Leistungsverzeichnis - Dr. Treder und Kollegen

Leistungsverzeichnis
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN
14. September 2012

Inhaltsverzeichnis
1 Vorwort 5
2 Allgemeine Laborinformation 6
2.1 Ansprechpartner . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6
2.2 Ärzteteam . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 8
2.3 Öffnungszeiten . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 10
2.4 Qualitätsmanagement . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 11
2.5 Präanalytik . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 13
2.6 Abkürzungen . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 17
3 Molekularbiologie 19
3.1 Präanalytik . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 19
3.2 Erregerdiagnostik . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 22
3.3 Humangenetik . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 32
4 Funktionsteste 39
4.1 ACTH-Test . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 40
ACTH-Test bei V.a. NNR-Insuffizienz . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 40
ACTH-Test bei V.a. late-onset adrenogenitales Syndrom (21-Hydroxylasemangel) . . 41
4.2 Aldosteron-Suppressionstest . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 42
4.3 Arginin-Stimulationstest . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 43
4.4 Calcium-Stimulationstest . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 44
4.5 Captopril-Suppressionstest . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 45
4.6 Clonidin-Test . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 46
4.7 CRH-Test . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 47
4.8 Dexamethason-Hemmtest (niedrig dosiert) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 49
4.9 Dexamethason-Hemmtest (hoch dosiert) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 50
4.10 Dimaval-Test . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 51
4.11 D-Xylose-Test . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 52
4.12 Eisenresorptionstest . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 54
4.13 Fructose-Belastungstest . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 55
4.14 GHRH-Test . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 56
4.15 Glucagon-Test . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 57
4.16 Glucose-Suppressionstest . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 58
4.17 Helicobacter pylori-Atemtest . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 59
4.18 Insulinhypoglykämie-Test . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 60
Insulinhypoglykämie-Test bei V.a. adrenocorticotrope Insuffizienz . . . . . . . . . . 60
Insulinhypoglykämie-Test bei V.a. somatotrope Insuffizienz . . . . . . . . . . . . . 61
4.19 Lactose-Belastungstest . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 62
4.20 LHRH-Test (GnRH-Test) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 63
3

Inhaltsverzeichnis
4.21 Metoclopramid-Test . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 65
4.22 Oraler Glucosetoleranztest (OGTT) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 66
Oraler Glucosetoleranztest bei V.a. Diabetes mellitus . . . . . . . . . . . . . . . . . 66
Oraler Glucosetoleranztest bei V.a. Gestationsdiabetes . . . . . . . . . . . . . . . . 67
Oraler Glucosetoleranztest, Vortest bei Schwangeren . . . . . . . . . . . . . . . . . 68
4.23 Orthostase-Test . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 69
4.24 Pentagastrin-Stimulationstest . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 70
4.25 TRH-Test . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 71
TRH-Test bei V.a. latente Hyperprolactinämie . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 71
TRH-Test bei V.a. sekundäre / tertiäre Hypothyreose . . . . . . . . . . . . . . . . . 72
5 Mikrobiologie 73
5.1 Allgemeine Grundsätze . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 73
5.2 Versandmaterial . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 75
Allgemeine Transportgefäße . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 75
Spezielle Transportgefäße . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 76
5.3 Alphabetisches Register . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 77
6 Antibiotic Stewardship (ABS) 128
7 Hygiene 129
8 Stuhldiagnostik 130
9 Zusätzliches Informationsmaterial 135
10 Alphabetisches Leistungsverzeichnis 136
Index 381
4 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

1 Vorwort
Liebe Kollegin, lieber Kollege, liebes Praxis-Team,
liebe Pflegerin und lieber Pfleger im Krankenhaus,
die Labormedizin in Deutschland und damit unser Labor in Münster befinden sich in einem
Prozess des erheblichen Wandels. Dieser Wandel betrifft sowohl die Analytik selbst, die durch
Einführung neuer Methoden und Fortentwicklung bestehender Verfahren rasch voranschreitet,
als auch die Organisation der Laboratorien, die durch Spezialisierung einerseits und Bildung
von Laborverbunden andererseits eine Erhöhung der Qualität bei besserer Wirtschaftlichkeit realisiert.
So ist unser Labor seit zwei Jahren Teil des größten Laborverbunds Deutschlands, des Limbach-
Verbundes. Unser Verbund wird ärztlich geleitet und hat als Ziel, Sie bei der Versorgung Ihrer
Patienten im labordiagnostischen Bereich optimal zu unterstützen und zu beraten.
Das Leistungsverzeichnis, das Sie in den Händen halten, ist zum ersten Mal kein
eigenständiges Produkt, sondern ein Auszug aus unserem wesentlich umfangreicheren Online-
Leistungsverzeichnis. Letzteres ist unter www.labor-muenster.de abrufbar und enthält viele
wertvolle Hinweise zur Präanalytik sowie zu den Untersuchungsindikationen und Befundinterpretationen,
die den Rahmen des gedruckten Verzeichnisses gesprengt hätten. Das Online-Verzeichnis
ist zudem stets tagesaktuell, während das gedruckte Verzeichnis naturgemäß eine Momentaufnahme
darstellen muss.
Dieses Verzeichnis gliedert sich in die Bereiche Allgemeine Laborinformation“ , Moleku-
” ”
larbiologie“ , Funktionsteste“ , Mikrobiologie“ , Antibiotic Stewardship“ , Hygiene“ und
” ” ” ”
” Stuhldiagnostik“ . Es folgt unter der Rubrik Zusätzliches Informationsmaterial“ eine Liste
”
diagnostischer Algorithmen und Übersichten, die bei unserem Außendienst oder unserem Versand
kostenlos angefordert werden können. Danach finden Sie im Alphabetischen Leistungsverzeichnis“
”
eine Ausführung der in unserem Labor verfügbaren, nicht-mikrobiologischen Untersuchungen,
einschließlich der Leistungen der Molekularbiologie. Abgerundet wird das Buch durch einen
alphabetischen Seiten-Index, auch ein Novum das, so wie wir hoffen, die Handhabung des Werkes
erheblich erleichtern wird.
Wir freuen uns sehr, Ihnen dieses komplett überarbeitete Leistungsverzeichnis vorlegen zu
können. Für Kritik und Anregungen bezüglich Inhalt oder Layout sind wir jederzeit dankbar.
Wir bedanken uns für die gute Zusammenarbeit und hoffen, dass dieses Verzeichnis Ihnen in
Ihrer täglichen Arbeit eine wertvolle Hilfe sein wird.
Prof. Dr. Paul Cullen
Geschäftsführer des Labors
5

2 Allgemeine Laborinformation
2.1 Ansprechpartner
Zentrale Telefon / Telefax E-Mail
0251 60916-0 / -100 info@labormuenster.de
Verwaltung Telefon / Telefax E-Mail
0251 60916 - @labor-muenster.de
Abrechnung
- Privatpatienten Petra Janssen -133 / -100 petra.janssen
- Inkasso Anne Bombe -135 / -139 anne.bombe
- Krankenhaus Petra Janssen -133 / -100 petra.janssen
Einsenderbetreuung Anja Hagemann -134 / -100 anja.hagemann
DFÜ Dominic David -281 / -100 dominic.david
Ralf Rabe -281 / -100 ralf.rabe
Kurierdienst W. Rensinghoff -292 / -294 winfried.rensinghoff
Versand Sabine Wolters -161 / -164 versand
Leitung Ronald Seus -121 / -139 ronald.seus
Laborbereiche Telefon / Telefax E-Mail
0251 60916- @labor-muenster.de
Klinische Chemie Alide Vrielink -231 / -286 alide.vrielink
Mikrobiologie Ulrike Hachmann -171 / -189 ulrike.hachmann
Molekularbiologie Dr. rer. nat.
Frank Thiemann
6
-241 / -189 frank.thiemann

2 Allgemeine Laborinformation
Laborbereiche Telefon / Telefax E-Mail
Hygiene Dr. med. Dr. rer. nat.
Wolfgang Treder
-106 / -103 w.treder
Technische Leitung Norbert Brink -211 / -100 norbert.brink
Qualitätsmanagement Marion Eich -283 / -100 marion.eich
Annika Janich -285 / -100 annika.janich
Unsere E-Mail-Stammadresse lautet @labor-muenster.de
Wenn Sie also eine E-Mail beispielsweise an unseren Versand schicken möchten, so lautet die
vollständige E-Mail-Adresse versand@labor-muenster.de,
möchten Sie z.B. mit Frau Eich von unserem Qualitätmanagement Kontakt aufnehmen, würden Sie
Ihre E-Mail an marion.eich@labor-muenster.de richten.
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2 Allgemeine Laborinformation
2.2 Ärzteteam
Kontakt
Prof. Dr. med. Paul Cullen 0251 60916 – 105
Geschäftsführer
p.cullen@labor-muenster.de
Facharzt für Laboratoriumsmedizin
Facharzt für Innere Medizin
Klinischer Chemiker
Dr. med. Dominik Löer 0251 60916 – 135
Facharzt für Laboratoriumsmedizin d.loeer@labor-muenster.de
Dr. med. Dr. rer. nat.
Wolfgang Treder
Facharzt für Mikrobiologie, Virologie und
Infektionsepidemiologie,
Facharzt für Hygiene und Umweltmedizin
0251 60916 – 106
w.treder@labor-muenster.de
Dr. med. Susanne Adam 0251 60916 – 119
Fachärztin für Transfusionsmedizin
s.adam@labor-muenster.de
mit Zusatzbezeichnung Hämostaseologie,
Fachärztin für Laboratoriumsmedizin
Sabine Riepe 0251 60916 – 104
Fachärztin für Laboratoriumsmedizin sabine.riepe@labor-muenster.de
Dr. med. Aurélien Schubert 0251 60916 – 109
Facharzt für Laboratoriumsmedizin a.schubert@labor-muenster.de
Dr. med. Max Georg Weyer 0251 60916 – 102
Facharzt für Laboratoriumsmedizin,
max-georg.weyer@labor-muenster.de
Facharzt für Mikrobiologie, Virologie und
Infektionsepidemiologie
Dr. med. Uwe Lang 0251 60916 – 116
Facharzt für Mikrobiologie, Virologie und
Infektionsepidemiologie
u.lang@labor-muenster.de
Dr. med. Jana Thiel 0251 60916 – 115
Fachärztin für Mikrobiologie, Virologie und
Infektionsepidemiologie
j.thiel@labor-muenster.de
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Kontakt
Dr. med. Andreas Uekötter 0251 60916 – 359
Facharzt für Mikrobiologie, Virologie und
Infektionsepidemiologie
a.uekoetter@labor-muenster.de
Dr. med. Matthias Aymanns 0251 60916 – 108
Assistenzarzt m.aymanns@labor-muenster.de
2 Allgemeine Laborinformation
Dr. med. Ursula Westerhoff 0251 60916 – 113
Assistenzärztin u.westerhoff@labor-muenster.de
Kim Koop, M.Sc. 0251 60916 – 180
Master of Science (Mikrobiologie) kim.koop@labor-muenster.de
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2 Allgemeine Laborinformation
2.3 Öffnungszeiten
Telefonzentrale
Montag bis Freitag 8.00 bis 19.00 Uhr
Blutentnahme
Montag bis Freitag 8.00 bis 16.00 Uhr
Kontakt
Zentrale 0251 – 60916-0
Telefax 0251 – 60916-100
Internet http://www.labor-muenster.de
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2.4 Qualitätsmanagement
2 Allgemeine Laborinformation
Einleitung
Seit Januar 2004 ist unser Institut ein durch die DAkkS (Deutsche Akkreditierungsstelle) akkreditiertes
Prüflabor nach DIN EN ISO 15189 (D-ML13111-01-00).
Die Aufrechterhaltung und Weiterentwicklung unseres Qualitätsstandards resultiert aus einem
kontinuierlichen Prozess, der unter anderem folgende Punkte beinhaltet:
- Dokumentation und Pflege von Standard-Arbeitsanweisungen (engl. Standard Operating Procedures
(SOP)) für alle bei uns durchgeführten Untersuchungsverfahren
- Transparenz aller qualitätsrelevanten Tätigkeiten durch standardisierte Verfahrens- und Arbeitsanweisungen
- Management Reviews der Geschäftsleitung
- Regelmäßige Durchführung interner Audits
- Regelmäßige externe Begutachtung durch die Deutsche Akkreditierungsstelle (DAkkS)
- Kontinuierliche interne und externe Weiterbildung der Mitarbeiter/innen
- Interne Qualitätssicherung durch die Auswertung der Qualitätskontrollen nach den Richtlinien der
Bundesärztekammer (RiLiBÄK)
- Teilnahme an externen Ringversuchen und Laborvergleichsmessungen
Alle nicht akkreditierten Leistungen werden im Analysenverzeichnis mit (N) gekennzeichnet.
Meßunsicherheit und Signifikanz
Jedes Messergebnis ist einer Messunsicherheit unterworfen. Diese Unsicherheit entsteht einerseits
aus Fehlern und Ungenauigkeiten bei der Probenentnahme und der Analyse, andererseits aufgrund
Unkenntnis aller Faktoren, die das Ergebnis beeinflussen können.
Nach ISO/DIN 3534-1 ist ein Messergebnis definiert als ein Schätzwert, der den Wertebereich angibt,
innerhalb dessen der wahre Wert zu erwarten ist.
Zur Beurteilung der Messunsicherheit reicht die alleinige Beurteilung der Wiederholbarkeit und
Vergleichbarkeit nicht aus (Richtlinien zur Interpretation der Normenserie EN 45000 und ISO GUIDE
25). Vielmehr müssen alle relevanten Quellen der Unsicherheit, insbesondere die Probenentnahme,
die im medizinischen Laboratorium eine entscheidende Rolle spielt, berücksichtigt werden.
Die für die Signifikanzbetrachtung entscheidende Gesamtmessunsicherheit im medizinischen
Laboratorium wird beeinflusst unter anderem von:
- Einflussgrößen (= in vivo Determinanten):
biologisch-physiologische Einflüsse wie Geschlecht, Alter, Ernährung, Belastungszustand,
Körperlage, Tagezeit
- Einflüsse diagnostischer und therapeutischer Maßnahmen wie intravenöse Injektionen, Medikamente,
pathologische Einflüsse wie Trauma, Operationen oder Schock sowie Faktoren, die sich aus
der Probenentnahme ergeben (s.u.)
- Störfaktoren (= in vitro Determinanten):
als Konsequenz diagnostischer und/oder therapeutischer Maßnahmen, insbesondere Störung durch
Pharmaka
- Störung durch Probenbestandteile, die noch vor Abnahme in vivo oder durch falsche Lagerung der
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2 Allgemeine Laborinformation
Probe in vitro auftreten
- Faktoren, die mit der Entnahme der Probe zusammenhängen
- in vivo Einflussgrößen wie die Art der Probe, Körperlage, Stauungszeit, Tageszeit, Lipämie oder
Hämolyse
- in vitro Störfaktoren wie Gerinnung, Hämolyse, Lagerung, Licht oder Raumluft
- anderen Faktoren der Präanalytik wie Transport oder Probenvorbereitung
- der Präzision des analytischen Laborprozesses. Die Präzision misst den statistischen Fehler bei
wiederholter Messung (Streuung). Ihr Maß ist der Variationskoeffizient. Der Variationskoeffizient
hängt von der Lage des Messwertes stark ab: die relative Streuung ist in der Regel größer bei
niedrigen Messsignalen als bei hohen
- der Richtigkeit des analytischen Laborprozesses als Maß für die Messsystem-abhängige Abweichung
vom “ wahren Wert”
Im Rahmen der Qualitätskontrolle werden die Berechnungen der analytischen Präzision und
Richtigkeit für alle quantitativen Parameter ständig aktualisiert. Auf Anfrage erteilen wir Ihnen gern
Auskunft über die analytischen Variablen der Messunsicherheit bei quantitativen Prüfverfahren.
Wir haben uns bemüht, die für die Beurteilung der Gesamtmessunsicherheit wichtigen Faktoren wie
beispielsweise die Halbwertszeit bei Medikamenten in dieser Analysenübersicht aufzulisten.
Gerne stehen wir Ihnen zur Besprechung einzelner Befunde sowie möglicher Störfaktoren jederzeit
zur Verfügung.
Fremdanalysen
Alle Fremdanalysen sind in der Analysenübersicht mit W (Weiterleitung) oder U (Unterauftrag)
gekennzeichnet. Die Auftragsvergabe erfolgt an kompetente Fachlabore, über deren Qualitätsstandard
wir uns regelmäßig informieren.
Ansprechpartner
Für Fragen, Anregungen und Kritik steht Ihnen unser Qualitätsmanagement gerne zur Verfügung.
Marion Eich
Telefon: 0251/60916-283
Fax: 0251/60916-100
E-Mail: marion.eich@labor-muenster.de
Annika Janich
Telefon: 0251/60916-285
Fax: 0251/60916-100
E-Mail: annika.janich@labor-muenster.de
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2.5 Präanalytik
2 Allgemeine Laborinformation
Allgemeines
Für die Präzision und Richtigkeit labormedizinischer Untersuchungen ist die korrekte Einhaltung
der präanalytischen Bedingungen von entscheidender Bedeutung. Neben der Entnahme ist die
Verwendung der richtigen Probengefäße sowie die sachgerechte Lagerung und der Transport
mitentscheidend für ein korrektes Messergebnis. Allgemeine Hinweise, die Sie beim optimalen
Umgang mit der Probe unterstützen, finden sie auf den folgenden Seiten. Darüber hinaus finden
Sie ausführliche Kommentare und Hinweise in den speziellen Kapiteln der Fachbereiche. Sowohl
das alphabetische Analysenverzeichnis als auch die nachfolgenden Kapitel enthalten detaillierte
Informationen zu Entnahmebedingungen, Probennahme, benötigtem Material sowie Lagerungs- und
Transportbedingungen der einzelnen Untersuchungen. Selbstverständlich stehen wir Ihnen bei Fragen
jederzeit gerne zur Verfügung.
Beschriftung von Material und Begleitschein
Unmittelbar nachdem die Probe unser Labor erreicht hat, wird sie auf Übereinstimmung der
Identitäten von Probenmaterial und Begleitschein geprüft, damit Verwechslungen ausgeschlossen
werden können. Verwechslungsgefahr besteht insbesondere, wenn mehrere Probenmaterialien einem
Patienten zugeordnet werden müssen oder Proben verschiedener Patienten in einer Versandtasche
transportiert werden. Eine eindeutige Identifikation und Zuordnung ist nur dann gegeben, wenn
sowohl Begleitschein als auch das Probenmaterial vollständig beschriftet sind.
Bitte zusätzlich folgende Hinweise beachten
Immer das Material mit Vor- und Zunamen, bei Blutgruppenbestimmungen auch mit Geburtsdatum
beschriften.
Bei seltenen oder ausländischen Vornamen bitte Geschlecht angeben.
Einsenderangaben, d.h. Praxis- oder Stationsstempel nicht vegessen.
Bitte Material und zugehöriges Begleitformular immer in der gleichen Versandtasche einsenden.
Visuell schwer identifizierbares Material (z.B. Punktat, Liquor) auf dem Überweisungsschein
benennen
Immer nur das Probenröhrchen beschriften (nicht das Versandröhrchen oder die Umhülle).
Bei Funktionstesten, Tagesprofilen o.ä. unbedingt Probenröhrchen eindeutig beschriften (z.B. vor
bzw. nach Medikamenten-Gabe, Entnahmezeit).
Vollblutröhrchen nicht mit schwarzem Filzstift beschriften: Nicht lesbar. Aufkleber verwenden.
Entnahmeort bei Abstrichen angeben.
Den Untersuchungsauftrag bitte konkret und eindeutig formulieren. Aufträge wie zum Beispiel
” Abklärung Bauchschmerzen“ , ” Virusdiagnostik“ oder arbeitsmedizinische Untersuchungen“
”
können von uns nicht bearbeitet werden, da ohne genaue Kenntnis des klinischen Bildes und der
bereits ausgeschlossenen Differentialdiagnosen eine Eingrenzung der Analytik nicht möglich ist.
Angaben über Klinik und Therapie helfen uns bei der Interpretation des Befundes und sind z.B.
auch für eine gezielte Antibiotikaaustestung wichtig. Vollständige Angaben über Patient, Material
und Herkunft des Materials beschleunigen die präzise Bearbeitung der Probe und ermöglichen eine
zügige Bearbeitung ohne Zeitverlust.
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2 Allgemeine Laborinformation
Probenmaterial und Probengefäße
Serum: weiße Monovette
Als Serum bezeichnet man den Teil des Blutes, der nach der Gerinnung von den zellulären
Bestandteilen und Fibrin getrennt wurde. Aus Serum wird die Mehrzahl der Untersuchungen
durchgeführt, insbesondere spezifische Antikörpernachweise von Infektionserregern. Das entnommene
Blut in der weißen Vollblut-Monovette gut schwenken. Wird für die angeforderte
Untersuchung ausdrücklich Serum benötigt, die Monovette einige Minuten aufrecht stehen lassen
und anschließend wenn möglich zentrifugieren. Das gewonnene Serum vom Blutkuchen trennen und
in ein Serumröhrchen füllen.
Vollblut: weiße Monovette
Manche Untersuchungen erfolgen aus dem Vollblut, d. h. es müssen alle Bestandteile des Blutes
in der Probe enthalten sein (z. B. irreguläre erythrozytäre Antikörper). Die Monovette darf nicht
zentrifugiert werden. Bitte die Angaben in der Analysenübersicht beachten!
Citrat-Blut: grüne Monovette
Natriumcitrat verhindert die Blutgerinnung. Das durch Zentrifugation gewonnene Citrat-Plasma
wird u.a. für Gerinnungsanalysen benötigt. Für bestimmte Untersuchungen muss gefrorenes Plasma
versendet werden. Vor dem Tieffrieren bitte unbedingt das Plasma von den Blutzellen trennen
(Hämolyse!). Ergänzende Angaben finden Sie unter den entsprechenden Untersuchungen.
EDTA-Blut: rote Monovette
Ethylen-diamin-tetra-acetat ist ein Komplexbildner und verhindert ebenfalls die Gerinnung des Blutes
in der Monovette. Auf gute Durchmischung achten und das Röhrchen mehrmals schwenken (nicht
schütteln!). Das EDTA-Blut wird u.a. für die Erstellung von Blutbildern, alle molekulargenetischen
Untersuchungen sowie für einige Medikamentennachweise verwendet. Das durch Zentrifugation
gewonnene EDTA-Plasma ist z. B. notwendig für den PCR-Nachweis von Viren.
Ammonium-Heparinat-Blut: blaue Monovette
Heparin ist ein Komplex aus Glykosaminoglykanen, der die Blutgerinnung hemmt. Heparinat-Blut
wird z.B. für die HLA B27–Diagnostik oder die Bestimmung von Histamin im Vollblut verwendet
Lithium-Heparinat: orange Monovette
Lithium-Heparinat-Blut wird u.a. für den Nachweis von Tuberkulose-reaktiven T-Lymphozyten
mittels TB-Elispot oder Quantiferon-Test benötigt.
Na-Fluorid-Blut: gelbe Monovette
Natrium-Fluorid hemmt die Glykolyse. Dieses Blut wird für die Bestimmung von Kohlenhydraten
wie Glucose oder Fructose verwendet. Glucose-Bestimmungen aus Serum können durch die in
vitro-Verstoffwechselung des Zuckers durch die Leukozyten falsch niedrig ausfallen.
GlucoEXACT-Röhrchen (Citrat-NaF-Blut): graue Monovette
Das Gemisch aus Citrat/Citratpuffer und Natrium-Fluorid hemmt die Glykolyse zuverlässig und
unmittelbar. Leitliniengemäß wird dieses Material zur Glucosebestimmung im Rahmen des oralen
Glucosetoleranztests (OGTT) bei V.a. Gestationsdiabetes empfohlen.
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2 Allgemeine Laborinformation
Rollrandröhrchen:
Diese werden überwiegend für die Untersuchung auf Lösungsmittel und andere flüchtige Substanzen
eingesetzt. Die Benutzung von Rollrandröhrchen ist bei der jeweiligen Anforderung genau
beschrieben. Überführen Sie bitte die angegebene Menge Blut in das Röhrchen und gehen Sie dann
weiter vor wie beschrieben.
Entnahmereihenfolge:
Werden von einem Patienten verschiedene Blutproben benötigt, halten Sie bitte folgende Reihenfolge
bei der Blutentnahme ein:
1. Blutkultur
2. Nativblut (Vollblut/Serum)
3. Citratblut
4. EDTA-, Heparinat-Blut
5. Fluorid-Blut
Probentransport
Der von uns beauftragte Kurierdienst sorgt für einen zügigen und sachgerechten Transport des
Materials in unser Labor. Sämtliche Fahrzeuge sind mit Transport- und Kühlboxen ausgerüstet,
um transportbedingte präanalytische Fehler weitestgehend zu vermeiden. Selbstverständlich wird
für die strikte Einhaltung der aktuellen Vorschriften über den Transport von medizinischen Untersuchungsmaterialien
Sorge getragen. Die Einteilung der Fahrrouten ist so gewählt, dass die Proben
schnellstmöglich das Labor erreichen. Wir bitten Sie um Verständnis, dass eine Tourenplanung
naturgemäß nicht immer den optimalen Anfahrzeitpunkt für Ihre Praxis erreichen kann. Trotzdem
möchten wir Sie herzlich bitten, die Proben zum verabredeten Zeitpunkt abholbereit zu haben, um
unnötige Wartezeiten auch im Namen der anderen Kollegen zu vermeiden. Für Ihr Verständnis recht
herzlichen Dank. Selbstverständlich ist auch eine Einsendung der Probe über den Postweg möglich.
Bitte benutzen Sie hierfür die von uns zur Verfügung gestellten Versandtaschen. Das Porto wird
von uns übernommen. Wir möchten Sie darauf aufmerksam machen, dass ein Postversand unter
Umständen länger als 24 Stunden dauern kann und raten von einem Versand über das Wochenende
oder einem Feiertag ab.
Versandmaterial
Versandmaterialien, Formulare, Entnahmematerialien und Probengefäße können mit dem Vordruck
Bestellschein für Versandmaterialien bestellt werden. Ein neuer Bestellschein wird Ihnen bei jeder
Lieferung beigefügt. Selbstverständlich können Sie Ihre Bestellwünsche auch telefonisch oder per
Fax an uns richten. Für Auskünfte stehen Ihnen unsere Mitarbeiter gerne zur Verfügung.
Probenannahme / Versand
Tel. 0251 / 60 91 6 161
Fax 0251 / 60 91 6 164
Befundübermittlung
Der Befundbericht erfolgt schriftlich als Befunddruck, per Fax oder per Datenfernübertragung
(siehe unten). Eil- oder Notfallbefunde werden umgehend telefoniert oder per Fax versendet. Sollte
ein Ergebnis in jedem Falle telefoniert oder gefaxt werden, so teilen Sie uns dieses bitte auf dem
Begleitschein mit. Nicht immer lassen sich nachträgliche Korrekturen aufgrund unserer internen
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2 Allgemeine Laborinformation
Qualitätskontrolle bzw. aufgrund von Reklamationen des einsendenden Arztes vermeiden. In diesen
Fällen erhalten Sie von uns einen als ” Korrekturbefund“ gekennzeichneten berichtigten Befund
verbunden mit der Bitte, den fehlerhaften Befund zu vernichten. Unsere EDV hat in der Regel
die Telefonnummer und das dazugehörige Faxgerät Ihrer Praxis in den Adressdaten hinterlegt, so
dass ein Faxbefund mittels Knopfdruck ausgelöst werden kann. Sollte ein dringlicher Befund an
eine abweichende Ruf- oder Faxnummer übermittelt werden, bitten wir um Angabe der Nummer
auf dem Überweisungsschein (bitte deutlich kennzeichnen). Eine Befundkopie für einen weiterbehandelnden
Kollegen bzw. für den Patienten erstellen wir gerne auf Ihren Wunsch. Sollten wir
im Rahmen der gesetzlichen Meldepflicht (Infektionsschutzgesetz, IfSG) ein Untersuchungsergebnis
an das zuständige Gesundheitsamt weiterleiten, so werden Sie auf dem Befund hierüber informiert.
Elektronische Befundübermittlung (DFÜ)
Mit der DFÜ bieten wir Ihnen eine zeitgemäße, schnelle und sichere Art der Befundübermittlung. Sie
können die Befunde inklusive der Referenzbereiche und Abrechnungsziffern von unserer Mailbox
abrufen. Das erspart Ihnen und Ihrem Team Zeit. Die übertragenen Laborergebnisse können Sie
sofort in Ihre Praxis-Software übernehmen. Übermittelt werden LDT-Dateien – auf Wunsch auch
verschlüsselt und komprimiert – über sichere Telefon- oder Internet-Verbindungen.
16 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

2.6 Abkürzungen
2 Allgemeine Laborinformation
AAS Atom-Absorptions-Spektroskopie
BAT Biologischer Arbeitsstoff-Toleranz-Wert
CEDIA Cloned Enzyme Donor Immuno Assay
CLIA Chemilumineszenz Immuno Assay
CMIA Chemilumineszenz Mikropartikel
Immuno Assay
ECLIA Elektrochemilumineszenz Immuno Assay
EIA Enzyme Immuno Assay
EIDA Enzyme Immuno Dot Assay
ELFA Enzyme Linked Fluoreszenz Assay
ELISA Enzyme Linked Immunosorbent Assay
FC Flow Cytometry
FEIA Fluoreszenz Enzym Immuno Assay
FPIA Fluoreszenz Polarisations Immuno Assay
GC Gas-Chromatographie
GC/ECD GC mit Elektroneneinfangdetektor
GC/FID GC mit Flammenionisierungsdetektor
GC/MS Gas-Chromatographie / Massenspektrometrie
HPLC High Performance Liquid Chromatography
IA Immuno Assay
ICP/MS Inductively Coupled Plasma / Mass Spectometry
IEF Isoelektrische Fokussierung
IF Immunfixation
IFT Immunfluoreszenz-Test
IHA Indirekte Hämagglutination
IIFT Indirekter Immunfluoreszenz-Test
ILMA Immunoluminometrischer Assay
IR Infrarotspektrometrie
IRMA Immunoradiometrischer Assay
ISE Ionenselektive Elektrode
ITC Ionenaustauschchromatographie
KBR Komplementbindungsreaktion
LC/MS Liquid Chromatography Mass Spectometry
LC-MS/MS Liquid Chromatography Tandem
Mass Spectometry
LIA Lumineszenz Immunoassay
LIEMA Lumineszenzverstärkter
immunoenzymometrischer Assay
MEIA Mikropartikel Immunoassay
PAGE Polyacrylamid Gelelektrophorese
PCR Polymerase Chain Reaction
PCR-SSP Polymerase Chain Reaction Sequence Specific
Primer
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 17

2 Allgemeine Laborinformation
PETNIA Partikelverstärkter Turbidimetrischer Inhibitions
Immunoassay
REA Radioenzymatischer Assay
RIA Radioimmunoassay
RIA DA PEG Radioimmunoassay
Doppelantikörper Polyäthylenglykol
RID Radioimmundiffusion
RIP Radioimmunpräzipitation
RRA Radiorezeptorassay
RT-PCR Reverse Transkription
Polymerase Chain Reaction
RZM-RIP/AUR RIP radioaktiv markierter Zellextrakte (RZM),
Autoradiographie
18 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

3 Molekularbiologie
3.1 Präanalytik
1. Serum oder Plasma
Für den PCR-Nachweis viraler RNA oder DNA bitte immer eine gesonderte Vollblut- oder
EDTA-Monovette (2x 2,7 ml Monovetten oder 1x 9,0 ml Monovette) einsenden. Monovette nach
Blutentnahme nicht öffnen.
Der Transport in das Labor sollte am Tag der Blutentnahme erfolgen. Ist ein tagesgleicher Transport
nicht möglich, Probe gekühlt bei 4°C im Kühlschrank aufbewahren. Eventuell Rücksprache mit dem
Labor.
2. Humangenetische Untersuchungen
Molekulargenetische Untersuchungen zum Nachweis von Mutationen oder Polymorphismen können
nur aus EDTA-Blut, Citrat-Blut oder aus Mundschleimhaut-Abstrichen (s. u.) erfolgen. Serum
oder Plasma sind hierfür nicht geeignet! Das Blut oder der Abstrich kann über Nacht bei 4°C im
Kühlschrank gelagert werden.
Zum Nachweis von strukturellen oder numerischen Chromosomenaberrationen (Fremdleistung!)
werden 10 ml Li-Heparinat-Blut benötigt. Die entsprechenden Monovetten erhalten Sie nach
Rücksprache in unserem Versand (0251 / 60916 – 161)
Für eine humangenetische Untersuchung benötigen wir eine Einverständniserklärung des
Patienten (§ 8 GenDG).
3. Abstriche
a) zum Nachweis viraler DNA:
Je nach Indikation entsprechend mit Tupfer abstreichen (z. B. Nasen-Rachenabstriche,
Bläscheninhalt) und in das Röhrchen einbringen. Keine Tupfer mit Gelmedium verwenden,
weil eine DNA-Isolierung dann nicht mehr möglich ist! Spezielle Abstrichbestecke mit flüssigem
Transportmedium auf Anfrage erhältlich.
Lagerung und Transport bei Raumtemperatur.
b) zum Nachweis bakterieller DNA (insbesondere zum MRSA-Nachweis):
Für den PCR-Nachweis (MRSA-Schnelltest) einen Trockentupfer ohne Transportmedium verwenden!
Tupfer mit steriler 0,89%iger NaCl-Lösung befeuchten. Zuerst den Rachen und dann
beide Nasenvorhöfe mit einem Tupfer abstreichen. Einen Wundabstrich ggf. gesondert abnehmen.
Nachfolgend Abstrichbesteck mit Transportmedium verwenden und nochmals abstreichen. Diese
19

3 Molekularbiologie
Abstriche werden für den kulturellen Nachweis benötigt, wenn der Schnelltest positiv ist. Nur so
kann ggf. eine Resistenzbestimmung und Typisierung erfolgen.
Lagerung und Transport bei Raumtemperatur.
c) humangenetische Untersuchung:
Tupfer kräftig 4–5 mal über die Wangenschleimhaut drehen. Der Patient sollte vorher nicht den
Mund ausgespült haben (z. B. Zähneputzen, Mundspülwasser etc.). Tupfer in das Röhrchen ohne
Transportmedium einbringen (s. o.).
Lagerung und Transport bei Raumtemperatur.
4. Urethra-/Zervix-Abstriche:
Mit dem dicken Tupfer Zervixschleim und eventl. Ausfluß entfernen. Mit dem dünnen Tupfer
zellreichen Abstrich entnehmen. Beim Mann dazu den Tupfer 2–3 cm in Urethra einführen und mind.
3x drehen. Tupfer in Transportmedium einbringen und Tupferstiel am Röhrchenrand abbrechen.
Röhrchen gut verschließen. Für den HPV-Nachweis sind spezielle Bürsten verfügbar. Lagerung
und Transport bei Raumtemperatur. Die entsprechenden Abstrichröhrchen erhalten Sie in unserem
Versand (0251 / 60916 – 161)
5. Liquor
Nach der Lumbal- / Subokzipitalpunktion die ersten 5 Tropfen in steriles Gefäß tropfen lassen und
verwerfen (Abtrennung von Desinfektionsmitteln, Gewebsflüssigkeit, Blut). Danach ca. 1 ml Liquor
in sterilem Röhrchen auffangen.
Tagesgleicher Transport ins Labor bei Raumtemperatur.
Eventl. Lagerung für einen PCR-Nachweis bei 4°C über Nacht, wenn ein tagesgleicher Transport
nicht möglich ist
Rückstellproben bei –20°C lagern und tiefgekühlt ins Labor senden.
6. Sputum
Morgensputum: Sekret aus den tiefen Atemwegen, das sich über Nacht angesammelt hat, ist am
besten geeignet.
Den Mund vor der Expektoration mit frischem Leitungswasser ausspülen. Keine Mundwässer oder
Zahnpasta benutzen (Desinfizientien).
Wenn Spontangewinnung nicht möglich ist, eventl. Provokationsversuch durch Inhalation eines ca.
45°C warmen Aerosols (hyperton, z. B. 10% NaCl-Lsg. in 15% Propylenglykol) versuchen.
Lagerung und tagesgleicher Transport bei Raumtemperatur.
20 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

7. Bronchialsekret / Trachealsekret
3 Molekularbiologie
Verschickung sollte in RINGER-LACTAT-Lösung erfolgen (nicht physiologische NaCl, da bakterizide
Wirkung möglich).
Lagerung und tagesgleicher Transport bei Raumtemperatur.
8. Bronchoalveoläre Lavage (BAL)
mit RINGER-LACTAT-Lösung durchführen. Zum Nachweis von Pneumocystis jirovecii, Chlamydia/Mykoplasma
pneumoniae, Legionellen u. a. Keimen. BAL-Flüssigkeit in sterilen Serumröhrchen
verschicken.
Lagerung und tagesgleicher Transport bei Raumtemperatur.
9. Ejakulat
Direkt nach Gewinnung in steriles Röhrchen einbringen, bei Raumtemperatur transportieren.
Bei längerer Lagerung (über Nacht) bei 4°C aufbewahren.
10. Urin:
10–20 ml Morgenurin (Erststrahl!) für Chlamydia trachomatis-Diagnostik in sterilem Becher auffangen.
10 ml in Urinmonovette (gelber Deckel) oder in Transportröhrchen (oranger Deckel) mit
beiliegender Pipette bis zum Sichtfenster umfüllen).
Transport bei Raumtemperatur. Bei längerer Lagerung (über Nacht) bei 4°C aufbewahren.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 21

3 Molekularbiologie
3.2 Erregerdiagnostik
Adenovirus(W)
Methode: PCR, qualitativ
Indikation: Verdacht auf Adenovirus-Infektion
Probenmaterial: je nach Indikation: Abstrich (Konjunktiva), 5 g Stuhl, 1 ml Liquor, 1 ml resp.
Material, 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Bei direktem Nachweis im Konjunktivalabstrich namentlich meldepflichtiger Erreger.
Kassenleistung nur bei Nachweis aus Liquor!
BK-(Polyoma)-Virus
Methode: PCR, qualitativer und quantitativer Nachweis
Indikation: hämorrhagische Zystitis bei immunsupprimierten Patienten (nach Knochenmarktransplantation),
interstitielle Nephritis, Ureterstenose (nach Nierentransplantation).
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut, 10 ml Urin
Hinweise: Eine Ausscheidung der Viren im Urin wird auch bei über 60% der Patienten mit systemischem
Lupus erythematodes (SLE) beobachtet. Im Gegensatz zu transplantierten Patienten zeigen
SLE-Patienten jedoch in der Regel keine Virämie. Die asymptomatische Ausscheidung der Viren bei
gesunden Personen wird mit 0-16% angegeben.
Bordetella pertussis / parapertussis
Methode: PCR, qualitativ
Indikation: Verdacht auf Pertussis
Probenmaterial: tiefer Nasen- oder Rachenabstrich; (Abstrich ohne Transportmedium); bitte im
Versand anfordern)
Hinweise: Die PCR ermöglicht den Nachweis von Bordetella pertussis in sehr frühen als auch sehr
späten Stadien der Infektion. Der Antikörpernachweis ist frühestens am Übergang vom Stadium
catarrhale in das Stadium convulsivum möglich
Borrelia burgdorferi
Methode: PCR
Indikation: Verdacht auf Lyme-Borreliose oder Lyme-Arthritis
Probenmaterial: 1 ml Gelenkpunktat, 1 ml Liquor, Hautbiopsie
Hinweise: Kassenleistung nur bei Nachweis aus Liquor!
22 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Candida albicans(W)
3 Molekularbiologie
Methode: PCR
Indikation: Verdacht auf systemische Candidose
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Vollblut, 1 ml Liquor, Abstrich ; (Abstrich ohne Transportmedium);
bitte im Versand anfordern)
Hinweise: Kassenleistung nur bei Nachweis aus Liquor!
Chlamydia trachomatis
Methode: PCR
Indikation: Nachweis einer Chlamydieninfektion bei Zervicitis, Urethritis, Adnexitis, Konjunktivitis,
Prostatitis, Epididymitis; Mutterschaftsvorsorge,Screeninguntersuchung (Frauen bis zum 25.
Lebensjahr)
Probenmaterial: 10–20 ml Morgenurin!! (Anfangsstrahl), Abstrich (Spezialabstrichbesteck auf
Anforderung!), 1 ml Ejakulat
Hinweise: Bitte auf dem Ü-Schein angeben, ob die Untersuchung im Rahmen der MuVo, der
Empfängnisregelung (‘Screening´ für Frauen bis zum 25. Lebensjahr) oder bei V. a. Infektion
durchgeführt werden soll. Gleichzeitiger Nachweis von Neisseria gonorrhoeae aus derselben Probe
möglich
Chlamydia pneumoniae
Methode: PCR
Indikation: Differentialdiagnose der atypischen Pneumonie
Probenmaterial: Sputum, BAL, Trachealsekret
Hinweise: –
Clostridium difficile
Methode: PCR
Indikation: V. a. Antibiotika assoziierte Kolitis oder pseudo-membranöse Kolitis
Probenmaterial: 2 g Stuhl
Hinweise: Nachweis des Toxin A- und B-Gens Auf Anforderung Nachweis einer 117 nt Deletion
des tcd C-Gens (molekulargenetischer Hinweis auf Ribotyp O27); Keine Kassenleistung!
Cytomegalie-Virus
Methode: PCR, qualtativer und quantitativer Nachweis
Indikation: Nachweis einer CMV-Primärinfektion (besonders in der Gravidität und bei Neugeborenen)
oder einer CMV-Reaktivierung (besonders bei Immunsupprimierten) bei Retinitis, Hepatitis,
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 23

3 Molekularbiologie
Pneumonie. Therapiemonitoring einer CMV-Infektion
Probenmaterial: je nach Indikation: 1 ml Fruchtwasser, 0,5 ml fetales EDTA-Blut, 1 ml Liquor, 10
ml Urin, 1 ml respiratorisches Material, 3 ml EDTA-Blut, Kammerwasser, Chorionbiopsie
Hinweise: Kassenleistung nur bei organtransplantierten und immunsupprimierten Patienten
EHEC (entero-hämorrhagischer Escherichia coli)
Methode: PCR
Indikation: E. coli-induzierte Diarrhöen, hämolytisch urämisches Syndrom, thrombotische thrombozytopenische
Purpura.
Probenmaterial: –
Hinweise: kein Direktnachweis! Nachweis erfolgt aus Kultur! Nachweis des stx1-, stx2- und des
eae-Gens, keine Kassenleistung!
Enteroviren(W): Coxsackie-, ECHO- und Polioviren
Methode: PCR
Indikation: seröse Meningitis, unklare Peri-, Myokarditis, akute/chronische Kardiomyopatie,
Enteritis
Probenmaterial: je nach Indikation: 3 ml EDTA-Blut, 1 ml Liquor, Biopsie, Nasopharyngealabstrich
Hinweise: Kassenleistung nur bei Nachweis aus Liquor!
Epstein-Barr-Virus
Methode: PCR, qualitativer und quantitativer Nachweis
Indikation: Verdacht auf EBV-Infektion bei Patienten unter Immunsuppression mit Immundefekt,
Verdacht auf EBV-assoziierte Enzephalitis, orale Haarzelleukoplakie, EBV-assoziierte lymphoproliferative
Erkrankungen, EBV-assoziierte neoplastische Erkrankungen (nasopharyngeales Karzinom,
Burkitt-Lymphom), Pfeiffersches Drüsenfieber
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut, 1 ml Liquor, Trockenabstrich, Biopsiematerial
Hinweise: Der Nachweis von EBV-DNA in den Leukozyten und im EDTA-Plasma weist auf eine
produktive Infektion hin. Der alleinige Nachweis in den Leukozyten spricht für einen erhöhten Anteil
EBV-infizierter bzw. transformierter B?Zellen, der zu einer lymphoproliferativen Störung führen
kann. Kassenleistung bei organtransplantierten Patienten
FSME – Virus(W)
Methode: RT-PCR
Indikation: V. a. Infektion mit FSME nach Aufenthalt in Hochendemiegebieten
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut, 1 ml Liquor,
24 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

3 Molekularbiologie
Hinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 7 – 14 Tage. Namentlich meldepflichtiger Krankheitserreger.
Kassenleistung nur bei Nachweis aus Liquor!
Hepatitis A – Virus(W)
Methode: PCR, qualitativer Nachweis
Indikation: Verdacht auf akute Hepatitis A, Nachweis der Hepatitis A-Virämie, Umgebungsuntersuchungen
bei Hepatitis A-Ausbrüchen
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut, 5 g Stuhl, Leberbiopsie (tiefgefroren (-20°C)
Hinweise: keine Kassenleistung!
Hepatitis B – Virus
Methode: PCR, quantitativer Nachweis
Indikation: Bestimmung der Virusmenge ("viral load") des Patienten zur Beurteilung
des Infektionsstatus und zur Therapiekontrolle
Probenmaterial: 10 ml EDTA-Blut
Hinweise: Ausnahmekennziffer 32005 (Therapie Hepatitis B+C) oder 32006 (Verdacht auf
meldepflichtige Erkrankung)
Hepatitis B – Virus(W): genotypische Resistenzbestimmung (pol-Gen)
Methode: PCR und Sequenzierung
Indikation: Verdacht auf Resistenz gegenüber den eingesetzten Medikamenten zur Therapie einer
HBV-Infektion (Lamivudine, ggf. Adefovir oder andere); bei:Therapieversagen (HBV-Viruslast-
Anstieg unter Therapie) oder Primärinfektion mit ggf. resistenten HBV-Stämmen oder Beginn einer
HBV-Therapie
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweis: vorher bestimmen: Hepatitis B-DNA-Nachweis quantitativ (Voraussetzung für die Resistenztestung:
Viruslast > 2000 IU/ml) Ausnahmekennziffer 32005 (Therapie Hepatitis B+C) oder
32006 (Verdacht auf meldepflichtige Erkrankung)
Hepatitis C – Virus
Methode: RT-PCR, quantitativer Nachweis
Indikation: atypische Verlaufsformen (anti-HCV negativ bei akuter Hepatitis), Prüfung auf Infektiosität,
Voruntersuchung bei geplanter Therapie, Verlaufskontrolle bei Therapie
Probenmaterial: 10 ml EDTA-Blut
Hinweise: Ausnahmekennziffer 32005 (Therapie Hepatitis B+C) oder 32006 (Verdacht auf
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 25

3 Molekularbiologie
meldepflichtige Erkrankung)
Hepatitis C – Genotypisierung
Methode: RT-PCR mit anschließender reverser Dot-Blot Hybridisierung
Indikation: Voruntersuchung bei geplanter Therapie
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Ausnahmekennziffer 32005 (Therapie Hepatitis B+C)
Hepatitis D-Virus(W)
Methode: RT-PCR
Indikation: Verdacht auf Superinfektion einer chronischen Hepatitis B-Infektion
Probenmaterial: 10 ml EDTA-Blut
Hinweise: Ausnahmekennziffer 32006 (Verdacht auf meldepflichtige Erkrankung)
Herpes simplex Typ 1 / 2
Methode: PCR mit anschließender Schmelzkurvenanalyse zur Differenzierung
Indikation: Nachweis einer HSV-Infektion, insbesondere bei akuter ZNS-Erkrankung
Probenmaterial: je nach Indikation: 1 ml Liquor, 3 ml EDTA-Blut, Bläscheninhalt (Trockenabstrich),
Kammerwasser, 1 ml respiratorisches Material
Hinweise: Abstrich ohne Transportmedium; bitte im Versand anfordern. Kassenleistung nur bei
Nachweis aus Liquor!
Humanes Immundefizienz-Virus (HIV)
Methode: RT-PCR, quantitativer Nachweis
Indikation: Verlaufskontrolle bei Therapie
Probenmaterial: 10 ml EDTA-Blut
Hinweise: Therapie der HIV-Infektion Ausnahmekennziffer 32021
HIV-Resistenzbestimmung(W)
Methode: Sequenzierung
Indikation: V. a. Therapieversagen
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Therapie der HIV-Infektion Ausnahmekennziffer 32021
26 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Humanes Papilloma-Virus
3 Molekularbiologie
Methode: PCR
Indikation: V. a. Infektion, Vorsorgeuntersuchung
Probenmaterial: Zervikal-, Urethralabstrich, Biopsiematerial
Hinweise: Differenzierung in:"Low Risk"-Typen: (6, 11, 42, 43, 44); bei positivem
Ergebnis gleichzeitiger Einzelnachweis der Typen 6 und 42
"High-Risk"-Typen: (16, 18, 31, 33, 35, 39, 45, 51, 52, 56, 58; 59; 68); bei positivem
Ergebnis gleichzeitiger Einzelnachweis der Typen 16 und 18
Influenza A/B
Methode: RT-PCR
Indikation: Verdacht auf eine Influenza-Infektion, insbesondere bei plötzlich einsetzendem hohen
Fieber, Kopf- und Gliederschmerzen, ggf. auch Pneumonie und selten Meningoenzephalitits
Probenmaterial: Rachenspülwasser, Nasopharyngealabstrich
Hinweise: Der Nachweis der Influenza A und B-RNA erfolgt in einem Reaktionsansatz. Die
Differenzierung erfolgt mittels spezifischer Sonden.
Legionella pneumophila
Methode: PCR
Indikation: Differentialdiagnose der atypischen Pneumonie
Probenmaterial: Sputum, BAL, Trachealsekret
Hinweise: Der Nachweis von Legionellen-DNA im Blut oder Urin ist nur bei Verdacht auf
hämatogene Streuung sinnvoll. Keine Kassenleistung!
Listeria monocytogenes(W)
Methode: PCR
Indikation: V.a. Infektion (z.B. bei Immunsupprimmierten, gelegentlich in Gravidität)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut, 1 ml Liquor
Hinweise: Namentlich meldepflichtiger Krankheitserreger (Meldepflicht nur für den direkten
Nachweis aus Blut, Liquor oder anderen normalerweise sterilen Substraten sowie aus Abstrichen von
Neugeborenen). Kassenleistung nur bei Nachweis aus Liquor
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 27

3 Molekularbiologie
Metapneumovirus, humanes Typ A und B (hMPV)
Methode: RT-PCR
Indikation: Kindliche Atemwegsinfektionen, atypische Pneumonien (Säuglinge, auch Kinder und
Erwachsene), Bronchiolitis, Krupp
Probenmaterial: Nasopharyngealabstrich, 1 ml respiratorisches Sekret
Hinweise: gleichzeitiger Nachweis des humanen Parainfluenza- und des Respiratory Syncytial-Virus
möglich. Keine Kassenleistung!
MRSA-Direktnachweis (Methilicin-resistenter Staphylococcus aureus)
Methode: PCR
Indikation: Ermittlung des Besiedlungsstatus bei Risikopatienten
Probenmaterial: kombinierter Nasen-Rachenabstrich, Wundabstrich
Hinweise: Abstrichtupfer ohne Transportmedium für PCR-Nachweis! Nachfolgend zusätzlich Abstrichtupfer
mit Transportmedium verwenden. (ggf. Resistenztestung und Typisierung bei positivem
Befund!)
Mycobakterium tuberculosis-Komplex (M. tuberculosis, M. bovis, M.
africanum, M. microti)
Methode: PCR
Indikation: Verdacht auf Tuberkulose
Probenmaterial: je nach Indikation: Sputum, BAL, Biopsie, Urin, Liquor
Hinweise: Direktnachweis aus den dekontaminierten Materialien
Mycobakterien (atypische)
Methode: PCR mit anschließender Dot-Blot Hybridisierung
Indikation: Verdacht auf Tuberkulose
Probenmaterial: –
Hinweise: Die Differenzierung erfolgt mittels PCR und anschließender reverser Dot Blot-
Hybridisierung aus einer Flüssigkultur
Mycoplasma pneumoniae
Methode: PCR
Indikation: Verdacht auf M. pneumoniae-Infektion bei atypischer Pneumonie, Bronchitis, Meningoenzephalitis
oder Otitis media
Probenmaterial: Sputum, BAL, Trachealsekret
28 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Hinweise: –
Neisseria gonorrhoe
3 Molekularbiologie
Methode: PCR
Indikation: Verdacht auf Gonorrhoe
Probenmaterial: 10–20 ml Morgenurin!! (Anfangsstrahl); Abstrich (Spezialabstrichbesteck auf
Anforderung!)
Hinweise: Gleichzeitiger Nachweis von Chlamydia trachomatis aus derselben Probe möglich.
Noroviren
Methode: RT-PCR
Indikation: V. a. Gastroenteritis insbesondere bei Säuglingen, Kleinkindern und älteren Menschen.
Probenmaterial: 2 g Stuhl
Hinweise: Gleichzeitiger Nachweis von Norovirus Genotyp I und II
Parainfluenza (Typ 1-3; 4a, 4b)
Methode: RT-PCR
Indikation: Kindliche Atemwegsinfektionen, atypische Pneumonien (Säuglinge, auch Kinder und
Erwachsene), Bronchiolitis, Krupp
Probenmaterial: Nasopharyngealabstrich, 1 ml respiratorisches Sekret
Hinweise: gleichzeitiger Nachweis des humanen Metapneumovirus- und des Respiratory Syncytial-
Virus möglich. Keine Kassenleistung!
Parodontitis Erreger-Nachweis
Methode: RT-PCR
Indikation: Kindliche Atemwegsinfektionen, atypische Pneumonien (Säuglinge, auch Kinder und
Erwachsene), Bronchiolitis, Krupp
Probenmaterial: Nasopharyngealabstrich, 1 ml respiratorisches Sekret
Hinweise: gleichzeitiger Nachweis des humanen Metapneumovirus- und des Respiratory Syncytial-
Virus möglich. Keine Kassenleistung!
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 29

3 Molekularbiologie
Parvovirus B19(W)
Methode: PCR
Indikation: Verdacht auf eine akute Infektion mit Parvovirus B19 (vor der Serokonversion) bzw.
Nachweis der Parvovirus B19-Trägerschaft bei unklarer hämolytischer Anämie, Arthritis, Gravidität
(erhöhtes Risiko für intrauterinen Fruchttod bzw. Hydrops fetalis)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut, 1 ml Liquor, Fruchtwasser
Hinweise: Bei positiven Proben ist eine quantitative Bestimmung der Virusmenge möglich (bitte
Angabe auf dem Anforderungssschein). Die Durchseuchung der Bevölkerung im Erwachsenenalter
ist hoch. Der Nachweis von Parvovirus B19-DNA ist daher ein Hinweis auf eine akute Infektion oder
eine Parvovirus B19-Trägerschaft
Pneumocystis jirivecii
Methode: PCR
Indikation: Verdacht auf Infektion mit P. jirovecii (insbesondere bei interstitieller Pneumonie bei
immunsupprimierten Patienten (auch bereits bei der Entwicklung von trockenem Husten, Fieber oder
Dyspnoe ohne Korrelat im Röntgenbild)
Probenmaterial: Sputum, BAL, Trachealsekret
Hinweise: keine Kassenleistung!
Respiratorisches Syncytial-Virus (Typ A und B)
Methode: RT-PCR
Indikation: Kindliche Atemwegsinfektionen, atypische Pneumonien (Säuglinge, auch Kinder und
Erwachsene), Bronchiolitis, Krupp
Probenmaterial: Nasopharyngealabstrich, 1 ml respiratorisches Sekret
Hinweise: gleichzeitiger Nachweis des humanen Metapneumo- und des humanen Parainfluenza-
Virus möglich. Keine Kassenleistung!
Röteln-Virus(W)
Methode: RT-PCR
Indikation: Verdacht auf Rötelnvirus-Infektion, insbesondere in der Schwangerschaft (pränatale
Diagnostik) und bei Verdacht auf konnatale Infektion
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut, 1 ml Liquor, 5 ml Urin, Fruchtwasser, Nasopharyngealsekret,
Bronchialsekret
Hinweise: Anonyme Meldepflicht einer Rötelnembryopathie; sinnvoll ist eine zusätzliche Röteln-
Virus Serologie; keine Kassenleistung!
30 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Toxoplasma gondii(W)
3 Molekularbiologie
Methode: PCR
Indikation: Verdacht Verdacht auf Primärinfektion mit Toxoplasma gondii und auffälliger Ultraschalluntersuchung
(Hydrozephalus, intrazerebrale Verkalkungen); Verdacht auf konnatale Toxoplasmose;
Verdacht auf ZNS-Toxoplasmose bei Immunsuppression
Probenmaterial: je nach Indikation: 1 ml Liquor, 3 ml EDTA-Blut, Bronchialsekret, Fruchtwasser
Hinweise: Für die Toxoplasmose-Embryopathie besteht nach IfSG eine Meldepflicht. Kassenleistung
nur bei Nachweis aus Liquor!
Tropheryma whippelii(W)
Methode: PCR
Indikation: Verdacht auf Morbus Whipple bei Diarrhoe, Steatorrhoe, Malabsorptions-Syndrom,
Abdominalschmerzen, Gewichtsverlust, Enteropathische (seronegative) Arthritis, Enteropathische
(seronegative) Sakroiliitis, Fieber, Polyserositis, mesenteriale, retroperitoneale Lymphknotenvergrößerungen,
ggf. Manifestation kardial (z.B. Endokarditis), ggf. Manifestation im ZNS (z.B. Störung
der Oculomotorik)
Probenmaterial: je nach Indikation: 3 ml EDTA-Blut, 2 g Stuhl, Dünndarmbiopsie (tiefgefroren),
Knochenmarkaspirat, 1 ml Liquor, Synovia
Hinweise: Beim Morbus Whipple handelt es sich um eine bakterielle Infektion mit dem nur sehr
schwer anzüchtbaren Bakterium Tropheryma whippelii. Es werden familiäre Häufungen beoabachtet.
Ca. 26 % der Patienten sind zudem HLA-B27 positiv. Die Infektion wird antibiotisch mit einem
liquorgängigen Antibiotikum behandelt. Die zusätzliche Gabe von Interferonen bei nicht eliminierbarem
Erreger wird im Rahmen von Studien evaluiert.
Kassenleistung nur bei Nachweis aus Liquor!
Varizella Zoster-Virus (VZV)
Methode: PCR
Indikation: V. a. Primärinfektion Rezidiv insbesondere bei Immunsuppression: Pneumonie, Meningitis,
Enzephalitis, Keratokonjunktivitis
Probenmaterial: je nach Indikation: 1 ml Liquor, 5 ml EDTA-Blut, Kammerwasser, Bläscheninhalt
Hinweise: Abstrich ohne Transportmedium; bitte im Versand anfordern. Kassenleistung nur bei
Nachweis aus Liquor!
Verotoxin I und II (siehe EHEC)
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 31

3 Molekularbiologie
3.3 Humangenetik
alpha1-Antitrypsin-Genotypisierung(U)
Methode: PCR und Sequenzierung
Indikation: Ikterus prolongatus bei Neugeborenen, Differentialdiagnose bei Hepatitis und Leberfunktionsstörungen
unklarer Genese bei Säuglingen und Kleinkindern, Differentialdiagnose bei
Lungenemphysem oder Asthma bei Erwachsenen, Erwachsene mit auffälligen Leberwerten, Hepatitis
oder Leberzirrhose unklarer Genese, Patienten mit klinisch nachgewiesenen a1?Antitrypsin-Mangel
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Kennziffer 32010 (genetisch bedingte Erkrankungen)
Apolipoprotein B 100-Genotypisierung(U)
Methode: PCR mit anschließender Schmelzkurvenanalyse
Indikation: Hypercholesterinämie, Familien-Untersuchung bei bekanntem Apo-B-100-Defekt,
Atherosklerose, Koronare Herzerkrankung
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Die Apo B 100-Genotypisierung sollte immer zusammen mit der LDL-Rezeptor-
Genotypisierung angefordert werden, da der Phänotyp der familiären Hypercholesterinämie auch
durch Mutationen im LDL Rezeptor-Gen hervorgerufen werden kann. Kennziffer 32010 (genetisch
bedingte Erkrankungen)
Apolipoprotein-E-Genotypisierung(U)
Methode: PCR
Indikation: Hereditäre Fettstoffwechselstörungen, präsenile Altersdemenz im ca. 6. Lebensjahrzehnt
ohne Hinweise auf Familiarität
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Kennziffer 32010 (genetisch bedingte Erkrankungen)
BCR/ABL-Translokation (Philadelphia Chromosom)(U)
Methode: PCR
Indikation: Bei chronisch myeloischer Leukämie (CML) als früh diagnostizierbarer Parameter
geeignet. Quantitative Bestimmung zur Verlaufsbeobachtung oder Remissionskontrolle unter Therapie
(z.B. mit Tyrosinkinasehemmer GLIVEC). Prognostischer Aussagewert auch unter ALL.
Probenmaterial: 10 ml EDTA-Blut, 3 ml Knochenmark-EDTA-Blut (Rücksprache mir dem Labor
bzgl. Probentransport!)
Hinweise: Die Translokation ist nicht erblich; es handelt sich um eine somatische Mutation. Nachweis
der BCR/ABL Translokation beweisend für eine Leukämie. Bei CML über 95% BCR/ABL positiv
mit guter Prognose. Bei V.a. CML zusätzliche Karyotypisierung zur Detektion weiterer Aberrationen
(insbesondere bei V.a. Rezidiv!) zwingend indiziert. Negativer Befund muß bei fortbestehendem
klinischen Verdacht (Erstdiagnose u. Remission) kontrolliert werden. Bei Erstdiagnose bzw. V.a.
32 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Rezidiv sollte parallel eine Karyotypisierung an KM-Heparin-Blut erfolgen!
Cystische Fibrose (Mukoviszidose)(W)
3 Molekularbiologie
Methode: PCR und Sequenzierung
Indikation: Verdacht auf Cystische Fibrose, insbesondere bei unklarer Lungen- oder Pankreasfibrose,
Samenleiterfehlbildung, auffälliger Schweißtest; männliche Infertilität, Azoospermie
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Stufendiagnostik; telefonische Rücksprache erbeten!Häufigkeit der Erkrankung: ca.
1:1600, Heterozygotenhäufigkeit: ca. 1:20. Die aufgrund der veränderten Osmose (gestörte Funkton
der Chloridionenkanälchen) erhöhte exokrine Viskosität führt zur Fibrosierung der betroffenen
Organe. Hohes Risiko für Lungeninfekt und Pankreatitis. Ca. 1/3 der Betroffenen mit erhöhtem
Mortalitätsrisiko, teils invasive Therapie notwendig (Transplantation). Minimale Variante der
Erkrankung mit schwerer Fertilitätsstörung aufgrund obstruktiver Hypospermie (Kryptozoospermie).
Ausnahmekennziffer 32017
Dihydropyrimidin-Dehydrogenase-Mutation(W)
(DPD Exon 14-Skipping-Mutation)
Methode: PCR mit anschließender Schmelzkurvenanalyse
Indikation: Screening von Patienten vor Gabe von 5-FU
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Anlageträger zeigen einen herabgesetzten metabolischen Abbau 5-FU haltiger Chemotherapeutika.
Ursache ist eine verminderte Dihydropyrimidindehydrogenase-Aktivität aufgrund einer
Splicemutation (Exon 14 Skipping) im DPYD-Gen (Häufigkeit: ca. 1:100). Es besteht ein hohes
Risiko für eine lebensgefährliche Toxizität 5-FU haltiger Medikamente für Anlageträger,
die ansonsten diesbezüglich klinisch unauffällig sind. Bei solchen Mutationsträgern sollten entweder
Alternativen zur 5´-Fluorouracil-Behandlung erwogen, oder zumindest vor Therapie eine
pharmakokinetische Untersuchung durchgeführt werden. Kennziffer 32019 (Erkrankungen unter
systemischer Zytostatika-Therapie)
Faktor V-Leiden
Methode: PCR mit anschließender Schmelzkurvenanalyse
Indikation: Bei APC-Resistenz Abklärung einer homo- oder heterozygoten Genmutation. Prognose
eines Thromboserisikos (z. B. bei Verschrei bung oraler Kontrazeptiva)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: 15–40% der heterozygoten Merkmalsträger der Faktor V-Mutation sind zusätzlich heterozygot
für die Faktor II-Mutation. Durch Kombination der Mutationen steigt das Thromboserisiko
nochmals deutlich an. Kennziffer 32011 (Diagnostik der hereditären Thrombophilie)
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 33

3 Molekularbiologie
Faktor II (Prothrombin-Mutation: G20210A)
Methode: PCR mit anschließender Schmelzkurvenanalyse
Indikation: Abklärung einer homo- oder heterozygoten Genmutation. Prognose eines Thromboserisikos
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: s. Faktor V-Leiden. Kennziffer 32011. (Diagnostik der hereditären Thrombophilie)
Familiäres Mittelmeerfieber(U)
Methode: PCR und Sequenzierung aller 10 Exons des Marenostrin-Gens
Indikation: Verdacht auf FMF bei rezidivierenden Fieberschüben ohne Baktierennachweis, peritonitischen
Bauchbescherden, akuter Serositis, meist einseitige Pleuritis, Arthralgien, Sacroileitis,
bei Frauen Menstruationsabhängigkeit, selten auch Myositis, Perikarditis, Vaskulitis mit spontaner
Rückbildung nach wenigen Tagen bei Personen mit Herkunft aus dem Mittelmeerraum (vorwiegend
in Familien armenischen, jüdischen oder arabischen Ursprungs)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: FMF wird durch zumeist autosomal rezessiv vererbte Mutationen im Pyrin-Gen auf dem
kurzen Arm von Chromosom 16 verursacht. In Ländern des Mittelmeerraums wird eine Häufigkeit
von 15 % für die Heterozygotenfrequenz angegeben. Die Häufigkeit der Erkrankung beträgt ca.
1:3000. In ca. 70 % der Fälle kann eine Erstmanifestation vor dem 10. Lebensjahr beoabachtet werden.
Jungen sind etwas häufiger betroffen als Mädchen. Eine unbehandelte Erkrankung führt in ca.
4 von 10 Fällen zur sekundären Amyloidose. In der Differentialdiagnostik sind zu berücksichtigen:
chronische Darmerkrankungen (M. Crohn, Colitis ulcerosa), akute abdominelle Erkrankungen
(Galle, Pankreas), akute intermittierende Porphyrie, akute Appendizitis, Rheumatisches Fieber,
Autoimmunerkrankungen (z.B. Rheumatoide Arthritis); Kennziffer 32010
Fruktose-Intoleranz(U) (hereditär)
Methode: PCR und Sequenzierung
Indikation: Hypoglykämie, Darmbeschwerden, Übelkeit Erbrechen, Unverträglichkeit von
fruchtzuckerhaltigen Produkten, Verdacht auf Malabsorption, Kinder mit Abdominalbeschwerden,
familiäre Belastung
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Die Fruktose-Intoleranz ist bedingt durch drei Mutationen im Aldolase-B-Gen: A149P,
A174D und N334K. Diese führen zu einem Verlust der Enzymfunktion in Niere und Leber. Die
Mutationen sind für ca. 95% aller klinischen Fälle in Europa verantwortlich. Nach Aufnahme von
fruktosehaltigen Nahrungsmitteln tritt die entsprechende Symptomatik erstmals bei Säuglingen beim
Übergang auf Breikost oder auf eine saccharosehaltige Folgenahrung auf. Während Erwachsene ohne
Fruktose-Intoleranz 30 g oder mehr Haushaltszucker gut vertragen können, führt diese Menge bei
Fruktose-Intoleranz zu den Symptomen wie z. B. Übelkeit, Erbrechen, Zittern etc. Die Schwelle der
Verträglichkeit ist individuell unterschiedlich. Kennziffer 32010 (genetisch bedingte Erkrankungen)
34 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Hereditäre Hämochromatose
3 Molekularbiologie
(Hfe-Mutation C282Y / H63D)
Methode: PCR mit anschließender Schmelzkurvenanalyse
Indikation: Diagnostik bei Patienten mit Hämochromatose zur Unterscheidung zwischen primärer
und sekundärer Hämochromatose. Patienten mit Frühsymptomen einer Hämochromatose. Blutsverwandten
von Hämochromatose-Patienten. Patienten mit chronischer Virushepatitis oder alkoholtoxischer
Leberschädigung.
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Nach derzeitigem Kenntnisstand kann lediglich die homozygote C282Y-Mutation als
genetische Disposition gewertet werden. Zwar finden sich unter Hämochromatosepatienten auch
häufig ” gemischt bzw compound Heterozygote“ (heterozygote C282Y- und H63D-Mutation).
Zuverlässige Daten zur klinischen Relevanz dieser genetischen Konstellation liegen allerdings nicht
vor. Patienten mit einer heterozygoten C282Y-Mutation müssen zudem als potentielle Überträger der
Hämochromatose angesehen werden. Kennziffer 32010 (genetisch bedingte Erkrankungen)
HLA B27-Genotypisierung
Methode: PCR
Indikation: akute vordere Uveitis, Morbus Bechterew, Morbus Reiter, postinfektiöse Arthritis
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Kreuzreaktionen von HLA-B27 mit HLA-B7 führen häufig zu falsch positiven HLA-B27
Ergebnissen in der Durchflusszytometrie (Johnson et. al 1985, Human Immunol. 14:134-135). Eine
gleichzeitige Bestimmung mittels Durchflusszytometrie und PCR ist nicht möglich! Kennziffer
32010 (genetisch bedingte Erkrankung)
IL28B (rs12979860–Polymorphismus)
Methode: PCR mit anschließender Schmelzkurvenanalyse
Indikation: Wirksamkeit einer HCV-Therapie mit Peg-Interferon/Ribavirin insbesondere bei HCV –
Genotyp 1
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Neben dem HCV-Genotyp spielen auch genetische Varianten des Wirts (sog. "Host
Factors") eine Rolle für die Wirksamkeit der Therapie. Demnach ist der C/T-Polymorphismus
rs12979860 im menschlichen Genom mit der SVR (sog. "Sustained Virological Response")
assoziiert. Patienten mit dem C/C-Genotyp (zwei C-Allele) sprechen besser auf eine
IFN/RBV-Therapie an als Patienten, die das T-Allel tragen. Zudem zeigen C/C-Allel-Träger eine
höhere Rate an Spontanremission der Erkankung. Diese Zusammenhänge wurden vor allem für
Patienten beobachtet, die mit dem HCV-Genotyp 1 infiziert waren.. Ausnahmekennziffer 32005
(Therapie Hepatitis B+C)
Laktose-Intoleranz (primäre) (T/C (-13910) Polymorphismus)
Methode: PCR mit anschließender Schmelzkurvenanalyse
Indikation: V. a. Laktose-Intoleranz, rezidivierende Bauchschmerzen, Durchfälle, Übelkeit, Verdau-
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 35

3 Molekularbiologie
ungstörungen, Kopfschmerzen etc. nach Verzehr von laktosehaltigen Produkten.
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut, Mundschleimhaut-Abstrich (Trockenabstrich ohne Transportmedium!)
Abstriche bitte im Versand anfordern
Hinweise: Differentialdiagnostisch sollte eine Milcheiweiß-Allergie ausgeschlossen sein. Eine
Laktose-Intoleranz kann auch in Folge anderer entzündlicher Darmerkrankungen, wie z. B. Morbus
Crohn, Zöliakie, Colitis ulcerosa auftreten (sekundäre Laktose-Intoleranz). Kennziffer 32010
(genetisch bedingte Erkrankungen)
LDL-Rezeptor-Mutationsnachweis(U)
Methode: PCR und Sequenzierung
Indikation: familiäre Hypercholesterinämie unklarer Genese
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Die LDL-Rezeptor-Genotypisierung sollte immer zusammen mit der Apo B 100-
Genotypisierung angefordert werden, da der Phänotyp der familiären Hypercholesterinämie auch
durch Mutationen im Apo B 100-Gen hervorgerufen werden kann. Kennziffer 32010 (genetisch
bedingte Erkrankungen)
Methylen-Tetrahydrofolat-Reduktase- (MTHFR-) Genotypisierung (C677T und
A1298C)
Methode: PCR und anschließende reverse Dot Blot-Hybridisierung
Indikation: Risikoabklärung für arterielle und venöse Thrombosen, Hyperhomocysteinämie
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Die CAT Transition an Position 677 des MTHFR-Gens resultiert in einer thermolabilen
Variante des Enzyms mit bis zu 70% verminderter Aktivität. Bei Patienten, die zusätzlich die Faktor
V-Leiden- oder die Faktor II-(Prothrombin–) Mutation aufweisen, ist das Risiko für venöse Thrombosen
signifikant erhöht. Die A1298C-Transition geht ebenfalls mit einer reduzierten Enzymaktivität
einher. Die klinische Relevanz zeigt sich vor allem bei Vorliegen einer ” Compound“ -Heterozygotie
(A677C / A1298C) bezüglich vaskulärer Erkrankungen, Spontanaborten und Neuralrohrdefekten.
Kennziffer 32010 (genetisch bedingte Erkrankungen)
Pankreatitis (hereditär)(U)
Methode: PCR und Sequenzierung
Indikation: Verdacht auf hereditärer Pankreatitis im Rahmen der Familienberatung bei gehäuftem
Vorkommen in Familien bzw. Auftreten einer chronischen Pankreatitis im Kindesalter.
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Die Erkrankung wird autosomal dominant mit reduzierter Penetranz vererbt. Die hereditärer
Pankreatitis ist nach der Cystischen Fibrose die zweithäufigste Ursache einer kindlichen
chronischen Pankreatitis. Ursächlich ist in ca. 75 % der Fälle eine Mutation im Trypsinogen-Gen
PRSS1 auf Chromosom 7 (7q35). Über eine Veränderung der Bindungsstelle kann Trypsinogen nicht
mehr inaktiviert werden mit nachfolgend vermehrter Trypsin-Produktion und entsprechender Arrosion
36 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

