Patrones y mecanismos de control del desarrollo folicular ... - Inia
Patrones y mecanismos de control del desarrollo folicular ... - Inia
Patrones y mecanismos de control del desarrollo folicular ... - Inia
You also want an ePaper? Increase the reach of your titles
YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.
<strong>Patrones</strong> y <strong>mecanismos</strong> <strong>de</strong> <strong>control</strong> <strong>de</strong>l <strong>de</strong>sarrollo <strong>folicular</strong> durante<br />
la administración <strong>de</strong> protocolos superovulatorios en pequeños<br />
rumiantes (Revisión)<br />
A. González-Bulnes *, J. Santiago-Moreno, R.M. García-García, M.J. Cocero,<br />
A. López-Sebastián<br />
Dpto. Reproducción Animal. INIA. Avda. Puerta <strong>de</strong> Hierro s/n. 28040-Madrid. España<br />
bulnes@inia.es<br />
RESUMEN<br />
En pequeños rumiantes, las técnicas <strong>de</strong> superovulación y transferencia <strong>de</strong> embriones constituyen, en la actualidad,<br />
una herramienta imprescindible para el <strong>de</strong>sarrollo tanto <strong>de</strong> programas <strong>de</strong> conservación <strong>de</strong> recursos genéticos<br />
en razas con bajo número <strong>de</strong> efectivos, como <strong>de</strong> programas <strong>de</strong> mejora genética <strong>de</strong>stinados a aumentar las<br />
producciones gana<strong>de</strong>ras. Su fundamento es el incremento <strong>de</strong>l número <strong>de</strong> ovulaciones y <strong>de</strong> embriones viables por<br />
hembra seleccionada y ciclo mediante tratamientos hormonales. Sin embargo, y a pesar <strong>de</strong> las mejoras alcanzadas<br />
en los últimos años en cuanto a eficacia <strong>de</strong> los protocolos utilizados, los rendimientos <strong>de</strong> estas técnicas se<br />
encuentran afectados por una alta variabilidad; entre grupos <strong>de</strong> tratamiento y entre animales en el mismo grupo.<br />
Esta variabilidad ha sido relacionada con la influencia <strong>de</strong> factores intraováricos; concretamente, la población <strong>folicular</strong><br />
y las relaciones entre los folículos presentes en el ovario en el inicio <strong>de</strong>l tratamiento. Esta revisión preten<strong>de</strong><br />
ofrecer una visión actualizada <strong>de</strong> las características <strong>de</strong>l <strong>de</strong>sarrollo <strong>folicular</strong> en ovejas y cabras, y su influencia<br />
sobre los rendimientos obtenidos en tratamientos <strong>de</strong> superovulación.<br />
Palabras clave: cabra, oveja, ovario, dinámica <strong>folicular</strong>, superovulación.<br />
INTRODUCCIÓN<br />
La tasa <strong>de</strong> ovulación es un carácter muy constante en los mamíferos y estrechamente<br />
relacionado con la especie por factores genéticos. Así, las especies ovina y caprina muestran<br />
una tasa <strong>de</strong> ovulación muy reducida; aunque <strong>de</strong>be señalarse la existencia <strong>de</strong> variaciones<br />
entre razas, con oscilaciones entre 1 y 4 cuerpos lúteos en cada ciclo. El número <strong>de</strong><br />
* Autor para correspon<strong>de</strong>ncia<br />
Recibido: 22-5-02<br />
Aceptado para su publicación: 12-8-02<br />
Invest. Agr.: Prod. Sanid. Anim. Vol. 17 (1-2), 2002
38 A. GONZÁLEZ-BULNES et al.<br />
ovulaciones durante el ciclo sexual, inmediatamente <strong>de</strong>spués <strong>de</strong> la luteolisis, está relacionado<br />
con el número <strong>de</strong> folículos que se <strong>de</strong>sarrollan hasta alcanzar el estadio preovulatorio.<br />
A su vez, la dinámica <strong>de</strong> crecimiento <strong>de</strong> estos folículos está condicionada por un equilibrio<br />
entre <strong>mecanismos</strong> <strong>de</strong> estimulación y <strong>de</strong> inhibición <strong>de</strong>l crecimiento <strong>folicular</strong>, que<br />
pue<strong>de</strong>n actuar tanto a nivel sistémico como intraovárico. Los factores sistémicos son<br />
aquellos pertenecientes al eje hipotálamo-hipófisis-ovario; <strong>de</strong>stacan las gonadotropinas<br />
hipofisarias (FSH y LH), con acción estimulante, y el estradiol y la inhibina, con acción<br />
inhibidora. Los factores intraováricos se originan y actúan a nivel <strong>de</strong>l ovario; igualmente<br />
pue<strong>de</strong>n ser estimulantes (activina y factores <strong>de</strong> crecimiento) o inhibidores (estradiol e inhibina).<br />
Así, el incremento <strong>de</strong> la <strong>de</strong>scen<strong>de</strong>ncia <strong>de</strong> una <strong>de</strong>terminada hembra mediante la obtención<br />
y transferencia <strong>de</strong> sus embriones, hace necesaria la utilización <strong>de</strong> tratamientos <strong>de</strong> estimulación<br />
<strong>de</strong>l <strong>de</strong>sarrollo <strong>folicular</strong> y la ovulación mediante el aporte <strong>de</strong> gonadotropinas<br />
exógenas. La mejora <strong>de</strong> los resultados obtenidos en estos tratamientos pasa por un mejor<br />
conocimiento <strong>de</strong> los patrones <strong>de</strong> crecimiento y dinámica <strong>folicular</strong>; que ha sido posible con<br />
la incorporación <strong>de</strong> técnicas como la ultrasonografía transrectal. Esta metodología permite<br />
realizar mediciones exactas <strong>de</strong>l diámetro <strong>de</strong> todos los folículos presentes en el ovario en<br />
días consecutivos y, con ello, realizar el seguimiento <strong>de</strong> su crecimiento, ovulación o regresión<br />
y establecer sus relaciones con otros folículos (Fig. 1).<br />
Fig. 1.–Imagen ecográfica <strong>de</strong> un ovario en que pue<strong>de</strong>n observarse un folículo <strong>de</strong> tamaño<br />
preovulatorio (F) y un cuerpo lúteo (CL)
