Mastermodule_Vorstellung_SS13 - Fachbereich Biologie der TU

Vorstellung der Wahlpflichtmodule 

Master Technische Biologie und BME 

- MTB1 / M.BME6 Technische Genetik 

- MTB2 / M.BME5 (I) Plant Metabolic Engineering 

- MTB2 / M.BME5 (II) Biotechnologie der Pflanze 

- MTB3 / M.BME4 Mikrobiologie 

- MTB4 / M.BME8 Angewandte Biochemie 

- M.BME2 / M.BME16 / M.BME23 Gelenkte Evolution / Chemische Biologie / Proteinchemie 

- MTB5 / M.BME14 Biomolecular Design 

- MTB6 / M.BME18 Zellbiophysik 

- MTB7 / M.BME21 Molekulare Strahlenbiologie 

- MTB8 / M.BME22 Strahlenbiophysik 

- MTB9 / M.BME12 Medizinische Entwicklungsbiologie 

- MTB10 / M.BME9 Zellbiologie 

- MTB11 / M.BME11 Neurobiologie 

- MTB12 /MTB14 Experimentelle Ökologie / Funktionelle Ökologie u Biodivers. 

- MTB13 Vegetationsökologie 

- MTB50 Biologischer Pflanzenschutz





































MTB2/M.BME5 – Plant Metabolic Engineering (H. Warzecha) 

(Pflanzlicher Sekundärmetabolismus und Metabolic Engineering)

Vorlesung: Täglich, 3 Wochen, 1 Stunde 

English! 

• Groups of secondary plant metabolites will be presented according to their 

biosynthetic route 

• Key biosynthetic pathways will be discussed in detail 

(spatial and temporal organization, regulation) 

• Compounds of interest will be featured in detail 

• Physiological function, if known 

• Recovery and use in chemical, food and feed industry 

• Use as pharmaceutics including pharmacological mode of action 

• Potential for optimization via metabolic engineering 

Mündliche Prüfung (auch für Spezialvorlesung)

Seminare: Literaturseminare, Vortrag 

Praktikum: 

-Synthetisch-biologischer Ansatz zur Modifikation des pflanzlichen 

Sekundärmetabolismus 

- Nutzung und Weiterentwicklung eines modularen Klonierungssystems 

(ähnlich BioBrick) 

- Analytische Methoden (DC, HPLC) 

- Biochemisch-molekularbiologische Methoden 

Kein Protokoll, sondern „Publikation“



















MTB2/M.BME5 –Biotechnologie d. Pflanze 

Prof. Ralf Kaldenhoff 

Zeitraum: 

18.08-21.09 ? 

Voraussetzung: 

Fortgeschrittene Kenntnisse in 

Nukleinsäurechemie, 

Molekulargenetik, Biochemie 

Kapazität: 

20 Personen 

Juni 2013 | Fachbereich Biologie | Prof. Kaldenhoff | 12

MTB2 Pflanzen Biotechnologie AG Kaldenhoff 

Vorlesung und Seminar: 

technische Aspekte der gentechnischen 

Veränderung von Pflanzen 

neue Verfahren der Modifizierung von Pflanzen 

züchterische Verfahren 

Pflanzenzellkultur und Regeneration 

Gentechnik in der Landwirtschaft 

Sicherheit in der Gentechnik 


MTB2 Pflanzen Biotechnologie AG Kaldenhoff 

Praktikum: 

Ertragssteigerung bei Pflanzen 

Zielvorgabe: Überexpression verschiedener Kandidaten-Proteine 

Selbständiges Ausarbeiten einer Arbeitsstrategie um transgene 

Pflanzen zu erhalten (Methoden umfassen molekularbiologische und 

Pflanzentransformations-Techniken) 

Selbständige Durchführung von der Klonierung in Pflanzen- 

Expressionsvektoren bis zur Pflanzentransformation sowie der nötigen 

Kontroll-Experimente 

Phänotypische und physiologische Analyse von bereits transformierten 

Pflanzen (Wie weißt man Ertragssteigerung nach?) 




