3 Molekularbiologie
des Pankreasgewebes. Die Beschwerden beginnen zumeist vor dem 20. Lebensjahr mit rezidivierenden
Koliken des Abdomens. Es können Calcium- oder Proteinsteine in den Pankreasgängen detektiert
werden. Es besteht neben der Ausbildung einer chronischen Pankreasinsuffizienz eine Neigung zu
Diabetes mellitus und Pankreaskarzinom.
Protein C-Genotypisierung(W)
Methode: PCR
Indikation: Diagnosesicherung eines hereditären Protein C-Mangels
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Ausnahmekennziffer 32011 (Thrombophilie)
Protein S-Genotypisierung(W)
Methode: PCR
Indikation: Diagnosesicherung eines hereditären Protein S-Mangels
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Ausnahmekennziffer 32011 (Thrombophilie)
Thiopurin-S-Methyltransferase (Genotypisierung)(U)
Methode: PCR
Indikation: Geplante oder durchgeführte Therapie mit Thiopurinen (Azathioprin, 6-Mercaptopurin,
6-Thioguanin).
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Thiopurine werden als Immunsuppressiva oder auch als Zytostatika eingesetzt. Die
hepatische Metabolisierung erfolgt durch das Enzym Thiopurin-S-Methyltransferase (TPMT), für
deren Aktivität einer große interindividuelle Variabilität besteht. Die Ursache dieser Unterschiede
besteht in einem genetischen Polymorphismus für das TMPT-Gen. Dabei ist ca. jeder 200. bis
300. Patient vollständig TMPT-defizient (deutlich verminderte Enzymaktivität). 10 % der Patienten
zeigen eine deutlich herabgesetzte Enzymaktivität. Ca. 90 % der Patienten haben eine normale
Metabolisierungsrate. Patienten mit verminderter TPMT-Aktivität zeigen regelmäßig nach Gabe
von Thiopurinen schwerwiegende toxische Nebenwirkungen (erhöhte Knochenmark-Toxizität).
Kennziffer 32019 (Erkrankungen unter systemischer Zytostatika-Therapie)
Vitamin D-Rezeptor-und Kollagen 1-alpha-1-Polymorphismus(U)
(genetisch bedingtes Osteoporoserisiko)
Methode: PCR mit anschließender Schmelzkurvenanalyse
Indikation: Untersuchung von Kindern bei positiver Familienanamnese zur frühzeitigen Risikoabschätzung
und rechtzeitigen Therapieeinleitung. Rechtzeitige Identifizierung des erhöhten Osteoporoserisikos
insesondere bei Frauen um eine frühzeitige Prävention einzuleiten. Frauen mit bekannter
Thrombophilie, zur frühzeitigen Abwägung einer Hormontherapie.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 37

3 Molekularbiologie
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Hinweise: Vitamin D-Rezeptor (VDR)-Polymorphismus: homozygot bb: unauffällig; heterozygot bB:
erhöhtes Risiko; homozygot BB: stark erhöhtes Risiko
Kollagen 1-alpha-1-(Col 1-alpha-1) Polymorphismus: homozygot SS: unauffällig; heterozygot sS:
erhöhtes Risiko, homozygot ss: stark erhöhtes Risiko
Durch die Kombination der jeweiligen Allele lässt sich das individuelle Osteoporoserisiko bestimmen.
Kennziffer 32010 (genetisch bedingte Erkrankungen)
38 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

4 Funktionsteste
Im Rahmen der Durchführung von Funktionstesten müssen detailliert die Testbedingungen (z.B.
Zeitpunkt der Blutentnahmen) auf dem Überweisungsschein vermerkt und die Probenröhrchen
entsprechend gekennzeichnet werden.
Nachfolgend Vorschläge zur Durchführung einiger gebräuchlicher Funktionsteste. Die Teste sollten
unter Beachtung der jeweiligen Kontraindikationen durchgeführt werden. Bezüglich Indikation
und Dosierung, v.a. bei Kindern, verweisen wir auch auf die entsprechende Fachliteratur.
39

4 Funktionsteste
4.1 ACTH-Test
ACTH-Test bei V.a. NNR-Insuffizienz
Prinzip
Exogenes ACTH stimuliert die Synthese von Cortisol und anderen Nebennierensteroiden.
Vorbereitung
Keine Einnahme von Glukokortikosteroiden am Testtag
Testdurchführung frühestens 4 bis 6 Wochen nach Hypophysen-OP, zerebralen Traumata etc.
Testbeginn 8.00 – 10.00 Uhr, Patient sollte nüchtern sein
Material
Cortisol: Serum
ACTH: EDTA-Plasma, gefroren
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutababnahme - 5 Min. Cortisol (ggf. ACTH)
Injektion 0 Min. Erwachsene:
250 µg ACTH i.v.
Kinder:
s. Fachliteratur
Blutabnahme 30 Min. Cortisol
60 Min. Cortisol
Interpretation
Cortisol nach Stimulation:
< 18 µg/dl: insuffiziente Nebennierenfunktion
18 – 25 µg/dl: Graubereich (ggf. Insulinhypoglykämietest)
> 25 µg/dl: suffiziente Nebennierenfunktion
Cortisol basal, morgens:
< 3 µg/dl: Nebenniereninsuffizienz wahrscheinlich
> 11 µg/dl: Nebenniereninsuffizienz unwahrscheinlich
> 18 µg/dl: Nebenniereninsuffizienz ausgeschlossen
ACTH deutlich erhöht: primäre NNR-Insuffizienz
ACTH niedrig normal bis nicht messbar: sekundäre NNR-Insuffizienz
40 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

ACTH-Test bei V.a. late-onset adrenogenitales Syndrom
(21-Hydroxylasemangel)
4 Funktionsteste
Prinzip
Exogenes ACTH stimuliert die Synthese von Cortisol und anderen Nebennierensteroiden einschließlich
17-OH-Progesteron.
Indikation
V.a. late-onset adrenogenitales Syndrom
Differentialdiagnostische Abklärung bei Frauen mit Oligo-/Amenorrhoe, Hirsutismus, Virilisierung
Vorbereitung
Absetzen von Hormonpräparaten für mindestens 4 Wochen
Testdurchführung nüchtern zwischen 3. und 5. Zyklustag
Testbeginn 7.00 – 10.00Uhr
Material
17-OH-Progesteron: Serum
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutabnahme - 5 Min. 17-OH-Progesteron
Injektion 0 Min. Erwachsene:
250 µg ACTH i.v.
Kinder:
s. Fachliteratur
Blutabnahme 60 Min. 17-OH-Progesteron
Interpretation
Normales Testergebnis, wenn die Differenz zwischen basalem und stimuliertem 17-OH-Progesteron
< 2,5 ng/ml beträgt.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 41

4 Funktionsteste
4.2 Aldosteron-Suppressionstest
Prinzip
Unter Natriumbelastung kommt es zu einer Verminderung der Aldosteronkonzentration bei gesunden
Patienten.
Indikation
V.a. primären Hyperaldosteronismus
Vorbereitung
Aldosteronantagonisten sind 4 Wochen, Schleifendiuretika 1 Woche vor dem Test abzusetzen
Ein Absetzen der übrigen Antihypertensiva sollte erwogen werden
Der Patient sollte ab 24.00 Uhr vor dem Test und während des Tests Bettruhe einhalten
Eine Überwachung des Blutdruckes ist während des Tests notwendig
Testbeginn 7.00 – 9.00 Uhr
Material
Renin: EDTA-Plasma
Aldosteron: Serum (schneller Transport ins Labor)
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutabnahme - 1 Std. Renin, Aldosteron i.v.-Zugang
Infusion 0 Std. Erwachsene:
2 Liter 0,9% NaCl
über 4 Stunden i.v.
Blutabnahme nach über 4 Stunden Renin, Aldosteron
Interpretation
Unauffällige Aldosteronproduktion
Aldosteron < 50% des Ausgangswertes
Primärer Hyperaldosteronismus
Aldosteron >= 50 % des Ausgangswertes
Anmerkungen
Sollte die Reninkonzentration vor Testbeginn bereits supprimiert sein oder nach 4 Stunden nicht
supprimiert sein, ist mit einem falsch negativen Ergebnis zu rechnen.
Der Test weist eine gute Spezifität, dafür eine unzureichende Sensitivität auf.
Insbesondere Patienten mit bilateraler Nebennierenhyperplasie weisen regelmäßig eine unauffällige
Aldosteronsuppresion auf.
42 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

4.3 Arginin-Stimulationstest
4 Funktionsteste
Prinzip
Arginin bewirkt eine Hemmung der Somatostatin-Sekretion, die physiologischerweise die hGH-
(=STH)-Sekretion hemmt.
Indikation
Überprüfung der somatotropen Achse
Unterscheidung zwischen hypothalamischem und hypophysärem hGH-Mangel
Vorbereitung
Testdurchführung am liegenden, nüchternen Patienten, Fasten und Ruhephasen beachten
Material
STH: Serum
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
- 8 Std. fasten (über Nacht)
- 1 Std. relative Ruhephase
Blutabnahme - 15 Min. STH absolute Ruhephase
Blutabnahme - 1 Min. STH
Injektion 0 Min. Erwachsene:
0,5 g/kg KG Arginin
in 0,9% NaCl über
30 Min. i.v.
(max. 30 g)
Blutabnahme 15 Min. STH
30 Min. STH
45 Min. STH
60 Min. STH
90 Min. STH
120 Min. STH
Interpretation
normal: STH-Anstieg > 10 ng/ml
V.a. hypophysär bedingten STH-Mangel: kein / subnormaler STH-Anstieg (< 10 ng/ml)
V.a. hypothalmisch bedingten STH-Mangel: überschießender STH-Anstieg (> 40 ng/ml)
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 43

4 Funktionsteste
4.4 Calcium-Stimulationstest
Prinzip
Stimulation der Calcitoninsekretion der parafollikulären C-Zellen der Schilddrüse durch Calcium.
Indikation
Medulläres C-Zell-Karzinom (Diagnose und postoperative Verlaufskontrolle)
C-Zell-Hyperplasie
Familien-Screening bei familiärem, medullärem Schilddrüsenkarzinom (FMTC) und MEN-II
Überwachung RET-positiver Genträger
Vorbereitung
Patient sollte nüchtern sein
Testdurchführung am liegenden Patienten
Probe muss gekühlt abgenommen werden
Material
Calcitonin: Serum, gekühlt
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutabnahme - 5 Min. Calcitonin
Injektion 0 Min. Erwachsene:
2,5 mg/kg KG
Calciumgluconat
über 30 Sek. i.v.
Blutabnahme 2 Min. Calcitonin
5 Min. Calcitonin
10 Min. Calcitonin
Interpretation
V.a. C-Zell-Hyperplasie bei Calcitoninanstieg nach Calciumgluconat auf über 100 pg/ml. Der Anstieg
ist geschlechtsspezifisch unterschiedlich: Frauen zeigen einen geringeren Anstieg als Männer.
44 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

4.5 Captopril-Suppressionstest
4 Funktionsteste
Prinzip
Durch die Einnahme von Captopril (ACE-Hemmer) wird die Umwandlung von Angiotensin I in Angiotensin
II und damit die Aldosteronfreisetzung unterdrückt. Die Reninproduktion wird gesteigert,
der Aldosteron-Renin-Quotient sinkt. Bei Patienten mit einem Primären Hyperaldosteronismus sinkt
der Quotient nicht.
Indikation
V. a. Primären Hyperaldosteronismus
Vorbereitung
Aldosteronantagonisten sind 4 Wochen, ACE-Hemmer und Schleifendiuretika 1 Woche vor dem Test
abzusetzen
Ein Absetzen der übrigen Antihypertensiva sollte erwogen werden
Keine kochsalzarme Diät
Der Patient sollte ab 24.00 Uhr vor dem Test Bettruhe einhalten
Eine stündliche Messung des Blutdrucks während des Tests ist empfehlenswert
Testbeginn 7.00 – 9.00 Uhr
Material
Renin: EDTA-Plasma
Aldosteron: Serum (schneller Transport ins Labor)
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutabnahme - 5 Min. Renin, Aldosteron liegend
Einnahme 0 Min. Erwachsene:
25 mg Captopril p.o.
danach sitzende oder
stehende Haltung
Blutabnahme 120 Min. Renin, Aldosteron sitzend
Interpretation
Primärer Hyperaldosteronismus
Aldosteron nach Captopril > 70 % des Basalwertes
Absolutwerte nach Captopril > 150 ng/l
Aldosteron-Renin-Quotient > 16
Normalbefund
Aldosteron

4 Funktionsteste
4.6 Clonidin-Test
Prinzip
Clonidin stimuliert zentrale alpha2-Rezeptoren und bewirkt eine Hemmung der Noradrenalin- und
Adrenalinsekretion (Katecholaminsekretion eines Phäochromozytoms wird durch Clonidin nicht
beeinflusst).
Indikation
Bestätigungstest bei V.a. Phäochromozytom, wenn Serum-/Urinkatecholamine oder Metanephrine
erhöht sind
Vorbereitung
1 Woche vor dem Test alle zentral wirkenden Antihypertensiva (z.B. Clonidin, alpha-Methyldopa)
absetzen
Beta-Blocker absetzen
Testdurchführung am liegenden Patienten
Fasten und Ruhephasen beachten
Venöser Zugang
Monitorüberwachung empfehlenswert, alternativ RR- und Frequenzprotokoll
Material
Adrenalin, Noradrenalin: EDTA-Plasma
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
- 12 Std. Bettruhe, fasten
- 30 Min. i.v.-Zugang
Blutabnahme - 5 Min. Adrenalin,
Noradrenalin
Einnahme 0 Min. Erwachsene:
300 µg Clonidin p.o.
Blutabnahme 3 Std. Adreanlin,
Noradrenalin
Interpretation
Ein Abfall der (erhöhten basalen) Katecholaminkonzentration in den Referenzbereich bzw. um mindestens
50 % spricht gegen das Vorliegen eines Phäochromozytoms.
Ein fehlender Abfall oder ein paradoxer Anstieg ist pathologisch.
46 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

4.7 CRH-Test
4 Funktionsteste
Prinzip
Die bolusartige CRH-Injektion stimuliert die hypophysäre ACTH-Freisetzung. ACTH bewirkt die
Freisetzung von Kortisol aus der Nebennierenrinde.
Indikation
V.a. hypophysär bedingte Nebenniereninsuffizienz
DD zwischen sekundärer und tertiärer NNR-Insuffizienz
DD zwischen adrenalem, hypophysärem und ektopem Cushing-Syndrom
Vorbereitung
Patient sollte nüchtern sein, Ruhephasen beachten
Pausieren eines Hydrokortisonpräparates am Testtag
Test unter Einnahme von Steroidpräparaten (z.B. Prednisolon) nicht sinnvoll
Material
Cortisol: Serum
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
- 2 Std. körperliche Ruhe
Blutabnahme - 15 Min. ACTH, Cortisol
- 1 Min. ACTH, Cortisol
Injektion 0 Min. Erwachsene:
100 µg CRH i.v.
stark adipöse Erw:
2 µg/kg KG CRH i.v.
Kinder:
1 µg/kg KG CRH i.v.
Blutabnahme 5 Min. ACTH, Cortisol
10 Min. ACTH, Cortisol
15 Min. ACTH, Cortisol
30 Min. ACTH, Cortisol
45 Min. ACTH, Cortisol
60 Min. ACTH, Cortisol
90 Min. ACTH, Cortisol
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 47

4 Funktionsteste
Interpretation
Normbereiche für Cortisol und ACTH
Cortisol ACTH
8.00 Uhr 5 – 25 µg/dl 5 – 60 ng/l
24.00 Uhr < 5 µg/dl < 10 ng/l
Anstieg im CRH-Test auf > 20 µg/dl 2- bis 4-fach
Primäre NNR-Insuffizienz:
ACTH basal erhöht, ACTH-Ausschüttung erhöht
Cortisol erniedrigt vor und nach CRH-Injektion
Sekundäre NNR-Insuffizienz (hypophysärer ACTH-Mangel):
ACTH-Anstieg vermindert, Cortisolanstieg vermindert
Tertiäre NNR-Insuffizienz (hypothalamischer CRH-Mangel):
ACTH- Ausschüttung erhöht, Cortisol-Ausschüttung subnormal
Ektopes ACTH-Syndrom / ACTH-produzierendes Makroadenom der Hypophyse:
ACTH basal erhöht, kein ACTH-Anstieg
M. Cushing bei autonomem NNR-Tumor:
ACTH basal erniedrigt, kein ACTH-Anstieg, kein Cortisol-Anstieg
48 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

4.8 Dexamethason-Hemmtest (niedrig dosiert)
4 Funktionsteste
Prinzip
Suppression der hypophysären ACTH-Sekretion durch Dexamethason (Verwendung von Dexamethason
aufgrund fehlender Kreuzreaktivität im Immunoassay mit Cortisol).
Indikation
V.a. Hyperkortisolismus (Cushing-Syndrom)
Vorbereitung
Vor Beginn des Tests sollten Barbiturate, Östrogene, Kortikosteroide, ACTH-Präparate, orale
Kontrazeptiva, Phenytoin, Spironolacton und Tetrazykline abgesetzt werden.
Material
Cortisol: Serum
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutabnahme 8.00 Uhr (Tag 1) Cortisol
Einnahme 23.00 Uhr (Tag 1) Erwachsene:
2 mg Dexamethason
p.o.
Blutabnahme 8.00 Uhr (Tag 2) Cortisol
Interpretation
Cortisol < 3 µg/dl: Cushing-Syndrom mit größter Wahrscheinlichkeit ausgeschlossen.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 49

4 Funktionsteste
4.9 Dexamethason-Hemmtest (hoch dosiert)
Prinzip
Suppression der hypophysären ACTH-Sekretion durch Dexamethason (Verwendung von Dexamethason
aufgrund fehlender Kreuzreaktivität im Immunoassay mit Cortisol). Beim zentralen
Cushing-Syndrom gelingt eine Suppression des Serumcortisols nach pharmakologischen Dosen (8
mg) von Dexamethason. Bei Nebennierentumoren oder beim ektopen Cushing-Syndrom bleibt diese
Suppression aus.
Indikation
Differenzierung zwischen adrenalem / ektopem und hypophysärem Hypercortisolismus (Cushing-S.)
Vorbereitung
Vor Beginn des Tests sollten Barbiturate, Östrogene, Kortikosteroide, ACTH-Präparate, orale
Kontrazeptiva, Phenytoin, Spironolacton und Tetrazykline abgesetzt werden.
Material
Cortisol: Serum
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutabnahme 8.00 Uhr (Tag 1) Cortisol
Einnahme 23.00 Uhr (Tag 1) Erwachsene:
8 mg Dexamethason
p.o.
Blutabnahme 8.00 Uhr (Tag 2) Cortisol
Interpretation
Suppression des Cortisols an Tag 2 um mindestens 50%:
hypophysäre / hypothalamische Genese (= zentrales Cushing-Syndrom)
Suppression des Cortisols an Tag 2 um weniger als 50%:
adrenales Cushing-Syndrom oder ektope ACTH-Produktion
50 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

4.10 Dimaval-Test
4 Funktionsteste
Prinzip
Dimaval (Dimercaptopropansulfonsäure, DMPS) bindet an Metallionen um Chelatkomplexe zu
bilden. Diese Komplexe werden dann renal ausgeschieden.
Indikation
V.a. Schwermetallbelastung (Quecksilber (Hg), Kupfer (Cu) oder andere Schwermetalle)
Material
Urin
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Urinabgabe - 5 Min. z.B. Hg, Cu Spontanurin abgeben,
Blase entleeren
Einnahme 0 Min. Erwachsene:
ca. 4 mg
DMPS / kg KG
mit 150 – 200 ml
Wasser p.o.
(100 mg/Kapsel)
Urinabgabe 2 Std. z.B. Hg, Cu Blase entleeren
Gesammelte Urinmenge bitte angeben.
Interpretation
Ein deutlicher Anstieg der Schwermetallkonzentration über den Referenzbereich ist mit einer
Intoxikation vereinbar.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 51

4 Funktionsteste
4.11 D-Xylose-Test
Prinzip
Überprüfung der Resorptionsfähigkeit des proximalen Dünndarms nach oraler D-Xylose-
Belastung. Bei Patienten mit einer verminderten Kohlenhydratresorption steigt die D-Xylose-
Konzentration im Urin bzw. Blut unzureichend an.
Indikation
V. a. verminderte Kohlenhydratresorption im proximalen Dünndarm
Vorbereitung
Der Patient sollte ab 24.00 Uhr vor dem Test eine Nahrungskarenz einhalten
Material
D-Xylose: Natriumfluorid-Blut oder 5 ml eines 5-Stunden-Sammelurins
Testdurchführung
D-Xylose-Test im Urin
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
- 5 Min. Blase entleeren
Einnahme D-Xylose 0 Min. Erwachsene:
25 g D-Xylose mit
ca. 500 ml Wasser p.o.
Kinder:
15 g D-Xylose / qm
Körperoberfläche mit
ca. 300 ml Wasser p.o
Einnahme Wasser 0 – 120 Min. Erwachsene:
ca. 500 ml trinken
Kinder:
ca. 300 ml Wasser
Sammelperiode 0 – 5 Std. Urin sammeln
Urinabgabe 5 Std. D-Xylose Blase entleeren
Eingenommene D-Xylose-Menge sowie gesammelte Urinmenge bitte angeben.
52 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

D-Xylose-Test im Blut
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
4 Funktionsteste
Blutabnahme - 5 Min. D-Xylose
Einnahme 0 Min. D-Xylose und Wasser:
s.o.
0 – 120 Min. Wasser: s.o.
Blutabnahme 60 Min. D-Xylose
120 Min. D-Xylose
Interpretation
Eine verminderte Konzentration von D-Xylose im Urin (< 4 g Xylose / 5-Stunden-Sammelurin bzw.
< 16 % der verabreichten Dosis) oder im NaF-Blut (Erwachsene < 200 mg/l) zwei Stunden nach oraler
Gabe weist auf eine unzureichende intestinale Resorption der Xylose hin.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 53

4 Funktionsteste
4.12 Eisenresorptionstest
Prinzip
Unter oraler Einnahme einer definierten Eisenmenge steigt nach intestinaler Resorption die
Eisenkonzentration im Blut. Bei Patienten mit einem Eisenmangel infolge einer verminderten
intestinalen Resorption steigt die Eisenkonzentration im Blut unzureichend an.
Indikation
V. a. Eisenmangel infolge einer verminderten intestinalen Resorption
Vorbereitung
Der Patient sollte ab 24.00 Uhr vor dem Test eine Nahrungskarenz einhalten
Material
Eisen: Serum
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutabnahme - 5 Min. Eisen
Einnahme 0 Min. Erwachsene:
200 mg Eisen
(zweiwertig) p.o.
0 – 60 Min. Nahrungskarenz
Blutabnahme 2 Std. Eisen
4 Std. Eisen
Interpretation
normal
normale Eisenkonzentration nüchtern und Anstieg um 30 – 40 % nach Belastung
Eisenmangel(anämie) bei intakter intestinaler Eisenresorption
niedrige Eisenkonzentration nüchtern mit starkem Anstieg auf > 200 µg/dl binnen 2 – 4 Stunden nach
Belastung
54 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

4.13 Fructose-Belastungstest
4 Funktionsteste
Prinzip
Unter oraler Einnahme einer definierten Fructosemenge steigt nach der Darmresorption die Fructosekonzentration
im Blut. Bei Patienten mit intestinaler Fructoseintoleranz ist der Fructose-Anstieg
im Blut unter der Norm.
Indikation
V.a. intestinale Fructoseintoleranz
Material
Fructose: Natium-Fluorid-Blut
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutabnahme -5 Min. Fructose
Einnahme 0 Min. Erwachsene:
1–1,5 g Fructose
pro kg KG mit
150 – 200 ml
Wasser p.o.
Blutabnahme 30 Min. Fructose
60 Min. Fructose
90 Min. Fructose
120 Min. Fructose
Interpretation
normal
Anstieg des Fructosespiegels nach 30 – 60 Minuten um 6-15 mg/dl
Abfall auf Normalwerte nach 120 Minuten
Intestinale Fructoseintoleranz (Malabsorption)
Anstieg des Fructosespiegels nach 30 – 60 Minuten um < 6 mg/dl
Hepatische Fructoseintoleranz (sehr selten)
Anstieg des Fructosespiegels um > 40 mg/dl
Hinweis
Der Fructosebelastungstest ist zur Diagnose der seltenen hepatischen Fructoseintoleranz (Aldolase-
B-Mangel) nicht geeignet, da massive Hypoglykämien auftreten können. In solchen Fällen empfiehlt
sich der Gentest auf Aldolase-B-Mangel (erfaßt ca. 97% aller Fälle).
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 55

4 Funktionsteste
4.14 GHRH-Test
Prinzip
Exogenes Growth Hormone Releasing Hormone (GHRH) bewirkt die Freisetzung von hGH (=STH)
aus dem Hypophysenvorderlappen.
Indikation (limitierte Bedeutung, nicht zur Diagnose des hGH-Mangels geeignet)
Überprüfung der somatotropen Achse
Unterscheidung zwischen hypothalamischem und hypophysärem GH-Mangel
Vorbereitung
Testdurchführung am liegenden, nüchternen Patienten, Fasten und Ruhephasen beachten
Material
STH: Serum
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
- 8 Std. fasten (über Nacht)
- 1 Std. i.v.-Zugang
relative Ruhephase
Blutabnahme - 15 Min. STH
- 1 Min. STH
Injektion 0 Min. Erwachsene: 1 µg/kg
KG GHRH langsam
i.v. (max. 100 µg)
Blutabnahme 15 Min. STH
30 Min. STH
45 Min. STH
60 Min. STH
90 Min. STH
120 Min. STH
Interpretation
normal
STH-Anstieg > 10 ng/ml
V.a. hypophysär bedingten STH-Mangel
kein / subnormaler STH-Anstieg (< 10 ng/ml)
V.a. hypothalmisch bedingten STH-Mangel
überschießender STH-Anstieg (> 40 ng/ml)
56 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

4.15 Glucagon-Test
4 Funktionsteste
Prinzip
Nach Gabe einer bestimmten Glucagonmenge steigt die Glucosekonzentration im Blut an. Es entsteht
somit eine Stimulation der Insulin- und C-Peptid-Sekretion. Beim Insulinom ist die Sekretion von
Insulin und C-Peptid inadäquat hoch.
Indikation
V.a. Insulinom
Vorbereitung
Testdurchführung nüchtern nach Nahrungskarenz von 10 – 14 Stunden
Absetzen von diabetogenen und antidiabetogenen Medikamenten
Der Test sollte nicht perimenstruell erfolgen
Die Ernährung der letzten 3 Tage sollte kohlenhydratreich sein
Keine körperliche Belastung während der Wartephasen
Material
Insulin, C-Peptid: Serum
Glucose: Natrium-Fluorid-Plasma
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutabnahme - 5 Min. Insulin, C-Peptid,
Glucose
vormittags
Injektion 0 Min. Erwachsene:
1 mg Glucagon
in 10 ml 0,9% NaCl
als Bolus i.v.
Blutabnahme 5 Min. Insulin, C-Peptid,
Glucose
10 Min. Insulin, C-Peptid,
Glucose
15 Min. Insulin, C-Peptid,
Glucose
30 Min. Insulin, C-Peptid,
Glucose
Interpretation
Anstieg der Insulinkonzentration > 100 µIE/ml oder der C-Peptid-Konzentration > 2,5 ng/ml spricht
mit einer geringen Sensitivität von 50-80% für einen Insulinom.
Hinweis
Aufgrund der reduzierten Aussagekraft und der geringen Sensitivität wird der Test nur selten
eingesetzt. Der Standardtest für die Insulinomdiagnostik ist der Hungerversuch.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 57

4 Funktionsteste
4.16 Glucose-Suppressionstest
Prinzip
Unter oraler Einnahme einer bestimmten Glucosemenge steigt die Blutglucosekonzentration. Bei
gesunden Patienten wird die Sekretion des Somatotropen Hormons (STH, hGH) dadurch inhibiert.
Indikation
V.a. Akromegalie
Vorbereitung
Der Patient sollte ab 24.00 Uhr vor dem Test eine Nahrungskarenz einhalten
3 Tage vor dem Test ist eine kohlenhydratreiche Ernährung einzuhalten
Muskelanstregung oder Rauchen sollte während des Tests vermieden werden
Material
STH: Serum
Glucose: Natrium-Fluorid-Plasma
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutabnahme - 5 Min. STH, Glucose vormittags
Einnahme 0 Min. Erwachsene: 75 g Glucose
in 250 – 350 ml
Lösung über 5 Min.
p.o.
Kinder: 1,75 g / kg KG
Glucose (max. 75g) in
250 – 350 ml Lösung
p.o.
Blutabnahme 30 Min. STH, Glucose
60 Min. STH, Glucose
90 Min. STH, Glucose
120 Min. STH, Glucose
Interpretation
normal
STH-Konzentration von höchstens 1 ng/ml innerhalb von 60 Minuten
Akromegalie
STH-Konzentration bei Testbeginn erhöht und unzureichende Senkung der STH-Konzentration im
Testverlauf
Anmerkung
Eine unzureichende Senkung der STH-Konzentration kommt auch z.B. bei Niereninsuffizienz,
Cushing-Syndrom, Diabetes mellitus, Stress sowie Lebererkrankungen vor.
58 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

4.17 Helicobacter pylori-Atemtest
4 Funktionsteste
Prinzip
Oral aufgenommener C13-markierter Harnstoff wird durch die Helicobacter pylori-Urease im Magen
zu 13CO2 metabolisiert, wodurch der Anteil an C13-Kohlendioxid in der Ausatemluft steigt.
Indikation
V.a. Helicobacter pylori-Besiedlung
Z.n. Eradikationstherapie (frühestens 4 Wochen nach Therapieende)
Vorbereitung
Der Patient sollte ab 24.00 Uhr vor dem Test eine Nahrungskarenz einhalten
Material
Doppelkammerbeutel
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge
Atemprobe - 5 Minuten vormittags
Einnahme 0 Minuten 75 mg C13-Harnstoff in 200 ml
Orangen-/Apfelsaft über 5 Min.
p.o.
Atemprobe 30 Minuten
Interpretation
negativ
Delta-Wert bis 2,4 Promille
grenzwertig
Delta-Wert 2,5 – 3,9 Promille
positiv
Delta-Wert ab 4,0 Promille
Bei Patienten, die in den letzten 4 Wochen mit H-Blocker, PPI oder Antibiotika behandelt
wurden, sprechen grenzwertige Ergebnisse für eine Helicobacter pylori-Besiedelung.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 59

4 Funktionsteste
4.18 Insulinhypoglykämie-Test
Insulinhypoglykämie-Test bei V.a. adrenocorticotrope Insuffizienz
Prinzip
Die insulininduzierte Hypoglykämie bewirkt ein Freisetzung von Stresshormonen wie ACTH,
Cortisol und GH über die hypothalamo-hypophysär-glandotrope Achse.
Vorbereitung
Testdurchführung am nüchternen Patienten
Ärztliche Präsenzpflicht während des gesamten Tests
Venöser Zugang (Anlage zweier Venenverweilkanülen seitengetrennt empfehlenswert)
40%ige Glucoselösung aufgezogen bereitlegen
Engmaschige BZ-Überwachung (alle 5-10 Min.), z.B. mittels Hemocue
Material
Cortisol: Serum
ACTH: EDTA-Plasma, gefroren
Glucose: s.o., ggf. zusätzlich NaF-Blut
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
- 8 Std. fasten
Blutabnahme - 15 Min. ACTH, Cortisol
(Glucose)
i.v.-Zugang
Injektion 0 Min. Erwachsene:
0,1 – 0,15 IE/kg KG
Insulin i.v.,
Kinder:
s. Fachliteratur
Blutabnahme 30 Min. ACTH, Cortisol
(Glucose)
60 Min. ACTH, Cortisol
(Glucose)
90 Min. ACTH, Cortisol
(Glucose)
120 Min. ACTH, Cortisol
(Glucose)
Interpretation
normal:
Cortisol-Anstieg > 20 µg/dl
ACTH-Anstieg > 150 pg/ml
Der Test ist nur bei ausreichendem Hypoglykämie-Stimulus aussagekräftig.
60 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Insulinhypoglykämie-Test bei V.a. somatotrope Insuffizienz
4 Funktionsteste
Prinzip
Die insulininduzierte Hypoglykämie bewirkt ein Freisetzung von Stresshormonen wie ACTH,
Cortisol und GH über die hypothalamo-hypophysär-glandotrope Achse.
Vorbereitung
Testdurchführung am nüchternen Patienten
Ärztliche Präsenzpflicht während des gesamten Tests
Venöser Zugang (Anlage zweier Venenverweilkanülen seitengetrennt empfehlenswert)
40%ige Glucoselösung aufgezogen bereitlegen
Engmaschige BZ-Überwachung (alle 5-10 Min.) mittels Hemocue oder anderem
qualitätskontrolliertem BZ-Messgerät
Material
STH: Serum
Glucose: s.o., ggf. zusätzlich NaF-Blut
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
- 8 Std. fasen
Blutabnahme - 15 Min. STH (Glucose) i.v.-Zugang
- 1 Min. STH (Glucose)
Injektion 0 Min. Erwachsene:
0,1 – 0,15 IE/kg KG
Insulin i.v.,
Kinder:
s. Fachliteratur
Blutabnahme 15 Min. STH (Glucose)
30 Min. STH (Glucose)
45 Min. STH (Glucose)
60 Min. STH (Glucose)
90 Min. STH (Glucose)
120 Min. STH (Glucose)
Interpretation
normal: STH-Anstieg > 10 ng/ml nach 30 – 60 Minuten
V.a. hypophysär bedingten STH-Mangel: kein /subnormaler STH-Anstieg (< 10 ng/ml)
V.a. hypothalamisch bedingten STH-Mangel: überschießender STH-Anstieg (> 40 ng/ml)
Der Test ist nur bei ausreichendem Hypoglykämie-Stimulus aussagekräftig. Nach der deutschen
Gesellschaft für Endokrinologie ist die Bestätigung durch mindestens einen weiteren Stimulationstest
mit anderem Stimulus (z.B. Arginin) zu empfehlen.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 61

4 Funktionsteste
4.19 Lactose-Belastungstest
Prinzip
Lactose wird im Dünndarm durch Lactase in Glucose und Galactose gespalten. Unter oraler Einnahme
einer definierten Lactosemenge steigt nach Glucoseresorption im Dünndarm die Blutglucosekonzentration
an. Bei Patienten mit Lactoseintoleranz bzw. Lactasemangel wird die Lactose nicht gespalten
und nicht aufgenommen.
Indikation
V.a. Lactoseintoleranz
Vorbereitung
Der Patient sollte ab 24.00 Uhr vor dem Test eine Nahrungskarenz einhalten
Material
Glucose: Natrium-Fluorid-Plasma
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutabnahme -5 Minuten Glucose vormittags
Einnahme 0 Minuten Erwachsene:
50 g Lactose
in 400 ml Wasser
über 5 Min. p.o.
Kinder ab 2 Jahre:
2 g / kg KG
Lactose p.o.
(max. 100 g)
Blutabnahme 30 Minuten Glucose
60 Minuten Glucose
90 Minuten Glucose
120 Minuten Glucose
Interpretation
normal
Anstieg der Blutglucosekonzentration von mehr als 20 mg/dl über den Nüchternwert
V.a. Lactasemangel, z.B. bei Lactoseintoleranz oder Zöliakie
Geringer Anstieg
62 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

4.20 LHRH-Test (GnRH-Test)
4 Funktionsteste
Prinzip
Die bolusartige Injektion von LHRH stimuliert die Freisetzung von LH und FSH aus dem HVL.
Indikation
Differenzierung zwischen hypothalamischem und hypophysärem Hypogonadismus
Differenzierung zwischen konstitutioneller Entwicklungsverzögerung und hypogonadotropem
Hypogonadismus
Differenzierung zwischen Pubertas praecox vera, Pseudopubertas praecox und
prämaturer Pub-/Thelarche
Hyperandrogenämische Ovarialinsuffizienz
Abklärung bei Amenorrhoe
Fertilitätsdiagnostik bei unerfülltem Kinderwunsch
Vorbereitung
Männer:
Testosteronpräparat je nach Wirkdauer ausreichend lange absetzen
Frauen:
Hormonpräparat je nach Wirkdauer ausreichend lange absetzen
Optimaler Testzeitpunkt: 3. – 5. Zyklustag
Material
LH, FSH: Serum
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutabnahme - 5 Min. LH, FSH i.v.-Zugang
Injektion 0 Min. Erwachsene:
100 µg LHRH i.v.
Kinder:
s. Fachliteratur
(mind. 25 µg,
max. 100 mg LHRH)
Blutabnahme 30 Min. LH, FSH
45 Min. LH, FSH
60 Min. LH, FSH
90 Min. LH, FSH
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 63

4 Funktionsteste
Interpretation
Normalbefund
Anstieg nach LHRH
Männer: LH > 2- bis 4-fach, FSH > 2-fach
Frauen: LH > 3- bis 4-fach, FSH > 2- bis 3-fach
Hypophysendefekt bzw. hypothalamische Hypophysenstörung, hypogonadotroper Hypogonadismus:
Kein oder verminderter LH-/FSH-Anstieg.
Hyperandrogenämische Ovarialinsuffizienz:
Überschießender LH-Anstieg bei häufig bereits basal erhöhten LH-Werten.
Hinweise
Auf alters- bzw. pubertätsabhängige Referenzbereiche wird explizit hingewiesen.
Sinnvoll kann die zusätzliche Bestimmung von Östradiol bei der Frau und von Testosteron beim
Mann sein.
Bei bekannt erhöhten LH- / FSH-Basalwerten ist ein GnRH-Test in der Regel entbehrlich.
Der Test ist bei negativem Ergebnis (kein LH- / FSH-Anstieg) nach einwöchiger pulsatiler
GnRH-Gabe (= Priming) zu wiederholen, um definitiv zwischen hypothalamisch (LH- / FSH-Anstieg
dann nachweisbar) und hypophysär (LH- / FSH-Anstieg auch dann nicht nachweisbar) bedingtem
Hypogonadismus zu unterscheiden.
64 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

4.21 Metoclopramid-Test
4 Funktionsteste
Prinzip
Die Regulation der Prolactinsekretion erfolgt v.a. über inhibitorische Einflüsse des Dopamins. Der
Dopamin-Antagonist Metoclopramid bewirkt eine disinhibitorische Prolactin-Ausschüttung.
Indikation
V.a. latente Hyperprolactinämie
Vorbereitung
Testdurchführung zwischen 8.00 und 18.00 Uhr (zirkadiane Rhythmik)
Optimaler Testzeitpunk: Mitte der Lutealphase
Patient sollte nüchtern sein
Stressfreie Rahmenbedingungen
Keine Mammapalpation vor Testdurchführung
Einnahme von Medikamenten, die den Prolactinspiegel beeinflussen, überprüfen
Bei Patienten unter Therapie mit hohen Biotin-Dosen (> 5 mg/Tag) sollte die Probenentnahme
mindestens 8 Stunden nach der letzten Applikation erfolgen
Material
Prolactin: Serum
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutabnahme - 5 Min. Prolactin 8.00-18.00 Uhr,
nüchtern
Injektion 0 Min. Erwachsene: 10 mg
Metoclopramid i.v.
Blutabnahme 30 Min. Prolactin
45 Min. Prolactin
60 Min. Prolactin
Interpretation
normal:
Prolactin-Anstieg nach MCP: 4000 – 9000 mIU/l
V.a. latente Hyperprolactinämie:
überschießender Prolactinanstieg bei normalen Basalwerten
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 65

4 Funktionsteste
4.22 Oraler Glucosetoleranztest (OGTT)
Oraler Glucosetoleranztest bei V.a. Diabetes mellitus
Prinzip
Unter oraler Einnahme einer definierten Glucosemenge steigt die Blutglucosekonzentration physiologischerweise
in bestimmten Grenzen an. Bei Patienten mit Diabetes mellitus bzw. seinen Vorstufen
kommt es zu einem überschießenden Glucoseanstieg.
Indikation
V.a. Diabetes mellitus bzw. seine Vorstufen
Vorbereitung nach WHO-Richtlinien
Der Patient sollte ab 24.00 Uhr vor dem Test eine Nahrungskarenz einhalten
3 Tage vor dem Test ist eine kohlenhydratreiche Ernährung einzuhalten
Muskelanstregung oder Rauchen sollte während des Tests vermieden werden
Material
Glucose: Natrium-Fluorid-Plasma
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutabnahme - 5 Min. Glucose vormittags
Einnahme 0 Min. 75 g Glucose (Kinder:
1,75 g / kg KG, max
75g) in 250 – 350 ml
Lösung über 5 Min.
p.o.
Blutabnahme 120 Min. Glucose
Interpretation
Stadium Nüchtern-Plasma-Glucose
venös
normal < 100 mg/dl < 140 mg/dl
OGTT 2-Stunden-Wert
abnorme Nüchtern-Glucose gestörte Glucosetoleranz
100 – 125 mg/dl 140 – 199 mg/dl
Diabetes > 125 mg/dl > 199 mg/dl
66 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Oraler Glucosetoleranztest bei V.a. Gestationsdiabetes
4 Funktionsteste
Prinzip
Unter oraler Einnahme einer definierten Glucosemenge steigt die Blutglucosekonzentration
physiologischerweise in bestimmten Grenzen an. Bei Schwangeren mit Diabetes mellitus bzw.
Gestationsdiabetes kommt es zu einem überschießenden Glucoseanstieg.
Indikation
V.a. Diabetes mellitus bzw. Gestationsdiabetes
Screening auf Gestationsdiabetes in der 24. – 28. SSW.
Vorbereitung nach WHO-Richtlinien
Die Patientin sollte ab 24.00 Uhr vor dem Test eine Nahrungskarenz einhalten
3 Tage vor dem Test ist eine kohlenhydratreiche Ernährung einzuhalten
Muskelanstregung oder Rauchen sollte während des Tests vermieden werden
Material
Glucose: Citrat-NaF-Blut (GlucoEXACT) oder Natrium-Fluorid-Plasma
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutabnahme - 5 Min. Glucose vormittags
Einnahme 0 Min. 75 g Glucose in 250 –
350 ml Lösung p.o.
Blutabnahme 60 Min. Glucose
120 Min. Glucose
Interpretation
Gestationsdiabetes
Nüchternglukose > 91mg/dl
oder
1-Stunden-Glukose > 179 mg/dl
oder
2-Stunden-Glukose > 152 mg/dl
Diabetes mellitus
Nüchternglukose > 125 mg/dl, eine Zweitmessung ist angezeigt
oder
2-Stunden-Glukose > 199 mg/dl
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 67

4 Funktionsteste
Oraler Glucosetoleranztest, Vortest bei Schwangeren
Prinzip
Unter oraler Einnahme einer definierten Glucosemenge steigt die Blutglucosekonzentration
physiologischerweise in bestimmten Grenzen an. Bei Schwangeren mit Diabetes mellitus bzw.
Gestationsdiabetes kommt es zu einem überschießenden Glucoseanstieg.
Indikation
Kann als Vortest beim Screening auf Gestationsdiabetes in der 24. – 28. SSW. eingesetzt werden.
Vorbereitung
Keine besondere Vorbereitung
Material
Glucose: Citrat-NaF-Blut (GlucoEXACT) oder Natrium-Fluorid-Plasma
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Einnahme 0 Min. 50 g Glucose in 200 ml
Lösung p.o.
Blutabnahme 60 Min. Glucose
Interpretation
positives Screening
1-Stunden-Glucose > 134 mg/dl
bei positivem Screening sollte der 75-g oGTT durchgeführt werden
68 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

4.23 Orthostase-Test
4 Funktionsteste
Prinzip
Beim Aufrichten aus der liegenden in die stehende Körperhaltung, kommt es bei gesunden Personen
sowie bei Personen mit einem idiopatischen Hyperaldosteronismus zu einer Renin- und Aldosteronausschüttung.
Bei Personen mit einem aldosteronproduzierenden Adenom (Conn-Syndrom)
bleibt die Reninsekretion supprimiert.
Indikation
Differentierung zwischen idiopathischem Hyperaldosteronismus und anderen Formen des primären
Hyperaldosternoismus
Vorbereitung
Aldosteronantagonisten sind 4 Wochen, Schleifendiuretika 1 Woche vor dem Test abzusetzen
Absetzen der übrigen Antihypertensiva sollte erwogen werden
Eventuell bestehende Hypokaliämie ausgleichen
Der Patient sollte ab 24.00 Uhr vor dem Test Bettruhe einhalten
Material
Renin: EDTA-Plasma
Aldosteron, Cortisol: Serum (schneller Transport ins Labor)
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
- 30 Min. i.v.-Zugang
Blutabnahme - 5 Min. Renin, Aldosteron, 7.00 – 9.00 Uhr,
Cortisol
liegende Position
Orthostase 0 Min. – 120 Min. Spazierengehen,
aufrechte
Körperhaltung
Blutabnahme 120 Min. Renin, Aldosteron,
Cortisol
Interpretation
Aldosteronproduzierendes Adenom (Conn-Syndrom)
Aldosteronkonzentration gleichbleibend / abnehmend
Reninkonzentration zunehmend
Cortisolkonzentration abnehmend
Andere Konstellationen sind nicht eindeutig zuzuordnen
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 69

4 Funktionsteste
4.24 Pentagastrin-Stimulationstest
Prinzip
Stimulation der Calcitoninsekretion der parafollikulären C-Zellen der Schilddrüse durch Pentagastrin
(synthetisches Gastrin-Analogon).
Indikation
Medulläres C-Zell-Karzinom (Diagnose und postoperative Verlaufskontrolle)
C-Zell-Hyperplasie
Familien-Screening bei familiärem, medullärem Schilddrüsenkarzinom (FMTC) und MEN-II
Vorbereitung
Pentagastrin ist in Deutschland nicht erhältlich (kann über die Auslandsapotheke bezogen werden)
Patient sollte nüchtern sein, Testdurchführung am liegenden Patienten
Kreatininwert des Patienten sollte bekannt sein
Probe muss gekühlt abgenommen werden
Testdurchführung in Anwesenheit eines Arztes und einer Notfallausrüstung
Material
Calcitonin: Serum, gekühlt
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutabnahme - 5 Min. Calcitonin nüchtern, liegend
Injektion 0 Min. Erwachsene:
0,5 µg/kg KG
Pentagastrin über
5 Min. i.v.
Blutabnahme 2 Min. Calcitonin
5 Min. Calcitonin
10 Min. Calcitonin
Interpretation
normal:
Calcitoninanstieg nach Pentagastrin bei 95% der Normalpersonen auf maximal < 30 pg/ml. Der
Anstieg ist geschlechtsspezifisch unterschiedlich: Frauen zeigen einen geringeren Anstieg als Männer.
Calcitoninanstieg > 100 pg/ml: medulläres Schilddrüsenkarzinom wahrscheinlich
Calcitoninanstieg zwischen 30 und 100 pg/ml: häufig bei Patienten mit vorhandener familiärer
RET-Mutation, mit einer C-Zell-Hyperplasie oder einem Mikrokarzinom vereinbar
Der Pentagastrintest wird aufgrund seiner unangenehmen Nebenwirkungen und der Tatsache,
dass keine zuverlässigen Referenzbereiche für Kinder existieren, zunehmend durch molekulargenetische
Untersuchungs-methoden (Nachweis von Mutationen des RET-Protoonkogens) ersetzt.
70 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

4.25 TRH-Test
TRH-Test bei V.a. latente Hyperprolactinämie
4 Funktionsteste
Prinzip
Exogenes Thyreotropin Releasing Hormone (TRH) bewirkt u.a. eine Prolactin-Sekretion des Hypophysenvorderlappens
Indikation
V.a. latente Hyperprolactinämie
Vorbereitung
Testdurchführung zwischen 8.00 und 18.00 Uhr (zirkadiane Rhythmik)
Patient sollte nüchtern sein
Stressfreie Rahmenbedingungen
Keine Mammapalpation vor Testdurchführung
Einnahme von Medikamenten, die den Prolactinspiegel beeinflussen, überprüfen
Bei Patienten unter Therapie mit hohen Biotin-Dosen (> 5 mg/Tag) sollte die Probenentnahme
mindestens 8 Stunden nach der letzten Applikation erfolgen
Material
Prolactin: Serum
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßparameter
Blutabnahme - 5 Min. Prolactin 8.00-18.00 Uhr,
nüchtern
Injektion 0 Min. Erwachsene:
200 µg TRH i.v.
Blutabnahme 30 Min. Prolactin
45 Min. Prolactin
60 Min. Prolactin
Interpretation
normal:
Prolactin-Anstieg nach TRH: 2000 – 4000 mIU/l
V.a. latente Hyperprolactinämie:
überschießender Prolactin-Anstieg bei normalen Basalwerten
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 71

4 Funktionsteste
TRH-Test bei V.a. sekundäre / tertiäre Hypothyreose
Prinzip
Exogenes Thyreotropin Releasing Hormone (TRH) bewirkt bei intaktem Regelkreis einen Anstieg
von TSH aus dem Hypophysenvorderlappen.
Indikation (strenge Indikationsstellung)
V.a. sekundäre oder tertiäre Hypothyreose
Vorbereitung
Patient sollte liegen
Material
TSH: Serum
Testdurchführung
Ablauf Zeitfolge Meßgröße
Blutabnahme - 5 Min. TSH liegend
Injektion 0 Min. Erwachsene:
200 µg TRH i.v.
Blutabnahme 30 Min. TSH
Interpretation
TSH-Anstieg nach TRH um
< 2 mIU/l: fehlende TSH-Antwort
wenn fT3/fT4 erniedrigt:
- Hinweis auf sekundäre Hypothyreose
wenn fT3/fT4 normal:
- kurz bestehende sekundäre Insuffizienz
- Frühform einer immunogenen Hyperthyreose
- beginnende thyreoidale Autonomie
- Therapie mit Schilddrüsen-Hormonen
2 – 25 mIU/l: regelrechte TSH-Antwort
wenn fT3/fT4 erniedrigt:
- V.a. low-T3-Syndrom bei kritisch Kranken
> 25 mIU/l: überschießende TSH-Antwort
wenn fT3/fT4 erniedrigt:
- manifeste Hypothyreose
wenn fT3/fT4 normal:
- latente Hypothyreose
- Jodverwertungsstörung
72 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

5 Mikrobiologie
5.1 Allgemeine Grundsätze
Die Qualität mikrobiologischer Untersuchungen wird in entscheidendem Maße von der Qualität
des Untersuchungsgutes beeinflusst, das den mikrobiologischen Laboratorien zur Untersuchung
übermittelt wird. Die Wahl des geeigneten Untersuchungsgutes, die sachgerechte Probenentnahme
sowie die Einhaltung geeigneter Transportbedingungen einschließlich Transportmedien und die
kürzest möglichen Transportzeiten sind daher wichtige Vorraussetzungen im Hinblick auf einen
verlässlichen Untersuchungsbefund und die Diagnosestellung.
Um die Koordination und Kooperation zwischen Einsender und Mikrobiologischem Labor im Sinne
einer optimalen Patientenversorgung gewährleisten zu können, sind nachfolgend die wichtigsten
organisatorischen Vorgaben zusammengefasst:
Jedem Untersuchungsmaterial wird ein separater Einsendeschein beigefügt, der neben allen
relevanten Patientendaten auch mit der genauen Anschrift und Telefonnummer des Einsenders bzw.
des Ansprechpartners versehen sein sollte, um klinisch wichtige Informationen unmittelbar austauschen
zu können. Für die richtige Interpretation des mikrobiologischen Untersuchungsergebnisses
ist ebenfalls die Angabe des Entnahmeortes (z.B. tiefer/oberflächlicher Wundabstrich etc.) und/oder
des Körper-/Organsekretes (z.B. Urin/Liquor/Kniegelenkspunktat etc.) sowie das Datum der
Abnahme (ggf. mit Uhrzeit) der Patientenprobe von Bedeutung. Zusätzliche Angaben zur klinischen
Situation, zu Vorerkrankungen und bereits eingeleiteten Therapiemaßnahmen ermöglichen eine
weitere Präzisierung der erhobenen Befunde durch den mikrobiologisch tätigen Laborarzt. Bei eiligen
Proben empfiehlt sich die Angabe einer Rückrufnummer.
Die Zuordnung der Proben erfolgt im Labor anhand der vollständigen Beschriftung des Transportgefäßes
(nicht das Umröhrchen) und des dazugehörigen Einsendscheines.
Die Entnahme mikrobiologischer Proben erfolgt idealerweise noch vor Beginn einer Antibiotikatherapie.
Jedoch ist auch die Abnahme zu einem späteren Zeitpunkt indiziert, wenn das klinische Bild
auf infektiologische Komplikationen hindeutet (z.B. Wechsel des Erregerspektrums, Auftreten von
Resistenzmechanismen, mangelnde Penetrationsfähigkeit der Antibiotika etc.).
Es ist darauf zu achten ausreichende Mengen an Untersuchungsmaterial (z.B. 3-5 ml Punktat/Eiter)
einzusenden. Gewebeproben sind grundsätzlich einfachen Abstrichen vorzuziehen, wenn deren
Entnahme technisch möglich erscheint. Details sind dem alphabetischen Teil des Kapitels ” Bakteriologie“
unter den entsprechenden Untersuchungsmaterialien und/oder den Erregerbeschreibungen zu
entnehmen.
Mehrere Proben in zeitlichen Abständen hintereinander entnommen oder aus unterschiedlichen
Bereichen der Infektlokalisation stammend erhöhen die Nachweiswahrscheinlichkeit der Erreger
um ein Vielfaches.
Die Einhaltung einer korrekten Lagerungstemperatur ist bei mikrobiologischen Proben sehr
wichtig. Die Mehrzahl der bakteriologischen Untersuchungsmaterialien sollten bei 4°C gelagert
werden. Wichtige Ausnahmen sind u.a. Blutkulturen und Liquor, welche bei Raumtemperatur
transportiert werden sollten. Im alphabetischen Teil des Kapitels ” Mikrobiologie“ unter den
entsprechenden Untersuchungsmaterialien und/oder den Erregerbeschreibungen werden hierzu
73

5 Mikrobiologie
genaue Angaben gemacht.
Die über das normale Spektrum der Diagnostik hinausgehenden speziellen Untersuchungsanforderungen
(z.B. Antimykogramm/PCR-Diagnostik) müssen auf dem Untersuchungsauftrag
deutlich vermerkt sein (siehe auch unter ” Mikrobiologische Diagnostik-Alphabetisches Register“ ).
Eine schnellstmögliche Überstellung der Proben an das Labor wird durch einen kontinuierlichen
Fahrdienst gewährleistet. Alle für den Probentransport maßgeblichen Kriterien und gesetzlichen
Vorgaben finden hierbei selbstverständlich Beachtung und schützen so vor Qualitätsverlusten.
Untersuchungsergebnisse von besonderer Dringlichkeit (z.B. positive Blut- und Liquorkulturen)
werden umgehend telefonisch mitgeteilt. Ansonsten erfolgt die Befundübermittlung direkt per DFÜ,
auf Anforderung zusätzlich per Fax und natürlich über den normalen Post- oder Kurierdienst.
Für Fragen rund um den Fahrdienst steht Herr Rensinghoff als Ansprechpartner zur Verfügung:
Tel.: 0251 – 60916 – 292
Nähere Angaben über die unterschiedlichen Transportmedien und Versandsysteme entnehmen
Sie bitte dem nachfolgenden Kapitel ” Versandmaterial Mikrobiologie“ .
74 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

5.2 Versandmaterial
5 Mikrobiologie
Grundsätzlich entsprechen alle von uns bereitgestellten Proben- und Transportgefäße den
gültigen Qualitätsnormen und gesetzlichen Bestimmungen. Vom Anwender muss jedoch die
sachgerechte Handhabung, die für einige Produkte angegebene Kontrolle des Verfallsdatums und
die vorschriftsmäßige Lagerung vor und nach der Beschickung mit Untersuchungsgut gewährleistet
werden. Genaue Angaben hierzu finden Sie unter den Beschreibungen zu bestimmten Erregern und
Untersuchungsverfahren im alphabetischen Register ” Mikrobiologische Diagnostik“ .
Für Rückfragen stehen Ihnen ferner die Mitarbeiterinnen und Mitarbeiter der Versandabteilung
sowie des Labors zur Verfügung.
Einsendescheine und Versandtüten können ebenfalls über den Versand angefordert werden.
Ihre Bestellung von Probenentnahme- und Versandmaterial nehmen wir unter der Rufnummer
Tel.: 0251 – 60916 – 161 oder per Fax: 0251 – 60916 – 164 entgegen.
Allgemeine Transportgefäße
Blutkulturflaschen
Blutkulturmedien eignen sich zur Anzucht aerober oder anaerober Erreger und können ohne oder
mit Zusatz antibiotikabindender Substanzen eingesetzt werden. Für Frühgeborene, Säuglinge
und Kleinkinder, wo nur geringe Blutvolumina entnommen werden können, stehen spezielle
Kinderblutkulturflaschen zur Verfügung. Zur besseren Unterscheidung sind die Flaschen mit farblich
verschiedenen Kappen versehen. Auf Wunsch kann der Bestellung von Blutkulturflaschen ein
Informationsblatt des Herstellers zur Entnahmetechnik und zur Handhabung beigefügt werden.
Blutkultur SA:
Blutkultur SN:
Aerobe und anaerobe Standardflaschen. Die Blutkulturflaschen sind ein gutes Transport- und
Kulturmedium, auch für flüssiges, primär steriles Untersuchungsmaterial anderer Herkunft
(z.B. Gelenkpunktate) besonders zum Anzüchten empfindlicher Keime. Bei unbekanntem Sepsis-
/Infektionserreger ist immer die kombinierte Abnahme einer aeroben und anaeroben Blutkulturflasche
zu empfehlen. Bitte das vorgeschriebene Probenvolumen beachten (8-10 ml).
Blutkultur FA:
Blutkultur FN:
Aerobe und anaerobe Flasche zur bakteriologischen Untersuchung unter begonnener oder länger
bestehender Antibiotikatherapie. Durch spezielle Zusätze werden antibiotisch wirksame Substanzen
aus dem Patientenmaterial gebunden, die andernfalls die Anzucht pathogener Erreger verhindern oder
erschweren könnten. Die Blutkulturflaschen sind ein gutes Transport und Kulturmedium, auch für
flüssiges, primär steriles Untersuchungsmaterial anderer Herkunft (z.B. Gelenkpunktate) besonders
zum Anzüchten empfindlicher Keime. Bei unbekanntem Sepsis-/Infektionserreger ist immer die
kombinierte Abnahme einer aeroben und anaeroben Blutkulturflasche zu empfehlen. Bitte das
vorgeschriebene Probenvolumen beachten (8-10 ml).
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 75

5 Mikrobiologie
Blutkultur PF:
Pädiatrische Flasche. Die Blutkulturflasche eignet sich für geringe Volumina an Untersuchungsmaterial
(Pädiatrie etc.).
Röhrchen und Tupfer
- Röhrchen (Serumröhrchen neutral, steril): Röhrchen mit Schraubdeckel für Urin-, Punktat-,
Liquorproben sowie Exsudat.
- Steriles Röhrchen (Serumröhrchen rot): Röhrchen mit Schraubdeckel und EDTA für Punktate
zur Zellzahlbestimmung.
- Urin-Röhrchen (100 ml): Flachbodengefäß mit Schraubdeckel.
- Sputum-Röhrchen (steril): Flachbodengefäß mit Schraubdeckel. Umröhrchen gelb.
- Sputum-Röhrchen mit Phosphatpuffer: Flachbodengefäß mit Schraubdeckel für Magensaft
zur Kultur auf Mykobakterien.
- Stuhl-Röhrchen: Röhrchen mit Schraubdeckel inkl. Löffelchen. Umröhrchendeckel braun.
- Abstrichtupfer mit Medium (dicker Tupfer; blau): Starrer Tupfer mit Universal-Transportmedium.
- Abstrichtupfer mit Medium (dünner Tupfer; orange): Flexibler Tupfer mit Universal-
Transportmedium.
- Abstrichtupfer ohne Medium (dicker Tupfer; violett) für PCR-Untersuchungen: Starrer Tupfer
ohne Universal-Transportmedium.
- Uriculte: Nährbodenträger für Urinkultur (Eintauchmedium).
Spezielle Transportgefäße
- Trachealsaug-Set: Spitzbodenröhrchen mit An- und Absaugkanälen (steril verpackt).
- Mycoplasma hominis/Ureaplasma urealyticum: Spezielles Transportmedium mit Abstrichtupfer
(blau). Vorratslagerung: 2-8°C! Merkblatt zur Handhabung wird den Lieferungen beigelegt!
- Spezialabstrichbesteck mit Tupferabstrich: PCR-Untersuchung auf Chlamydia trachomatis/Neisseria
gonorrhoeae. Merkblatt zur Handhabung wird den Lieferungen beigelegt!
- Thermoboxen (Styropor/Kunststoff): Transportboxen für gekühlten Probentransport.
- Zytologie-Set: Objektträger mit Versandhüllen (für mikroskopische Untersuchung z.B. auf
GO, Tumorzellen).
76 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

5.3 Alphabetisches Register
Abstriche (allgemein)
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Keimidentifizierung
- Ggf. Antibiogramm
- Ggf. Sonderanforderungen (z.B. Sprosspilze)
5 Mikrobiologie
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Grundsätzlich steril entnehmen und Abstrichtupfer in ein Röhrchen mit Transportmedium geben.
Bitte immer die Entnahmestelle und klinische Besonderheiten angeben! Möglichst zügiger Transport
ins Labor. Je nach Art des Abstriches ist die kurzfristige Zwischenlagerung bei 4°C (Gefahr des Absterbens
empfindlicher Keime) oder die Lagerung bei Raumtemperatur (Gefahr der Überwucherung
pathogener Keime durch die Standortflora) günstiger. Nähere Angaben hierzu sind unter den
entsprechenden Stichpunkten zu finden, z.B. Konjunktival-, Rachen-, Wundabstrich usw.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Da Abstrichtupfer nur eine begrenzte Menge an Untersuchungsmaterial aufnehmen, sollte bei besonderen
klinischen Fragestellungen die mikrobiologische Untersuchung besser aus Gewebestücken
oder aspiriertem Material erfolgen.
Zum Nachweis von Erregern mittels PCR werden gesonderte Tupfer ohne Transportmedium eingesetzt
(siehe Kapitel Molekularbiologie).
Abdomenabstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Keimidentifizierung
- Ggf. Antibiogramm
- Bei V.a. Peritonitis darmpathogene Keime (Salmonellen, Shigellen, Yersinien, Campylobacter)
Auf Anforderung: Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
s. u. Abstriche (allgemein).
Ist kein unmittelbarer Transport ins Labor möglich, sollte die Probe bei Raumtemperatur gelagert
werden.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Wird gleichzeitig eine Untersuchung auf Sprosspilze gewünscht, so muss diese Anforderung auf dem
Begleitschein zusätzlich aufgeführt werden.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 77

5 Mikrobiologie
Absaugkatheter
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Aerobe Kultur
- Identifizierung pathogener Keime
- Ggf. Antibiogramm
Auf Anforderung: Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Katheter in einem sterilen Gefäß einsenden. Lagerung bei 4°C.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Es ist zu beachten, dass in der Regel Absaugkatheter mit Begleitflora des Abnahmeortes kontaminiert
sind. Wird gleichzeitig eine Untersuchung auf Sprosspilze gewünscht, so muss diese Anforderung
auf dem Begleitschein zusätzlich aufgeführt werden.
Abszessinhalt/Eiter
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Keimidentifizierung
- Ggf. Antibiogramm
- Ggf. Sonderanforderungen
Auf Anforderung: Kultur auf Aktinomyzeten
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Materialgewinnung möglichst vor chirurgischer Abszess-Eröffnung. Nach sorgfältiger Hautdesinfektion
Punktion des Eiterherdes und Aspiration in steriler Spritze (möglichst 2-5 ml). Spritze mit
steriler Kappe verschließen und einsenden.
Infektionserreger finden sich vor allem in den Randzonen. Daher eignen sich auch Gewebeproben
aus dieser Region gut für den Bakteriennachweis.
Ist ein unmittelbarer Transport ins Labor nicht möglich, wird die Probe bei 4°C zwischengelagert.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Ein Tupferabstrich ist für die mikrobiologische Untersuchung nur sehr eingeschränkt geeignet. Verdacht
auf Aktinomykose unbedingt mitteilen, da hierfür ein spezielles Kulturverfahren erforderlich ist.
Acinetobacter sp.
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Gramnegatives Stäbchenbakterium aus der Gruppe der Nonfermenter. Vorkommen ubiquitär in der
78 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

5 Mikrobiologie
Umwelt. Manchmal auch Erreger nosokomialer Infektionen (z.B. Pneumonie, HWI, etc.). Nachweis
aus den üblichen mikrobiologischen Untersuchungsmaterialien möglich.
Lagerung bei Raumtemperatur.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Häufig nachgewiesene Spezies:
- Acinetobacter baumannii
- Acinetobacter lwoffii
- Acinetobacter calcoaceticus
Actinobacillus actinomycetemcomitans
s.u. Kapitel Molekularbiologie: Parodontalkeime
Actinomyces israelii, Actinomyces sp.
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Nachweis aus Gewebeproben, Abszessmaterial und tiefen Abstrichen möglich (langsames Wachstum
= längere Bebrütungsdauer!).
Ist ein unmittelbarer Transport ins Labor nicht möglich, wird die Probe bei 4°C zwischengelagert.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Krankheitsbild: Aktinomykose
Typisch für chronisch eitrige, langsam progrediente, abszedierende o. fistelbildende Infektionsprozesse
im oralen oder zervikofazialen Bereich.
Gelegentlich auch thorakale, intraabdominelle, cerebrale oder knöcherne Lokalisation.
Adenoviren
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Ca. 50 unterschiedliche Serotypen, die vor allem zu Infektionen des Respirations- und Gastrointestinaltraktes
führen. Ferner sind Adenoviren häufigste Erreger der hoch-kontagiösen Keratoconjunktivitis
epidemica.
Frische Stuhlprobe (mindestens zur Hälfte gefülltes Stuhlröhrchen).
Ist ein unmittelbarer Transport ins Labor nicht möglich, wird die Probe bei 4°C zwischengelagert.
Nachweis von Adenovirus-DNA mittels PCR bei Keratoconjunktivitis nur mit speziellem Abstrichset
und Medium möglich!
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Indiziert bei Diarrhöen im Kleinkindesalter. Nachweis des Adenovirus-Antigens im Enzym-Immuno-
Assay (EIA).
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 79

5 Mikrobiologie
Siehe auch Kapitel Molekularbiologie.
Aeromonas sp.
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Aeromonaden sind in der Umwelt weit verbreitet, vor allem in feuchtem und wässrigem Milieu.
Sie können Augeninfektionen, Pneumonien, Wundinfektionen und Gastroenteritiden verursachen.
Materialentnahme entsprechend der Infektlokalisation. Stuhlproben bei Gastroenteritis, s.u.
Stuhldiagnostik.
Lagerung der Probe je nach Material bei 4°C (z.B. Urin) oder Raumtemperatur (z.B. Blutkulturen).
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
Aktinomykose
s.u. Actinomyces israelii
Amöben
s.u. Amöbiasis
Amöbiasis
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Krankheitsbild: Amöbiasis/Amöbenruhr
Erreger: Entamoeba histolytica
Meist Einschleppung aus Endemiegebieten nach Auslandsaufenthalten.
Diarrhoe, Bauchkrämpfe, Leber-, Lungen- oder Hirnabszesse.
Stuhlproben, Abszessmaterial. Lagerung bei 4°C.
s.u. Stuhldiagnostik
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Parasitäre Erkrankung durch Protozoen.
Amöbenzysten können in frischem Stuhl mikroskopisch nachgewiesen werden. Methode der Wahl
ist jedoch der Nachweis von Entamoeba histolytica durch Enzym-Immuno-Assay (EIA). Zum Ausschluss
extraintestinaler Manifestationen muss eine serologische Untersuchung (ELISA) ergänzend
durchgeführt werden (Patientenserum).
80 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Analabklatschpräparat
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung: Mikroskopischer Nachweis von Oxyuren-Eiern (Enterobius vermicularis).
5 Mikrobiologie
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Tesafilmstreifen morgens vor der Defäkation auf den Anus des Patienten drücken. Anschließend
den Tesafilmstreifen auf einen Objektträger kleben. Objektträger bruchsicher, in einer eigens hierfür
vorgesehenen Kunststoffhülle, einsenden.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Krankheitsbild: Oxyuriasis, Enterobiasis
Die Untersuchung des Stuhles auf Enterobius vermicularis ist nicht erfolgversprechend, da die
Eiablage am äußeren Analring erfolgt.
Analabstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Aerobe Kultur
- Ggf. Antibiogramm
Auf Anforderung: Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Lagerung bei 4°C.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Es ist zu beachten, dass ein Analabstrich fast immer mit Begleitflora des Abnahmeortes kontaminiert
ist.
Anthrax
s.u. Bacillus anthracis
Aszitespunktat
s.u. Punktate
Astroviren
s.u. Stuhldiagnostik
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Antigen-Nachweis durch EIA (Enzym-Immuno-Essay).
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 81

5 Mikrobiologie
Augenabstrich
s.u. Konjunktivalabstrich
Bacillus anthracis
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Abstriche aus Milzbrandkarbunkel, Bläschenflüssigkeit, Gewebebiopsie, Sputum, Stuhl, – je nach
Manifestationsort. Anzucht, Identifizierung und Resistenzbestimmung nur in Speziallaboratorien
möglich! (Sicherheitsstufe 3!). Vor Einsendung bitte telefonisch Rücksprache halten!
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Krankheitsbild: Anthrax (Milzbrand)
- Hautmilzbrand
- Lungenmilzbrand
- Darmmilzbrand
Im Verdachtsfall bitte telefonischen Kontakt aufnehmen.
Bacteroides forsythus
s.u. Kapitel Molekularbiologie: Parodontalkeime
Bacteroides sp.
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Obligat anaerob wachsende gramnegative Stäbchenbakterien. Wundinfektionen, Abszesse, intraabdominelle
Prozesse. Abstriche u. Gewebeproben jeglicher Lokalisation, Punktate, Eiter, Blutkulturen
usw.
Lagerung bei Raumtemperatur.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Zumeist treten die Bacteroidesarten vergesellschaftet mit anderen Erregern in Mischinfektionen auf.
Bilharziose
Synonym: Schistosomiasis
s.u. Schistosomen
82 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Biopsiematerial – Gewebeproben
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Keimidentifizierung
- Antibiogramm
Auf Anforderung:
- Kultur auf Sprosspilze
- Kultur auf Aktinomyceten
- Kultur auf Mykobakterien (W)
5 Mikrobiologie
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Kleinere Proben zum Schutz vor Sauerstoff und Austrocknung in Röhrchen mit Transportmedium
geben. Größere Gewebeproben in sterile physiolog. NaCl-Lösung (nicht in Formalin) überführen.
Lagerung bis zum Transport bei Raumtemperatur.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Siehe auch ” Magen-, Duodenalbiopsie“
Blasenkatheter
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Aerobe Kultur
- Keimidentifizierung
- Ggf. Antibiogramm
Auf Anforderung: Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Katheter in einem sterilen Gefäß einsenden. Ggf. bei Raumtemperatur lagern.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Urin ist dem Blasenkatheter vorzuziehen.
Blutkultur
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat (im pos. Fall)
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Keimidentifizierung
- Antibiogramm
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 83

5 Mikrobiologie
1. Vorbereiten der BacT/Alert Blutkulturflaschen
- Blutkulturflaschen auf Raumtemperatur bringen
- Plastikkappen entfernen
- Gummistopfen der Flasche desinfizieren
2. Patientenvorbereitung
- Hautpunktionsstelle desinfizieren (30s)
- Haut trocknen lassen
- Punktionsstelle danach nicht mehr berühren
3. Blutentnahme
- Blut aseptisch entnehmen (z.B. sterile Spritze etc.)
- Kanüle wechseln, um die Blutkulturflaschen zu beimpfen
- Immer mit der anaeroben Flasche beginnen
- Achtung: in der Blutkulturflasche besteht Unterdruck
- Maximal 10 ml einfüllen (Strichmarkierung auf dem Etikett der Flasche beachten)
- Ausnahme: BacT/Alert PF (Pädiatrie), hier maximal 4 ml
4. Lagerung und Transport
- Die Blutkulturflaschen unverzüglich ins Labor bringen.
Ist dieses nicht möglich, sollten die Blutkulturen bei Raumtemperatur aufbewahrt werden.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Typen der BacT/Alert Blutkulturflaschen beachten:
SA Standard aerobe Flasche
SN Standard anaerobe Flasche
PF Pädiatrische Flasche
FA aerobe Flasche unter laufender Antibiotikatherapie
FN anaerobe Flasche unter laufender Antibiotikatherapie
s.u. Allgemeine Transportgefäße
Bordetella pertussis
s.u. Nasopharyngealabstrich
Botulismus
s.u. Clostridium botulinum
Bronchialabsaugkatheter
s.u. Absaugkatheter
Bronchialsekret
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
84 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