<strong>Patrones</strong> <strong>de</strong> dinámica <strong>folicular</strong> durante el ciclo sexual<br />
La foliculogénesis en el ovario <strong>de</strong> especies poco prolíficas, como la ovina o caprina,<br />
se caracteriza por el <strong>de</strong>sarrollo simultáneo <strong>de</strong> subpoblaciones <strong>de</strong> folículos que presentan<br />
características funcionales diferentes, según su capacidad <strong>de</strong> respuesta y grado <strong>de</strong> <strong>de</strong>pen<strong>de</strong>ncia<br />
<strong>de</strong>l aporte <strong>de</strong> gonadotropinas hipofisarias, FSH y LH. El crecimiento <strong>folicular</strong> en<br />
los estadios preantrales sería in<strong>de</strong>pendiente <strong>de</strong> ambas gonadotropinas. La aparición y aumento<br />
<strong>de</strong> tamaño <strong>de</strong>l antrum dan lugar a una serie <strong>de</strong> cambios funcionales en el folículo<br />
que <strong>de</strong>terminan su entrada en la fase <strong>de</strong> crecimiento terminal rápido. Los primeros estudios<br />
<strong>de</strong> dinámica <strong>folicular</strong> durante el ciclo sexual en pequeños rumiantes mediante ultrasonografía<br />
fueron realizados en ovejas con ovulación múltiple (Schrick et al., 1993), y<br />
mostraron que la entrada <strong>de</strong> los folículos en la fase <strong>de</strong> crecimiento terminal se produce <strong>de</strong><br />
forma continua. Algunos <strong>de</strong> estos folículos alcanzan el tamaño preovulatorio, aunque no<br />
llegan a ovular, tanto durante la fase <strong>folicular</strong> como la fase luteal (Ravindra et al., 1994).<br />
Sin embargo, existen días durante el ciclo en que se ve aumentado el número <strong>de</strong> folículos<br />
en <strong>de</strong>sarrollo; lo que para Ginther et al. (1995), constituyen una onda <strong>de</strong> crecimiento similar<br />
a las <strong>de</strong>scritas en el ciclo sexual <strong>de</strong> la vaca. En ovejas prolíficas no se observa tampoco<br />
que los folículos <strong>de</strong> tamaño preovulatorio existentes durante la fase luteal ejerzan una dominancia<br />
similar a la <strong>de</strong>scrita en vacuno (Guilbault et al., 1991). La misma controversia<br />
existe entre los resultados obtenidos en cabras, con estudios que han i<strong>de</strong>ntificado ondas <strong>de</strong><br />
crecimiento (Ginther y Kot, 1994), y estudios que han i<strong>de</strong>ntificado crecimiento continuo<br />
en el caso <strong>de</strong> las cabras <strong>de</strong> raza Murciano-Granadina (González-Bulnes et al., 1999c),<br />
como se muestra en la figura 2.<br />
10<br />
9<br />
8<br />
7<br />
6<br />
5<br />
4<br />
3<br />
2<br />
DINÁMICA FOLICULAR Y SUPEROVULACIÓN EN PEQUEÑOS RUMIANTES 39<br />
2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22<br />
Fig. 2.–<strong>Patrones</strong> <strong>de</strong> crecimiento y regresión individuales <strong>de</strong> los folículos que alcanzan un tamaño<br />
igual o superior a 4 mm durante el ciclo sexual <strong>de</strong> cabras Murciano-Granadina con ovulación<br />
simple (A) y doble (B)<br />
Estas diferencias en la dinámica <strong>folicular</strong> entre especies podrían estar relacionadas<br />
con las diferencias en la tasa <strong>de</strong> ovulación; sin embargo, el estudio <strong>de</strong> la dinámica <strong>folicular</strong><br />
en ovejas Merinas con una sola ovulación (López Sebastián et al., 1997) indica que los<br />
folículos aparecen, crecen y regresan también <strong>de</strong> forma continua en el tiempo. En estos<br />
estudios, se señala un índice <strong>de</strong> regresión <strong>folicular</strong> más rápido que en razas prolíficas,<br />
Invest. Agr.: Prod. Sanid. Anim. Vol. 17 (1-2), 2002<br />
A<br />
10<br />
9<br />
8<br />
7<br />
6<br />
5<br />
4<br />
3<br />
2<br />
2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22<br />
B
40 A. GONZÁLEZ-BULNES et al.<br />
coincidiendo con las hipótesis que i<strong>de</strong>ntifican como factor limitante <strong>de</strong> la ovulación la<br />
atresia y no el reclutamiento <strong>de</strong> folículos (Driancourt et al., 1990).<br />
Asimismo, al igual que en ovejas poliovulares, en ovejas Merinas con tasa <strong>de</strong> ovulación<br />
igual a uno no existe efecto <strong>de</strong> dominancia <strong>folicular</strong> clara hasta el período <strong>de</strong> aparición<br />
y crecimiento <strong>de</strong>l folículo preovulatorio. Este efecto se observa <strong>de</strong>s<strong>de</strong> este momento<br />
y hasta el celo y ha sido confirmado mediante el seguimiento ecográfico <strong>de</strong> la fase <strong>folicular</strong><br />
en hembras también monovulares <strong>de</strong> muflón, especie <strong>de</strong> ovino silvestre (González-Bulnes<br />
et al., 2001a). El efecto <strong>de</strong> dominancia en el ovino vendría marcado por un aumento<br />
significativo en diferencia <strong>de</strong> tamaño entre el folículo ovulatorio y el resto, que comienza<br />
a disminuir su tamaño al entrar en atresia. Sin embargo, el efecto <strong>de</strong> dominancia<br />
por parte <strong>de</strong>l folículo preovulatorio es también diferente <strong>de</strong>l observado en vacuno, ya que<br />
no estaría <strong>de</strong>terminado por una anulación sino por un <strong>de</strong>scenso en el reclutamiento <strong>de</strong> folículos<br />
gonadotropo-receptivos y por una disminución <strong>de</strong> su crecimiento hasta categorías<br />
superiores (Fig. 3). Esta observación confirmaría <strong>de</strong> nuevo la hipótesis <strong>de</strong> Driancourt et<br />
al. (1990), respecto al papel prepon<strong>de</strong>rante <strong>de</strong> la atresia como factor limitante <strong>de</strong> la tasa<br />
<strong>de</strong> ovulación.<br />
Número <strong>de</strong> folículos<br />
