Évaluation globale de la résistance des bananiers à la fusariose ...
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Gui<strong>de</strong>s techniques INIBAP 7 45<br />
hémisphérique, <strong>la</strong> bourse absente. Les juvéniles ont une tête <strong>de</strong> forme simi<strong>la</strong>ire <strong>à</strong><br />
celle <strong>de</strong>s mâles, une faible sclérotisation céphalique et une queue s’amincissant <strong>à</strong><br />
l’extrémité.<br />
En raison <strong>de</strong>s fortes variations morphologiques existant entre et au sein <strong>de</strong>s espèces<br />
<strong>de</strong> Meloidogyne, et du fait <strong>de</strong> l’existence <strong>de</strong> différentes races <strong>de</strong> p<strong>la</strong>ntes hôtes,<br />
il s’avère difficile d’i<strong>de</strong>ntifier ces némato<strong>de</strong>s avec précision. Hartman et Sasser<br />
(1985) ont mis au point une métho<strong>de</strong> permettant <strong>de</strong> préparer les femelles <strong>de</strong> ces<br />
némato<strong>de</strong>s pour en observer <strong>la</strong> figure périnéale au microscope optique et d’effectuer<br />
un test pour différencier les p<strong>la</strong>ntes hôtes. Eisenback et al. (1981) ont fourni<br />
une clé illustrée et une caractérisation complète <strong>de</strong> Meloidogyne incognita, M. javanica,<br />
M. arenaria et M. hap<strong>la</strong>. Enfin, on peut se servir <strong>de</strong> <strong>la</strong> technique <strong>de</strong> l’électrophorèse<br />
sur p<strong>la</strong>que mince <strong>de</strong> gel <strong>de</strong> polyacry<strong>la</strong>mi<strong>de</strong>, suivie <strong>de</strong> coloration révé<strong>la</strong>nt<br />
les isoenzymes (estérase et ma<strong>la</strong>te déshydrogénase), afin d’i<strong>de</strong>ntifier les espèces<br />
les plus communes <strong>de</strong> Meloidogyne (Esbensha<strong>de</strong> et Triantaphyllou 1985).<br />
A B C D E F G<br />
Figure 3. Région <strong>de</strong> <strong>la</strong> tête <strong>de</strong> Radopholus similis (A : femelle ; B : mâle), Pratylenchus coffeae femelle<br />
(C), Pratylenchus goo<strong>de</strong>yi femelle (D), Helicotylenchus femelle (E) et Meloidogyne (F : juvénile sta<strong>de</strong><br />
J4 ; G : mâle). Barre = 20 microns.<br />
A B C D E<br />
Figure 4. Région <strong>de</strong> <strong>la</strong> queue <strong>de</strong> <strong>la</strong> femelle <strong>de</strong> Radopholus similis (A), <strong>de</strong> Pratylenchus coffeae (B), <strong>de</strong><br />
Pratylenchus goo<strong>de</strong>yi (C), <strong>de</strong> Helicotylenchus multicinctus (D) et du juvénile sta<strong>de</strong> J4 <strong>de</strong> Meloidogyne<br />
incognita (E). Barre = 20 microns.<br />
A B C D E<br />
Figure 5. Région <strong>de</strong> <strong>la</strong> queue du mâle <strong>de</strong> Radopholus similis (A), Pratylenchus coffeae (B),<br />
Pratylenchus goo<strong>de</strong>yi (C), Helicotylenchus multicinctus (D) et Meloidogyne incognita (E). Barre =<br />
20 microns.