5 Mikrobiologie
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Bronchoskopische Absaugung; evtl. vor der Abnahme eine geringe Menge steriler isotonischer
NaCl-Lösung (welche keine antibakteriellen Zusätze enthält) instillieren.
Lagerung bei 4°C.
s.u. Sputum
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Gegenüber Sputum und Trachealsekret ist die Kontaminationsgefahr vermindert, jedoch nicht ausgeschlossen.
Bei Lungen-Tbc bringt Bronchialsekret meist eine höhere Erregerausbeute als Sputum.
Bronchoalveoläre Lavage (BAL)
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung mittels Verdünnungsprobe:
- Grampräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Kultur auf Nonfermenter
- Kultur auf Sprosspilze und Schimmelpilze
Auf Anforderung:
- Kultur auf Mykobakterien (Dauer ca. 50 Tage)
- Nachweis von Pneumocystis jirovecii-DNA mittels PCR
- Nachweis von Legionellen-DNA mittels PCR (keine Kassenleistung!)
- Nachweis von Chlamydia pneumoniae-DNA mittels PCR
- Nachweis von Mycoplasma pneumoniae-DNA mittels PCR
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Nach bronchoskopischer Instillation von bis zu 160 ml isotonischer Kochsalzlösung wird -soweit
möglich- wieder aspiriert, wobei mindestens 50 ml Flüssigkeit wiedergewonnen werden sollten. Das
erste Aspirat muss verworfen werden, das zweite und ggf. nachfolgende Aspirate können im Labor
genutzt werden. Es sollte eine Kontamination mit Sekret aus dem Mund-Rachenraum vermieden
werden.
Lagerung bei 4°C
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
s.u. Kapitel Molekularbiologie
Bronchopulmonale Infektionen
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Sputum (kein Speichel), Tracheal- u. Bronchialsekret, Bronchiallavage, Lungenbiopsie, Pleurapunktat.
Weitlumige sterile Gefäße. Lagerung bis zum Transport bei 4°C.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 85

5 Mikrobiologie
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
Bursaabstrich/-punktat
s.u. Punktate
Campylobacter sp.
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Darmpathogener Erreger, akute Gastroenteritis, häufig mit blutig tingierten Durchfällen.
Da Campylobacterarten sehr kälteempfindlich sind, sollte der Transport möglichst schnell erfolgen.
s.u. Stuhldiagnostik
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Eine Differenzierung der verschiedenen nachstehenden Campylobacterspezies ist von epidemiologischer
Bedeutung.
Zu den klinisch bedeutsamen Spezies gehören:
- Campylobacter coli
- Campylobacter jejuni
- Campylobacter lari
Candida
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Kultur auf Sprosspilze
- Keimidentifizierung
Auf Anforderung: Antimykogramm
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Abstriche, Sputum, Urin, Punktate, Stuhl, Hautschuppen etc.
Bei allgemeinen bakteriologischen Untersuchungen bitte die Anforderung auf einen zusätzlichen
Pilznachweis immer ausdrücklich vermerken oder getrennt ein zweites Material gesondert einschicken!
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Falls ein Antimykogramm gewünscht wird (z.B. bei stark immunsupprimierten Patienten) bitte
gezielt anfordern!
86 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Cervixabstrich I Pathogene Keime
5 Mikrobiologie
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Kultur auf Gardnerella vaginalis, Mykoplasma hominis, Ureaplasma urealyticum und Sprosspilze
Auf Anforderung: Kultur auf N. gonorrhoeae (Gonokokken)
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Nach Spekulumeinstellung Cervix mit sterilem Tupfer trocken wischen. Dünnen Abstrichtupfer
ca. 1-2 cm in den Cervixkanal einführen. Materialgewinnung mit rotierender Bewegung. Tupfer in
Abstrichmedium stecken. Material bis zur Abholung bei 4°C aufbewahren.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
Cervixabstrich II Chlamydien/Gonokokken
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Nachweis von Chlamydia trachomatis-DNA mittels PCR
- Nachweis von Neisseria gonorrhoeae-DNA mittels PCR
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Entnahme des Abstrichs: S.u. Cervixabstrich
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
s.u. Kapitel Molekularbiologie
Chlamydia pneumoniae
s.u. Kapitel Molekularbiologie
Chlamydia trachomatis
s.u. Kapitel Molekularbiologie
Cholera
s.u. Vibrio cholerae
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 87

5 Mikrobiologie
Citrobacter sp.
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
s.u. Enterobacteriaceae
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Zu den häufig nachgewiesenen Spezies gehören:
- Citrobacter freundii
- Citrobacter brakii
- Citrobacter koseri
Clostridien
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Obligat anaerob wachsende, grampositive Stäbchenbakterien mit der Fähigkeit Sporen zu bilden.
Wundinfektionen, Eiterungen, Sepsis, Peritonitis u.a., zumeist als Mischinfektion mit anderen
aeroben und anaeroben Erregern.
s.u. Gasbrand
s.u. Clostridium difficile
s.u. Clostridium botulinum
s.u. Clostridium tetani
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Die Synthese und Freisetzung zahlreicher Toxine ist ein wesentlicher Pathogenitätsfaktor der
Clostridien. Einige Krankheitsbilder beruhen allein auf der schädigenden Toxinwirkung.
Clostridium botulinum (W)
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Obligat anaerob wachsende grampositive Stäbchenbakterien mit der Fähigkeit Sporen zu bilden.
Erreger des Botulismus (Lebensmittelvergiftung). Bei dieser Erkrankung handelt es sich nicht
um eine Infektion, sondern um eine Intoxikation des Nervensystems mit den Neurotoxinen von
Clostridium botulinum. Zum Nachweis des Bakteriums eignen sich nur Proben aus den vermeintlich
kontaminierten Speiseresten, Erbrochenem oder aus Mageninhalt. Lagerung bei Raumtemperatur.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Beweisend für den Botulismus ist neben den typischen klinischen Erscheinungsbildern nur der
Nachweis der Botulismustoxine.
Zum Toxinnachweis wird Patientenserum benötigt, dass im Tierversuch eingesetzt werden muss.
Deshalb wird diese Untersuchung nur in Speziallaboratorien durchgeführt. Im Verdachtsfall bitte
88 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

telefonischen Kontakt aufnehmen.
Clostridium difficile
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
5 Mikrobiologie
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Verdacht auf pseudomembranöse Kolitis nach längerer Antibiotikagabe. Frische Stuhlprobe, rascher
Transport, Material bis zur Abholung bei 4°C aufbewahren.
s.u. Stuhldiagnostik
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
- Antigen (GDH)-Nachweis
- Toxin-Nachweis durch EIA (Enzym-Immuno-Essay) = Kassenleistung
- Toxin-Nachweis mittels PCR
Bei Verdacht auf Ribotyp 027: Untersuchung auf Anforderung möglich. S.u. Kapitel Molekularbiologie
Clostridium histolyticum
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
s.u. Clostridien, s.u. Gasbrand
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
Clostridium novyi
s.u. Clostridien, s.u. Gasbrand
Clostridium perfringens
s.u. Clostridien, s.u. Gasbrand
Clostridium septicum
s.u. Clostridien, s.u. Gasbrand
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 89

5 Mikrobiologie
Clostridium tetani (W)
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Obligat anaerob wachsende grampositive Stäbchenbakterien mit der Fähigkeit Sporen zu bilden.
Erreger des Tetanus (Wundstarrkrampf). Bei dieser Erkrankung handelt es sich nicht um eine Infektion,
sondern um eine Intoxikation des Nervensystems mit den Neurotoxinen von Clostridium tetani.
Zum Nachweis eignen sich nur tiefe Gewebeproben aus dem Bereich der vermuteten Eintrittspforte.
Lagerung bei Raumtemperatur.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Beweisend für den Wundstarrkrampf ist neben den typischen klinischen Erscheinungsbildern nur
der Nachweis der Tetanustoxine (z.B. Tetanospasmin). Zum Toxinnachweis wird Patientenserum
benötigt, dass im Tierversuch eingesetzt werden muss. Deshalb wird diese Untersuchung nur in
Speziallaboratorien durchgeführt. Im Verdachtsfall bitte telefonischen Kontakt aufnehmen.
Coronaviren (W)
Hämorrhagische Enteritiden, s.u. Stuhldiagnostik
Corynebacterium diphtheriae
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Aerobe Kultur
- Keimidentifizierung
- Ggf. Antibiogramm
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Rachenabstrich (typisch sind pseudomembranöse, leicht blutende Beläge).
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Bei klinischem Verdacht sofortiger Therapiebeginn (Diphtherie-Antitoxin und Antibiotika)!
Corynebacterium sp.
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Keime der physiologischen Haut- und Schleimhautflora. Daher werden Corynebakterien meist als
Kontaminanten in Untersuchungsproben nachgewiesen. Befunde werden dementsprechend
begutachtet und kommentiert.
90 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

5 Mikrobiologie
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Selten von pathogener Bedeutung (z.B. bei katheter- oder implantatassoziierten Infektionen).
Dekubitus – Abstrich
s.u. Wundabstrich
Dermatomykosen
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Mikroskopie
- Kultur
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Haut-, Haar-, Nagelmykosen
Hautschuppen:
Oberflächliche Auflagerungen wie Krusten und abgestorbene Hautschuppen mit sterilem Skalpell
entfernen, darunter liegende Schichten mit 70%igem Ethylalkohol desinfizieren. Die abgeschabten
Hautschuppen in einem sterilen Gefäß einsenden.
Haare:
Mit Haarbalg einsenden, keine abgeschnittenen Haare.
Nagelspäne:
Nach gründlicher Reinigung mit 70 %igem Ethanol zunächst alle leicht ablösbaren bröckeligen Teile
entfernen, mit einem sterilen Skalpell aus den befallenen Arealen der Nagelplatte (Rand der Läsion)
ggf. unter Einbeziehung der tiefen Nagelpartien nahe dem Nagelbett ablösen.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Lange Bebrütungszeiten beachten! Ergebnisse u.U. erst nach 4 Wochen.
Diphtherie
s.u. Corynebacterium diphtheriae
Douglasabstrich/-punktat
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Zusätzliche Untersuchung:
- Kultur auf Gardnerella vaginalis
- Kultur auf Mycoplasma hominis/Ureaplasma urealyticum
- Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
s.u. Punktate
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 91

5 Mikrobiologie
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
Duodenalsaft
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchungen:
- Grampräparat
- Aerobe Kultur
- Keimidentifizierungen
- Anzucht von darmpathogenen Keimen (Salmonella, Shigella, Yersinia, Campylobacter)
- Ggf. Antibiogramm
Auf Anforderung:
- Nachweis von Lamblien (ELISA, Mikroskopie)
- Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Für die kulturelle Untersuchung auf Erreger Duodenalsaft in steriles Röhrchen geben. Da Lamblien-
Trophozoiten sehr empfindlich sind, muss die Untersuchung möglichst sofort nach Entnahme
durchgeführt werden.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Verdacht auf Giardiasis (Lamblien-Ruhr) bei negativen Stuhlbefunden.
Eiter
s.u. Abszessinhalt
Ejakulat
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat/Nativpräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Kultur auf Mykoplasma hominis/Ureaplasma urealyticum
- Keimidentifizierung
- Ggf. Antibiogramm
- Keimzahlbestimmung
Auf Anforderung:
- Nachweis von Chlamydia trachomatis-DNA mittels PCR
- Kultur auf Neisseria gonorrhoeae (Gonokokken) bzw. mittels PCR
- Kultur auf Gardnerella vaginalis
- Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Vor Materialgewinnung Reinigung der Harnröhrenmündung: S.u. Harnröhrenabstrich.
Ejakulat in einem sterilen Gefäß auffangen. Es sollte möglichst bald ins Labor gelangen, um eine
92 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

5 Mikrobiologie
stärkere Veränderung der Keimzahlen und ein Absterben empfindlicher Erreger zu verhindern.
Lagerung bei 4°C.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
s.u. Kapitel Molekularbiologie.
Ekzemabstrich
s.u. Hautabstrich
Entamoeba histolytica
s.u. Amöbiasis
Enterobacteriaceae
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Zu dieser Bakterienfamilie gehören zahlreiche gramnegative Stäbchenbakterien unterschiedlicher
Gattungen und Spezies. Im Darm sind sie meist physiologisch, an anderer Lokalisation häufig
fakultativ pathogen. Als Erreger werden sie vor allem bei folgenden Infektionen nachgewiesen:
Harnwegsinfekte, Wundinfektionen, Abszesse, Pneumonien, Sepsis.
Materialentnahme entsprechend der Infektlokalisation. Zum Nachweis darmpathogener Enterobacteriaceae
werden Stuhlproben untersucht (s.u. Stuhldiagnostik).
Lagerung der Probe je nach Material bei 4°C (z.B. Urin) oder Raumtemperatur (z.B. Blutkulturen).
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Häufig nachgewiesene Spezies aus der Familie der Enterobacteriaceae sind:
fakultativ pathogen
- Escherichia coli
- Klebsiella pneumoniae
- Klebsiella oxytoca
- Proteus mirabilis
- Proteus vulgaris
- Serratia marcescens
- Serratia liquefaciens
- Morganella morganii
- Citrobacter brakii
- Citrobacter koseri
- Citrobacter freundii
obligat pathogen (Gastroenteritiden)
Meldepflicht nach § 6 und 7 IfSG:
- Enteropathogene E.coli (EPEC u.a.)
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 93

5 Mikrobiologie
- Salmonellen
- Shigellen
- Yersinien
- Plesiomonas shigelloides
Vermehrt treten bei den Enterobacteriaceae Resistenzmechanismen auf. Eine Antibiotikatherapie
sollte möglichst nach Antibiogramm erfolgen.
Enterobius vermicularis
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Krankheitsbild: Oxyuriasis, Enterobiasis. S.u. Analabklatschpräparat
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
Enterococcus sp.
s.u. Enterokokken
Enterokokken
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Keimidentifizierung
- Ggf. Antibiogramm
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Keime der physiologischen Dünndarmflora. Enterokokken werden häufig als Kontaminanten in
Untersuchungsproben nachgewiesen. Besondere Bedeutung als möglicher Erreger einer bakteriellen
Endocarditis (Blutkulturdiagnostik/Untersuchungsmaterial von Herzklappen), sonst bei
intraabdominellen Prozessen, tiefen Wundinfektionen oder Harnwegsinfekten. Materialentnahme
entsprechend der Infektlokalisation. Lagerung der Probe je nach Material bei 4°C (z.B. Urin) oder
Raumtemperatur (z.B. Blutkulturen).
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Zu den klinisch relevanten Spezies gehören:
- Enterococcus faecalis
- Enterococcus faecium
- Enterococcus gallinarum
In der Regel weisen Enterokokken eine natürliche breite Antibiotikaresistenz auf (z.B. gegen
Cephalosporine).
Daher sollte eine Behandlung möglichst nach Antibiogramm erfolgen. Von besonderer Bedeutung
94 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

5 Mikrobiologie
sind Resistenzen gegen Glykopeptidantibiotika (Vancomycin/Teicoplanin), die als GRE oder VRE
bezeichnet werden und deren Nachweis besondere krankenhaushygienische Maßnahmen notwendig
machen.
Escherichia coli
s.u. Enterobacteriaceae
Fistelabstrich
s.u. Wundabstrich
Follikelabstrich
s.u. Wundabstrich
Furunkelabstrich
s.u. Wundabstrich
Gallensekret/-abstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Darmpathogene Keime (Salmonella, Shigella, Yersinia, Campylobacter)
- Ggf. Antibiogramm
Auf Anforderung: Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Unter aseptischen Bedingungen das Sekret abnehmen und schnellstmöglich ins Labor transportieren.
Lagerung bei 4°C.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Sekret ist dem Abstrich vorzuziehen.
Gasbrand
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Schwere Weichteilinfektion mit rasch fortschreitender Muskelnekrose und generalisierter Intoxikation.
Wundabstriche und nekrotisches Gewebe, Blutkulturen. Möglichst schneller Probentransport
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 95

5 Mikrobiologie
zur mikroskopischen Absicherung der Diagnose.
Lagerung bei Raumtemperatur.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Zu den klassischen Gasödemerregern gehören:
- Clostridium perfringens
- Clostridium novyi
- Clostridium septicum
- Clostridium histolyticum
Meist entwickelt sich der Gasbrand schnell zu einer lebensbedrohlichen Mischinfektion mit zahlreichen
aeroben und anaeroben Bakterien. Im Verdachtsfall bitte telefonischen Kontakt aufnehmen.
Gehörgangsabstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Aerobe Kultur
- Keimidentifizierung
- Ggf. Antibiogramm
Auf Anforderung: Kultur auf Sprosspilze/Schimmelpilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Nach Entfernung von Detritus und Krusten aus dem Gehörgang mittels angefeuchtetem Tupfer erfolgt
die Materialentnahme unter Sicht (Otoskop) von geröteten oder sekretbedeckten Bereichen; Tupfer,
in Abstrichmedium geben. Berührung unauffälliger Bereiche vermeiden. Bei trockenen Läsionen
Tupfer vorher mit steriler physiol. NaCl-Lösung anfeuchten oder (insbesondere bei Verdacht auf
Otomykose) Entnahme von einigen Hautschuppen mit einem sterilen Spatel.
Lagerung bei 4°C.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Bitte Diagnose angeben (Otitis externa bzw. Otitis media) – für Befundinterpretation wichtig!
Gelenkpunktat
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat/Nativpräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Keimidentifizierung
- Antibiogramm
- Hemmstofftest
Auf Anforderung:
- Zellzahlbestimmung nur aus EDTA-Röhrchen möglich (max. 2h nach Entnahme, da sonst Autolyse)
- Rhagozyten
- Verteilung von Lymphozyten und Granulozyten
96 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Probenentnahme und Transport: S.u. Punktate
5 Mikrobiologie
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Da häufig nur sehr wenige Erreger in den Punktaten enthalten sind, deren Vermehrung eines längeren
Zeitraums bedarf, werden Gelenkpunktate erst nach 10tägiger Bebrütung endgültig als negativ
befundet.
Genitalabstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Keimidentifizierung
- Ggf. Antibiogramm
Auf Anforderung:
- Kultur auf Sprosspilze
- Kultur auf Mykoplasma hominis/Ureaplasma urealyticum
- Kultur auf Neisseria gonorrhoeae (Gonokokken) bzw. mittels PCR
- Humanes Papilloma-Virus (HPV)-DNA-Nachweis im Abstrichmaterial mittels PCR
- Herpes simplex-Virus-DNA-Nachweis mittels PCR im Abstrichmaterial/Bläscheninhalt
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Der Abstrich sollte von makroskopisch verdächtigen Stellen mit einem sterilen Wattetupfer entnommen
und in Transportmedium eingesandt werden. Lagerung bei 4°C.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Siehe auch Kapitel Molekularbiologie.
Giardia lamblia
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Krankheitsbild: Lambliasis/Lamblienruhr
wässrige Diarrhöen, Malabsorptionssyndrom, Gewichtsverlust
Stuhlproben: Lagerung bei 4°C.
s.u. Stuhldiagnostik
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Parasitäre Erkrankung durch Protozoen. Mikroskopischer Nachweis der Trophozoiten ist nur in
frischem Stuhl möglich.
Sonst Untersuchung auf Lamblienzysten und Antigennachweis mittels ELISA aus dem Stuhl.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 97

5 Mikrobiologie
Gonokokken
s.u. Neisseria gonorrhoeae
GRE
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Glykopeptidresistente Enterokokken, s.u. Enterokokken. Untersuchung auf GRE ist grundsätzlich aus
allen bakteriologischen Untersuchungsproben möglich.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Bei Nachweis von GRE sind besondere krankenhaushygienische Maßnahmen zu beachten!
Harnröhrenabstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Keimdifferenzierung
- Ggf. Antibiogramm
- Kultur auf Mykoplasma hominis/Ureaplasma urealyticum
Auf Anforderung:
- Kultur auf Gardnerella vaginalis
- Kultur auf Sprosspilze
- Kultur auf Neisseria gonorrhoeae (Abstrich im Medium) bzw. Nachweis von N. gonorrhoeae-DNA
mittels PCR
- Nachweis von Chlamydia trachomatis-DNA mittels PCR
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Abstrich frühestens 3 Stunden nach der letzten Miktion abnehmen. Bereich um die
Harnröhrenmündung mit Wasser und Seife reinigen, gut abspülen und mit sterilem Tupfer abtrocknen.
Dünnen Abstrichtupfer ca. 2 cm einführen und drehen, dann in Transportmedium
(Abstrich-Röhrchen) überführen. Lagerung bei 4°C.
Chlamydien-Abstrich am besten nach den anderen Abstrichen abnehmen. Tupfer mindestens 2-3 cm
einführen und kräftig drehen, um zellhaltiges Material zu gewinnen, anschließend in Chlamydien-
Transportmedium geben (s.u. ” Cervixabstrich“ bzw. Molekularbiologie). Lagerung bei 4°C.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Entscheidend für den erfolgreichen Erregernachweis ist die Gewinnung einer ausreichend großen
Zellzahl, da Chlamydien sich obligat intrazellulär vermehren. Der Nachweis mittels PCR ist sinnvoll
bei anbehandelten Patienten. Siehe auch Kapitel Molekularbiologie.
98 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Hautabstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Keimidentifizierung
- Ggf. Antibiogramm
Auf Anforderung: Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Exzisionsmaterial besser als Abstrichmaterial geeignet.
5 Mikrobiologie
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Die Hautoberfläche ist überwiegend von Mikroorganismen der physiologischen Flora besiedelt.
Diese werden dann meist aus den Abstrichproben kultiviert, ohne von klinischer Bedeutung zu
sein. Daher ist eine Punktion/Exzision aus dem infektiologisch verdächtigen Hautbereich für die
mikrobiologische Diagnostik wesentlich sinnvoller.
Hautschuppen, Nagelspäne und Haare
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Mikroskopischer Nachweis von Pilzhyphen
- Kultureller Nachweis und Differenzierung von Hefen, Dermatophyten und Schimmelpilzen
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Verdächtige Hautstellen mit 70%igem Alkohol reinigen und Material (z.B. Hautschuppen) mit
Skalpell vom Rand des Herdes abkratzen. Nagel mit Alkohol reinigen, Teil des betroffenen Bereiches
abschneiden und Material von der Nagelunterseite mit Skalpell oder Nagelfeile gewinnen.
Haarstümpfe mit Pinzette herausziehen. Material in Papiertütchen oder trockenem Röhrchen sammeln.
Lagerung bei Raumtemperatur. S.u. Dermatomykosen
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
HUS
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Hämolytisch urämisches Syndrom. Erreger: EHEC (enterohämorrhagischer Escherichia coli).
s.u. Stuhldiagnostik
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 99

5 Mikrobiologie
Impetigoabstrich
s.u. Hautabstrich
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Wegen des Erregerspektrums wird hier nur eine aerobe Kultur angelegt.
Influenzavirus A und B
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
RNA-Nachweis mittels PCR (Rachenspülwasser oder Nasopharyngealabstrich)
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Die echte Virusgrippe (Influenza) ist, im Gegensatz zu den durch Parainfluenzaviren hervorgerufenen
” grippalen Infekten“ , eine hochkontagiöse und häufig schwer verlaufende, fieberhafte Infektion der
Atemwege. Nicht selten treten im Rahmen einer Generalisation weitreichende Komplikationen auf.
Zur Untersuchung eignen sich: Nasenspülflüssigkeit, Nasen- Rachenaspirat, Nasen- Rachenabstriche.
Materialien in steriler physiologischer NaCl-Lösung bzw. Tupfer im Transportmedium möglichst
schnell einsenden. Siehe auch Kapitel Molekularbiologie.
Lagerung bei 4-8°C.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Vor allem die Influenzaviren des Serotyps A führen in Westeuropa zu epidemischer bzw. pandemischer
Verbreitung. Durch sich verändernde Oberflächenantigene (Hämagglutinine und Neuraminidasen)
entstehen ständig neue Virustypen: Gemäß den STIKO (Ständige Impfkommission) – Empfehlungen
wird eine Influenza-Impfung z.B. für alle Patienten mit chronischen Erkrankungen, allen Menschen
ab dem 60.ten Lebensjahr sowie für alle in Praxen, Krankenhäusern und Laboratorien mit Patienten
in Kontakt stehenden Personen angeraten. Diese Impfung ist jährlich zu wiederholen, da die Zusammensetzung
des Impfstoffes den aktuellen Virusvarianten angepasst wird.
IUP
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Kultur auf Aktinomyceten
Auf Anforderung: Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Möglichst steril entnehmen und in einem sterilen Gefäß einsenden. Lagerung bei Raumtemperatur.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
100 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Katheterspitzen
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung: Aerobe Kultur
Auf Anforderung: Kultur auf Sprosspilze
5 Mikrobiologie
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Zunächst Alkohol-Desinfektion der Insertionsstelle. Ziehen des Katheters nach Verdunstung des
Alkohols. Ca. 5 cm des distalen Segmentes mit steriler Schere abschneiden, in steriles Röhrchen mit
Schraubverschluss geben. Ist der Transport nicht am selben Tag zu erwarten, sollte die Katheterspitze
zum Schutz vor Austrocknung in einem Transportmedium aufbewahrt werden.
Lagerung bei 4°C.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
Kieferhöhlenabstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Keimidentifizierung
- Ggf. Antibiogramm
Auf Anforderung: Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Möglichst steril abnehmen, d.h. unter Vermeidung von Kontaminationen mit der physiologischen
Flora und den Abstrichtupfer in einem sterilen Transportmedium einsenden.
Lagerung bei Raumtemperatur.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
Klebsiella oxytoca
s.u. Enterobacteriaceae
Klebsiella pneumoniae
s.u. Enterobacteriaceae
Kniegelenkspunktat
s.u. Punktate
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 101

5 Mikrobiologie
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Da häufig nur sehr wenige Erreger in den Punktaten enthalten sind, deren Vermehrung eines längeren
Zeitraums bedarf, werden Gelenkpunktate erst nach 10tägiger Bebrütung endgültig als negativ
befundet.
Konjunktivalabstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Keimdifferenzierung
- Ggf. Antibiogramm
Auf Anforderung:
- Kultur auf Sprosspilze
- Kultur auf Neisseria gonorrhoeae (Abstrich im Medium), bzw. PCR auf N. gonorrhoeae
- Kultur auf Mykoplasma hominis/Ureaplasma urealyticum bei Neugeborenen
- Nachweis von Chlamydia trachomatis-DNA mittels PCR
- Nachweis von Adenovirus-DNA mittels PCR (W)
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Antimikrobielle Augentropfen und Salben rechtzeitig absetzen. Materialgewinnung mit angefeuchtetem
Tupfer (sterile physiol. NaCl-Lösung) vor Anwendung von Lokalanästhetika. Abstrichtupfer
anschließend in Transportmedium geben.
Abstrichtupfer für Chlamydien mehrmals kräftig drehen, um zellhaltiges Material zu gewinnen.
Tupfer in Chlamydien-Transportmedium eintauchen, überstehendes Ende abschneiden, Röhrchen
verschließen und 1x kräftig schütteln. Bis zur Abholung im Kühlschrank aufbewahren (max. 24 h).
Gut geeignet sind auch Konjunktivalschabsel. Lagerung bei 4°C.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Die Untersuchung auf Chlamydien ist insbesondere sinnvoll, wenn der Verdacht auf eine
Neugeborenen- oder Schwimmbad-Konjunktivitis besteht. Siehe auch Kapitel Molekularbiologie.
Adenoviren sind Erreger der Keratoconjunktivitis epidemica.
Kryptosporidien-Antigen im Stuhl
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Der Nachweis von Cryptosporidium parvum-Antigen im Stuhl weist die Infektion mit Kryptosporidien
nach. Ein negativer Befund schließt die Infektion jedoch nicht aus. Die Infektion tritt gehäuft in
den Sommermonaten nach oraler Aufnahme von Oozysten (kontaminiertes Wasser) auf.
Stuhlprobe nicht in SAF-Röhrchen entnehmen (für diese Untersuchung nicht geeignet), Probe nach
Entnahme kühlen, Lagerung bei 4°C.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
102 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Lamblien
s.u. Giardia lamblia
Liquordiagnostik
5 Mikrobiologie
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat + Nativpräparat
- Antigen-Screening mittels Latexagglutinationstest auf Meningokokken, Haemophilus influenzae,
Pneumokokken, Streptokokken Gruppe B und E. coli K1
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Keimidentifizierung
- Ggf. Antibiogramm
- Hemmstofftest
Auf Anforderung:
- Kultur auf Sprosspilze
- Mykobakterien-Diagnostik: Mikroskopisches Präparat auf ” säurefeste Stäbchen“
- Kultureller Nachweis von Mykobakterien
- M. tuberculosis-DNA mittels PCR
- N. meningitidis-DNA mittels PCR (W)
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Sorgfältige Hautdesinfektion wie für Blutkulturen beschrieben. Nach Verdunstung des Alkohols
Lumbalpunktion mit sterilen Handschuhen. Auffangen des Liquors in 2 Kunststoffröhrchen mit
Schraubverschluss:
1. Für klinisch-chemische Untersuchungen (Zellzahl, Laktat, Zucker, Eiweiß etc.),
2. (Steril) für mikrobiologische Untersuchungen (für Bakteriennachweis mindestens 1-2 ml, für
Pilznachweise möglichst 5 ml). Die Röhrchen gut verschließen.
Die wichtigsten Meningitis-Erreger sind sehr empfindlich. Daher rechtzeitig einen Boten anfordern,
damit der Liquor sofort in einem Wärmebehälter in das Labor transportiert werden kann.
Den Liquor auf keinen Fall kühlen. Sofern ein unmittelbarer Transport ins Labor nicht möglich ist,
Lagerung eines Teiles des Materials bei 37°C. Den zweiten Teil des Liquors in eine vorgewärmte
aerobe Blutkulturflasche (BK-Flasche) spritzen und diese bei Raumtemperatur aufbewahren.
Bitte zusätzlich auch immer Nativ-Liquor mitschicken; er wird für das Grampräparat, Antigennachweise
und die Kultur benötigt. Für die Mykobakterien-Diagnostik bitte mindestens 5 ml einsenden
(nicht in einer BK-Flasche wegen zu starker Verdünnung).
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Bei Meningitis-Verdacht ist die zusätzliche Abnahme von Blutkulturen zu empfehlen, da nicht
selten der Erregernachweis nur über die Blutkultur gelingt. Bei Verdacht auf Pilzinfektion (z.B.
Kryptokokken-Meningitis bei AIDS-Patienten) bitte unbedingt entsprechenden Hinweis bei der
Einsendung angeben.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 103

5 Mikrobiologie
Listeria monocytogenes
s.u. Listerien
Listerien
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Vorkommen in Nahrungsmitteln, vorwiegend in Milchprodukten. Orale Aufnahme. In der Regel
nur bei immungeschwächten Personen, Erreger von Meningitis und Sepsis – vor allem schwere
Erkrankungen des Neugeborenen. Nachweis in Liquor und Blutkulturen.
Lagerung s.u. Liquordiagnostik/Blutkulturen.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Einzige für den Menschen pathogene Spezies ist Listeria monocytogenes. Neugeborenenlisteriose/sepsis:
Übertragung von Listerien diaplazentar möglich (Schwangerenlisteriose) oder Infektion des
Neugeborenen auf dem natürlichen Geburtsweg bei vaginaler Kolonisation mit Listerien. Deshalb vor
allem bei Risikoschwangerschaften Vaginalabstrich zum Ausschluss von Listerien einsenden.
Magenbiopsie (Antrum-, Pylorus-) Duodenalbiopsie
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung: Kultureller Nachweis von Helicobacter pylori und Antibiogramm (W)
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Biopsie in vorgekühltes Transportmedium (z.B. Abstrich-Röhrchen oder 1 ml sterile physiol.
NaCl-Lösung) einbringen. (Transportmedium bitte bei uns anfordern). Rascher, gekühlter Transport
zum Labor erforderlich, da die Biopsie innerhalb von 2 h nach Gewinnung weiterverarbeitet werden
muss.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
Magensaft
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Mikroskopisches Präparat auf ” säurefeste Stäbchen“
- Kultur auf Mykobakterien (Fest- und Flüssigkultur)
- Differenzierung von Mykobakterien
- Ggf. Resistenzbestimmung: Tuberkulose-Erreger (W), atypische Mykobakterien (U)
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Der Patient sollte nüchtern sein und die Entnahme morgens geschehen. Magensaft in Gefäße mit
gesättigter Natrium-Phosphatlösung füllen. (Versandgefäße für Magensaft bitte anfordern).
Lagerung bei 4°C.
104 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

5 Mikrobiologie
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Bei unproduktivem Husten bzw. geringer Erregerausscheidung kann die Untersuchung von Magensaft
zusätzlich zur Sputumuntersuchung die Nachweisrate erhöhen.
Malaria-Diagnostik
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Mikroskopischer Nachweis von Plasmodien im Blutausstrich und Dicken Tropfen
- Immunchromatographische Antigentestung mittels Schnelltest
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Für den Direktnachweis wird ein Röhrchen EDTA-Blut (2 ml) benötigt.
Da ein negativer Parasitennachweis eine bestehende Malaria nicht sicher ausschließt, sollten bei
bestehendem klinischem Verdacht weitere Proben in kurzen Abständen untersucht werden. Wegen
der vitalen Bedeutung der Malaria sollte der Transport und die Untersuchung noch am Abnahmetag
erfolgen.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Bei Fieber nach Aufenthalt in den Tropen und Subtropen sollte immer auch an Malaria gedacht
werden. Für die Diagnostik bei akut erkrankten Patienten ist nur der Direktnachweis von Plasmodien
geeignet, nicht jedoch die serologische Untersuchung, da Antikörper frühestens eine Woche nach
Krankheitsausbruch festgestellt werden können. Bei anbehandelten Patienten kann die Serologie
jedoch hilfreich sein.
Meningokokken
s.u. Neisseria meningitidis und Liquordiagnostik
Mikrosporidien (W)
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Synonym: Microspora
Im Tierreich weit verbreitete obligat intrazellulär lebende Parasiten (Protozoen).
Die Erreger führen vor allem bei schwer immunsupprimierten Patienten zu chronisch, wässrigen
Diarrhoen. Selten kann es auch zur Nieren- oder ZNS-Beteiligung kommen.
Stuhluntersuchung: S.u. Stuhldiagnostik
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Besonders häufig wird die Erkrankung bei AIDS-Patienten beobachtet.
Fluoreszenzmikroskopischer Nachweis
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 105

5 Mikrobiologie
Molekularbiologischer Nachweis
Milzbrand
s.u. Bacillus anthracis
Mittelohrsekret
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Ggf. Antibiogramm
- Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Aus dem Trommelfelldefekt austretendes Sekret mit Tupfer, besser Spritze aufnehmen, dabei
Berührung mit der Gehörgangswand vermeiden. Den Tupfer in ein Transportmedium stecken bzw.
Sekret in ein Abstrichmedium spritzen.
Falls kein Defekt vorhanden, Abstrich unter Sicht vom Tubenausgang im Nasopharynx (Kontaminationsgefahr).
Tympanozentese für diagnostische Zwecke nur bei Neugeborenen und chronischen oder
therapieresistenten Fällen erwägenswert. Lagerung bei 4°C.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
MRSA-Diagnostik
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Screening-Untersuchungen zur Ermittlung des Besiedlungsstatus bei Risikopatienten entsprechend
Risikoeinteilung mit selektivem bakteriologischen Verfahren:
- Kulturell (neg. Befund nach 24 h Verdacht auf MRSA nach 24 h)
- Selektive bakteriologische Untersuchung bei Verdacht auf Infektion mittels PCR (MRSA Schnelltest)
bei Ankunft bis 16 Uhr Befund i.d.R. am gleichen Tag
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Methicillin resistenter Staphylococcus aureus
Synonym: Oxacillin resistenter Staphylococcus aureus (ORSA)
Screening-Untersuchung:
- Nasenabstrich (Vestibulum nasi)
- Rachenabstrich
- Ggf. Wundabstrich o.ä.
Kultur: Abstriche mit angefeuchtetem Wattetupfer (sterile NaCl 0,9% Lsg.) mit Medium entnehmen.
PCR: Trockener Abstrich ohne Medium, zusätzlich Abstrich von der gleichen Stelle mit Medium, um
ggf. im positiven PCR Nachweis die Kultur mit Resistenzbestimmung anlegen zu können.
Lagerung bei Raumtemperatur.
106 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

5 Mikrobiologie
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Bei erstmaligem Nachweis ggf. mit Genotypisierung (spa-Typisierung), um bei Ausbrüchen epidemiologische
Zusammenhänge zu erkennen. Isolierung von mit MRSA infizierten/kolonisierten Patienten
entsprechend RKI – Vorgaben und nachfolgende Sanierung.
Siehe auch Kapitel Molekularbiologie.
Mundabstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Aerobe Kultur
- Ggf. Antibiogramm
- Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Lagerung bei 4°C.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
MPV (Humanes Metapneumovirus)
s.u. Kapitel Molekularbiologie
Nabelabstrich
s.u. Hautabstrich
Nasenabstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Aerobe Kultur
- Ggf. Antibiogramm
Auf Anforderung: Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Ein mit steriler physiol. NaCl-Lösung befeuchteter Tupfer wird etwa 1-2 cm in die Nasenlöcher
eingeführt und an der Mukosa gedreht. Lagerung bei 4°C.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Wegen mangelnder Spezifität ist eine allgemeine Kultur nur dann sinnvoll, wenn der Trägerstatus von
Staphylokokken, Pneumokokken, Meningokokken und Haemophilus untersucht werden soll bzw.
wenn nasale Läsionen vorliegen.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 107

5 Mikrobiologie
Nasennebenhöhlensekret
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Ggf. Antibiogramm
Auf Anforderung: Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Punktion der Nebenhöhlen und Aspiration von Sekret. Nebenhöhlen-Spülflüssigkeit ist häufig
durch Nasenflora kontaminiert, was die Bewertung erschwert. Falls schneller Transport ins Labor
möglich ist, Material in steriles Röhrchen mit Schraubverschluss geben. Andernfalls in bzw. auf ein
Abstrichmedium spritzen und bis zum Transport bei 4°C lagern.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
Nasopharyngealabstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung: Nachweis von Bordetella pertussis-DNA mittels PCR
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Nasopharyngealabstrich im Abstrich ohne Medium, ggf. in Röhrchen mit 1-2 ml physiol. NaCl-
Lösung.
Lagerung bis zum Versand bei 4°C.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Siehe auch Kapitel Molekularbiologie
Neisseria gonorrhoeae
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Erreger der Gonorrhoe (Tripper). Genital-, Urethralabstriche, Eiter.
Sofortiger Probenversand, da die Keime sehr temperaturempfindlich sind.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Kulturell (Abstrich im Medium). Siehe auch Kapitel Molekularbiologie.
Neisseria meningitidis
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
108 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

5 Mikrobiologie
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Erreger der Meningokokkenmeningitis und Sepsis. Untersuchungsmaterial: Liquor/Blutkulturen
sofortiger Probenversand, da die Keime sehr temperaturempfindlich sind.
Lagerung: S.u. Liquordiagnostik
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Es existieren verschiedene Serogruppen von Neisseria meningitidis (A, B, C, W und Y), die weltweit
in unterschiedlicher Häufung anzutreffen sind. Aus epidemiologischen Gründen wird grundsätzlich
von kulturell nachgewiesenen Erregern eine Serotypisierung durchgeführt.
Nonfermenter (Oxidase positive gramnegative Stäbchen)
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Zu dieser Bakteriengruppe gehören zahlreiche Arten, die in der Umwelt eine äußerst wichtige Rolle
spielen, aber auch als Erreger nosokomialer Infektionen bedeutsam sein können. Lagerung der Probe
je nach Material bei 4°C (z.B. Urin) oder Raumtemperatur (z.B. Blutkulturen).
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Kulturell (Selektivmedien). Klinisch häufige Nonfermenter: Pseudomonas, Chryseomonas, Flavibacterium,
Achromobacter, Ralstonia.
Noroviren
s.u. Kapitel Molekularbiologie
Oxyuriasis
s.u. Analabklatschpräparat
Panaritium
s.u. Wundabstrich
Parainfluenzae-Virus
s.u. Kapitel Molekularbiologie
Parodontalkeime
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 109

5 Mikrobiologie
Gruppe von Bakterien, die einzeln oder in wechselnder Gemeinschaft als pathogener Erreger im
Rahmen der Parodontoseentstehung einzustufen sind.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Molekularbiologischer Nachweis im Rahmen der Parodontose-Diagnostik und Therapie.
Siehe Kapitel Molekularbiologie.
Pasteurella sp.
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Natürliches Vorkommen auf den Schleimhäuten verschiedener Haus- und Wildtiere. Bedeutendste
humanpathogene Spezies: Pasteurella multocida. Wundinfektionen nach Biss- oder Kratzverletzungen.
Wundabstriche, Wundgewebe, ggf. Blutkulturen. Lagerung bei Raumtemperatur.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Bei immunsupprimierten Patienten auch respiratorische Infekte und septische Verläufe möglich.
Penisabstrich
s.u. Genitalabstrich
Plesiomonas shigelloides
s.u. Nonfermenter
Pleurapunktat
s.u. Punktate
Pneumokokken
s.u. Streptococcus pneumoniae
Porphyromonas gingivalis
s.u. Kapitel Molekularbiologie: Parodontalkeime
110 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Prevotella intermedia
s.u. Kapitel Molekularbiologie: Parodontalkeime
Proglottide
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
5 Mikrobiologie
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Teil eines Bandwurmes, der bei Befall makroskopisch sichtbar mit dem Stuhl ausgeschieden wird.
Stuhluntersuchung: S. u. Stuhldiagnostik
Lagerung bei Raumtemperatur.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Zur Differenzierung der Bandwürmer ist es notwendig solche Proglottiden aufzunehmen und
einzuschicken.
Propionibacterium sp.
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Anaerob wachsende, grampositive, verzweigte Stäbchenbakterien, meist aus den Talgdrüsen der
Haut hervorgehend. Keime der physiologischen Haut- und Schleimhautflora. Daher werden Propionibakterien
meist als Kontaminanten in Untersuchungsproben nachgewiesen. Befunde werden
dementsprechend begutachtet und kommentiert.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Selten von pathogener Bedeutung (z.B. bei katheter- oder implantatassoziierten Infektionen).
Proteus sp.
s.u. Enterobacteriaceae
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Klinisch häufig nachgewiesene Spezies:
- Proteus mirabilis
- Proteus vulgaris
- Proteus penneri
Prostatapunktat
s.u. Punktate
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 111

5 Mikrobiologie
Pseudomenbranöse Kolitis
s.u. Clostridium difficile
Pseudomonas sp.
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Bakterien aus der Familie der Pseudomonaceae, die ubiquitär in der Umwelt vorkommen und ein
feuchtes Milieu bevorzugen (Feuchtraumkeime). Erreger von Wund- und Harnwegsinfektionen,
Pneumonie, Peritonitis, Sepsis usw. Materialentnahme entsprechend der Infektlokalisation. Lagerung
der Probe je nach Material bei 4°C (z.B. Urin) oder Raumtemperatur (z.B. Blutkulturen).
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Die medizinisch bedeutsamste Spezies ist Pseudomonas aeruginosa.
Weitere häufig vorkommende Arten sind:
- Pseudomonas putida
- Pseudomonas fluorescens u.a.
Da Pseudomonaden sehr schnell Resistenzen entwickeln, sollte eine Antibiotikatherapie möglichst
nur nach Antibiogramm erfolgen und in Abhängigkeit von der Schwere der Infektion mit einer Kombination
aus mindestens zwei, der als sensibel getesteten Antibiotika verschiedener Substanzklassen
durchgeführt werden (z.B. Ceftazidim + Aminoglykosid oder Chinolon + Aminoglykosid).
Punktate aus physiologisch sterilen Körperhöhlen wie Pleura, Aszites
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat/Nativpräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Keimidentifizierung
- Ggf. Antibiogramm
- Bei V.a. Peritonitis: Kultur auf darmpathogene Keime (Salmonalla, Shigella, Yersinia, Campylobacter)
- Hemmstofftest
Auf Anforderung:
- Kultur auf Sprosspilze
- Mikroskopisches Präparat auf ” säurefeste Stäbchen“
- Kultur auf Mykobakterien
- Differenzierung und Resistenz-Bestimmung von Tuberkulose-Erregern (W), atypischen Mykobakterien
(U)
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Für die perkutane Probengewinnung wird die Punktionsregion mit alkoholischem Hautdesinfektionsmittel
zweifach gereinigt und desinfiziert. Die Einwirkzeit von jeweils mind. 1 Minute ist
dabei einzuhalten. Sofern ein sofortiger Transport zum Labor möglich ist, kann das Material in ein
112 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

5 Mikrobiologie
Abstrichmedium injiziert werden. Andernfalls sollte ein Teil des Punktats unter sterilen Kautelen in
eine aerobe und eine anaerobe Blutkulturflasche gespritzt werden; bitte zusätzlich aber immer natives
Punktat einschicken (für das Grampräparat). Blutkulturflasche, wenn möglich, in den Brutschrank
stellen, sonst, wie auch das Abstrichmedium bei Raumtemperatur aufbewahren.
Für die Mykobakterien-Diagnostik möglichst 10 ml Flüssigkeit einsenden (im sterilen Röhrchen mit
Schraubverschluss; bitte nicht in einer Blutkulturflasche).
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Für die mikroskopische Untersuchung von Flüssigkeiten aus Pleura-, Peritoneal – und anderen
Körperhöhlen ist die Einhaltung streng aseptischer Bedingungen bei der Entnahme zu beachten, um
eine Kontamination des Punktates, aber auch eine Keimeinschleppung in die Räume zu verhindern.
Das Einsenden eines Punktates ist dem eines Abstriches vorzuziehen. Da in einigen Punktaten
(z.B. Gelenkpunktate) häufig nur sehr wenige Erreger enthalten sind, deren Anzucht eines längeren
Zeitraums bedarf, werden solche Untersuchungsmaterialien erst nach 10tägiger Bebrütung endgültig
als negativ befundet.
Rachenabstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Aerobe Kultur
- Keimidentifizierung
- Ggf. Antibiogramm
Bei Anforderung ” hämolysierende Streptokokken“ oder ” Scharlach“ erfolgt nur die Kultur auf
ß-hämolysierende Streptokokken
Auf Anforderung: Kultur auf Gonokokken, Kultur auf Meningokokken, Corynebacterium diphtheriae,
Kultur auf Sprosspilze, mikrosk. Angina Plaut-Vincenti
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Zunge mit Spatel herunterdrücken. Abstrich aus entzündeten oder mit Sekret bedeckten Stellen
der Tonsillen, des Gaumenbogens oder der hinteren Rachenwand entnehmen. In Tonsillarkrypten
Material unter Drehen entnehmen. Membranöse Beläge stets anheben und von der Unterseite Material
entnehmen. Tupfer anschließend in Transportmedium geben.
Lagerung bei Raumtemperatur.
Wegen der Empfindlichkeit der Neisserien ist der umgehende Transport des in Medium gegebenen
Tupfers erforderlich.
Pseudo-Membranen bei Diphtherie vorsichtig abheben. Material von der Unterseite und/oder vom
Grund der Läsion mit Tupfer entnehmen. Zusätzlich Abstriche von Nasopharyngealraum, tiefer
Nasenhöhle und von entzündeten Stellen entnehmen. Wegen der Bedeutung der Erkrankung umgehender
Transport ins Labor erforderlich.
Orale Candidose, häufig bei immunsupprimierten Patienten.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Verdacht auf Pharynx-GO. Meningokokkenkeimträger. Bei AIDS-Patienten mit oraler Candidose
sollte auch an das mögliche Vorliegen eines Ösophagusbefalls gedacht werden.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 113

5 Mikrobiologie
Redonspitzen
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Aerobe Kultur
- Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Transport in sterilem Röhrchen mit Schraubverschluss. Bei Lagerung bis zu 24 h Material in
Transportmedium geben und bei 4°C aufbewahren.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Wertvolleres Material ist der Inhalt von Redonflaschen und/oder Drainageschläuchen.
Rektalabstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Aerobe Kultur
- Kultur auf darmpathogene Keime (Salmonella, Shigella, Yersinia, Campylobacter)
- Ggf. Antibiogramm
Auf Anforderung:
- Kultur auf Sprosspilze
- Kultur auf N. gonorrhoeae (Abstrich im Medium)
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Wegen der Empfindlichkeit von Shigellen Material möglichst umgehend zum Labor schicken,
alternativ bei Raumtemperatur lagern. Tupfer nach Abstrich der Läsion in Transportmedium geben
und umgehend ins Labor schicken. Falls das nicht möglich ist, Lagerung bei Raumtemperatur.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Bei Verdacht auf bakterielle Ruhr oder wenn Gewinnung einer Stuhlprobe nicht möglich ist. Proktitis
und Proktokolitis z.B. bei homosexuellen Männern.
RS-Virus (respiratorisch, sekretorisch)
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Antigen- Nachweis (Rachenspülflüssigkeit), Nachweis von RSV-RNA mittels PCR.
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Probentransport möglichst gekühlt (ca. + 2°C – + 8°C). Siehe auch Kapitel Molekularbiologie.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Kindliche Atemwegsinfektionen, atypische Pneumonien (Säuglinge, auch Kinder und Erwachsene),
Bronchiolitis, Krupp.
114 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Ruhr
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Erkrankung durch darmpathogene Erreger (Shigellen/Amöben/Lamblien)
s.u. Enterobacteriaceae (bakterielle Ruhr)
s.u. Amöbiasis (Amöbenruhr)
s.u. Giardia lamblia (Lamblienruhr)
s.u. Stuhldiagnostik
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
Salmonella sp.
s.u. Enterobacteriaceae und Stuhldiagnostik
Salmonella typhi/paratyphi
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
5 Mikrobiologie
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Erreger des Typhus. Im Gegensatz zu den in der Regel mild verlaufenden Salmonellenenteritiden
handelt es sich beim Typhus um eine schwere Allgemeininfektion mit teilweise septischem
Krankheitsverlauf.
Stuhlproben, Blutkulturen. Lagerung bei 4°C (Stuhl) Lagerung bei Raumtemperatur (Blutkulturen).
s.u. Stuhldiagnostik
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Typhus kommt in Ländern mit hohem Hygienestandard (Westeuropa/Nordamerika usw.) ausgesprochen
selten vor. Zumeist wird die Erkrankung von Fernreisenden mitgebracht (Reiseanamnese).
Im Verdachtsfall bitte telefonischen Kontakt aufnehmen.
Schistosomen
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Krankheitsbild: Schistosomiasis (Synonym: Bilharziose), Erreger:
- Schistosoma haematobium (Blasenbilharziose)
- Schistosoma mansoni (Darmbilharziose)
- Schistosoma japonicum (asiatische Darmbilharziose)
Nachweis der Eier im Urin und/oder Stuhl. S.u. Stuhldiagnostik, s.u. Urin-Diagnostik III, Parasiten.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Die Schistosomen gehören zur Gruppe der Trematoden (Saugwürmer). Sie durchlaufen einen
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 115

5 Mikrobiologie
komplexen Entwicklungszyklus wobei Süßwasserschnecken als Zwischenwirt und der Mensch
als Endwirt fungiert. Durch die Eier dieser Parasiten werden starke Entzündungsprozesse in der
Blasenwand oder im Bereich der Darmschleimhaut ausgelöst, die auch zu Hämaturie, Leukozyturie
und blutig schleimigen Diarrhoen führen.
Weltweit endemische Verbreitung in tropischen und subtropischen Regionen.
Shigella sp.
s.u. Enterobacteriaceae und Stuhldiagnostik
Serratia sp.
s.u. Enterobacteriaceae
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Klinisch häufig nachgewiesene Spezies:
- Serratia marcescens
- Serratia liquefaciens
Sputum I
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Aerobe Kultur
- Ggf. Antibiogramm
- Kultur auf Sprosspilze
Auf Anforderung:
- Kultur auf Legionellen
- Kultur auf Nonfermenter
- Chlamydia pneumoniae-DNA mittels PCR
- Nachweis von Legionellen-DNA mittels PCR (Igelleistung!)
- Nachweis von Mycoplasma pneumoniae-DNA mittels PCR
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Ggf. Prothesen entfernen. Kurz vor der Expektoration Mund mehrmals gründlich mit frischem
Leitungswasser spülen (kein Mundwasser verwenden!).
Gründlich in ein Sputum-Röhrchen abhusten (30 ml Kunststoffröhrchen mit Schraubverschluss).
Bei erfolgloser Expektoration Provokation durch Inhalation von erwärmtem hypertonen Aerosol (z.B.
wässrige Lösung von 10% Glycerin und 15% NaCl) oder Gabe von Mukolytika. Der Patient muss
darüber aufgeklärt werden, dass Sputum kein Speichel ist. Das Sputum sollte bis zur Abholung im
Kühlschrank aufbewahrt werden, um eine Überwucherung durch Keime der Mundflora zu vermeiden
(jedoch nicht länger als 24 h, da empfindliche Keime sonst absterben).
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
116 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

5 Mikrobiologie
Am besten geeignet ist das erste Morgensputum. Bei Pneumonie sollte auch an die Entnahme von
Blutkulturen gedacht werden. Insbesondere bei Pneumokokken-Pneumonie erhöht sich dadurch die
Nachweiswahrscheinlichkeit erheblich. Atypische Pneumonie möglich. Die PCR-Untersuchungen
aus BAL sind denen aus Sputum vorzuziehen. Siehe auch Kapitel Molekularbiologie.
Sputum II Nachweis von Mykobakterien
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Mikroskopische Untersuchung auf säurefeste Stäbchen
- Anzüchtung mit drei verschiedenen Tb-Medien
- Differenzierung und Resistenzbestimmung von Tuberkulose-Erregern (W), atypischen Mykobakterien
(U)
Auf Anforderung: Nachweis von Mycobacterium tuberculosis-DNA mittels PCR
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Probengewinnung: S.u. ” Sputum I“ .
Wegen der Gefahr der Überwucherung mit Keimen der Mundflora sollte kein Sammelsputum
eingeschickt werden. Besser ist die getrennte Untersuchung und Versendung von mindestens 3, zu
unterschiedlichen Zeiten abgehusteten, nicht zu kleinen Einzelportionen. Lagerung bis zum Transport
im Kühlschrank bei 4°C. Bei erfolgloser Expektoration Provokation von Sputum.
Siehe auch Kapitel Molekularbiologie.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Geeignet ist nur Material aus den tiefen Luftwegen. Evtl. zusätzlich Untersuchung von Magensaft.
Bronchialsekret bringt meistens eine höhere Erregerausbeute als Sputum.
Für die komplexe Diagnostik der Mycobacteriaceae sind Mindest-Probenvolumina unbedingt zu
beachten:
Sputum (2-10 ml), Bronchialsekret (2-5 ml), BAL (10-30 ml), Pleurapunktat (10-30 ml), Magennüchternsekret
(20-30 ml), Urin (10 ml), Liquor (5 ml). Für eine PCR-Anforderung aus Liquor
werden zusätzlich 2-5 ml benötigt!
Staphylococcus aureus
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Häufigster Erreger eitrig abszedierender Infektionen. Abstriche u. Gewebeproben jeglicher Lokalisation,
Punktate, Eiter, Katheter, Blutkulturen usw. Lagerung bei Raumtemperatur.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Zur Unterscheidung von Staphylococcus aureus (Koagulase positiv) und anderen Koagulase negativen
Staphylokokken dient u.a. das Enzym Plasmakoagulase.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 117

5 Mikrobiologie
Staphylokokken (Koagulase negativ)
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Keime der physiologischen Haut- und Schleimhautflora, daher werden Koagulase negative Staphylokokken
meist als Kontaminanten in Untersuchungsproben nachgewiesen.
Befunde werden dementsprechend begutachtet und kommentiert.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Selten von pathogener Bedeutung (z.B. bei katheter- oder implantatassoziierten Infektionen, tiefe
Wundprozesse).
Stenotrophomonas maltophilia
Frühere Bezeichnung: Pseudomonas maltophilia. s.u. Pseudomonas sp.
Streptococcus agalactiae
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Synonym: Beta-hämolysierende Streptokokken der Gruppe B
Wundinfektionen, Genital- und Harnwegsinfektionen, Sepsis – vor allem Neugeborenensepsis
(early-onset/late-onset-Syndrom). Abstriche, Punktate, Gewebeproben, Urin, Blutkulturen. Materialentnahme
entsprechend der Infektlokalisation. Lagerung der Probe je nach Material bei 4°C (z.B.
Urin) oder Raumtemperatur (z.B. Blutkulturen).
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Auf Grund des Risikos einer Neugeborenensepsis sind vor allem bei Risikoschwangerschaften
pränatale Vaginalabstriche zum Nachweis von Streptococcus agalactiae angezeigt.
Streptococcus pneumoniae
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Grampositive Diplokokken aus der Familie der Streptococcaceae. Erreger von bronchopulmonalen
Infekten, schwerer Pneumonie, Sinusitiden, Otitis media, Meningitis und Sepsis. Materialentnahme
entsprechend der Infektlokalisation. Lagerung bei Raumtemperatur.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Gemäß den STIKO (Ständige Impfkommission) – Empfehlungen wird eine Pneumokokken-Impfung
z.B. für alle Patienten mit chronischen Erkrankungen, allen Menschen ab dem 60.ten Lebensjahr
sowie für alle in Praxen, Krankenhäusern und Laboratorien mit Patienten in Kontakt stehenden
118 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Personen angeraten.
Streptococcus pyogenes
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
5 Mikrobiologie
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Synonym: Beta-hämolysierende Streptokokken der Gruppe A. Erreger von Infektionen unterschiedlichster
Ätiologie: Tonsillitis (Scharlach), Pharyngitis, Sinusitiden, Otitis media, Phlegmone,
Wundinfektionen, Sepsis, Fasciitis necroticans. Abstriche, Gewebeproben, Punktate, Blutkulturen.
Lagerung bei Raumtemperatur.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Vor allem bei der Fasciitis necroticans handelt es sich meist um sehr virulente Stämme. Differentialdiagnostisch
ist diese Erkrankung vom klinisch ähnlich imponierenden Gasbrand am schnellsten nur
durch ein mikroskopisches Präparat abzugrenzen.
Stuhldiagnostik
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Eine mindestens haselnußgroße Menge einsenden. Blutige, schleimige oder eitrige Anteile sollten
bevorzugt entnommen werden. Sind zusätzlich parasitologische oder Nachweise mittels ELISA/PCR
vorgesehen sollte das Stuhlgefäß zur Hälfte gefüllt sein. Die Transportzeiten sollten grundsätzlich so
kurz wie möglich gehalten werden.
Bemerkungen, Besondere Hinweise: Für weitere Informationen siehe Kapitel Stuhldiagnostik.
Tonsillenabstrich
s.u. Rachenabstrich
Trachealsekret
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung: S.u. ” Sputum“
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Trachealkanüle bzw. -tubus wechseln; sterilen Katheter einführen, aspiriertes Sekret in steriles
Röhrchen mit Schraubdeckelverschluss übertragen (Gefahr der Aerosolbildung beim Öffnen von
Röhrchen mit Steckverschluss).
Lagerung und Transport bei Raumtemperatur.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 119

5 Mikrobiologie
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Trachealsekret ist häufig kontaminiert durch Mundflora. Befunde werden dementsprechend kommentiert.
Leukozyten im Grampräparat müssen nicht unbedingt auf eine Infektion hinweisen, da auch der
mechanische Reiz durch den Tubus eine Entzündungsreaktion hervorrufen kann.
Treponema denticola
s.u. Kapitel Molekularbiologie: Parodontalkeime
Tuberkulose
s.u. Sputum II/Urin-Diagnostik II Nachweis von Mykobakterien
Tubusspitze
s.u. Absaugkatheter
Typhus
s.u. Salmonella typhi/paratyphi
Ulcusabstrich
s.u. Wundabstrich
Urin-Diagnostik I ” Urinkultur“
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Aerobe Kultur
- Keimzahlbestimmung
- Hemmstofftest
- Ggf. Antibiogramm
- Urinstatus im amb. Bereich (im stat. Bereich auf Anforderung)
Auf Anforderung: Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Ca. 5-10 ml Urin im sterilen Kunststoffröhrchen mit Schraubverschluss versenden.
Da Bakterien sich bei Zimmertemperatur gut vermehren, muss der Urin bis zum Transport ins Labor
im Kühlschrank aufbewahrt werden (nicht länger als 24 h). Ist dies nicht möglich, sollte für die
Keimzahlbestimmung zusätzlich ein Eintauchnährboden verwendet werden (z.B. MD-Dip-M; bitte
Anleitung beachten).
120 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

5 Mikrobiologie
Mittelstrahlurin-Gewinnung:
Bei der Frau: Sorgfältige Reinigung der äußeren Genitalien mit milder Seife, gründliches nachspülen
mit klarem Wasser. Nach Spreizen der Labien Umgebung der Urethramündung mit einem in 0,9%
NaCl oder in Wasser getränkten Tupfer von vorn nach hinten abwischen und mit 2. Tupfer trockentupfen.
Einen 3. Tupfer in den Introitus vaginae einlegen, um eine Kontamination durch Vaginalsekret
zu verhindern. Labien weiter gespreizt halten und etwa die Hälfte der Blasenfüllung ins WC ablaufen
lassen, dann -ohne den Harnstrahl zu unterbrechen- Urin im sterilen 100 ml Urinbecher auffangen;
die letzte Portion wieder ins WC ablaufen lassen.
Urin aus dem Becher in ein steriles Kunststoffröhrchen umfüllen, ohne den Rand zu berühren und
dieses dann verschrauben.
Beim Mann: Nach sorgfältigem Händewaschen Vorhaut vollständig zurückziehen, Glans penis
mit einem Tupfer und Wasser reinigen, dann mit einem zweiten Tupfer trocknen. Uringewinnung wie
oben beschrieben.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Morgenurin ist zur bakteriologischen Untersuchung am besten geeignet, da hier die Bakterienzahlen
am höchsten sind, der Abstand zur letzten Miktion sollte mindestens 3 h betragen.
Angabe des Entnahmedatums und der Art der Uringewinnung (Mittelstrahlurin, Dauerkatheter etc.)
auf dem Schein erleichtert die Beurteilung.
Bei einwandfreier Gewinnung ist Mittelstrahlurin in der Regel ausreichend. Urinentnahme mittels
Einmal-Katheterisierung ist nur angezeigt, wenn eine einwandfreie Gewinnung von Mittelstrahlurin
nicht möglich ist (Gefahr der Keimeinschleppung).
Bei Dauerkatheter-Trägern darf der Urin nicht aus dem Beutel entnommen werden, sondern muss
durch Punktion des proximalen Abschnitts des Katheters nach Desinfektion der Einstichstelle
gewonnen werden.
Blasenpunktionsurin
Einzige Möglichkeit der Gewinnung einer kontaminationsfreien Urinprobe. Indiziert zur Abklärung
fraglicher Befunde und evtl. bei Kleinkindern.
Für die Befundinterpretation ist die genaue Bezeichnung der Abnahme wichtig.
Urin-Diagnostik II Nachweis von Mykobakterien
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Mikroskopisches Präparat auf ” säurefeste Stäbchen“
- Anzüchtung mit drei verschiedenen Tb-Medien
- Differenzierung
- Ggf. Resistenzbestimmung von Tuberkulose-Erregern (W), atypischen Mykobakterien (U)
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Am besten geeignet ist frischer, sauber gewonnener Mittelstrahl-Morgenurin; Sammelurin ist
wegen der Überwucherung durch andere Bakterien nicht geeignet. Größere Ausbeute wird durch
Untersuchung von 3 Proben von verschiedenen Tagen (jeweils 50-100 ml im sterilen Becher mit
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 121

5 Mikrobiologie
Schraubverschluss) sowie durch Einschränkung der Flüssigkeitszufuhr am Abend vor der Entnahme
erreicht.
Lagerung maximal 24 h bei 4°C.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Für die komplexe Diagnostik der Mycobacteriaceae sind Mindest-Probenvolumina unbedingt zu
beachten:
Sputum (2-10 ml), Bronchialsekret (2-5 ml), BAL (10-30 ml), Pleurapunktat (10-30 ml), Magennüchternsekret
(20-30 ml), Urin (10 ml), Liquor (5 ml). Für eine PCR-Anforderung aus Liquor
werden zusätzlich 2-5 ml benötigt!
Urin-Diagnostik III Parasiten
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Schistosomen-Eier (meist S. haematobium): Mikroskopischer Nachweis der Parasiteneier nach
Zentrifugation, Anreicherung mit SAF
- Trichomonaden: Mikroskopischer Nachweis der Trophozoiten
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Die jeweils letzten Urinportionen sollten von 10-14 Uhr gesammelt werden (maximale Eiausscheidung).
Bei negativem Einachweis ggf. mehrfache Wiederholung der Untersuchung empfehlenswert. Da
der Direktnachweis der sehr fragilen Trichomonaden aus dem Urin vitale Organismen erfordert,
empfiehlt sich die Materialgewinnung (erste Urinportion) im Labor.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Nach mehreren negativen Urin-Untersuchungen ist bei weiterbestehendem Verdacht eine Zystoskopie
mit gezielter Biopsie von Blasenwandläsionen indiziert.
Urin-Diagnostik IV weitere Untersuchungen
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Erythrozytenmorphologie: Bestimmung des quantitativen Anteils glomerulär dysmorpher Erythrozyten
bei Mikrohämaturie, Akanthozyten
- Urinsediment/Urinstatus
- Legionellen-Antigen-Nachweis (N)
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
5-10 ml sauber gewonnener, frischer Mittelstrahlurin, Morgenurin nicht älter als 2 Stunden. KEIN
Sammelurin!!!
Bei längerem Stehen gehen Leukozyten zugrunde, es kommt zu einer Vermehrung der Bakterien und
zu einer pH-Verschiebung.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
122 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Vaginalabstrich
5 Mikrobiologie
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Kultur auf Gardnerella vaginalis, Mycoplasma hominis, Ureaplasma urealyticum und Sprosspilze
Auf Anforderung:
- Kultur auf N. gonorrhoeae (Abstrich im Medium)
- Nachweis von N. gonorrhoeae-DNA mittels PCR
- Nachweis von Chlamydia trachomatis-DNA mittels PCR
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Entnahme von Sekret unter Sicht unter Verwendung eines Spekulums (ohne Gleitmittel, da diese
antibakterielle Substanzen enthalten können). Tupfer in Transportmedium stecken. Material kann bis
zur Abholung bei 4°C aufbewahrt werden.
s.u. Streptococcus agalactiae, s.u. Listeria monocytogenes, s.u. Kapitel Molekularbiologie.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Siehe auch Kapitel Molekularbiologie
Venenkatheter/Zentraler Venenkatheter
s.u. Katheterspitzen
Vergrünende Streptokokken
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Alpha-hämolysierende Streptokokken verschiedenster Spezies sind physiologische Besiedler der
menschlichen Haut- und Schleimhäute. Nur selten treten sie als Infektionserreger in Erscheinung.
Daher werden vergrünende Streptokokken meist als Kontaminanten in Untersuchungsproben
nachgewiesen. Befunde werden dementsprechend begutachtet und kommentiert. Von klinischer Relevanz
ist die Endocarditis durch vergrünende Streptokokken. Blutkulturdiagnostik/Untersuchungsmaterial
von Herzklappen. Lagerung bei Raumtemperatur.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
Vibrio cholerae
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Erreger der Cholera. Klinik mit heftigsten wässrigen Diarrhoen (Reiswasserstühle) und der Gefahr
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 123

5 Mikrobiologie
einer raschen Exsikkose des Patienten mit Kreislaufdekompensation und/oder -versagen. Stuhlproben
(extrem dünnflüssig, sog. Reiswasserstühle). Lagerung bei 4°C.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Cholera kommt in Ländern mit hohem Hygienestandard (Westeuropa/Nordamerika usw.) ausgesprochen
selten vor.
Die Erkrankung könnte von Fernreisenden mitgebracht werden (Reiseanamnese), tritt in Deutschland
insgesamt aber nur sehr selten auf. Im Verdachtsfall bitte telefonischen Kontakt aufnehmen.
Vibrio sp.
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Neben dem Erreger der Cholera (Vibrio cholerae) haben noch andere Vibrionen humanpathogene
Bedeutung als Erreger von Gastroenteritiden, Wundinfektionen und Sepsis. Untersuchungsmaterial
je nach Infektlokalisation (Abstriche, Gewebeproben, Blutkulturen, Stuhl).
Lagerung bei Raumtemperatur. S.u. Stuhldiagnostik
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Häufig nachgewiesene Spezies sind:
- Vibrio mimicus
- Vibrio parahaemolyticus
- Vibrio fluvialis
- Vibrio vulnificus
VRE
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Vancomycinresistente Enterokokken. S.u. Enterokokken: Untersuchung auf VRE ist grundsätzlich
aus allen bakteriologischen Untersuchungsproben möglich.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Bei Nachweis von VRE sind besondere krankenhaushygienische Maßnahmen zu beachten!
Vulvaabstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Zusätzliche Untersuchung: Kultur auf Sprosspilze
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
s.u. Genitalabstrich
124 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
Wundabstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Grampräparat
- Aerobe und anaerobe Kultur
- Ggf. Antibiogramm
Auf Anforderung:
- Kultur auf Sprosspilze
- Kultur auf Aktinomyceten
5 Mikrobiologie
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Oberflächliche Verschmutzungen werden mit einem in steriler physiol. NaCl-Lösung getränkten
Tupfer entfernt. Anschließend wird für die Kultur und die mikroskopische Untersuchung Material
vom Wundgrund bzw. Wundrand entnommen, in ein Transportsystem gegeben und bei Raumtemperatur
gelagert.
Bei trockener Wunde sterile NaCl-Lösung injizieren und sofort wieder aspirieren. Allgemein sind
Gewebepartikel und aspiriertes Exsudat den üblichen Abstrichproben in der Aussagefähigkeit
überlegen.
Bei Verdacht auf Gasbrand ausschließlich Gewebeproben einsenden und das Labor telefonisch
benachrichtigen.
Bei Verdacht auf Aktinomykose sollte neben Eiter immer etwas Gewebe eingesandt und dabei auf
Drusen geachtet werden.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Bei der mikrobiologischen Untersuchung von Abstrichen aus offenen Prozessen, wie Wunden,
Ulzera und Fisteln werden auch ohne vorherige Reinigung vor allem die aus der physiologischen
Standortflora eingewanderten Bakterien angezüchtet.
Die Isolierung, der für die Infektion ursächlichen Keime gelingt daher erst nach Entfernung der
oberflächlichen Sekrete und fibrinöser oder nekrotischer Beläge.
Für die Befundinterpretation ist es wichtig die genaue Entnahmestelle mitzuteilen, genauso ob es sich
um einen tiefen oder oberflächlichen Wundabstrich handelt. (S.u. Allgemeine Grundsätze).
Aktinomykose-Verdacht bitte mitteilen, da diese Kultur spezielle Anzuchtmedien erfordert.
Wurm
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung: Makroskopische Untersuchung und Differenzierung.
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Stuhlproben Lagerung bei Raumtemperatur. S.u. Stuhldiagnostik
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 125

5 Mikrobiologie
Yersinia sp.
s.u. Enterobacteriaceae und Stuhldiagnostik
Zahnabstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Zusätzliche Untersuchung: Kultur auf Aktinomyceten
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
s.u. Wundabstrich
Bemerkungen, Besondere Hinweise:–
Zahnhalsabstrich
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:
Untersuchung:
- Kultureller Nachweis von Aktinomyceten
- Nachweis von Actinobacillus actinomycetemcomitans, Porphyromonas gingivalis, Bacteroides
forsythus, Prevotella intermedia, Prevotella nigrescens und Trepomena denticola-DNA mittels PCR
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Für die PCR-Analyse sollten subgingivale Proben der jeweils tiefsten parodontalen Taschen erkrankter
Parodontien gepoolt werden. S.u. Kapitel Molekularbiologie: Parodontalkeime
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Parodontitis (marginale Parodontitis, juvenile Parodontitis, therapierefraktale Parodontitis).
Der molekulare Nachweis ist deutlich sensitiver als die Kultur, da die meisten Bakterien nur schwer
bzw. gar nicht anzüchtbar sind.
In Abhängigkeit von den mittels PCR identifizierten Keimen erfolgt die Auswahl geeigneter Antibiotika
für eine Therapieempfehlung.
Zestoden
Untersuchungsmaterial, Erreger, Infektionen:–
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Häufigste Bandwürmer:
- Taenia saginata (Rinderbandwurm)
- Taenia solium (Schweinebandwurm)
- Diphylobotrium latum (Fischbandwurm)
Stuhluntersuchung: S.u. Stuhldiagnostik
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Während der Kopf der Bandwürmer fest in der Darmschleimhaut verankert bleibt, werden die
126 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

5 Mikrobiologie
nachwachsenden Bandwurmglieder (Proglottiden) mit dem Stuhl ausgeschieden. Diese ca. 5 x 10 mm
messenden grauweißen Bestandteile des Wurmes müssen eingeschickt und mikroskopisch untersucht
werden, um eine Differenzierung vornehmen zu können.
Zungenabstrich
s.u. Mundabstrich
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 127