1,6<br />
1,4<br />
1,2<br />
1<br />
0,8<br />
0,6<br />
0,4<br />
0,2<br />
0<br />
Medianos<br />
Gran<strong>de</strong>s<br />
–24 0 24 48 72 96<br />
Horas respecto cloprostenol<br />
Fig. 3.–Disminución <strong>de</strong>l número <strong>de</strong> folículos <strong>de</strong> 4-5 mm coinci<strong>de</strong>ntes con la aparición <strong>de</strong>l folículo<br />
preovulatorio durante la fase <strong>folicular</strong> <strong>de</strong>l ciclo sexual en hembras <strong>de</strong> muflón (izquierda) y<br />
disminución <strong>de</strong>l número <strong>de</strong> folículos nuevos que alcanzan un tamaño igual o superior a3y4mm<br />
en alguna <strong>de</strong> las observaciones siguientes (<strong>de</strong>recha)<br />
El mecanismo por el que se produce la dominancia <strong>folicular</strong> estaría relacionado con<br />
la <strong>de</strong>pen<strong>de</strong>ncia <strong>de</strong> la FSH que muestran los folículos antrales para su crecimiento. Los folículos<br />
<strong>de</strong> tamaño preovulatorio secretan altos niveles <strong>de</strong> inhibina y estradiol, con lo que<br />
disminuyen los niveles <strong>de</strong> FSH y causan la atresia <strong>de</strong> los folículos menores. Los folículos<br />
preovulatorios evitarían su propia entrada en atresia cambiando sus necesida<strong>de</strong>s <strong>de</strong> FSH<br />
hacia LH; en respuesta a la cual crecen y maduran hasta el estadio ovulatorio. Sin embargo,<br />
durante la fase luteal, la frecuencia <strong>de</strong> pulsatilidad <strong>de</strong> LH permanece baja <strong>de</strong>bido al<br />
efecto inhibidor <strong>de</strong> la progesterona y los folículos preovulatorios no tienen oportunidad <strong>de</strong><br />
establecer su dominancia. En fase <strong>folicular</strong>, la <strong>de</strong>saparición <strong>de</strong>l cuerpo lúteo provoca el<br />
Número <strong>de</strong> folículos<br />
3<br />
2,5<br />
2<br />
1,5<br />
1<br />
0,5<br />
0<br />
N3<br />
N4<br />
0 24 48 72 96<br />
Horas respecto cloprostenol
DINÁMICA FOLICULAR Y SUPEROVULACIÓN EN PEQUEÑOS RUMIANTES 41<br />
<strong>de</strong>scenso <strong>de</strong> los niveles <strong>de</strong> progesterona y el aumento <strong>de</strong> los niveles <strong>de</strong> LH; es el momento<br />
en que la dominancia pue<strong>de</strong> ser establecida.<br />
El objetivo <strong>de</strong> un tratamiento <strong>de</strong>stinado a aumentar la tasa <strong>de</strong> ovulación sería, pues,<br />
vencer los <strong>mecanismos</strong> inhibidores establecidos por el folículo dominante. Por ello, los<br />
protocolos <strong>de</strong> superovulación y transferencia <strong>de</strong> embriones implican el aporte <strong>de</strong> altas<br />
cantida<strong>de</strong>s <strong>de</strong> FSH. El protocolo <strong>de</strong> estimulación utilizado actualmente por nuestro laboratorio<br />
para ganado caprino consiste en la inducción y sincronización <strong>de</strong> celos mediante la<br />
inserción <strong>de</strong> una esponja intravaginal <strong>de</strong> 45 mg <strong>de</strong> FGA (acetato <strong>de</strong> fluorogestona; Chronogest®,<br />
Intervet Int., H) durante 16 días, junto con una sola dosis i.m. <strong>de</strong> 0,4 ml <strong>de</strong> cloprostenol,<br />
análogo <strong>de</strong> la prostaglandina F 2 (Estrumate, Mallinckrodt Vet., G), en el<br />
momento <strong>de</strong> iniciar el tratamiento superovulatorio con FSH; esto es, 60 horas antes <strong>de</strong> la<br />
retirada <strong>de</strong>l progestágeno. El tratamiento superovulatorio consiste en la administración <strong>de</strong><br />
8 dosis iguales <strong>de</strong> 1,25 ml <strong>de</strong> FSH ovina (Ovagen, ICP, NZ) con 12 horas <strong>de</strong> intervalo.<br />
La octava inyección <strong>de</strong> FSH sólo se administra en aquellas hembras que 24 horas <strong>de</strong>spués<br />
<strong>de</strong> la retirada <strong>de</strong> la esponja, aun no presentan síntomas <strong>de</strong> celo. El uso <strong>de</strong> este protocolo<br />
en un total <strong>de</strong> 170 hembras ha proporcionado una media <strong>de</strong> 14,3 0,5 cuerpos lúteos,<br />
11,3 0,5 embriones recuperados y 6,8 0,4 embriones viables, consi<strong>de</strong>rando como tales<br />
sólo los <strong>de</strong> calidad grado 1, que son los congelables (González <strong>de</strong> Bulnes et al., 2001b).<br />
En el caso <strong>de</strong>l ganado ovino, el protocolo tipo es similar al <strong>de</strong>l ganado caprino, salvo que<br />
las dosis <strong>de</strong> FSH son <strong>de</strong>crecientes (1,5; 1,5; 1,5; 1,25; 1,25; 1; 1; 1 ml), y como método <strong>de</strong><br />
sincronización <strong>de</strong> celo se utilizan 2 esponjas intravaginales <strong>de</strong> 40 mg <strong>de</strong> FGA, sustituyendo<br />
la primera 7 días <strong>de</strong>spués <strong>de</strong> su inserción. Asimismo, coincidiendo con la primera inyección<br />
<strong>de</strong> FSH se administran 0,5 ml <strong>de</strong> cloprostenol (Estrumate). Este protocolo permite<br />
la obtención <strong>de</strong> una media <strong>de</strong> 15,9 1,9 cuerpos lúteos, 13,5 2,4 embriones recuperados<br />
y 7,0 1,7 embriones viables (Cocero et al., 1999).<br />
Características <strong>de</strong> la dinámica <strong>folicular</strong> durante el tratamiento <strong>de</strong> superovulación<br />
La aplicación <strong>de</strong> la ecografía durante el tratamiento <strong>de</strong> superovulación permite conocer<br />
las variaciones que se producen en la población <strong>folicular</strong> por influencia <strong>de</strong> las gonadotropinas<br />
exógenas (Fig. 4). En los estudios realizados en ganado ovino, la administración<br />
