por medio<br />
del aceptor. Se han identificado proteínas que desacoplan el transporte de<br />
electrones y la síntesis de ATP para generar calor. Los desacoplantes, como<br />
el 2,4-dinitrofenol, también pueden interrumpir este acoplamiento; disipan<br />
el gradiente de protones transportando protones a través de la membrana<br />
mitocondrial interna.<br />
lanzadera de glicerol 3-fosfato (p. 374)<br />
lanzadera malato-aspartato (p. 374)<br />
ATP-ADP translocasa<br />
(translocasa de nucleótidos<br />
de adenina, ANT) (p. 375)<br />
respiración celular (p.376)<br />
control respiratorio<br />
(por medio del aceptor) (p. 377)<br />
proteína desacoplante 1<br />
(UCP-1) (p.378)
? Respuestas a LAS PREGUNTAS RÁPIDAS<br />
1. Recordemos que, al estudiar las reacciones catalizadas por<br />
enzimas, se comentó que la dirección de una reacción está determinada<br />
por el DG entre el sustrato y los productos. Una<br />
enzima acelera la velocidad de las reacciones tanto en un sentido<br />
como en el otro. <strong>La</strong> hidrólisis del ATP es exergónica y, por<br />
tanto, la ATP sintasa intensificará la reacción hidrolítica.<br />
Problemas<br />
1. Reciclando recursos. Los seres humanos tienen tan sólo unos<br />
250 g de ATP, pero incluso alguien que esté todo el día tumbado<br />
en el sofá necesita alrededor de 83 kg de ATP para abrir la bolsa<br />
de patatas fritas y utilizar el mando a distancia. ¿Cómo se explica<br />
esta diferencia entre las necesidades y los recursos?<br />
2. Barbie y Ken. Asigne a cada término la descripción correspondiente.<br />
(a) ATP sintasa _______ 1. Intercambia NADH<br />
(b) Fuerza <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong> citoplasmático por<br />
_______<br />
(c) Cadena transportadora<br />
FADH2 mitocondrial<br />
2. Genera calor en<br />
de electrones _______ lugar de ATP<br />
(d) <strong>La</strong>nzadera de glicerol 3. Subunidad catalítica<br />
3-fosfato _______ 4. Convierte la <strong>fuerza</strong><br />
(e) <strong>La</strong>nzadera malato-<br />
<strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong> en ATP<br />
aspartato _______ 5. Canal de protones<br />
(f) Control respiratorio 6. Formada por un<br />
(por medio del aceptor) gradiente químico<br />
_______<br />
y un gradiente de carga<br />
(g) Proteína desacoplante 7. Un tiovivo de protones<br />
_______<br />
8. Genera el gradiente<br />
(h) Subunidad F1 _______ de protones<br />
(i) Subunidad F0 _______ 9. El ADP controla la<br />
(j) Anillo c _______<br />
velocidad de respiración<br />
10. Intercambia NADH<br />
citoplasmático por<br />
NADH mitocondrial<br />
3. Cosecha energética. ¿Cuál es el rendimiento de ATP cuando<br />
cada uno de los siguientes sustratos se oxida por completo<br />
a CO 2 por medio de un homogenado de células de mamífero?<br />
Suponga que la glicolisis, el ciclo del ácido cítrico y la fosforilación<br />
oxidativa funcionan a pleno rendimiento.<br />
(a) Piruvato<br />
(b) <strong>La</strong>ctato<br />
(c) Fructosa 1,6-bisfosfato<br />
(d) Fosfoenolpiruvato<br />
(e) Galactosa<br />
(f) Dihidroxiacetona<br />
fosfato<br />
4. Venenos potentes. ¿Cuál es el efecto de cada uno de los siguientes<br />