6 Antibiotic Stewardship (ABS)
- Mitwirkung beim Aufbau eines ABS Teams
- Definition der Ziele des ABS Teams
- Mitwirkung bei der Analyse der Resistenz- und Verbrauchstatistiken
- Punkt-Prävalenzstudien (PPS) zum Antibiotikaverbrauch
- Mitwirkung bei der Erstellung von KH-spezifischen Leitlinien
- Teilnahme an infektiologischen Visiten
- Teilnahme an Arzeimittelkommissionen
- Controlling des AB-Verbrauchs aus medizinischer und ökonomischer Sicht
128

7 Hygiene
Krankenhaus
- Krankenhaushygieniker
- Hygieneaudits
- Hygienekommissionen
- Schriftliche Stellungnahmen
- Begehungen und Ortstermine
- Ausbruchsmanagement
- Beratung bei der Erfassung von NI (nosokomiale Infektionen)
- Hilfe bei der Erstellung von SOP’s (Standard operating procedure)
- Bauhygiene
- Kontakt zu Behörden
Praxis
- Beratung bei der Erstellung von Hygieneplänen
- Beratung in allgemeinen Fragen der Praxishygiene
129

8 Stuhldiagnostik
8.1 Allgemeine Diagnostik auf darmpathogene Erreger
8.1.1 Basisprogramm
Kultureller Nachweis aus Stuhl von:
- Salmonella sp.
- Campylobacter sp.
- Shigella sp.
- Yersinia sp.
Fachinformation, Probenentnahme, Lagerung und Transport:
Stuhl ohne Urinbeimengungen in sauberes Gefäß absetzen. Das Röhrchen mindestens zu einem
Drittel füllen. Blutige und schleimige Anteile sollten bevorzugt entnommen werden. Am besten
3 Stuhlproben an 3 aufeinanderfolgenden Tagen entnehmen. Da eine schnelle Verarbeitung die
Ausbeute erheblich erhöht, bitte keine Proben von verschiedenen Tagen sammeln, sondern jede Probe
unmittelbar ins Labor schicken.
Bemerkungen, Besondere Hinweise:
Bei Verdacht auf eine septische Verlaufsform der gastrointestinalen Infektion sollten unbedingt
auch Blutkulturen des Patienten eingesandt werden. Dies gilt insbesondere für AIDS-Erkrankte und
andere, stark immunsupprimierte Patienten sowie bei Verdacht auf Thypus oder Parathypus.
Bei Verdacht auf Ruhr sollte der Stuhl möglichst körperwarm untersucht werden, da Shigellen schnell
absterben.
8.1.2 Stuhldiagnostik bei Vorliegen von klinischen Angaben und/oder
flüssigen Stühlen
Indikation und empfohlene Untersuchung:
- Nach Auslandaufenthalten: Darmparasiten
- Nach Antibiotika-Therapie, bei klinischem Verdacht auf pseudomembranöse Kolitis: Clostridium
difficile Toxine
- Kinder unter 2 Jahren (im ambulanten Bereich): EPEC
- Kinder unter 2 Jahren (im stationären Bereich): EPEC, Noro-, Rota-, Adeno-, Astroviren
- Bei klinischem Verdacht und/oder Diagnose: Hämolytisch urämisches Syndrom (HUS),
Thrombotisch-, Thrombozytopenische Purpura (TTP, Moschkowitz-Syndrom): EHEC
- Diagnose: Appendizitis, Arthritis, Erythema nodosum, pers./rez. Diarrhoe: Yersinia-
Kälteanreicherung
- Diagnose: Rez. Abdominalbeschwerden: Yersinia-Kälteanreicherung, Clostridium difficile Toxine,
130

8 Stuhldiagnostik
Parasiten
- Immunsuppression: Pseudomonas sp., Aweromonas sp., Kryptosporidien, Parasiten
- Diagnose: Chron. Abdominalbeschwerden: EPEC, EHEC
- Lebensmittelvergiftung: S. aureus, Bacillus cereus (ggf. mit nachfolgendem Toxinnachweis)
8.2 Gezielte Anforderungen
Auf Überweisungsschein vermerken:
Adenoviren (EIA) bei Gastroenteritis bei Säuglingen, Kleinkindern, älteren Menschen
Aeromonas sp. (kultureller Nachweis) nach Auslandaufenthalten
Astroviren (EIA), Gastroenteritis bei Säuglingen, Kleinkindern, älteren Menschen
Auslandaufenthalt, vor allem bei flüssigen Stühlen: Parasiten, Vibrionen, EHEC, EIEC
Bacillus cereus (kultureller Nachweis) bei Lebensmittelvergiftung: Toxinnachweis
Clostridium difficile Toxine (EIA) bei pseudomembranöser Kolitis, Antibiotika-assoziierter
Enterokolitis
Coronaviren bei hämorrhagischen Enteritiden. Hinweis: Allgemeiner Nachweis von Enteroviren.
Eine weiterführende genaue Speziesbestimmung aus dem Stuhl erfolgt elektronenmikroskopisch und
ist keine Kassenleistung.
EHEC (kultureller Nachweis mit Serotypisierung), Toxin-Nachweis mittels EIA bei hämorrhagischer
Kolitis, thrombotisch-thrombozytopenischer Purpura (Moschkowitz-Syndrom), hämolytischurämisches
Syndrom (HUS). Hinweis: Bestätigung durch PCR.
EIEC (kultureller Nachweis mit Serotypisierung) bei mäßig blutigen Diarrhoen, oft nach Auslandaufenthalt.
Enteroviren (z.B. Polio-, Coxsackie- und ECHO-Viren), Vermehrung im Intestinaltrakt. Hinweis:
Meist kein Zusammenhang mit gastrointestinalen Symptomen! Allgemeiner Nachweis von
Enteroviren. Eine weiterführende genaue Speziesbestimmung aus dem Stuhl erfolgt elektronenmikroskopisch
und ist keine Kassenleistung.
EPEC (kultureller Nachweis mit Serotypisierung) bei Säuglingsenteritis und Kindern unter 2
Jahren. Zusätzlich EHEC und Clostridium difficile Toxine empfohlen.
ETEC (kultureller Nachweis), häufigste Ursache der Reisediarrhoe.
HAV (Hepatitis-A-Viren), Diagnose von Hepatitis-A-Ausscheidern durch Antigennachweis im
Stuhl. Das Virus wird fäkal-oral übertragen, etwa durch verunreinigte Lebensmittel oder Trinkwasser.
Häufige Infektion nach Auslandaufenthalten. Hinweis: Der Nachweis von Hepatitis-A-Antikörpern
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 131

8 Stuhldiagnostik
im Serum ist dem Antigennachweis im Stuhl vorzuziehen: In der späten Inkubationszeit, also mehrere
Tage vor dem Auftreten klinischer Erscheinungen wird Hepatitis-A-Virus im Stuhl ausgeschieden.
Nur wenig später treten im Serum spezifische Antikörper auf, die gegen Strukturen der Virusoberfläche
gerichtet sind.
Die Diagnose der akuten Infektion erfolgt durch den Nachweis von Anti-HAV-IgM. Spezifische
Antikörper der Klasse IgM sind bereits bei Ausbruch der klinischen Erscheinungen vorhanden und
verschwinden in der Regel innerhalb von ein bis zwei Monaten.
Kinder unter 2 Jahren (im ambulanten Bereich), vor allem bei flüssigen Stühlen ist die
Untersuchung auf EPEC, EHEC und Clostridium diffficile Toxine empfohlen.
Kinder unter 2 Jahren (im ambulanten Bereich), vor allem bei blutig/schleimigen Stühlen
ist die Untersuchung auf EHEC, Aeromonas sp., Kryptosporidien, Noro-, Rota-, Adeno-, Astroviren
empfohlen.
Leitkeimbestimmung, bei allgemeiner Abwehrschwäche, Infektanfälligkeit, chron. Atemwegsinfekten,
chron. Harnwegsinfekten, Hauterkrankungen, Allergien, Mykosen, Meteorismus, Diarrhoe,
Obstipation, Colon irritabile, entzündlichen Darmerkrankungen. Hinweis: Bestimmung der aeroben
und anaeroben physiologischen Darmflora einschließlich der Pilzbesiedlung.
Noroviren (EIA) bei Gastroenteritis bei Säuglingen, Kleinkindern, älteren Menschen.
Plesiomonas sp. (kultureller Nachweis) nach Auslandaufenthalten.
Rotaviren (EIA) bei Gastroenteritis bei Säuglingen, Kleinkindern, älteren Menschen.
Staphylococcus aureus (kultureller Nachweis) bei Lebensmittelvergiftung: Toxinnachweis.
Sprosspilze (kultureller Nachweis mit semiquantitativer Mengenangabe) bei immundefizienten
Patienten, nach Zytostatikatherapie, bei rez. Candida-Kolpitis, nach längerer Antibiotikatherapie und
bei unspez. intestinalen Beschwerden.
Vibrio sp. (kultureller Nachweis) nach Auslandaufenthalten, sehr selten: Cholera (Vibrio cholera,
Reiswasserstuhl).
8.3 Darmparasiten
In der nachstehenden Übersicht wird das Spektrum der intestinalen Parasiten dargestellt. Weitere
Informationen finden Sie im alphabetischen Register Mikrobiologie.
Erreger oder Infektion: Amöben, Amöbiasis
Fachinformation: Synonym: Amöbenruhr, Erreger: Entamoeba histolytica
Bemerkungen: Zum Ausschluss extraintestinaler Manifestationen serologische Untersuchung
(ELISA) ergänzend durchführen (Patientenserum).
132 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Erreger oder Infektion: Ascaris lumbricoides
Fachinformation: Spulwurm (Nematode)
Erreger oder Infektion: Askariasis
Fachinformation: Spulwurmbefall, s.u. Ascaris lumbricoides
Erreger oder Infektion: Bandwürmer
Fachinformation: s.u. Zestoden
Erreger oder Infektion: Bilharziose
Fachinformation: s.u. Schistosomen, Schistosomiasis
Erreger oder Infektion: Entamoeba histolytica
Fachinformation: s.u. Amöben, Amöbiasis
Erreger oder Infektion: Enterobuis vermicularis
Fachinformation: s.u. Oxyuren, Oxyuriasis
8 Stuhldiagnostik
Erreger oder Infektion: Giardia lamblia
Fachinformation: Mikroskopischer Nachweis der Trophozoiten ist nur in frischen Stuhl möglich!
Sonst Untersuchung auf Lamblienzysten und Antigennachweis mittels ELISA.
Erreger oder Infektion: Kryptosporidien
Fachinformation: Erreger: Cryptosporidium parvum
Bemerkungen: Schwere Diarrhoen bei immunsupprimierten Patienten, vor allem in Zusammenhang
mit AIDS.
Erreger oder Infektion: Lamblienruhr, Lambliasis
Fachinformation: s.u. Giardia lamblia
Erreger oder Infektion: Mikrosporidien
Fachinformation: Verschiedene Spezies, die im Tierreich verbreitet sind (Protozoen).
Bemerkungen: Schwere Diarrhoen bei immunsupprimierten Patienten, vor allem in Zusammenhang
mit AIDS.
Fremdleistung: Trichromfärbung nach Weber, Molekularbiologischer Nachweis (PCR).
Erreger oder Infektion: Nematoden
Fachinformation: Rundwürmer: Ascaris lumbricoides (Spulwurm), Enterobius vermicularis
(Madenwurm).
Erreger oder Infektion: Oxyuren, Oxyuriasis
Fachinformation: Erreger: Enterobuis vermicularis (Nematode). Gewinnung der Wurmeier mittels
Tesafilmstreifen vom äußeren Analring, s.u. Analabklatschpräparat.
Erreger oder Infektion: Schistosomen, Schistosomiasis
Fachinformation: Trematoden (Saugwürmer): Schistosoma haematobium, Schistosoma mansoni,
Schistosoma japonicum.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 133

8 Stuhldiagnostik
Erreger oder Infektion: Taenia sp.
Fachinformation: s.u. Zestoden
Erreger oder Infektion: Zestoden
Fachinformation: Bandwürmer: Taenia saginata, Taenia solium, Diphyllobothrium latum.
Bemerkungen: Untersuchung der Bandwurmglieder (Proglottiden).
134 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

9 Zusätzliches Informationsmaterial
Abklärung einer Thrombophilie
Abklärung bei Verdacht auf Hepatitis B
Abklärung bei Verdacht auf Hepatitis C
Allergenübersicht (spezifisches IgE sowie IgG)
Antibiotika-Heft 2012
Ausnahmeindikationen (diese Ziffern entlasten Ihr Laborbudget)
Hepatitis B Impfschema
MRSA in der Praxis
Präanalytik-Broschüre
Rheumatologie-Diagnostik
Schilddrüsen-Diagnostik
Syphilis-Diagnostik
Tumormarker-Diagnostik
Untersuchungen vor und in der Schwangerschaft (Broschüre)
Eine kostenlose Bestellung kann in unserem Versand unter 0251/60916-161 abgegeben werden
135

10 Alphabetisches Leistungsverzeichnis
1,25-Dihydroxy-Vitamin D
Synonyme: 1,25-OH-D3, Calcitriol, Vitamin D3 1,25-OH2
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Diagnostik eines Vitamin D-Mangel ist die Blutentnahme in den Monaten
Januar bis April mit verminderter Sonnenlichtexposition besonders geeignet. Zur Vermeidung einer
Hämolyse sollte das Blut umgehend zentrifugiert und das Serum/Plasma abpipettiert werden.
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Hyperkalziämie oder Hyperkalziurie sowie von Hypokalziämie
Methode: EIA
Referenzbereiche: 17,0 – 53,0 pg/ml
1-Butanol im Blut (U)
Probenmaterial: Vollblut, spezielle Abnahmemonovetten verwenden
Abnahmehinweise: Spezielle Abnahmemonovetten können angefordert werden.
Klinische Indikationen: Beurteliung der 1-Butanol-Belastung, Intoxikation
Methode: GC
Referenzbereiche: < 100 µg/l
1-Hydroxypyren im Urin (W)
Probenmaterial: 10 ml Spontanurin
Klinische Indikationen: Beurteilung der Belastung mit polyzyklischen aromatischen Kohlenwasserstoffen
(PAK) durch Bestimmung des Leitmetaboliten 1-Hydroxypyren, Intoxikation
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
1-Propanol (U)
Synonyme: Lösungsmittel
Probenmaterial: 10 ml Spontanurin
Klinische Indikationen: Beurteilung der 1-Propanol-Belastung
Methode: GC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
10-Hydroxy-Carbazepin
Synonyme: 10-OH-Carbazepin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring der Oxcarbazepin-Therapie
136

Methode: HPLC
Referenzbereiche: 13 – 30 mg/l
11-Desoxycorticosteron im Plasma (U)
11-Desoxycorticosteron im Plasma (U)
Synonyme: DOC
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Plasma oder
1 ml Serum
Abnahmehinweise: Tageszeitliche Schwankungen sind zu berücksichtigen
Klinische Indikationen: Nachweis eines Mineralokortikoidexzess-Syndroms,
Adrenogenitales Syndrom,
Ausschluss Hyperaldosteronismus
Hinweis: Die tageszeitlichen Schwankungen sind bei Messung von DOC im 24-Stunden-Urin weniger
ausgeprägt als bei Plasmaspiegel-Messungen.
Referenzbereiche: s. Befundbericht
11-Desoxycorticosteron im Urin (U)
Synonyme: DOC
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: Bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Nachweis eines Mineralokortikoidexzess-Syndroms,
Adrenogenitales Syndrom,
Ausschluss Hyperaldosteronismus
Hinweis: Die tageszeitlichen Schwankungen sind bei Messung von DOC im 24-Stunden-Urin weniger
ausgeprägt als bei Plasmaspiegel-Messungen.
Referenzbereiche: s. Befundbericht
11-Desoxycortisol (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Verdacht auf 11-ß-Hydroxylase-Mangel bei Verdacht
auf die nicht-klassische Form des adrenogenitalen Syndroms, ggf. im Rahmen eines Stimulationstestes
(ACTH-Stimulationstest)
Referenzbereiche: s. Befundbericht
17-Hydroxycorticoide im Urin (U)
Synonyme: 17-OHCS
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (gesammelt über 5-10 ml Eisessig)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Die Untersuchung ist weitestgehend ersetzt worden durch die Bestimmung
von Cortisol im Serum und Cortisol frei im Urin.
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 137

25-Hydroxy-Vitamin D
17-Hydroxyprogesteron (W)
Synonyme: 17-OH-Progesteron
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Wegen starker Schwankungen während des Tages und Zyklusabhängigkeit sollte
das Blut frühmorgens (ca. 8 Uhr) bzw. in der Follikelphase abgenommen werden.
Klinische Indikationen: Verdacht auf 21-Hydroxylasemangel (Adrenogenitales Syndrom)
Methode: RIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
17-Ketosteroide im Urin (U)
Probenmaterial: 20 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (gesammelt über 5-10 ml Eisessig)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Verdacht auf AGS (adrenogenitales Syndrom), adrenaler Hirsutismus, Virilisierung,
NNR-Tumoren
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
18-Hydroxycorticosteron im Serum (U)
Synonyme: 18-OHB
Probenmaterial: 1 ml Serum oder Plasma
Abnahmehinweise: Blutabnahme nach ausreichender Ruhephase empfohlen
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Verdacht auf isolierten Mineralokortikoidmangel,
Diagnostik des 18-Hydroxylasemangels Typ II,
Verdacht auf primären Hyperaldosteronismus
Referenzbereiche: s. Befundbericht
18-Hydroxycorticosteron im Urin (U)
Synonyme: 18-OHB
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: Bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. Sammelzeit angeben
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Verdacht auf isolierten Mineralokortikoidmangel,
Diagnostik des 18-Hydroxylasemangels Typ II,
Verdacht auf primären Hyperaldosteronismus
Referenzbereiche: s. Befundbericht
25-Hydroxy-Vitamin D
Synonyme: 25(OH)D, 25-Hydroxy-Cholecalciferol, Calcidiol, Vitamin D 25-OH
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Diagnostik eines Vitamin D-Mangel ist die Blutentnahme in den Monaten
Januar bis April mit verminderter Sonnenlichtexposition besonders geeignet.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Vitamin D-Mangel bei:
- Sonnenlichtmangel
138 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

- verminderte enterale Aufnahme
- erhöhter Stoffwechsel (Barbiturate u.a.)
- erhöhter Verlust (z.B. Dialyse)
- Störungen des Kalziumstoffwechsels
- verminderte Knochendichte
Methode: CLIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
4-Aminosalicylsäure (U)
4-Aminosalicylsäure (U)
Synonyme: Handelsname: Pas-Fatol N ®
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer 4-Aminosalicylsäure-Therapie.
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
4-Hydroxy-Tamoxifen (U)(N)
Synonyme: 4-OH-Tamoxifen
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Plasma, lichtgeschützt
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Tamoxifen-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
5-Fluorouracil-Unverträglichkeit (U)
Synonyme: 5-Fu-Unverträglichkeit
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einverständniserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Klinische Indikationen: Screening von Patienten vor Gabe von 5-FU
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
5-Hydroxyindolessigsäure
Synonyme: 5-HIES
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
(gesammelt in lichtgeschütztem Gefäß über 10 ml Eisessig)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
3 Tage vor Abnahme folgende Nahrungsmittel
und Medikamente absetzen:
Ananas, Auberginen, Avocados, Bananen,
Johannisbeeren, Melonen, Mirabellen,
Stachelbeeren, Tomaten, Walnüsse,
Zwetschgen, Chlorpromazin,
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 139

ACE
Mephenesincarbamat, Methocarbamol. Paracetamol und ASS sollten ebenfalls 2 Tage vor der Untersuchung
nicht mehr eingenommen werden.
Klinische Indikationen: Karzinoid-Diagnostik
Methode: HPLC
Referenzbereiche: < 9,0 mg/24 Stunden
5-S-Cysteinyl-DOPA im Plasma (W)
Synonyme: 5-SCD
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: Das EDTA-Blut bitte sofort nach der Blutentnahme zentrifugieren, das Plasma
in ein separates Röhrchen (ohne Zusätze) abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C). Die Probe lichtgeschützt
aufbewahren.
Spezielle Abnahmemonovetten können angefordert werden.
Medikamente mit Einfluss auf den DOPA-Stoffwechsel sollten einige Tage vor der Bestimmung,
sofern möglich, abgesetzt werden.
Klinische Indikationen: Therapie- und Verlaufskontrolle des malignen Melanoms
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
5-S-Cysteinyl-DOPA im Urin (W)
Synonyme: 5-SCD
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (angesäuert, kühl und lichtgeschützt gelagert
während der Sammelperiode)
Klinische Indikationen: Therapie- und Verlaufskontrolle des malignen Melanoms
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
9-OH-Risperidon (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Bitte beachten Sie, dass bei Verwendung von gelhaltigen Röhrchen die Resultate
niedriger ausfallen können. Wir empfehlen, das Blut 30 min nach Abnahme zu zentrifugieren, das
Serum abzutrennen und in ein zweites Neutral-Röhrchen zu überführen.
Klinische Indikationen: Monitoring einer Risperidon-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
ACE
Synonyme: Angiotensin Converting Enzyme
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: ACE-Hemmer sollten ca. 4 Wochen vor der Untersuchung abgesetzt werden. Zur
Vermeidung einer Hämolyse sollte das Blut nach Gerinnung zentrifugiert und das Serum abpipettiert
werden
Klinische Indikationen: Verlaufsbeurteilung der Aktivität einer Sarkoidose
Methode: Photometrie
140 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Referenzbereiche: Erwachsene: 20 – 70 U/l
Kinder: 29 – 112 U/l
ACE im Liquor (W)
Synonyme: Angiotensin Converting Enzyme
Probenmaterial: 2 ml Liquor und
1 ml Serum
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle der Sarkoidose
Methode: REA
Referenzbereiche: < 3,8 U/l
Acetazolamid (U)
Synonyme: Carboanhydrasehemmer
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring einer Acetazolamid-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: Therapeutischer Bereich: 10 – 20 µg/ml
Toxisch: ab etwa 25 µg/ml
Aceton im Blut (U)
ACE im Liquor (W)
Synonyme: Lösungsmittel
Probenmaterial: 2 ml Serum oder
2 ml Blut (Rollrandröhrchen)
Klinische Indikationen: Beurteilung der Acetonbelastung, Diagnostik der Intoxikation, unklare Ketoazidose
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Aceton im Urin (U)(N)
Synonyme: Lösungsmittel
Probenmaterial: 2 ml Urin
Abnahmehinweise: fest verschlossenes System für Blutentnahme und Transport verwenden
Klinische Indikationen: Beurteilung der Acetonbelastung, Diagnostik der Intoxikation, unklare Ketoazidose
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: < 5 mg/l
BAT: 80 mg/l
Acetylcholinesterase im Fruchtwasser (W)
Synonyme: ACHE
Probenmaterial: 2 – 5 ml Fruchtwasser
Klinische Indikationen: Verdacht auf Neuroalrohrdefekt bei gleichzeitig erhöhtem AFP-Wert im
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 141

ADAMTS 13 – Konzentration (U)
Fruchtwasser
Methode: PAGE
Referenzbereiche: negativ
Acetylsalizylsäure (W)
Synonyme: Aspirin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Acetylsalizylsäure-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
ACTH
Synonyme: Adrenocorticotropes Hormon
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: EDTA-Vollblut abnehmen, sofort zentrifugieren, das EDTA-Plasma abnehmen
und einfrieren.
Klinische Indikationen: Nebennierenfunktion (M. Addison, M. Cushing)
ektope ACTH-Produktion (z.B. Bronchial-Ca)
Methode: Chemilumineszenz
Referenzbereiche: 4,7 – 48,8 pg/ml
Actinomykose-Antikörper (U)(N)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Zusätzliche Diagnostik bei Verdacht auf Aktinomykose
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
ADAMTS 13 – Aktivität (U)
Synonyme: vWF cleaving protease
Probenmaterial: 2 ml Citratplasma
Klinische Indikationen: Vd auf thrombotisch thrombozytopenische Purpura (TTP), Auftreten großer
vWF-Multimere
Referenzbereiche: s. Befundbericht
ADAMTS 13 – Inhibitor (U)
Probenmaterial: 2 ml Citratplasma
Klinische Indikationen: Unterscheidung erworbene/hereditäre TTP, Therapiemonitoring
Referenzbereiche: s. Befundbericht
ADAMTS 13 – Konzentration (U)
Probenmaterial: 2 ml Citratplasma
Klinische Indikationen: Vd auf thrombotisch thrombozytopenische Purpura (TTP), Auftreten großer
142 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

vWF-Multimere
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Addis Count (U)(N)
Addis Count (U)(N)
Probenmaterial: 10 ml Morgenurin (Urin-Monovette mit Stabilisator)
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Verdacht auf Harnwegsinfekt oder Glomerulonephritis
Methode: Mikroskopie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Adenoviren-Antikörper (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 2-10 Tage
Klinische Indikationen: Symptomatik: Akute katarrhalische Atemwegserkrankungen mit Pharyngitis,
Infektionen mit Schleimhautbeteiligung. Häufig bei Erkältungskrankheiten (akute febrile Pharyngitis),
seltener bei Keratokonjunktivitis, Gastroenteritis, Pneumonie, Bronchitis und Hepatitis.
Methode: EIA
Referenzbereiche: IgG: < 20,0 RE/ml
IgM: < 1,0 Ratio
Adenovirus-Antigen im Stuhl
Synonyme: Gastroenteritis
Probenmaterial: 2 g Stuhl
Klinische Indikationen: Verdacht auf Adenovirus-Infektion, insbesondere bei Gastroenteritis bei
Säuglingen und Kleinkindern
Methode: ELISA
Referenzbereiche: negativ
Adenovirus-DNA-Nachweis (W)
Synonyme: Adenovirus-PCR
Probenmaterial: je nach Indikation:
Abstrich (Konjunktiva)
5 g Stuhl
1 ml Liquor
1 ml respiratorisches Material
3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Material in sterilen Gefäßen entnehmen,
Die Inkubationszeit beträgt ca. 2-10 Tage
Klinische Indikationen: Verdacht auf Adenovirus-Infektion
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 143

AFP
Adiponectin (U)
Synonyme: Adiponektin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Parameter zur frühzeitigen Risiko-Erkennung für Arteriosklerose und Diabetes
mellitus Typ 2, insbesondere bei Verwandten 1. Grades und Übergewichtigen
Methode: EIA
Referenzbereiche: Männer: Median ca. 7,0 mg/l
Frauen: Median ca. 8,5 mg/l
Adrenalin im Plasma (W)
Synonyme: Katecholamine
Probenmaterial: 3 ml EDTA- Plasma
Abnahmehinweise: Vor der Blutentnahme Stress-Situationen vermeiden;
Medikamente, sofern möglich, ca. 1 Woche vorher absetzen;
ab ca. 3 Tage vorher Vermeiden von Kaffee, Tee, Nikotin, Bananen, Käse, Nüsse, Schokolade, Eier;
Blutentnahme nach ca. 30 Minuten Ruhe (Liegen);
Blut direkt nach der Entnahme zentrifugieren und das Plasma abpipettieren und einfrieren (ca. -20°C)
Klinische Indikationen: Tumoren des sympatho-adrenergen Systems, Neuroblastome, episodenhafte
oder therapieresistente Hypertonie, Inzidentalom, Familienuntersuchung
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Adrenalin im Urin
Synonyme: Katecholamine
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
(gesammelt über 5-10 ml Salzsäure)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Medikamente, sofern möglich, ca. 1 Woche vorher absetzen;
ab ca. 3 Tage vorher Vermeiden von Kaffee, Tee, Nikotin, Bananen, Käse, Nüsse, Schokolade, Eier
Klinische Indikationen: Tumoren des sympatho-adrenergen Systems, Neuroblastome, episodenhafte
oder therapieresistente Hypertonie, Inzidentalom, Familienuntersuchung
Methode: HPLC
Referenzbereiche: < 27,0 µg/24 Std.
AFP
Synonyme: α 1-Fetoprotein, Alpha-1-Fetoprotein
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung des hepatozellulären Karzinoms, von
Keimzelltumoren (Hoden, Ovar, extragonadal) und eingeschränkt bei Leberzirrhose
Methode: Chemilumineszenz
Referenzbereiche: < 10 ng/ml
144 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Agomelatin (W)
Synonyme: Handelsname: Valdoxan ®
Probenmaterial: 1 ml Serum
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Ajmalin (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring einer Ajmalin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 0,2 – 1,0 mg/l
Aktivierte T-Lymphozyten
Agomelatin (W)
Synonyme: CD3+/HLA-DR+-Zellen
Probenmaterial: korrekt gefüllte EDTA-Monovette
Abnahmehinweise: EDTA-Monovette direkt nach der Abnahme durch Schwenken gründlich mischen
Klinische Indikationen: Monitoring der HIV-Infektion, Primäre und sekundäre Immundefekte
Methode: Durchflusszytometrie (Vollblut-Lyse-Methode, direkte Immunphänotypisierung)
Referenzbereiche: Erwachsene: 30-200 c/µl (2-12%)
Alanin Aminopeptidase (W)
Synonyme: AAP
Probenmaterial: 1 ml Urin
Klinische Indikationen: Verdacht auf renal-tubuläre Schädigung
Verdacht auf Nephrotoxizität durch Medikamenten und Xenobiotika
Differenzialdiagnostik bei Störungen des Nierentransplantats
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Albumin im Liquor
Probenmaterial: 1 ml Liquor
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen.
Klinische Indikationen: Beurteilung der Blut-/Liquor-Schrankenfunktion
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Albumin im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verlaufsbeurteilung akuter Lebererkrankungen,
Verdacht auf Leberzirrhose und deren Verlaufsbeurteilung,
Abklärung von Oedemen,
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 145

Aldosteron im Serum (W)
Prognostische Aussage bei älteren, hospitalisierten Patienten,
Als Index des Ernährungsstatus
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Albumin im Stuhl (W)
Probenmaterial: 1 g Stuhl
Klinische Indikationen: Verlaufskontrolle chronisch-entzündlicher Darmerkrankungen
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: < 50 µg/g
Albumin im Urin
Synonyme: Mikroalbumin
Probenmaterial: 1 ml Spontanurin oder
1 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung der diabetischen und hypertensiven
Nephropathie
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Albumin-Quotient (Liquor/Serum)
Probenmaterial: 1 ml Liquor und
1 ml Serum
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen.
Klinische Indikationen: Beurteilung der Blut-/Liquor-Schrankenfuntion
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Aldolase (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Blut zentrifugiert und das Serum in
ein separates Röhrchen abpipettiert werden.
Klinische Indikationen: Differentialdiagnose von Muskelerkrankungen
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Aldosteron im Serum (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Ausreichend Ruhezeit vor der Blutentnahme berücksichtigen, wenn möglich Antihypertensiva
8 Stunden vorher, Aldosteronantagonisten ca. 4 Wochen vorher absetzen,
Blut innerhalb von 30 Minuten zentrifugieren und das Serum abpipettieren.
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung eines Hyper- oder Hypoaldosteronismus
146 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: RIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Aldosteron im Urin (W)
Aldosteron im Urin (W)
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins, nicht angesäuert
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge angeben; Urin während der Sammelperiode
kühl lagern, ausreichend Ruhezeit während der Sammelperiode berücksichtigen, wenn möglich Antihypertensiva
8 Stunden vorher, Aldosteronantagonisten ca. 4 Wochen vorher absetzen.
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Hyperaldosteronismus
Methode: RIA
Referenzbereiche: 0,1 – 0,5 µg/24 Std.
Aldosteron-18-Glucuronid im Urin (U)
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge angeben; Urin während der Sammelperiode
kühl lagern, ausreichend Ruhezeit während der Sammelperiode berücksichtigen, wenn möglich Antihypertensiva
8 Stunden vorher, Aldosteronantagonisten ca. 4 Wochen vorher absetzen.
Der Urin sollte während der Sammelzeit kühl gelagert werden.
Klinische Indikationen: Diagnostik des Hyperaldosteronismus bzw. eines Mineralokortikoidmangels
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Alkalische Leukozytenphosphatase (U)(N)
Synonyme: ALP, ANP, Alkalische Neutrophilenphosphatase
Probenmaterial: 4 luftgetrocknete Ausstriche aus Nativblut,
30 Sek. fixiert im Gemisch
(9 Teile Methanol/1 Teil 37%iges Formalin)
Abnahmehinweise: Kein EDTA-Blut.
Klinische Indikationen: Differentialdiagnose der CML (chronisch myeloische Leukämie)
Methode: Mikroskopie
Referenzbereiche: Index 20 – 100
Alkalische Phosphatase
Synonyme: AP
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Blutentnahme sollte nüchtern (ca. 12 Stunden Nahrungskarenz) erfolgen
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilungen von Erkrankungen der Leber, Gallenwege
und der Knochen
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 147

α-Galaktosidase (U)
Alkalische Phosphatase-Isoenzyme
Synonyme: AP
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme am nüchternen Patienten (12 h Nahrungskarenz)
Klinische Indikationen: Differenzierung einer erhöhten → Alkalische Phosphatase, Seite 147 bei
unklarem Krankheitsbild
Methode: Elektrophorese
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Allopurinol (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring einer Allopurinol-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 2 – 20 µg/ml
α-Aminobuttersäure (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das Blut bitte nach der Abnahme zentrifugieren, das Serum in separates
Röhrchen abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Mangelzuständen der Ernährung
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Alpha-Endosulfan (U)
Probenmaterial: 10 ml EDTA-Blut
Klinische Indikationen: Diagnose und Beurteilung einer Belastung mit Alpha-Endosulfan
Methode: GC/ECD
Referenzbereiche: < 0,01 µg/l
Alpha-Fetoprotein (AFP) im Fruchtwasser (W)
Probenmaterial: 2 – 5 ml Fruchtwasser
Abnahmehinweise: bitte unbedingt das Gestationsalter (Schwangerschaftswoche) exakt angeben
Klinische Indikationen: Verdacht auf Neuralrohrdefekt
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
α-Galaktosidase (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum, tiefgefroren
Abnahmehinweise: Das Blut bitte innerhalb von 30 Minuten nach der Abnahme zentrifugieren,
Serum in ein separates Röhrchen abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Verdacht auf Fabry-Syndrom, Sphingolipidspeicherkrankheit
Methode: Fluorometrie
Referenzbereiche: 3,4 – 13,0 nmol/h/ml
148 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

α-Glucosidase im Sperma (U)
α-Glucosidase im Sperma (U)
Probenmaterial: 1 ml Sperma
Abnahmehinweise: Sperma 1 + 1 mit physiologischer Kochsalzlösung verdünnen und in ein Fluoridröhrchen
geben, eine sexuelle Karenz von mindestens 48 Stunden vor der Untersuchung wird
empfohlen.
Klinische Indikationen: Abklärung der Infertilität beim Mann (Nebenhodenfunktion)
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: > 6 U/l
alpha-Linolensäure (U)
Probenmaterial: 5 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Mangel an Alpha-Linolensäure
Methode: GC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
α 1 Antitrypsin im Stuhl (W)
Probenmaterial: 2 g Stuhl
Abnahmehinweise: Bei der Abnahme bitte Kontamination mit Wasser aus dem WC vermeiden!
Klinische Indikationen: Verdacht auf enterales Eiweißverlustsyndrom, Morbus Crohn, Nekrotisierende
Enterokolitis, Chronische mesenteriale Ischämie, Virale, bakterielle, allergische, autoimmun
verursachte Entzündungen
Methode: LIA
Referenzbereiche: < 268 µg/g Stuhl
α 1-Antitrypsin Genotypisierung (U)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einverständniserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Klinische Indikationen: Nachweis von Mangelallelen im α 1-Antitrypsin-Gen bei verminderter
Konzentration im Serum sowie auffälligem Ergebnis in der Phänotypisierung
Methode: PCR und Sequenzierung
Referenzbereiche: s. Befundbericht
α 1-Antitrypsin im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf hereditären α 1-Antitrypsin-Mangel,
Hepatitis unklarer Genese bei Kindern/Säuglingen,
Lungenemphysem des Erwachsenen,
Hepatitis/Leberzirrhose unklarer Genese bei Erwachsenen
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 0,9 – 1,74 g/l
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 149

α 2-Makroglobulin im Liquor (W)
α 1-Antitrypsin Phänotypisierung (U)(N)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Verwendung von Citrat-, Kaliumoxalat-, Natriumfluorid- oder EDTA-
Zusätzen führen zu einer falsch-niedrigen α 1-Antitrypsin-Konzentration und können Schwierigkeiten
bei der Phänotypisierung verursachen.
Klinische Indikationen: Ein V.a. einen heriditären α 1-Antitrypsin-Mangel ergibt sich, wenn folgende
Symptome oder Erkrankungen vorliegen: Icterus prolongatus beim Neugeborenen, Hepatitis
unklarer Genese im Säuglings- und Kleinkindalter, Lungenemphysem beim Erwachsenen, Hepatitis
oder Leberzirrhose unklarer Genese beim Erwachsenen
Methode: IEF
Referenzbereiche: s. Befundbericht
α 1-Mikroglobulin im Serum (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verlaufs- und Therapiekontrolle lymphoider Neoplasien (M. Hodgkin, Non-
Hodgkin-Lymphome, Plasmozytom)
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
α 1-Mikroglobulin im Urin
Probenmaterial: 10 ml Spontanurin (2. Morgenurin) oder
10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: Bitte Sammelmenge und Sammelzeit (wenn kleiner als 24 Stunden) angeben.
Der 2. Morgenurin ist dem 24-Stunden-Sammelurin gleichwertig, wenn zuvor keine besondere
körperliche Belastung stattgefunden hat oder keine polyurische Nierenerkrankung vorliegt.
Klinische Indikationen: Verlaufskontrolle und -beurteilung einer tubulären Proteinurie.
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: < 12,5 mg/l
α 2-Antiplasmin-Aktivität (U)
Synonyme: Antiplasmin
Probenmaterial: 2 ml Citrat-Plasma, gefroren
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Verdacht auf Hyperfibrinolyse, Verbrauchskoagulopathie,
Therapiekontrolle bei Fibrinolyse,
Leberfunktionsstörungen,
Verdacht auf Antiplasmin-Mangel
Methode: chromogen
Referenzbereiche: 80 – 120 %
α 2-Makroglobulin im Liquor (W)
Probenmaterial: 1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Verdacht auf Blut-Liquor-
Schrankenfunktionsstörung
150 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: < 7 mg/l
α 2-Makroglobulin im Serum (U)
α 2-Makroglobulin im Serum (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Die Untersuchung ist weitgehend durch andere Laborparameter ersetzt worden.
Akute-Phase-Reaktion
Nephrititis
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
α 2-Makroglobulin im Urin (U)
Probenmaterial: 1 ml Spontanurin
Klinische Indikationen: Diagnostik und Differenzierung von Proteinurien,
Abgrenzung der postrenalen Proteinurie
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Alprazolam (U)
Synonyme: Benzodiazepine
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring einer Alprazolam-Therapie, Missbrauchskontrolle
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 5-50 ng/ml
ALT
Synonyme: Alanin-Aminotransferase, ALAT, GPT
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugiert werden.
Klinische Indikationen: Diagnose, Differenzierung, Verlaufs- und Therapiekontrolle von Erkrankungen
der Leber und der Gallenwege
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Männer: 10 – 50 U/l
Frauen: 10 – 35 U/l
Kinder: altersabhängige Referenzbereiche
Aluminium im Serum (W)(N)
Probenmaterial: 2 ml Serum (unbeschichtete Kunststoffmonovette verwenden, keine Glasmonovetten
oder solche mit Kaolinkügelchen)
Abnahmehinweise: Blutabnahme nüchtern und nach Expositionsende. Aluminiumhaltige Medikamente
(Antazida) mindestens 1 Tag vorher absetzen
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 151

Amikacin (U)
Klinische Indikationen: Beurteilung der beruflichen Exposition, Überwachung von Dialysepatienten,
Diagnostik einer Aluminiumintoxikation
Methode: AAS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Aluminium im Urin (W)
Probenmaterial: 10 ml Urin (unbeschichtete Kunststoffmonovette verwenden, keine Glasmonovetten
oder solche mit Kaolinkügelchen)
Abnahmehinweise: Urinentnahme bei nüchternem Patienten, Aluminiumhaltige Medikamente (Antazida)
mindestens 1 Tag vorher absetzen
Klinische Indikationen: Beurteilung der beruflichen Exposition, Überwachung von Dialysepatienten,
Diagnostik einer Aluminiumintoxikation
Methode: ICP-MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
AMA-Subtypen (M2, M4, M9)
Synonyme: AMA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Positiver AMA-Suchtest (→ Auto-Ak gegen Mitochondrien, Seite 181) bei
Vedacht auf PBC,
Verlaufskontrolle
Methode: Immunoblot
Referenzbereiche: negativ
Amantadin (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring einer Amantadin-Therapie
Methode: GC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Ameisensäure im Urin (U)
Synonyme: Formiat
Probenmaterial: 10 ml Urin mit 3-5 Tropfen Eisessig ansäuern
Klinische Indikationen: Humanbiomonitoring einer erhöhten Exposition durch Formaldehyd
Methode: Photometrie (UV)
Referenzbereiche: < 15 mg/g Krea
Amikacin (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bestimmung des max. Spiegels:
ca. 5-30 Minuten nach Beendigung der Infusion bzw. ca. 45-75 Minuten nach i.m.-Injektion.
Bestimmung des Tal-Spiegels:
152 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

vor erneuter Amikacin-Gabe
Klinische Indikationen: Monitoring der Amikacin-Therapie
Methode: enzymatisch
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Aminosäuren-Differenzierung im Serum (W)
Aminosäuren-Differenzierung im Serum (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum oder EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: Blut direkt nach der Abnahme zentrifugieren und Plasma abpipettieren, Plasma
nach der Gewinnung einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Diagnostik von Stoffwechselerkrankungen mit Verdacht auf Störungen im
Aminosäurestoffwechsel
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Aminosäuren-Differenzierung im Urin (U)
Probenmaterial: 5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (gesammelt über 5 – 10 ml Eisessig)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Genetisch bedingte Störungen des Aminosäurestoffwechsels, der
Aminosäurespeicherun oder des Aminosäuretransportes, z.F. Fanoni-Syndrom, Hartnup-Krankheit
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Amiodaron im Serum
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: (Hinweis: bitte KEINE Gelröhrchen für die
Blutentnahme verwenden!)
Bestimmung des max. Spiegels:
ca. 5-7 Stunden nach Medikamenteneinnahme
Bestimmung des Talspiegels:
vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring der Amiodaron-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 0,7 – 2,5 mg/l
Amisulprid (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring einer Amilsuprid-Therapie
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: 100 – 320 µg/l
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 153

Amylase im Serum
Amitriptylin im Serum
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Amitriptylintherapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 50 – 300 µg/l
Ammoniak im Plasma
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Plasma, tiefgefroren
Abnahmehinweise: EDTA-Blut innerhalb von 30 Minuten nach Blutentnahme bei +4°C zentrifugieren
(Hämolyse, Ammoniakanstieg nach Blutentnahme)
Klinische Indikationen: Abklärung neuromuskulärer und zerebraler Störungen bei:
Hepatopathie (Leberzirrhose, massiver Leberzellschaden), Chemotherapie, Valproinsäure-Therapie,
Abklärung eines unklaren Krampfanfalles oder Komas
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Männer: < 102 µg/dl
Frauen: < 87 µg/dl
Kinder: s. Befundbericht
Amphetamin im Serum (N)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Suchtest zum Nachweis des Gebrauchs von Amphetaminen
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ
Amphetamin im Urin
Probenmaterial: 10 ml Urin
Abnahmehinweise: ggf. Probennahme überwachen
Klinische Indikationen: Suchtest zum Nachweis des Gebrauchs von Amphetaminen
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ
Amphotericin B (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: lichtgeschützt (Röhrchen mit Alufolie umwickeln)
Klinische Indikationen: Monitoring einer Amphotericin B-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Amylase im Serum
Synonyme: α-Amylase, Gesamt-Amylase
Probenmaterial: 1 ml Serum
154 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Amylase im Urin
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle einer Pankreatitis oder einer Parotitis,
Abklärung akuter Oberbauchbeschwerden,
Pankreaskarzinom,
Kontrolle nach ERCP
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: 28 – 100 U/l
Amylase im Urin
Synonyme: α-Amylase, Gesamt-Amylase
Probenmaterial: 2 ml Spontanurin oder
2 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Hinweis: Der Urin darf NICHT eingefroren werden!
Klinische Indikationen: Chronische Hyperamylasämie,
Verdacht auf Makroamylasämie,
Niereninsuffizienz,
Verdacht auf diabetische Nephropathie
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Amylase-Isoenzyme (U)
Synonyme: α-Amylase
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Differenzierung der Amylasen bei unklarer Amylasenerhöhung
(Makroamylase, Verdacht auf Parotitis)
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Gesamt: < 100 U/l
Pankreas: < 53 U/l
Speichel: < 47 U/l
Amyloid A-Protein im Serum (W)
Synonyme: Serum Amyloid A, SAA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung von Infektionserkrankungen, Erkennen
von Transplantatabstoßung, Diagnostik der Amyloidose
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: < 10 mg/l
Amyloid β 1-42 im Liquor
Probenmaterial: 1 ml Liquor in Polypropylen-Röhrchen
Abnahmehinweise: Abnahme in anderen Probengefäßen kann zur Adsorption an der Gefäßwand
führen (falsch-niedrige Messwerte)
Klinische Indikationen: Differentialdiagnostik der dementiellen ZNS-Erkrankungen, insbesondere
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 155

Angiotensin II (W)
des M. Alzheimer
Methode: EIA
Referenzbereiche: > 500 pg/ml
Analgetika im Urin (W)
Probenmaterial: 10 ml Urin
Abnahmehinweise: ggf. Probennahme überwachen
Klinische Indikationen: Suchtest zum Nachweis des Gebrauchs von Analgetika
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
ANCA-Zielantigene
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei positivem Nachweis von → Auto-Ak gegen
Granulozyten-Zytoplasma, Seite 180 im IFT,
Verlaufskontrolle
Methode: ELISA
Referenzbereiche: negativ
Androstandiol-Glucuronid (W)
Synonyme: 3-α-diol G
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Blut nach der Abnahme zentrifugiert
und das Serum in ein separates Röhrchen abpittetiert werden.
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Hirsutismus oder PCO (Polycystisches Ovar-
Syndrom)
Methode: RIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Androstendion im Serum (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bei Frauen Blutentnahme ca. 1 Woche vor oder nach der Menstruationsperiode
Klinische Indikationen: Nebennierenrindentumor, Adrenogenitales Syndrom, adrenaler Hirsutismus,
Virilisierung
Methode: CLIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Angiotensin II (W)
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: Abnahme nach 30minütigem Liegen zu empfehlen. Das Blut bitte unmittelbar
nach der Abnahme zentrifugieren, das EDTA-Plasma in ein separates Röhrchen (ohne Zusätze)
abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Differentialdiagnose des Hyperaldosteronismus,
156 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Anti-Faktor Xa-Aktivität
die Untersuchung wurde weitgehend durch andere Verfahren sowie Funktionsteste ersetzt
Methode: RIA
Referenzbereiche: 20 – 40 ng/l
Anti-Faktor Xa-Aktivität
Synonyme: Fragmin ® , Heparin-Wirkung
Probenmaterial: 3 ml Citrat-Plasma
Abnahmehinweise: Die Blutentnahme sollte 2 – 4 h nach letzter Gabe des Heparins erfolgen (bitte
das verwendete Präparat angeben!).
Für längeren Transport Citrat-Blut nach der Abnahme zentrifugieren, das Plasma in ein separates
Röhrchen (ohne Zusätze) abpipetieren und einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Unzureichende Verlängerung der aPTT unter Heparin-Behandlung
Therapiekontrolle/Monitoring der Therapie mit unfraktioniertem Heparin, insbesondere bei
- schweren Leber- oder Nierenschädigungen
- hohem Körpergewicht (> 150 kg)
- niedrigem Körpeergewicht (< 40 kg)
- bei Schwangerschaft
- bei Kindern und Neugeborenen
Methode: chromogen
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Anti-HAV (IgG/IgM)
Synonyme: Hepatitis A
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 12-40 Tage (Mittel: 21)
Klinische Indikationen: Diagnostik einer Hepatitis A, Überprüfung des Impferfolges nach Hepatitis
A-Impfung
Methode: CMIA
Referenzbereiche: negativ
Anti-HAV-IgM
Synonyme: Hepatitis A
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik einer akuten Hepatitis A
Methode: CMIA
Referenzbereiche: negativ
Anti-HBc (IgG/IgM)
Synonyme: Hepatitis B
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Screeningparameter bei Verdacht auf Hepatitis B oder Abklärung einer
durchgemachten Hepatitis B (z.B. vor geplanter Impfung)
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 157

Anti-HCV-Immunoblot
Methode: CMIA
Referenzbereiche: negativ
Anti-HBc-IgM
Synonyme: Hepatitis B
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Nachweis von → Anti-HBc (IgG/IgM), Seite 157.
Methode: CMIA
Referenzbereiche: negativ
Anti-HBe
Synonyme: Hepatitis B
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik einer akuten und chronischen Hepatitis B-Infektion
Methode: CMIA
Referenzbereiche: negativ
Anti-HBs
Synonyme: Hepatitis B
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufskontrolle der Hepatitis B
Überprüfung des Impferfolges nach Impfung
Methode: CMIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Anti-HCV
Synonyme: Hepatitis C, HCV-Suchtest
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 7-140 Tage (Mittel: 50).
Klinische Indikationen: Suchtest bei Verdacht auf eine Hepatitis C-Infektion
Methode: CMIA
Referenzbereiche: negativ
Anti-HCV-Immunoblot
Synonyme: Hepatitis C-Bestätigungstest
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Bestätigung eines reaktiven HCV-Suchtestes
Methode: Immunoblot
Referenzbereiche: s. Befundbericht
158 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Anti-HDV (IgG/IgM) (W)
Anti-HDV (IgG/IgM) (W)
Synonyme: Hepatitis D
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Anti-HDV (IgG/IgM) ist ca. 4-6 Wochen nach Erkrankungsbeginn nachweisbar.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Koinfektion oder Superinfektion einer bestehenden Hepatitis
B. Die Bestimmung ist nur sinnvoll bei Nachweis von → HBs-Antigen, Seite 260.
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ
Anti-HEV (IgG) (W)
Synonyme: Hepatitis E
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 10-60 Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf eine Hepatitis E bei Reisenden aus Endemiegebieten (z.B.
Südostasien), insbesonderer nach Ausschluss einer Hepatitis A und anderer Ursachen einer akuten
Hepatitis.
Methode: ELISA
Referenzbereiche: negativ
Anti-Müller-Hormon (W)
Synonyme: Müllerian-Inhibiting-Substance; MIS; AMH
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Abschätzung der Sertolizell-Funktion
Gonadendysgenesie
Intersexualität
AMH-Mangelsyndrom (Müller-Gang-Persistenzsyndrom)
Polycystisches Ovar-Syndrom (PCO)
Ovarantwort bei In-vitro-Fertilisation
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Anti-Staphylolysin (W)
Synonyme: ASTA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Serologischer Nachweis von Staphylokokkeninfektionen, insbesondere bei
niedrigen Titern der → Streptokokken-Antikörpernachweis.
Methode: Indirekter Agglutinationstest
Referenzbereiche: < 2,0 U/ml
Anti-Streptokokken DNAse B
Synonyme: Anti-Streptodornase B, ADNAse B, Anti-DNAse B
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle von Infektionen mit Streptokokken der
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 159

Antikörper (IgA) gegen Gliadin
Gruppe A, insbesondere bei sekundären Folgeerkrankungen wie rheumatisches Fieber, Superinfektionen
der Haut und ggf. Glomerulonephritis
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: < 200 U/ml
Anti-Streptokokken-Hyaluronidase (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle von Infektionen mit Streptokokken der
Gruppe A, insbesondere bei sekundären Folgeerkrankungen wie rheumatisches Fieber, Superinfektionen
der Haut und ggf. Glomerulonephritis
Methode: IHA
Referenzbereiche: < 300 U/ml
Anti-Streptolysin O
Synonyme: ASL, ASLO
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle von Infektionen mit Streptokokken der
Gruppe A, insbesondere bei sekundären Folgeerkrankungen wie rheumatisches Fieber, Superinfektionen
der Haut und ggf. Glomerulonephritis
Methode: Immunturbidimetrie
Referenzbereiche: Erwachsene: < 200 IU/ml
Kinder: < 150 IU/ml
Antidiuretisches Hormon (W)
Synonyme: ADH, Vasopressin
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Plasma und 2 ml Serum
10 ml Urin
Abnahmehinweise: Wegen starker zirkadianer Schwankungen parallel Osmolalität im Serum und
Urin bestimmen.
EDTA-Blut sofort nach der Blutentnahme zentrifugieren.
Vor der Blutentnahme keinen Kaffee oder Tee, kein Nikotin, ggf. Medikamente 48 Std. vorher absetzen.
Bei Schwangeren im Abnahmeröhrchen Peptidasehemmer (Trasylol) vorlegen.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Diabetes insipidus als weitere Diagnostik bei Polyurie und
Polydipsie nach Ausschluss eines Diabetes mellitus
Methode: RIA
Referenzbereiche: s. Befundbereicht
(Normwerte abhängig von Osmolalität)
Antikörper (IgA) gegen Gliadin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik der Zöliakie,
Verlaufskontrolle/Diätüberwachung bei Zöliakie,
Serologische Abklärung bei Erkrankungen mit erhöhtem Risiko der Entwicklung einer Zöliakie,
160 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Serologische Abklärung bei Zottenatrophie unklarer Genese
Methode: FEIA
Referenzbereiche: < 7,0 U/ml
Antikörper (IgG) gegen Gliadin
Antikörper (IgG) gegen Gliadin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik der Zöliakie,
Serologische Abklärung bei Erkrankungen mit erhöhtem Risiko für die Entwicklung einer Zöliakie,
Serologische Abklärung bei Zottenatrophie unklarer Genese
(auch bei nachgewiesenem IgA-Mangel)
Methode: FEIA
Referenzbereiche: < 7,0 U/ml
Antikörper gegen Cardiolipin (IgG und IgM)
Synonyme: Phospolipid-Antikörper
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Venöse bzw. arterielle Gefässverschlüsse (Antiphospholipid-Syndrom),
Thrombozytopenie,
rezidivierende Aborte
Methode: FEIA
Referenzbereiche: < 10 U/ml
Antikörper gegen Erythropoietin (W)
Synonyme: Auto-Ak gegen EPO
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Erythroblastopenie, “Pure red cell aplasia“ (PRCA) unter Gabe von Erythropoietin
Methode: RIP
Referenzbereiche: negativ
Antikörper gegen mutiertes citrulliniertes Vimentin (W)
Synonyme: Anti-MCV
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik der rheumatoiden Arthritis
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Antikörper gegen p53 (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei verschiedenen Tumorerkrankungen (Colon, Ovar,
Leber)
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ: < 60 U/ml
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 161

Antioxidative Kapazität (W)
grenzwertig: 60 – 120 U/ml
positiv: > 120 U/ml
Antikörper gegen ß2-Glykoprotein I
Synonyme: Phospholipid-Antikörper
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Venöse bzw. arterielle Gefässverschlüsse (Antiphospholipid-Syndrom),
Thrombozytopenie, rezidivierende Aborte
Methode: FEIA
Referenzbereiche: negativ: < 7,0 U/ml
grenzwertig: 7,0 – 10,0 U/ml
positiv: > 10,0 U/ml
Antikörper-Suchtest
Synonyme: Blutgruppenbestimmung, indirekter AHG-Test, indirekter Coombstest
Probenmaterial: 9 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Für die Blutguppen-Serologie ist eine NUR für diesen Zweck bestimmte Blutprobe
(separate Monovette) erforderlich. Auf eine eindeutige Kennzeichnung (z.B. mit Namen, Vornamen
und Geburtsdatum) ist zu achten.
Klinische Indikationen: Vorbereitung einer Operation, Vorbereitung einer Transfusion, Vorbereitung
einer Transplantation, Mutterschaftsvorsorge, Ausstellung eines Blutgruppen-Ausweises
Methode: Säulenagglutination
Referenzbereiche: negativ
Antimon im Serum (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nach Expositionsende
Klinische Indikationen: Beurteilung der Antimonbelastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Antimon im Urin (U)
Probenmaterial: 2 ml Urin
Abnahmehinweise: Probennahme nach Expositionsende
Klinische Indikationen: Beurteilung der Antimonbelastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Antioxidative Kapazität (W)
Synonyme: TAS, totaler oxidativer Status
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das Blut bitte direkt nach der Abnahme und Gerinnung zentrifugieren, das
Serum in ein separates Röhrchen ohne Zusätze abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C)
162 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Antithrombin-Aktivität
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei chronischen Erkrankungen mit Verdacht auf
eine gestörte antioxidative Kapazität, insbesondere bei verminderter Bestimmung antioxidativer Substanzen
Methode: Photochemolumineszenz
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Antithrombin-Aktivität
Synonyme: früher: AT III
Probenmaterial: 2 ml Citrat-Plasma
korrekt gefüllte Citratblut-Monovette
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Verdacht auf Antithrombin-Mangel,
DD bei thromboembolischen Erkrankungen,
Diagnostik/Monitoring bei DIC,
Monitoring einer Antithrombin-Therapie,
Leberfunktionsstörungen
Nephrotisches Syndrom
HELLP-Syndrom
Methode: Koagulometrie
Referenzbereiche: 83 – 128 %
Antithrombin-Konzentration (U)
Synonyme: früher: AT III
Probenmaterial: 2 ml Citrat-Plasma
korrekt gefüllte Citratblut-Monovette
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Klassifizierung eines angeborenen Antithrombin-Mangels
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 19 – 31 mg/dl
APC-Resistenz
Synonyme: Aktivierte Protein C-Resistenz
Probenmaterial: 1 ml Citrat-Plasma,
korrekt gefüllte Citratblut-Monovette
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Heparin, Lupusantikoagulans und Vitamin K-Antagonisten können die Bestimmung stören.
Klinische Indikationen: Abklärung einer angeborenen Thrombophilie,
Abklärung der Ursache einer Thromboembolie,
Frauen mit positiver Familienanamnese vor Einnahme oraler Kontrazeptiva,
Abklärung der Ursachen rez. Aborte,
Familienangehörige bereits bekannter Patienten mit APC-Resistenz
Methode: Koagulometrie
Referenzbereiche: > 2,4 Ratio
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 163

aPTT
Apolipoprotein A1
Synonyme: APO A1
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nach einer Nahrungskarenz von ca. 10-14 Stunden
Klinische Indikationen: Familiäre Hyperlipoproteinämie, Risikoabschätzung für die Entwicklung
einer Arteriosklerose
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Apolipoprotein B
Synonyme: APO B
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nach einer Nahrungskarenz von ca. 10-14 Stunden
Klinische Indikationen: Familiäre Hyperlipoproteinämie,
Riskoabschätzung für die Entwicklung einer Arterioklerose
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Apolipoprotein B100-Genotypisierung (U)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einverständniserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Klinische Indikationen: Hypercholesterinämie,
Familien-Untersuchung bei bekanntem Apo-B-100-Defekt
Atherosklerose,
Koron. Herzerkrankung
Methode: PCR und Schmelzpunktanalyse
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Apolipoprotein E-Genotypisierung (U)
Synonyme: Fettstoffwechsel, Alzheimer Typ-2 (APOE4, OMIM104310)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einverständniserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Klinische Indikationen: Hereditäre Fettstoffwechselstörungen
Präsenile Altersdemenz im ca. 6. Lebensjahrzehnt ohne Hinweise auf Familiarität
Methode: PCR und Schmelzpunktanalyse
Referenzbereiche: s. Befundbericht
aPTT
Synonyme: aktivierte partielle Thromboplastinzeit
Probenmaterial: 1 ml Citrat-Plasma
korrekt gefüllte Citratblut-Monovette
164 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Arachidonsäure (U)
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Globaler Suchtest für erworbene oder angeborene Blutgerinnungsstörungen
(insbesondere Hämophilie A und B),
Kontrolle einer Heparin-bzw. Hirudintherapie,
Suchtest für Lupusantikoagulanzien bzw. Inhibitoren gegen Gerinnungsfaktoren, Fibrinolysetherapie,
Bei Verdacht auf DIC bzw. Hyperfibrinolyse
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: 25,1 – 36,5 Sekunden
Arachidonsäure (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: 97 – 257 mg/l
Aripiprazol (U)
Synonyme: Handelsname: Abilify ®
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Aripiprazoltherapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: therapeutischer Bereich
bei Gabe von 5 mg/Tag: 50-100 ng/ml
bei Gabe von 15 mg/Tag: 150-250 ng/ml
bei Gabe von 30 mg/Tag: 300-450 ng/ml
Arsen im Haar (U)
Probenmaterial: 500 mg Haare
Klinische Indikationen: Beurteilung der Arsenbelastung, Diagnose der Intoxikation
Methode: AAS
Referenzbereiche: < 0,5 µg/g
Arsen im Serum (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Beurteilung der Arsenbelastung, Diagnose der Intoxikation
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Arsen im Urin (W)
Probenmaterial: 10 ml Urin
Abnahmehinweise: Probennahme nach Expositonsende
Klinische Indikationen: Beurteilung der Arsenbelastung, Diagnose der Intoxikation
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: < 31 µg/l
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 165

Astrovirus-Antigennachweis
Arylsulfatase A (U)
Synonyme: Sulfatase A, Cerebrosidsulfat-Sulfohydrolase
Probenmaterial: 2 ml Serum oder 10 ml Urin
Abnahmehinweise: Für die Uringewinnung bitte Urisog-Spezialröhrchen anfordern.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Arylsulfatase A-Mangel bei Verdacht auf MLD (metachromatische
Leukodystrophie)
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Serum: 3,6 – 9,4 nmol/h/ml
Urin: 41 – 178 nmol/h/ml
Aspergillus-Antigen (W)
Probenmaterial: 3 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Aspergillus-Mykose (Aspergillose), insbesondere bei immunsupprimierten
Patienten mit Veracht auf allergische bronchopulmonale Aspergillose oder Aspergillom
der Lunge oder invasive/systemische Aspergillose
Methode: ELISA
Referenzbereiche: negativ
Aspergillus-Antikörper (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum (Hämolyse vermeiden!)
Klinische Indikationen: Verdacht auf Aspergillus-Mykose (Aspergillose), insbesondere bei immunsupprimierten
Patienten mit Veracht auf allergische bronchopulmonale Aspergillose oder Aspergillom
der Lunge oder invasive/systemische Aspergillose
Methode: IHA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
AST
Synonyme: Aspartat-Aminotransferase, ASAT, GOT
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugiert werden.
Klinische Indikationen: Diagnose, Differenzierung, Verlaufs- und Therapiekontrolle von Erkrankungen
der Leber und der Gallenwege, von Muskelerkrankungen und bei Herzinfarkt
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Männer: 10 – 50 U/l
Frauen: 10 – 35 U/l
Kinder: altersabhängige Referenzbereiche
Astrovirus-Antigennachweis
Probenmaterial: 2 g Stuhl
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 1 – 3 Tage.
Klinische Indikationen: Akute Gastroenteritis, vor allem bei Kleinkindern
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ
166 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Asymmetrisches Dimethylarginin (W)
Asymmetrisches Dimethylarginin (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das Blut bitte nach der Abnahme zentrifugieren, das Serum in ein separates
Röhrchen pipettieren und dann einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Abschätzung des kardiovaskulären Risikos
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Atenolol (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Atenolol-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: Therapeutischer Bereich: 100 – 1000 µg/l
Toxischer Bereich: > 2000 µg/l
Atypische Cholinesterasen (U)
Synonyme: Dibucain-Zahl, Fluorid-Zahl
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugiert werden.
Klinische Indikationen: Abklärung einer verlängerten Apnoe im Rahmen einer Narkose bei
Verabreichung von Succinylcholin oder Mivacurium zur Muskelrelaxation
Familienuntersuchung bei Patienten mit atypischen Cholinesterase-Verianten
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Dibucain-Nummer
normal: > 70 %
intermediär: 30-70 %
atypisch: < 30 %
Fluorid-Nummer
normal: > 55 %
intermediär: 40 – 55 %
atypisch: < 40 %
Auto-Ak gegen Acetylcholinrezeptor (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Myastenia gravis
Individuelle Verlaufskontrolle
Methode: RIA
Referenzbereiche: < 0,25 nmol/l
Auto-Ak (IgA) gegen Endomysium
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik der Zöliakie,
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 167

Auto-Ak (IgA, IgG, IgM) gegen MAG (W)
Verlaufskontrolle/Diätüberwachung bei Zöliakie,
Serologische Abklärung bei Erkrankungen mit erhöhtem Risiko der Entwicklung einer Zöliakie,
Serologische Abklärung bei Zottenatrophie unklarer Genese
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (< 1:10)
Auto-Ak (IgA) gegen Transglutaminase
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik der Zöliakie,
Verlaufskontrolle/Diätüberwachung bei Zöliakie,
Serologische Abklärung bei Erkrankungen mit erhöhtem Risiko der Entwicklung einer Zöliakie,
Serologische Abklärung bei Zottenatrophie unklarer Genese
Methode: FEIA
Referenzbereiche: < 7 U/ml
Auto-Ak (IgA, IgG) gegen Becherzellen (U)(N)
Synonyme: Colitis ulcerosa
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei chronisch-entzündlichen Darmerkrankungen, insbesondere
bei Verdacht auf Colitis ulcerosa
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak (IgA, IgG) gegen exokrines Pankreas
Synonyme: Morbus Crohn
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei chronisch-entzündlichen Darmerkrankungen, insbesondere
bei Verdacht auf Morbus Crohn
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (Titer < 1:10)
Auto-Ak (IgA, IgG, IgM) gegen MAG (W)
Synonyme: Myelin-Assoziiertes-Glykoprotein
Probenmaterial: 1 ml Serum
1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Chronische demyelinisierende sensomotorische Polyneuropathie, insbesondere
bei bestehender monoklonaler IgM-Gammopathie (MGUS)
Methode: ELISA
Referenzbereiche: Serum: < 1000 U/ml
Liquor: < 100 U/ml
168 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Auto-Ak (IgG) gegen alveoläre Basalmembranen
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Goodpasture-Syndrom,
idiopathische Lungenblutungen
Auto-Ak (IgG) gegen Aquaporin 4 (W)
Auto-Ak (IgG) gegen alveoläre Basalmembranen
Synonyme: AQP-4
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Neuromyelitis optica (NMO, opticospinale Enzephalomyelitis, Devic-
Syndrom)
Differenzialdiagnose der Multiplen Sklerose
Methode: RIP
Referenzbereiche: < 10 Ak-Ratio
Auto-Ak (IgG) gegen Asialoglycoprotein-Rezeptor (U)(N)
Synonyme: ASGPR-Ak
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Autoimmune Lebererkrankungen (AIH, PBC, PSC),
besonders autoimmune Hepatitis (AIH)
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak (IgG) gegen BPI (U)(N)
Synonyme: bactericidal permeability increasing protein, ANCA
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei positivem Nachweis von → Auto-Ak gegen
Granulozyten-Zytoplasma, Seite 180 im IFT,
chronisch-entzündliche Darmerkrankungen,
autoimmune Lebererkrankungen,
Wegenersche Granulomatose, Churg-Strauss-Syndrom, rheumatoide Arthritis,
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak (IgG) gegen Cathepsin G (U)(N)
Synonyme: ANCA
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei positivem Nachweis von → Auto-Ak gegen
Granulozyten-Zytoplasma, Seite 180 im IFT,
Wegenersche Granulomatose,
rheumatoide Arthritis,
mikroskopische Polyarteriitis,
Kollagenosen,
chronisch-entzündliche Darmerkrankungen
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 169

Auto-Ak (IgG) gegen Elastase (U)(N)
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak (IgG) gegen CCP
Synonyme: Cyclische citrullinierte Peptide
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik der rheumatoiden Arthritis (RA), Differentialdiagnostik von
Kollagenosen mit Begleitarthritis (SLE, Sjögren-Syndrom) und RA, DD der erosiven Form SLE –
RA
Methode: FEIA
Referenzbereiche: negativ: < 7 U/ml
grenzwertig: 7 – 10 U/ml
positiv: > 10 U/ml
Auto-Ak (IgG) gegen CV2
Synonyme: Auto-Ak (IgG) gegen CRMP5
Probenmaterial: 1 ml Serum und/oder
1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Periphere Neuropathie, Kleinhirnataxie bei paraneoplastischem Syndrom,
insbesondere bei Bronchialkarzinom (kleinzelligen), Uterussarkom, malignes lymphoepitheliales
Thymom, Porstatakrazinom
Methode: IFT
Referenzbereiche: Serum: negativ (< 1:100)
Liquor: negativ
Auto-Ak (IgG) gegen dsDNS
Synonyme: Doppelstrang-DNA, nDNS
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei positivem Suchtest (→ Auto-Ak (IgG) gegen Zellkernantigene,
Seite 178),
Lupus erythematodes
Therapie-/Verlaufskontrolle des SLE
Methode: FEIA
Referenzbereiche: negativ: < 10 IU/ml
grenzwertig: 10 – 15 IU/ml
positiv: > 15 IU/ml
Auto-Ak (IgG) gegen Elastase (U)(N)
Synonyme: ANCA
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei positivem Nachweis von → Auto-Ak gegen
Granulozyten-Zytoplasma, Seite 180 im IFT,
Wegenersche Granulomatose,
Mikroskopische Polyarteriitis,
170 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

heumatoide Arthritis,
Kollagenosen,
Rapid progressive Glomerulonephritis,
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak (IgG) gegen ENA-Gruppentest
Auto-Ak (IgG) gegen ENA-Gruppentest
Synonyme: Extrahierbare nukleäre Antigene
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Kollagenosen: SLE, Sjögren-Syndrom, Polymyositits, Dermatomyositis,
Skerodermie, Mischkollagenosen,
Durchführung auch bei negativem ANA-IFT sinnvoll.
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ: < 20 RE/ml
positiv: > 20 RE/ml
Auto-Ak (IgG) gegen glomeruläre Basalmembran
Synonyme: GBM
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Goodpasture-Syndrom,
Anti-GBM-Glomerulonephritis,
rapid-progressive Glomerulonephritis
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (< 1:5)
Auto-Ak (IgG) gegen Herzmuskel
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Postkardiotomie-Syndrom
Post-Myokardinfarkt-Syndrom
Myokarditis
Kardiomyopathien
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (< 1:100)
Auto-Ak (IgG) gegen Histone (U)(N)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Bestätigungstest bei positivem Suchtest (→ Auto-Ak (IgG) gegen Zellkernantigene,
Seite 178),
Lupus erythematodes, insbesondere durch Medikamente induziert,
Rheumatoide Arthritis,
Methode: ELISA
Referenzbereiche: < 20 E/ml
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 171

Auto-Ak (IgG) gegen Ma
Auto-Ak (IgG) gegen Hu
Synonyme: Neuronenkerne, ANNA-1
Probenmaterial: 1 ml Serum und/oder
1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Paraneoplastisches Syndrom, insbesondere bei Bronchialkarzinom
Methode: IFT
Referenzbereiche: Serum: negativ (< 1:100)
Liquor: negativ
Auto-Ak (IgG) gegen Jo-1
Synonyme: ENA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Bestätigung eines positiven Suchtestes (→ Auto-Ak (IgG) gegen Zellkernantigene,
Seite 178, → Auto-Ak (IgG) gegen ENA-Gruppentest, Seite 171),
Verlaufskontrolle,
Polymyositis,
Dermatomyositis
Methode: Immunoblot
Referenzbereiche: negativ
Auto-Ak (IgG) gegen Ku (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Progressive Sklerodermie, Dermatomyositis,
SLE, Polymyositis/Dermatoymyosisitis
Methode: RIP
Referenzbereiche: < 10 Ak-Ratio
Auto-Ak (IgG) gegen Laktoferrin (U)(N)
Synonyme: ANCA
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei positivem Nachweis von → Auto-Ak gegen
Granulozyten-Zytoplasma, Seite 180 im IFT,
Kollagenosen,
rheumatoide Arthritis
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak (IgG) gegen Ma
Synonyme: Anti-Ta
Probenmaterial: 1 ml Serum und/oder
1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Kleinhirn- , oder Stammhirndysfunktion, Rhombenzephalitis bei paraneoplastischem
Syndrom, v.a. bei Mamma-, Colon-, Parotis-Karzinomen
172 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: IFT
Referenzbereiche: Serum: negativ (< 1:100)
Liquor: negativ
Auto-Ak (IgG) gegen Myeloperoxidase
Auto-Ak (IgG) gegen Myeloperoxidase
Synonyme: MPO, ANCA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung zusammen mit → Auto-Ak gegen Granulozyten-
Zytoplasma, Seite 180 im IFT,
Rapid progressive Glomerulonephritis (RPGN),
verschiedene Vaskulitiden,
chronisch-entzündliche Darmerkrankungen,
Autoimmune Lebererkrankungen,
rheumatoide Arthritis,
Wegenersche Granulomatose
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 20 RU/ml
Auto-Ak (IgG) gegen Neuronenkerne Typ 3 (W)
Synonyme: ANNA-3; anti-neuronukleäre Antikörper Typ 3
Probenmaterial: 1 ml Serum und/oder
1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Paraneoplastische neurologische Symptome (Neuropathie, Kleinhirndegeneration,
limbische Enzephalitis, fokale Epilepsie, Opsoklonus-Myoklonus-Ataxie, Polyneuropathie
(autonom, sensibel, sensomotorisch), extrapyramidal motorische Syndrome) bei Tumoren der oberen
Luftwege und des Ösophagus
Methode: IIFT (Serum)
Westernblot (Liquor)
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak (IgG) gegen NMDA-Rezeptoren (W)
Synonyme: Autoantikörper gegen Glutamatrezeptoren vom Typ NMDA
Probenmaterial: 1 ml Serum und/oder
1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Diagnostik der autoimmunen Enzephalitis (Anti-NMDA-Rezeptor-
Enzephalitis)
Methode: IIFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak (IgG) gegen nRNP
Synonyme: U1-nRNP, ENA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Bestätigung eines positiven Suchtestes (→ Auto-Ak (IgG) gegen Zellkernantigene,
Seite 178, → Auto-Ak (IgG) gegen ENA-Gruppentest, Seite 171),
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 173