MTB 3/M.BME 4 - Mikrobiologie 

Dozenten: Prof. Felicitas Pfeifer, Prof. Jörg Simon, PD Dr. Arnulf Kletzin 

Inhalte: 

Biochemische, genetische, molekularbiologische Methoden 

angewandt auf Mikroorganismen 

Fachbereich Biologie | Mikrobiologie | Prof. Felicitas Pfeifer | 16

MTB 3/M.BME 4 - Mikrobiologie 

Vorlesungen: Themen zur Physiologie und Ökologie von Mikroorganismen 

Enzyme und besondere Abbauleistungen; Überlebensstrategien 

Seminar: in Gruppen zu ergänzenden Themen 

Selbstorganisierte, forschungsnahe Projekte: 

-Molekularökologische Studien, extreme Standorte 

-S-Metabolismus / Enzyme hyperthermophiler Archaea 

-Genregulation halophiler Archaea / Mutationsstudien 

-N-Kreislauf / bakt. Energiestoffwechsel / Metalloenzyme 

-Synthetische Biologie und Biotechnologie 

Fachbereich Biologie | Mikrobiologie | Prof. Felicitas Pfeifer | 17



















Angewandte Biochemie 

Wahlpflichtmodul M.BT4 / M.BME8 (im SoSe) 

AKs Dencher, Kolmar und Schmitz 

Termin: 

Mo. 22.07. bis Fr. 16.08.13 

Vorbesprechung: 

12.07.13 

N. Dencher H. Kolmar K. Schmitz 

Kapazität: 25 Plätze 

Zulassungsvoraussetzungen: 

Mindestens 8 CP aus Vorlesungen, 

Seminaren und Praktika in der 

Biochemie. 

16.06.13 | Fachbereich Chemie | Profs. N. Dencher; H. Kolmar; K. Schmitz | Modulvorschau: Angewandte Biochemie M.BME8 | 19

Vorlesung und Seminar 

Vorlesung 

Beliebige 2 SWS-Vorlesung aus dem Kanon der Biochemie (FB Chemie) 

Mit Übung 

Bei Vorlesungen ohne Übung: Teilnahme an der Moodle-Übung zum 

Praktikum 

Seminar 

Gemeinsames Seminar der AKs Kolmar, Dencher, Schmitz 

Semesterbegleitend (Mi-Abend) 

alternativ: Studienprojekt HighChem oder Tagungsbesuch 


Praktikumsthemen 

AK Dencher: 

AK Schmitz: 

AK Kolmar: 

Biophysikalische Chemie 

Bakteriorhodopsin, Membranen, Elektrophorese, 

Zentrifugationsmethoden 

Biologische Chemie 

Auswirkung von Modifikationen auf die 

Enzymaktivität, Fluoreszenzpolarisation, 

Immunopräzipitation mit Magnetpartikeln 

Proteinchemie 

Optimierung von Proteinen durch 

gelenkte Evolution, Herstellung von 

Bibliotheken und Durchmusterung 


Organisation und Bewertung 

Praktikum 

4 Wochen Praktikum (20 Tage) 

3 Versuchsblöcke 

Vorbesprechung zu den einzelnen Versuchen 

3 Protokolle 

Notenanteile: 40% Klausur zur Vorlesung (60 min) 

30% Seminarvortrag (oder Ersatzleistung) 

30% Protokoll und Vorbesprechung/Platzgespräche 









- M.BME2 / M.BME16 / M.BME23 Gelenkte Evolution / Chem. Biologie / Proteinchemie 











Gelenkte Evolution 

Modul M.BME 2 (im SoSe) 

AKs Fessner / Kolmar 

Termin 02.06.14 – 11.07.14 

Studienprofil 1 

Pflicht-Modul (BME) 

White Biomolecular Engineering 

max. 2 x 6 Teilnehmer 

V2, S2, P18 15 CP 

Vorkenntnisse 

Genetik, Biochemie, 

Mikrobiologie 

17. Juni 2013 | Fachbereich Chemie | Institut für Organische Chemie und Biochemie | Prof. Dr. W.-D. Fessner | 24

Lernziele: in vitro-Evolution 

Erlernen von Strategien zur Optimierung von Enzymeigenschaften, z.B. 

für leistungsfähige chemische Synthesen 

molekulare Evolution in vitro mittels Mutagenese, Selektion und 

Rekombination 

Hochdurchsatz-Screening zur Identifizierung von Enzymvarianten mit 

verbesserten Eigenschaften 

Planung und Durchführung eigener Experimente zur Erzeugung von 

Mutanten-Bibliotheken und Durchmusterung auf aktive Hits 

Chemie 

rationales Engineering 

evolutives Engineering 

Biologie 

optimierte Funktion für 

technische Anwendung 


Themenspektrum 

Struktur-/Sequenz-/Funktionsraum von 

Enzymen 

Methoden der Zufallsmutagenese 

Enzymassays 

High-Throughput-Screening-Verfahren 

Anwendungsbeispiele für verschiedene 

Parameter (Thermo-/Solvensstabilität, 

Substrattoleranz, Stereoselektivität) 