<strong>de</strong> FSH en los protocolos habituales, con inyecciones cada 12 horas, comienza a actuar<br />
sobre la población <strong>folicular</strong> presente en el ovario <strong>de</strong> la oveja entre 12 y 24 horas <strong>de</strong>l inicio<br />
<strong>de</strong>l tratamiento. A partir <strong>de</strong> ese momento, y hasta las 48 horas, se observa un marcado<br />
crecimiento <strong>de</strong> los folículos <strong>de</strong>s<strong>de</strong> los 2 mm <strong>de</strong> diámetro hasta los 5 mm. Los folículos en<br />
crecimiento alcanzaran el tamaño preovulatorio entre las 36 y 60 horas, pero especialmente<br />
entre las 48 y 60 horas (González-Bulnes et al., 1995a). Este perfil <strong>de</strong> crecimiento varía,<br />
sin embargo, en función <strong>de</strong>l tipo <strong>de</strong> preparado comercial <strong>de</strong> FSH y <strong>de</strong> su protocolo <strong>de</strong><br />
administración; sin embargo, una característica constante <strong>de</strong> los folículos que ovulan<br />
como consecuencia <strong>de</strong> la administración <strong>de</strong> dosis superovulatorias <strong>de</strong> gonadotropinas es<br />
su menor tamaño respecto al <strong>de</strong> los folículos ovulatorios presentes durante el ciclo sexual,<br />
como ya <strong>de</strong>scribieron Driancourt et al. (1991).<br />
El conocimiento <strong>de</strong>l <strong>de</strong>sarrollo <strong>folicular</strong> en respuesta a los tratamientos con gonadotropinas<br />
pue<strong>de</strong> resultar <strong>de</strong> gran interés a nivel práctico, como ya lo es en el ganado vacuno,<br />
para evaluar la respuesta ovárica durante la aplicación <strong>de</strong> diferentes protocolos <strong>de</strong> superovulación<br />
y la tasa <strong>de</strong> ovulación esperable (González-Bulnes et al., 2000a). A<strong>de</strong>más,<br />
Invest. Agr.: Prod. Sanid. Anim. Vol. 17 (1-2), 2002
42 A. GONZÁLEZ-BULNES et al.<br />
Fig. 4.–Imagen ecográfica <strong>de</strong> un ovario durante el ciclo sexual (izquierda), en que pue<strong>de</strong>n<br />
observarse varios folículos <strong>de</strong> diferentes tamaños. Población <strong>folicular</strong> en ambos ovarios <strong>de</strong> una<br />
oveja sometida a un tratamiento <strong>de</strong> superovulación (<strong>de</strong>recha)<br />
la observación ecográfica <strong>de</strong> los ovarios en el momento <strong>de</strong> llevar a cabo la recogida <strong>de</strong><br />
embriones permitiría <strong>de</strong>terminar si se ha producido la respuesta superovulatoria y diferenciar<br />
cuerpos luteos <strong>de</strong> folículos anovulatorios o luteinizados (González-Bulnes et al.,<br />
1999b). El uso <strong>de</strong> la ecografía constituye también una aportación muy significativa para<br />
el <strong>de</strong>sarrollo <strong>de</strong> estudios sobre los factores limitantes <strong>de</strong> la respuesta ovulatoria a un tratamiento<br />
<strong>de</strong> superovulación, tanto los <strong>de</strong>pendientes <strong>de</strong>l tratamiento (tipo <strong>de</strong> gonadotropina y<br />
protocolo <strong>de</strong> administración) como aquellos <strong>de</strong>pendientes <strong>de</strong>l animal (estatus <strong>folicular</strong>),<br />
que pue<strong>de</strong>n conducir a la mejora <strong>de</strong> los protocolos <strong>de</strong> superovulación utilizados.<br />
Efecto <strong>de</strong>l tipo <strong>de</strong> gonadotropinas exógenas sobre la dinámica <strong>folicular</strong><br />
Las observaciones realizadas en ganado bovino indican que el efecto <strong>de</strong>l tratamiento<br />
sobre la tasa <strong>de</strong> ovulación podría verse <strong>de</strong>terminado principalmente por el tipo <strong>de</strong> hormona<br />
utilizada y, especialmente, por su contenido en LH (Boland et al., 1991), ya que un aumento<br />
<strong>de</strong> LH disminuye la respuesta ovárica (Chupin et al., 1984; Murphy et al., 1984);<br />
lo que también se ha encontrado en la oveja (Torres et al., 1987; Picazo et al., 1995). El<br />
seguimiento <strong>de</strong> ovejas tratadas con un preparado altamente purificado y prácticamente sin<br />
LH (Ovagen) o con un preparado con una cantidad alta y variable <strong>de</strong> LH (FSH-P)<br />
mostró que si bien no se encontraron diferencias en la tasa <strong>de</strong> ovulación en respuesta al<br />
tratamiento, la existencia <strong>de</strong> altos niveles <strong>de</strong> LH en el preparado comercial utilizado provoca<br />
una mayor tasa <strong>de</strong> reclutamiento <strong>folicular</strong> (Fig. 5), como ya <strong>de</strong>scribieron Picton et<br />
al. (1990), pero a la vez aumenta la tasa <strong>de</strong> regresión y disminuye sus posibilida<strong>de</strong>s para<br />
ovular (González-Bulnes et al., 2000a). Ambos efectos pue<strong>de</strong>n relacionarse con el hecho<br />
<strong>de</strong> que altos niveles <strong>de</strong> LH alteran los receptores presentes en el folículo para esta hormona<br />
y, con ello, los <strong>mecanismos</strong> <strong>de</strong> prevención <strong>de</strong> la atresia (Boland et al., 1991) y los <strong>mecanismos</strong><br />
<strong>de</strong> la ovulación (Murphy et al., 1984). Este último efecto se ve reforzado por el
25<br />
20<br />
15<br />
10<br />
5<br />
0<br />
Número <strong>de</strong> folículos<br />
A<br />
DINÁMICA FOLICULAR Y SUPEROVULACIÓN EN PEQUEÑOS RUMIANTES 43<br />
Pequeños Medianos Gran<strong>de</strong>s<br />
–48 –36 –24 –12 0 12 24 36<br />
Fig. 5.–Número medio <strong>de</strong> folículos pequeños (2-3 mm), medianos (4-5 mm), gran<strong>de</strong>s ( 6 mm) y<br />
totales ( 2 mm) en ovejas tratadas con FSH-P (A) u OVAGEN (B)<br />
hecho <strong>de</strong> que los altos niveles <strong>de</strong> LH alteran, e incluso impi<strong>de</strong>n, la <strong>de</strong>scarga preovulatoria<br />