Auto-Ak (IgG) gegen Ri
Verlaufskontrolle,
Mixed connective tissue disease (MCTD, Sharp-Syndrom),
SLE
Methode: Immunoblot
Referenzbereiche: negativ
Auto-Ak (IgG) gegen Nukleosomen (W)
Synonyme: Auto-Ak (IgG) gegen Nucleosomen
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Systemischer Lupus erythematodes (SLE)
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak (IgG) gegen PM-Scl
Synonyme: PM-1
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Kollagenosen, insbesondere Polymyositis, Dermatomyositis
Methode: Immunoblot
Referenzbereiche: negativ
Auto-Ak (IgG) gegen Proteinase 3
Synonyme: PR3, ANCA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung zusammen mit → Auto-Ak gegen Granulozyten-
Zytoplasma, Seite 180 im IFT,
Wegenersche Granulomatose,
Rapid progressive Glomerulonephritis (RPGN),
Kawasaki-Syndrom,
Verschiedene Vaskulitiden,
Uveitis
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 20 RU/ml
Auto-Ak (IgG) gegen Ri
Synonyme: Neuronenkerne, ANNA-2
Probenmaterial: 1 ml Serum und/oder
1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Paraneoplastisches Syndrom, insbesondere bei Bronchial- und Mammakarzinom
Methode: IFT
Referenzbereiche: Serum: negativ (< 1:100)
Liquor: negativ
174 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Auto-Ak (IgG) gegen ribosomales P-Protein (U)
Synonyme: RNS, Ribosomen
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Kollagenosen, insbesondere Lupus erythematodes
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak (IgG) gegen Scl 70
Auto-Ak (IgG) gegen ribosomales P-Protein (U)
Synonyme: DNS-Topoisomerase I, ENA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Bestätigung eines positiven Suchtestes (→ Auto-Ak (IgG) gegen Zellkernantigene,
Seite 178, → Auto-Ak (IgG) gegen ENA-Gruppentest, Seite 171),
Verlaufskontrolle
Progressive Systemsklerose/Sklerodermie
Methode: Immunoblot
Referenzbereiche: negativ
Auto-Ak (IgG) gegen Skelettmuskulatur
Synonyme: quergestreifte Muskulatur
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Myasthenia gravis,
Polymyositis,
Thymom
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (< 1:100)
Auto-Ak (IgG) gegen SLA/LP
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Autoimmune Hepatitis
Methode: Immunoblot
Referenzbereiche: negativ
Auto-Ak (IgG) gegen Sm
Synonyme: ENA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Bestätigung eines positiven Suchtestes (→ Auto-Ak (IgG) gegen Zellkernantigene,
Seite 178, → Auto-Ak (IgG) gegen ENA-Gruppentest, Seite 171),
Verlaufskontrolle,
Lupus erythematodes (SLE)
Methode: Immunoblot
Referenzbereiche: negativ
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 175

Auto-Ak (IgG) gegen Thyreoglobulin
Auto-Ak (IgG) gegen SS-A
Synonyme: Ro, ENA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Bestätigung eines positiven Suchtestes (→ Auto-Ak (IgG) gegen Zellkernantigene,
Seite 178, → Auto-Ak (IgG) gegen ENA-Gruppentest, Seite 171),
Verlaufskontrolle,
Sjögren-Syndrom,
Lupus erythematodes
Methode: Immunoblot
Referenzbereiche: negativ
Auto-Ak (IgG) gegen SS-B
Synonyme: La, ENA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Bestätigung eines positiven Suchtestes (→ Auto-Ak (IgG) gegen Zellkernantigene,
Seite 178, → Auto-Ak (IgG) gegen ENA-Gruppentest, Seite 171),
Verlaufskontrolle,
Sjögren-Syndrom,
Lupus erythematodes
Methode: Immunoblot
Referenzbereiche: negativ
Auto-Ak (IgG) gegen ssDNS (W)(N)
Synonyme: DNS-Autoantikörper
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei positivem Suchtest (Auto-Ak (IgG) gegen Zellkernantigene),
Lupus erythematodes
Therapie-/Verlaufskontrolle des SLE
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak (IgG) gegen Thyreoglobulin
Synonyme: TAK
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Anforderung bei negativem Befund für → Auto-Ak (IgG) gegen TPO, Seite
177 und
Autoimmunthyreoiditis Typ Hashimoto
Hypothyreose unklarer Ursache,
Struma unklarer Ursache,
Abklärung einer polyglandulären Autoimmunerkrankung,
Familiäre Untersuchung bei bekannter autoimmuner Schilddrüsenerkrankung,
Verdacht auf postpartale oder Schwangerschaftsthyreoiditis,
Differentialdiagnostik der Hyperthyreose unbekannter Ätiologie.
176 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Gestörte Wiederfindung bei Bestimmung von Thyreoglobulin
Methode: CMIA
Referenzbereiche: < 4,11 IE/ml
Auto-Ak (IgG) gegen TPO
Synonyme: Thyreoidale Peroxidase, MAK
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Autoimmunthyreoiditis Typ Hashimoto,
Hypothyreose unklarer Ursache,
Struma unklarer Ursache,
Abklärung einer polyglandulären Autoimmunerkrankung,
Familiäre Untersuchung bei bekannter autoimmuner Schilddrüsenerkrankung,
Verdacht auf postpartale oder Schwangerschaftsthyreoiditis,
Differentialdiagnostik der Hyperthyreose unbekannter Ätiologie.
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: < 34 IU/ml
Auto-Ak (IgG) gegen Tr
Auto-Ak (IgG) gegen TPO
Synonyme: PCA-Tr
Probenmaterial: 1 ml Serum und/oder
1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Kleinhirndegeneration als Symptom eines paraneoplastischen Syndroms v.a.
beim Morbus Hodgkin
Methode: IFT
Referenzbereiche: Serum: negativ (< 1:100)
Liquor: negativ
Auto-Ak (IgG) gegen tubuläre Basalmembran
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Interstitielle Nierenerkrankungen,
Glomerulonephritis
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (< 1:5)
Auto-Ak (IgG) gegen Yo
Synonyme: Purkinjezellen
Probenmaterial: 1 ml Serum und/oder
1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Paraneoplastische Syndrome (ZNS-Symptomatik),
subakute zerebrale/zerebelläre Degeneration
Methode: IFT
Referenzbereiche: Serum: negativ (< 1:100)
Liquor: negativ
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 177

Auto-Ak gegen Carboanhydrase II (W)
Auto-Ak (IgG) gegen Zellkernantigene
Synonyme: ANA, ANF, Antinukleäre Faktoren
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Kollagenosen,
Rheumtoide Arthritis,
Autoimmune Hepatitis,
Primäre Biliäre Zirrhose,
Verdacht auf Autoimmunerkrankung
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ
Auto-Ak (IgG) gegen Zentromere
Synonyme: CENP-B, Centromere
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Sklerodermie
CREST-Syndrom
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (Titer < 1:80)
Auto-Ak (IgG, IgM) gegen Ganglioside (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum und/oder
1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Motoneuron-Erkrankungen, Amyotrophe Lateralsklerose, Guillain-Barré-
Syndrom, CIDP
Methode: ELISA
Referenzbereiche: Serum: < 10 Ak-Ratio
Liquor: < 10 Ak-Ratio
Auto-Ak gegen Amphiphysin
Probenmaterial: 1 ml Serum und/oder
1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei Verdacht auf Paraneoplastische Neuropathie,
besonders bei Mamma- bzw. Bronchial-Tumor
Methode: IFT
Referenzbereiche: Serum: negativ (< 1:100)
Liquor: negativ
Auto-Ak gegen Carboanhydrase II (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei negativem ANA-Suchtest bei: Lupus erythematodes,
Polymyositis, Dermatmyositis, Sklerodermie
Der Parameter hat jedoch nur eine geringe Krankheitsspezifität.
Methode: Westernblot
Referenzbereiche: s. Befundbericht
178 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Auto-Ak gegen Desmoglein 1 (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik von Pemphigus
Methode: RIP
Referenzbereiche: < 10 Ak-Ratio
Auto-Ak gegen Desmoglein 3 (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik von Pemphigus
Methode: RIP
Referenzbereiche: < 10 Ak-Ratio
Auto-Ak gegen epidermale Basalmembranen (W)
Synonyme: Pemphigoid-Antikörper
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Bullöses Pemphigoid,
Herpes gestationis,
IgA-Pemphigoid
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (Titer < 1:10)
Auto-Ak gegen Gallengangsepithel
Auto-Ak gegen Desmoglein 1 (W)
Synonyme: Gallencanaliculi
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diese Untersuchung hat nur eine geringe klinische Bedeutung
Autoimmune Hepatitis
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (< 1:100)
Auto-Ak gegen Gefäßendothel
Synonyme: AECA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Vaskulitis, Kawasaki-Syndrom
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (< 1:100)
Auto-Ak gegen glatte Muskulatur
Synonyme: SMA, ASMA, Aktin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Autoimmune Hepatitis,
Leberzirrhose,
PBC,
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 179

Auto-Ak gegen Insulin (W)
chronische Virus-Hepatitis,
Rheumatoide Arthritis
Viruserkrankungen,
Lupus erythematodes,
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (< 1:100)
Auto-Ak gegen Glutamat-Decarboxylase
Synonyme: GAD-Antikörper
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diabetes mellitus Typ I, auch Prädisposition und Verwandte 1. Grades von
Patienten,
Stiff man-Syndrom
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 5,0 IU/ml
Auto-Ak gegen Granulozyten-Zytoplasma
Synonyme: ANCA, ACPA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Wegenersche Granulomatose,
rapid progressive Glomerulonephritis,
Vaskulitiden (Panarteriitis, mikroskopische Polyarteriitis, Churg-Strauss-Syndrom u.a.),
Rheumatoide Arthritis,
Colitits ulcerosa,
M. Crohn,
Primär sklerosierende Cholangitis (PSC),
Autoimmune Lebererkrankungen,
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (< 1:20)
Auto-Ak gegen Inselzellen
Synonyme: ICA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diabetes mellitus Typ I
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (< 1:10)
Auto-Ak gegen Insulin (W)
Synonyme: IAA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diabetes mellitus Typ I,
auch zur Abschätzung der Prädisposition und bei Verwandten I. Grades
Methode: RIA
Referenzbereiche: < 0,4 U/ml
180 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Auto-Ak gegen Intrinsic Faktor (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Perniziöse Anämie,
Chronisch-atrophische Gastritis Typ A
Vitiligo,
Autoimmune Endokrinopathien
Methode: CLIA
Referenzbereiche: < 1,5 U/ml
Auto-Ak gegen LC-1 (U)(N)
Synonyme: Liver Cytosol Antikörper Typ 1
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Autoimmunhepatitis Typ 2
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak gegen Leber-Nieren-Mikrosomen
Synonyme: LKM
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Autoimmune Lebererkrankungen (AIH, PBC, PSC),
besonders autoimmune Hepatitis (AIH)
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (< 1:100)
Auto-Ak gegen Mitochondrien
Synonyme: AMA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Autoimmune Lebererkrankungen (AIH, PBC, PSC)
Autoimmune Hepatitis
Primär biliäre Zirrhose
Primär sklerosierende Cholangitis
Kollagenosen
Lupus erythematodes
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (< 1:100)
Auto-Ak gegen Nebennierenrinde (W)
Synonyme: 21-Hydroxylase
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Morbus Addison,
Unklare Nebenniereninsuffizienz
Methode: RIP
Referenzbereiche: < 10 Ak-Ratio
Auto-Ak gegen Intrinsic Faktor (W)
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 181

Auto-Ak gegen präsynaptischen P/Q-Calcium-Kanal (W)
Auto-Ak gegen Ovar (U)(N)
Synonyme: Steroidzellen
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Infertilität
Autoimmune Polyendokrinopathie
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak gegen Parietalzellen
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Perniziöse Anämie
Chronisch-atrophische Gastritis Typ A
Autoimmune Polyendokrinopathien
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (Titer < 1:100)
Auto-Ak gegen Parotisgangepithel (U)(N)
Synonyme: Speicheldrüsenausführungsgang
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Sjögren-Syndrom
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak gegen PCNA
Synonyme: Proliferating Cell Nuclear Antigen, Cyclin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Systemischer Lupus erythematodes (SLE)
Methode: IFT
Auto-Ak gegen Phospholipase A2-Rezeptor (W)
Synonyme: Anti-PLA2R
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Nachweis und Verlaufskontrolle der idiopathischen membranösen Glomerulonephritis
(IMN)
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak gegen präsynaptischen P/Q-Calcium-Kanal (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum und/oder
1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Lambert-Eaton-Syndrom
Methode: RRA
182 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Referenzbereiche: P/Q-Typ: < 25 pmol/l
N-Typ: < 10 Ak-Ratio
Auto-Ak gegen Ribosomen (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Lupus erythematodes
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak gegen RNA-Polymerase I (W)
Auto-Ak gegen Ribosomen (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Bestätigung eines positiven Suchtestes (→ Auto-Ak (IgG) gegen Zellkernantigene,
Seite 178) mit typischem Muster im Rahmen der Diagnostik von systemischem Lupus
eryhematodes (SLE) oder Sklerodermie
Methode: RZM-RIP/AUR
Referenzbereiche: negativ
Auto-Ak gegen Stachelzelldesmosomen (W)
Synonyme: Epidermale Interzellularsubstanz, Pemphigus-Ak, ICS
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik von Pemphigus
Methode: IIFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak gegen Thyroxin (U)(N)
Synonyme: T4-Ak
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei autoimmunen Schilddrüsenerkrankungen:
- Morbus Basedow
- Autoimmunthyreoiditis (Hashimoto)
Fehlende Plausibilität zwischen Messwerten für TSH und Thyroxin.
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak gegen Titin (W)
Synonyme: MGT-30
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Myasthenia gravis
Thymom
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 183

Autoantikörper gegen Spermien (U)(N)
Auto-Ak gegen Topoisomerase II (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Bestätigung eines positiven Suchtestes (→ Auto-Ak (IgG) gegen Zellkernantigene,
Seite 178, → Auto-Ak (IgG) gegen ENA-Gruppentest, Seite 171),
Verlaufskontrolle
Progressive Systemsklerose/Sklerodermie
Methode: ELISA
Referenzbereiche: negativ
Auto-Ak gegen Trijodthyronin (U)(N)
Synonyme: T3-Ak
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei autoimmunen Schilddrüsenerkrankungen:
- Morbus Basedow
- Autoimmunthyreoiditis (Hashimoto)
Fehlende Plausibilität zwischen Messwerten für TSH und
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Auto-Ak gegen TSH-Rezeptor
Synonyme: TRAK
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Hyperthyreose unklarer Ursache
Verdacht auf M. Basedow
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ: < 1,8 IE/l
grenzwertig: 1,8 – 1,9 IE/l
positiv: > 2,0 IE/l
Auto-Ak gegen Tyrosinphosphatase (U)
Synonyme: IA-2
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diabetes mellitus Typ I, auch Prädisposition und Verwandte I. Grades von
Patienten
Methode: RIA
Referenzbereiche: < 0,75 U/ml
Autoantikörper gegen Spermien (U)(N)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Unerfüllter Kinderwunsch
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
184 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Azathioprin als 6-Mercaptopurin (U)
Azathioprin als 6-Mercaptopurin (U)
Probenmaterial: 3 ml Serum, gefroren
Abnahmehinweise: Das Blut bitte nach der Abnahme zentrifugieren, das Serum in ein separates
Röhrchen abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C), lichtgeschützt lagern!
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring der Azathioprin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
B-Lymphozyten
Synonyme: CD19-Zellen
Probenmaterial: korrekt gefüllte EDTA-Monovette
Abnahmehinweise: EDTA-Monovette direkt nach der Abnahme durch Schwenken gründlich mischen
Klinische Indikationen: Primäre und sekundäre Immundefekte, Monitoring der HIV-Infektion,
hämatologische Systemerkrankungen
Methode: Durchflusszytometrie (Vollblut-Lyse-Methode, direkte Immunphänotypisierung)
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Babesia microti-Serologie (W)
Synonyme: Babesiose
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 1 bis 4 Wochen.
Klinische Indikationen: Die Babesiose ist eine duch Zecken der Arten Ixodes übertragene Infektionserkrankung,
die durch B. divergens (Europa) bzw. B. microti (Amerika) verursacht werden.
Sekundäre Infektionen durch Bluttransfusionen wurden beschrieben. Eine Parasitämie über
Monate/Jahre ist auch nach klinischer Ausheilung möglich.
Klinische Symptomatik: Fieber, Kopfschmerz, Übelkeit, Gewichstabnahme, Anämie sowie Spenomegalie,
Zeckenstich-Anamnese. Bei schweren Verläufen finden sich zudem Ikterus und auch Nierenversagen.
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ
Baclofen (U)(N)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Baclofen-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 0,1 – 0,6 µg/ml
Barbiturate im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Suchtest zum Nachweis des Gebrauchs von Barbituraten
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 185

BCR/ABL Translokation (U)
Barbiturate im Urin
Probenmaterial: 1 ml Urin
Abnahmehinweise: ggf. Probennahme überwachen
Klinische Indikationen: Suchtest zum Nachweis des Gebrauchs von Barbituraten
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ
Barium (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nach Expositonsende
Klinische Indikationen: Beurteilung der Bariumbelastung, Diagnose der Intoxikation
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: < 2,9 µg/l
Barium im Urin (W)
Probenmaterial: 2 ml Urin
Klinische Indikationen: Beurteilung der Bariumbelastung, Diagnose der Intoxikation
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: < 5,7 µg/l
Bartonella quintana-Serologie (W)
Synonyme: Fünf-Tage-Fieber (Wolhynisches Fieber)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 2-4 Wochen
Klinische Indikationen: Das Wolhynsche Fieber ist eine sehr seltene Erkrankung mit plötzlich einsetzenden
Fieberschüben über 3-5 Tagen Dauer, Arthralgien und Kopfschmerzen
Methode: IFT
Referenzbereiche: IgG < 1:64; IgM < 1:20
Basophilen Degranulationstest (U)(N)
Probenmaterial: 1 korrekt gefüllte EDTA-Monovette pro Allergen
Abnahmehinweise: Vor der Untersuchung sollte durch Rücksprache mit dem Labor die Verfügbarkeit
der Untersuchung für das jeweilige Allergen geklärt werden.
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung im Rahmen der Allergie-Diagnostik, insbesondere
bei Medikamenten und bei Verdacht auf Pseudoallergien
Referenzbereiche: < 20%
BCR/ABL Translokation (U)
Synonyme: Philadelphia-Chromosom, Leukämie mit BCR/ABL Translokation Chr.9;22
(MIM*151410) bei CML (MIM#608232) oder ALL (MIM%613065)
Probenmaterial: 10 ml EDTA-Blut
3 ml Knochenmark-EDTA-Blut
186 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Bence-Jones-Proteine (qualitativ) im Urin
Abnahmehinweise: Das Probenmaterial sollte in PAXgene-Röhrchen abgenommen werden.
Klinische Indikationen: Bei chronisch myeloischer Leukämie (CML) als früh diagnostizierbarer
Parameter geeignet. Quantitative Bestimmung zur Verlaufsbeobachtung/Remissionskontrolle unter
Therapie (z.B. mit Tyrosinkinasehemmer GLIVEC). Prognostischer Aussagewert auch unter ALL.
Methode: RT-PCR
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Bence-Jones-Proteine (qualitativ) im Urin
Probenmaterial: 1 ml Urin
Klinische Indikationen: Nachweis eine Bence-Jones-Proteinurie bei Plasmozytom, Immunozytom
oder CLL
Methode: Immunfixation
Referenzbereiche: negativ
Benperidol (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Abnahmezeit: ca. 2 h nach oraler Gabe von 6 mg
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Benperidol-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: < 30 µg/l
Benzodiazepine im Serum (N)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Suchtest zum Nachweis des Gebrauchs von Benzodiazepinen
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ
Benzodiazepine im Urin
Probenmaterial: 1 ml Urin
Abnahmehinweise: ggf. Probennahme überwachen
Klinische Indikationen: Suchtest zum Nachweis des Gebrauchs von Benzodiazepinen
Referenzbereiche: negativ
Benzol im Blut (U)
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Blut, spezielle Abnahmemonovetten verwenden
Abnahmehinweise: Bitte Rollrändröhrchen anfordern.
Klinische Indikationen: Kontrolle der Belastung mit aromatischen Kohlenwasserstoffen am Arbeitsplatz,
Vergiftungsausschluss
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 187

β-hCG
Beryllium im Serum (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nach Expositionsende
Klinische Indikationen: Beurteilung der Berylliumbelastung, Diagnose der Intoxikation
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: < 0,2 µg/l
Beryllium im Urin (U)
Probenmaterial: 2 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
Klinische Indikationen: Beurteilung der Berylliumbelastung, Diagnose der Intoxikation
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: < 0,2 µg/l
β-Carotin im Serum (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nüchtern.
Zur Vermeidung einer Hämolyse das Blut zentrifugieren und das Serum abpipettieren. Lagerung
gekühlt (+2°C – +8°C) und lichtgeschützt (Röhrchen mit Alufolie umwickeln).
Mindestens 12 Stunden vor der Blutentnahme Nahrungskarenz für Karotten, Pfirsiche, Früchte,
“grünes Gemüse“ (Spinat, Fenchel, Grünkohl).
Klinische Indikationen: Suchtest bei Steatorrhoe, Verdacht auf Malassimilation von Fett, Verdacht
auf β-Carotin-Mangel, Oxidativer Stress, Umwelterkrankungen
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 150 – 1250 µg/l
β-Galaktosidase (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum, tiefgefroren
Abnahmehinweise: Das Blut bitte innerhalb von 30 Minuten nach der Abnahme zentrifugieren,
Serum in ein separates Röhrchen abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C).
Klinische Indikationen: Sphingolipidspeicherkrankheit
Methode: Fluorometrie
Referenzbereiche: 2,8 – 25,0 nmol/h/ml
β-hCG
Synonyme: humanes Choriongonadotropin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung der Frühschwangerschaft (Extrauteringravidität,
Abort),
Diagnose und Verlaufsbeurteilung von Trophoblastentumoren (z.B. Hodentumor)
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
188 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

β-HCH im Blut (U)
Synonyme: β-Hexachlorcyclohexan
Probenmaterial: Vollblut, spezielle Abnahmemonovetten verwenden
Abnahmehinweise: Spezielle Abnahmemonovetten können angefordert werden.
Klinische Indikationen: Beurteilung der β-HCH-Belastung
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
β-Trace-Protein (U)(N)
Probenmaterial: 0,5 ml Sekret/Exsudat (Nase, Ohr, Fistel)
Klinische Indikationen: Nachweis der Liquorrhoe
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: Sekret: < 0,5 mg/l
Liquor: > 10 mg/l
β 2-Mikroglobulin im Liquor (W)
β-HCH im Blut (U)
Probenmaterial: 1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Beurteilung der Aktivierung des Makrophagen-Systems im ZNS, insbesondere
bei der HIV-Infektion
Methode: MEIA
Referenzbereiche: < 1,7 mg/l
β 2-Mikroglobulin im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verlaufsbeurteilung von Non-Hodgkin-Lymphomen, Hodgkin-
Lymphomen, Plasmozytomen,
Beurteilung der glomerulären Filtrationsrate, tubulo-interstitielle Nierenerkrankungen, Verlaufsbeurteilung
nach Nierentransplantation, Abstoßungsreaktion nach Knochenmarktransplantation
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 20 – 50 Jahre: 1,2 – 2,5 mg/l
> 50 Jahre: 1,4 – 3,2 mg/l
β 2-Mikroglobulin im Urin
Probenmaterial: 10 ml Spontanurin (2. Morgenurin) oder
10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: Bitte Sammelmenge und ggf. Sammelzeit (wenn < 24 Stunden) angeben.
Der 2. Morgenurin ist dem Sammelurin gleichwertig, wenn zuvor keine besondere körperliche Belastung
stattgefunden hat oder keine polyurische Nephropathie besteht.
Klinische Indikationen: Verlaufsbeurteilung und -kontrolle einer tubulären Proteinurie
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: < 0,5 mg/l
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 189

Biperiden (U)(N)
Bilirubin (direkt)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugiert werden.
Klinische Indikationen: Diagnose, Differentialdiagnose und Verlaufsbeurteilung des Ikterus (bei
Werten für Bilirubin gesamt > 1,1 mg/dl)
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: < 0,25 mg/dl
Bilirubin (gesamt)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugiert werden.
Klinische Indikationen: Diagnose, Differentialdiagnose und Verlaufsbeurteilung des Ikterus
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Erwachsene: < 1,2 mg/dl
Kinder: s. Befundbericht
Bilirubin (indirekt)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugiert werden.
Klinische Indikationen: Diagnose, Differentialdiagnose und Verlaufsbeurteilung des Ikterus (bei
Werten für Bilirubin gesamt > 1,1 mg/dl)
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: < 0,75 mg/dl
Bilirubin im Fruchtwasser (N)
Synonyme: Liley-Test
Probenmaterial: 3 ml Fruchtwasser
Abnahmehinweise: Die Proben nach der Entnahme lichtgeschützt lagern (mit Alufolie umwickeln)
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufsbeurteilung einer Erythroblasosis fetalis bei Rhesusbzw.
ABO-Unverträglichkeit und Abschätzung des Schweregrades
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Biperiden (U)(N)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Biperiden-Theapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: 10 – 100 µg/l
190 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Bisoprolol (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Bisoprolol-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 10 – 100 µg/l
BK-(Polyoma)-Virus-DNA-Nachweis
Bisoprolol (U)
Synonyme: BK-Virus-PCR
Probenmaterial: 10 ml Urin
3 ml EDTA-Blut
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei hämorrhagischer Zystitis, insbesondere bei Patienten
mit Immunsuppression
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Blei im Blut (U)(N)
Probenmaterial: 4 ml EDTA-Blut
Klinische Indikationen: Bestimmung der aktuellen Bleibelastung, Diagnostik der Bleiintoxikation
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Blei im Urin (W)
Probenmaterial: 10 ml Urin
Klinische Indikationen: Bestimmung der aktuellen Bleibelastung, Diagnostik der Bleiintoxikation
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: < 50 µg/l
Blutbild mit/ohne Differentialblutbild
Probenmaterial: korrekt gefüllte EDTA-Monovette, ggf. zur Thrombozytenzählung Citrat-Blut, bei
Postversand ggf. bitte einen Blutausstrich mitschicken
Abnahmehinweise: EDTA-Monovette direkt nach der Abnahme durch Schwenken gründlich mischen
Lagerung bei Raumtemperatur
Klinische Indikationen: Anämien, Infektionen, Intoxikationen, Kollagenosen, Leukämien und andere
hämatologische Systemerkrankungen, maligne Tumoren, Kontrolle von Therapien, Knochenmarkdepression
(Bestrahlung, Chemotherapie, Immunsuppression)
Methode: siehe Einzelparameter
Referenzbereiche: siehe Einzelparameter
Blutgruppen-Serologie
Probenmaterial: 9 ml korrekt gefüllte EDTA-Monovette
Name, Vorname sowie Geburtsdatum des Patienten müssen auf der Monovette stehen und mit dem
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 191

Bordetella pertussis-DNA-Nachweis
Anforderungsschein übereinstimmen (eindeutige Zuordnung).
Abnahmehinweise: Für die Blutguppen-Serologie ist eine NUR für diesen Zweck bestimmte Blutprobe
(separate Monovette) erforderlich. Auf eine eindeutige Kennzeichnung (z.B. mit Namen, Vornamen
und Geburtsdatum) ist zu achten. Für die Erstellung eines Blutgruppen-Ausweises ist nach den
Richtlinien die Unterschrift der abnehmenden Person zur Identitätssicherung erforderlich.
Klinische Indikationen: Vorbereitung einer Operation, Vorbereitung einer Transfusion, Vorbereitung
einer Transplantation, Mutterschaftsvorsorge, Ausstellung eines Blutgruppen-Ausweises
Methode: Agglutination
Referenzbereiche: s. Befundbericht
BNP
Synonyme: NT-pro-BNP, brain natriuretic peptide, N-terminales pro-BNP
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise:
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung der Herzinsuffizienz
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: < 125 pg/ml
Bordetella parapertussis-Antikörper (IgA) (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 7 – 14 Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Parapertussis, der Erreger verursacht ein Pertussis-ähnliches
Krankheitsbild mit meist leichterem Verlauf: Tracheitis, Bronchitis, pertussiformer Husten, meist ohne
Fieber.
Methode: IFT
Referenzbereiche: < 1:100
Bordetella parapertussis-Antikörper (IgG) (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 7 – 14 Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Parapertussis, der Erreger verursacht ein Pertussis-ähnliches
Krankheitsbild mit meist leichterem Verlauf: Tracheitis, Bronchitis, pertussiformer Husten, meist ohne
Fieber
Methode: IFT
Referenzbereiche: < 1:100
Bordetella pertussis-DNA-Nachweis
Synonyme: Bordetella-PCR, Keuchhusten
Probenmaterial: tiefer Nasen- oder Rachenabstrich
(Abstriche bitte ohne Transportmedium)
Abnahmehinweise: Die Untersuchung kann auch in der Inkubationszeit der Erkrankung (ca. 7-21
Tage) durchgeführt werden. Zu Beginn der Erkrankung ist die höchste Positivrate zu erwarten.
Klinische Indikationen: Verdacht auf B. pertussis-Infektion (Keuchhusten) bei Tracheitis, Bronchitis,
pertussiformer Husten,
192 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Umgebungsuntersuchung
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Bordetella pertussis-Serologie
Synonyme: Keuchhusten, Pertussis
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 10-14 Tage
Klinische Indikationen: Verdacht auf Keuchhusten/Pertussis.
Überprüfung der Immunitätslage
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Bordetella pertussis/parapertussis DNA Nachweis
Bordetella pertussis-Serologie
Synonyme: Bordetella-PCR, Keuchhusten
Probenmaterial: tiefer Nasen- oder Rachenabstrich
(Abstriche bitte ohne Transportmedium)
Abnahmehinweise: Die Untersuchung kann auch in der Inkubationszeit der Erkrankung (ca. 7-21
Tage) durchgeführt werden. Zu Beginn der Erkrankung ist die höchste Positivrate zu erwarten.
Klinische Indikationen: V.a. Keuchhusten, akute Bronchitis, Umgebungsuntersuchung
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Borrelien-Antikörper (IgG)
Synonyme: Borrelien-Suchtest, Lyme disease
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung einer Borrelien-Infektion in verschiedenen
Erkrankungsstadien:
Stadium I (nach Tagen bis Wochen):
Erythema migrans, Fazialisparese
Stadium II (nach Wochen bis Monaten):
multiple Erytheme, Lymphozytom, Karditis, Meningitis, Meningoenzephalitis oder -radikulitis
Stadium III (nach Jahren):
Arthritis, Akrodermatitis chronica atrophicans, chron. Enzephalomyelitis
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ (< 0,9 Ratio)
Borrelien-Antikörper (IgG, Liquor/Serum)
Synonyme: Borrelien-IgG-AI
Probenmaterial: 1 ml Liquor und 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen.
Klinische Indikationen: Nachweis einer intrathekalen IgG-Synthese gegen Borrelien bei Verdacht
auf Neuroborreliose
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 193

Borrelien-Antikörper (IgM-Westernblot)
Methode: EIA
Referenzbereiche: 0,6 – 1,5 Index
Borrelien-Antikörper (IgG-Westernblot)
Synonyme: Borrelien-Bestätigungstest, Lyme disease
Probenmaterial: 1 Serum
Klinische Indikationen: Bestätigung eines positiven → Borrelien-Antikörper (IgG), Seite 193 bei der
Diagnose und Verlaufsbeurteilung einer Borrelien-Infektion in verschiedenen Erkrankungsstadien:
Stadium I (nach Tagen bis Wochen):
Erythema migrans, Fazialisparese
Stadium II (nach Wochen bis Monaten):
multiple Erytheme, Lymphozytom, Karditis, Meningitis, Meningoenzephalitis oder -radikulitis
Stadium III (nach Jahren):
Arthritis, Akrodermatitis chronica atrophicans, chron. Enzephalomyelitis
Methode: Immunoblot
Referenzbereiche: negativ
Borrelien-Antikörper (IgM)
Synonyme: Borrelien-Suchtest, Lyme disease
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung einer Borrelien-Infektion in verschiedenen
Erkrankungsstadien:
Stadium I (nach Tagen bis Wochen):
Erythema migrans, Fazialisparese
Stadium II (nach Wochen bis Monaten):
multiple Erytheme, Lymphozytom, Karditis, Meningitis, Meningoenzephalitis oder -radikulitis
Stadium III (nach Jahren):
Arthritis, Akrodermatitis chronica atrophicans, chron. Enzephalomyelitis
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ (Ratio < 0,8)
Borrelien-Antikörper (IgM, Liquor/Serum
Synonyme: Borrelien-IgM-AI
Probenmaterial: 1 ml Serum und 1 ml Liquor
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen.
Klinische Indikationen: Nachweis einer intrathekalen IgM-Synthese gegen Borrelien bei Verdacht
auf Neuroborreliose, insbesondere bei fehlender IgG-Synthese
Methode: EIA
Referenzbereiche: 0,6 – 1,5 Index
Borrelien-Antikörper (IgM-Westernblot)
Synonyme: Borrelien-Bestätigungstest, Lyme disease
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Bestätigung eines positiven → Borrelien-Antikörper (IgM), Seite 194 bei der
194 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Borrelien-DNA-Nachweis
Diagnose und Verlaufsbeurteilung einer Borrelien-Infektion in verschiedenen Erkrankungsstadien.
Stadium I (nach Tagen bis Wochen):
Erythema migrans, Fazialisparese
Stadium II (nach Wochen bis Monaten):
multiple Erytheme, Lymphozytom, Karditis, Meningitis, Meningoenzephalitis oder -radikulitis
Stadium III (nach Jahren):
Arthritis, Akrodermatitis chronica atrophicans, chron. Enzephalomyelitis
Methode: Immunoblot
Referenzbereiche: negativ
Borrelien-DNA-Nachweis
Synonyme: Borrelien-PCR
Probenmaterial: 1 ml Liquor
Hautbiopsie
1 ml Gelenkpunktat
Abnahmehinweise: Bitte sterile Abnahme bzw. sterile Gefäße benutzen
Klinische Indikationen: Verdacht auf Borrelien-Infektion
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Borrelien-Serologie (Stufendiagnostik)
Synonyme: Lyme disease
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung einer Borrelien-Infektion in verschiedenen
Erkrankungsstadien.
Stadium I (nach Tagen bis Wochen):
Erythema migrans, Fazialisparese
Stadium II (nach Wochen bis Monaten):
multiple Erytheme, Lymphozytom, Karditis, Meningitis, Meningoenzephalitis oder -radikulitis
Stadium III (nach Jahren):
Arthritis, Akrodermatitis chronica atrophicans, chron. Enzephalomyelitis
Methode: siehe Einzelparameter
Bromazepam (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme unmittelbar vor erneuter Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Bromazepam-Therapie, Missbrauchskontrolle
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 50 – 200 ng/ml (toxisch ab 300)
Bromid im Serum (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring einer Bromid-Therapie
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 195

C-Peptid im Serum
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: < 12 mg/l
Bromid im Urin (W)(N)
Probenmaterial: 20 ml Urin
Klinische Indikationen: Monitoring einer Bromid-Therapie
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: < 5 mg/24h
Brucella-Antikörper (U)
Synonyme: Morbus Bang, Maltafieber
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit variiert sehr stark und beträgt im Mittel 2-3 Wochen
Klinische Indikationen: Verdacht auf M. Bang bei entsprechender Anamnese (Reise, Genuss von
rohem Käse oder Milch, berufliche Exposition) bzw. klinischer Symptomatik: trockener Husten,
Nachtschweß, Arthralgien, Gewichtsverlust, Muskelschmerzen, Fieber (undulierend).
Referenzbereiche: s. Befundbericht
BSG (N)
Synonyme: Blutsenkungsgeschwindigkeit
Probenmaterial: korrekt gefühlte BSG-Monovette
Abnahmehinweise: Monovette nach der Entnahme durch Schwenken gründlich mischen
Klinische Indikationen: Infektionen, Entzündungen, Kollagenosen, Verlaufskontrolle
Methode: Sedimentation in normierter Säule
Referenzbereiche: < 10/20 mm
Buprenorphin (W)
Probenmaterial: 2 ml Urin
Klinische Indikationen: Überwachung der Buprenorphin-Substitutions-Therapie
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Bupropion (W)(N)
Synonyme: Handelsnamen: Elontril ® Zyban ®
Probenmaterial: 1 ml Serum
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
C-Peptid im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nüchtern (ca. 12 Stunden Nahrungskarenz); zur Vermeidung einer
Hämolyse sollte das Serum bei längerem Probentransport abzentrifugiert werden.
196 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

C-reaktives Protein (CRP)
Klinische Indikationen: Verdacht auf Insulinom, DD der Hypoglykämie (Hypoglycaemia factitia),
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: 1,1 – 4,4 ng/ml
C-reaktives Protein (CRP)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle entzündlicher Prozesse (Akute-Phase-
Reaktion)
Methode: Immunturbidimetrie
Referenzbereiche: < 5,0 mg/l
C1-Esterase-Inhibitor-Aktivität (W)
Synonyme: C1-INH, C1-Inaktivator
Probenmaterial: 1 ml Citrat-Blut
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Hereditäres (HAE) und erworbenes Angioödem (AAE)
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: 70 – 130 %
C1-Esterase-Inhibitor-Konzentration (W)
Synonyme: C1-INH, C1-Inaktivator
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Hereditäres Angioödem (HAE) oder erworbenes Angioödem (AAE)
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 25 – 50 mg/dl
C1q-Komplementfaktor (W)(N)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Komplemtentmangel,
Immunkomplexerkrankungen,
Vaskulitis,
Lupus erythematodes (SLE)
Methode: RID
Referenzbereiche: s. Befundbericht
C2-Komplementfaktor (W)
Synonyme: C2
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf C2-Komplementfaktormangel, ungeklärte Abwehrschwäche,
Immunkomplexerkrankungen, hereditäres angioneurotisches Ödem
Methode: RID
Referenzbereiche: 10 – 30 mg/l
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 197

CA 125
C3-Komplementfaktor
Synonyme: C3
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf C3-Komplement-Mangel, rezidivierende Infekte (besonders
Kindesalter), Glomerulonephritis, SLE
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
C3-Nephritisfaktor (W)(N)
Synonyme: C3-NEF
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei nachgewiesenem Mangel an → C3-
Komplementfaktor, Seite 198 und:
- Glomerulonephritis
- rapid progressive Glomerulonephritis
- membranoproliferative Glomerulonephritis vom Typ II
- Poststreptokokken-Glomerulonephritis
- Persistierender C3-Mangel
- Lipodystrophie
Referenzbereiche: negativ
C4-Komplementfaktor
Synonyme: C4
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf C4-Komplement-Mangel, Immunkomplexerkrankungen, Autoimmunerkrankungen
(SLE, Sjögren-Syndrom), rezidivierende Infektionen, Glomerulonephritis,
angeborenes angioneurotisches Ödem, autoimmunhämolytische Anämie
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
C5-Komplementfaktor (W)
Synonyme: C5
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Komplementdefekten, Verdacht auf C5-Mangel, unklare
Abwehrschwäche, Immunkomplexerkrankungen, Leiner-Syndrom
Methode: RID
Referenzbereiche: 80 – 120%
CA 125
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufskontrolle bei Ovarialkarzinom
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: < 35 U/ml
198 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

CA 15-3
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapie- und Verlaufskontrolle bei Mammakarzinom
Methode: CMIA
Referenzbereiche: < 32 U/ml
CA 19-9
CA 15-3
Synonyme: Gastrointestinal cancer antigen
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufskontrolle bei Karzinomen des Pankreas, der Leber,
der Gallenwege und des Magens
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: < 37 U/ml
CA 50 (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapie- und Verlaufskontrolle bei Pankreaskarzinom, Kolorektalem
Karzinom und Gallengangskarzinom
Methode: IRMA
Referenzbereiche: < 30 kU/l
CA 72-4
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapie- und Verlaufskontrolle bei Magenkarzinom (Erstmarker)
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: < 6,7 U/ml
Cadmium im Blut (W)
Probenmaterial: 2 ml EDTA- oder Ammonium-Heparin-Vollblut
Klinische Indikationen: Bestimmung der aktuellen Cadmiumbelastung, Diagnostik der Cadmiumintoxikation
Methode: AAS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Cadmium im Haar (W)
Probenmaterial: 1 g Haar vom Haaransatz (Hinterkopf)
Klinische Indikationen: Beurteilung der Cadmium-Belastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: < 0,03 – 0,15 mg/kg
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 199

Calcium im Dialysat (N)
Cadmium im Urin (W)
Probenmaterial: 5 ml Urin
Klinische Indikationen: Bestimmung der aktuellen Cadmiumbelastung, Diagnostik der Cadmiumintoxikation
Methode: ICP-MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Calcitonin
Synonyme: hCT, Thyreocalcitonin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung des medullären Schilddrüsenkarzinoms,
Familienangehörige von Patienten mit medullärem Schilddrüsenkarzinom, familiäres
Phäochromozytom, MEN II,
Methode: CLIA
Referenzbereiche: Frauen: 1 – 4,8 pg/ml
Männer: 1 – 11,8 pg/ml
Calcium gesamt im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nüchtern (ca. 12 Stunden Nahrungskarenz)
Klinische Indikationen: Tetanisches Syndrom, Adynamie,
Knochenerkrankungen (Spontanfrakturen, Osteoporose, Wachstumsstörungen),
Nierenerkranungen (Urolithiasis, Polyurie, chronische Niereninsuffizienz),
Verdacht auf Hypo- oder Hyperparathyreoidismus,
M. Boeck, Tuberkulose, Tumoren,
Medikamenteneinnahme (Vitamin D, Antiepileptika, Kortikosteroide, Thiazide, Digitalis)
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Calcium gesamt im Urin
Probenmaterial: 5 ml Spontanurin oder
5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung im Rahmen der Calcium-Stoffwechseldiagnostik
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: 0,5 – 6,0 mmol/l
2,5 – 7,5 mmol/24h
Calcium im Dialysat (N)
Probenmaterial: 2 ml Dialysat
Klinische Indikationen: Qualitätskontrolle von Dialysat
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: < 0,9 mmol/l
200 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Calprotectin im Stuhl
Calprotectin im Stuhl
Probenmaterial: 1 g Stuhl
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufskontrolle bei chronisch-entzündlichen
Darmerkrankungen (M. Crohn, Colitis ulcerosa),
Abgrenzung vom Colon irritabile
Früherkennung des kolorektalen Karzinoms
Methode: ELISA
Referenzbereiche: < 50 mg/kg Stuhl
Campylobacter-Antikörper (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 7-21 Tage. Bei der akuten Erkrankung ist
der Erregernachweis (z.B. aus Stuhlprobe) die Untersuchung der Wahl
Klinische Indikationen: Verdacht auf Campylobacter-Infektion bei reaktiver Arthritis, Enteritis
Symptomatik: Diarrhoe, häufig blutiger Stuhl
periumbilikale Bauchschmerzen, kolikartige Krämpfe, Erbrechen, Fieber, Kopfschmerzen
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 20 U/ml
Candida albicans DNA-Nachweis (W)
Synonyme: Candida-PCR
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Vollblut
1 ml Liquor
Abstrich
Klinische Indikationen: Verdacht auf systemische Candidose
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Candida-Antigen im Serum (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Serum nicht hitzeinaktivieren
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung einer systemischen Candidiasis (Endomykose)
Methode: Latexagglutination
Referenzbereiche: < 1,15 U/ml
Candida-Antikörper
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 7-14 Tage
Klinische Indikationen: Diagnose und ggf. Verlaufsbeurteilung von Candida-Infektionen wie systemische
Candidiasis, mukokutane Candidiasis, Mundsoor, Vaginitis, Balanitis, Überwachung von
Intensivpatienten.
Methode: ELISA
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 201

Carnitin im Sperma (U)
Cannabis im Urin
Synonyme: THC
Probenmaterial: 5 ml Urin
Abnahmehinweise: ggf. Probennahme überwachen
Klinische Indikationen: Suchtest zum Nachweis des Gebrauchs von Cannabis
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ
Carbamazepin
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Bestimmung des max. Spiegels: ca. 6-18 Stunden nach Medikamenteneinnahme
Bestimmung des Talspiegels: vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring der Carbamazepin-Therapie
Methode: MEIA
Referenzbereiche: 4 – 12 µg/ml
Carbamazepin-Epoxid
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 0,4 – 2,0 mg/l
Carnitin (frei) im Serum (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Mangel- und Fehlernährung, chronische Hämodialyse, Gravidität,
Antikonvulsiva-Therapie, Gedeihstörungen, Muskelschwäche unklarer Genese
Methode: enzymatisch
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Carnitin gesamt (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Carnitin-Mangel
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Carnitin im Sperma (U)
Probenmaterial: 1 ml Sperma
Abnahmehinweise: Sperma 1 + 1 mit physiologischer Kochsalzlösung verdünnen und in ein Fluoridröhrchen
geben, eine sexuelle Karenz von mindestens 48 Stunden vor der Untersuchung wird
empfohlen.
Klinische Indikationen: Abklärung der Infertilität beim Mann (Nebenhodenfunktion)
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: > 4,0 mg/dl
202 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

CASA (W)
Synonyme: Cancer associated serum antigen
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle bei Mamma- und Ovarialkarzinom
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 4,0 U/ml
Caspofungin (W)
Synonyme: Handelsname: Cancidas ®
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Caspofungin-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: 1 – 12 mg/l
CDT – Carbohydrate Deficient Transferrin
Synonyme: A-, Mono- und Disialo-Transferrin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik und Monitoring des Alkoholkonsums
Methode: HPLC
Referenzbereiche: normal: < 1,2 %
Graubereich: 1,3 – 2,5 %
erhöht: > 2,6 %
CEA
CASA (W)
Synonyme: Carcinoembryonales Antigen
Probenmaterial: 1 Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle gastrointestinaler Karzinome, Differentialdiagnose
von Lebertumoren
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: < 4,7 ng/ml
CEA im Liquor (W)(N)
Probenmaterial: 1 ml Liquor
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen.
Klinische Indikationen: → CEA-Quotient (Liquor/Serum)
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: < 1 ng/ml
Ceftazidim (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Ceftazidim-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 203

Chlamydia trachomatis-DNA-Nachweis
CH 100 (U)
Synonyme: Gesamthämolytische Komplementaktivität
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Screeningtest bei Verdacht auf Störungen im Komplementsystem (angeborener
und erworbener Komplementmangel)
Referenzbereiche: 40 – 200 U/ml
Chinidin im Serum (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bestimmung des max. Spiegels: ca. 1-3 Stunden nach Medikamenteneinnahme
Bestimmung des Talspiegels: vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring der Chinidin-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: 1 – 5 mg/l
Chlamydia trachomatis-Antikörper (IgA)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 2-25 Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Chlamydien-Infektion, insbesondere bei: urogenitale Infektionen
wie Urethritis, Adnexitis, Prostatitis, Cervicitis, Salpingitis, reaktive Arthritis, atypische Pneumonie,
Trachom, Konjunktivitis, M. Reiter
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 22 AU/ml
Chlamydia trachomatis-Antikörper (IgG)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 2-25 Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Chlamydien-Infektion, insbesondere bei:
urogenitale Infektionen wie Urethritis, Adnexitis, Prostatitis, Cervicitis, Salpingitis, reaktive Arthritis,
atypische Pneumonie, Trachom, Konjunktivitis, M. Reiter
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 22 AU/ml
Chlamydia trachomatis-DNA-Nachweis
Synonyme: Chlamydia trachomatis-PCR
Probenmaterial: 10 ml Morgenurin (Anfangsstrahl)
Abstrich (Spezialabstrichbesteck auf Anforderung)
1 ml Ejakulat
Abnahmehinweise: Sterile Abnahme und Lagerung gekühlt (+2°C – +8°C), Material unbehandelt
einsenden oder Tupfer-/Abstrichbürsten trocken in sterilem Röhrchen einsenden.
Klinische Indikationen: Nachweis einer Chlamydieninfektion bei Zervicitis, Urethritis, Adnexitis,
Konjunktivitis, im Rahmen der Mutterschaftsvorsorge, Fertilitätsuntersuchungen
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
204 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Chlamydophila pneumoniae-Antikörper (IgA)
Chlamydophila pneumoniae-Antikörper (IgA)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 30 Tage, gelegentlich kürzer.
Klinische Indikationen: Verdacht auf C. pneumoniae-Infektion, insbesondere bei:
atypische Pneumonie (insbesonder im Jugendalter), Sinusitis, Pharyngitis, Otitis media. Eine kardiale
Beteiligung ist möglich. Ca. 50 % der Erkrankungen verlaufen subklinisch
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 22 AU/ml
Chlamydophila pneumoniae-Antikörper (IgG)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 30 Tage, gelegentlich kürzer.
Klinische Indikationen: Verdacht auf C. pneumoniae-Infektion, insbesondere bei:
atypische Pneumonie (insbesonder im Jugendalter), Sinusitis, Pharyngitis, Otitis media. Eine kardiale
Beteiligung ist möglich. Ca. 50 % der Erkrankungen verlaufen subklinisch.
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 22 AU/ml
Chlamydophila pneumoniae-Antikörper (IgM)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 30 Tage, gelegentlich kürzer.
Klinische Indikationen: Verdacht auf C. pneumoniae-Infektion, insbesondere bei:
atypische Pneumonie (insbesonder im Jugendalter), Sinusitis, Pharyngitis, Otitis media. Eine kardiale
Beteiligung ist möglich. Ca. 50 % der Erkrankungen verlaufen subklinisch.
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 0,9 Index
Chlamydophila pneumoniae-DNA-Nachweis
Synonyme: Chlamydophila pneumoniae-PCR
Probenmaterial: Sputum
BAL
Trachealsekret
Abnahmehinweise: Sterile Abnahme und Lagerung gekühlt (+2°C – +8°C), Material unbehandelt
einsenden oder Tupfer-/Abstrichbürsten trocken in sterilem Röhrchen einsenden.
Klinische Indikationen: Verdacht auf C. pneumoniae-Infektion bei atypischer Pneumonie
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Chlamydophila psittaci-Antikörper (W)(N)
Synonyme: Ornithose, Psittakose
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 7-14 Tage.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 205

Chlorid im Urin (N)
Klinische Indikationen: Verdacht auf Papageienkrankheit (Psittakose) oder Vogelkrankheit (Ornithose)
bei atypischer Pneumonie und entsprechendem Risikokontakt in der Anamnese.
Methode: IIFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Chloramphenicol (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bestimmung des Talspiegels: direkt vor der nächsten Gabe
Bestimmung des Spitzenspiegels: ca. 2-3 Stunden nach der letzten Dosis
Klinische Indikationen: Monitoring einer Chloramphenicol-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Chlordiazepoxid (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Chlordiazepoxid-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Chlorid im Dialysat (N)
Probenmaterial: 2 ml Dialysat
Klinische Indikationen: Qualitätskontrolle von Dialysat
Methode: ISE
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Chlorid im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Störungen des Säure-Basen-Haushaltes,
Störungen der Natrium- und Wasser-Bilanz
Methode: ISE
Referenzbereiche: 98 – 107 mval/l
Chlorid im Urin (N)
Probenmaterial: 10 ml Spontanurin oder
10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Abklärung pathologischer Chloridwerte im Serum
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: 46 – 168 mmol/l
120 – 250 mmol/24h
206 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Chloroquin (U)
Chloroquin (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Das Röhrchen nach der Blutentnahme lichtgeschützt (mit Alufolie umwickeln)
lagern
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Chloroquin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Chlorpromazin (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Chlorpromazin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 30 – 250 ng/ml
toxisch > 500 ng/ml
Chlorpropamid (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Chlorpropamid-Therapie
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Chlorprothixen (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Das Röhrchen nach der Blutentnahme lichtgeschützt (mit Alufolie umwickeln)
lagern
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Chlorprothixen-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 40 – 200 ng/ml
Cholesterin (gesamt)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nüchtern (ca. 12 Stunden Nahrungskarenz), langes Stauen vermeiden
Klinische Indikationen: Screening eines Atherosklerose-Risikos,
Verdacht auf Fettstoffwechselstörung
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Orientierungsgrenze: < 200 mg/dl
Entscheidend für das koronare Risiko ist das LDL-Cholesterin. Ziel für das Gesamtcholesterin und
das LDL-Cholesterin orientiert sich am koronaren Gesamtrisiko.
Cholinesterase
Synonyme: CHE
Probenmaterial: 1 ml Serum
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 207

Chromogranin A
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugiert werden.
Blutentnahme nüchtern (ca. 12 Stunden Nahrungskarenz)
Klinische Indikationen: Diagnose/Verlaufsbeurteilung der Leberzellfunktionsleistung bei:
- schwerem Leberzellschaden (Zirrhose)
- akuter/chronischer Hepatitis
- vor Gabe von Muskelrelaxantien bei Verdacht auf eine CHE-Variante
- verlängerte Apnoe nach Narkosen
- Vergiftung mit Pestiziden
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: 5,3 – 12,9 kU/l
Chrom im Blut (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Ermittlung der Chrombelastung
Methode: AAS
Referenzbereiche: < 2 µg/l
Chrom im Serum (U)(N)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Ermittlung der Chrombelastung als zusätzliche Untersuchung zur Bestimmung
von Chrom im Urin
Methode: AAS
Referenzbereiche: < 2 µg/l
Chrom im Urin (U)(N)
Probenmaterial: 10 ml Urin
Abnahmehinweise: bei arbeitsmedizinischer Untersuchung zum Schichtende bzw. direkt vor Beginn
der nächsten Schicht abnehmen
Klinische Indikationen: Methode der Wahl zur Diagnostik der erhöhten Chrombelastung
Methode: AAS
Referenzbereiche: < 0,6 µg/l
Chrom in Erythrozyten (U)
Probenmaterial: 2 ml Heparin-Blut
Klinische Indikationen: Ermittlung der Chrombelastung als zusätzliche Untersuchung zur Bestimmung
von Chrom im Urin
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: < 0,9 µg/l Ery
Chromogranin A
Synonyme: CgA, CGA
Probenmaterial: 1 ml Serum
208 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Chromosomenanalyse von Abort- und Gewebematerial (Fibroblastenkultur) (W)
Abnahmehinweise: Blutentnahme morgens nach ausreichender Nahrungskarenz (ca. 12 Stunden)
Klinische Indikationen: Verdacht auf Phäochromozytom, Ganglioneurinom, Neuroblastom, neuroendokriner
Tumor, kleinzelliges Bronchialkarzinom
Methode: ELISA
Referenzbereiche: 27 – 94 ng/ml
Chromosomenanalyse von Abort- und Gewebematerial
(Fibroblastenkultur) (W)
Probenmaterial: auf Anfrage
Abnahmehinweise: Entnahme- und Versandmaterial wird auf Anfrage zugesandt.
Klinische Indikationen: Auschluß numerischer und struktureller Chromosomenaberrationen
Methode: Zellkultur, Bänderung und Färbung
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Ciprofloxacin (U)
Synonyme: Handelsname: mehrere z.B. Ciprobay ®
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Ciprofloxacin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 0,5 – 4 µg/ml
Citalopram (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme direkt vor der nächsten Medikamenteneinnnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Citalopram-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Citrat im Sperma (W)(N)
Probenmaterial: 1 ml Sperma
Abnahmehinweise: Sperma 1 + 1 mit physiologischer Kochsalzlösung verdünnen und in ein Fluoridröhrchen
geben, eine sexuelle Karenz von mindestens 48 Stunden vor der Untersuchung wird
empfohlen.
Klinische Indikationen: Abklärung der Infertilität beim Mann
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: 250 – 800 mg/dl
Citrat im Urin (W)
Probenmaterial: 5 ml eine 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: Bitte unbedingt die Sammelmenge und die Sammelzeit angeben (wenn nicht 24
Stunden)
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei Nephrolithiasis
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 209

Clobazam (W)
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: 450 – 900 mg/d
CK gesamt
Synonyme: Creatinkinase, CK-NAC, CPK
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugiert werden.
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung von Herzmuskel- und Skelettmuskelerkrankungen,
Therapiekontrolle bei Myokardinfarkt
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
CK-Isoenzyme
Synonyme: Creatinkinase-Isoenzyme, Makro-CK
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugiert werden.
Klinische Indikationen: Differenzierung einer erhöhten → CK gesamt, Seite 210.
Methode: Elektrophorese
Referenzbereiche: s. Befundbericht
CK-MB-Aktivität/Anteil
Synonyme: Creatinkinase-Isoenzym MB
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugiert werden.
Klinische Indikationen: Differenzierung einer erhöhten → CK gesamt, Seite 210 bei akuter
Myokardschädigung
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: < 25 U/l
Clindamycin (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Clindamycin-Therapie.
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Clobazam (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring der Clobazam-Therapie
210 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: HPLC
Referenzbereiche: 100 – 400 ng/ml
Clomethiazol (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
20 ml Urin
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Clomethiazol-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 0,5 – 3,0 mg/l
Clomipramin
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring der Clomipramin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: Clomipramin: 90 – 250 ng/ml
Desmethylclomipramin: 150 – 300 ng/ml
Clonazepam (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme unmittelbar vor erneuter Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Clonazepam-Therapie, Missbrauchskontrolle
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 10 – 60 ng/ml
Clostridium difficile-Toxin A/B
Clomethiazol (U)
Probenmaterial: 2 g Stuhl
Klinische Indikationen: Verdacht auf antibiotikaassoziierte Colitis (AAC), insbesondere bei Diarrhoe
bzw. pseudomembranöser Colitis während oder bis zu 4 Wochen nach antibiotischer Therapie
Methode: EIA
PCR
Referenzbereiche: negativ
Clozapin im Serum
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Clozapin-Therapie, Missbrauchskontrolle
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 50 – 700 µg/l
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 211

Coffein (W)
CO-Hämoglobin (U)
Synonyme: Co-Hb, Carboxyhämoglobin, Kohlenmonoxid-Hämoglobin
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Blut
Klinische Indikationen: Kohlenmonoxidvergiftung
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: < 5 % des Gesamt-Hb
Raucher: < 10 % des Gesamt-Hb
Nichtraucher: < 1 % des Gesamt-Hb
Kinder: < 1 % des Gesamt-Hb
Cocain im Urin
Probenmaterial: 5 ml Urin
Abnahmehinweise: ggf. Probennahme überwachen
Klinische Indikationen: Suchtest zum Nachweis des Gebrauchs von Cocain
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ
Coenzym Q10 (U)
Synonyme: Ubichinon
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Bestimmung der oxidativen Kapazität des Organismus und Monitoring der
Ubichinon-Substitution
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 0,4 – 1,2 mg/l
Coeruloplasmin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Morbus Wilson,
Abklärung einer Leberfunktionsstörung,
Hypochrome, mikrozytäre Eisenrefraktäre Anämie,
Verdacht auf nutritiven Kupfermangel,
Neurodegenerative Symptome einer
Bindegewebserkrankung bei Säuglingen und Kleinkindern (Verdacht auf Menkes-Erkrankung)
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 0,2 – 0,6 g/l
Coffein (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bestimmung des max. Spiegels: ca. 1 Stunde nach i.v.-Ladedosis
Bestimmung des Talspiegels: vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Frühgeborenen-Monitoring bei Therapie des Bradykardie-Apnoe-Syndroms
mit Coffein,
Verdacht auf Coffein-Intoxikation
212 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: HPLC
Referenzbereiche: Therapeutischer Bereich: 2 – 10 mg/l
Frühgeborene: 7,4 – 19,4 mg/l
Collagen Typ I A1-Gen-Polymorphismus (U)
Collagen Typ I A1-Gen-Polymorphismus (U)
Synonyme: COL 1A1 (MIM 120150.0051)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einverständniserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Klinische Indikationen: Bestimmung des individuellen Risikos für Osteoporose.
Methode: PCR
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Collagen-Bindungsaktivität (W)
Probenmaterial: korrekt gefüllte Citratblutmonovette
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung zur Klassifizierung des von-Willebrand-Syndroms
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Cortisol im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Wegen der starken tageszeitlichen Abhängigkeit bitte die Entnahme-Uhrzeit immer
mit angeben. Stress-Situationen vermeiden.
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung von Hyper- und Hypokortisolismus.
Methode: CMIA
Referenzbereiche: vor 10 Uhr: 3,7 – 19,4 µg/dl
nach 17 Uhr: 2,9 – 17,3 µg/dl
Cortisol im Speichel (W)
Probenmaterial: 1 ml Speichel (Salivette)
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung von Hyper- und Hypokortisolismus.
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: 8.00 – 10.00 Uhr: < 9,8 µg/l
14.30 – 15.30 Uhr: < 5,4 µg/l
24 Uhr: < 2 µg/l
Cortisol, freies im Urin
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Diagnose des Hyperkortisolismus (M. Cushing)
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 213

CRP hochsensitiv
Methode: CMIA
Referenzbereiche: 4,3 – 176 µg/d
Cotinin im Serum (W)
Synonyme: Nikotin-Metabolit
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Nachweis der passiven und aktiven Aufnahme von Tabakrauch (Cotinin ist
ein stabiler Metabolit des Nikotins)
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: Nichtraucher: < 10 µg/l
Raucher: > 50 µg/l
Cotinin im Urin (W)
Synonyme: Nikotin-Metabolit
Probenmaterial: 1 ml Urin
Klinische Indikationen: Nachweis der passiven und aktiven Aufnahme von Tabakrauch (Cotinin ist
ein stabiler Metabolit des Nikotins)
Methode: CLIA
Referenzbereiche: Nichtraucher: < 500 µg/l
Raucher: > 500 µg/l
Coxiella burnetii-Antikörper (W)
Synonyme: Q-Fieber, Rickettsien
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 2-4 Wochen.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Q-Fieber, besonders bei atypischer Pneumonie und
anamnestisch Kontakt mit infizierten Tieren (z.B. Schaf, Ziege, Rind)
Übertragungsmodus: aerogen, durch tierische Exkremente von infizierten Haustieren
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Coxsackie Virus-Antikörper
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 6-14 Tage
Klinische Indikationen: Abklärung bei Myo-/Perikarditis, virale Meningitis, Fieber, Pseudoparesen,
Myalgie, Enteritis, Orchitis, Hepatitis, Hand-FußMund-Krankheit (Typ A9)
Methode: ELISA
Referenzbereiche: IgG: < 11 U/ml
IgA: < 10 U/ml
CRP hochsensitiv
Synonyme: hs-CRP
Probenmaterial: 1 ml Serum
214 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Cryptococcus neoformans-Antigennachweis (W)
Klinische Indikationen: Erstdiagnostik bei Patienten mit Verdacht auf Atherosklerose/koronare
Herzkrankheit (KHK),
Primär-Prävention im Zusammenhang mit der Bestimmung klassischer Risikofaktoren wie Rauchen,
Hypertonuns, Diabetes mellitus, Fettstoffwechselstörungen,
Verlaufskontrolle bei KHK-Patienten
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Cryptococcus neoformans-Antigennachweis (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum oder 2 ml Liquor
Klinische Indikationen: Diagnose einer Cryptococcus-Infektion, insbesondere bei Lungeninfektion
und Meningitis bei Patienten mit Immunsuppression (HIV, Chemotherapie, Transplantation).
Nach Eintritt (meist aerogen) in den Organismus kann fast jedes Organsystem befallen werden.
Methode: Agglutination
Referenzbereiche: negativ
CT-Pro-Arginin-Vasopressin (W)
Synonyme: Copeptin, CT-pro-AVP
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme sollte morgens nüchtern nach 8 Stunden Flüssigkeitskarenz erfolgen.
Wegen starker zirkadianer Schwankungen parallel Osmolalität im Serum bestimmen.
Vor der Blutentnahme keinen Kaffee, Tee, kein Nikotin, ggf. Medikamente 48 Stunden vorher absetzten.
Die Bestimmung von CT-Pro-Arginin-Vasopressin hat gegenüber ADH den Vorteil, dass anstatt
von EDTA-Plasma gefroren Serum verwendet werden kann.
Klinische Indikationen: wie ADH – Verdacht auf Diabetes insipidus als weitere Diagnostik bei
Polyurie und Polydipsie nach Ausschluss eines Diabetes mellitus
Methode: ILMA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
CTX (U)
Synonyme: Crosslaps, β-Crosslaps
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nüchtern (12 Stunden Nahrungskarenz) und morgens zwischen
7.30 Uhr und 08.30 Uhr (circadiane Rhythmik).
Klinische Indikationen: Beurteilung des Knochenstoffwechsels, Osteoporosediagnostik und
-screening
Methode: ECL
Referenzbereiche: Frauen
prämenopausal: < 0,59 ng/ml
postmenopausal: < 1,0 ng/ml
Männer
30 – 50 Jahre: < 0,58 ng/ml
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 215

Cystatin C
51 – 70 Jahre: < 0,7 ng/ml
> 70 Jahre: < 0,85 ng/ml
Cyanid im Blut (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Hämolyse vermeiden!
Klinische Indikationen: Verdacht auf Intoxikation, Ingestion bzw. Inhalation (bei Verbrennung von
Polyurethan), Monitoring der beruflichen Exposition (chemische Industrie)
Referenzbereiche: Nichtraucher: < 0,1 mg/l
Toxisch: > 0,6 mg/l
Cyclobarbital (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Cyclobarbital-Therapie
Referenzbereiche: 2 – 10 mg/l
Cyclosporin A monoklonal
Synonyme: CyA, Ciclosporin A
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Blut
Klinische Indikationen: Monitoring der Cyclosporin-Therapie
Methode: CMIA
Referenzbereiche: Therapeutischer Bereich nach Absprache mit dem Transplantationszentrum
CYFRA 21-1
Synonyme: Cytokeratin-19-Fragmente
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung des Bronchialkarzinoms, Verlaufskontrolle
des Harnblasenkarzinoms
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: < 3,3 ng/ml
Cystatin C
Synonyme: GFR
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Einschränkung der Glomerulären Filtrationsrate (GFR),
Therapiemonitoring,
Monitoring nach Nierentransplantation
Methode: Turbidimetrie
Referenzbereiche: 1 Tag – 5 Tage: 0,99 – 1,91 mg/l
6 Tage – 1 Monat: 1,11 – 2,15 mg/l
1 Monat, 1 Tag – 1 Jahr: 0,51 – 1,39 mg/l
> 1 Jahr: 0,50 – 0,95 mg/l
> 50 Jahre: > 0,95 mg/dl
216 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Cysticercus cellulosae-Antikörper (U)
Cysticercus cellulosae-Antikörper (U)
Synonyme: Zystizerkose-Serologie, Schweinebandwurm
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Zystizerkose, insbesondere bei unklaren Abdominalschmerzen,
Gewichtsverlust, Proglottiden im Stuhl, Aufnahme von ungenügend gegartem Fleisch
Referenzbereiche: < 9 Units
Cystin im Urin (U)
Probenmaterial: 5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (über Eisessig gesammelt)oder
5 ml Spontanurin
Abnahmehinweise: Bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben, Urin gekühlt (+ 2°C – + 8°C) sammeln.
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei Urolithiasis bzw. bei Nachweis von Cystinhaltigen
Nieren- und Harnsteinen, Fanconi-Syndrom, Cystinurie
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Cystin-Aminopeptidase (W)(N)
Synonyme: Oxytokinase
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Überwachung der Schwangerschaft
Referenzbereiche: < 5,0 U/l
Cystische Fibrose (W)
Synonyme: CF, Mukoviszidose
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Stufendiagnostik; telefonische Rücksprache erbeten
Einverständniserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Klinische Indikationen: Verdacht auf Cystische Fibrose, insbesondere bei unklarer Lungen- oder
Pankreasfibrose, Samenleiterfehlbildung, auffälligem Schweißtest, männlicher Infertilität, Azoospermie
Methode: PCR und Sequenzierung
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Cytomegalie-Virus pp65-Antigen-Nachweis (W)
Synonyme: CMV pp65-Antigen
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 3-12 Wochen.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Reaktivierung einer CMV-Infektion unter immunsuppressiver
Therapie (nach Transplantationen) oder bei Immundefekt
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 217

Cytomegalie-Virus-Serologie
Cytomegalie-Virus-Antikörper (IgG-Avidität) (W)
Synonyme: CMV-IgG-Avidität
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 20-30 Tage
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufskontrolle der CMV-Infektion (Primärinfektion) und
der Reaktivierung, insbesondere bei Immunsuppression.
Erfassung des CMV-Serostatus im Rahmen von Transplantationen.
Mit der CMV-Aviditäts-Bestimmung ist die Eingrenzung des Infektionszeitpunktes möglich
Methode: Aviditätstest
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Cytomegalie-Virus-Antiörper (IgG, Liquor/Serum)
Synonyme: CMV-AI
Probenmaterial: 1 ml Serum und 1 ml Liquor
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen.
Klinische Indikationen: Nachweis einer intrathekalen IgG-Synthese gegen Cytomegalie-Virus bei
akuten und auch chronischen ZNS-Erkrankungen.
Methode: EIA
Referenzbereiche: 0,6 – 1,5 Index
Cytomegalie-Virus-DNA-Nachweis
Synonyme: CMV-PCR
Probenmaterial: je nach Indikation:
Chorionbiopsie
1 ml Fruchtwasser
0,5 ml fetales EDTA-Blut
1 ml Liquor
10 ml Urin
1 ml respiratorisches Material
3 ml EDTA-Blut
Kammerwasser
Abnahmehinweise: Bitte für diese Untersuchung eine separate Monovette abnehmen. Das Blut nach
der Abnahme kühl (+2°C – +8°C) lagern.
Die Inkubationszeit beträgt ca. 3-12 Wochen.
Klinische Indikationen: Nachweis einer CMV-Primärinfektion (besonders in der Gravidität und bei
Neugeborenen) oder einer CMV-Reaktivierung (besonders bei Immunsupprimierten) bei Retinitis,
Hepatitis, Pneumonie, Therapiemonitoring einer CMV-Infektion
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Cytomegalie-Virus-Serologie
Synonyme: CMV
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 20-30 Tage
218 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: EIA
Referenzbereiche: IgG: negativ (< 25 U/ml)
IgM: negativ(< 10 U/ml)
D-Dimere
D-Dimere
Probenmaterial: 1 ml Citrat-Plasma
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Akut-Diagnostik bei Verdacht auf frische Venen-Thrombose (CITO-
Untersuchung),
Verlaufskontrolle unter Lyse-Therapie,
DIC, Hyperfibrinolyse,
Indikator der Hyperkoagulabilität,
Risikoschwangerschaft
Methode: Koagulometrie
Referenzbereiche: < 500 ng/ml
Daptomycin (W)
Synonyme: Handelsname: Cubicin ®
Probenmaterial: 1 ml Serum, tiefgefroren
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Daptomycin-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Delta-Aminolävulinsäure im Urin (W)
Synonyme: ALS, D-ALAS, Porphyrie-Diagnostik
Probenmaterial: 20 ml Spontanurin oder
20 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: Urin lichtgeschützt sammeln.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Bleivergiftung, akute hepatische Porphyrien, andere Schwermetallvergiftungen,
Bleiexposition, Alkoholismus, Arzneimittelschädigung der Leber, chronische
hepatische Porphyrien
Methode: Photometrie
ITC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Demoxepam (W)(N)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: 5 – 50 µg/l
toxisch: > 100 µg/l
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 219