inhibidores sobre el transporte de electrones y la formación<br />
de ATP por la cadena respiratoria?<br />
(a) Azida<br />
(b) Atractilósido<br />
(c) Rotenona<br />
(d) DNP<br />
(e) Monóxido de carbono<br />
(f) Antimicina A<br />
Problemas 383<br />
2. El número de subunidades c es importante porque determina<br />
el número de protones que hay que transportar para<br />
generar una molécula de ATP. <strong>La</strong> ATP sintasa tiene que rotar<br />
360 grados para sintetizar tres moléculas de ATP; por tanto,<br />
cuantas más subunidades c haya, más protones se necesitarán<br />
para hacer que F 1 gire 360 grados.<br />
5. Cuestión de acoplamiento. ¿Qué mecanismo explica el hecho<br />
de que los inhibidores de la ATP sintasa también inhiban<br />
la cadena transportadora de electrones? ✓ 3<br />
6. Consumo de O 2. En las mitocondrias, es frecuente monitorizar<br />
la fosforilación oxidativa midiendo el consumo de oxígeno.<br />
Cuando la fosforilación oxidativa está funcionando rápidamente,<br />
las mitocondrias consumirán rápidamente el<br />
oxígeno. Si hay poca fosforilación oxidativa, sólo se utilizará<br />
una pequeña cantidad de oxígeno. Suponga que le ofrecen una<br />
suspensión de mitocondrias aisladas y se le indica que añada<br />
los siguientes compuestos en orden: del a al h. Al añadir cada<br />
compuesto, los compuestos previamente añadidos siguen estando<br />
presentes. Pronostique el efecto de cada adición sobre el<br />
consumo de oxígeno por parte de las mitocondrias aisladas.<br />
(a) Glucosa<br />
(b) ADP + P i<br />
(c) Citrato<br />
(d) Oligomicina<br />
(e) Succinato<br />
(f) 2,4-Dinitrofenol<br />
(g) Rotenona<br />
(h) Cianuro<br />
7. Mitocondrias fuera de control 1. El número de moléculas<br />
de fosfato inorgánico que se incorporan a compuestos orgánicos<br />
por cada átomo de oxígeno consumido es lo que se denomina<br />
cociente P : O y se utilizaba a menudo como indicador<br />
de la fosforilación oxidativa. Suponga que las mitocondrias de<br />
un paciente oxidan NADH independientemente de que haya o<br />
no ADP. En estas mitocondrias, el cociente P : O de la fosforilación<br />
oxidativa es menor de lo normal. Pronostique los síntomas<br />
más probables de este trastorno.<br />
8. Un residuo esencial. <strong>La</strong> conducción de protones por la unidad<br />
F 0 de la ATP sintasa se bloquea al modificar una única<br />
cadena lateral por medio de la diciclohexilcarbodiimida.<br />
¿Cuáles son las dianas más probables para la actuación de este<br />
reactivo? ¿Cómo se podría utilizar la mutagénesis dirigida<br />
para determinar si este residuo es esencial para la conducción<br />
de los protones? ✓ 3<br />
9. Mitocondrias fuera de control 2. Hace años, se sugirió que<br />
los desacoplantes podrían ser maravillosos fármacos para<br />
adelgazar. Explique por qué se propuso esta idea y por qué fue<br />
rechazada. ¿Por qué apoyarían esta idea los fabricantes de antitranspirantes?<br />
10. Procesos acoplados. Si se exponen mitocondrias que están<br />
respirando activamente a un inhibidor de la ATP sintasa, la cadena<br />
transportadora de electrones deja de funcionar. ¿Por qué?