<strong>de</strong> esta hormona (Taft et al., 1996). En esencia, la utilización <strong>de</strong> preparados comerciales<br />
con FSH purificada supone un mejor aprovechamiento <strong>de</strong> la población <strong>folicular</strong>, evitando<br />
la estimulación excesiva sin resultados prácticos en cuanto a ovulación y obtención <strong>de</strong><br />
embriones.<br />
Efecto <strong>de</strong>l protocolo <strong>de</strong> administración <strong>de</strong> las gonadotropinas exógenas sobre la dinámica<br />
<strong>folicular</strong><br />
Otro efecto <strong>de</strong>l tratamiento se <strong>de</strong>be al protocolo utilizado. Habitualmente, consiste en<br />
la administración <strong>de</strong> entre 6y8inyecciones <strong>de</strong> FSH, separadas 12 horas entre sí. La observación<br />
<strong>de</strong> la dinámica <strong>folicular</strong> en protocolos <strong>de</strong> superovulación con 6 inyecciones <strong>de</strong><br />
1,25 ml o con 8 dosis <strong>de</strong> 1 ml <strong>de</strong>l mismo preparado <strong>de</strong> FSH, Ovagen (González-Bulnes<br />
et al., 1997a), muestra que tanto el número medio <strong>de</strong> folículos <strong>de</strong> 4-5 mm como el <strong>de</strong> 6<br />
mm son más bajos cuando se administran 8 inyecciones <strong>de</strong> 1 ml (5,8 vs 10,7 y 2,5 vs 4,0,<br />
respectivamente). Sin embargo, las diferencias entre grupos no eran significativas. A pesar<br />
<strong>de</strong> ello, el número <strong>de</strong> cuerpos lúteos fue significativamente mayor en el protocolo con<br />
las dosis más altas, en concreto <strong>de</strong> 1,25 ml (9,0 vs 3,3; p < 0,001), lo que parece indicar<br />
que las diferencias en la tasa <strong>de</strong> ovulación podrían estar más relacionadas con el <strong>de</strong>sarrollo<br />
<strong>folicular</strong> en el período inmediatamente previo a la ovulación.<br />
A pesar <strong>de</strong> que ICP, el laboratorio fabricante <strong>de</strong> Ovagen, recomienda la utilización <strong>de</strong><br />
dosis constantes para simplicar el manejo, resultados <strong>de</strong> experiencias anteriores muestran<br />
mejores resultados cuando se utilizan dosis <strong>de</strong>crecientes (Cocero et al., 1999). Los análisis<br />
preliminares realizados mediante el seguimiento por ecografía <strong>de</strong> este tratamiento indican<br />
que este protocolo induce el crecimiento <strong>de</strong> un mayor número <strong>de</strong> folículos hacia las<br />
categorías preovulatorias (Fig. 6).<br />
Invest. Agr.: Prod. Sanid. Anim. Vol. 17 (1-2), 2002<br />
25<br />
20<br />
15<br />
10<br />
Horas respecto a la retirada <strong>de</strong> la esponja<br />
5<br />
0<br />
B<br />
–48 –36 –24 –12 0 12 24 36
44 A. GONZÁLEZ-BULNES et al.<br />
30<br />
25<br />
20<br />
15<br />
10<br />
5<br />
0<br />
Número <strong>de</strong> folículos<br />
Pequeños Medianos Gran<strong>de</strong>s<br />
–60 –48 –36 –24 –12 0<br />
Horas respecto a la retirada <strong>de</strong> la esponja<br />
Fig. 6.–Número medio <strong>de</strong> folículos pequeños (2-3 mm), medianos (4-5 mm), gran<strong>de</strong>s ( 6 mm) y<br />
totales ( 2 mm) en ovejas tratadas con un protocolo <strong>de</strong>creciente <strong>de</strong> OVAGEN<br />
Efecto <strong>de</strong>l estatus <strong>folicular</strong> previo sobre la respuesta a las gonadotropinas<br />
exógenas<br />
Los estudios realizados en ganado vacuno señalan que el factor <strong>de</strong>terminante <strong>de</strong> mayor<br />
importancia en un protocolo <strong>de</strong> superovulación en esta especie son las relaciones entre<br />
folículos, el estatus <strong>folicular</strong> existente en el momento <strong>de</strong> iniciar el tratamiento; factor<br />
<strong>de</strong>finido tanto por la presencia o ausencia <strong>de</strong> un folículo dominante como por la distribución<br />
<strong>de</strong> la población <strong>folicular</strong>. Así, la respuesta ovulatoria se verá favorecida por la existencia<br />
<strong>de</strong> un alto número <strong>de</strong> folículos <strong>de</strong> tamaño medio, capaces <strong>de</strong> crecer hasta el tamaño<br />
ovulatorio en ausencia <strong>de</strong> un folículo dominante (Bungartz y Niemman, 1994; Kohram et<br />
al., 1995). Una <strong>de</strong> las aplicaciones más directas <strong>de</strong> la ultrasonografía será, por tanto, la<br />
valoración <strong>de</strong> la población <strong>folicular</strong> y su distribución por tamaños en el momento <strong>de</strong> iniciar<br />
un tratamiento <strong>de</strong> superovulación, evitando el tratamiento <strong>de</strong> hembras que presenten<br />
un folículo dominante o eliminando este mediante diferentes tratamientos; uno <strong>de</strong> los más<br />
efectivos es su punción, puesto que aumenta el rendimiento en número <strong>de</strong> ovulaciones y<br />
el número <strong>de</strong> embriones viables obtenidos.<br />
En pequeños rumiantes, los estudios no se encuentran tan avanzados. La valoración<br />
<strong>de</strong>l efecto <strong>de</strong> la presencia <strong>de</strong> un folículo dominante en el comienzo <strong>de</strong> tratamientos <strong>de</strong> superovulación<br />
con una dosis única <strong>de</strong> eCG o FSH en ganado ovino señala la existencia <strong>de</strong><br />
un posible efecto limitante <strong>de</strong> dicho folículo sobre la respuesta al tratamiento (Rubianes et<br />
al., 1997; López Sebastián et al., 1999). Esto coinci<strong>de</strong> con el hecho <strong>de</strong> que la eliminación<br />
<strong>de</strong> los folículos mayores <strong>de</strong> 4 mm presentes en el ovario al inicio <strong>de</strong>l tratamiento, mediante<br />