Designer-Katalysatoren 


Chemische Biologie / Proteinchemie 

Wahlpflichtmodul M.BME16 / M.BME23 (im SoSe) 

AK Schmitz 

Termin: 

Mo. 27.05. bis Fr. 21.06.13 

Kapazität: zusammen 18 Plätze 

K. Schmitz 


Vertiefte Kenntnisse in Proteinchemie 

und Biochemie. 

13.06.13 | Fachbereich Chemie | Prof. K. Schmitz | Modulvorschau Proteinchemie M.BME23 / Chemische Biologie M.BME16 | 27

Vertiefervorlesung Chemische Biologie 

2 SWS; 2 CP – auch für das Modul Proteinchemie wählbar 

Synthese von Biomakromolekülen und deren Anwendungen 

Kombinatorische Synthese und Durchmusterungsverfahren 

Bindungsstudien 

Markierung von Proteinen 


Praktikum Chemische Biologie (M.BME16) 

Projektversuche 

Assayentwicklung 

Bindungsmodelle 

Funktionelle Biomoleküle 

5 Saalversuche 

Peptidsynthese 

Wirkung von kleinen Molekülen auf Zellen 

Heterobifunktionale Linker 

Durchmusterungsverfahren 

SG T 

SGp 

N 

H 

Rn 

H 

N 

O 

SGp 

R 2 

O 

N 

H 

R 

SG P 

O 

O 


Praktikum Proteinchemie (M.BME23) 

Projektversuche 

Klonierung und Expression 

Mutagenese 

Proteinfunktionalisierung 


Proteinmodifikation mit Fluorophoren und Biotin 

Proteinimmobilisierung 

Proteinreinigung 



Praktikum 

6 Wochen 


1 Forschungsprojekt 

Seminar 

1-2x pro Woche, parallel zum Praktikum 

1-2 Vorträge über aktuelle Artikel über Proteinchemie und Chemische Biologie 

Notenanteile: 

40% Klausur zur Vorlesung (60 min) 

30% Protokoll und Platzgespräche/Theorieaufgaben (benotet, 30 %), 

30% Seminarvortrag 




















Biomolecular Design 

Wahlpflichtmodul M.BT5 / M.BME14 (im WS) 

AKs Hamacher und Schmitz 

Termine: 

Mo. 07.10. bis Fr. 26.10.13 

Mo. 06.01. bis Fr. 24.01.14 

Vorbesprechung: 

K. Hamacher K. Schmitz 


Bachelor of Science Bio-, Biophysikoder 

Chemiewissenschaften 

Kapazität: 9 Plätze 

Empfohlene Voraussetzungen: 

Grundlagen in Mikrobiologie, Genetik, 

Biochemie; molekulare Grundlagen der 

Biophysik und der physikalischen Chemie; 

Grundlagen der Molekulardynamiksimulation 

und/oder statistischen Programmierung 

13.06.13 | Fachbereiche Biologie und Chemie | Prof K. Hamacher; Prof. K. Schmitz | Modulvorschau Biomolecular Design M.BME14 | 33

M.BME14 / MTB5 

„Biomolecular Design“ 

Seminar + Vorlesung 

Seminar (mit FB Informatik): 

•Visualisierung und 

•interaktive Analyse 

naturwissenschaftlicher Daten 

Vorlesung: 

•mathematische & physikalische 

Grundlagen der Simulation und der 

Datenauswertung 

•Statistische Mechanik 

Voraussetzungen 

•Physikalische Chemie 

•Bioinformatik / Mathematik 

•Biochemie 

•Organische Chemie 

Praktikum 

Theorie-Teil (Comp. Biol. Lab): 

• 3D-Struktur-Modellierung 

• Docking 

• Molekulardynamik 

Experimenteller Teil: 

•Techniken zur Synthese und Reinigung 

neumodellierter biologischer 

Makromoleküle 

•Vermessung ihrer biologischen 

Aktivitäten 

•in-vitro und/oder in-vivo 

Untersuchungen zur biologischen 

Funktion und physiko-chemischen 

Eigenschaften 


M.BME14 / MTB5 

„Biomolecular Design“ – wer es nicht lesen mag 

Seminar + Vorlesung 

Visuelle Analyse: 