384 21 <strong>La</strong> <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong><br />
11. Se lo llevó la corriente. ¿Cuál es el papel de los protones en<br />
la síntesis de ATP por parte de la ATP sintasa F 1F 0? ✓ 3 y 4<br />
12. Los opuestos se atraen. Un residuo de arginina (Arg210) de<br />
la subunidad a de la ATP sintasa está cerca del residuo de aspartato<br />
(Asp61) en el canal de protones que está comunicado<br />
con la matriz. ¿Cómo podría la Arg210 ayudar al flujo de protones?<br />
✓ 3<br />
13. Subunidades c variables. Recordemos que el número de subunidades<br />
c del anillo c parece estar comprendido entre 8 y 15.<br />
Este número es importante porque determina el número de protones<br />
que se tienen que transportar para generar una molécula<br />
de ATP. Cada rotación de 360 grados de la subunidad g da lugar<br />
a la síntesis y liberación de tres moléculas de ATP. Por tanto, si<br />
hay 10 subunidades c en el anillo (tal y como se ha observado en<br />
una estructura cristalina de la ATPasa de mitocondrias de levadura),<br />
cada ATP generado necesita el transporte de 10/3 5 3,33<br />
protones. ¿Cuántos protones se necesitan para formar ATP si el<br />
anillo tiene 8 subunidades c? ¿Y si tiene 12? ¿Y si tiene 15? ✓ 3<br />
14. A cada cual, según sus necesidades. Se ha observado que, a<br />
menudo, las mitocondrias de las células musculares presentan<br />
más crestas que las mitocondrias de las células hepáticas. Sugiera<br />
una explicación. ✓ 4<br />
15. Todo está conectado. Si se exponen mitocondrias que están<br />
respirando activamente a un inhibidor de la ATP-ADP translocasa,<br />
la cadena transportadora de electrones se detiene. ¿Por<br />
qué? ✓ 4<br />
16. Exagerando la diferencia. ¿Por qué la ATP-ADP translocasa<br />
tiene que utilizar formas de ATP y de ADP libres de Mg21 ?<br />
✓ 4<br />
17. Carraca browniana. ¿Qué es lo que provoca la rotación de<br />
las subunidades c de la ATP sintasa? ¿Qué es lo que determina<br />
el sentido de giro? ✓ 3<br />
18. Multiuso. Cite un ejemplo del uso de la <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong><br />
que no sea la síntesis de ATP.<br />
19. Conexiones. ¿Cómo afecta la inhibición de la ATP-ADP translocasa<br />
al ciclo del ácido cítrico? ¿Y a la glicolisis aeróbica? ✓ 4<br />
20. Control respiratorio. <strong>La</strong> velocidad de consumo de oxígeno<br />
por parte de las mitocondrias aumenta notablemente cuando<br />
se añade ADP para descender después hasta su valor inicial<br />
cuando el ADP añadido se ha convertido en ATP (ver la Figura<br />
21.15). ¿Por qué disminuye la velocidad? ✓ 4<br />
21. Lo mismo, pero distinto. ¿Por qué el intercambio eléctricamente<br />
neutro de H 2<br />
2PO4 por OH2 es indistinguible del simporte<br />
eléctricamente neutro de H 2<br />
2PO4 y H1 ?<br />
22. En contra de lo que cabría esperar. En determinadas condiciones,<br />
se ha observado que la ATP sintasa mitocondrial opera<br />
en sentido inverso. ¿Cómo afectaría esta situación a la <strong>fuerza</strong><br />
<strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong>?<br />
23. No es un rumor sino una evidencia. Describa las evidencias<br />
que respaldan la hipótesis quimiosmótica. ✓ 3<br />
24. Imposición de un gradiente. Los mitoplastos son mitocondrias<br />
que carecen de la membrana externa pero que siguen<br />
siendo capaces de llevar a cabo la fosforilación oxidativa. Su-<br />
ponga que introduce mitoplastos en un tampón a pH 7 durante<br />
varias horas. A continuación, recupera rápidamente los mitoplastos<br />
y los introduce en un tampón a pH 4 que contiene<br />
ADP y P i. ¿Se sintetizaría ATP? Explique por qué. ✓ 3<br />
Problemas de integración de capítulos<br />
25. Obedeciendo las leyes de la termodinámica. ¿Por qué las subunidades<br />
F 1 aisladas tendrán actividad ATPasa pero no actividad<br />
ATP sintasa? Entonces, ¿por qué la enzima funciona en<br />
las mitocondrias como una ATP sintasa?<br />
26. ¿Etiología? ¿Qué quiere decir eso? <strong>La</strong> rotenona aumente la<br />
susceptibilidad a la enfermedad de Parkinson ¿Qué indica este<br />
hecho sobre la etiología de esta enfermedad?<br />