Desmethylclozapin (W)
Dengue-Virus-Antikörper (U)
Synonyme: 7-Tage-Fieber, Pokalfieber
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 3-6 Tage
Klinische Indikationen: Verdacht auf Dengue-Fieber (klassisches Dengue-Fieber, Denguehämorrhagisches
Fieber) bei entsprechender Reiseanamnese (Südostasien, Karibik, Südamerika, Australien)
sowie insbesondere bei Fieber, Gelenk- und Muskelschmerzen, flüchtiges Exanthem, retrobulbäre
Schmerzen
Methode: EIT
Referenzbereiche: negativ (< 0,9)
Desethylamiodaron im Serum
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Bitte keine Gelröhrchen für die
Blutentnahme verwenden.
Bestimmung des max. Spiegels: ca. 5-7 Stunden nach Medikamenteneinnahme
Bestimmung des Talspiegels: vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Erfassung des aktiven Metaboliten beim Monitoring der Amiodaron-
Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 0,4 – 1,5 mg/l
Desipramin
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Desipramin-Therapie, Missbrauchskontrolle
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 30 – 300 µg/l
Desmethylclobazam (W)
Synonyme: Norclobazam
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Clobazam-Therapie, Missbrauchskontrolle
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 1000 – 4000 ng/ml
Desmethylclozapin (W)
Synonyme: Norclozapin
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Clozapin-Therapie, Missbrauchskontrolle
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: 100 – 300 µg/l
220 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Desmethyldiazepam (W)
Desmethyldiazepam (W)
Synonyme: Nordiazepam
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme unmittelbar vor erneuter Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring bei Gabe von Clorazepam, Diazepam,
Medazepam oder Prazepam, Missbrauchskontrolle
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 600 – 1500 ng/ml
Desmethylmethsuximid (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer entsprechenden Antikonvulsiva-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 10 – 40 mg/l
toxisch > 60 mg/l
Desoxypyridinolin im Urin (W)(N)
Synonyme: DPD-Crosslinks
Probenmaterial: 10 ml Spontan- oder Morgenurin
Abnahmehinweise: Wegen der ausgeprägten Tagesrhythmik Urin bis 9.00 Uhr abnehmen; Urin direkt
nach der Abnahme gekühlt (ca. + 2°C – + 8 °C) und lichtgeschützt (Röhrchen mit Alufolie umwickeln)
lagern.
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle, Therapiemonitoring bei erhöhter Knochenresorption
(Osteoporose)
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 3 – 14 Jahre: 50 – 100 µmol/m.K.
> 14 Jahre: 5 – 15 µmol/m.K.
DHEA (W)
Synonyme: Dehydroandrosteron
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: aufgrund der geringeren Stabilität sollte besser DHEAS bestimmt werden.
Klinische Indikationen: Hirsutismus / Virilisierung bei der Frau,
Verdacht auf androgen-bedingte Ovariainsuffizienz,
NNR-Tumoren, Adrenogenitales Syndrom
Methode: RIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
DHEAS
Synonyme: Dehydroepiandrosteron-Sulfat
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Hirsutismus / Virilisierung bei der Frau, Verdacht auf androgen-bedingte
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 221

Dibucain-Zahl (U)
Ovariainsuffizienz, NNR-Tumoren, Adrenogenitales Syndrom
Methode: CLIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Diaminooxidase (W)
Synonyme: DAO
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Eine Bestimmung der DAO-Aktivität in Serum oder Plasma ist ein
geeigneter Marker für die Diagnostik der Histamin-Intoleranz und damit assoziierter Krankheitsbilder.
Methode: REA
Referenzbereiche: > 10 U/ml
Diaphorase in Erythrozyten (U)(N)
Synonyme: Met-Hb-Reduktase
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Blut nach der Abnahme kühl (+ 2°C – + 8°C) lagern, NICHT einfrieren
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Met-Hämoglobinurie (Met-Hb > 10%)
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Diazepam (W)
Synonyme: Benzodiazepine
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme unmittelbar vor erneuter Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Diazepam-Therapie, Missbrauchskontrolle
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 200 – 1000 ng/ml
toxisch ab 1500 ng/ml
Dibenzepin (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Dibenzepin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 25 – 250 µg/l
Dibucain-Zahl (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Abklärung einer verlängerten Apnoe im Rahmen einer Narkose bei Verabreichung
von Succinylcholin oder Mivacurium zur Muskelrelaxation
Familienuntersuchung bei Patienten mit atypischen Cholinesterase-Verianten
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: normal: > 70 %
222 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

intermediär: 30 – 70%
atypisch: < 30 %
Dichlormethan im Blut (U)
Probenmaterial: 2 ml Blut, spezielle Abnahmemonovetten verwenden
Abnahmehinweise: Bitte Rollrändröhrchen anfordern.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Intoxikation (akute bzw. chronische Vergiftung)
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Didanosin (W)
Dichlormethan im Blut (U)
Synonyme: Handelsname: Vidox ®
Probenmaterial: 1 ml Serum oder 1 ml EDTA-Plasma, tiefgefroren
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer antiretroviralen Therapie bei Patienten mit einer HIV-
Infektion
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Diethylenglykol (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Beurteilung einer Diethylenglykol-Belastung, Intoxikation
Methode: GC
Referenzbereiche: < 5 mg/l
Differentialblutbild
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: EDTA-Monovette direkt nach der Abnahme durch Schwenken gründlich mischen
Klinische Indikationen: Leukozytose, Leukozytopenie, Infektionen, Intoxikationen, Malignome,
Leukämien und andere hämatologische Systemerkrankungen, Therapiekontrolle
Methode: FC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Digitoxin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme ca. 8-24 Stunden nach der letzten Einnahme
Klinische Indikationen: Verlaufskontrolle und -beurteilung einer Therapie mit Digitoxin
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: 10 – 25 ng/ml
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 223

Direkter Coombstest
Digoxin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme ca. 8-24 Stunden nach der letzten Einnahme
Klinische Indikationen: Verlaufskontrolle und -beurteilung einer Therapie mit Digoxin
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: 0,8 – 2 ng/ml
Dihydrotestosteron im Serum (W)
Synonyme: DHT
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Hodenfunktionsstörungen, Androgenmangel, Kontrolle der Testosteronsubstitution
Methode: RIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Diphenhydramin (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Diphenhydramin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 30 – 300 ng/ml
Diphtherie Toxoid-Antikörper im Serum
Synonyme: Diphtherie-Antitoxin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Untersuchung ist NUR zur Überprüfung der Immunitätslage geeignet.
Klinische Indikationen: Überprüfung der Immunitätslage nach Diphtherie-Impfung.
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Direkter Coombstest
Synonyme: Blutgruppenbestimmung, AHG-Test
Probenmaterial: 9 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Für die Blutguppen-Serologie ist eine NUR für diesen Zweck bestimmte Blutprobe
(separate Monovette) erforderlich. Auf eine eindeutige Kennzeichnung (z.B. mit Namen, Vornamen
und Geburtsdatum) ist zu achten.
Klinische Indikationen: Abklärung von Tranfusionsreaktionen (akute, verzögerte hämolytische
Reaktionen), Autoimmunhämolysen, Morbus haemolyticus neonatorum, Medikamenten-induzierte
Immunhämolysen
Methode: Agglutination
Referenzbereiche: negativ
224 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Disopyramid (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Disopyramid-Therapie
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: 2 – 5 mg/l
Donepezil (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise:
Klinische Indikationen: Monitoring einer Therapie mit Donepezil
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Dopamin im Urin
Disopyramid (W)
Synonyme: Katecholamine
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
(gesammelt über 10 ml Salzsäure)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Medikamente, sofern möglich, ca. 1 Woche vorher absetzen;
ab ca. 3 Tage vorher Vermeiden von Kaffee, Tee, Nikotin, Bananen, Käse, Nüsse, Schokolade, Eier
Klinische Indikationen: Tumoren des sympatho-adrenergen Systems, Neuroblastome, episodenhafte
oder therapieresistente Hypertonie, Inzidentalom, Familienuntersuchung
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Doxepin
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring einer Doxepin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: Doxepin: 50 – 250 µg/l
Nordoxepin: < 300 µg/l
Doxycyclin (U)
Synonyme: Doxicyclin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Doxycyclin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 1 – 5 µg/ml
Doxylamin (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Doxylamin-Therapie
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 225

Duloxetin (W)
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 50 – 200 ng/ml
Drogen-Nachweis im Haar (U)
Probenmaterial: 1 g Haar (bleistiftdicker Haarstrang, ca. 6 cm lang)
Abnahmehinweise: ca. 1 cm Haar ab Kopfhaut entspricht einem Wachstum von ca. 1 Monat
Klinische Indikationen: Nachweis des Gebrauchs einer der erfassten Wirkstoffe
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Drogen-Screening im Serum (N)
Probenmaterial: 5 ml Serum
Klinische Indikationen: Suchtest zum Nachweis des Gebrauchs einer der aufgeführten Substanzen
Methode: CMIA
Referenzbereiche: negativ
Drogen-Screening im Urin
Probenmaterial: 10 ml Urin
Abnahmehinweise: ggf. Probennahme überwachen
Klinische Indikationen: Suchteste zum Nachweis des Gebrauchs einer der untersuchten Substanzgruppen.
Methode: CMIA
Referenzbereiche: negativ
Dronedaron (W)
Synonyme: Handelsname: Multaq ®
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme 3-6 Stunden nach Einnahme
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: 80 – 150 µg/l
Duloxetin (W)
Synonyme: Cymbalta ®
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bitte beachten Sie, dass bei Verwendung von gelhaltigen Röhrchen die Resultate
niedriger ausfallen können. Wir empfehlen, das Blut 30 min nach Abnahme zu zentrifugieren, das
Serum abzutrennen und in ein zweites Neutral-Röhrchen zu überführen.
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle bzw. Monitoring einer Duloxetin-Therapie.
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: 20 – 80 µg/l
226 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Echinokokken-Serologie (U)
Echinokokken-Serologie (U)
Synonyme: Hunde-/Fuchsbandwurm
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Echinokokkose bei Zysten in Leber und Lunge, selten im
Gehirn.
Referenzbereiche: s. Befundbericht
ECHO-Virus-Antikörper (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 3-6 (-35) Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf ECHO-Virus-Infektion bei: Exanthem, Meningitis, Myokarditis,
Fazialisparese, Gastroenteritis, Myalgien
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
ECP (W)
Synonyme: Eosinophiles kationisches Protein
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blut 1 Stunde bei Raumtemperatur gerinnen lassen, dann zentrifugieren und
Serum einsenden.
Klinische Indikationen: Verdacht auf allergische Diathese im allergenfreien Intervall, besonders
wenn → IgE im Serum (gesamt), Seite 275 nicht erhöht ist;
Verlaufskontrolle von Allergien (Typ I)
Methode: FEIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Ehrlichien-Antikörper (IgG) (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 7 (1 – 21) Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf HGE (humane granuozytäre Ehrlichiose) bzw. HME (humane
monozytäre Ehrlichiose), insbesondere nach Zeckenstich (ohne Erythema migrans) mit Kopfschmerzen,
Muskelschmerzen, Übelkeit, Leukozytopenie, Thrombozytopenie sowie Transaminasenerhöhung
im Serum
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Ehrlichien-Antikörper (IgM) (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 7 (1 – 21) Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf HGE (humane granuozytäre Ehrlichiose) bzw. HME (humane
monozytäre Ehrlichiose), insbesondere nach Zeckenstich (ohne Erythema migrans) mit Kopfschmerzen,
Muskelschmerzen, Übelkeit, Leukozytopenie, Thrombozytopenie sowie Transaminasenerhöhung
im Serum
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 227

Eiweiß (gesamt) im Serum
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Eisen im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Da bereits eine Mikrohämolyse den Messwert für Eisen beeinflussen kann, sollte
das Vollblut innerhalb von 30 Minuten nach der Blutentnahme zentrifugiert und nur das Serum
(hämolysefrei) eingeschickt werden
Klinische Indikationen: Diagnostik und Therapiekontrolle bei Eisenmangel und Eisenüberladung,
Prüfung der Eisenresorption
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Eisen im Urin (Eisenstoffwechsel) (U)
Probenmaterial: 5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Die Untersuchung ist für die Beurteilung des Eisenstoffwechsels nicht
geeignet.
Methode: AAS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Eiweiß (gesamt) im Liquor
Synonyme: Gesamteiweiß im Liquor
Probenmaterial: 1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufskontrolle von akuten/chronischen ZNS-
Erkrankungen.
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Eiweiß (gesamt) im Serum
Synonyme: Gesamteiweiß im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bei der Blutentnahme sind langer Venenstau und Hämolyse zu vermeiden
Klinische Indikationen: Suchtest zur weiteren Abklärung folgender Symptome, Zustände oder
Erkrankungen: Erhöhte Blutsenkungsreaktion, Proteinurie, Ödeme, Polyurie, chronische Nierenerkrankungen,
Lebererkrankungen, chronische Durchfälle, maligner Tumor, Infektanfälligkeit,
Knochenschmerz, unbestimmt lokalisierbarer Rheumatismus, Lymphome, äußere und innere Blutungen,
Schwangerschaft, prä-und postoperativ, schweres Trauma, Schockzustand, Verbrennungen, Unterernährung
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
228 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Eiweiß (gesamt, quantitativ) im Punktat (N)
Probenmaterial: 5 ml Punktat
Klinische Indikationen: Differenzierung zwischen Exsudat und Transsudat
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Eiweiß (gesamt, quantitativ) im Urin
Eiweiß (gesamt, quantitativ) im Punktat (N)
Probenmaterial: 5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze) oder
5 ml Spontanurin
Abnahmehinweise: Bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Der 2. Morgenurin ist dem 24-Stunden-Sammelurin gleichwertig, wenn zuvor keine besondere
körperliche Belastung stattgefunden hat bzw. keine polyurische Nierenerkrankung besteht.
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung von Nierenerkrankungen mit einer
erhöhten Proteinausscheidung,
Nachuntersuchung eines positiven Screeningtestes (Urin-Teststreifen)
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Sammelurin: < 0,3 g/24 Stunden
Spontanurin: < 0,15 g/l
Eiweiß im Dialysat (N)
Probenmaterial: 2 ml Dialysat
Klinische Indikationen: Qualitätskontrolle von Dialysat
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Eiweißelektrophorese im Serum
Synonyme: Serum-Elektrophorese
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlauf von:
Monoklonaler Gammopathie
Akuten und chronischen Entzündungsreaktionen,
Malignen Tumoren,
Lebererkrankungen
Proteinverlust (z.B. Nephrotisches Syndrom),
Antikörpermangel,
Eiweißmangelernährung,
Pathologischer Ausfall von z.B. → BSG, Seite 196, → Eiweiß (gesamt) im Serum, Seite 228
Methode: Elektrophorese
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Elektrolyte im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum/Plasma bei längerem Proben-
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 229

Enteroviren-Nachweis (W)
transport abzentrifugiert werden.
Methode: ISE
Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Entamoeba histolytica-Antikörper (U)
Synonyme: Amöben-Antikörper
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster kann bis zu einem Jahr betragen
Klinische Indikationen: Verdacht auf Amöbeninfektion, insbesondere bei entsprechender Anamnese
sowie gastrointestinalen Beschwerden, Diarrhoe (himbeergeleeartig), Koliken, Obstipation, Leberabszess,
Lungenbeteiligung
Methode: IHA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Enterohämorrhagischer E.coli im Stuhl
Synonyme: EHEC, Enteritis, HUS
Probenmaterial: 2 g Stuhl
Klinische Indikationen: Verdacht auf EHEC-Infektion, inbesondere bei Verdacht auf HUS
(hämolytisch-urämisches Syndrom) und bei blutig-schleimiger Enterokolitis im Kleinkindalter
Methode: EIA
PCR
Referenzbereiche: negativ
Enteroviren-Antikörper
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca 3 – 6 (2 – 35 Tage)
Klinische Indikationen: Verdacht auf Enteroviren-Infektion bei unspezfischer fieberhafter
Erkrankung der oberen Luftwege mit Kopf- und Muskelschmerzen, Pharyngitis, Tonsilitis, Laryngitis,
Lymphadenopathie und Bronchitis, Gastroenterale Beschwerden mit Brechdurchfall, Myokarditis.
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Enteroviren-Nachweis (W)
Probenmaterial: je nach Indikation:
3 ml EDTA-Blut
1 ml Liquor
Biopsie
Nasopharyngealabstrich
Klinische Indikationen: seröse Meningitis, unklare Peri-, Myokarditis, akute/chronische Kardiomyopatie,
Enteritis
Methode: RT-PCR
Referenzbereiche: negativ
230 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Epstein-Barr-Virus-Antikörper (Liquor/Serum)
Epstein-Barr-Virus-Antikörper (Liquor/Serum)
Synonyme: EBV-AI
Probenmaterial: 1 ml Liquor und
1 ml Serum
Abnahmehinweise: Liquor und Serum immer gleichzeitig abnehmen.
Bei akuten ZNS-Erkrankungen beträgt das diagnostische Fenster für den intrathekalen IgG-Nachweis
ca. 7-14 Tage.
Klinische Indikationen: Nachweis einer intrathekalen Antikörper-Synthese gegen Epstein-Barr-
Virus bei akuten und auch chronischen ZNS-Erkrankungen.
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ (0,6 – 1,5 Index)
Epstein-Barr-Virus-DNA-Nachweis
Synonyme: EBV-PCR
Probenmaterial: je nach Indikation:
3 ml EDTA-Blut
1 ml Liquor
Trockenabstrich
Biopsie
Klinische Indikationen: Nachweis von EBV-DNA bei Verdacht auf Reaktivierung einer EBV-
Primärinfektion (z.B. bei schwerer Immunsuppression)
Methode: PCR
qualitativ
quantitativ
Referenzbereiche: negativ
Epstein-Barr-Virus-Serologie
Synonyme: EBV, Pfeiffersches Drüsenfieber
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt zwischen 7-10 Tagen und 4-7 Wochen
Klinische Indikationen: Abklärung bei Fieberhafter Infekt mit Angina oder katarrhalischer Pharyngitis,
Lymphadenitis, Hepatitis, seltener Exanthem, selten bei Nasopharyngealkarzinom
Reaktivierungen kommen vor bei Immunsuppression.
Methode: CLIA
Immunoblot
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Erythropoietin (W)
Synonyme: EPO
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Wegen tageszeitlicher Schwankungen Blutentnahme morgens (08.00 Uhr – 10.00
Uhr)
Klinische Indikationen: Unklare normozytäre Anämie, Verdacht auf renale Anämie, Therapiemonitoring
einer EPO-Behandlung
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 231

Ethylbenzol im Blut (U)(N)
Methode: CLIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Escitalopram (U)
Synonyme: Handelsname: Cipralex ®
Probenmaterial: 1 ml Serum
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: 15 – 80 ng/ml
Ethambutol (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutabnahme ca. 2 – 4 Stunden nach oraler Gabe von 20 mg Ethambutol/kg
Körpergewicht
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Ethambutol-Therapie
Methode: LC/MS-MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Ethanol im Blut
Synonyme: Alkohol im Blut
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Alkohol-Desinfektion bei der Blutentnahme kann die Bestimmung stören (zu
hoher Messwert), fest verschlossenes System für Entnahme und Transport verwenden, Monovette
vollständig füllen
Klinische Indikationen: Feststellung der Alkoholkonzentration für medizinische Zwecke (Keine
forensische Validität!), Überwachung des Alkoholentzugs oder einer Ethanol-Therapie
Methode: Spektralphotometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Ethosuximid
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring der Ethosuximid-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 30 – 100 µg/ml
Ethylbenzol im Blut (U)(N)
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Blut, spezielle Abnahmemonovetten verwenden
Abnahmehinweise: Bitte Rollrändröhrchen anfordern.
Klinische Indikationen: Kontrolle der Belastung mit aromatischen Kohlenwasserstoffen am Arbeitsplatz,
Vergiftungsausschluss
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
232 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Ethylenglykol (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Beurteilung einer Ethylenglykol-Belastung, Intoxikation
Methode: GC
Referenzbereiche: toxisch: > 200 mg/l
Ethylglucuronid im Urin (W)
Ethylenglykol (U)
Probenmaterial: 10 ml Urin
Abnahmehinweise: Unser Partnerlabor ist nach DIN EN ISO / IEC 17025 für die
Betäubungsmittelanalytik im Rahmen der Fahreignungsdiagnostik forensisch akkreditiert und erfüllt
somit die Vorgaben der GTFCh (Gesellschaft für Toxikologie und Forensische Chemie).
Klinische Indikationen: Mittelfristiger Nachweis von Alkoholkonsum
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Everolimus (W)
Synonyme: Certican ®
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Das Blut bitte unmittelbar nach der Abnahme einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Monitoring/Überwachung einer Everolimus-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Faktor II-Aktivität (U)
Probenmaterial: korrekt gefüllte Citratblut-Monovette
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Verdacht auf Faktor II-Mangel (z.B. bei Leberfunktionsstörungen, Vitamin
K-Mangel, pathologischem Ausfall von Quick bzw. aPTT),
Thrombophilie-Diagnostik
Methode: Einphasengerinnungstest
Referenzbereiche: Kinder: s. Befundbericht
Erwachsene: 70 – 130 %
Faktor II-Gen-Mutation
Synonyme: Prothrombin-Gen-Mutation, Thrombophilie
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einwilligungserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32011 (Thrombophilie)
Klinische Indikationen: Thrombophilie-Diagnostik bei – positiver Familienanamnese – rezidivierenden
Thrombosen – gleichzeitiger Hormontherapie – erhöhter Faktor II-Aktivität – rezidivierenden
Aborten
Methode: PCR und Schmelzkurvenanalyse
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 233

Faktor VII-Aktivität (U)
Faktor IX-Aktivität (U)
Synonyme: Gerinnung
Probenmaterial: korrekt gefüllte Citratblut-Monovette
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Abklärung einer verlängerten aPTT,
Verdacht auf Hämophilie B,
Verlaufskontrolle unter Substitutionstherapie,
Verdacht auf erworbenen Faktor IX-Mangel (z.B. bei Leberfunktionsstörungen, Vitamin K-Mangel,
sehr selten Inhibitoren)
Methode: Einphasengerinnungstest
Referenzbereiche: Kinder: s. Befundbericht
Erwachsene: 65 – 150 %
Faktor V-Aktivität (U)
Synonyme: Gerinnung
Probenmaterial: korrekt gefüllte Citratblut-Monovette
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Verdacht auf Faktor V-Mangel,
Abklärung eines pathologischen Suchtests (Quick, aPTT)
Methode: Einphasengerinnungstest
Referenzbereiche: Kinder: s. Befundbericht
Erwachsene: 60 – 140 %
Faktor V-Gen-Mutation
Synonyme: Leiden-Mutation, Thrombophilie
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einwilligungserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32011 (Thrombophilie)
Klinische Indikationen: Thrombophilie-Diagnostik bei
- pathologischer APC-Resistenz
- positiver Familienanamnese
- rezidivierenden Thrombosen
- Thrombosen bei jungen Patienten (< 45 Jahre)
- gleichzeitiger Hormontherapie
- rezidivierenden Aborten
Methode: PCR und Schmelzkurvenanalyse
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Faktor VII-Aktivität (U)
Probenmaterial: korrekt gefüllte Citratblut-Monovette
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Verdacht auf einen Faktor VII-Mangel,
Abklärung pathologischer Suchteste (Quick, aPTT),
Leberfunktionsstörungen,
234 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Vitamin K-Mangel
Methode: Einphasengerinnungstest
Referenzbereiche: Kinder: s. Befundbericht
Erwachsene: 52 – 120 %
Faktor VIII-Aktivität
Synonyme: Faktor VIII:C
Probenmaterial: korrekt gefüllte Citratblut-Monovette
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Abklärung einer verlängerten aPTT,
Verdacht auf Hämophilie A,
Thrombophilie-Diagnostik,
Hemmkörper-Diagnostik,
von-Willebrand-Syndrom,
Verlaufskontrolle unter Subsitutionstherapie
Methode: Koagulometrie
Referenzbereiche: 50 – 150 %
Faktor X-Aktivität (U)
Probenmaterial: korrekt gefüllte Citratblut-Monovette
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Unklare Blutungsneigung nach Ausschluss anderer Ursachen,
Leberfunktionsstörungen,
Abklärung eines vermindertes Quickwertes,
Vitamin K-Mangel,
Amyloidose
Methode: Einphasengerinnungstest
Referenzbereiche: Kinder: s. Befundbericht
Erwachsene: 70 – 140 %
Faktor XI-Aktivität (U)
Faktor VIII-Aktivität
Probenmaterial: korrekt gefüllte Citratblut-Monovette
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Klärung einer Blutungsneigung bzw. einer Verlängerung der aPTT nach
Ausschluss anderer häufiger Ursachen
Methode: Einphasengerinnungstest
Referenzbereiche: Kinder: s. Befundbericht
Erwachsene: 65 – 130 %
Faktor XII-Aktivität (U)
Probenmaterial: korrekt gefüllte Citratblut-Monovette
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Unklare aPTT-Verlängerung
Methode: Einphasengerinnungstest
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 235

Felbamat (U)
Referenzbereiche: Kinder: s. Befundbericht
Erwachsene: 50 – 150 %
Faktor XIII-Aktivität (U)
Probenmaterial: korrekt gefüllte Citratblut-Monovette
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Unklare postoperative Blutung,
Wundheilungsstörung mit Narbenbildung
Methode: kinetisch
Referenzbereiche: 70 – 140 %
Familiäres Mittelmeerfieber (U)
Synonyme: MEFV, FMF
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Stufendiagnostik
Einwilligungserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Klinische Indikationen: Verdacht auf FMF bei rezidivierenden Fieberschüben ohne Baktierennachweis,
peritonitischen Bauchbescherden, akuter Serositis, meist einseitige Pleuritis, Arthralgien,
Sacroileitis, bei Frauen Menstruationsabhängigkeit, selten auch Myositis, Perikarditis, Vaskulitis mit
spontaner Rückbildung nach wenigen Tagen bei Personen mit Herkunft aus dem Mittelmeerraum (vorwiegend
in Familien armenischen, jüdischen oder arabischen Ursprungs)
Methode: PCR und Sequenzierung aller 10 Exons des
Marenostrin-Gens
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Fasciolosis-Antikörper (U)
Synonyme: Großer Leberegel
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Infektion mit Fasciola hepatica (großer Leberegel) bei unklarer
chronischer Cholangitis, Cholestase, Ikterus, nach Aufenthalt in (sub-)tropischen Ländern
Methode: Indirekter Haemagglutinationstest
Referenzbereiche: < 1 : 160 Titer
Felbamat (U)
Synonyme: Handelsname: Taloxa ®
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Methode: HPLC
Referenzbereiche: therap. Bereich: 30 – 60 mg/l
236 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Ferritin
Ferritin
Probenmaterial: 1 ml Serum oder
1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufskontrolle von Eisenstoffwechselerkrankungen
(Eisenmangel, Eisenüberladung, Hämochromatose)
Methode: Immunturbidimetrie
Referenzbereiche: Frauen
praemenopausal: 15 – 150 ng/ml
postmenopausal: 30 – 400 ng/ml
Männer: 30 – 400 ng/ml
Kinder: s. Befundbericht
Liquor: < 15 ng/ml
Fetale Erythrozyten (U)
Synonyme: HbF-Zellen
Probenmaterial: 4 ml EDTA-Blut
Klinische Indikationen: Nachweis fetaler Erythrozyten im mütterlichen Blut bei
- vaginalen Blutungen in der Gravidität
- Diagnose/Kontrolle fetomaternaler Transfusion
Methode: Mikroskopie
Referenzbereiche: < 0,1 Promille
Fette im Stuhl (W)
Synonyme: Stuhlfette
Probenmaterial: 1 g Stuhl
Klinische Indikationen: Verdacht auf Malabsorption und Maldigestion, Störungen der exokrinen
Pankreasfunktions
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: < 2 Gew.-%
Fettsäuren, langkettige (C14-C20) (U)
Synonyme: LCFA = long chain fatty acids
Probenmaterial: 3 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Störung in der Verstoffwechselung von Fettsäuren (Mitochondropathien)
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Fettsäuren, sehr langkettige (C22-C26) (U)
Synonyme: VLCFA = very long chain fatty acids
Probenmaterial: 3 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Zellweger-Syndrom, Adrenoleukodystrophie (X-ALD)
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 237

Fibronectin (W)
Fetuin (alpha2-HS-Glykoprotein, Calcium-bindendes Glykoprotein) (W)
Synonyme: Alpha2-Heremans-Schmid-Glycoprotein
Probenmaterial: 2 ml Serum oder 2 ml EDTA-Plasma, tiefgefroren
Klinische Indikationen: Evaluierung des kardiovaskulären Risikos, insbesondere bei Dialysepatienten
sowie Abklärung extraossärer Verkalkungen
Methode: ELISA
Referenzbereiche: 0,2 – 0,77 g/l
FGF-23, C-terminal (W)
Synonyme: Fibroblast growth factor 23
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: Bitte das EDTA-Blut unmittelbar nach der Abnahme zentrifugieren, das Plasma
in ein separates Röhrchen pipettieren und einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: tumorinduzierte Osteomalazie
X-chromosomale Hypophosphatämie
autosomal dominante Hypophosphatämie
(beide Formen als Vitamin-D-resistente Rachitis bezeichnet)
Methode: ELISA
Referenzbereiche: 26 – 110 kRU/l
Fibrinogen
Synonyme: Fibrinogen funktionell
Probenmaterial: korrekt gefüllte Citratblut-Monovette
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: DIC (Verbrauchskoagulopathie),
Diagnostik der Hyperfibrinolyse,
Differenzierung zwischen Hypo-/Dysfibrinogenämie,
Verdünnungskoagulopathie
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: 238 – 498 mg/dl
Fibrinspaltprodukte
Probenmaterial: korrekt gefüllte Citratblut-Monovette
Methode: Immunoassay
Referenzbereiche: < 500 ng/ml
Fibronectin (W)
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: EDTA-Blut unmittelbar nach der Abnahme zentrifugieren, das Plasma in ein separates
Röhrchen (ohne Zusätze) abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Für die Bestimmung von Fibronectin im Plasma gibt es derzeit keine
gesicherte Indikation
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 25 – 40 mg/dl
238 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Fibronectin im Aszites (W)
Probenmaterial: 2 ml Aszites
Klinische Indikationen: Differenzierung zwischen benignem und malignem Aszites
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
FK 506
Fibronectin im Aszites (W)
Synonyme: Tacrolimus, Prograf
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise:
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle der Immunsuppression nach Organtransplantation
Methode: CMIA
Referenzbereiche: 4 – 20 ng/ml
Flecainid (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Flecainid-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Fluconazol (U)(N)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Fluconazol-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 0,5 – 50,0 µg/l
Flucytosin (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Flucytosin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Flunitrazepam (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
20 ml Urin
20 ml Magensaft
Abnahmehinweise: Blutentnahme unmittelbar vor erneuter Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Flunitrazepam-Therapie, Missbrauchskontrolle
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 239

Flupentixol (W)
Fluorid im Serum (W)
Probenmaterial: 3 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Überdosierung, Intoxikation in der Aluminium-, Glas- und
Metallindustrie
Methode: ISE
Referenzbereiche: < 30 ng/ml
Fluorid im Urin (W)
Probenmaterial: 20 ml Urin
Klinische Indikationen: Diagnostik der Fluorwasserstoff- und Fluorid-Belastung bei beruflich Exponierten
und bei Fluorid-Medikation
Methode: ISE
Referenzbereiche: < 2 mg/g Krea
Fluorid-Zahl (U)(N)
Synonyme: Atypische Cholinesterasen
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugiert werden.
Klinische Indikationen: Abklärung einer verlängerten Apnoe im Rahmen einer Narkose bei Verabreichung
von Succinylcholin oder Mivacurium zur Muskelrelaxation
Familienuntersuchung bei Patienten mit atypischen Cholinesterase-Verianten
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: > 55 %
Fluoxetin (W)
Synonyme: Norfluoxetin
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Fluoxetin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: Fluoxetin: 100 – 500 µg/l
Norfluoxetin: 150 – 500 µg/l
Flupentixol (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Bitte beachten Sie, dass bei Verwendung von gelhaltigen Röhrchen die Resultate
niedriger ausfallen können. Wir empfehlen, das Blut 30 min nach Abnahme zu zentrifugieren, das
Serum abzutrennen und in ein zweites Neutral-Röhrchen zu überführen.
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Flupentixol-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: 1 – 15 µg/l
240 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Fluphenacin (W)
Fluphenacin (W)
Probenmaterial: 5 ml Serum
Abnahmehinweise: Probe lichtgeschützt aufbewahren.
Bitte beachten Sie, dass bei Verwendung von gelhaltigen Röhrchen die Resultate niedriger ausfallen
können. Wir empfehlen, das Blut 30 min nach Abnahme zu zentrifugieren, das Serum abzutrennen
und in ein zweites Neutral-Röhrchen zu überführen.
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Fluphenazin-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: 1 – 10 µg/l
Toxischer Bereich: > 50 µg/l
Flurazepam (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Flurazepam-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 2,0 – 20,0 ng/ml
Fluvoxamin (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Fluvoxamin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 30 – 300 ng/ml
Folsäure
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer artefiziellen Freisetzung von Folsäure aus Erythrozyten
muss das Serum/Plasma bis spätestens 30-45 Minuten nach der Blutentnahme (nüchtern!) abgetrennt
werden.
Klinische Indikationen: Megaloblastäre Anämie,
Mangelernährung,
Malabsorptionssyndrom (Zöliakie, Sprue),
Jejunumsresektion,
Langzeitmedikation mit Phenytoin, Phenobarbital, Daraprim,
Langfristige Sulfonamideinnahme,
Mulitpara,
systemische hämatologische Erkrankungen,
gesteigerte Erythropoese (chronische Hämolyse),
Dialysepatienten,
Psoriasis, exfoliative Dermatitis,
nachgewiesener Vitamin C-Mangel,
Hyperhomocysteinämie,
Vitamin B12-Mangel
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: 3,1 – 17,5 ng/ml
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 241

Freie Leichtketten im Serum
Folsäure in Erythrozyten (W)
Probenmaterial: 5 ml EDTA-Vollblut
Klinische Indikationen: Megaloblastäre Anämie,
Mangelernährung,
Malabsorptionssyndrom (Zöliakie, Sprue),
Jejunumsresektion,
Langzeitmedikation mit Phenytoin, Phenobarbital, Daraprim,
Langfristige Sulfonamideinnahme,
Mulitpara,
systemische hämatologische Erkrankungen
Gesteigerter Erythropoese (chronische Hämolyse),
Dialysepatienten,
Psoriasis, exfoliativer Dermatitis,
Nachgewiesenem Vitamin C-Mangel,
Hyperhomocysteinämie,
Vitamin B12-Mangel
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: 180 – 590 ng/mlEry
Francisella tularensis-Antikörper (U)
Synonyme: Hasenpest, Tularämie
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 1-5 Tage; das diagnostische Fenster beträgt ca.
10 Tage
Klinische Indikationen: Verdacht auf Tularämie (Infektion beim Menschen erfolgt durch Kontakt
mit lebenden/toten infizierten Tieren (Wildbretzubereitung), seltener durch Inhalation) bei ulzeroglanduösem
bzw. okuloglandulärem Bild, selten Pneumonie
Methode: Agglutination
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Freie Fettsäuren (U)
Synonyme: FFA, Unveresterte Fettsäuren, NEFA
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Das Blut bitte nach der Abnahme und Gerinnung zentrifugieren, das Serum in
ein separates Röhrchen pipettieren und einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung zur Fettstoffwechsel-Beurteilung
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: < 0,7 mmol/l
Freie Leichtketten im Serum
Synonyme: FLC
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle/Monitoring bei:
- Bence Jones Myelom (BJP, LCMM)
242 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

- Nonsekretorisches Myleom (NSM)
- Leichtketten-Amyloidose (AL)
- Multiples Myelom mit Leichtkettenbeteiligung (MM)
- Monoklonale Gammopathie unbekannter Spezifität (MGUS)
- Weitere Diagnostik bei nachgewiesener monoklonale Gammopathie
Methode: Turbidimetrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Freie Leichtketten im Urin (W)
Probenmaterial: 10 ml Spontanurin oder
10 ml eines 24-Stunden-Urins (ohne Zusätze)
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Freie Leichtketten Typ Kappa im Serum
Synonyme: FLC
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle/Monitoring bei:
- Bence Jones Myelom (BJP, LCMM)
- Nonsekretorisches Myleom (NSM)
- Leichtketten-Amyloidose (AL)
- Multiples Myelom mit Leichtkettenbeteiligung (MM)
- Monoklonale Gammopathie unbekannter Spezifität (MGUS)
- Weitere Diagnostik bei nachgewiesener monoklonale Gammopathie
Methode: Turbidimetrie
Referenzbereiche: 3,3 – 19,4 mg/l
Freie Leichtketten Typ Kappa im Urin (W)
Freie Leichtketten im Urin (W)
Probenmaterial: 5 ml Spontanurin oder
5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: Bitte unbedingt die Sammelzeit angeben (wenn sie nicht 24 Stunden beträgt)
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle/Monitoring bei:
- Bence Jones Myelom
- Nonsekretorisches Myleom
- Leichtketten-Amyloidose
- Multiples Myelom mit Leichtkettenbeteiligung
- Monoklonale Gammopathie unbekannter Spezifität (MGUS)
- Weitere Diagnostik bei nachgewiesener monoklonale Gammopathie
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 1,4 – 24,2 mg/l
Freie Leichtketten Typ Lambda im Serum
Synonyme: FLC
Probenmaterial: 1 ml Serum
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 243

Freies β-HCG (U)
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle/Monitoring bei:
- Bence Jones Myelom (BJP, LCMM)
- Nonsekretorisches Myleom (NSM)
- Leichtketten-Amyloidose (AL)
- Multiples Myelom mit Leichtkettenbeteiligung (MM)
- Monoklonale Gammopathie unbekannter Spezifität (MGUS)
- Weitere Diagnostik bei nachgewiesener monoklonale Gammopathie
Methode: Turbidimetrie
Referenzbereiche: 5,7 – 26,3 mg/l
Freie Leichtketten Typ Lambda im Urin (W)
Probenmaterial: 5 ml Spontanurin oder
5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: Bitte unbedingt die Sammelmenge angeben (wenn nicht 24 Stunden)
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle/Monitoring bei:
- Bence Jones Myelom
- Nonsekretorisches Myleom
- Leichtketten-Amyloidose
- Multiples Myelom mit Leichtkettenbeteiligung
- Monoklonale Gammopathie unbekannter Spezifität (MGUS)
- Weitere Diagnostik bei nachgewiesener monoklonale Gammopathie
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 0,24 – 6,7 mg/l
Freier Androgen-Index
Synonyme: FAI, Testosteron/SHBG-Quotient
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Männer: Hypogonadismus, Kryptorchismus, erektile Dysfunktion, Hodentumoren,
Therapiemonitoring
Frauen: Ovarialtumoren, Virilisierung
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Freies β-HCG (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Das entnommene Vollblut gerinnen lassen und anschließend die Probe innerhalb
einer Stunde zentrifugieren. Serum abpipettieren und in einem Probenröhrchen gekühlt / gefroren
versenden.
Haltbarkeit im Serum: 7 Tage bei 2-8°C, länger bei -20°C
Falls diese Bedingungen nicht eingehalten werden können, bitte angeben.
Bitte Schwangerschaftswoche exakt angeben.
Klinische Indikationen: Erst-Trimester-Screening im Zusammenhang mit der Bestimmung von
freiem β-HCG und der Messung der Nackenfalte mittels Ultraschall
Methode: LIEMA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
244 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Freies Carbamazepin (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Bestimmung des max. Spiegels:
ca. 6-18 Stunden nach Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 1,0 – 2,5 µg/ml
Freies Hämoglobin (W)
Freies Carbamazepin (U)
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Plasma oder 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Bei der Blutabnahme sollte jede Hämolyse vermieden werden. Daher ist eine
Entnahme aus einer ungestauten Vene und die Verwerfung der ersten ca. 5 ml Blut zu empfehlen.
Klinische Indikationen: Verdacht auf intravasale Hämolyse
Qualitätskontrolle von Erythrozytenkonzentraten
Weitere Diagnostik bei Transfusionszwischenfällen
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Fruktosamin im Serum (W)
Synonyme: Fructosamin
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Retrospektive Langzeitkontrolle des Kohlenhydratstoffwechsels bei Diabetes
mellitus, insbesondere bei Störungen in der Bestimmung von → HbA1c, Seite 259
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: < 280 µmol/l
Fruktose im Blut (U)
Probenmaterial: 2 ml Natriumfluorid-Blut (NaF-Röhrchen)
Klinische Indikationen: Verdacht auf
- Fruktoseintoleranz,
- Galaktoseintoleranz
bei kindlichen Gedeihstörungen, gelegentlicher Hypoglykämie
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: < 5 mg/dl
Fruktose im Seminalplasma (U)
Synonyme: Fruktose im Ejakulat, Fructose im Sperma
Probenmaterial: 0,5 ml Ejakulat/Sperma mit Na-Fluorid (10mg/ml), bitte ggf. Spezialröhrchen anfordern
Abnahmehinweise: das Ejakulat sollte unmittelbar nach der Gewinnung in ein Fluoridröhrchen (BZ-
Röhrchen) gefüllt werden. Es wird das zentrifugierte Seminalplasma untersucht.
Eine sexuelle Karenz von mindestens 4 Tagen vor der Untersuchung wird empfohlen.
Klinische Indikationen: Diagnostik von Fertilitätsstörungen/Azoospermie,
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 245

FSME-Virus-Antikörper (IgG) (W)
Entzündungen der Bläschendrüsen
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: > 1200 µg/ml
FSH
Synonyme: Follikelstimulierendes Hormon
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung von Störungen der Ovarfunktion (Zyklusstörungen,
Sterilitätsdiagnostik, Hormonersatztherapie) bzw. der Hodenfunktion (pathologischer
Testosteronspiegel)
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
FSME-Antikörper (IgG, Liquor/Serum) (W)
Synonyme: FSME-AI, Liquordiagnostik
Probenmaterial: 1 ml Serum und 1 ml Liquor
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen.
Klinische Indikationen: Nachweis einer intrathekalen IgG-Synthese gegen FSME-Virus bei akuten
und auch chronischen ZNS-Erkrankungen.
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 1,5 Index
FSME-Serologie (W)
Synonyme: Frühsommer-Meningoenzephalitis
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 7-14 Tage.
Klinische Indikationen: Die FSME-Virus-Infektion wird durch Zecken übertragen (Hochendemiegebiete
in Deutschland sind: Schwarzwald, Bayerischer Wald, Niederbayern, Odenwald)
Ca. 90 % der Infektionen verlaufen subklinisch, sonst Sommergrippe, Meningoenzephalitis
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Einzelparameter
FSME-Virus-Antikörper (IgG) (W)
Synonyme: Frühsommer-Meningoenzephalitis
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 7-14 Tage.
Klinische Indikationen: Die FSME-Virus-Infektion wird durch Zecken übertragen (Hochendemiegebiete
in Deutschland sind: Schwarzwald, Bayerischer Wald, Niederbayern, Odenwald)
Ca. 90 % der Infektionen verlaufen subklinisch, sonst Sommergrippe, Meningoenzephalitis
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 20 RU/ml
246 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

FSME-Virus-Antikörper (IgM) (W)
FSME-Virus-Antikörper (IgM) (W)
Synonyme: Frühsommer-Meningoenzephalitis
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 7-14 Tage.
Klinische Indikationen: Die FSME-Virus-Infektion wird durch Zecken übertragen (Hochendemiegebiete
in Deutschland sind: Schwarzwald, Bayerischer Wald, Niederbayern, Odenwald)
Ca. 90 % der Infektionen verlaufen subklinisch, sonst Sommergrippe, Meningoenzephalitis
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 1,0 Ratio
FSME-Virus-RNA-Nachweis (W)
Synonyme: FSME-PCR
Probenmaterial: 1 ml Liquor
3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 7 – 14 Tage.
Klinische Indikationen: Die FSME-Virus-Infektion wird durch Zecken übertragen (Hochendemiegebiete
in Deutschland sind: Schwarzwald, Bayerischer Wald, Niederbayern, Odenwald)
Ca. 90 % der Infektionen verlaufen subklinisch, sonst Sommergrippe, Meningoenzephalitis
Methode: RT-PCR
Referenzbereiche: negativ
fT3
Synonyme: freies Trijodthyronin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Verdacht auf eine Schilddrüsenfunktionsstörung,
insbesondere bei pathologischem → TSH basal, Seite 367.
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
fT4
Synonyme: freies Thyroxin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Verdacht auf eine Schilddrüsenfunktionsstörung,
insbesondere bei pathologischem → TSH basal, Seite 367
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
FTA-ABS-19s-IgM (W)
Synonyme: Fluoreszenz-Treponema-Antikörper-Absorptions-Test, Syphilis, Lues
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Bestätigung eines reaktiven Lues-Suchtestes (IgG/IgM), in Einzelfällen alternativ
zu → Treponema pallidum-Antikörper (IgM-Westernblot), Seite 363
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 247

Galaktose-1-Phosphat (U)
FTA-ABS-IgG (W)
Synonyme: Fluoreszenz-Treponema-Antikörper-Absorptions-Test, Syphilis, Lues
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Bestätigung eines reaktiven Lues-Suchtestes (IgG/IgM), in Einzelfällen alternativ
zu → Treponema pallidum-Antikörper (IgG-Westernblot)
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Gabapentin (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Gabapentin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 2 – 10 mg/l
Galaktokinase in Erythrozyten (U)
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Das Blut bitte direkt nach der Entnahme kühl lagern (+ 2°C – + 8 °C)
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei Verdacht auf angeborene Enzymdefekte bei nicht
sphärozytären hämolytischen Anämien, insbesondere bei Entwicklung eines Kataraktes im Kindesalter
oder bei jungen Erwachsenen
Methode: RIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Galaktose im Blut (U)(N)
Probenmaterial: 1 ml Natriumfluorid-Blut (NaF-Röhrchen) oder
1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bei Verdacht auf partielle Galaktosämie sollte das Blut etwa 30-60 Minuten nach
Aufnahme eines Galaktose-reichen Nahrungsmittels (z.B. Milch) abgenommen werden.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Galaktosemangel, klassische Galaktosämie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Galaktose im Urin (W)
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (Zusatz von Natriumazid)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben, vor dem Abfüllen des Aliquots für die Diagnostik den Urin gründlich mischen.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Galaktokinasemangel, klassische Galaktosämie
Methode: enzymatisch
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Galaktose-1-Phosphat (U)
Synonyme: GALT
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Blut
248 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Klinische Indikationen: Verdacht auf klassiscche Galaktösämie bei:
- schwerer akuter Leberschädigung
- schwerer akuter tubulärer Nierenschädidung
- schwerer akuter ZNS-Schädigung
- Erbrechen, Diarrhoe, Gedeihstörung
- bei Milchzufütterung Ikterus, Hepatomegalie
Methode: Fluorometrie
Referenzbereiche: 7 – 22 µmol/l Ery
Galaktose-1-Phosphat-Uridyl-Transferase in Erythrozyten (U)
Galaktose-1-Phosphat-Uridyl-Transferase in Erythrozyten (U)
Synonyme: Gal-1-PUT
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Blut nach der Abnahme kühl (+ 2°C – + 8°C) lagern, NICHT einfrieren
Klinische Indikationen: Verdacht auf Enzymdefekt bei nicht sphärozytären hämolytischen Anämien
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Gallensäuren im Serum (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nüchtern (ca. 12 Stunden Nahrungskarenz), Lagerung gekühlt (+
2°C – + 8°C), ggf. auch postprandial (bitte vermerken)
Klinische Indikationen: Beurteilung der hepatobiliären Funktion; Diagnostik einer intrahepatischen
Schwangerschafts-Cholestase
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Gallensäuren im Stuhl (U)
Probenmaterial: 2 g Stuhl
Klinische Indikationen: Verdacht auf gestörte Rückresorption bei Erkrankungen des Ileums
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: 200 – 900 µmol/100 g
γ-GT
Synonyme: γ-Glutamyl-Transferase, GGT
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugiert werden.
Blutentnahme nach > 12 Stunden Alkoholkarenz
Klinische Indikationen: Diagnose, Beurteilung und Verlaufskontrolle von Erkrankungen der Leber
und der Gallenwege
Methode: enzymatisch
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 249

Gentamicin im Serum
γ-HCH im Blut (U)
Synonyme: Lindan, γ-Hexachlorcyclohexan, Gamma-HCH, Pestizid
Probenmaterial: EDTA-Blut, spezielle Abnahmemonovetten verwenden
Abnahmehinweise: Spezielle Abnahmemonovetten können angefordert werden.
Klinische Indikationen: Beurteilung der Lindanbelastung
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: < 0,1 µg/l
Gamma-Linolensäure (U)(N)
Probenmaterial: 5 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Mangel an Gamma-Linolensäure, insbesondere bei unruhiger,
rissiger Haut, Juckreiz und Hautrötungen, Haarausfall, Schuppenbildung und Wundheilungstörungen
Methode: GC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Gastrin im Serum (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme morgens nüchtern (ca. 12 Stunden Nahrungskarenz), 24 Stunden
vorher keine Antazida, H2-Blocker, Anticholinergika einnehmen, kein Kaffeegenuss, Blut direkt nach
der Gerinnung zentrifugieren, Serum abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Schweres peptisches Ulcusleiden, Rezidivulcera nach Magenteilresektion,
Zollinger-Ellison-Syndrom, schwere Refluxösophagitis, massive gastrale Hypersekretion, weiter Diagnostik
bei Abklärung eines MEN
Methode: RIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Gelbfieber-Antikörper (U)
Synonyme: Arboviren
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 3-6 Tage.
VOR DER BLUTABNAHME telefonische Anmeldung, ggf. Referenzzentrum konsultieren
Klinische Indikationen: Verdacht auf Gelbfieberinfektion bei Symptomatik: hämorrhagisches Fieber
mit biphasischem Verlauf, Übertragungsmodus: durch Moskitos
Methode: IIFT
Referenzbereiche: negativ (< 1:20)
Gentamicin im Serum
Synonyme: Gentamycin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bestimmung des Talspiegels: Entnahme direkt vor nächster Gabe
Bestimmung des Spitzenspiegels: ca. 30 Minuten nach i.v.-Gabe
Klinische Indikationen: Monitoring einer Gentamicin-Therapie
Methode: PETNIA
250 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Referenzbereiche: Talwert: 0,3 – 2 mg/l
Spitzenwert: 5 – 10 mg/l
Talspiegel > 2 mg/l und Spitzenspiegel > 10 mg/l sind potentiell nephrotoxisch.
Gerinnungsuntersuchungen
Gerinnungsuntersuchungen
Probenmaterial: korrekt gefüllte Citratblut-Monovette (je Parameter ca. 0,4 ml)
Abnahmehinweise: Gerinnungsanalysen sind besonders störanfällig auf Fehler in der Präanalytik
(Blutentnahme, Probentransport). Blutabnahme unter möglichst stressarmen Bedingungen, kurze
Stauzeiten, möglichst großvolumige Kanülen verwenden, Citratblut nicht zuerst abnehmen, bei der
Abnahme auf das korrekte Füllvolumen (bis zur vorgeschriebenen Markierung auf dem Röhrchen)
achten, Röhrchen direkt nach der Abnahme durch vorsichtiges Schwenken gründlich mischen.
Klinische Indikationen: Abklärung einer erhöhten Blutungs- oder Thromboseneigung, Verlaufskontrolle
einer bekannten Gerinnungsstörung
Methode: siehe Einzelparameter
Referenzbereiche: siehe Einzelparameter
GFR nach CKD-Epi Formel
Synonyme: CKD-Epi, CKD GFR, Chronical-Kidney-Disease-Epidemy-
Collaboration
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Für die Berechnung sind zusätzlich folgende Angaben
notwendig:
- Alter
- Geschlecht
- Hinweis auf schwarze Hautfarbe
GHB im Serum (W)(N)
Synonyme: Gamma-Hydroxy-Buttersäure, “K.O.-Tropfen“
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Aufklärung einer vermuteten Beimengung von GHB
Referenzbereiche: s. Befundbericht
GHB im Urin (W)(N)
Synonyme: Gamma-Hydroxy-Buttersäure, “K.O.-Tropfen“
Probenmaterial: 5 ml Urin (ohne Zusätze)
Klinische Indikationen: Aufklärung einer vermuteten Beimengung von GHB
Referenzbereiche: s. Befundbericht
GLDH
Synonyme: Glutamat-Dehydrogenase
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum bei längerem Probentransport
abzentrifugiert werden.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 251

Glucagon (U)
Klinische Indikationen: Diagnose und Beurteilung der Schwere einer Leberparenchymschädigung,
Differentialdiagnose der Lebererkrankungen
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Gliadin-Antikörper im Stuhl (IgA) (W)
Synonyme: Gliadin-scIgA-Ak
Probenmaterial: 1 g Stuhl
Klinische Indikationen: Screening-Untersuchung bei Verdacht auf Zöliakie bei erschwerter Blutentnahme
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Glibenclamid (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme 1 – 2 Stunden nach oraler Gabe
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Glibenclamid-Therapie
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Glibornurid (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Glibornurid-Therapie
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: 1,6 – 3,4 mg/l
Glimepirid (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle bzw. Monitoring einer Glimepiridtherapie
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Glucagon (U)
Synonyme: Glukagon
Probenmaterial: 1 ml mit Trasylol stabilisiertes EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: Die Blutentnahme sollte morgens am nüchternen Patienten erfolgen.
4 ml EDTA-Blut abnehmen, sofort in ein mit Trasylol präpariertes Glasröhrchen überführen und zentrifugieren.
Anschließend Plasma in ein Glasröhrchen ohne Zusatz umfüllen. Probe tiefgefroren einsenden.
Klinische Indikationen: Diagnostik des Glukagonoms
Methode: RIA DA PEG
Referenzbereiche: < 100 pg/ml
252 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Glukose im Blut
Glukose im Blut
Synonyme: Blutzucker
Probenmaterial: 1 ml Natriumfluorid-Blut oder
1 ml Citrat-NaF-Blut (GlucoEXACT) oder
1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Bestimmung der Nüchtern-Glukose ist eine Nahrungskarenz von mindestens
8 Stunden erforderlich
Klinische Indikationen: Diagnose, Verlaufskontrolle und Therapiebeurteilung bei Diabetes mellitus,
Abklärung einer Hypoglykämie bei unklarem Koma, Pankreatitis, Endokrinopathien, Inselzelltumoren,
Morbus Addison
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Glukose im Dialysat (N)
Synonyme: Glucose im Dialysat
Probenmaterial: 2 ml Dialysat
Klinische Indikationen: Qualitätskontrolle von Dialysat
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Glukose im Liquor
Synonyme: Glucose im Liquor
Probenmaterial: 1 ml Liquor und
1 ml Serum oder NaF-Blut
Abnahmehinweise: Liquor und Serum/NaF gleichzeitig abnehmen
Klinische Indikationen: Grundprogramm der Liquordiagnostik bei Verdacht auf akute ZNS-
Infektion.
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: > 50% des Serumwertes
Glukose im Urin
Synonyme: Glucose
Probenmaterial: 5 ml Spontanurin (Mittelstrahl) oder
5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (gesammelt über 5 ml Eisessig)
Abnahmehinweise: Haltbarkeit bei nicht stabilisiertem Urin maximal 2 Stunden.
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle bei Diabetes mellitus und des renalen Diabetes,
toxische Nierenschädigung, Schwangerschaftsglukosurie
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Spontanurin: 1 – 15 mg/dl
24-Stunden-Sammelurin: < 0,5 g/24 Std.
Glukose-6-Phosphat-Dehydrogenase in Erythrozyten (W)
Synonyme: Favismus, G-6-PDH, G6P-DH
Probenmaterial: 4 ml EDTA-Vollblut
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 253

Glutathion-Reduktase in Erythrozyten (U)
Abnahmehinweise: Blut nach der Abnahme kühl (+ 2°C – + 8°C) lagern, NICHT einfrieren
Klinische Indikationen: Verdacht auf G-6-PDH-Mangel bei hämolytischer Anämie, die insbesondere
durch Infekte, Aufnahme von Nahrungsmitteln (Favabohnen) oder nach Medikamentengabe (Chinin,
Primaquin, Chloroquin, Sulfonamide, ASS u.a.) verstärkt wird
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Glutarsäure (U)
Probenmaterial: 5 ml Urin
Klinische Indikationen: Verdacht auf Glutaracidurie Typ I mit
- geringgradige Muskelhypotonie
- Irritabilität, Zittrigkeit
- Makrozephalie
- progrediente Choreoathethose mit Dystonie
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Glutathion gesamt im Vollblut (W)
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Blut, tiefgefroren
Abnahmehinweise: Vollblut direkt nach der Abnahme einfrieren (ca. – 20°C) und gefroren lagern
Klinische Indikationen: Beurteilung der körpereigenen Entgiftungsfunktion
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: 760 – 1200 µmol/l
Glutathion, reduziert im Vollblut (W)
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Blut, tiefgefroren
Abnahmehinweise: Vollblut direkt nach der Abnahme einfrieren (ca. – 20°C) und gefroren lagern
Klinische Indikationen: Beurteilung der körpereigenen Entgiftungsfunktion
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Glutathion-Peroxidase (W)
Synonyme: GPX
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Blut
Klinische Indikationen: Beurteilung oxidativer Stress
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Glutathion-Reduktase in Erythrozyten (U)
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Blut nach der Abnahme kühl (+ 2°C – + 8°C) lagern, NICHT einfrieren
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei angeborener nicht sphärozytärer hämolytischer
Anämie bzw. bei hämolytischen Krisen nach Einnahme oxidierender Substanzen (z.B. Favabohnen)
254 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: Photometrie
Referenzbereiche: 5 – 11 U/g Hb
Gold im Serum (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Bestimmung des max. Spiegels:
ca. 30 Minuten nach Applikation
Bestimmung des Talspiegels:
vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Gold-Therapie
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: 380 – 5000 µg/l
GOT
Synonyme: Glutamat-Oxalacetat-Transaminase, AST
Probenmaterial: 1 ml Serum
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Männer: 10 – 50 U/l
Frauen: 10 – 35 U/l
Kinder: altersabhängige Referenzbereiche
GPT
Synonyme: Glutamat-Pyruvat-Transaminase, ALT
Probenmaterial: 1 ml Serum
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Männer: 10 – 50 U/l
Frauen: 10 – 35 U/l
Kinder: altersabhängige Referenzbereiche
Haemophilus influenzae Typ b-IgG-Antikörper (W)
Gold im Serum (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bei klinischem Verdacht auf eine Infektion ist der Erregernachweis die Methode
der Wahl
Klinische Indikationen: Überprüfung des Immunstatus vor oder nach Impfung
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Haloperidol (Haldol) (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring einer Haloperidol-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 255

Hämopexin (W)
HAMA (W)
Synonyme: humane Anti-Maus-Antikörper, heterophile Antikörper
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik zur Aufklärung nicht plausibler Ergebnisse immunologischer
Untersuchungen (Tumormarker, Hormone), bei denen in den Laborverfahren monoklonale
Maus-Antikörper verwendet werden
Therapie-Monitoring nach diagnostischer oder therapeutische Applikation monoklonaler Maus-
Antikörper
Methode: ELISA
Referenzbereiche: < 40 µg/l
Hämochromatose, hereditär
Synonyme: HFE
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einwilligungserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Verdacht auf hereditäre Hämochromatose, insbesondere
bei erhöhter Transferrinsättigung und/oder erhöhter Ferritinkonzentration
Methode: PCR
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hämoglobin / Hämoglobin-Haptoglobin-Komplex im Stuhl (W)
Synonyme: Blut im Stuhl immunologisch / Haemimmun ®
Probenmaterial: 2 Stuhlproben à 1g, gefroren
Abnahmehinweise: Empfohlen werden 2 erbsgroße Proben aus einem Stuhlgang
Klinische Indikationen: Vorsorge des Dickdarmkarzinoms
Methode: ELISA
Referenzbereiche: Hämoglobin: < 2,0 µg/g Stuhl
Hämoglobin/Haptoglobin-Komplex: < 2,0 µg/g Stuhl
Hämoglobin-Mutationsnachweis (W)
Synonyme: Hämoglobinopathie
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einwilligungserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung zum Nachweis anormaler Hämoglobine bei unklarem
Ausfall anderer Untersuchungsmethoden (Hb-Elektrophorese), insbesondere bei schweren Verläufen
oder im Rahmen einer pränatalen Diagnostik bei Verdacht auf Thalassämie
Methode: PCR
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hämopexin (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Abschätzung des Grades der intravasalen Hämolyse bei nicht messbarem →
256 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Haptoglobin, Seite 257.
Methode: RID
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hämosiderin (U)(N)
Probenmaterial: 10 ml Spontanurin
Klinische Indikationen: Verdacht auf Eisenüberladung
Methode: Mikroskopie
Referenzbereiche: negativ
Hantavirus-Antikörper (IgG-Immunoblot, Bestätigung) (W)
Hämosiderin (U)(N)
Synonyme: Hämorrhagisches Fieber
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 10-30 Tage
Klinische Indikationen: Bestätigungstest bei positivem Suchtest für Hantaan-Virus-IgG bzw.
Puumala-Virus-IgG
Verdacht auf Dobrava-Virus-Infektion
Methode: Immunoblot
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hantavirus-Antikörper (IgM-Immunoblot, Bestätigung) (W)
Synonyme: Hämorrhagisches Fieber
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 10-30 Tage
Klinische Indikationen: Bestätigungstest bei positivem Suchtest für Hantaan-Virus-IgG bzw.
Puumala-Virus-IgG
Verdacht auf Dobrava-Virus-Infektion
Methode: Immunoblot
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hantavirus-Serologie (W)
Synonyme: Hämorrhagisches Fieber
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 10-30 Tage
Klinische Indikationen: Verdacht auf Hantavirus-Infektion bei Nephropathia endemica bzw. haemorrhagischem
Fieber mit renalen Symptomen, Nierenversagen, Pneumonie, Hämoptysis
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Haptoglobin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufsbeurteilung hämolytischer Erkrankungen
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 257

Harnstoff im Urin
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 0,3 – 2,0 g/l
Harnsäure im Punktat (N)
Probenmaterial: 1 ml Punktat
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Verdacht auf Arthritis urica (Gicht)
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Harnsäure im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Screeninguntersuchung bei Stoffwechseldiagnostik,
Diagnose und Verlaufsbeurteilung der Gicht,
Verdacht auf sekundäre Hyperurikämie
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: < 15 Jahre: 1,0 – 6,4 mg/dl
> 15 Jahre (Männer): < 7,0 mg/dl
> 15 Jahre (Frauen): < 5,7 mg/dl
Harnsäure im Urin
Probenmaterial: 5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusatz) oder
5 ml Spontanurin
Abnahmehinweise: Bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei pathologischen Harnsäurewerten im Serum, bei
Nephro- und Urolithiasis
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Harnstoff im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose der prärenalen und postrenalen Azotämie, Verlaufskontrolle der
chronischen Niereninsuffizienz und bei Dialysepatienten
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: 16,6 – 48,5 mg/dl
Harnstoff im Urin
Probenmaterial: 5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusatz) oder
5 ml Spontanurin
Abnahmehinweise: Bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung der Niereninsuffizienz
258 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hb-Elektrophorese (W)
Synonyme: Hämoglobin-Elektrophorese
Probenmaterial: 2 x 3 ml EDTA-Blut
Klinische Indikationen: Verdacht auf eine Hämoglobinopathie,
Hypochrome Erythrozyten (mit/ohne Anämie) nach Ausschluss eines Eisenmangels,
chronisch-hämolytische Anämien,
Gefäßverschlusskrisen unbekannter Ursache,
Hydrops fetalis unklarer Ursache,
Familienuntersuchung bei bekannter Hämoglobinopathie
Methode: Kapillarelektrophorese
Referenzbereiche: s. Befundbericht
HbA1c
Hb-Elektrophorese (W)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Klinische Indikationen: Retrospektive Langzeitkontrolle des Kohlenhydratstoffwechsels bei Diabetes
mellitus
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 4,3 – 5,9 %
23 – 42 mmol/mol
HBDH
Synonyme: α-Hydroxybutyrat-Dehydrogenase, LDH 1
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugieren
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung von Erkrankungen mit erhöhtem LDH
1-Isoenzym (Herzmuskel, Erythrozyten, Niere)
Differenzierung einer erhöhte LDH
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: 72 – 182 U/l
HBe-Antigen
Synonyme: Hepatitis B e-Antigen
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Zusätzlicher Parameter bei der Diagnostik und Verlaufsbeurteilung der
akuten und chronischen Hepatitis B
Methode: CMIA
Referenzbereiche: negativ
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 259

Helicobacter pylori-Nachweis im Atemtest
HBs-Antigen
Synonyme: Australia-Antigen, Hepatitis B
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufsbeurteilung der akuten und chronischen Hepatitis B
Methode: CMIA
Referenzbereiche: negativ
HDL-Cholesterin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nüchtern (ca. 12 Stunden Nahrungskarenz), langes Stauen vermeiden
Klinische Indikationen: Diagnose, Differentialdiagnose und Verlaufsbeurteilung von Fettstoffwechselstörungen,
Verlaufskontrolle unter lipidsenkender Therapie
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Frauen: > 45 mg/dl
Männer: > 35 mg/dl
Helicobacter pylori-Antikörper (IgA-EIA)
Synonyme: H. pylori-Suchtest
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Abklärung chronische Gastritis Typ B,
Ulcus ventriculi, Ulcus duodeni
Bei chronischer Infektion kann sich in der Folge ein MALT-Lymphom entwickeln.
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ (< 0,8 Ratio)
Helicobacter pylori-Antikörper (IgG-EIA)
Synonyme: H. pylori-Suchtest
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Abklärung chronische Gastritis Typ B,
Ulcus ventriculi, Ulcus duodeni
Bei chronischer Infektion kann sich in der Folge ein MALT-Lymphom entwickeln.
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ (< 16 E/ml)
Helicobacter pylori-Nachweis im Atemtest
Synonyme: C13-Atemtest
Probenmaterial: je 1 Atembeutel
Abnahmehinweise: Atembeutel bitte exakt kennzeichnen
(vor bzw. nach Gabe von C13)
Klinische Indikationen: Diagnose und Therapiekontrolle einer Helicobacter pylori-Infektion
Methode: Infrarot-Spektrometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
260 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Helicobacter pylori-Serologie
Helicobacter pylori-Serologie
Synonyme: H. pylori
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Abklärung bei chronischer Gastritis Typ B, Ulcus ventriculi, Ulcus duodeni.
Bei chronischer Infektion kann sich in der Folge ein MALT-Lymphom entwickeln.
Methode: EIA
Immunoblot
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Heparin-induzierte Thrombozytopenie
Synonyme: HIT II, HAT
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Bitte Angaben zum verabreichten Heparin einschließlich Behandlungsdauer und
Heparinanamnese machen.
Klinische Indikationen: Thrombozytenabfall um mehr als 50% vom Ausgangswert bzw. Thrombozytopenie
im Rahmen einer Heparin-Therapie
Thrombose (arteriell, venös) unter Heparin-Therapie
Nicht ausreichende Heparin-Wirkung (Heparin-Resistenz)
Hinweis:
Auftreten ca. ab dem 5. Tag nach erstmaliger Heparingabe, bei anamnestisch bekannter Heparin-
Gabe auch frühzeitiger; HIT II ist auch bei normaler Thrombozytenzahl möglich, ab der 3. Behandlungswoche
mit Heparin sinkt das Risiko für eine HIT II wieder.
Wegen der Lebensbedrohlichkeit der mit einer HIT II verbundenen Komplikationen sollte bei Verdacht
auf HIT II die Diagnostik unmittelbar eingeleitet werden.
Methode: ELISA
Referenzbereiche: negativ
Hepatitis A-Serologie
Synonyme: HAV
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 12-40 Tage (Mittel: 21).
Klinische Indikationen: Akute Hepatitis A, Überprüfung des Impfschutzes nach Hepatitis A-
Impfung
Methode: CMIA
Referenzbereiche: negativ
Hepatitis A-Virus-PCR (W)
Synonyme: HAV-PCR
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
5 g Stuhl
Leberbiopsie, tiefgefroren (-20°C)
Klinische Indikationen: Verdacht auf akute Hepatitis A, Nachweis der Hepatitis A-Virämie, Umgebungsuntersuchungen
bei Hepatitis A-Ausbrüchen
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 261

Hepatitis C-RNA-Nachweis quantitativ
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Hepatitis B-DNA-Nachweis quantitativ
Synonyme: HBV-PCR quantitativ
Probenmaterial: 9 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Bitte für diese Untersuchung eine separate Monovette abnehmen. Das Blut nach
der Abnahme kühl (+2°C – +8°C) lagern.
Ausnahmekennziffer 32005 (Therapie Hepatitis B+C) oder
32006 (Verdacht auf meldepflichtige Erkrankung)
Klinische Indikationen: Bestimmung der Virusmenge bzw. Virusbeladung (“viral load“) des Patienten
zur Beurteilung des Infektionstatus und zur Therapiekontrolle
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Hepatitis B-Serologie
Probenmaterial: 3 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 40-160 Tage (Mittel: 65).
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufsbeurteilung einer akuten oder chronischen Hepatitis
B. Die Infektiosität besteht grundsätzlich für die Zeit des Nachweises von HBs-Antigen; die bessere
Beurteilung gelingt mit Bestimmung der Hepatitis B-Viruslast.
Methode: CMIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hepatitis B-Virus-Resistenzbestimmung (genotypisch, Pol-Gen) (W)
Synonyme: Lamivudin-Resistenz, Adefovir-Resistenz
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Ausnahmekennziffer 32005 (Therapie Hepatitis B+C)
Klinische Indikationen: Verdacht auf Resistenz gegenüber den eingesetzten Medikamenten zur Therapie
einer HBV-Infektion (Lamivudine, ggf. Adefovir oder andere) bei:
- Therapieversagen (HBV-Viruslast-Anstieg unter Therapie)
- Primärinfektion mit ggf. resistenten HBV-Stämmen
- Beginn einer HBV-Therapie
Methode: PCR
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hepatitis C-RNA-Nachweis quantitativ
Synonyme: HCV-PCR-quantitativ
Probenmaterial: 9 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Bitte für diese Untersuchung eine separate Monovette abnehmen. Das Blut nach
der Abnahme kühl (+2°C – +8°C) lagern.
Ausnahmekennziffer 32005 (Therapie Hepatitis B+C) oder 32006 (Verdacht auf meldepflichtige
Erkrankung)
262 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Hepatitis C-Serologie
Klinische Indikationen: Bestimmung der Virusmenge bzw. Virusbeladung (“viral load“) des Patienten
zur Beurteilung des Infektionstatus und zur Therapiekontrolle
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Hepatitis C-Serologie
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 7-140 Tage (Mittel: 50).
Klinische Indikationen: Verdacht auf eine Hepatitis C-Infektion
Methode: CMIA
Immunoblot
Referenzbereiche: negativ
Hepatitis C-Virus-Genotypisierung
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Ausnahmekennziffer 32005 (Therapie Hepatitis B+C)
Klinische Indikationen: Therapie einer HCV-Infektion mit Interferon/Ribaverin
Methode: PCR
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hepatitis D-Diagnostik (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum (Antikörpernachweis)
ggf. 10 ml EDTA-Blut (PCR)
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt für die HDV-Superinfekion ca. 7-50 Tage; bei
der HDV-Koinfektion wie bei der Hepatitis B ca. 40-160 Tage (Mittel: 65).
Klinische Indikationen: Verdacht auf eine Koinfektion oder Superinfektion einer bestehenden Hepatitis
B mit HDV.
Methode: EIA
PCR
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hepatitis D-RNA-Nachweis (W)
Synonyme: HDV-PCR
Probenmaterial: 10 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Bitte für diese Untersuchung eine separate Monovette abnehmen. Das Blut nach
der Abnahme kühl (+2°C – +8°C) lagern.
Ausnahmekennziffer 32006 (Verdacht auf meldepflichtige Erkrankung)
Klinische Indikationen: Verdacht auf Superinfektion einer chronischen Hepatitis B-Infektion
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 263