Praktikum 

z.B. Peptide als Liganden für Proteine 

Molekulardynamik & Docking 

In vitro Validierung 

SG T 

SGp 

Rn 

N 

H 

H 

N 

O 

SGp 

R 2 

O 

N 

H 

R 

SG P 

O 

O 



3 Wochen (Block) Theorieteil 

Vorlesung + Seminar 

Praktikum im CBL (Comp. Biol. Laboratory) 

Abgabe Protokoll zum Theorie-Teil 

3 Wochen (Block) experimenteller Labor-Teil 

Abgabe Protokoll zum experimentellen Teil 

mündliche Prüfung bei beiden Professoren 

Notenaufteilung: 

Abschlussprüfung: mündlich (20 min, Anteil 3 CP, 20%) 

2 Praktikumsberichte : jeweils 40% insgesamt 12 CP 






































MTB7 - M.BME21„Molekulare Strahlenbiologie“ 

Mechanismen der DSB-Reparatur 

Defekte Zelllinien 

Einsatz von Inhibitoren 

siRNA-Knockdown 

Herstellung defekter Zelllinien: 

Mutagenese 

Klonierung 

Sequenzierung 

Transfektion 

Rekrutierung von Reparaturfaktoren 

Messung von Reparaturkinetiken 

Praktikumsinhalte: 

Immunfluoresenz- 

Mikroskopie 

Live Cell Imaging 

γH2AX 

Unreparierte DSBs 

Rad51 

Reparaturzeit


Praktikumsinhalte: 

Zellzyklusregulation nach DNA-Schädigung 

Defekte Zelllinien 

Einsatz von Inhibitoren 

siRNA-Knockdown 

Herstellung defekter Zelllinien: 

Mutagenese 

Klonierung 

Sequenzierung 

Transfektion 

Messung der zeitlichen Regulation und 

Sensitivität von Zellzyklus-Checkpoints 

DAPI 

Immunfluoresenz- 

Mikroskopie 

pSer10 H3 

Live Cell Imaging 

Durchflusszytometrie 

G2/M-Checkpoint 

pSer10-H3


Vorlesung und 

Seminar 

Vorlesung 

- molekulare Wechselwirkung von Strahlung mit DNA 

- Auswirkung von Strahlung und anderen DNA-schädigenden 

Agenzien auf zellulärer Ebene → Schadenserkennung 

Reparatur 

Zellzykluskontrolle 

Apoptose 

- Mechanismen der Krebsentstehung, Krebstherapie 

- Epidemiologie 

Seminar 

- Vorstellung eines aktuellen Papers im Rahmen einer englischen 

PowerPoint-Präsentation 

- thematisch passend zu Vorlesung und Praktikum



















Modul MTB 8 Strahlenbiophysik - GSI Biophysik 

G.Taucher-Scholz@gsi.de 

Ziel ⇒ Kenntnisse ionisierender Strahlung: 

Wechselwirkung mit Materie und biologische Wirkung 

wichtig: für medizinische Strahlenforschung und Strahlenschutz 

• Blockveranstaltung 6 Wochen (15 CP) an der GSI 

• Prüfung: mündl. oder Klausur (über Vorlesungen) 

• Praktika (benotete Vorträge/Protokolle Englisch) 

• Seminare ( benoteter Literaturvortrag ) Englisch 

Vorlesungen zu ionisierender Strahlung: 

physikalische Grundlagen /biologische Wirkung/ Strahlentherapie 

Praktika: Projektphase in Forschungsgruppen (ca. 3-4 Wo.) und 

evtl. Physikexperimente (1 Woche); zusätzlich Praktika zu Dosimetrie 

Röntgen/Teilchenstrahlen 

Mastermodul Strahlenbiophysik

Modul MTB 8 

Versuche zu physikalischen Grundlagen ionisierender Strahlung 

Physikexperimente (falls terminlich/logistisch möglich, an 5 Tagen) 