administración continuada <strong>de</strong> antagonistas <strong>de</strong> la GnRH, induce un mayor número <strong>de</strong>
DINÁMICA FOLICULAR Y SUPEROVULACIÓN EN PEQUEÑOS RUMIANTES 45<br />
ovulaciones (Brebion et al., 1990). En los protocolos <strong>de</strong> superovulación con varias dosis<br />
<strong>de</strong> FSH, la presencia <strong>de</strong> un folículo <strong>de</strong> gran tamaño antes <strong>de</strong> iniciar el tratamiento no afecta<br />
significativamente a la tasa <strong>de</strong> ovulación obtenida (González-Bulnes et al., 1996b), que<br />
estaría más relacionada con el número <strong>de</strong> folículos <strong>de</strong> pequeño tamaño, 2-3 mm (González-Bulnes<br />
et al., 1999a). Así, un mayor número <strong>de</strong> estos folículos favorece una mayor<br />
tasa <strong>de</strong> ovulación y un mayor número <strong>de</strong> embriones (Fig. 7); in<strong>de</strong>pendientemente <strong>de</strong>l tipo<br />
<strong>de</strong> gonadotropina utilizada. Este hecho ha sido observado tanto en tratamientos con<br />
FSH-p con cierto contenido <strong>de</strong> LH (González-Bulnes et al., 1996) como con FSH ovina<br />
purificada (González-Bulnes et al., 1999a), a pesar <strong>de</strong> que la dinámica <strong>folicular</strong> previa a<br />
la ovulación sea diferente (González-Bulnes et al. 2000a). Estos resultados coinci<strong>de</strong>n con<br />
las hipótesis que indican que, durante la inserción <strong>de</strong> un progestágeno, no existen signos<br />
<strong>de</strong> dominancia <strong>folicular</strong> o que si esta existe, es un mecanismo pasivo <strong>de</strong>bido a la disminución<br />
<strong>de</strong> los niveles <strong>de</strong> FSH circulantes y fácil <strong>de</strong> evitar al administrar gonadotropinas exógenas<br />
(Driancourt et al., 1991).<br />
Cuerpo lúteos<br />
30<br />
25<br />
20<br />
15<br />
10<br />
5<br />
0<br />
y = 0.7657x + 4.494<br />
R 2 = 0.2219<br />
P
46 A. GONZÁLEZ-BULNES et al.<br />
(González-Bulnes et al., 1999a), como pue<strong>de</strong> observarse en la Tabla 1. El escaso número<br />
<strong>de</strong> estudios realizados en pequeños rumiantes hace difícil conocer las causas <strong>de</strong> este efecto,<br />
pero pue<strong>de</strong> hipotetizarse que la disminución en la tasa <strong>de</strong> recuperación y <strong>de</strong> viabilidad<br />
<strong>de</strong> los embriones obtenidos en presencia <strong>de</strong> un folículo dominante podrían relacionarse no<br />
tanto con alteraciones en los niveles endocrinos durante el período preovulatorio (González-Bulnes<br />
et al., 2000d) como con alteraciones en el <strong>de</strong>sarrollo <strong>folicular</strong> o en la maduración<br />
<strong>de</strong>l ovocito. Así, algunos <strong>de</strong> los folículos ovulados podrían estar en fases tempranas<br />
<strong>de</strong> atresia, con lo que la capacidad <strong>de</strong> ovulación o <strong>de</strong> <strong>de</strong>sarrollo <strong>de</strong> los ovocitos y/o embriones<br />
estaría disminuida.<br />
Tabla 1<br />
Rendimientos superovulatorios en ganado ovino en relación con la presencia o<br />
ausencia <strong>de</strong> un folículo 6 mm <strong>de</strong> diámetro al iniciar el tratamiento con FSH<br />
Folículo<br />
Presente Ausente<br />
Número <strong>de</strong> animales 18 12<br />
Tasa <strong>de</strong> ovulación 10,1 1,2 13,9 2,3<br />
Número <strong>de</strong> embriones recuperados 6,1 0,9 a 11,6 2,0 b<br />
Tasa <strong>de</strong> recuperación (%) 60,5 6,9 a 83,8 9,2 b<br />
Número <strong>de</strong> embriones viables 4,5 0,8 a 8,5 2,0 b<br />
Tasa <strong>de</strong> viabilidad (%) 70,6 8,3 83,6 7,2<br />
Número <strong>de</strong> oocitos no fertilizados 0,7 0,5 0<br />
Tasa <strong>de</strong> no fertilización (%) 9,3 6,0 0<br />
Número <strong>de</strong> embriones <strong>de</strong>generados 1,3 0,4 2,6 1,2<br />
Tasa <strong>de</strong> <strong>de</strong>generación (%) 20,0 6,6 16,1 0,8<br />
ab Valores con superíndices distintos son significativamente diferentes (P < 0,05).<br />
La actividad <strong>de</strong>l folículo dominante estaría <strong>de</strong>terminada por la situación endocrina <strong>de</strong><br />
la hembra. Así, los efectos inhibitorios están disminuidos cuando hay un cuerpo lúteo presente<br />
durante el período <strong>de</strong> tratamiento progestativo previo a la administración <strong>de</strong> FSH<br />
(González-Bulnes et al., 2000). Nuestras observaciones confirmarían la teoría <strong>de</strong> Adams<br />
(1999), según la cual, los efectos <strong>de</strong> dominancia estarían disminuidos en presencia <strong>de</strong> un<br />
cuerpo lúteo, lo que podría estar relacionado con los bajos niveles <strong>de</strong> LH inducidos por<br />
este cuerpo lúteo, <strong>de</strong> acuerdo con las hipótesis <strong>de</strong> Campbell et al. (1995). Coincidiendo<br />
con los resultados anteriores, los efectos inhibitorios <strong>de</strong> los folículos dominantes están<br />
disminuidos también en protocolos <strong>de</strong> superovulación realizados durante el período <strong>de</strong><br />
anestro estacional (González-Bulnes et al., 2000), en que los niveles <strong>de</strong> LH son también<br />
bajos.<br />
El análisis <strong>de</strong>l conjunto <strong>de</strong> estos resultados parece indicar que la vía a<strong>de</strong>cuada para incrementar<br />
los rendimientos <strong>de</strong> los protocolos <strong>de</strong> superovulación actuales consistiría en el<br />
aumento <strong>de</strong> los folículos gonadotropo-receptivos en buenas condiciones <strong>de</strong> <strong>de</strong>sarrollo,<br />
evitando la presencia <strong>de</strong> folículos capaces <strong>de</strong> ejercer dominancia.
