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MA. 700 - Colph 1.0 - Centre d'expertise en analyse ...

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Le choix de la bactérie hôte employée pour faire l’<strong>analyse</strong> est l’élém<strong>en</strong>t sélectif qui fait <strong>en</strong> sorteque le résultat obt<strong>en</strong>u sera soit « coliphages F-spécifiques » ou « coliphages somatiques ». Labactérie hôte E. coli F Amp (ATCC <strong>700</strong>891) est utilisée pour <strong>analyse</strong>r les coliphages F-spécifiqueset la bactérie hôte E. coli CN-13 (ATCC <strong>700</strong>609) sert à la recherche des coliphages somatiques.En conséqu<strong>en</strong>ce, la recherche des deux groupes de coliphages à partir d’un même échantillondemande deux <strong>analyse</strong>s distinctes.La bactérie hôte E. coli F Amp est dérivée d’une souche non pathogène de E. coli, est résistante àplusieurs coliphages somatiques et est très sélective pour les coliphages F-spécifiques. Lorsd’une étude de Debartolomeis et Cabelli (1991), plus de 95 % des coliphages d’origine<strong>en</strong>vironnem<strong>en</strong>tale détectés avec la bactérie hôte E. coli F Amp appart<strong>en</strong>ai<strong>en</strong>t effectivem<strong>en</strong>t à cegroupe. De plus, cette souche porte deux gènes de résistance à des antibiotiques sur sonchromosome. La culture de la bactérie hôte <strong>en</strong> prés<strong>en</strong>ce de l’un ou l’autre de ces antibiotiquesévite les contaminations avec des E. coli prov<strong>en</strong>ant de l’échantillon. De plus, E. coli F Amppossède un gène de résistance à l’ampicilline situé sur son plasmide F, lequel conti<strong>en</strong>tl’information génétique nécessaire à la formation du pilus. La culture de la bactérie hôte <strong>en</strong>prés<strong>en</strong>ce d’ampicilline fait <strong>en</strong> sorte que seules les bactéries cont<strong>en</strong>ant le plasmide F (donc lapossibilité de produire un pilus) peuv<strong>en</strong>t croître. Cette propriété de la souche est utile, puisqu’ilarrive que les bactéries perd<strong>en</strong>t leur plasmide <strong>en</strong> cours de croissance. La perte du plasmide F lorsde la détection des coliphages F-spécifiques ferait <strong>en</strong> sorte de produire de faux résultats négatifs.Avec chaque série d’<strong>analyse</strong>s, un échantillon négatif (eau stérile) de même qu’un échantillon decontrôle positif (eau stérile dans laquelle on a ajouté le coliphage F-spécifique MS2) ou uncontrôle de matrice (échantillon dans lequel on a ajouté le coliphage F-spécifique MS2) sontanalysés <strong>en</strong> suivant toutes les étapes de la méthode afin de s’assurer de l’abs<strong>en</strong>ce d’unecontamination croisée et de la fonctionnalité de la bactérie hôte.Pour les coliphages somatiques, la bactérie hôte utilisée est la souche E. coli CN-13(ATCC <strong>700</strong>609). Cette dernière est un mutant de la souche E. coli C et elle est résistante àl’acide nalidixique. Cette souche a été sélectionnée dans le laboratoire du Dr Pierre Paym<strong>en</strong>t, del’INRS-Institut Armand Frappier (Ville-de-Laval). Ici <strong>en</strong>core, la bactérie est cultivée <strong>en</strong> prés<strong>en</strong>ced’acide nalidixique afin d’éviter la contamination du tapis bactéri<strong>en</strong> par d’autres bactériesprov<strong>en</strong>ant de l’échantillon. Avec chaque série d’<strong>analyse</strong>s, un échantillon négatif (eau stérile) demême qu’un échantillon de contrôle positif (eau fortifiée avec le coliphage somatique ΦX174)ou un contrôle de matrice (échantillon dans lequel on a ajouté le coliphage somatique ΦX174)seront analysés <strong>en</strong> suivant toutes les étapes de la méthode afin de s’assurer de l’abs<strong>en</strong>ce d’unecontamination croisée et de la fonctionnalité de la bactérie hôte.3. FIABILITÉLes résultats de la validation de cette méthode sont disponibles pour les cli<strong>en</strong>ts qui <strong>en</strong> font lademande.<strong>MA</strong>. <strong>700</strong> – <strong>Colph</strong> <strong>1.0</strong> 7 de 25

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