• Ablenkung von β - Strahlen im Magnetfeld 

• Auswertung von Nebelkammerbildern 

• γ-Spektroskopie, α - Spektroskopie und γ-γ-Koinzidenzmessung mit 

verschiedenen Detektoren 

Ziele 

anschaulicher Zugang zu den physikalischen Grundlagen der 

Strahlenbiophysik - in der Praxis die „Angst vor der Physik“ verlieren 

 

den Umgang mit typischen Aufbauten / Geräten kennen lernen und dabei 

physikalische Prozesse konzeptionell verstehen 

Gefühl für Messgrößen und Genauigkeit entwickeln 

Mastermodul Strahlenbiophysik

Projektphase in GSI Forschungsgruppen: (ca. 3-4 Wochen) 

biologische Wirkung ionisierender Strahlung (2-3 /Gruppe) 

Zelle mit 

DNA- 

Schaden 

Korrekt repariert 

Zellüberleben 

α/β 

Inhibition der 

Zellteilung 

Falsch /nicht 

repariert 

Durchflusszytometrie 

Doppelstrangbruch 

Chromosomen- 

Schäden 

Zelltod/ Apoptose 

Gewebereaktion 

S = e 

mFISH 

−αD−βD 

Schadensantwort: 

•Proteinexpression und Modifizierung (Western Blot) 

•Regulierung / Knockdown 

•Proteinrekrutierung an DSB – Mikroskopie ( u.a. live cell) 

•Zellzyklusarrest – Differenzierung - Apoptose 

2



















Mastermodul MTB-9 

AG Layer 

13.06.2013, 11-12:30 Uhr, Rm 52 

MTB-9 

Medizinische 

Entwicklungsbiologie 

Prof. Dr. Paul Layer 

Entwicklungsbiologie & Neurogenetik 

| FB10 – Entwicklungsbiologie & Neurogenetik | Prof. Paul Layer | Folie 51

Themen AG Layer 

Huhn - Ei - Embryo - Küken 

Embryo – Nervensystem – 

Acetylcholin & Umwelt 

?? 

smoke smoke smoke that cigarette…. 

Auge – Retina – 

Zellschichten - Genetik 

Retina – Stammzellen – 

Tissue Engineering - 

Gewebezucht 

Zebrafisch als Modell

Vorlesung 

Medizinische Entwicklungsbiologie 

2 SWS 

Ziel: „um Krankheiten zu verstehen, ist Verständnis der normalen 

Entwicklung sehr hilfreich“ 

• aufbauend auf BB28: EB als Basis für Normalentwicklung und 

Mißbildungen, Gesundheit und Krankheiten; 

• holistischer Blick vom Molekül bis zum ganzen Tier/Mensch 

notwendig; dies tut die EB! 

• Stammzellen, regenerative Biologie, Tissue Engineering; 

• Alterungserscheinungen, Demenzen; 

• Umwelttoxikologie; endokrine Disruptoren, Pestizide. 

17.06.2013 | FB10 – Entwicklungsbiologie & Neurogenetik | Prof. Dr. Paul Layer | Folie 53

Praktikum - Themen 

Praktikum (18 SWS, 6 wks Block, ganztägig): Projekte in 

Kleingruppen mit Einzelbetreuung 

• Modelle Huhn und Maus 

• 3D-Zellkulturen; 

• Tissue Engineering der Retina 

• Entwicklung Biosensoren 

• Embryonale Strahlenbiologie: X-rays, HIR, NIR: 

• in vivo, Explantate und 3D-Kulturen 

• an Ganzembryo, Auge, Photorezeptoren, 

• Myocardzellen 

• Skelettbildung: Molekularbiologie, Mißbildungen 

• Wnt, Retinolsäure, Acetylcholin, Pestizide, etc. 


Seminare 

Seminare & Übungen (2 SWS) 

• tägliche Übungen & ad hoc-Präsentationen zu Praktika 

& Vorlesung 

• Seminar „Fortschritte in mediz. Entw.Biologie (incl. 

regenerative Medizin)“ 

• Gestaltung & Präsentation eines Posters / Gruppe 

• Freiwillig: 

• Bioethikseminar zu Reproduktionstechnologien, PID, etc. 

