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Aplicaciones biotecnológicas en el mejoramiento genético de ...

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Proyecto BID-PI-C-2001-1-A-071“<strong>Aplicaciones</strong> biotecnológicas <strong>en</strong> <strong>el</strong> mejorami<strong>en</strong>to g<strong>en</strong>ético <strong>de</strong> especies <strong>de</strong> Rhodophialachil<strong>en</strong>as 2º Simposio <strong>de</strong> Horticultura Ornam<strong>en</strong>tal. Talca, VII Región – Chile. 6 y 7 <strong>de</strong>Diciembre <strong>de</strong> 2007.Cultivo in vitro y aclimatación <strong>de</strong> plántulas <strong>de</strong> Rhodophiala montanaJara, G., Seemann, P., y Muñoz, M.Instituto <strong>de</strong> Producción y Sanidad Vegetal, Facultad <strong>de</strong> Ci<strong>en</strong>cias Agrarias,Universidad Austral <strong>de</strong> Chile. E.mail:gjara@uach.clINTRODUCCIÓNRhodophiala montana es una planta geófita, <strong>de</strong> la familia Amaryllidaceae, que se distribuyeprincipalm<strong>en</strong>te <strong>en</strong> la VII región, <strong>en</strong> su<strong>el</strong>o ar<strong>en</strong>oso. Su floración ocurre <strong>en</strong> primavera y verano,formando flores amarillas, amarilla/anaranjadas, lo cual les otorga características apropiadascomo planta ornam<strong>en</strong>tal. Debido a este pot<strong>en</strong>cial y a su propagación natural poco efici<strong>en</strong>te laaplicación <strong>de</strong> herrami<strong>en</strong>tas biotecnológicas, como <strong>el</strong> Cultivo <strong>de</strong> tejidos, ha sido analizadaconsi<strong>de</strong>rando difer<strong>en</strong>tes tipos <strong>de</strong> material vegetal y condiciones <strong>de</strong> Cultivo para supropagación.La <strong>de</strong>sv<strong>en</strong>taja d<strong>el</strong> cultivo in vitro a partir <strong>de</strong> escamas gem<strong>el</strong>as prov<strong>en</strong>i<strong>en</strong>tes <strong>de</strong> bulbos, ha sidosu bajo porc<strong>en</strong>taje <strong>de</strong> reg<strong>en</strong>eración <strong>de</strong> brotes, <strong>el</strong> que no supera <strong>el</strong> 20% y <strong>en</strong> <strong>el</strong> caso <strong>de</strong> lautilización <strong>de</strong> semillas su poca uniformidad <strong>en</strong> la germinación, con valores que no superan <strong>el</strong>60% <strong>en</strong> un periodo <strong>de</strong> tiempo muy amplio (Jara, et. al. 2004). La multiplicación posterior <strong>de</strong> losmicrobulbillos in vitro tampoco ha dado bu<strong>en</strong>os resultados, con un coefici<strong>en</strong>te <strong>de</strong> multiplicación<strong>de</strong> 2.0 con un corte basal <strong>en</strong> <strong>el</strong> microbulbillo. Muñoz (2006), <strong>de</strong>terminó que la aptitud altransplante <strong>de</strong> bulbos <strong>de</strong> R. montana cultivado <strong>en</strong> medio sólido y líquido no es significativa,<strong>de</strong>terminándose que la sobreviv<strong>en</strong>cia es mejor <strong>en</strong> material prov<strong>en</strong>i<strong>en</strong>te <strong>de</strong> medio sólido que <strong>de</strong>medio líquido.Por lo anterior, se planteó como objetivo d<strong>el</strong> pres<strong>en</strong>te trabajo <strong>de</strong>terminar <strong>el</strong> efecto d<strong>el</strong> calibre d<strong>el</strong>os microbulbillos y <strong>de</strong> difer<strong>en</strong>tes condiciones <strong>de</strong> aclimatación sobre <strong>el</strong> <strong>de</strong>sarrollo vegetativoposterior.MATERIALES Y METODOSPara <strong>el</strong> <strong>en</strong>sayo <strong>de</strong> aclimatación se utilizaron microbulbillos <strong>de</strong> difer<strong>en</strong>tes g<strong>en</strong>otipos <strong>de</strong>Rhodophiala montana, cultivadas in vitro <strong>en</strong> <strong>el</strong> medio nutritivo <strong>de</strong> Murashige y Skoog (1962)adicionado con 1,0 mg/L <strong>de</strong> 6-B<strong>en</strong>zil Amino Purina (BAP) y 0,1 mg/L Acido Naftal<strong>en</strong> Acético(ANA), y g<strong>el</strong>ificado con 8 g/L <strong>de</strong> agar, <strong>de</strong> acuerdo a protocolos previam<strong>en</strong>te <strong>de</strong>sarrollados (Jaraet al. 2004, Seemann et al. 2006) Las plántulas fueron lavadas y <strong>de</strong>sinfectadas con unasolución <strong>de</strong> cloro al 1%, para luego evaluar las variables; número, peso y diámetro <strong>de</strong> losmicrobulbillos, número y longitud <strong>de</strong> raíces.Los microbulbillos <strong>de</strong> R. montana se clasificaron <strong>en</strong> 3 rangos <strong>de</strong> calibre <strong>de</strong> los microbulbillos:Rango 1: <strong>en</strong>tre 0,2- 0.4 cm <strong>de</strong> diámetroRango 2: 0,5 – 0.6 cm <strong>de</strong> diámetroRango 3: 0,7- 1,2 cm <strong>de</strong> diámetroEstos fueron trasladados a dos condiciones ambi<strong>en</strong>tales difer<strong>en</strong>tes. Se comparó <strong>el</strong> efecto <strong>de</strong>dos cámaras <strong>de</strong> incubación cuyas condiciones exactas fueron:1.- Cámara <strong>de</strong> aclimatación 1: una temperatura <strong>de</strong> 22ºC, 16 horas luz y un promedio <strong>de</strong> 50μmol/m 2 s 1 <strong>de</strong> int<strong>en</strong>sidad lumínica.2.- Cámara <strong>de</strong> aclimatación 2: con una temperatura promedio <strong>de</strong> 20ºC, 16 horas luz y unpromedio <strong>de</strong> 40 μmol/m 2 s 1 .Informe Técnico y <strong>de</strong> Gestión Final 45

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