Herpes simplex-Virus Typ 1/2-Antikörper (IgG, Liquor/Serum)
Hepatotrope Erreger
Synonyme: Hepatitis-Erreger
Probenmaterial: Serum
HER-2/neu-Protein im Serum (W)
Synonyme: human epidermal growth factor receptor-2/neuroblastoma
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring sowie Prognoseabschätzung beim Mammakarzinom
Fehlender Tumorgewebestatus zur HER-2/neu-Protein-Expressioin
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hereditäre Fruktose-Intoleranz (U)
Synonyme: HFI, (MIM 229600)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einwilligungserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Klinische Indikationen: Verdacht auf hereditäre Fruktose-Intoleranz bei unklarer Hypoglykämie
bzw. Schweißausbruch, Tremor, Erbrechen und Krämpfen nach Fruktose-Aufnahme sowie weitere
Untersuchung bei Azidose, Aminoazidurie und Nierenschaden.
Methode: PCR und Sequenzierung
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hereditäre Pankreatitis (U)
Synonyme: Trypsinogen-Gen (MIM 167800)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einwilligungserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Klinische Indikationen: Verdacht auf hereditärer Pankreatitis im Rahmen der Familienberatung bei
gehäuftem Vorkommen in Familien bzw. Auftreten einer chronischen Pankreatitis im Kindesalter
Methode: PCR und Sequenzierung
Referenzbereiche: negativ
Herpes simplex-Virus Typ 1/2-Antikörper (IgG, Liquor/Serum)
Synonyme: HSV-AI
Probenmaterial: 1 ml Liquor und
1 ml Serum
Abnahmehinweise: Liquor und Serum immer gleichzeitig abnehmen.
Bei akuten ZNS-Erkrankungen beträgt das diagnostische Fenster für den intrathekalen IgG-Nachweis
ca. 7-14 Tage.
Klinische Indikationen: Nachweis einer intrathekalen IgG-Synthese gegen HSV, insbesondere in der
zweiten Erkrankungswoche einer akuten ZNS-Erkrankung
264 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: EIA
Referenzbereiche: 0,6 – 1,5 Index
Herpes simplex-Virus Typ 1/2-DNA-Nachweis
Herpes simplex-Virus Typ 1/2-DNA-Nachweis
Synonyme: HSV 1/2-PCR
Probenmaterial: je nach Indikation:
1 ml Liquor
3 ml EDTA-Blut
Bläscheninhalt (Trockenabstrich)
Kammerwasser
1 ml respiratorisches Material
Klinische Indikationen: Nachweis einer HSV-Infektion, insbesondere bei akuter ZNS-Erkrankung
Methode: PCR mit Schmelzkurvenanalyse
Referenzbereiche: negativ
Herpes simplex-Virus Typ 1/2-Serologie
Synonyme: HSV Typ 1/2
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 3-7 Tage.
Klinische Indikationen: Herpes labialis, Herpes genitalis, bei Kleinkindern und Säuglingen auch
Enzephalitis, Krampfanfälle, Hepatitis, Herpes neonatorum.
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ
Hexachlorbenzol im Blut (U)
Probenmaterial: 10 ml EDTA-Blut, spezielle Abnahmemonovetten verwenden
Abnahmehinweise: Spezielle Abnahmemonovetten können angefordert werden.
Klinische Indikationen: Beurteilung der Belastung mit Hexachlorbenzol
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hippursäure im Urin (U)
Synonyme: Hippurat
Probenmaterial: 5 ml Spontanurin
Abnahmehinweise: Probennahme nach Expositionszeit (Schichtende)
Klinische Indikationen: Beurteilung der Toluolbelastung
Methode: GC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Histamin im Blut (U)
Probenmaterial: 5 ml Heparin-Blut
Abnahmehinweise: Vor der Blutentnahme histaminreiche Nahrungsmittel wie Käse, Rotwein oder
Sauerkraut vermeiden.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 265

HIV-1-RNA-Nachweis quantitativ
Klinische Indikationen: Suchtest für Typ 1-Überempfindlichkeitsreaktionen, Mastozytose, Mastozytom,
CML, Polyzythämie vera, Urtikaria
Methode: RIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Histamin im Plasma (U)
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Plasma, gefroren
Abnahmehinweise: Das Blut bitte direkt nach der Entnahme zentrifugieren, das Plasma in ein
separates Röhrchen überführen und einfrieren (ca. – 20°C). Vor der Blutentnahme histaminreiche
Nahrungsmittel wie Käse, Rotwein oder Sauerkraut vermeiden.
Klinische Indikationen: Suchtest für Typ 1-Überempfindlichkeitsreaktionen, Mastozytose, Mastozytom,
CML, Polyzythämie vera, Urtikaria
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Histamin im Urin (U)
Probenmaterial: 5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (gesammelt über 5 ml Eisessig)
Abnahmehinweise: Den Urin nach der Gewinnung direkt einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei Typ 1-Überempfindlichkeitsreaktionen, Mastozytose,
Mastozytom, CML, Polyzythämie vera, Urtikaria
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Histoplasma capsulatum-Antikörper (U)
Synonyme: Histoplasmose
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationzeit beträgt ca. 5-18 Tage, das diagnostische Fenster beträgt ca.
2-4 Wochen.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Histoplasmose bei Reiseanamnese (USA, mittlerer
Westen) und Pneumonie, Lymphadenopathie, gastrointestinale Symptome, Hepatosplenomegalie,
Tuberkulose-ähnliche Symptomatik
Methode: RID
Referenzbereiche: negativ
HIV-1-RNA-Nachweis quantitativ
Synonyme: HIV-1-PCR quantitativ, HIV-1-Viruslast
Probenmaterial: 10 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Therapie der HIV-Infektion
Ausnahmekennziffer 32021
Klinische Indikationen: Diagnose einer HIV-Infektion
Verlaufskontrolle, Therapiemonitoring bei HIV-Infektion
Methode: RT-PCR
Referenzbereiche: negativ
266 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

HIV-Antikörper (Bestätigung)
HIV-Antikörper (Bestätigung)
Synonyme: Westernblot, HIV-1, HIV-2
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster bis zum Nachweis von HIV-Antikörpern beträgt ca. 4
bis 7 Wochen, in seltenen Einzelfällen auch bis zu 12-26 Wochen.
Klinische Indikationen: Untersuchung von Seren, die im Suchtest reaktiv ausfallen. Aufgrund der
epidemiologischen Situation in Deutschland wird zunächst der HIV-1-Westernblot durchgeführt. Eine
Indikation für den HIV-2-Westernblot besteht bei entsprechender Anamnese.
Methode: Immunoblot
Referenzbereiche: negativ
HIV-Antikörper (Suchtest)
Synonyme: HIV-1, HIV-2, HIV-Subtyp O
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster bis zum Nachweis von HIV-Antikörpern beträgt ca. 4
bis 7 Wochen, in seltenen Einzelfällen auch bis zu 12-26 Wochen.
Klinische Indikationen: Verdacht auf eine HIV-Infektion.
In der Frühphase der Infektion kann der HIV-Antikörpertest noch negativ ausfallen. In diesen Fällen
sollte der direkte Erregernachweis durchgeführt werden (HIV-RNA-Nachweis qualitativ).
Methode: CMIA
Referenzbereiche: negativ
HLA-A-,B-,C-Typisierung (U)
Synonyme: Human Leucocyte Antigene, HLA-Klasse I
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einwilligungserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Klinische Indikationen: Typisierung zur Abklärung der Gewebeverträglichkeit bei Transplantationen
oder zur Beurteilung von Krankheitsassoziationen
Methode: PCR-SSP
Referenzbereiche: s. Befundbericht
HLA-B*5701-Gentest (U)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einwilligungserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Klinische Indikationen: Abacavir-Medikation ist bei HLA-B*5701 positiven Patienten aufgrund des
hohen Risikos einer Hypersensitivitäts Reaktion (HSR) kontraindiziert
Methode: PCR-SSP
Referenzbereiche: s. Befundbericht
HLA-B27
Probenmaterial: 2 ml NH4-Heparin-Blut
Klinische Indikationen: Abklärung des relativen Erkrankungsrisikos von Erkrankungen des rheuma-
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 267

Holo-Transcobalamin (W)
tischen Formenkreises
Methode: Durchflusszytometrie
Referenzbereiche: negativ
HLA-DR-, DP-, DQ-Typisierung (U)
Synonyme: Human Leucocyte Antigene, HLA-Klasse II
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Für diese Untersuchung ist ein separates Röhrchen abzunehmen.
Einwilligungserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Klinische Indikationen: Typisierung zur Abklärung der Gewebeverträglichkeit bei Transplantationen
oder zur Beurteilung von Krankheitsassoziationen
Methode: PCR-SSP
Referenzbereiche: s. Befundbericht
HLA-Typisierung (U)
Synonyme: HLA-Klasse I, HLA-Klasse II
Probenmaterial: 10 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einwilligungserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Zur Vermeidung einer Kontamination der Probe bitte ein separates Probenröhrchen einsenden.
Falls Vorbereitung einer Stammzelltransplantation erfolgt, Probenröhrchen mit Namen, Vornamen und
Geburtsdatum beschriften und einen entsprechenden Vermerk auf dem Untersuchungsauftrag machen
(Einsendung der Probe an ein EFI-akkreditiertes Labor erforderlich)
Klinische Indikationen: Typisierung zur Abklärung der Gewebeverträglichkeit bei Transplantationen
oder zur Beurteilung von Krankheitsassoziationen
Methode: HLA-Klasse I-Antigene:
serologische Typisierung
HLA-Klasse II-Antigene:
molekularbiologisch (PCR)
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Holo-Transcobalamin (W)
Synonyme: Holo-TC
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Frühmarker zur Labordiagnose eines Vitamin B12-Mangels,
insbesondere bei
- Risikopatienten (ältere Menschen, Vegetarier, Alkoholiker)
- Patienten mit gastrointestinalen Erkrankungen
- Patienten mit neuropsychiatrischen Erkrankungen
- Patienten mit makrozytärer Anämie
Methode: MEIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
268 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Homocystein
Homocystein
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme am nüchternen Patienten.
Wird kein Stabilisator-Röhrchen verwendet, so sollte das Serum zur Vermeidung einer artifiziellen
Freisetzung von Homocystein aus Erythrozyten bis spätestens 45 Minuten nach der Blutentnahme
abgetrennt werden.
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei Mangel an Vitamin B12, Vitamin B6 oder
Folsäure, Abklärung des Arteriosklerose-Risikos, Thrombophilie-Diagnostik
Methode: CMIA
Referenzbereiche: Männer: 5,46 – 16,2 µmol/l
Frauen: 4,44 – 13,56 µmol/l
Homogentisinsäure im Urin (U)(N)
Probenmaterial: 10 ml Spontanurin
Abnahmehinweise: In Gegenwart von Luftsauerstoff färbt sich der Urin dunkel bis schwarz (bei
basischem pH)
Klinische Indikationen: Diagnostik der Alkaptonurie / Ochronose (Defekt der Homogentisinsäure-
1-2-Dioxygenase)
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Homovanillinsäure im Urin
Synonyme: HVMS, Katecholamie
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
(gesammelt in lichtgeschütztem Gefäß über 10 ml Salzsäure oder Eisessig)
Abnahmehinweise: Bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Medikamente, sofern möglich, ca. 1 Woche vorher absetzen.
Ab ca. 3 Tage vorher Vermeiden von Kaffee, Tee, Nikotin, Bananen, Käse, Nüssen, Schokolade, Eiern.
Klinische Indikationen: Tumoren des sympatho-adrenergen Systems, Neuroblastome, episodenhafte
oder therapieresistente Hypertonie, Inzidentalom, Familienuntersuchung
Methode: HPLC
Referenzbereiche: < 6,9 mg/24 Stunden
hPLAP (W)
Synonyme: humane Alkalische Plazenta-Phosphatase
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufskontrolle bei:
Hodentumoren,
Ovarialtumoren
hPLAP-produzierende Tumoren
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 269

Humanes Herpes-Virus Typ 8-IgG-Antikörper (W)
Humane granulozytäre Ehrlichiose-Antikörper (IgG) (W)
Synonyme: HGE
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 7 (1 – 21) Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf HGE (humane granuozytäre Ehrlichiose), insbesondere nach
Zeckenstich (ohne Erythema migrans) mit Kopfschmerzen, Muskelschmerzen, Übelkeit, Leukozytopenie,
Thrombozytopenie sowie Transaminasenerhöhung im Serum
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Humane granulozytäre Ehrlichiose-Antikörper (IgM) (W)
Synonyme: HGE
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 7 (1 – 21) Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf HGE (humane granuozytäre Ehrlichiose), insbesondere nach
Zeckenstich (ohne Erythema migrans) mit Kopfschmerzen, Muskelschmerzen, Übelkeit, Leukozytopenie,
Thrombozytopenie sowie Transaminasenerhöhung im Serum
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Humanes Herpes-Virus Typ 6-Antikörper
Synonyme: HHV 6
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 5-15 Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Exanthema subitum (3-Tage-Fiebe, hohe Durchseuchungsrate
im Kleinkindesalter) bei Hepatitis, Roseola sine eruptione, Otitis, mononukleoseähnliche Symptome
oder Meningoenzephalitis bei Kindern unter 4 Jahren.
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ
Humanes Herpes-Virus Typ 7-Antikörper (W)
Synonyme: HHV 7
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf HHV 7-Infektion bei negativem HHV 6-Befund (hohe
Übereinstimmung beider Krankheitsbilder), zusätzlich bei Pityriasis rosea
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (< 1:16 Titer)
Humanes Herpes-Virus Typ 8-IgG-Antikörper (W)
Synonyme: HHV 8
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf HHV 8-Assoziation bei Auftreten von Kaposi-Sarkom, B-Zell-
Lymphom oder Castleman-Erkrankung, insbesondere bei immunsupprimierten Patienten
270 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: IFT
Referenzbereiche: < 1:100 Titer
Humanes Papilloma-Virus-DNA-Nachweis
Humanes Papilloma-Virus-DNA-Nachweis
Synonyme: HPV-PCR, High Risk HPV, Low Risk HPV
Probenmaterial: Abstrich
Abnahmehinweise: Spezialabstrichbesteck auf Anforderung
Bei der Entnahme ausreichend zellhaltiges Material entnehmen.
Abstrichtupfer in das Transportröhrchen geben.
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei auffälligem zytologischen Zervix-
Abstrichbefund, Ausschluss einer genitalen HPV-Infektion bei sonstigen unklaren Befunden,
Verlaufskontrolle nach Therapie, Partneruntersuchung bei nachgewiesener genitaler HPV-Infektion
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Humanes placentares Lactogen (U)(N)
Synonyme: HPL
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bitte zusätzlich die Schwangerschaftswoche angeben
Klinische Indikationen: Beurteilung der Plazentafunktion in der zweiten Schwangerschaftshälfte,
insbesondere bei Risiko-Schwangerschaften
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hydrochlorothiazid (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Hydrochlorothiazid-Therapie
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hydroxybutyrat (U)
Synonyme: β-Hydroxybuttersäure
Probenmaterial: 1 ml Serum, gefroren
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung (selektives Screening) bei Verdacht auf eine angeborene
Stoffwechselerkrankung, insbesondere bei folgender
Symptomatik von Neugeborenen und Säuglingen:
Trinkunlust, Erbrechen, Gedeihstörung, Verschlechterung bei Nahrungszufuhr, sepsisähnliches
Bild, Muskelhypotonie, Apathie, Somnolenz, Apnoen, Krampfanfälle, Koma oder auch
Hirn/Ventrikelblutung beim Reifgeborenen.
Symptomatik von Kleinkindern:
Entwicklungsretardierung, Verlust erworbener Fähigkeiten, intermittierende Bewußtseinsveränderungen,
neurologische Auffälligkeiten (Hypo/Hypertonie), Dysmorphien,
Makrozephalus, Hepatosplenomegalie, Gedeihstörung, Wachstumsretardierung, Knochen-, Nieren-,
Haut- oder Augenveränderungen.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 271

Hyperhomocysteinämie, hereditär
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hydroxyprolin im Urin (U)
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: Bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Urin gekühlt (+ 2°C – + 8°C) sammeln, gründlich mischen und dann ca. 10 ml entnehmen.
Gelatinehaltige Nahrungsmittel wie Fleisch, Kraftbrühe, Pudding, Joghurt usw. bis zu 48 Stunden
vorher vermeiden.
Klinische Indikationen: Störungen des Knochenstoffwechsels, Hyperparathyreoidismus, M. Paget,
Akromegalie
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hydroxyprolin, frei (U)
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Plasma oder
1 ml Liquor oder
5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (gesammelt über 5 ml Eisessig)
Abnahmehinweise: Urin: Bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht
24 Stunden) angeben.
Urin gekühlt (+ 2°C – + 8°C) sammeln, gründlich mischen und dann ca. 10 ml entnehmen.
Gelatinehaltige Nahrungsmittel wie Fleisch, Kraftbrühe, Pudding, Joghurt usw. bis zu 48 Stunden
vorher vermeiden.
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei angeborenen Störungen des Stoffwechsels von Hydroxyprolin
bei
Iminoglcinurie
klinisch symptomfrei
Hyperprolinämie Typ I
Nephropathie, Taubheit, photosensible Epilepsie, Demenz
Hyperprolinämie Typ II
Krämpfe, geistige Retardierung
Hydroxyprolinämie
bei Hyperparathyreoidismus, Osteodystrophia deformans, Knochenmetastasen
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Hyperhomocysteinämie, hereditär
Synonyme: MTHFR
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einwilligungserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung im Rahmen der Thrombophilie-Diagnostik bzw. bei
erhöhtem Homocysteinspiegel bzw. Folsäure-Mangel
272 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Hypochrome Erythrozyten
Synonyme: %HYPO
Probenmaterial: korrekt gefüllte EDTA-Monovette
Klinische Indikationen: Diagnose und Therapiemonitoring des Eisenmangels
Referenzbereiche: < 5 % der Erythrozyten
Ibuprofen (U)
Synonyme: Handelsnamen: verschiedene z.B. Dolormin ® , Neuralgin ®
Probenmaterial: 2 ml Serum
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 15 – 30 mg/l
IgA (sekretorisch) (U)
Hypochrome Erythrozyten
Probenmaterial: 1 ml Speichel
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei IgA-Mangel oder bei rezidivierenden Infekten,
Atopie oder auch Autoimmunerkrankungen
Methode: RID
Referenzbereiche: 8,7 – 47,0 mg/dl
IgA im Liquor
Probenmaterial: 1 ml Liquor
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen (Nachweis einer intrathekalen IgA-
Synthese).
Klinische Indikationen: Nachweis und Verlaufsbeurteilung einer intrathekalen IgA-Synthese
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
IgA im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: IgA-Mangel, IgA-Plasmozytom, Verdacht auf Immundefekt
Methode: Turbidimetrie / Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
IgA im Serum (allergenspezifisches) (W)
Synonyme: RAST, spezifisches IgA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Spezielle Untersuchung im Rahmen der erweiterten Diagnostik
Methode: FEIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 273

IgD im Serum (W)
IgA im Stuhl (W)
Probenmaterial: 2 g Stuhl
Abnahmehinweise: Proben nach der Entnahme kühl (+ 2°C – + 8°C) lagern
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufsbeurteilung chronisch-entzündlicher
Darmerkrankungen
Methode: LIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
IgA im Urin (W)(N)
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
Abnahmehinweise: bitte Sammelmenge und Sammelzeit (wenn kleiner als 24 Stunden) angeben.
Der 2. Morgenurin ist dem 24-Stunden-Sammelurin gleichwertig, wenn zuvor keine besondere
körperliche Belastung stattgefunden hat oder keine polyurische Nierenerkrankung vorliegt.
Klinische Indikationen: Monitoring eines IgA-Myeloms bei erhöhter Ausscheidung im Urin
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: < 5.0 mg/d
IgA&kappa; (W)
Synonyme: IgA-kappa
Hevylite&trade;
Probenmaterial: 1 ml Serum
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 0,48 – 2,82 g/l
IgA&lambda; (W)
Synonyme: IgA-lambda
Hevylite&trade;
Probenmaterial: 1 ml Serum
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 0,36 – 1,98 g/l
IgA-Subklassen (U)
Synonyme: IgA 1, IgA 2
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Infektneigung (sinopulmonal, besonders Haemophilus spezies)
Weitere Untersuchung bei niedrigem IgA im Serum
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
IgD im Serum (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufsbeurteilung einer monoklonalen Gammopathie Typ
274 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

IgD; Hyper-IgD-Syndrom
Methode: RID
Referenzbereiche: < 140 mg/l
IgE im Serum (allergenspezifisches)
IgE im Serum (allergenspezifisches)
Synonyme: RAST, spezifisches IgE
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Allergiediagnostik bei Kindern und Säuglingen,
Belastbarkeit des Patienten für in-vivo-Teste vermindert (z.B. Verdacht auf hochgradige Sensibilisierung),
Hautveränderungen im Bereich für Hautteste,
bei Arzneimitteltherapie (z.B. Antihistaminika),
Allergen im Hauttest nicht verfügbar,
Verlaufskontrolle unter Immuntherapie
Methode: FEIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
IgE im Serum (gesamt)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Allergiediagnostik und -verlaufskontrolle (Atopie-assoziierte Erkrankungen:
Urtikaria, Quincke-Ödem, eosinophile Gastroenteritis, unklare Exantheme, Verdacht auf
Arzneimittelallergien), Interpretationshilfe für allergenspezifisches IgE, bei eosinophilen Lungeninfiltraten,
allergischer Alveolitits, Wegnersche Granulomatose, Churg-Strauss-Syndrom, Lymphome,
Myelom, Aspergillose, Parasitosen (z.B. Filariose, Trichinose, Toxocariasis, Capillaria philipensis,
tropische Eosinophilie), Immundefekte, T-Zelldefekte, Hyper-IgE-Syndrom
Methode: FEIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
IGFBP-3 (W)(N)
Synonyme: Insulin Like Growth Factor Binding Protein-3
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise:
Klinische Indikationen: Diagnostik und Differentialdiagnostik von Wachstumsstörungen, insbesondere
kindlicher Minderwuchs sowie Akromegalie
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
IgG 1
Synonyme: IgG-Subklassen
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: → IgG-Subklassen, Seite 277
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 275

IgG im Serum (allergenspezifisches)
IgG 2
Synonyme: IgG-Subklassen
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: → IgG-Subklassen, Seite 277
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
IgG 3
Synonyme: IgG-Subklassen
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: → IgG-Subklassen, Seite 277
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
IgG 4
Synonyme: IgG-Subklassen
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: → IgG-Subklassen, Seite 277
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
IgG im Liquor
Probenmaterial: 1 ml Liquor
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen (Nachweis einer intrathekalen IgG-
Synthese).
Klinische Indikationen: Nachweis und Verlaufsbeurteilung einer intrathekalen IgG-Synthese
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundberich
IgG im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: IgG-Mangel, Monoklonale Gammopathie, Verdacht auf Immundefekt,
zusätzlich zur Bestimmung der → IgG-Subklassen, Seite 277
Methode: Turbidimetrie / Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
IgG im Serum (allergenspezifisches)
Synonyme: RAST, spezifisches IgG
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung im Rahmen der Diagnostik
Methode: FEIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
276 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

IgG im Urin
IgG im Urin
Probenmaterial: 5 ml Urin oder
5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: bitte Sammelmenge und Sammelzeit (wenn kleiner als 24 Stunden) angeben.
Der 2. Morgenurin ist dem 24-Stunden-Sammelurin gleichwertig, wenn zuvor keine besondere
körperliche Belastung stattgefunden hat oder keine polyurische Nierenerkrankung vorliegt.
Klinische Indikationen: Differenzierung einer Proteinurie, Verlaufskontrolle und Beurteilung einer
glomerulären Proteinurie
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: < 8 mg/l
IgG&lambda; (W)
Synonyme: IgG-lambda
Hevylite&trade;
Probenmaterial: 1 ml Serum
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 1,97 – 5,71 g/l
IgG, oligoklonal (Liquor/Serum)
Synonyme: Oligoklonale Banden
Probenmaterial: 1 ml Liquor und
1 ml Serum
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen.
Klinische Indikationen: → IgG-Quotient (Liquor/Serum)
Methode: IEF
Referenzbereiche: negativ
IgG-Subklassen
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Abklärung gehäufter bakterieller Infekte bei Otitis, Pneumonie, sinubronchiales
Syndrom, Meningitis,
Bronchiektasen, Intrinsic Asthma bronchiale, Therapieresistentes Asthma bronchiale, IgA-Mangel,
chronische Darmerkrankungen, Autoimmunerkrankungen
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Einzelparameter
IgM im Liquor
Probenmaterial: 1 ml Liquor
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen (Nachweis einer intrathekalen IgM-
Synthese).
Klinische Indikationen: Nachweis und Verlaufsbeurteilung einer intrathekalen IgM-Synthese
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 277

Immunfixationselektrophorese im Serum
IgM im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: IgM-Mangel, monoklonale Gammopathie, M. Waldenström, Infektionen,
Verdacht auf Immundefekt, Autoimmunerkrankungen der Leber
Methode: Turbidimetrie / Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
IgM&kappa; (W)
Synonyme: IgM-kappa
Hevylite&trade;
Probenmaterial: 1 ml Serum
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 0,29 – 1,82 g/l
IgM&lambda; (W)
Synonyme: IgM-lambda
Hevylite&trade;
Probenmaterial: 1 ml Serum
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 0,17 – 0,94 g/l
Imatinib (W)(N)
Synonyme: Handelsname: Glivec ®
Probenmaterial: 1 ml Serum
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Imipramin
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Imipramin-Therapie, Missbrauchskontrolle
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 50 – 150 µg/l
Immunfixationselektrophorese im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufskontrolle (qualitativ) der monoklonalen Gammopathie
bei
Plasmozytom (Multiples Myelom),
Monoklonale Gammopathie unbekannter Spezifität (MGUS),
Lymphome (M. Waldenström u.a.),
Leichtkettenkrankheit,
278 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Schwerkettenkrankheit,
Autoimmunerkrankungen
mit/ohne auffälligem Befund in der Eiweißelektrophorese im Serum
Methode: IF
Referenzbereiche: negativ
Immunfixationselektrophorese im Urin
Immunfixationselektrophorese im Urin
Probenmaterial: 5 ml Urin
Klinische Indikationen: Verdacht auf Bence-Jones-Proteinurie,
Verdacht auf Paraproteinurie (bei monoklonaler Gammopathie, z.B. Plasmozytom),
Abklärung einer unklaren Proteinurie
Methode: IF
Referenzbereiche: negativ
Indometacin (W)
Synonyme: NSAR
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Indometacin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 300 – 2500 ng/ml
Influenza A-Virus-RNA-Nachweis
Synonyme: Influenza A-PCR
Probenmaterial: Rachenspülwasser
Nasopharyngealabstrich
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 2 – 3 Tage
Klinische Indikationen: Verdacht auf eine Influenza-Infektion, insbesondere bei entsprechender
Anamnese, plötzlich einsetzendem hohen Fieber, Kopf- und Gliederschmerzen, ggf. auch Pneumonie
und selten Meningoenzephalitits
Methode: RT-PCR
Referenzbereiche: negativ
Influenza A/B-Virus-Serologie
Synonyme: Virusgrippe
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 2-3 Tage; das diagnostische Fenster bis zum serologischen
Nachweis ca. 7-14 Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Virusgrippe
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 279

Interferon-Antikörper (W)
Influenza B-Virus-RNA-Nachweis
Synonyme: Influenza B-PCR
Probenmaterial: Rachenspülwasser
Nasopharyngealabstrich
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 2 – 3 Tage
Klinische Indikationen: Verdacht auf eine Influenza-Infektion, insbesondere bei entsprechender
Anamnese, plötzlich einsetzendem hohen Fieber, Kopf- und Gliederschmerzen, ggf. auch Pneumonie
und selten Meningoenzephalitits
Methode: RT-PCR
Referenzbereiche: negativ
Inhibin B (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Frauen: Abklärung der ovariellen Restfunktion im Rahmen einer Fertilitätstherapie,
Tumormarker für Granulosazelltumoren des Ovars.
Männer: Funktionsmarker der Sertolizellen, Weitere Diagnostik bei Störungen der FSH-Sekretion
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
INR
Synonyme: International Normalisierte Ratio, Quick
Probenmaterial: 1 ml Citratblut
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Beurteilung einer oralen Antikoagulanzien-Therapie mit Vitamin K-
Antagonisten in der stabilen Phase
Methode: Koagulometrie
Referenzbereiche: 2,0 – 3,5
Insulin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nüchtern (12 Stunden Nahrungskarenz)oder im Rahmen einer
Funktonsdiagnostik (Entnahmezeit angeben), zur Vermeidung einer Hämolyse Vollblut innerhalb von
30 Minuten nach Entnahme zentrifugieren und Serum abpipettieren
Klinische Indikationen: Insulinom, Hypoglycaemia factitia, Diabetes mellitus
Methode: CLIA
Referenzbereiche: 3,2 – 16,3 µIE/ml
Interferon-Antikörper (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung im Verlauf einer Interferon-Therapie (z.B. bei chronischer
Hepatitis B oder chronischer Hepatitis C)
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 0,25 U/ml
280 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Interleukin 1 (W)
Interleukin 1 (W)
Synonyme: IL-1-beta
Probenmaterial: 1 ml Serum, tiefgefroren
Abnahmehinweise: Wegen der geringen Stabilität das Blut bitte nach der Abnahme zentrifugieren,
das Serum in ein separates Röhrchen ohne Zusätze abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung von
- Transplantatabstoßung
- chronische Entzündungen
- Immundefekte
Methode: CLIA
Referenzbereiche: < 5 pg/ml
Interleukin 28B Genotypisierung (IL28B) OMIM #609532 (N)
Synonyme: IL28B
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einwilligungserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32005
Klinische Indikationen: Abschätzung der Therapie-Prognose einer Hepatitis C-Infektion bei Patienten
mit HCV-Genotyp 1
Methode: PCR
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Interleukin 6 (U)
Synonyme: IL-6
Probenmaterial: 1 ml Serum, tiefgefroren
Abnahmehinweise: Wegen der geringen Stabilität das Blut bitte nach der Abnahme zentrifugieren,
das Serum in ein separates Röhrchen ohne Zusätze abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C).
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung von Akute-Phase-Reaktionen, insbesondere
Prognoseparameter bei Sepsis, Trauma und Herzoperationen
Methode: CBA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Interleukin 8 (W)
Synonyme: IL-8
Probenmaterial: 1 ml Serum, tiefgefroren
Abnahmehinweise: Wegen der geringen Stabilität das Blut bitte nach der Abnahme zentrifugieren,
das Serum in ein separates Röhrchen ohne Zusätze abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C).
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung von Akute-Phase-Reaktionen, insbesondere
Prognoseparameter bei Sepsis, Trauma und Herzoperationen
Methode: LIA
Referenzbereiche: < 62 pg/ml
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 281

Jod im Urin (W)
Isoniazid (W)
Synonyme: INH
Probenmaterial: 1 ml Serum, lichtgeschützt, tiefgefroren
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Isoniazid-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: 1 – 8 mg/l
Isopropanol im Blut (U)
Synonyme: 2-Propanol
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Blut, spezielle Abnahmemonovetten verwenden
Abnahmehinweise: Bitte Rollrändröhrchen anfordern.
Klinische Indikationen: Beurteilung der Belastung mit Isopropanol
Methode: GC/FID
Referenzbereiche: < 0,5 mg/l
Itraconazol (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Itraconazol-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
JC-(Polyoma)-Virus-DNA-Nachweis
Synonyme: JC-Virus-PCR
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei PML (progressive multifokale Leukenzephalopathie),
insbesondere bei Patienten mit Immunsuppression
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Jod im Serum (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Beurteilung von Jodintoxikation bzw. Jodmangel
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: 40 – 80 µg/l
Jod im Urin (W)
Probenmaterial: 5 ml Spontanurin oder
5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Diagnose und Beurteilung von Jodintoxikation bzw. Jodmangel
282 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Kalium im Dialysat
Probenmaterial: 1 ml Dialysat
Klinische Indikationen: Qualitätskontrolle von Dialysat
Methode: ISE
Kalium im Serum
Kalium im Dialysat
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum bei längerem Probentransport
abzentrifugiert werden.
Klinische Indikationen: Hypertonie, Herzrhythmusstörungen, Einnahme von Diuretika und Laxantien,
Niereninsuffizienz, Durchfälle, Erbrechen, Störungen im Säure-Basen-Haushalt, Hypo- und
Hyperaldosteronismus
Methode: ISE
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Kalium im Urin
Probenmaterial: 5 ml Spontanurin oder
5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Hyper- und Hypokaliämie
Methode: ISE
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Kälte-Agglutinine
Synonyme: Kälte-Autoantikörper
Probenmaterial: 9 ml EDTA-Blut, das warm (bei 37°C) bebrütet und zentrifugiert wird. Der
Überstand sollte dann abpippetiert werden. Bitte sowohl Überstand als auch Blutkuchen im eigenen
Röhrchen einsenden.
Abnahmehinweise: Blutproben von der Entnahme bis zum Eintreffen ins Labor warm (ca. +37°C)
halten oder das Serum/Plasma warm gewinnen und íns Labor transportieren
Klinische Indikationen: V.a. akut-passagere oder chronische Kälteagglutininkrankheit, hämolytische
Anämie, hyperchrome Anämie, lymphoproliferative Erkrankungen, Infektionen,
Methode: Agglutination
Referenzbereiche: negativ
Kappa-/Lambda-Quotient im Serum
Synonyme: FLC
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle/Monitoring bei:
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 283

Katzenkratzkrankheit-Serologie (W)
- Bence Jones Myelom (BJP, LCMM)
- Nonsekretorisches Myleom (NSM)
- Leichtketten-Amyloidose (AL)
- Multiples Myelom mit Leichtkettenbeteiligung (MM)
- Monoklonale Gammopathie unbekannter Spezifität (MGUS)
- Weitere Diagnostik bei nachgewiesener monoklonale Gammopathie
Methode: Turbidimetrie
Referenzbereiche: 0,26 – 1,65
Katecholamine im Plasma (W)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: Vor der Blutentnahme Stress-Situationen vermeiden;
Medikamente, sofern möglich, ca. 1 Woche vorher absetzen;
ab ca. 3 Tage vorher Vermeiden von Kaffee, Tee, Nikotin, Bananen, Käse, Nüsse, Schokolade, Eier;
Blutentnahme nach ca. 30 Minuten Ruhe (Liegen);
Blut direkt nach der Entnahme zentrifugieren und das Plasma abpipettieren und einfrieren (ca. -20°C)
Klinische Indikationen: Tumoren des sympatho-adrenergen Systems, Neuroblastome, episodenhafte
oder therapieresistente Hypertonie, Inzidentalom, Familienuntersuchung
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Katecholamine im Urin
Synonyme: Katecholamine
Probenmaterial: 20 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (gesammelt über 5-10 ml Salzsäure)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Medikamente, sofern möglich, ca. 1 Woche vorher absetzen;
ab ca. 3 Tage vorher Vermeiden von Kaffee, Tee, Nikotin, Bananen, Käse, Nüsse, Schokolade, Eier
Klinische Indikationen: Tumoren des sympatho-adrenergen Systems, Neuroblastome, episodenhafte
oder therapieresistente Hypertonie, Inzidentalom, Familienuntersuchung
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Katzenkratzkrankheit-Serologie (W)
Synonyme: bazilläre Angiomatose
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 2-4 Wochen
Klinische Indikationen: Verdacht auf Katzenkratzkrankheit nach Verletzung durch eine Katze
und Auftreten von regiönärer Lymphadenitis, Kopfschmerzen, Gliederschmerzen, Appetitlosigkeit,
Übelkeit, Arthralgien, Exanthem, Thrombopenie, Parotisschwellung
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
284 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Kobalt im Blut (U)
Synonyme: Cobalt
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Beurteilung und Abschätzung der Cobalt-Belastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: < 0,4 µg/l
Kobalt im Haar (W)
Synonyme: Cobalt
Probenmaterial: 1 g Haar vom Haaransatz (Hinterkopf)
Klinische Indikationen: Beurteilung und Abschätzung der Cobalt-Belastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: 0,006 – 0,044 µg/g
Kobalt im Urin (U)
Synonyme: Cobalt
Probenmaterial: 5 ml Urin
Klinische Indikationen: Beurteilung und Abschätzung der Cobalt-Belastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: < 1,0 µg/l
Konkrementanalyse (W)
Kobalt im Blut (U)
Synonyme: Gallensteine, Harnsteine, Nierensteine
Probenmaterial: Konkremente in sterilen Röhrchen
Abnahmehinweise: Bei Verdacht auf Nephrolithiasis ggf. Urin bei der Miktion sieben und aufgefangene
Konkremente einschicken
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik zur Ursachenabklärung bei Nephrolithiasis bzw.
Cholelithiasis.
Methode: IR
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Kreatinin im Serum
Synonyme: Creatinin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose der eingeschränkten glomerulären Filtrationsrate (GFR) bei:
Hypertonie, akute/chronische Nierenerkrankung, Screening, Diabetes mellitus, Hyperurikämie, Enteritis,
akuter Flüssigkeitsverlust, Schwangerschaft
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Kreatinin im Urin
Synonyme: Creatinin
Probenmaterial: 5 ml Spontanurin oder
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 285

Kryptosporidien-Antigen im Stuhl
5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Diagnose der eingeschränkten glomerulären Filtrationsrate (GFR) bei:
Hypertonie, akute/chronische Nierenerkrankung, Screening, Diabetes mellitus, Hyperurikämie, Enteritis,
akuter Flüssigkeitsverlust, Schwangerschaft
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Kreatinin-Clearance (N)
Probenmaterial: 1 ml Serum und
5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Beurteilung der glomerulären Filtrationsrate bzw. Verlaufskontrolle unter
potentiell nephrotoxischer Medikation
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: 90 – 170 ml/min
Kryoglobuline
Probenmaterial: 9 ml Vollblut und ggf. 9 ml Citrat-Blut, das warm (bei 37°C) bebrütet und zentrifugiert
wird. Der Überstand sollte dann abpippetiert werden. Bitte den Überstand in eigenem
Röhrchen einsenden.
Abnahmehinweise: Blutentnahme mit vorgewärmter (37 °C) Kanüle und Monovette. Blutproben von
der Entnahme bis zum Eintreffen ins Labor warm (ca. +37°C) halten oder das Serum/Plasma warm
gewinnen (Blut im Brutschrank gerinnen bzw. sedimentieren lassen, Serum/Plasma dann abpipettieren),
Serum/Plasma kann dann gekühlt (+2°C – +8°C) ins Labor transportiert werden
Klinische Indikationen: - Systemischer Lupus erythematodes
- Sjögren-Syndrom, Sicca-Syndrom
- Raynaud-Phänomen
- Plasmozytom / M. Waldenström und andere lymphoproliferative Erkrankungen
- chronische Hepatitis C-Infektion
- Purpura
- Arthralgien, Arthritis
- Glomerulonephritis
- vaskulitische Neuromyopathie
- andere Autoimmunerkrankungen
Methode: Agglutination
Referenzbereiche: negativ
Kryptosporidien-Antigen im Stuhl
Synonyme: Cryptosporidien, Gastroenteritis
Probenmaterial: 2 g Stuhl
Klinische Indikationen: Verdacht auf Infektion mit Kryptosporidien, insbesondere bei Kleinkindern
und Immunsupprimierten (HIV-Patienten, Transplantation, Chemotherapie) mit Diarrhoe
286 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ
Kupfer im Serum
Kupfer im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bei der Blutentnahme nur kurz Stauen. Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte
das Blut nach der Gerinnung zentrifugiert und das Serum abpipettiert werden.
Klinische Indikationen: Verdachf auf M. Wilson, Menkes-Synsdrom, Kupfermangel (bei eisenrefraktärer
Anämie)
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Männer: 70 – 140 µg/dl
Frauen: 80 – 155 µg/dl
Kupfer im Urin (W)(N)
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Verdacht auf M. Wilson, Menkes-Syndrom, Kupfermangel (bei eisenrefraktärer
Anämie)
Methode: AAS
Referenzbereiche: < 40 µg/24h
Lacosamid (W)
Synonyme: Handelsname: Vimpat ®
Probenmaterial: 1 ml Serum
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Lactat im Liquor (W)
Probenmaterial: 1 ml Liquor
Abnahmehinweise: bei Probentransport > 3 Stunden Abnahme in NaF-Röhrchen
Klinische Indikationen: Entzündliche, vaskuläre, metabolische und
neoplasmatische ZNS-Erkrankungen
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Lactat im Plasma (W)
Synonyme: Laktat im Plasma
Probenmaterial: 3 ml NaF-Plasma
Abnahmehinweise: Blutentnahme möglichst aus ungestauter Vene, zur Vermeidung von Hämolyse
und iatrogenem Lactatanstieg in der Probe muss das Blut unmittelbar nach der Blutentnahme zentrifugiert
und das Plasma abpipettiert werden.
Klinische Indikationen: Laktatazidose, Leistungsdiagnostik im Sport
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 287

Lamivudin (U)(N)
Methode: EIA
Referenzbereiche: 0,63 – 2,44 mmol/l
Lactat im Punktat (W)(N)
Synonyme: Laktat im Punktat
Probenmaterial: 1 ml Punktat
Klinische Indikationen: Differenzierung entzündlicher Erkrankungen
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Laktoferrin im Stuhl (W)
Synonyme: Lactoferrin
Probenmaterial: 1 g Stuhl
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufskontrolle entzündlicher Darmerkrankungen
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 7 µg/g Stuhl
Laktoseintoleranz-Polymorphismus (MCM6-Gen)
Synonyme: Hereditäre adulte Laktoseintoleranz (OMIM223100)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einwilligungserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Klinische Indikationen: Molekulargenetische Diagnostik der Laktose-intoleranz bei klinischem Verdacht:
- gastrointestinale Symptomatik nach Genuss von Kuhmilch-Produkten
- Colon irritabile
- länger anhaltenter gastrointestinaler Symptomatik unklarer Genese
- chronische Diarrhoe unklarer Genese
- familiär bekannte Laktose-Intoleranz
- fraglicher Befund des Laktose-Toleranztestes
- fraglicher Befund des H2-Atemtestes
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Lamivudin (U)(N)
Synonyme: Handelsname: Zeffix ®
Probenmaterial: 2 ml Serum oder EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Lamivudin-Therapie der chronischen Hepatitis B
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
288 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Lamotrigin
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme direkt vor der nächsten Medikamenteinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Lamotrigin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 3,0 – 14,0 mg/l
LBP (W)
Lamotrigin
Synonyme: Lipopolysaccharid-Bindeprotein
Probenmaterial: 2 ml Serum, EDTA- oder Heparin-Plasma
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle von Akute-Phase-Reaktionen wie Infektionen,
SIRS, Sepsis
Methode: CLIA
Referenzbereiche: < 8,4 µg/ml
LDH
Synonyme: Laktat-Dehydrogenase
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse das Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugieren
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung des Myokardinfarktes und von Lebererkrankungen
sowie bei Lungenembolie, Hämolyse, Tumoren
Methode: UV-Test
Referenzbereiche: Erwachsene: < 250 U/l
LDH im Punktat (N)
Probenmaterial: 1 ml Punktat
Klinische Indikationen: Differenzierung zwischen Exsudat und Transsudat
Methode: UV-Test
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LDH-Isoenzyme (U)
Synonyme: Laktat-Dehydrogenase-Isoenzyme
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse das Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugieren
Klinische Indikationen: Differenzierung einer LDH-Erhöhung
Methode: Elektrophorese
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LDL-Cholesterin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nüchtern (ca. 12 Stunden Nahrungskarenz), langes Stauen vermei-
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 289

Leishmania donovani-Antikörper (W)(N)
den
Klinische Indikationen: Diagnose, Differentialdiagnose und Verlaufsbeurteilung von Fettstoffwechselstörungen,
Verlaufskontrolle unter lipidsenkender Therapie
Methode: Enzymatischer Farbtest
Referenzbereiche: < 100 mg/dl
LDL-Cholesterin-Subfraktionen (W)(N)
Synonyme: LipoPrint-Lipoproteinprofil
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: individuelle Risikoeinschätzung für kardiovaskuläre Ereignisse (z.B. Herzinfarkt,
Schlaganfall), Prävention koronarer Herzerkrankung, Therapiekontrolle
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Legionella pneumophilia-DNA-Nachweis
Synonyme: Legionellen-PCR
Probenmaterial: Sputum
BAL
Trachealsekret
Klinische Indikationen: Verdacht auf Legionellose, insbesondere bei Pneumonie
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Legionellen-Serologie
Synonyme: Legionärskrankheit
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 2-10 Tage. Das diagnostische Fenster für die
serologische Diagnostik kann mehrere Wochen betragen.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Legionellen-Infektion, insbesondere bei grippeähnlichen
Symptomen und atypischer Pneumonie oder bei nosokomialer Pneumonie
Methode: IFT
Referenzbereiche: negativ (< 1:100)
Leishmania donovani-Antikörper (W)(N)
Synonyme: Kala Azar
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit kann 10 Tage bis zu 2 Jahre betragen
Klinische Indikationen: Verdacht auf Kala Azar (viszerale Leishmaniose) nach Aufenthalt in
Endemiegebieten (Südeuropa, Russland, Mittelmeerraum, Naher Osten, Ost- und Zentralafrika,
Südamerika, China, Indien). Die Erreger werden durch Sandmücken übertragen.
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
290 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Leptin (U)
Leptin (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum, EDTA- oder Heparin-Plasma
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung im Rahmen der Betreuung von Patienten mit
Übergewicht (Adipositas)
Methode: EIA
Referenzbereiche: Frauen: 3,6 – 11,1 ng/ml
Männer: 2,05 – 5,63 ng/ml
Leptospiren-Antikörper (U)
Synonyme: Morbus Weil
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. (2) 7-13 (26) Tage, das diagnostische Fenster beträgt
ca. 10-14 Tage.
Bei klinischem Verdacht auf Leptospirose ist der direkte Erregernachweis die Methode der Wahl.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Lepotospirose bei Veterinären, Kanalarbeitern, Landwirten,
Fischern, Wassersportlern, Campern, sowie Risikoanamnese (Kontakt mit infizierten Tieren) und klinischen
Symptomen wie: Fieber, Kopfschmerz, Schüttelfrost, Muskelschmerzen, Wadenschmerzen,
Hepatitis, Nephritis, Meningitis, hohes Bilirubin, mäßig erhöhte Transaminasen.
Methode: EIA
Referenzbereiche: IgG: < 10 U/ml
IgM: < 15 U/ml
Leukämie- und Lymphom-Diagnostik (U)
Synonyme: Immunphänotypisierung
Probenmaterial: 8 ml EDTA-Blut
Klinische Indikationen: Immunologische Charakterisierung von Zellen des peripheren Blutes bzw.
Knochenmarkes bei bzw. im Rahmen von:
- unklarer Lymphozytose
- Charakterisierung der Lymphomzellen
- Charekterisierung der Non-Hodgkin-Lymphomzellen
- Monitoring lymphatischer Neoplasien
- Charakterisierung myeloischer Hämoblastosen (Leukämien)
- Rezidiverkennung
- Therapiemonitoring
Methode: Durchflusszytometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Levetiracetam
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme direkt vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Levetiracetam-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 10 – 37 µg/ml
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 291

Lipidelektrophorese (W)
Levodopa (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring einer Levodopa-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 0,2 – 4,0 mg/l
Levomepromazin (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Levomepromazin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LH
Synonyme: Luteinisierendes Hormon, ICSH
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung von Störungen der Ovarfunktion (Zyklusstörungen,
Sterilitätsdiagnostik, Hormonersatztherapie) bzw. der Hodenfunktion (pathologischer
Testosteronspiegel)
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Lidocain (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme während der laufenden Infusion empfohlen
Klinische Indikationen: Monitoring einer Lidocain-Therapie
Methode: FPIA
Referenzbereiche: 1,5 – 5,0 mg/l
Lipase
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle einer Pankreatitis oder einer Parotitis,
Abklärung akuter Oberbauchbeschwerden,
Pankreaskarzinom,
Kontrolle nach ERCP
Methode: Enzymatischer Farbtest
Referenzbereiche: 13 – 60 U/l
Lipidelektrophorese (W)
Synonyme: Lipoprotein-Elektrophorese
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nüchtern (nach ca. 12 Stunden Nahrungskarenz)
Klinische Indikationen: Diagnostik und Differenzierung von Störungen des Fettstoffwechsels
292 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: Elektrophorese
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LipoDens-Lipoproteinprofil
LipoDens-Lipoproteinprofil
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Auf eine ausreichende Nüchternphase vor der Blutentnahme (ca.12 Stunden) ist
zu achten
Klinische Indikationen: Verdacht auf Lipidstoffwechselstörungen
Referenzbereiche: LDL/HDL: < 3,0
Lipoprotein X (U)(N)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei Primär biliärer Zirrhose (PBC) und Verdacht auf
Cholestase
Methode: Elektrophorese
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Lipoprotein(a)
Synonyme: Lp(a)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik von Risikofaktoren für die Entwicklung einer Arteriosklerose/KHK.
Therapiekontrolle bei Vollblut-Apherese (Absenkung von Lp(a) um mindestens
50% pro Behandlung)
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: < 25 mg/dl
Lipoprotein-assoziierte Phospholipase A2 (W)(N)
Synonyme: Lp-PLA2, PLAC ® -Test
Probenmaterial: 2 ml Serum
Referenzbereiche: < 200 mg/dl
Listeria monocytogenes DNA-Nachweis (W)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
3 ml Liquor
Klinische Indikationen: V.a. Infektion (z.B. bei Immunsupprimmierten, gelegentlich in Gravidität)
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Listerien-Antikörper (W)(N)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Inkubationszeit und diagnostisches Fenster können Tage bis Wochen betragen.
Der direkte Erregernachweis ist die Methode der Wahl.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 293

Löslicher Interleukin 2-Rezeptor (W)
Klinische Indikationen: Verdacht auf Listerose, insbesondere bei Immungeschwächten und Schwangeren
mit Risikokontakt (kontaminierte Lebensmittel) und Symptomen wie grippeähnliche Beschwerden,
Schüttelfrost sowie ZNS-Syndrom;
Eine Listerieninfektion in der Gravidität kann zu Abort, Totgeburt oder einer fetalen Schädigung
führen.
Methode: KBR
Referenzbereiche: < 1 : 8 Titer
Lithium
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme ca. 12 Stunden nach der letzten Lithiumeinnahme
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle und -beurteilung bei Lithiumtherapie,
Abklärung toxischer Lithiumwirkungen bei Muskelzucken, Ataxie, Schläfrigkeit, Krämpfen, Dehydratation
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: 0,6 – 1,2 mmol/l
Lorazepam (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Lorazepam-Therapie, Missbrauchskontrolle
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: 20 – 250 µg/l
Lormetazepam (U)(N)
Synonyme: Handelsname: Noctamid ®
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Lormetazepam-Therapie, Missbrauchskontrolle
Referenzbereiche: bis 25 ng/ml
Löslicher Interleukin 2-Rezeptor (W)
Synonyme: sIL-2-R
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse Vollblut zentrifugieren und Serum abpipettieren
vor dem Versand.
Klinische Indikationen: Verlaufskontrollen nach Organtransplantation,
Verlaufsbeurteilung der Sarkoidose
Methode: CLIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
294 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Löslicher Transferrin-Rezeptor (W)
Löslicher Transferrin-Rezeptor (W)
Synonyme: sTfR
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Funktionseisenmangel, Abklärung niedrig-normaler Ferrinwerte,
Differentialdiagnostik der Anämien, Frühzeitige Abschätzung des Eisenbedarfs bei Risikogruppen
für einen Eisenmangel, Diagnostik des Eisenmangels bei Schwangerschaft, chronischen
Erkrankungen
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 0,83 – 1,76 mg/l
LSD im Urin (W)
Synonyme: Lysergsäurediethylamid
Probenmaterial: 5 ml Urin (ohne Zusätze)
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufskontrolle des Konsums/Missbrauchs von LSD
Methode: CEDIA
Referenzbereiche: negativ
Lues-Serologie (Stufendiagnostik)
Synonyme: Treponema pallidum, Syphilis
Probenmaterial: 4 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufskontrolle sowie Therapiebeurteilung einer Lues-
Infektion (Syphilis)
Methode: s. Einzelparameter
Referenzbereiche: s. Einzelparameter
Lupusantikoagulanz
Synonyme: LA
Probenmaterial: 3 ml Citrat-Blut
Abnahmehinweise: Citrat-Blut per Botendienst gleichtägig ins Labor.
Haltbarkeit: 4 Stunden.
Bei längeren Transportzeiten sollte das Citrat-Blut möglichst 1 Stunde nach der Blutabnahme zentrifugiert
werden (2000 g, 10 min.). Überstand (Citrat-Plasma) ohne Verletzung der Leukozytenschicht
zwischen Plasma und Erythrozyten abheben und in ein neues Probenröhrchen ohne Zusätze
überführen. Vor dem Einfrieren sollte das Plasma ein zweites Mal zentrifugiert und der Überstand in
ein neues Röhrchen abgefüllt werden.
Das Plasma bei ca. – 20 °C einfrieren und im Kühlbehälter versenden.
Beim Einfrieren des Citrat-Plasmas werden Phospholipide aus den Rest-Thrombozyten freigesetzt,
die zu einer Verkürzung der Gerinnungszeit und somit zu fasch negativen Ergebnissen führen können.
Klinische Indikationen: Antiphospholipid-Antikörper-Syndrom
Abklärung einer unklaren aPTT-Verlängerung,
Thrombophilie-Diagnostik,
Autoimmunerkrankungen (Lupus erythematodes),
Abklärung rez. Aborte,
Thrombozytopenie unklarer Ursache
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 295

Lysozym im Urin (U)
Methode: Koagulometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Lycopene (W)
Synonyme: Antioxidantien
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Wegen der geringen Stabilität bitte das Vollblut nach der Abnahme und Gerinnung
zentrifugieren, das Serum in ein separates Röhrchen ohne Zusätze abpipettieren und einfrieren
(ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Verdacht auf Antioxidantien-Mangel
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 100 – 800 µg/l
Lymphotrope Erreger
Lymphozytendifferenzierung
Synonyme: Immunstatus
Probenmaterial: korrekt gefüllte EDTA-Monovette
Abnahmehinweise: EDTA-Monovette direkt nach der Abnahme durch Schwenken gründlich mischen
Klinische Indikationen: Primäre und sekundäre Immundefekte, Monitoring der HIV-Infektion
Methode: Durchflußzytometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Lysozym im Liquor (W)
Probenmaterial: 1 ml Liquor
Abnahmehinweise: Liquor steril abnehmen und gekühlt (+ 2°C – + 8°C) lagern
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Verdacht auf bakterielle Meningitis. Die Untersuchung
hat aktuell keine wesentliche Bedeutung mehr.
Methode: RID
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Lysozym im Serum (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blut nach der Entnahme gekühlt (+ 2°C – + 8°C) lagern
Klinische Indikationen: Differentialdiagnostik und Verlaufsbeurteilung von Leukosen,
Neugeborenen-Sepsis
Methode: RID
Referenzbereiche: 10 – 17 mg/l
Lysozym im Urin (U)
Probenmaterial: 10 ml Urin
Abnahmehinweise: Urin nach der Entnahme gekühlt lagern (+ 2°C – + 8°C)
296 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Klinische Indikationen: Monitoring bei Leukosen/Leukämien,
Diagnostik tubulärer Nierenschädigungen,
Diagnostik/Monitoring von Transplantat-Abstoßungsreaktionen
Methode: Turbidimetrie
Referenzbereiche: < 0,3 mg/l
Magnesium im Serum
Magnesium im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Neuromuskuläre Übererregbarkeit (Tremor, Muskelzucken, Tetanie),
gastrointestinale und kardiale Beschwerden (Rhythmusstörungen,
Kontrolle einer Diuretikatherapie
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Erwachsene: 0,7 – 1,07 mmol/l
Kinder: s. Befundbericht
Magnesium im Urin
Probenmaterial: 1 ml Spontanurin oder
1 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Beurteilung der Magnesiumausscheidung bei Hypo- oder Hypermagnesiämie
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Spontanurin: 41 – 138 mg/l
Sammelurin: 73 – 122 mg/24h
Malaria-Antikörper (U)
Synonyme: Plasmodien-Antikörper
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik nach Tropenaufenthalt, Ausschluss eines Plasmodienkontaktes
bei Verdacht auf latente Malaria
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Malondialdehyd (U)(N)
Synonyme: MDA
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: Blut unmittelbar nach der Blutentnahme zentrifugieren, Plasma abpipettieren und
einfrieren (- 20°C und tiefer), Blutentnahme im Labor empfohlen.
Klinische Indikationen: Beurteilung der Lipidoxidation im Rahmen der Einwirkung des oxidativen
Stresses
Methode: HPLC
Referenzbereiche: < 2,0 µmol/l
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 297

Masern-Virus-Antikörper (IgG, Liquor/Serum)
Mandelsäure im Urin (U)
Probenmaterial: 10 ml Spontanurin
Klinische Indikationen: Beurteilung der Belastung mit Ethylbenzol bzw. Styrol
Methode: HPLC
Referenzbereiche: < 10 mg/g Krea
Mangan im Blut (U)
Probenmaterial: 2 ml EDTA- oder Vollblut
Abnahmehinweise: Blutentnahme nach Expositions- bzw. Schichtende
Klinische Indikationen: Beurteilung der Manganbelastung
Methode: AAS
Referenzbereiche: 0,3 – 0,9 µg/l
Mangan im Urin (U)
Probenmaterial: 5 ml Urin
Abnahmehinweise: Entnahme nach Expositions- bzw. Schichtende
Klinische Indikationen: Beurteilung der Manganbelastung
Methode: AAS
Referenzbereiche: < 1,9 µg/l
Maprotilin
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Maprotilin-Therapie, Missbrauchskontrolle
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 100 – 250 µg/l
Masern-Serologie
Synonyme: Morbilli, SSPE
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 9-12 Tage.
Klinische Indikationen: Diagnose einer Masern-Virus-Infektion, besonders bei Fieber mit trockenem
Husten sowie Konjunktivitis, Kopliksche Flecken und makulopapulöses Exanthem,
Überprüfung der Immunität nach Impfung (IgG-Ak)
Methode: ELISA
Referenzbereiche: IgG: negativ (< 150 mIU/ml)
IgM: negativ (< 10 U/ml)
Masern-Virus-Antikörper (IgG, Liquor/Serum)
Synonyme: Masern-AI, MRZ-Reaktion
Probenmaterial: 1 ml Liquor und 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen.
298 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

MDRD-Clearance
Klinische Indikationen: Nachweis einer intrathekalen IgG-Synthese gegen Masern-Virus bei akuten
und auch chronischen ZNS-Erkrankungen.
Methode: EIA
Referenzbereiche: 0,6 – 1,5 Index
MDRD-Clearance
Synonyme: Modification of Diet Renal Disease, GFR
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Für die Berechnung sind zusätzlich folgende Angaben notwendig:
- Alter
- Geschlecht
- Hinweis auf schwarze Hautfarbe
Klinische Indikationen: Berechnung der glomerulären Filtrationsrate aus Serum-Parametern nach
den Europäischen Guidelines zur Bestimmung der GFR bei Patienten mit Niereninsuffizienz.
Referenzbereiche: GFR: 80 – 140 ml/m/1,73
Mebendazol (U)(N)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring einer Mebendazol-Therapie.
Methode: HPLC
Referenzbereiche: < 150 ng/ml
Medikamentennachweis im Urin (U)
Synonyme: qualitativ
Probenmaterial: 10 ml Urin
Abnahmehinweise: ggf. Probennahme überwachen
Klinische Indikationen: Suchtest zum Nachweis des Gebrauchs einer der genannten Substanzen
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Medroxyprogesteron (U)
Synonyme: MPA
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer MPA-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 100 – 500 ng/ml
Melanin im Urin (U)(N)
Synonyme: Melanogen im Urin
Probenmaterial: 10 ml Urin
Klinische Indikationen: Verdacht auf erhöhte Ausscheidung von Melanin
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: negativ
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 299

Metanephrin im Urin (W)
Melatonin (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum, EDTA- oder Heparin-Plasma
Abnahmehinweise: Das Blut bitte innerhalb von 30 Minuten nach der Abnahme zentrifugieren, das
Serum in ein separates Röhrchen abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Die klinische Wertigkeit der Bestimmung von Melatonin wird kontrovers
diskutiert.
Methode: RIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Melperon (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Melperon-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: Therapeutischer Bereich: 100 – 200 µg/l
Met-Hämoglobin (W)
Synonyme: Met-Hb, Methämoglobin, Hämiglobin, Hi
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Vollblut oder
6,5 ml Hämolysat (0,5 ml EDTA-Blut mit 6 ml bidest)
Abnahmehinweise: Hämolysat (0,5 ml EDTA-Blut mit 6 ml H2O bidest., gut schütteln)
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung der hereditären oder toxischen Met-
Hämoglobinämie
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: < 1 % des Gesamt-Hb
Metanephrin im Plasma (W)
Synonyme: Katecholamine
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: Vor der Blutentnahme Stress-Situationen vermeiden;
Medikamente, sofern möglich, ca. 1 Woche vorher absetzen;
ab ca. 3 Tage vorher Vermeiden von Kaffee, Tee, Nikotin, Bananen, Käse, Nüsse, Schokolade, Eier;
Blutentnahme nach ca. 30 Minuten Ruhe (Liegen);
Blut direkt nach der Entnahme zentrifugieren und das Plasma abpipettieren und einfrieren (ca. -20°C)
Klinische Indikationen: Tumoren des sympatho-adrenergen Systems, Neuroblastome, episodenhafte
oder therapieresistente Hypertonie, Inzidentalom, Familienuntersuchung
Methode: RIA
Referenzbereiche: < 90 ng/l
Metanephrin im Urin (W)
Synonyme: Katecholamine
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (gesammelt über 5-10 ml Salzsäure)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
300 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methadon im Urin
Medikamente, sofern möglich, ca. 1 Woche vorher absetzen;
ab ca. 3 Tage vorher Vermeiden von Kaffee, Tee, Nikotin, Bananen, Käse, Nüsse, Schokolade, Eier
Klinische Indikationen: Tumoren des sympatho-adrenergen Systems, Neuroblastome, episodenhafte
oder therapieresistente Hypertonie, Inzidentalom, Familienuntersuchung
Methode: HPLC
Referenzbereiche: < 350 µg/24h
Methadon im Urin
Probenmaterial: 10 ml Urin
Abnahmehinweise: ggf. Probennahme überwachen
Klinische Indikationen: Suchtest zum Nachweis des Gebrauchs von Methadon
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 300 ng/ml
Methanol im Blut (U)
Probenmaterial: 2 ml Vollblut, spezielle Abnahmemonovetten verwenden
Abnahmehinweise: Bitte Rollrändröhrchen anfordern.
Klinische Indikationen: Beurteilung der Methanolbelastung
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: < 1,5 mg/l
Methanol im Urin (W)
Probenmaterial: 10 ml Spontanurin
Klinische Indikationen: Beurteilung der Methanolbelastung
Methode: GC
Referenzbereiche: < 10 mg/l
Methotrexat
Synonyme: MTX
Probenmaterial: 1 ml Serum
Material lichtgeschützt einsenden
Abnahmehinweise: Blutentnahme 24, 48 oder 72 Stunden nach Infusionsbeginn (Gabe), bei
verzögerter Elimination ggf. weitere Abnahmen
Klinische Indikationen: Monitoring einer Methotrexat-Therapie
Methode: FPIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Methsuximid (U)
Synonyme: Mesuximid
Probenmaterial: 2 ml Serum
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 10 – 40 mg/l
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 301

Mexiletin (U)
Methylhippursäure gesamt im Urin (W)
Probenmaterial: 2 ml Urin
Abnahmehinweise: Probennahme am Ende der Exposition (Schichtende)
Klinische Indikationen: Beurteilung der Methylhippursäurebelastung im Rahmen der Beurteilung
der Xylolbelastung
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Methylhistamin (U)
Synonyme: N-Methylhistamin
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (gesammelt über 5 ml Eisessig)
Abnahmehinweise: Histaminreiche Nahrungsmittel sollten vermieden werden: bestimmte Käse- und
Wurst-Sorten (Salami, Schinken), Sauerkraut, Spinat, Tomaten, Rot-/Weißwein, Sekt, Bier und verschiedene
Fischarten (Thunfisch, Sardinen, Makrelen)
Klinische Indikationen: Mastozytose, Flush-Symptomatik, allergische Reaktionen
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Methylmalonsäure (W)
Synonyme: MMS
Probenmaterial: 4 ml Serum
Abnahmehinweise: Das Blut nach der Abnahme und ggf. Gerinnung zentrifugieren, das
Serum/Plasma in ein separates Röhrchen (ohne Zusätze) abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei grenzwertig vermindertem Vitamin B12-Befund
(latenter Vitamin B12-Mangel) oder bei nicht ansprechender Therapie
Kinder mit Verdacht auf Methylmalonazidurie bei Trinkschwäche, Gedeihstörungen, Erbrechen,
Kampfanfällen im Neugeborenenalter
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Methylphenidat (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme ca. 2 – 3 Stunden nach oraler Gabe.
Probe bitte lichtgeschützt lagern.
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Methylphenidat-Therapie. Die Bestimmung
des unwirksamen Metaboliten Ritalinsäure kann zur Plausibiltätskontrolle herangezogen werden.
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Mexiletin (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Mexiletin-Therapie
302 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Mianserin (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Mianserin-Therapie
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Micropolyspora faeni-Antikörper (IgG)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Serologische Diagnostik bei exogen-allergischer Alveolitis:
- Farmerlunge
- Befeuchterlunge
- Holzstaublunge
- Pilzzüchterlunge
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Midazolam (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Midazolam-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Mikrosomale Antikörper
Synonyme: MAK
Probenmaterial: 1 ml Serum, EDTA-Plasma
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: < 34 IU/ml
Mirtazapin (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise:
Klinische Indikationen: Monitoring einer Mirtazapin-Therapie
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: 30 – 80 µg/l
Moclobemid (U)(N)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Moclobemid-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Mianserin (U)
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 303

Mumps-Virus-Antikörper (IgG, Liquor/Serum)
Molybdän im Serum (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Molybdän-Mangel bei Malabsortion, nach Darmresektion oder
langer parenteraler Ernährung, Beurteilung der Molybdän-Belastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: 0,3 – 1,2 µg/l
Molybdän im Urin (U)
Probenmaterial: 10 ml Urin
Klinische Indikationen: Verdacht auf Molybdän-Mangel bei Malabsortion, nach Darmresektion oder
langer parenteraler Ernährung, Beurteilung der Molybdän-Belastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: 7 – 94 µg/l
MRSA-Schnelltest
Synonyme: Methicillinresistenter Staphylococcus aureus-Schnelltest
Probenmaterial: Hautabstriche von Nasenvorhof, Rachen, perianal, Achsel, Leiste, Haaransatz, Decubitus,
Wunden (ggf. auch als Poolabstriche von mehreren Stellen)
Abnahmehinweise: Abstrichtupfer ohne Transportmedium für PCR-Nachweis
Nachfolgend zusätzlich Abstrichtupfer mit Transportmedium verwenden (ggf. Resistenztestung und
Typisierung bei positivem Befund
Klinische Indikationen: Ermittlung einer Besiedlung mit MRSA in Krankenhäusern, operativen Einrichtungen,
Alters- und Pflegeheimen, insbesondere bei Neuaufnahmen
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Mumps-Serologie
Synonyme: Parotis epidemica, Ziegenpeter
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit bzw. das diagnostische Fenster beträgt ca. 16-18 Tage
Klinische Indikationen: Diagnose einer Mumps-Virus-Infekton, besonders bei Parotitis, Orchitis,
Salpingitis, Meningitis bzw.
Überprüfung der Immunitätslage nach Impfung (IgG-Ak).
Methode: EIA
Referenzbereiche: IgG: negativ (< 70 U/ml)
IgM: negativ (< 10 U/ml)
Mumps-Virus-Antikörper (IgG, Liquor/Serum)
Synonyme: Mumps-AI
Probenmaterial: 1 ml Liquor und 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen.
Klinische Indikationen: Nachweis einer intrathekalen IgG-Synthese gegen Mumps-Virus bei akuten
und auch chronischen ZNS-Erkrankungen.
304 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: EIA
Referenzbereiche: 0,6 – 1,5 Index
Mutterschaftsvorsorge
Mutterschaftsvorsorge
Synonyme: Mutterschaftsrichtlinien, Schwangerenvorsorge
Probenmaterial: siehe Einzelparameter
Abnahmehinweise: Für die Blutguppen-Serologie ist eine NUR für diesen Zweck bestimmte Blutprobe
(separate Monovette) erforderlich. Auf eine eindeutige Kennzeichnung (z.B. mit Namen, Vornamen
und Geburtsdatum) ist zu achten.
Klinische Indikationen:
Mycobacterium tuberculosis-Komplex-DNA-Nachweis
Synonyme: Tbc-PCR, Tuberkulose
Probenmaterial: je nach Indikation:
Sputum
BAL
Biopsie
Urin
Liquor
Magensaft
Klinische Indikationen: Verdacht auf Tuberkulose, Abklärung eines positiven mikroskopischen Befundes.
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Mycophenolat Mofetil (W)
Synonyme: MMF, Mycophenolsäure, MPA, CellCept ®
Probenmaterial: 2 ml Serum oder EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: Das Blut bitte unmittelbar nach der Abnnahme (und ggf. Gerinnung des Vollblutes)
zenrifugieren, das Serum bzw. Plasma in ein separates Röhrchen ohne Zusätze abpipettieren
und einfrieren (ca. – 20°C) Zur Bestimmung einer AUC (Area under Curve)-Kinetik benötigen wir je
eine Blutentnahme vor der nächsten Gabe und 20, 40, 75 und 120 Minuten nach der Einnahme.
Klinische Indikationen: Monitoring der Therapie mit Mycophenolat mofetil
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: Talspiegel: 1,0 – 3,5 mg/l
Mycoplasma pneumoniae-DNA-Nachweis
Synonyme: M. pneumoniae-PCR
Probenmaterial: Sputum
BAL
Trachealsekret
Klinische Indikationen: Verdacht auf M. pneumoniae-Infektion bei atypischer Pneumonie, Bronchitis,
Meningoenzephalitis oder Otitis media
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 305

Myoglobin im Urin (W)
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Mycoplasmen-Antikörper
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 10-14 Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Infektion mit Mycoplasma pneumoniae, insbesondere bei atypischer
Pneumonie und bei akuten Erkrankungen des Respirationstraktes, auch bei Otitis media, Exanthem,
Myokarditis, Perikarditis
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Mykobakterium tuberculosis-spezifische T-Lymphozyten
Synonyme: T-SPOT.TB, TB-Elispot, Interferon-gamma-release-assay (IGRA)
Probenmaterial: 9 ml Lithium-Heparinblut
Kinder: 3 – 5 ml Lithium-Heparinblut
Abnahmehinweise: Blut tagesgleich ins Labor.
Lagerung bei Raumtemperatur.
Klinische Indikationen: Der T-SPOT.TB ergänzt bzw. ersetzt den Tuberkulin-Hauttest.
Er ist ein Test zum Ausschluss einer Tuberkulose bei
- Verdacht auf eine aktive oder latente Tuberkulose
- Verdacht auf extrapulmonale Tuberkulose
- Umgebungsuntersuchung von Kontaktpersonen
- Screening von Risikopatienten für eine Tuberkulose
- Screening von Personen im Gesundheitswesen
- vor Beginn einer immunsuppressiven Therapie (z.B. Biologicals)
Methode: Eli-Spot
Referenzbereiche: negativ
Myoglobin im Serum (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung des Myokardinfarktes, von
Skelettmuskelerkrankungen, Leistungsbeurteilung von Sportlern
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 10 – 85 ng/ml
Myoglobin im Urin (W)
Probenmaterial: 5 ml Spontanurin
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufsbeurteilung von Skelettmuskelerkrankungen sowie
im Bereich der Leistungsdiagnostik in der Sportmedizin
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
306 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

N-Acetylglucosaminidase (W)
N-Acetylglucosaminidase (W)
Synonyme: β-NAG
Probenmaterial: 2 ml Urin
Klinische Indikationen: Verdacht auf tubuläre Nierenschädigung, Tay-Sachs-Syndrom, Sandhoff-
Syndrom
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: < 5 U/g Krea
N-Desmethyl-Tamoxifen (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum, lichtgeschützt
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Tamoxifen-Therapie
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: 120 – 240 µg/l
Naproxen (U)(N)
Synonyme: NSAR
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Naproxen-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 25 – 75 µg/ml
Natrium im Dialysat (N)
Probenmaterial: 1 ml Dialysat
Klinische Indikationen: Qualitätskontrolle von Dialysat
Methode: ISE
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Natrium im Serum/Plasma
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugiert werden, langes Stauen vermeiden
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung von Störungen im Flüssigkeits- und Elektrolythaushalt
oder des Säure-Basen-Haushaltes, Polyurie und Polydypsie, Nierenerkrankungen, Hypertonie,
Hyper- und Hypoaldosteronismus
Methode: ISE
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Natrium im Urin (N)
Probenmaterial: 1 ml Spontanurin oder
1 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 307

Neopterin im Urin (W)
Klinische Indikationen: Verlaufskontrolle bei Diuretikatherapie, Abklärung einer Hypo- und Hypernatriämie
(Hyper- und Hypoaldosteronismus), Niereninsuffizienz
Methode: ISE
Referenzbereiche: Sammelurin: 40 – 220 mmol/24h
Spontanurin: 54-150 mmol/l
Natürliche Killerzellen
Synonyme: NK-Zellen
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: EDTA-Monovette direkt nach der Abnahme durch Schwenken gründlich mischen
Klinische Indikationen: Primäre und sekundäre Immundefekte
Methode: FC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Neisseria gonorrhoeae-DNA-Nachweis
Synonyme: Go-PCR, Gonokokken-PCR
Probenmaterial: 10 ml Morgenurin (Anfangsstrahl)
Abstrich
Abnahmehinweise: Spezialabstrichbesteck auf Anforderung
Klinische Indikationen: Verdacht auf N. gonorrhoeae-Infektion bei Urethritis (Männer), Zervizitis,
Adnexitis, Lymphadenitis inguinale
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Neopterin (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung von Erkrankungen mit erhöhter zellulärer
Aktivität: Infektionen, Autoimmunerkrankungen, maligne Erkrankungen, Abstoßungsreaktionen nach
Transplantation
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Neopterin im Urin (W)
Probenmaterial: 5 ml Urin
Abnahmehinweise: Den Urin lichtgeschützt und tiefgefroren (ca. – 20°C) lagern.
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung von Erkrankungen mit erhöhter zellulärer
Aktivität: Infektionen, Autoimmunekrankungen, maligne Erkrankungen, Abstoßungsreaktionen nach
Transplantation
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 220 µmol/mol Kreatinin
308 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Netilmicin (W)
Synonyme: Netilmycin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Netilmicin-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Nicht-tuberkulöse Mykobakterien, NTM-DNA-Nachweis
Netilmicin (W)
Synonyme: NTM-PCR, Tuberkulose
Probenmaterial: je nach Indikation:
Sputum
BAL
Biopsie
Urin
Liquor
Magensaft
Klinische Indikationen: Verdacht auf Infektion mit nichttuberkulösen Mykobakterien (NTM), insbesonder
bei Patienten mit Immunsuppression
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Nickel im Blut (W)(N)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Probennahme nach Expositionszeit (Schichtende)
Klinische Indikationen: Beurteilung der Nickelbelastung, Intoxikation
Methode: AAS
Referenzbereiche: < 1,0 µg/l
Nickel im Urin (U)(N)
Probenmaterial: 5 ml Urin
Abnahmehinweise: Probennahme nach Expositionsende (Schichtende)
Klinische Indikationen: Beurteilung der Nickelbelastung, Intoxikation
Methode: AAS
Referenzbereiche: < 5 µg/l
Nicotinamid (W)
Synonyme: Niacin, Vitamin PP, Vitamin B3
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Probe nach der Abnahme lichtgeschützt (mit Alufolie umwickeln) lagern
Klinische Indikationen: Verdacht auf Niacinmangel (Pellagra)
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: 8 – 52 µg/l
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 309