(WS13/14) 

• Seminar „Ethik & Ersatz von Tierversuchen“ (SS13) 






































Neurobiologie

MTB 11 Neurobiologie 

Das Modul Neurobiologie gibt einen Einblick in die moderne Neurobiologie und behandelt 

molekulare, zelluläre und systemische Aspekte neuronaler Funktionen und tierischen 

Verhaltens 

Vorlesung: 

1. Evolution, Entwicklung und strukturelle Vielfalt von Nervensystemen 

2. Morphologische und funktionelle Organisation von Nerven- und Gliazellen 

3. Funktionelle Neuroanatomie des Säugergehirns I 

4. Funktionelle Neuroanatomie des Säugergehirns II 

5. Neuronale Signalentstehung und –weiterleitung 

6. Neuronale Proteine: Struktur und Funktion 

7. Moderne Methoden in der zellulären Neurobiologie 

8. Synaptische Integration und Plastizität: Grundlagen von Lernen und Gedächtnis 

9. Sensorische Systeme im Säugerhirn I: visuelles System 

10. Sensorische Systeme im Säugerhirn II: Auditorik und Somatosensorik 

11. Motorsysteme 

12. Moderne Methoden in der Systemischen Neurobiologie 

13. Neurobiologische Grundlagen der Steuerung von Verhaltensvorgängen 

14. Neurobiologische Grundlagen von Erkrankungen der Zentralnervensystems 

15. Aktuelle Aspekte der molekularen Grundlagen neurologischer Erkrankungen 

Seminar: 

Im begleitenden Seminar (S2) werden problemorientiert Projekte mit samt der 

entsprechenden methodischen Zugänge bearbeitet, die sich aus den Forschungsarbeiten 

der Arbeitsgruppen ableiten, um so praxisorientierte Einblicke in den aktuellen Stand der 

Forschung zu gewähren.

Praktikum 

1. Woche: 

Fixierungstechniken, makroskopische Neuroanatomie, Grundlagen der Neurohistologie und 

Schneidetechniken, Nissl-und Markscheidenfärbungen, mikroskopische Dokumentation 

2. Woche: 

Zelluläre Neurohistologie: Immunhistologische Charakterisierung von Neuronen, 

intrazelluläre Füllungen mit Fluoreszenzfarbstoffen, Golgi-Imprägnationen, 

Fluoreszenzmikroskopie, konfokale Mikroskopie 

3. Woche: 

Mutagenese, Expression und Analyse von rekombinanten Rezeptoren in heterologen 

Systemen, 

Intrazelluläre Ableitungen I (Oozytensystem und Zwei-Elektrodenspannungsklemme, 

TEVC) 

4. Woche: 

Intrazelluläre Ableitungen II (Patch Clamp Messungen und Fluoreszenzimaging an 

humanen Zelllinien) 

5. Woche: 

Systemische Neurophysiologie, extrazelluläre elektrische Ableitungen und Optical Imaging 

bei Säugern. Quantitative Auswertung physiologischer Messdaten 

6. Woche: 

EEG-Studien beim Menschen



















Modul MTB 12 Experimentelle Ökologie 

NN 

Inhalte 

• Experimentelle Studien mit Schwerpunkt chemische Ökologie, Kommunikation 

zwischen Insekten, Evolutionsökologie 

• Versuchsplanung und –durchführung 

• Statistische Auswertung der Daten und Darstellung der Ergebnisse 

• Verfassen eines wissenschaftlichen Artikels, allgemeine Regeln wissenschaftlichen 

Publizierens 

Voraussetzung: Bachelor Biologie 

Leistungsanforderungen 

Prüfungsleistung: benoteter Vortrag mit mündlichem 

Kolloquium zum Praktikum (5 CP), 

benotetes Protokoll (wiss. Artikel) (10 CP) 

Zeit 

14.10.12 – 22.11.12 (abweichender Zeitraum ggf. nach Vereinbarung möglich)

Modul MTB 14 Funktionelle Ökologie und Biodiversität 

Blüthgen, Mody 

Inhalte 

• Experimentelle Studien (Freiland / Labor) mit Schwerpunkt Biodiversität von Insekten 

(ausgewählte funktionelle Gruppen, z.B. Herbivore, Bestäuber, Prädatoren, Dungkäfer), 

funktionelle Wechselwirkungen zwischen Organismen und Umwelt (z.B. Wasserverlust, 

Temperaturabhängigkeit, Tier–Pflanze Interaktionen / Netzwerke, Ökosystemfunktionen 

(natürl. und Agro-Ökosysteme), Gefährdung (Landnutzung, Klimawandel) 

• Versuchsplanung und –durchführung 

• Statistische Auswertung der Daten und Darstellung der Ergebnisse 

• Verfassen eines wissenschaftlichen Artikels, allgemeine Regeln wissenschaftlichen 

