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MA. 700 - Colph 1.0 - Centre d'expertise en analyse ...

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magnétique. Le pH doit être de 7,3 ± 0,2 à 25 °C. Si nécessaire, ajuster le pH avec unesolution de HCl 1 N (cf. 6.1.1) ou de NaOH 1 N (cf. 6.1.2). Stériliser à 121 °C p<strong>en</strong>dant15 minutes. Mélanger le milieu <strong>en</strong>core <strong>en</strong> ébullition afin de répartir uniformém<strong>en</strong>tl’agar. Répartir de manière aseptique précisém<strong>en</strong>t <strong>en</strong> volumes de 100 ml dans desbouteilles <strong>en</strong> verre de 160 ml stérilisées au préalable. Le milieu se conserve à 4 °C àl’obscurité p<strong>en</strong>dant 4 à 6 semaines.Ajout des antibiotiques au milieu TSA 0,7 %. Faire fondre le cont<strong>en</strong>u d’une bouteillede milieu TSA 0,7 % <strong>en</strong> la déposant dans un bain-marie à une température de 100 °C.Tempérer <strong>en</strong>suite le milieu liquéfié dans un second bain-marie ajusté à unetempérature de 45-48°C. Les antibiotiques sont ajoutés au milieu tempéré seulem<strong>en</strong>t.Ne pas utiliser les restes de milieu de culture qui ont déjà été fondus une fois.6.3.2.2.1 TSA 0,7 %. « Top agar » avec ampicilline/streptomycine, pour l’énumération ducoliphage MS2 avec la bactérie E. coli F amp .Pour préparer 100 ml de milieu TSA 0,7 % (cf. 6.3.2.2), ajouter 1 ml de la solution mèreampicilline/streptomycine 100X (cf. 6.2.1) <strong>en</strong> conditions aseptiques. Répartir <strong>en</strong>volumes de 5 ml dans des tubes stériles de 16 mm × 125 mm. Conserver <strong>en</strong>tre 45 °C et48 °C jusqu’à leur utilisation. Les tubes doiv<strong>en</strong>t être utilisés le jour même de leurpréparation.6.3.2.2.2 TSA 0,7 %. « Top agar » avec acide nalidixique, pour l’énumération du coliphageφX174 E. coli CN-13.Pour préparer 100 ml de milieu TSA 0,7 % (cf. 6.3.2.2), ajouter 1 ml de la solution mèred’acide nalidixique 100X (cf. 6.2.2) <strong>en</strong> conditions aseptiques. Répartir <strong>en</strong> volumes de5 ml dans des tubes stériles de 16 mm × 125 mm. Conserver <strong>en</strong>tre 45 °C et 48 °Cjusqu’à leur utilisation. Les tubes doiv<strong>en</strong>t être utilisés le jour même de leurpréparation.6.3.2.3. Géloses pour les « spot tests ». Ces géloses sont utilisées dans la procédure d’<strong>analyse</strong><strong>en</strong> deux étapes (cf. 7.3.2). Les géloses doiv<strong>en</strong>t être exemptes de cond<strong>en</strong>sation pour laprocédure du « spot test ».6.3.2.3.1 Ajouter 7,5 g d’agar à 1 000 ml de milieu TSB (cf. 6.3.1.1). Porter le milieu à ébullitionsur une plaque chauffante jusqu’à dissolution complète <strong>en</strong> remuant avec un agitateurmagnétique. Le pH doit être de 7,3 ± 0,2 à 25 °C. Si nécessaire, ajuster le pH avec unesolution de HCl 1 N (cf. 6.1.1) ou de NaOH 1 N (cf. 6.1.2). Stériliser à 121 °C p<strong>en</strong>dant15 minutes. Mélanger le milieu <strong>en</strong>core <strong>en</strong> ébullition afin de répartir uniformém<strong>en</strong>tl’agar. Répartir de manière aseptique précisém<strong>en</strong>t <strong>en</strong> volumes de 100 ml dans desbouteilles <strong>en</strong> verre de 160 ml stérilisées au préalable. Le milieu se conserve à 4 °C àl’obscurité p<strong>en</strong>dant 4 à 6 semaines.6.3.2.3.2 Une culture bactéri<strong>en</strong>ne (E. coli F amp pour les coliphages F-spécifiques; E. coli CN-13pour les coliphages somatiques) <strong>en</strong> phase expon<strong>en</strong>tielle de croissance doit êtrepréparée à l’avance (cf. 7.2).<strong>MA</strong>. <strong>700</strong> – <strong>Colph</strong> <strong>1.0</strong> 13 de 25

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