DINÁMICA FOLICULAR Y SUPEROVULACIÓN EN PEQUEÑOS RUMIANTES 47<br />
SUMMARY<br />
Patterns and mechanism <strong>control</strong>ling follicular <strong>de</strong>velopment during superovulatory<br />
protocols in small ruminants (Review)<br />
In small ruminants, superovulation and embryo transfer is an essential procedure both for preservation of<br />
endangered breeds and genetic improvement in high-production breeds. Superovulation and embryo transfer is<br />
based on the increase of the number of ovulations and embryos per ewe and cycle by means of hormonal treatments.<br />
However, yields of these techniques remain affected by a high variability, between groups and animals in<br />
the same group, <strong>de</strong>spite improvement in efficiency of superovulatory protocols. This variability seems to be related<br />
with influence from intraovarian factors, such as the number of follicles and the relationship between them<br />
at start the FSH treatment. This revision analyzes the characteristics of follicular <strong>de</strong>velopment in sheep and<br />
goats and its influence on superovulatory yields.<br />
Key words: goat, sheep, ovary, follicular dynamics, superovulation.<br />
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS<br />
ADAMS G.P., 1999. Comparative patterns of follicle <strong>de</strong>velopment and selection in ruminants. J. Reprod. Fertil.<br />
Suppl. 54, 17-32.<br />
BOLAND M.P., GOULDING D., ROCHE J.F., 1991. Alternative gonadotrophins for superovulation in cattle.<br />
Theriogenology 35, 5-17.<br />
BREBION P., BELLOC J.P., BRIOIS M., 1990. Elite Lacaune ewes pretreated with a GnRH antagonist yield<br />
mor usable embryos following pFSH. 6 th Meeting AETE, Lyon, pp. 12.<br />
BUNGARTZ L., NIEMMAN H., 1994. Assessment of the presence of a dominant follicle and selection of dairy<br />
cows suitable for superovulation by a single ultrasound examination. J. Reprod. Fertil. 101, 583-591.<br />
CAMPBELL B.K., SCARAMUZZI R.J., WEBB R., 1995. Control of antral follicle <strong>de</strong>velopment and selection<br />
in sheep and cattle. J. Reprod. Fertil. Suppl. 49, 335-350.<br />
CHUPIN D., COGNIE Y., COMBARNOUS Y., PROCUREUR R., SAUMANDE J., 1987. Effect of purified<br />
LH and FSH on ovulation in the cow and ewe. En: Follicular growth and ovulation rate in farm animals.<br />
Roche J.F., O’Callaghan D., ed. Martinus Nijhoff. The Hague, 63-71.<br />
COCERO M.J., GONZÁLEZ-BULNES A., SANTIAGO MORENO J., GARCÍA LÓPEZ M., LÓPEZ<br />
SEBASTIÁN A., 1999. Efecto <strong>de</strong>l protocolo <strong>de</strong> administración <strong>de</strong> FSH ovina sobre los rendimientos superovulatorios<br />
en ovejas Manchegas. ITEA. 20, 702-704.<br />
DRIANCOURT M.A., FRY R.C., CAMPBELL B.K., MCNEILLY A.S., 1990. Granulosa cell content and production<br />
of steroids, inhibin and follicular pepti<strong>de</strong>s by large follicles from a range of prolific and non-prolific<br />
breeds of sheep. J. Reprod. Fertil. 43, 230-231.<br />
DRIANCOURT M.A., WEBB R., FRY R.C., 1991. Does follicular dominance occur in ewes? J. Reprod. Fert.<br />
93, 63-70.<br />
GINTHER O.J., KOT K., WILTBANK M.C., 1995. Associations between emergence of follicular waves and<br />
fluctuations in FSH concentrations during the estrous cycle in ewes. Theriogenology 43, 689-703.<br />
GINTHER O.J., KOT K., 1994. Follicular dynamics during the ovulatory season in goats. Theriogenology 42,<br />
987-1001.<br />
GONZÁLEZ-BULNES A., GARCÍA-GARCÍA R.M., SANTIAGO-MORENO J., SOUZA C.J.H., LÓPEZ-<br />
SEBASTIÁN A., COCERO M.J., BAIRD D.T., 2000d. Effects of follicular population on endocrine and<br />
ovarian response in superovulated ewes. 2000 Annual Meeting of the AETE, Santan<strong>de</strong>r.<br />
GONZÁLEZ-BULNES A., SANTIAGO-MORENO J., COCERO M.J., LÓPEZ-SEBASTIÁN A., 2000a.<br />
Effects of FSH commercial preparation and follicular status on follicular growth and superovulatory response<br />
in Spanish Merino ewes. Theriogenology 54, 1055-1064.<br />
GONZÁLEZ-BULNES A., SANTIAGO-MORENO J., COCERO M.J., SOUZA C.J.H., GARCÍA-GARCÍA<br />
R.M., LÓPEZ-SEBASTIÁN A., BAIRD D.T., 1999a. Measurement of inhibin A predicts the superovulatory<br />
response to exogenous FSH in sheep. J. Reprod Fertil. Abstract Series 24, 6.<br />
GONZÁLEZ-BULNES A., OSORO K., LÓPEZ-SEBASTIÁN A., 1999b. Ultrasonographic assessment of the<br />
ovarian response in eCG-treated goats. Small Rumin. Res. 34, 65-69.<br />
GONZÁLEZ-BULNES A., SANTIAGO MORENO J., GÓMEZ BRUNET A., INSKEEP E.K., TOWNSEND<br />
E.C., LÓPEZ-SEBASTIÁN A., 1999c. Follicular dynamics during the oestrous cycle in dairy goats. Anim.<br />
Sci. 68, 547-554.<br />
Invest. Agr.: Prod. Sanid. Anim. Vol. 17 (1-2), 2002
48 A. GONZÁLEZ-BULNES et al.<br />
GONZÁLEZ-BULNES A., SANTIAGO-MORENO J., GARCÍA-GARCÍA R.M., DEL CAMPO A., GÓMEZ-<br />
BRUNET A., LÓPEZ-SEBASTIÁN A., 2001a. Origin of the preovulatory follicle in Mouflon ewes and effect<br />
on remaining follicles during the follicular phase of the estrous cycle. Anim. Reprod. Sci. 65, 265-272.<br />
