Évaluation globale de la résistance des bananiers à la fusariose ...

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22 Evaluation de la performance Cultivars de référence Les clones en compagnie de qui les nouveaux hybrides améliorés seront évalués quant à leur réaction aux nématodes sont : Pisang jari buaya Résistant à Radopholus similis ITC0312 Yangambi km 5 Résistant à Radopholus similis ITC1123 Grande naine Sensible à Radopholus similis ITC1256 Génotypes à évaluer Liste des génotypes à évaluer pour leur résistance et leur tolérance à diverses espèces de nématodes. Pisang jari buaya* AA ITC0312 Calcutta 4 AA ITC0249 Pisang mas AA-Sucrier ITC0653 Pisang Ceylan AAB-Mysore ITC1441 Cachaco ABB ITC0643 Saba ABB ITC1138 FHIA-03 hybride FHIA ITC0506 FHIA-18 hybride FHIA ITC1319 FHIA-23 hybride FHIA ITC1265 FHIA-25 hybride FHIA ITC1418 TMB2x9128-3 hybride IITA ITC1437 TM3x15108-6 (Pita 16) hybride IITA ITC1417 Autres génotypes suggérés par le groupe de travail sur les nématodes de PROMUSA: Grande naine* AAA ITC1256 Yangambi km 5* AAA ITC1123 Paka AA ITC0320 Selangor AA ITC1060 Kunnan AB (Ney poovan) ITC1034 Musa balbisiana BB (Honduras) ITC0247 Musa balbisiana BB (Tani) ITC1120 Foconah AAB (Pome-Prata) ITC0649 Pisang lemak manis ABB ITC1183 FHIA-01 hybride FHIA ITC0504 * Ne s’applique pas lors des évaluations de la résistance à R. similis. Les génotypes peuvent être sélectionnés dans la liste de matériel indexé pour les virus établie par l’INIBAP. Pour en savoir plus, contacter le coordinateur IMTP. Pour en savoir plus sur la préparation du matériel végétal, voir l’annexe I.
Guides techniques INIBAP 7 23 Implantation des parcelles Pour un criblage au champ, il convient d’effectuer une analyse sur le site potentiel afin de déterminer le spectre des nématodes qui y sont présents. L’idéal est un site infesté par une seule espèce de nématode parasite du bananier, mais cette situation se rencontre rarement. On sélectionnera donc un site où la composition des espèces est représentative de la composition des espèces présentes dans la région. Il convient de déterminer le niveau d’infestation du site en examinant les racines des bananiers qui poussent dans ce site (figure 6), et non pas en prélevant des échantillons de sol. Si l’on constate la présence d’une population de nématodes assez importante (au moins 100 nématodes/g de racines fraîches), on peut utiliser le champ infesté tel quel. Figure 6. Racine morte (en haut) et racine fonctionnelle (en bas). Identification des nématodes Si la population de nématodes est trop réduite, on peut soit planter dans le site un génotype de bananier qui est un bon hôte, de façon à accroître la population de nématodes, soit ajouter des racines infectées par des nématodes au moment de la mise en place des plants (utiliser pour ce faire des racines infectées qu’on aura broyées). D’après leur biologie, on distingue en général trois types de nématodes parasites des racines du bananier. • Les nématodes ectoparasites demeurent à l’extérieur du plant et se nourrissent en perçant les couches cellulaires extérieures à l’aide de leur stylet. • Les nématodes endoparasites migrateurs envahissent les tissus du plant dans lesquels ils se déplacent et se nourrissent d’un grand nombre de cellules normales à l’intérieur du plant. Ils pondent des oeufs séparés à l’intérieur ou à l’extérieur du plant. Le nématode foreur Radopholus similis, les nématodes à lésions Pratylenchus coffeae et P. goodeyi, et le nématode spiralé Helicotylenchus multicinctus sont les nématodes les plus communs et les plus destructeurs des bananiers. • Les nématodes endoparasites sédentaires envahissent également les tissus du plant, mais les femelles adultes deviennent sédentaires (immobiles) et se nourrissent d’un petit nombre de cellules spéciales à l’intérieur du plant. Elles pondent des oeufs en masse (par exemple, dans un sac) à l’extérieur du plant. On trouve souvent aussi des nématodes endoparasites sédentaires (Meloidogyne spp.) qui forment des
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