27. El lugar correcto. Algunas quinasas citoplasmáticas, enzimas<br />
que fosforilan sustratos a costa del ATP, se unen a canales<br />
aniónicos dependientes del voltaje (VDACs, p. 351). ¿Cuál es la<br />
ventaja de este tipo de unión?<br />
28. Sin intercambio. Mediante la técnica del “knockout” se<br />
pueden generar ratones que carecen por completo de la ATP-<br />
ADP translocasa (ANT 2 / ANT 2 ). Curiosamente, estos ratones<br />
son viables pero presentan los siguientes estados patológicos:<br />
(1) niveles elevados de lactato, alanina y succinato en la<br />
sangre; (2) poco transporte de electrones y (3) los niveles de<br />
H 2O 2 en las mitocondrias son entre 6 y 8 veces más altos de los<br />
observados en ratones normales. Sugiera una posible explicación<br />
bioquímica para cada uno de estos síntomas. ✓ 4<br />
29. Rutas alternativas. <strong>La</strong> señal metabólica más habitual de un<br />
trastorno mitocondrial es la acidosis láctica. ¿Por qué? ✓ 4<br />
Problema de interpretación de datos para atrevidos<br />
30. Enfermedad mitocondrial. Se ha identificado una mutación<br />
en un gen mitocondrial que codifica un componente de<br />
la ATP sintasa. <strong>La</strong>s personas que presentan esta mutación padecen<br />
debilidad muscular, ataxia y retinitis pigmentosa. Se<br />
realizaron biopsias de los tejidos de tres pacientes que presentaban<br />
esta mutación y se aislaron partículas submitocondriales<br />
que eran capaces de sintetizar ATP a partir de succinato.<br />
En primer lugar se midió la actividad de la ATP sintasa<br />
tras la adición de succinato y se obtuvieron los siguientes<br />
resultados.<br />
Actividad ATP sintasa (nmoles de ATP formados min 21 mg 21 )<br />
Controles 3,0<br />
Paciente 1 0,25<br />
Paciente 2 0,11<br />
Paciente 3 0,17<br />
(a) ¿Con qué fin se añadió el succinato?<br />
(b) ¿Cuál es el efecto de la mutación sobre la síntesis de ATP<br />
asociada al succinato?<br />
A continuación se midió la actividad ATPasa de la enzima incubando<br />
las partículas submitocondriales con ATP en ausencia<br />
de succinato.
Hidrólisis de ATP (nmoles de ATP hidrolizados min 21 mg 21 )<br />
Controles 33<br />
Paciente 1 30<br />
Paciente 2 25<br />
Paciente 3 31<br />
(c) ¿Por qué se excluye al succinato de la reacción?<br />
(d) ¿Cuál es ele efecto de la mutación sobre la hidrólisis del<br />
ATP?<br />
(e) ¿Qué indican estos resultados, junto con los del primer<br />
experimento, sobre la naturaleza de la mutación?<br />
Problemas para atrevidos<br />
31. Cocientes P:O. El cociente P:O se puede utilizar para monitorizar<br />
la fosforilación oxidativa (ver el problema 7).<br />
(a) ¿Qué relación hay entre el cociente P:O, el cociente<br />
H 1 /2e 2 (el número de protones translocados por cada par de<br />
electrones) y el cociente P/ H 1 (el número de protones necesarios<br />
para sintetizar ATP y transportarlo al citoplasma)?<br />
(b) ¿Cuál es el cociente P:O en el caso de los electrones cedidos<br />
por el NADH de la matriz? ¿Y en el caso de los electrones<br />
cedidos por el succinato?<br />
Problemas 385<br />
32. Antídoto para el cianuro. <strong>La</strong> administración inmediata de<br />
nitrito es un tratamiento muy eficaz para el envenenamiento<br />
por cianuro. ¿En qué se basa la actuación de este antídoto?<br />
(Pista: el nitrito oxida la ferrohemoglobina a ferrihemoglobina).<br />
33. Cambio de divisas. Para una <strong>fuerza</strong> <strong>protón</strong>-<strong>motriz</strong> de 0,2 V<br />
(negativa en la matriz), ¿cuál es la máxima proporción [ATP]/<br />
[ADP][P i] compatible con la síntesis de ATP? Calcule esta proporción<br />
tres veces, suponiendo que el número de protones<br />
translocados por cada ATP formada es de dos, tres y cuatro y<br />
que la temperatura es de 25 °C. ✓ 3<br />
34. Identificando la inhibición. Se le pide que determine si un<br />
producto químico es un inhibidor de la cadena transportadora<br />
de electrones o un inhibidor de la ATP sintasa. Diseñe un<br />
experimento para hacer esta comprobación.<br />
En la dirección www.whfreeman.com/tymoczko2e se pueden encontrar lecturas recomendadas para este capítulo.