Publizierens 

Voraussetzung: Bachelor Biologie 

Leistungsanforderungen 

Prüfungsleistung: benoteter Vortrag in begleitendem 

Seminar (5 CP), benotetes Protokoll (wiss. Artikel) 

(10 CP) 

Zeit 

16.06.14 – 25.07.14 (abweichender Zeitraum ggf. nach Vereinbarung möglich)



















Modul MTB 13 „Vegetationsökologie“ 

Einige Forschungsfragen der AG Vegetations-/Renaturierungsökologie: 

• Vegetationsdynamik in Raum und Zeit auf verschiedenen Skalen-Ebenen 

• Pflanze-Tier-Interaktionen 

• Nährstoff-Dynamik 

• Renaturierungsökologie. 

Skalenebenen: 

Einzelpflanze 

Population 

Community 

(Segmentierung) 

Landschaft 

(im GIS; zentral: 

unbeweidetes 

Exclosure)

Ziele des Moduls 

Wissenschaftlicher Diskurs: 

Schlussfolgerungen, Kritik und 

Präsentation 

Praktische Kompetenzen: Freiland- 

und Labormethoden: Habitatfaktoren, 

Vegetation, Messmethoden und 

Experimente, Auswertung, 

Modellbildung 

Grundlagenwissen: 

Vertiefte Kenntnis der 

Lebensräume 

Mitteleuropas, theoretische 

und angewandte Aspekte 

(z. B. Restitutionsökologie)

Inhalte und Ablauf des Moduls 

Winter- 

Semester 

(Teil A, 

Februar) 

V Ökologie d. 

Lebensräume 

V+Ü EDV- 

Methoden in 

der Ökologie 

Ü 

Kryptogamen 

Ü 

Arthropoden 

S Aktuelle 

Forschungsarbeiten 

Klausur (benotet, 

50 %) 

Üb. Aufgaben 

Vortrag 

(benotet, 

25 %) 

Sommersemester 

(Teil B, Juni) 

P Vegetationsökologie 

(Teil C 

ca. Juli) 

Protokoll 

P Exkursionspraktikum 

Lebensräume Mitteleuropas 

Protokoll 

Kolloquium (benotet, 25 %)



















Modul MTB50: 

Biologischer Pflanzenschutz 

am Institut für biologischen 

Pflanzenschutz des JKI 

www.jki.bund.de

MTB50 

• 6-wöchige Blockveranstaltung am JKI (nur im 

Sommersemester) 

• 24-stündigen Vorlesung 

• Seminar zu einem aktuellen Thema des 

biologischen Pflanzenschutzes 

• Blockpraktikum in einer der Arbeitsgruppen des 

Instituts für Biologischen Pflanzenschutz 

• Maximale Teilnehmerzahl: 12 

(2 Teilnehmer/innen je JKI-Arbeitsgruppe) 

www.jki.bund.de

24-stündige Vorlesung 

• Einführung in den biologischen Pflanzenschutz 

• Bakterien und Pilze als Erreger von Pflanzenkrankheiten 

• Mikrobielle Antagonisten von Pflanzenkrankheitserregern: 

• Pflanzenextrakte im Pflanzenschutz oder Was Süßholz noch so alles 

kann 

• Induzierte Resistenz: "Schutzimpfung für Pflanzen" 

• Fressen und gefressen werden: ökologische Grundlagen des 

biologischen Pflanzenschutzes mit Nützlingen 

• Nützlinge nutzen: Stragien für ihren Einsatz im biologischen 

Pflanzenschutz mit lebenden Beispielen aus der Praxis 

• Diagnose, Histo- und Zytopathologie von Arthropodenkrankheiten / 

• Insektenviren/Bacillus thuringiensis 

• Protisten/Pilze / Molekulare Diagnose 

• Produktion antagonistischer Mikroorganismen 

• Formulierung und Anwendung antagonistischer Mikroorganismen

Arbeitsgruppen 

Naturstoffe 

Dr. A. Schmitt 

Virologie/ Mol. 

Insektenpathol. 

Dr. J. Jehle 

Entomologie 

und Nützlinge 

Dr. A. Herz 

Mikrobiologie/ 

Verfahrenstech. 

Dr. Stephan 

Phytopathologie 

Dr. E. Koch 

Diagnose und 

Histopathologie 

Dr. R. Kleespies 

www.jki.bund.de

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