GONZÁLEZ-BULNES A., GARCÍA GARCÍA R., DÍAZ DELFA C., SANTIAGO MORENO J., CARRIZOSA<br />
J.A., URRUTIA B., COCERO M.J., LÓPEZ-SEBASTIÁN A., 2001b. Efecto <strong>de</strong> la población <strong>folicular</strong> previa<br />
al tratamiento con FSH sobre la respuesta superovulatoria en cabras Murciano-Granadinas. ITEA. 22,<br />
754-756.<br />
GONZÁLEZ-BULNES A., SANTIAGO MORENO J., CARRIZOSA J.A., URRUTIA B., GARCÍA GARCÍA<br />
R., DÍAZ DELFA C., COCERO, M.J., LÓPEZ-SEBASTIÁN A., 2001c. Variabilidad en el número <strong>de</strong><br />
ovulaciones y embriones obtenidos en cabras Murciano-Granadinas superovuladas con FSH ovina. XXVI<br />
Jorn. Científicas <strong>de</strong> la Soc. Españ. <strong>de</strong> Ovinotecnia y Caprinotecnia. Sevilla, pp. 1028-1032.<br />
GONZÁLEZ-BULNES A., SANTIAGO-MORENO J., GARCÍA-LÓPEZ M., LÓPEZ-SEBASTIÁN A., 1995a.<br />
Ultrasonic monitoring of ovarian follicular <strong>de</strong>velopment in ewes during administration of homologous<br />
FSH. Intern. Symp. on Life Cycle of the Ovarian Follicle, Florida.<br />
GONZÁLEZ-BULNES A., SANTIAGO-MORENO J., GÓMEZ-BRUNET A., GARCÍA-LÓPEZ M., LÓPEZ-<br />
SEBASTIÁN A., 1995b. Influence of follicular population on ovulation rate after a single superovulatory<br />
injection of FSH in propylene glycol. J. Reprod. Fertil. Abstract Series 16, 29.<br />
GONZÁLEZ-BULNES A., SANTIAGO-MORENO J., GÓMEZ-BRUNET A., GARCÍA LÓPEZ M., LÓPEZ-<br />
SEBASTIÁN A., 1996a Effect of follicular population on ovulatory response after a single injection of<br />
FSH-P in ewes. 13th Intern. Congress on Anim. Reprod. Sydney, Vol II, P4-8.<br />
GONZÁLEZ-BULNES A., SANTIAGO-MORENO J., GÓMEZ-BRUNET A., GARCÍA-LÓPEZ M., LÓPEZ-<br />
SEBASTIÁN A., 1996b. Effect of follicular status prior to administration of exogenous gonadotrophin on<br />
the ovulation rate in ewes. Theriogenology 45, 318.<br />
GONZÁLEZ-BULNES A., SANTIAGO-MORENO J., GÓMEZ-BRUNET A., LÓPEZ-SEBASTIÁN A.,<br />
2000c. Relationship between ultrasonographic assessment of the corpus luteum and plasma progesterone<br />
concentration during the oestrous cycle in monovular ewes. Reprod. Dom. Anim. 35, 65-68.<br />
GONZÁLEZ-BULNES, A., SANTIAGO-MORENO J., LÓPEZ-SEBASTIÁN A., 1997a. Effect of follicular<br />
<strong>de</strong>velopment and superovulatory protocol on ovulation rate in ewes. I Congresso Iberico <strong>de</strong> Reproduçao<br />
Animal, Estoril, Vol. II, pp. 40-41.<br />
GUILBAULT L.A., GRASSO F., LUSSIER J.G., ROUILLIER P., MATTON P., 1991. Decreased superovulatory<br />
responses in heifers superovulated in the presence of a dominant follicle. J. Reprod. Fert. 91, 81-89.<br />
KOHRAM H., BOUSQUET D., DUROCHER J., GUILBAULT L.A., 1995. Follicular status and superovulation<br />
in cattle: a field trial. Theriogenology 43, 252.<br />
LÓPEZ-SEBASTIÁN A., GONZÁLEZ-BULNES A., SANTIAGO-MORENO J., GÓMEZ BRUNET A.,<br />
TOWNSEND E.C., INSKEEP E.K., 1999. Effects of follicular status at treatment on follicular <strong>de</strong>velopment<br />
and ovulation in response to FSH in Spanish Merino ewes. Theriogenology 52, 505-514.<br />
LÓPEZ-SEBASTIÁN A., GONZÁLEZ-BULNES A., SANTIAGO-MORENO J., GÓMEZ BRUNET A.,<br />
TOWNSEND E.C., INSKEEP E.K., 1997. Patterns of follicular <strong>de</strong>velopment during the estrous cycle in<br />
monovular Merino <strong>de</strong>l Pais ewes. Anim. Reprod. Sci. 48, 279-291.<br />
MURPHY B.D., MAPLETOFT. R.J., MANNS J., HUMPHREY W.D. 1984. Variability in gonadotrophin preparations<br />
as a factor in the superovulatory response. Theriogenology 21, 117-125.<br />
PICAZO R.A., COCERO M.J., BARRAGÁN M.L., LÓPEZ-SEBASTIÁN A. 1996. Effects of LH administration<br />
at the end of an FSH superovulatory regimen on ovulation rate and embryo production in three breeds<br />
of sheep. Theriogenology 45, 1065-1073.<br />
PICTON H.M., TSONIS C.G., MCNEILLY A.S. 1990. The antagonistic effect of exogenous LH pulses on<br />
FSH-stimulated preovulatory follicle growth in ewes chronically treated with a gonadotrophin-releasing<br />
hormone agonist. J. Endocrinol. 127, 273-283.<br />
RAVINDRA J.P., RAWLINGS N.C., EVANS A.C.O., ADAMS G.P., 1994. Ultrasonographic study of ovarian<br />
follicular dynamics in ewes during the estrous cycle. J. Reprod. Fertil. 101, 501-509.<br />
RUBIANES E., UNGERFELD R., VIÑOLES C., RIVERO A., ADAMS G.P., 1997. Ovarian response to gonadotrophin<br />
treatment initiated relative to wave emergence in ultrasonographically monitored ewes. Theriogenology<br />
47, 1479-1488.<br />
SCHRICK F.N., SURFACE R.A., PRITCHARD J.Y., DAILEY R.A., TOWNSEND E.C., INSKEEP E.K., 1993.<br />
Ovarian structures during the estrous cycle and early pregnancy in ewes. Biol. Reprod. 49, 1133-1140.<br />
TAFT R., AHMAD N., INSKEEP E.K., 1996. Exogenous pulses of luteinizing hormone cause persistence of<br />
the largest bovine ovarian follicle. J. Anim. Sci. 74, 2985-2991.<br />
TORRES S., COGNIE Y., COLAS G., 1987. Transfer of superovulated sheep embryos obtained with different<br />
FSH-P. Theriogenology 27, 407-419.