Noradrenalin im Urin
Nitrazepam (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring einer Nitrazepam-Therapie, Diagnostik von Missbrauch und
Abhängigkeit
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 40 – 120 µg/l
NMP22 (W)
Synonyme: Nuclear matrix protein 22
Probenmaterial: Urin (spezielles Stabilisatorgefäß)
Abnahmehinweise: Die Verweildauer des Urins in der Blase sollte mindestens 2 Stunden betragen.
Die Untersuchung sollte NICHT durchgeführt werden bei Harnwegsinfektionen, vorhandenen Steinen
sowie Fremdkörpern wie Dauerkatheter
Klinische Indikationen: Verlaufskontrolle bei Harnblasenkarzinom,
Sreening von Personen mit hohem Risiko für die Entwicklung eines Harnblasenkarzinoms (Raucher,
Arbeiter in chemischen Betrieben
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 10 U/ml
Noradrenalin im Plasma (W)
Synonyme: Katecholamine
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: Vor der Blutentnahme Stress-Situationen vermeiden; Medikamente, sofern
möglich, ca. 1 Woche vorher absetzen; ab ca. 3 Tage vorher Vermeiden von Kaffee, Tee, Nikotin,
Bananen, Käse, Nüsse, Schokolade, Eier; Blutentnahme nach ca. 30 Minuten Ruhe (Liegen); Blut direkt
nach der Entnahme zentrifugieren und das Plasma abpipettieren und einfrieren (ca. -20°C)
Klinische Indikationen: Tumoren des sympatho-adrenergen Systems, Neuroblastome, episodenhafte
oder therapieresistente Hypertonie, Inzidentalom, Familienuntersuchung
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Noradrenalin im Urin
Synonyme: Katecholamine
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (gesammelt über 5-10 ml Salzsäure)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Medikamente, sofern möglich, ca. 1 Woche vorher absetzen;
ab ca. 3 Tage vorher Vermeiden von Kaffee, Tee, Nikotin, Bananen, Käse, Nüsse, Schokolade, Eier
Klinische Indikationen: Tumoren des sympatho-adrenergen Systems, Neuroblastome, episodenhafte
oder therapieresistente Hypertonie, Inzidentalom, Familienuntersuchung
Methode: HPLC
Referenzbereiche: < 97 µg/24 Std.
310 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Normetanephrin im Plasma (W)
Normetanephrin im Plasma (W)
Synonyme: Katecholamine
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Plasma, tiefgefroren
Abnahmehinweise: Vor der Blutentnahme Stress-Situationen vermeiden;
Medikamente, sofern möglich, ca. 1 Woche vorher absetzen;
ab ca. 3 Tage vorher Vermeiden von Kaffee, Tee, Nikotin, Bananen, Käse, Nüsse, Schokolade, Eier;
Blutentnahme nach ca. 30 Minuten Ruhe (Liegen);
Blut direkt nach der Entnahme zentrifugieren und das Plasma abpipettieren und einfrieren (ca. -20°C)
Klinische Indikationen: Tumoren des sympatho-adrenergen Systems, Neuroblastome, episodenhafte
oder therapieresistente Hypertonie, Inzidentalom, Familienuntersuchung
Methode: RIA
Referenzbereiche: < 180 ng/l
Normetanephrin im Urin (W)
Synonyme: Katecholamine
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (gesammelt über 5-10 ml Salzsäure)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Medikamente, sofern möglich, ca. 1 Woche vorher absetzen;
ab ca. 3 Tage vorher Vermeiden von Kaffee, Tee, Nikotin, Bananen, Käse, Nüsse, Schokolade, Eier
Klinische Indikationen: Tumoren des sympatho-adrenergen Systems, Neuroblastome, episodenhafte
oder therapieresistente Hypertonie, Inzidentalom, Familienuntersuchung
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Noro-Virus-RNA-Nachweis im Stuhl
Synonyme: Noro-Virus-PCR, Norwalk-like-Virus, Enteritis
Probenmaterial: 2 g Stuhl
Klinische Indikationen: Verdacht auf Noro-Virus-Infektion, insbesondere bei Diarrhoe, Gastroenteritis
und Enteritis
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Nortriptylin im Serum
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Beurteilung einer Nortriptylintherapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 50 – 250 µg/l
NSE
Synonyme: Neuronenspezifische Enolase
Probenmaterial: 1 ml Serum
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 311

Ortho-Kresol (W)
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Blut nach der Gerinnung zentrifugiert
und das Serum abpipettiert werden.
Klinische Indikationen: Therapie und Verlaufskontrolle neuroendokriner Tumoren und APUDOMen
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 16,3 ng/ml
NSE im Liquor (N)
Probenmaterial: 1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung von
- hypxischen Hirnschäden (Hirninfarkt)
- Creutzfeldt-Jakob-Erkrankung
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 5 – 20 ng/ml
O-Desmethyl-Venlafaxin (W)
Synonyme: SNRI, O-DMV
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Bitte beachten Sie, dass bei Verwendung von gelhaltigen Röhrchen die Resultate
niedriger ausfallen können. Wir empfehlen, das Blut 30 min nach Abnahme zu zentrifugieren, das
Serum abzutrennen und in ein zweites Neutral-Röhrchen zu überführen.
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Venlafaxin-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: 60 – 325 µg/l
Olanzapin (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring einer Olanzapin-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: 20 – 80 ng/ml
Opiate im Urin
Probenmaterial: 5 ml Urin
Abnahmehinweise: ggf. Probennahme überwachen
Klinische Indikationen: Suchtest zum Nachweis des Gebrauchs von Opiaten
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ
Ortho-Kresol (W)
Synonyme: o-Kresol
Probenmaterial: 5 ml Spontanurin oder
5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
Klinische Indikationen: Beurteilung der Toluol-/Kresol-Belastung, Intoxikation
312 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Osmolalität im Serum
Osmolalität im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bei Funktionstest (Durstversuch) Entnahmezeit mit angeben
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung zur Beurteilung des Natrium- und Wasserhaushaltes,
Diabetes insipidus, Ermittlung der osmotischen Lücke
Methode: Gefrierpunktmessung
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Osmolalität im Urin
Probenmaterial: 5 ml Urin
Abnahmehinweise: Bei Funktionstest (Durstversuch) Entnahmezeit mit angeben
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung zur Beurteilung des Natrium- und Wasserhaushaltes,
Diabetes insipidus,
Abklärung einer Polyurie unklarer Genese
Methode: Gefrierpunktmessung
Referenzbereiche: 50 – 1200 mOsm./kg
Osmotische Resistenz der Erythrozyten (N)
Probenmaterial: 4 ml Heparin-Blut
Blutentnahme im Labor mit Voranmeldung erforderlich
Abnahmehinweise: Bitte Untersuchung anmelden!
Klinische Indikationen: Differenzierung hämolytischer Anämien
Methode: Hämolysetest
Referenzbereiche: Beginnende Hämolyse 0,46 – 0,42 % NaCl
Vollständige Hämolyse 0,34 – 0,30 % NaCl
Ostase (W)(N)
Synonyme: Alkalische Phosphatase-Knochen-Isoenzym, BAP
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nüchten (ca. 12 Stunden Nahrungskarenz)
Klinische Indikationen: Beurteilung des Knochenstoffwechsels bei Verdacht auf erhöhten
Knochenumsatz (Osteoporose), Tumorpatienten, Dialysepatienten
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Osteocalcin (U)
Synonyme: BGP
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme morgens zwischen 08.00 Uhr und 09.00 Uhr, das Blut innerhalb
von 2 Stunden zentrifugieren, Serum abpipettieren und einfrieren (ca. – 20 °C)
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 313

Oxalsäure im Urin (W)
Klinische Indikationen: Verdacht auf Osteoporose, Karzinome mit Knochenmetastasen, primärer
Hyperparathyreoidismus, renale Osteopathie
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Östradiol im Serum
Synonyme: 17-β-Östradiol, Estradiol, E2
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verlaufskontrolle bei hormoneller Sterlitätstherapie, Beurteilung der Ovarialfunktion,
Tumordiagnostik, Therapiekontrolle
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: Erwachsene
Männer: 7,6 – 42,6 pg/ml
Frauen
Follikelphase: 12,5 – 166 pg/ml
Ovulationsphase: 85,8 – 498 pg/ml
Lutealphase: 43,8 – 211 pg/ml
Östriol, frei im Serum (W)
Synonyme: E3
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Überwachung der Schwangerschaft
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Östron im Serum (W)
Synonyme: Estron, E1
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Ausschluss eines Östrogenmangels in der Menopause, Kontrolle der Hormontherapie
bei Mammakarzinom
Methode: RIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Oxalsäure im Urin (W)
Probenmaterial: 5 ml Spontanurin oder
5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Nephro- und Urolithiasis
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
314 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Oxazepam (W)
Oxazepam (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Diagnose von Oxazepam-Missbrauch und -Abhängigkeit, ggf. Monitoring
einer Oxazepamtherapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 500 – 2000 ng/ml
Oxcarbazepin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring der Oxcarbazepin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: < 3,0 mg/l
13 – 30 mg/l (10-OH-Metabolit)
Oxidativer Burst (W)
Synonyme: Sauerstoffradikalbildung in Granulozyten
Probenmaterial: 10 ml Heparin-Blut
Klinische Indikationen:
Methode: FC
Referenzbereiche: fMLP: 1 – 30 %
Bakterien: > 70 %
Oxidiertes LDL-Cholesterin (W)(N)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: oxidative Belastung, Antioxidantienstatus
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Oxypurinol (U)(N)
Synonyme: Oxipurinol
Probenmaterial: 1 ml Serum
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 2 – 20 µg/ml
Palladium (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Beurteilung der Palladium-Belastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 315

Pankreatisches Polypeptid (W)
Palladium im Urin (U)
Probenmaterial: 5 ml Urin
Klinische Indikationen: Beurteilung der Palladium-Belastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Pankreas-Amylase im Serum (U)
Synonyme: pankreatische α-Amylase
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle einer Pankreatitis oder einer Parotitis,
Abklärung akuter Oberbauchbeschwerden,
Pankreaskarzinom,
Kontrolle nach ERCP
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: < 53 U/l
Pankreas-Elastase 1 im Serum (W)
Synonyme: E1, Elastase 1
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Akute und chronische Pankreatitis
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Pankreas-Elastase 1 im Stuhl
Synonyme: E1, Elastase 1
Probenmaterial: 2 g Stuhl
Abnahmehinweise: Stuhlprobe in entsprechende Transportröhrchen überführen. Die Untersuchung
ist bei sehr weichen und flüssigen Stuhlproben nicht geeignet.
Klinische Indikationen: Beurteilung der exokrinen Pankreasfunktion, auch unter Substitutionstherapie
Methode: ELISA
Referenzbereiche: > 200 µg/g Stuhl
Pankreatisches Polypeptid (W)
Synonyme: PP
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: Das EDTA-Blut bitte unmittelbar nach der Blutentnahme zentrifugieren, das
Plasma in ein separates Röhrchen (ohne Zusätze) pipettieren und einfrieren (ca. – 20°C).
Die Blutentnahme sollte morgens am nüchternen Patienten erfolgen.
Medikamente mit parasympathomimetischer Wirkung sind ausreichend vorher, soweit vertretbar,
abzusetzen: z.B. Metoclopramid, ß-Blocker
Klinische Indikationen: Verlaufskontrolle und Verdacht bei/au PPom (PP-uzierender Tumor, APU-
Dom), auch im Zusammenhang mit anderen endokrinen Tumoren (VIPom, Insulinom, Gastrinom,
316 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

insbesondere bei sekretorischer Diarrhoe
Methode: RIA
Referenzbereiche: < 100 pmol/l
Pantothensäure (U)
Pantothensäure (U)
Synonyme: Vitamin B5
Probenmaterial: 1 ml Serum oder
10 ml Urin eines 24-Stunden-Sammelurins
Abnahmehinweise: Wegen der geringen Stabilität das Blut bitte unmittelbar nach der Entnahme und
Gerinnung zentrifugieren, das Serum in separates Röhrchen ohne Zusätze abpipettieren und einfrieren
(ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Verdacht auf eine Unterversorgung mit Pantothensäure
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
PAPP-A (U)
Synonyme: Pregnancy Associated Plasma Protein A
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das entnommene Vollblut gerinnen lassen und anschließend die Probe innerhalb
einer Stunde zentrifugieren. Serum abpipettieren und in einem Probenröhrchen gekühlt / gefroren
versenden.
Haltbarkeit im Serum: 24 Stunden bei 2-8°C, 2 Monate bei -20°C
Falls diese Bedingungen nicht eingehalten werden können, bitte angeben.
Bitte Schwangerschaftswoche exakt angeben.
Klinische Indikationen: Erst-Trimester-Screening im Zusammenhang mit der Bestimmung von
freiem β-HCG und der Messung der Nackenfalte mittels Ultraschall
Methode: LIEMA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Paracetamol
Synonyme: Acetaminophen
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring einer Paracetamol-Therapie, Diagnose und Kontrolle von Missbrauch
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: therapeutischer Bereich: 10 – 30 mg/l
Parainfluenza-Virus-Serologie (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 2-6 Tage; das diagnostische Fenster bis zum serologischen
Nachweis ca. 7-14 Tage.
Klinische Indikationen: Infektionen des oberen und unteren Respirationstraktes, Bronchitis, Pseudokrupp
(bei Kindern), atpyische Pneumonie
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 317

Parvovirus B19-Antikörper (IgM)
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Parathormon intakt
Synonyme: iPTH
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Plasma oder
1 ml Serum
Abnahmehinweise: Wegen zirkadianer Schwankungen Blutentnahme morgens nüchtern
(ca. 12 Stunden Nahrungskarenz).
Blut tagesgleich ins Labor.
Alternativ Blut innerhalb von 30 Minuten zentrifugieren, Serum bzw. Plasma abpipettieren. Das
EDTA-Plasma kühl (+ 2°C – +8°C), das Serum sofort eingefroren (ca. – 20°C) lagern.
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Osteopathie, Störungen des Kalziumstoffwechsels,
Verdacht auf Hyper- oder Hypoparathyreoidismus, Niereninsuffiziens, Nephro- und Urolithiasis, Malabsorptionssyndrom
Methode: CMIA
Referenzbereiche: 15,0 – 68,3 pg/ml
Paroxetin (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Paroxetin-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Parvovirus B19-Antikörper (IgG)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 8-14 Tage; das diagnostische Fenster beträgt ca.
10-15 Tage.
Klinische Indikationen: Ringelröteln (Erythema infectiosum), hämolytische Anämie (transiente
aplastische Krise), Lymphadenitis, akute/chronische Arthritis, Kontakt während der Gravidität
(erhöhtes Risiko für fetale Anämie sowie fetalen Hydrops bzw. intrauterinen Fruchttod), Myokarditis.
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Parvovirus B19-Antikörper (IgM)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 8-14 Tage; das diagnostische Fenster beträgt ca.
10-15 Tage.
Klinische Indikationen: Ringelröteln (Erythema infectiosum), hämolytische Anämie (transiente
aplastische Krise), Lymphadenitis, akute/chronische Arthritis, Kontakt während der Gravidität
(erhöhtes Risiko für fetale Anämie sowie fetalen Hydrops bzw. intrauterinen Fruchttod), Myokarditis.
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
318 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Parvovirus B19-DNA-Nachweis (W)
Parvovirus B19-DNA-Nachweis (W)
Synonyme: Parvovirus B19-PCR
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
1 ml Liquor
Fruchtwasser
Abnahmehinweise: Bitte für diese Untersuchung eine separate Monovette abnehmen. Das Blut nach
der Abnahme kühl (+2°C – +8°C) lagern.
Klinische Indikationen: Verdacht auf eine akute Infektion mit Parvovirus B19 (vor der Serokonversion)
bzw. Nachweis der Parvovirus B19-Trägerschaft bei unklarer hämolytischer Anämie, Arthritis,
Gravidität (erhöhtes Risiko für intrauterinen Fruchttod bzw. Hydrops fetalis)
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
PCP im Serum (U)
Synonyme: Pentachlorphenol
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Beurteilung der PCP-Belastung und -Intoxikation
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
PCP im Urin (U)
Synonyme: Pentachlorphenol
Probenmaterial: 10 ml Urin
Klinische Indikationen: Beurteilung der PCP-Belastung und -Intoxikation
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Perazin (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Perazin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Perphenazin (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum, lichtgeschützt
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Perphenazin-Therapie
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
pH-Wert im Stuhl
Probenmaterial: 2 g Stuhl
Klinische Indikationen: Verdacht auf Fehlbesiedlung des Colons
Referenzbereiche: 4,5 – 7,5
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 319

Phenylalanin im Plasma (U)
Phenacetin (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring
Methode: GC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Phencyclidin (U)
Synonyme: “Angel Dust“, PCP
Probenmaterial: 15 ml Urin
Klinische Indikationen: Missbrauchskontrolle
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: negativ
Phenobarbital
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme oder während des
Dosierungsintervalls
Klinische Indikationen: Monitoring einer Phenobarbital-Therapie
Methode: CMIA
Referenzbereiche: 15 – 40 µg/ml
Phenol im Urin (U)(N)
Probenmaterial: 5 ml Urin
Abnahmehinweise: Probennahme am Ende der Expositionszeit (Schichtende)
Klinische Indikationen: Beurteilung der Phenol-Belastung und -Intoxikation im Zusammenhang mit
Benzol (Phenol ist Metabolit von Benzol)
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Phenprocoumon (U)
Synonyme: Marcumar ® , Vitamin K-Antagonist
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Beurteilung einer Antikoagulation mit Phenprocoumon
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Phenylalanin im Plasma (U)
Synonyme: Phenylketonurie, Hartnup-Krankheit
Probenmaterial: 0,5 ml EDTA-Plasma
Klinische Indikationen: Verdacht auf Hyperphenylalaninämie bzw. Phenylketonurie, insbesondere
bei Beeinträchtigung der kindlichen Hirnfunktion, Hyperaktivität, Krämpfen, “Mäusegeruch“ (Haar,
Haut, Urin), Neigung zu Hypopigmentierung bzw. Ekzemen, Pellagra
320 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Phenylbutazon (U)
Synonyme: NSAR
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Phenylbutazon-Therapie
Methode: GC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Phenylglyoxylsäure im Urin (U)
Synonyme: PGS im Urin
Probenmaterial: 1 ml Spontanurin
Klinische Indikationen: Beurteilung der Belastung mit Styrol, Intoxikation
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Phenytoin
Phenylbutazon (U)
Synonyme: Diphenylhydantoin
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme während des Dosierungsintervalls bzw. vor der nächsten Medikamenteneinnahme
(standardisierte Entnahmezeit)
Klinische Indikationen: Monitoring einer Phenytoin-Therapie
Methode: CMIA
Referenzbereiche: 10 – 20 µg/ml
Phosphat im Serum
Synonyme: anorganisches Phosphat
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme möglichst nüchtern (ca. 12 Stunden Nahrungskarenz); langes
Stauen vermeiden. Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugiert werden
Klinische Indikationen: Knochenerkrankungen, Osteoporose, Nierenerkrankungen, nach Schilddrüsenoperationen,
Hyper- und Hypoparathyreoidismus, Nephro- und Urolithiasis, Verdacht auf Vitamin
D-Mangel
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Erwachsene: 2,5 – 4,5 mg/dl
Kinder: s. Befundbericht
Phosphat im Urin
Synonyme: anorganisches Phosphat
Probenmaterial: 5 ml Spontanurin oder
5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 321

Phospholipid-Antikörper
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Bestimmung in Zusammenhang mit → Phosphat im Serum, Seite 321
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Phospho-Tau (W)
Synonyme: Phospho-Tau(181p)
Probenmaterial: 1 ml Liquor in Polypropylen-Röhrchen
Abnahmehinweise: Zur Materialentnahme und Transport müssen Polypropylenröhrchen verwendet
werden, da es sonst durch Absorption zu Verlusten kommt.
Klinische Indikationen: Differenzierung zwischen Morbus Alzheimer und Lewy-Körper-Demenz
Marker für Creutzfeldt-Jacob-Krankheit
Methode: ELISA
Referenzbereiche: < 61 pg/ml
Phosphohexose-Isomerase im Liquor (W)(N)
Synonyme: PHI
Probenmaterial: 1 ml Liquor
Abnahmehinweise: Der Liquor sollte frei von Erythrozyten sein. Es darf für die Untersuchung kein
Liquor mit lysierten Erythrozyten verwendet werden, da Erythrozyten eine hohe Menge an PHI enthalten
Klinische Indikationen: Therapie- und Verlaufskontrolle für ZNS-Tumoren (primäre und sekundäre
Hirntumore)
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Phosphohexose-Isomerase im Serum (U)
Synonyme: PHI
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Blut zentrifugiert und das Serum in
separates Röhrchen abpipettiert werden.
Klinische Indikationen: Verlaufskontrolle bei Tumoren (PHI besitzt KEINE Tumorspezifität)
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Phospholipid-Antikörper
Probenmaterial: 3 ml Citrat-Blut und
1 ml Serum
Abnahmehinweise: Citratblut per Botendienst gleichtägig ins Labor.
Haltbarkeit: 4 Stunden.
Bei längeren Transportzeiten sollte das Citratblut möglichst 1 Stunde nach der Blutabnahme zentrifugiert
werden (2000 g, 10 min.). Überstand (Citratplasma) ohne Verletzung der Leukozytenschicht
zwischen Plasma und Erythrozyten abheben und in ein neues Probenröhrchen ohne Zusätze
überführen. Vor dem Einfrieren sollte das Plasma ein zweites Mal zentrifugiert und den Überstand in
322 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Phytansäure (U)
einem neuen Röhrchen abgefüllt werden.
Das Plasma bei ca. – 20 °C einfrieren und im Kühlbehälter versenden.
Beim Einfrieren des Citratplasmas werden Phospholipide aus den Rest-Thrombozyten freigesetzt, die
zu einer Verkürzung der Gerinnungszeit und somit zu fasch negativen Ergebnissen führen können.
Methode: Koagulometrie
FEIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Phytansäure (U)
Synonyme: Morbus Refsum
Probenmaterial: 3 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose eines Refsum-Syndroms (Morbus Refsum, u.a. Defekt der
Phytanoyl-CoA-Hydroxylase)
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Pimozid (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Pimozid-Therapie
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Pipamperon (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Pipamperon-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Plasminogen-Aktivator-Inhibitor (U)
Synonyme: PAI-1
Probenmaterial: 2 ml Citrat-Plasma
Abnahmehinweise: Wegen der geringen Stabilität bitte das Blut nach der Abnahme zentrifugieren
und das Plasma in ein separates Röhrchen (ohne Zusätze) abpipettieren und kühl (+ 2°C – + 8°C) oder
gefroren (ca. – 20°C) lagern.
Wegen der ausgeprägten tageszeitlichen Schwankungen sollte eine Blutentnahme grundsätzlich morgens
(bis 08.00 Uhr) erfolgen.
Klinische Indikationen: Diagnose bzw. Verlaufskontrolle von
- Hemmung der Fibrinolyse
- PAI-1-Mangel bei erhöhter Blutungsneigung
- Abklärung eines erhöhten Thrombose-Risikos
Methode: chromogen
Referenzbereiche: 2 – 7 U/ml
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 323

Pneumokokken-Antikörper (W)
Plasminogen-Aktivität (W)
Probenmaterial: 1 ml Citrat-Plasma
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Differentialdiagnostik bei Thrombophilie,
Diagnostik bei Hyperfibrinolyse und DIC,
Therapiemonitoring bei Fibrinolyse
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Plasminogen-Konzentration (W)
Probenmaterial: 1 ml Citrat-Plasma
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei Verminderung der Plasminogen-AktivitätE
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Platin im Serum (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme am Ende der Expositionszeit (Schichtende)
Klinische Indikationen: Beurteilung der Platinbelastung, Intoxikation
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
PMN-Elastase im Stuhl (W)
Probenmaterial: 1 g Stuhl
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufskontrolle entzündlicher Darmerkrankungen
Methode: ILMA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Pneumocystis jiroveci DNA-Nachweis
Synonyme: Pneumocystis-PCR, PcP
Probenmaterial: Sputum
BAL
Trachealsekret
Klinische Indikationen: Verdacht auf Infektion mit P. jiroveci (früher P. carinii), insbesondere bei
interstitieller Pneumonie bei immunsupprimierten Patienten (auch bereits bei der Entwicklung von
trockenem Husten, Fieber oder Dyspnoe ohne Korrelat im Röntgenbild)
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Pneumokokken-Antikörper (W)
Synonyme: Pneumokokken-Vacc-Ag-Ak
Probenmaterial: 1 ml Serum
324 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

PNH-Diagnostik (W)
Abnahmehinweise: Blutentnahme ab ca. 4 Wochen nach erfolgter Impfung. Bei Verdacht auf
Pneumokokkeninfektion ist der Erregernachweis die Methode der Wahl.
Klinische Indikationen: Der Test ist geeignet zur Überprüfung der Immunitätslage vor und nach
Impfung. Erfahrungen zur Diagnostik von Erkrankungen liegen nicht vor.
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
PNH-Diagnostik (W)
Synonyme: Paroxysmale nächtliche Hämoglobinurie, Marchiafava-Anämie
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Probenmaterial nicht kühlen.
Klinische Indikationen: Verdacht auf paroxysmale nächtliche Hämoglobinurie (PNH), insbesondere
bei
- Hämoylsezeichen nach Stress, Infekten, Medikamenteneinahme u.a.
- unklaren Abdominalschmerzen
- unklaren Rückenschmerzen
- unklaren Kopfschmerzen
- gehäuften thromboembolischen Ereignissen
- unklarer chronisch hämolytischer Anämie
- unklarer Eisenmangel
- Hepatosplenomegalie
Methode: FC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Poliovirus-Antikörper (W)
Synonyme: Poliomyelitis-Antikörper, Polio-NT
Probenmaterial: 5 ml Serum
Klinische Indikationen: Überprüfung der Immunitätslage nach Impfung, Beurteilung der Indikation
zur Wiederauffrischung der Impfung
Methode: Neutralisationstest
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Polychlorierte Biphenyle (U)
Synonyme: PCB
Probenmaterial: 10 ml EDTA-Blut, spezielle Abnahmemonovetten verwenden
Abnahmehinweise: Blutentnahme nüchtern (12 Stunden Nahrungskarenz).
Spezielle Abnahmemonovetten können angefordert werden.
Klinische Indikationen: Beurteilung der PCB-Belastung und -Intoxikation
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Porphobilinogen im Urin (W)
Synonyme: PBG, Porphyrie-Diagnostik
Probenmaterial: 20 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze) oder
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 325

Porphyrine im Urin (W)
20 ml Spontanurin
Abnahmehinweise: Bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben. Urin lichtgeschützt und gekühlt (+2°C – +8°C) sammeln.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Bleivergiftung, akute hepatische Porphyrien, andere Schwermetallvergiftungen,
Bleiexposition, Alkoholismus, Arzneimittelschädigung der Leber, chronische
hepatische Porphyrien
Methode: ITC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Porphyrie-Diagnostik (W)
Probenmaterial: je nach Anforderung:
20 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze) oder
20 ml Spontanurin,
5 g Stuhl,
2 ml Heparin-Blut,
3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Proben lichtgeschützt versenden.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Bleivergiftung, akute hepatische Porphyrien, andere Schwermetallvergiftungen,
Bleiexposition, Alkoholismus, Arzneimittelschädigung der Leber, chronische
hepatische Porphyrien
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Porphyrine im Stuhl (W)
Probenmaterial: 5 g Stuhl
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung zur Abgrenzung der Porphyria variegata oder der
hereditären Koproporphyrie von der akuten intermittierenden Porphyrie bei unklarer Befundkonstellation
der Urin-Diagnostik.
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Porphyrine im Urin (W)
Synonyme: Porphyrie-Diagnostik
Probenmaterial: 20 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze) oder
20 ml Spontanurin
Abnahmehinweise: Bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben. Urin lichtgeschützt und gekühlt (+2°C – +8°C) sammeln.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Bleivergiftung, akute hepatische Porphyrien, andere Schwermetallvergiftungen,
Bleiexposition, Alkoholismus, Arzneimittelschädigung der Leber, chronische
hepatische Porphyrien
Methode: Photometrie
HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
326 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Porphyrine in Erythrozyten (W)
Synonyme: freie Erythrozytenporphyrine
Probenmaterial: 3 ml Heparin- oder EDTA-Blut
Klinische Indikationen: Differenzierung der Porphyrien bei Porphyrieverdacht
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Präalbumin (U)
Porphyrine in Erythrozyten (W)
Synonyme: Prealbumin, Transthyretin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Beurteilung des Ernährungszustandes und der Lebersynthese-Leistung,
Kachexie, parenterale Ernährung
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Prajmalin (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring einer Prajmalin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Prednisolon (U)(N)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Prednisolon-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Pregabalin (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das Blut bitte nach der Abnahme und ggf. Gerinnung zentrifugieren, das
Serum/Plasma in ein separates Röhrchen (ohne Zusätze) abpipettieren und kühl (+ 4°C – + 8°C)
und lichtgeschützt (mit Alufolie umwickeln) lagern.
Klinische Indikationen: Monitoring einer Pregabalin-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Pregnandiol (U)(N)
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (gesammelt über 5 – 10 ml Eisessig)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Pubertätsentwicklungsstörungen, Ovarialtumoren.
Methode: GC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 327

Progesteron im Serum
Pregnantriol (U)(N)
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (gesammelt über 5 – 10 ml Eisessig)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben. Vor und während der Sammelzeit sind besondere Muskelanstrengungen zu vemeiden
(erhöhte Werte von Pregnantriol im Urin)
Klinische Indikationen: Verdacht auf hereditäres Adrenogenitales Syndrom (21-Hydroxylase-
Mangel)
Methode: GC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Primidon
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme ca. 2-4 Stunden nach der letzten Dosis (Maximalspiegel) oder
direkt vor der nächsten Medikamenteneinnahme.
Klinische Indikationen: Monitoring einer Primidon-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 4,0 – 12,0 µg/ml
pro Gastrin Releasing Peptide (U)
Synonyme: ProGRP
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: Bevorzugtes Material ist Plasma (EDTA-, Na- oder Lithium Heparinat), das maximal
8 Stunden bei Raumtemperatur oder 24 Stunden bei 2-8°C gelagert werden kann, danach sollte
es eingefroren werden.
Serum hingegen kann nach der sofortigen Trennung von Blutkuchen nur 3 Stunden bei 2-8°C gelagert
werden. Danach bitte einfrieren.
Klinische Indikationen: Biomarker für das kleinzellige Lungenkarzinom (SCLC). Differenzialdiagnose
bei Lungenrundherden.
Methode: CMIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Procalcitonin
Synonyme: PCT
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Proben, die nicht innerhalb von 24 Stunden nach der Blutentnahme für einen Test
verwendet werden, müssen gefroren und bei -20°C gelagert werden.
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle bakteriell-entzündlicher Erkrankungen
Methode: ELFA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Progesteron im Serum
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Beurteilung der Corpus luteum-Funktion, Nachweis einer Ovulation, V.a.
328 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Blasenmole, Chorionepitheliom, Thekazell-Tumor
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Proinsulin intakt (W)
Proinsulin intakt (W)
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Plasma oder Serum
Abnahmehinweise: Wegen der besseren Stabilität sollte EDTA-Blut bevorzugt abgenommen werden.
Bei längerer Lagerungszeit (> 24 Stunden) sollte das EDTA-Blut zentrifugiert und das Plasma in ein
separates Röhrchen (ohne Zusatz) abpipettiert werden. Die Probe ist dann gekühlt (+ 2°C – + 8°C) zu
lagern. Bei Abnahme von Vollblut muss dieses nach der Abnahme direkt zentrifugiert und das Serum
in ein separates Röhrchen abpipettiert und tiefgefroren werden (ca. – 20°C).
Klinische Indikationen: Diabetes mellitus Typ 2 zur – Klassifizierung der Insulinresistenz – Therapiefindung
– Therapieverlaufskontrolle – Identifikation von Hochrisikopatienten (KHK)
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Prokollagen-I, N-terminales Propeptid (W)
Synonyme: PINP
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Stabilität: 24 Stunden bei 15-25°C; 5 Tage bei 2-8°C
Klinische Indikationen: Die enge Korrelation von PINP mit der Geschwindigkeit der Knochenneubildung
prädestiniert diesen Marker zum Monitoring von Erkrankungen die mit einer Aktivierung
der Knochenformation einhergehen (z.B. Hyperparathyreoidismus, Paget-Disease, postmeno-pausale
Osteoporose). Bei Patienten mit malignen Tumoren, insbesondere bei Prostatakarzinomen und bei
Mammakarzinomen, geben erhöhte PINP-Konzentrationen frühzeitig Hinweise auf eine ossäre Metastasierung.
PINP ist weiterhin gut geeignet zum Follow-up einer anti-resorptiven Knochen-Therapie
(z.B. Bisphosphonate).
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Prokollagen-III-Peptid (W)
Synonyme: P III P
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle von Lebererkrankungen sowie Abschätzung
des fibrotischen Leberumbaus
Methode: RIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Prolaktin
Synonyme: Prolactin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Stress-Situation vor oder bei der Blutentnahme vermeiden, wegen zirkadianer
Schwankungen Blutentnahme morgens (ca. 8 Uhr) empfohlen
Klinische Indikationen: Frauen: Zyklusstörungen, Galaktorrhoe, Mastopathie, Virilisierung,
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 329

Protein C-Aktivität
Abklärung einer Sterilität Männer: Libido- und Potenzstörungen, Hypogonadismus, Galaktorrhoe
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: Frauen: 102 – 496 mlE/l
Männer: 86 – 324 mlE/l
Promethazin (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Probe nach der Blutabnahme lichtgeschützt (mit Alufolie umwickeln) lagern.
Bitte beachten Sie, dass bei Verwendung von gelhaltigen Röhrchen die Resultate niedriger ausfallen
können. Wir empfehlen, das Blut 30 min nach Abnahme zu zentrifugieren, das Serum abzutrennen
und in ein zweites Neutral-Röhrchen zu überführen.
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Promethazin-Therapie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Propafenon (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme unmittelbar vor der nächsten Medikamenteneinnahme.
Bitte beachten Sie, dass bei Verwendung von gelhaltigen Röhrchen die Resultate niedriger ausfallen
können. Wir empfehlen, das Blut 30 min nach Abnahme zu zentrifugieren, das Serum abzutrennen
und in ein zweites Neutral-Röhrchen zu überführen.
Klinische Indikationen: Monitoring einer Propafenon-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Propranolol (U)
Synonyme: Obsidan ®
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Propranolol-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Protein 14-3-3 im Liquor (W)(N)
Probenmaterial: 2 ml Liquor
Klinische Indikationen: Differentialdiagnostik Creutzfeldt-Jakob-Krankheit, insbesondere bei sehr
stark erhöhten Werten für Tau-Protein im Liquor
Methode: Westernblot
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Protein C-Aktivität
Probenmaterial: 1 ml Citrat-Plasma
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251 Die Bestimmung wird gestört durch
hohe Heparinkonzentrationen, Lupusantikagulans, Vitamin K-Antagonisten, APC-Resistenz. Die gilt
für den sog. “funktionellen Test“, nicht jedoch für den “chromogenen Test“.
330 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Protein C-Antigen (U)
Klinische Indikationen: Abklärung einer Thrombophilie, Verdacht auf angeborenen/erworbenen
Protein C-Mangel, Vor oraler Antikoagulation mit Vitamin K-Antagonisten, Purpura fulminans,
Marcumar-Nekrosen
Methode: Koagulometrie
Referenzbereiche: 70 – 140 %
Protein C-Antigen (U)
Probenmaterial: 2 ml Citrat-Plasma
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Folgeuntersuchung bei verminderter → Protein C-Aktivität, Seite 330 zur
Klassifizierung eines hereditären Protein-C-Mangels.
Methode: ELFA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Protein C-Genotypisierung (W)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einwilligungserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32011 (Thrombophilie)
Klinische Indikationen: Diagnosesicherung eines hereditären Protein C-Mangels
Methode: PCR
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Protein S-100 im Liquor
Synonyme: S-100B
Probenmaterial: 1 ml Liquor
Abnahmehinweise: Wegen der geringen Halbwertszeit sollte der Liquor innerhalb von 30 Minuten
eingefroren (ca. – 20°C) werden.
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufsbeurteilung degenerativer und entzündlicher ZNS-
Erkrankungen
Methode: CLIA
Referenzbereiche: < 2,7 µg/l
Protein S-100 im Serum
Synonyme: S-100B
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufskontrolle beim Malignen Melanom
Methode: CLIA
Referenzbereiche: < 0,15 µg/l
Protein S-Aktivität
Probenmaterial: 1 ml Citrat-Plasma
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Abklärung einer Thrombophilie,
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 331

Protein Z-Konzentration (W)
Verdacht auf angeborenen/erworbenen Protein S-Mangel,
Vor oraler Antikoagulation mit Vitamin K-Antagonisten,
Purpura fulminans
Methode: Koagulometrie
Referenzbereiche: Frauen: 52 – 136 %
Männer: 60 – 148 %
Protein S-Antigen, frei
Probenmaterial: 1 ml Citrat-Plasma
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Diagnose eines Protein S-Mangels,
Leberfunktionsstörungen,
Vitamin K-Mangel,
Methode: EIA
Referenzbereiche: Männer: 74 – 146 %
Frauen: 55 – 124 %
Protein S-Genotypisierung (W)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einwilligungserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32011 (Thrombophilie)
Klinische Indikationen: Diagnosesicherung eines hereditären Protein S-Mangels
Methode: PCR
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Protein S-gesamt (U)
Probenmaterial: 2 ml Citrat-Blut
Klinische Indikationen: Klassifizierung eines angeborenen Protein S-Mangel
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Protein Z-Konzentration (W)
Probenmaterial: 1 ml Citrat-Plasma
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Hinweis: Protein Z ist NICHT stabil, das Blut muss daher unmittelbar nach der Abnahme zentrifugiert,
das Plasma in ein separates Röhrchen (ohne Zusatz!) abpipettiert und gekühlt (+2 °C –
+8 °C) transportiert werden.
Klinische Indikationen: Unklare Blutungsneigung, rez. Aborte
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
332 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Prothrombin-Fragmente F 1+2 (W)
Prothrombin-Fragmente F 1+2 (W)
Probenmaterial: 1 ml Citrat-Plasma
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Verbrauchskoagulagulopathie (DIC), arterielle Verschlußkrankheit, fibrinolytische
Therapie
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
PSA frei
Synonyme: fPSA, Prostata-Spezifisches Antigen
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bei der Blutentnahme werden folgende zeitlichen Abstände empfohlen:
Prostatamassage: ca. 3-4 Tage
rektaler Ultraschall: ca. 1-2 Tage
rektale digitale Unt.: ca. 1-2 Tage
Prostata-Nadelbiopsie: ca. 2 Wochen
nach Ejakulation: ca. 1-2 Tage
Radfahren: ca. 1-2 Tage
Klinische Indikationen: Verbesserung der Differentialdiagnostik zwischen Prostatakarzinom und
BPH (benigne Prostatahyperplasie)
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
PSA gesamt
Synonyme: Prostata-Spezifisches Antigen, tPSA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung des Prostatakarzioms
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: < 4,0 ng/ml
PSA komplexiert (W)
Synonyme: cPSA
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung des Prostatakarzioms
Methode: CLIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Pseudomonas aeruginosa-Antikörper (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Infektonen mit Pseudomonas aeruginosa
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 333

Pyrimethamin (U)(N)
PTHrP (U)
Synonyme: Parathormon-related Protein
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: EDTA-Blut abnehmen und sofort kühl zentrifugieren, EDTA-Plasma abtrennen.
Anschließend sofort tiefgefrieren und in gefrorener Kühlbox unserem Fahrdienst übergeben.
Klinische Indikationen: - Differentialdiagnose der Hyperkalziämie, insbesondere bei Verdacht auf
Tumorleiden
- Verlaufskontrolle der Tumor-Hyperkalziämie (Mamma-, Nieren-, Prostata, und kleinzelliges
Bronchialkarzinom)
Methode: RIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
PTT
Synonyme: partielle Thromboplastinzeit
Probenmaterial: 1 ml Citrat-Plasma
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: 25,1 – 36,5 Sekunden
Pyrazinamid (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Pyrazinamid-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Pyridinolin im Urin (W)
Synonyme: PYD-Crosslinks
Probenmaterial: 10 ml des 1. Morgenurins
Abnahmehinweise: Wegen der ausgeprägten Tagesrhythmik Urin bis ca. 09.00 Uhr abnehmen; Urin
direkt nach der Abnahme gekühlt (ca. + 2°C – + 8 °C) und lichtgeschützt (Röhrchen mit Alufolie
umwickeln) lagern.
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle, Therapiemonitoring bei erhöhter Knochenresorption
(Osteoporose) und verstärkterm Knorpelabbau
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Pyrimethamin (U)(N)
Synonyme: Handelsname: Daraprim ®
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Pyimethamintherapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
334 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Pyruvat im Plasma (W)
Pyruvat im Plasma (W)
Probenmaterial: 2 ml NaF-Blut
Abnahmehinweise: Blut direkt nach der Entnahme aus möglichst ungestauter Vene zentrifugieren,
Plasma abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Abklärung einer Gewebehypoxie, Laktatazidose oder vermuteter mitochondrialer
Stoffwechselstörungen
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Pyruvatkinase in Erythrozyten (U)
Probenmaterial: 5 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Blut nach der Abnahme kühl (+ 2°C – + 8°C) lagern, nicht einfrieren
Klinische Indikationen: Verdacht auf Pyruvatkinase-Mangel bei Splenomegalie, hämolytischer
Anämie, Cholelithiasis
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Q-Fieber (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Quecksilber im Blut (W)
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Plasma oder Serum
Klinische Indikationen: Beurteilung der Quecksilberbelastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Quecksilber im Haar (U)
Probenmaterial: 500 mg Haar vom Haaransatz (kopfnah)
Klinische Indikationen: Zusätzliche Beurteilung der Quecksilber-Belastung
Methode: AAS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Quecksilber im Speichel (W)
Probenmaterial: 5 ml Speichel
Abnahmehinweise: Bei Anwendung des Kaugummitestes bitte Entnahmezeitpunkt angeben
Klinische Indikationen: Beurteilung der Quecksilberbelastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 335

Reboxetin (U)
Quecksilber im Urin (W)
Probenmaterial: 5 ml Spontanurin oder
5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
Abnahmehinweise: Bei Durchführung des Mobilisierungstestes (DMPS-Test) bitte die Entnahmezeit
angeben, bitte die Urinsammelmenge angeben
Klinische Indikationen: Beurteilung der Quecksilberbelastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Quetiapin (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Quetiapin-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Quick-Wert
Synonyme: TPZ, INR
Probenmaterial: 1 ml Citrat-Blut
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Suchtest für erworbene oder angeborene Gerinnungsstörungen,
Kontrolle der Therapie mit Vitamin K-Antagonisten (oralen Antikoagulantien),
Verlaufskontrolle bei Vitamin K-Mangelzuständen,
Beurteilung der Syntheseleistung der Leber,
Hyperfibrinolyse
Methode: Koagulometrie
Referenzbereiche: 70 – 130 %
Quotient APO B/APO A1
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nach einer Nahrungskarenz von ca. 10-14 Stunden
Klinische Indikationen: Ermittlung des Arterioklerose-Risikos
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Reboxetin (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutabnahme ca. 1 – 4 h nach Gabe von 4 mg Reboxetin,
Fließgleichgewicht wird nach ca. 5 Tagen erreicht.
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Reboxetin-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
336 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Reiber Schema
Reiber Schema
Probenmaterial: 2 ml Liquor und 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen.
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufsbeurteilung akuter und chronischer ZNS-
Erkrankungen
Methode: Nephelometrie, Quotientenberechnung und Darstellung als Quotientendiagramm
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Renin direkt
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: Blutentnahme nach 30 Minuten liegen oder normaler körperlicher Aktivität.
Medikamente mit Einfluss auf das Renin, wenn möglich, absetzen.
Zur Vermeidung einer Hämolyse Blut direkt nach der Entnahme zentrifugieren, Plasma abpipettieren
und einfrieren (ca. -20°C).
Klinische Indikationen: Diagnose des Hyper- und Hypoaldosteronismus, Verdacht auf ektope Reninproduktion,
Abklärung einer Hypertonie
Methode: CLIA
Referenzbereiche: Erwachsene
aufrechte Position: 4,4 – 46,1 µIU/ml
liegende Position: 2,8 – 39,9 µIU/ml
Reptilase-Zeit (U)
Probenmaterial: 2 ml Citrat-Blut
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Nicht messbare (ungerinnbare) Thrombinzeit-Bestimmung
Nachweis einer Heparintherapie,
Hypo-/Dysfibrinogenämie
Methode: Einphasengerinnungstest
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Retikulozyten
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Proben werden bis zur tagesgleichen Abarbeitung bei Raumtemperatur aufbewahrt.
Klinische Indikationen: Differenzierung der hypo- normo- und hyperregenerativen Anämien, Ermittlung
der Knochenmarkaktivität bei normzytärer Anämie, Therapiekontrolle bei Mangelanmämien
Methode: Streulicht-Methode
Referenzbereiche: 7 – 15 Promille
Retikulozyten-Hb
Synonyme: CHr, RET-Y, RET-HE
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 337

Rickettsien-Antikörper (IgM) (U)
Abnahmehinweise: Proben werden bis zur tagesgleichen Abarbeitung bei Raumtemperatur aufbewahrt.
Klinische Indikationen: Diagnose und Therapiemonitoring des Eisenmangels
Methode: Streulicht-Methode
Referenzbereiche: 28 – 35 pg
Retinol-bindendes Protein (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Differentialdiagnostik der Proteinurien.
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 3,0 – 6,0 mg/dl
Rhagozyten im Punktat
Synonyme: Rhagozyten
Probenmaterial: 1 ml Synovialflüssigkeit (Gelenkpunktat)
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei der Synovialanalyse
Methode: Mikroskopie
Referenzbereiche: negativ
Rhesusfaktor
Methode: Agglutination
Rheumafaktor
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufskontrolle bei Erkrankungen des rheumatischen Formenkreises
wie rheumatoide Arthritis (RA), Kollagenosen, Kryoglobulinämie
Methode: Immunturbidimetrie
Referenzbereiche: < 14 IU/ml
Rickettsien-Antikörper (IgG) (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 7-21 Tage
Klinische Indikationen: Verdacht auf Rickettsiose bei entsprechender Reiseanamnese sowie Fieber,
makulopapulöses Exanthem (Fleckfieber), Kopfschmerz, Konjunktivitis, Hepatitis, selten schwere Organmanisfestationen
wie Pneumonie, Meningitis, Sepsis und Myokarditis
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Rickettsien-Antikörper (IgM) (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 7-21 Tage
Klinische Indikationen: Verdacht auf Rickettsiose bei entsprechender Reiseanamnese sowie Fieber,
338 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Rifabutin (W)
makulopapulöses Exanthem (Fleckfieber), Kopfschmerz, Konjunktivitis, Hepatitis, selten schwere Organmanisfestationen
wie Pneumonie, Meningitis, Sepsis und Myokarditis
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Rifabutin (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Rifabutin-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Rifampicin (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum, lichtgeschützt
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Rifampicin-Therapie
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Risperidon (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bitte beachten Sie, dass bei Verwendung von gelhaltigen Röhrchen die Resultate
niedriger ausfallen können. Wir empfehlen, das Blut 30 min nach Abnahme zu zentrifugieren, das
Serum abzutrennen und in ein zweites Neutral-Röhrchen zu überführen.
Klinische Indikationen: Monitoring einer Risperidon-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Ristocetin-Cofaktor (U)
Synonyme: vWF:RCo, von-Willebrand-Faktor-Aktiviät
Probenmaterial: 2 ml Citrat-Blut
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Abklärung einer unklaren Blutungsneigung,
Diagnostik des von-Willebrand-Syndroms als Eingangstest
Methode: Agglutination
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Ritalinsäure (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme ca. 2 – 3 Stunden nach oraler Gabe.
Die Probe bitte lichtgeschützt aufbewahren.
Klinische Indikationen: Plausibilitätskontrolle für die Einnahme von Methylphenidat
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: < 250 ng/ml
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 339

Rötelnvirus-Antikörper (IgG-Suchtest)
Rotavirus-Antigen im Stuhl
Synonyme: Gastroenteritis
Probenmaterial: 2 g Stuhl
Klinische Indikationen: Verdacht auf Rotavirus-Infektion, insbesondere bei akuter Diarrhoe und
Gastroenteritis bei Säuglingen, und Kindern
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ
Rotavirus-Antikörper (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit ist ca. 1-3 Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf RotavirusInfektion bei akuter Gastroenteritis, insbesondere bei
Säuglingen und Kleinkindern, selten bei Erwachsenen
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Rötelnvirus-Antikörper (IgG, Liquor/Serum)
Synonyme: Röteln-AI, MRZ-Reaktion
Probenmaterial: 1 ml Liquor und
1 ml Serum
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen.
Klinische Indikationen: Nachweis einer intrathekalen IgG-Synthese gegen Rötelnvirus bei akuten
und auch chronischen ZNS-Erkrankungen.
Methode: ELISA
Referenzbereiche: 0,6 – 1,5 Index
Rötelnvirus-Antikörper (IgG-Avidität) (W)
Synonyme: Röteln-Avidität, Rubella, Rubeolen
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung im Rahmen der Diagnostik einer Rötelnvirus-
Infektion zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes
Methode: Aviditätstest
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Rötelnvirus-Antikörper (IgG-Suchtest)
Synonyme: Rubella, Rubeolen
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkuabtionszeit/das diagnostische Fenster beträgt ca. 14-21 Tage.
Klinische Indikationen: Bestimmung der Immunitätslage nach Impfung bzw. nach durchgemachter
Infektion oder Rötelnviruskontakt. Symptomatik: kleinfleckiges Rötelnexanthem, Lymphadenopathie,
Arthralgie, Splenomegalie, Rötelnembryopathie (z.B. Mißbildungen von Herz und Augen, Taubheit,
Hirndefekte, bei Infektion der Mutter im 1. Trimenon) Infektiosität: bereits 5-7 Tage vor Exanthemausbruch.
Wichtig ist der Hinweis auf eine bestehende Schwangerschaft, bitt auch Anamnese,
340 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Rötelnkontakt, vorangegangene Schutzimpfung und evtl. Vorbefunde mitteilen.
Methode: CMIA
Referenzbereiche: negativ: < 10 IE/ml (keine Immunität)
positiv: >= 10 IE/ml (Immunität)
Rötelnvirus-Antikörper (IgM-Suchtest)
Rötelnvirus-Antikörper (IgM-Suchtest)
Synonyme: Rubella, Rubeolen
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkuabtionszeit/das diagnostische Fenster beträgt ca. 14-21 Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf akute Rötelnvirusinfektion, insbesondere nach Kontakt.
Symptomatik: kleinfleckiges Rötelnexanthem,
Lymphadenopathie, Arthralgie, Splenomegalie,
Rötelnembryopathie (z.B. Mißbildungen von Herz und Augen, Taubheit, Hirndefekte, bei Infektion
der Mutter im 1. Trimenon)
Infektiosität: bereits 5-7 Tage vor Exanthemausbruch.
Wichtig ist der Hinweis auf eine bestehende Schwangerschaft, bitt auch Anamnese, Rötelnkontakt,
vorangegangene Schutzimpfung und evtl. Vorbefunde mitteilen.
Methode: CMIA
Referenzbereiche: negativ (Index < 1,2)
Rötelnvirus-RNA-Nachweis (W)
Synonyme: Röteln-PCR, Rubella, Rubeolen
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
1 ml Liquor
5 ml Urin
Fruchtwasser
Nasopharyngealsekret
Bronchialsekret
Klinische Indikationen: Verdacht auf Rötelnvirus-Infektion, insbesondere in der Schwangerschaft
(pränatale Diagnostik) und bei Verdacht auf konnatale Infektion
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
RSV-Antigen-Nachweis
Synonyme: Respiratory Syncytial-Virus-Schnelltest
Probenmaterial: Tracheal-Sekret
Nasopharyngeal-Sekret
Abstrichmaterial
Abnahmehinweise: Die Inkubationzeit beträgt ca. 3-6 Tage
Klinische Indikationen: Kindliche Atemwegsinfektionen, atypische Pneumonien (Säuglinge, auch
Kinder und Erwachsene), Bronchiolitis, Krupp
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 341

Saccharomyces cerevisiae-Antikörper (W)
RSV-Antikörper (IgA) (W)
Synonyme: Respiratory Syncytial-Virus
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationzeit beträgt ca. 3-6 Tage; das diagnostische Fenster bis zum serologischen
Nachweis beträgt ca. 10-14 Tage.
Klinische Indikationen: Kindliche Atemwegsinfektionen, atypische Pneumonien (Säuglinge, auch
Kinder und Erwachsene), Bronchiolitis, Krupp
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
RSV-Antikörper (IgG) (W)
Synonyme: Respiratory Syncytial-Virus
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationzeit beträgt ca. 3-6 Tage; das diagnostische Fenster bis zum serologischen
Nachweis beträgt ca. 10-14 Tage.
Klinische Indikationen: Kindliche Atemwegsinfektionen, atypische Pneumonien (Säuglinge, auch
Kinder und Erwachsene), Bronchiolitis, Krupp
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
RSV-RNA-Nachweis
Synonyme: RSV-PCR, Respiratory Syncytial-Virus
Probenmaterial: Nasopharyngealabstrich
1 ml respiratorisches Material
Abnahmehinweise: Die Inkubationzeit beträgt ca. 3-6 Tage
Klinische Indikationen: Kindliche Atemwegsinfektionen, atypische Pneumonien (Säuglinge, auch
Kinder und Erwachsene), Bronchiolitis, Krupp
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Rufinamid (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring einer Rufinamid-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Saccharomyces cerevisiae-Antikörper (W)
Synonyme: ASCA, Morbus Crohn
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei chronisch-entzündlichen Darmerkrankungen, insbesondere
bei Verdacht auf Morbus Crohn
Methode: ELISA
Referenzbereiche: < 25 U/ml
342 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Salicylate (W)
Synonyme: ASS
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamentengabe
Klinische Indikationen: Monitoring einer Salicylat-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Salmonella paratyphi B-Antikörper (U)(N)
Salicylate (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 7-14 Tage. Bei der akuten Erkrankung ist
der Erregernachweis(z.B. aus Stuhlprobe) die Untersuchung der Wahl
Klinische Indikationen: Diagnose einer Salmonellen-Infektion (Brechdurchfall, Enteritis, Arthritis
Methode: Widal-Agglutination
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Salmonella typhi-Antikörper (H-Antigene) (U)(N)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 7-14 Tage. Bei der akuten Erkrankung ist
der Erregernachweis(z.B. aus Stuhlprobe) die Untersuchung der Wahl
Klinische Indikationen: Diagnose einer Salmonellen-Infektion (Brechdurchfall, Enteritis, Arthritis,
Untersuchung nach Impfung gegen Typhus.
Methode: Widal-Agglutination
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Salmonellen-Antikörper
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 7-14 Tage. Bei der akuten Erkrankung ist
der Erregernachweis(z.B. aus Stuhlprobe) die Untersuchung der Wahl
Klinische Indikationen: Diagnose einer Salmonellen-Infektion (Brechdurchfall, Enteritis, Arthritis,
Untersuchung nach Impfung gegen Typhus oder Paratyphus.
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ (< 1,0 Ratio)
Sandfliegen-Fieber-Virus-Antikörper (W)
Synonyme: Sandfly Fever, Sandmückenfieber, Pappataci-Fieber, Drei-Tage-Fieber
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 3 – 5 Tage
Klinische Indikationen: Verdacht auf Sandfliegen-Fieber bei entsprechender Reiseanamnese (Mittelmeerraum
bis Pakistan) sowie klinischer Symptomatik: hohes Fieber, Kopfschmerzen, Konjunktivitis,
Arthralgien, aseptische Meningitis.
Als Erregerreservoir gelten Nutztiere und Mäuse. Die Übertragung erfolgt durch Stiche von Sandfliegen.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 343

Schistosomen-Antikörper (U)
Methode: Immunoblot
Referenzbereiche: negativ
Saure Phosphatase
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Serum/Plasma bei längerem Probentransport
abzentrifugiert werden.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Knochentumoren sowie Knochenmetastasen, Morbus Gaucher
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: Frauen: < 6,5 U/l
Männer: < 6,6 U/l
Saure Prostata-Phosphatase
Synonyme: PAP
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Die Bestimmung ist zur Diagnose des Prostatakarzinoms nicht ausreichend
sensitiv
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Saures α-1-Glycoprotein (U)
Synonyme: Orosomucoid
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufsbeurteilung akuter und chronischer Akute-Phase-
Reaktionen bzw. Entzündungen sowie von Zellnekrosen und Tumoren
Methode: Nephelometrie
Referenzbereiche: 0,5 – 1,2 g/l
SCC
Synonyme: Squamous cell carcinoma antigen
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapie- und Verlaufskontrolle bei Plattenepithelkarzinomen von Zervix,
Lunge, Ösophagus, Analkanal, HNO-Bereich
Methode: CMIA
Referenzbereiche: < 2,5 ng/ml
Schilddrüsen-Autoantikörper
Schistosomen-Antikörper (U)
Synonyme: Bilharziose
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Serologie ist bedeutsam in den ersten drei Monaten der Infektion bis zum
Ausscheiden der Schistosomen-Eier im Stuhl oder Urin (Präpatenz).
344 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Schwefel (U)
Klinische Indikationen: Verdacht auf Bilharziose, insbesondere bei entsprechender Reiseanamnese
(z.B. Afrika, Ägypten, Zypern, Indien) bzw. klinischen Symptomen wie: Hämaturie, Zystitis, blutige
Stühle, Hepatosplenomegalie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Schwefel (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum oder
5 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
Klinische Indikationen: Verdacht auf Schwefelintoxikation
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
SDS-PAGE-Elektrophorese
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze) oder
10 ml eines 2. Morgenurins
Methode: PAGE
Nephelometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Selen im Blut (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Selenmangel oder Selen-Intoxikation, Monitoring einer Selen-
Therapie
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Selen im Urin (U)
Probenmaterial: 10 ml Spontanurin
Klinische Indikationen: Verdacht auf Selenmangel oder Selen-Intoxikation, Monitoring einer Selen-
Therapie
Methode: AAS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Septin9 (W)(N)
Synonyme: Epi proColon; SEPT9; mSEPT9
Probenmaterial: 2 x S-Monovette CPDA 8,5 ml
Klinische Indikationen: Früherkennung eines Darmkrebs
Methode: PCR
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 345

Shigellen-Antikörper (W)
Serotonin (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum oder 1 ml EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: Vollblut unmittelbar nach der Gerinnung sowie EDTA-Blut innerhalb von 30
Minuten zentrifugieren, Plasma/Serum abpipettieren und einfrieren (ca. -20°C).
3 Tage vor Abnahme folgende Nahrungsmittel und Medikamente absetzen:
Ananas, Auberginen, Avocados, Bananen, Johannisbeeren, Melonen, Mirabellen, Stachelbeeren, Tomaten,
Walnüsse, Zwetschgen, Chlorpromazin, Mephenesincarbamat, Methocarbamol.
Paracetamol und ASS sollten ebenfalls 2 Tage vor der Untersuchung nicht mehr eingenommen werden.
Klinische Indikationen: Karzinoid-Diagnostik
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Serotonin im Urin (W)
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (gesammelt über 5-10 ml Salzsäure oder
Eisessig)
Abnahmehinweise: Bitte Sammelmenge und Sammelzeit (falls geringer als 24 Stunden) angeben,
den Urin kühl sammeln und anschließend die Probe einfrieren (ca. – 20°C).
Klinische Indikationen: Verdacht auf Karzinoid
Methode: EIA
Referenzbereiche: 50 – 250 µg/24 Std.
Sertralin (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutabnahme gegebenenfalls vor der nächsten Tablettenabnahme
Klinische Indikationen: Therapiekontolle/Monitoring einer Sertralin-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
SHBG
Synonyme: Sexualhormon-bindendes Globulin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei verminderter oder erhöhter Testosteronkonzentration
Methode: CMIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Shigellen-Antikörper (W)
Synonyme: Ruhr
Probenmaterial: 3 ml Serum
Abnahmehinweise: Das diagnostische Fenster beträgt ca. 7-14 Tage. Bei der akuten Erkrankung ist
der Erregernachweis(z.B. aus Stuhlprobe) die Untersuchung der Wahl
Klinische Indikationen: Die Diagnose der akuten Shigellose erfolgt ausschließlich durch den direkten
Erregernachweis.
346 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Sialinsäure (U)(N)
Die serologische Diagnostik hat ihre Bedeutung bei retrospektiven epidemiologischen Untersuchungen
oder der Abklärung einer parainfektiösen bzw. postenteritischen Arthritis
Methode: Widal-Agglutination
Referenzbereiche: < 1:50 Titer
Sialinsäure (U)(N)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Sialinsäure-Speicherkrankheit (Salla-Syndrom, SSD) mit:
- Hydrops fetalis, Ascites
- Muskelhypotonie
- Hepatosplenomegalie
- vergröberte Gesichtszüge
- Knochenfehlbildungen
- schwere Bewegungsstörung
- geistige Retardierung
- Krämpfe
Methode: HPLC
Referenzbereiche: < 2,6 mmol/l
Silber im Blut/Serum (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Beurteilung einer Silber-Belastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: < 0,3 µg/l
Silber im Speichel (U)
Probenmaterial: 2 ml Speichel
Abnahmehinweise: Bei Durchführung des Kaugummitestes Entnahmezeit angeben
Klinische Indikationen: Beurteilung einer Silber-Belastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Silber im Urin (U)
Probenmaterial: 10 ml Spontanurin
Klinische Indikationen: Beurteilung einer Silber-Belastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: < 0,9 µg/l
Silicium (U)
Synonyme: Silizium
Probenmaterial: 2 ml Serum (Neutralmonovetten verwenden)
Abnahmehinweise: Neutralmonovetten ohne jegliche Zusätze verwenden. Kein Gel. Keine
Kügelchen. Keine Glasröhrchen.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 347

Sotalol (U)
Klinische Indikationen: Beurteilung einer Silicium-Belastung, Intoxikation
Methode: AAS
Referenzbereiche: < 230 µg/l
Sirolimus (W)
Synonyme: SRL, Rapamycin, Rapamune ®
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Zur Bestimmung des Talspiegels Blutentnahme direkt vor der nächsten Medikamentengabe.
Das EDTA-Blut nach Abnahme direkt lichtgeschützt und gekühlt (+ 2°C – + 8°C) aufbewahren.
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Sirolimus-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Somatomedin C im Serum
Synonyme: Insulin Like Growth Factor I, IGF-I
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Vollblut direkt nach der Gerinnung zentrifugieren, Serum abpipettieren und einfrieren
(ca. -20°C)
Klinische Indikationen: Diagnostik von Wachstumsstörungen im Kindesalter sowie von Akromegalie
Methode: CLIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Somatotropes Hormon
Synonyme: STH, hGH, human Growth Hormon, Wachstumshormon
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bei der Blutentnahme Stress-Situationen vermeiden, Nüchternentnahme morgens
um 08.00 Uhr (ca. 12 Stunden Nahrungskarenz), Medikamente mit Einfluss auf STH möglichst
3-4 Tage vorher absetzen
Klinische Indikationen: Differentialdiagnostik von Wachstumsstörungen, Störungen der Hypophysenvorderlappenfunktion
(Tumor, Insuffizienz)
Methode: CLIA
Referenzbereiche: Frauen: < 6,9 ng/ml
Männer: < 1,2 ng/ml
Sotalol (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Sotalol-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 1 – 3 mg/l
348 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Sterinämie-Screening (W)
Sterinämie-Screening (W)
Synonyme: Smith-Lemli-Opitz-Syndrom
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Das Blut bitte nach der Abnahme zentrifugieren, das Serum bzw. Plasma in ein
separates Röhrchen ohne Zusätze abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Verdacht auf Smith-Lemli-Opitz-Syndrom bei:
- geistige Retardierung
- Wachstumsprobleme
- Entwicklungsstörungen
- Dysmorphe Gesichtsveränderungen
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Stiripentol (U)
Synonyme: Handelsname: Diacomit ®
Probenmaterial: 1 ml Serum
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Strongyloides stercoralis-Antikörper (U)
Synonyme: Nematoden
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Serologische Diagnostik bei unklaren Abdominalschmerzen, Übelkeit,
Nüchternerbrechen, Eosinophilie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Strontium (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Beurteilung der Strontium-Belastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: 10 – 70 µg/l
Styrol im Blut (U)
Probenmaterial: Vollblut, spezielle Abnahmemonovetten (Rollrandröhrchen) verwenden
Abnahmehinweise: Spezielle Abnahmemonovetten können angefordert werden.
Klinische Indikationen: Beurteilung der Styrolbelastung, Intoxikation
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Sulpirid (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Sulpirid-Therapie
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 349

T3 gesamt
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Sultiam
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Sultiam-Therapie, Intoxikation
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Superoxiddismutase-Aktivität (W)
Synonyme: SOD
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Blut
Klinische Indikationen: Beurteilung der antioxidativen Kapazität
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
t,t-Muconsäure (U)
Probenmaterial: 1 ml Urin
Klinische Indikationen: Beurteilung der Benzolbelastung
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
T-Lymphozyten
Synonyme: CD3-Zellen
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Vollblut
Abnahmehinweise: EDTA-Monovette direkt nach der Abnahme durch Schwenken gründlich mischen.
Klinische Indikationen: Primäre und sekundäre Immundefekte, Monitoring der HIV-Infektion,
hämatologische Systemerkrankungen
Methode: Durchflusszytometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
T3 gesamt
Synonyme: Trijodthyronin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Verdacht auf eine Schilddrüsenfunktionsstörung,
insbesondere bei pathologischem TSH basal.
Die Untersuchung ist weitgehend zugunsten der Bestimmung des biologisch aktiven → fT3, Seite 247
verlassen worden.
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: Erwachsene: 0,8 – 2,0 ng/ml
350 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

T4 gesamt
T4 gesamt
Synonyme: Thyroxin gesamt
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Verdacht auf eine Schilddrüsenfunktionsstörung,
insbesondere bei pathologischem → TSH basal, Seite 367.
Die Untersuchung ist weitgehend zugunsten der Bestimmung des biologisch aktiven → fT4, Seite 247
verlassen worden.
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: Erwachsene: 5,1 – 14,1 µg/dl
Tamoxifen (U)
Synonyme: Antiestrogen
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Plasma, lichtgeschützt
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Tamoxifen-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Tau-Protein im Liquor
Probenmaterial: 1 ml Liquor in Polypropylen-Röhrchen
Abnahmehinweise: Abnahme in anderen Probengefäßen kann zur Adsorption an der Gefäßwand
führen (falsch-niedrige Messwerte)
Klinische Indikationen: DD des M. Alzheimer, der CJD (Creutzfeldt-Jakob-Erkrankung, weiterer
Demenzformen
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Tb-Interferon-Test (N)
Synonyme: Interferon-gamma-release-assay (IGRA), Quantiferon
Probenmaterial: 9 ml Lithium-Heparinblut
Kinder: 5 ml Lithium-Heparinblut
Abnahmehinweise: Blut tagesgleich ins Labor.
Lagerung bei Raumtemperatur.
Klinische Indikationen: - Verdacht auf eine aktive oder latente Tuberkulose
- Umgebungsuntersuchung von Kontaktpersonen
- Screening von Risikopatienten für eine Tuberkulose
- Screening von Personen im Gesundheitswesen
- Nachweis einer latenten Infektion vor immunsuppressiver Therapie
Der Test ist NICHT geeignet zur:
- Therapiekontrolle bei bestehender Tuberkulose
- Tuberkulose-Diagnostik bei bereits anbehandelten Patienten
Methode: ELISA
Referenzbereiche: negativ
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 351

Testosteron, frei (W)
TBG (W)
Synonyme: Thyroxin-bindendes Globulin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Abklärung von T4-und T3-Konzentrationen, die nicht mit der TSH-
Konzentration oder dem klinischen Bild in Einklang zu bringen sind,
nicht erklärbare Diskrepanz zwischen T4 und FT4,
stark erhöhtes oder erniedrigtes T4,
Verdacht auf kongenitalen TBG-Mangel.
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Teicoplanin (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Teicoplanin-Therapie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Temazepam (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Temazepam-Therapie, Missbrauchskontrolle
Methode: HPLC
Referenzbereiche: therapeutischer Bereich: 200 – 800 ng/ml
toxisch ab: > 1000 ng/ml
Testosteron
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Wegen starker zirkadianer Schwankungen Blutentnahme morgens (ca. 8 Uhr)
empfohlen
Klinische Indikationen: Männer: Hypogonadismus, Kryptorchismus, erektile Dysfunktion, Hodentumoren,
Therapiemonitoring
Frauen: Ovarialtumoren, Virilisierung
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Testosteron, frei (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Wegen starker zirkadianer Schwankungen Blutentnahme morgens (ca. 8 Uhr)
empfohlen
Klinische Indikationen: Männer: Hypogonadismus, Kryptorchismus, erektile Dysfunktion, Hodentumoren,
Therapiemonitoring,
insbesondere bei gestörter Eiweißbindung
Methode: RIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
352 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Tetanus-Toxoid-Antikörper im Serum
Tetanus-Toxoid-Antikörper im Serum
Synonyme: Tetanus-Antitoxin, Tetanustoxin-Ak
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Der Test ist NUR zur Überprüfung der Immunitätslage geeignet.
Klinische Indikationen: Überprüfung der Immunitätslage
Methode: EIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Tetrachlorethen (U)
Synonyme: PER, Perchlorethylen
Probenmaterial: Vollblut, spezielle Abnahmemonovetten verwenden
Abnahmehinweise: Spezielle Abnahmemonovetten können angefordert werden.
Klinische Indikationen: Beurteilung der Tetrachlorethen-Belastung, Intoxikation
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Tetrachlormethan (U)(N)
Synonyme: Tetrachlorkohlenstoff
Probenmaterial: Vollblut, spezielle Abnahmemonovetten verwenden
Abnahmehinweise: Spezielle Abnahmemonovetten können angefordert werden.
Klinische Indikationen: Beurteilung einer Tetrachlormethan-Belastung, Intoxikation
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Tetrahydro-Aldosteron im Urin (U)
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: Bitte unbedingt die Sammelmenge angeben; Urin
während der Sammelperiode kühl lagern.
Ausreichend Ruhezeit während der Sammelperiode berücksichtigen.
Wenn möglich Antihypertensiva 8 Stunden vorher, Aldosteronantagonisten ca. 4 Wochen vorher absetzen.
Klinische Indikationen: Weitere Diagnostik bei Verdacht auf primären Hyperaldosteronismus
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Tetrahydrofuran (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum oder
10 ml Urin
Klinische Indikationen: Beurteilung einer Tetrahydrofuran-Belastung, Intoxikation
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 353

Thiocyanat im Blut (U)
Tetrazepam (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Tetrazepam-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: therapeutischer Bereich: 100 – 600 ng/ml
Thallium im Blut/Serum (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme am Ende der Expositonszeit (Schichtende)
Klinische Indikationen: Beurteilung der Thallium-Belastung, Intoxikation
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Thallium im Urin (W)
Probenmaterial: 5 ml Urin
Abnahmehinweise: Probennahme am Ende der Exposition (Schichtende)
Klinische Indikationen: Beurteilung der Thallium-Belastung, Intoxikation
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Theophyllin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bestimmung des Talspiegels: Entnahme direkt vor nächster Gabe Bestimmung
des Spitzenspiegels: ca. 60 Minuten nach Gabe, bei Retardpräparaten nach ca. 4 Stunden
Klinische Indikationen: Monitoring einer Theopyllin-Therapie
Methode: EIA
Referenzbereiche: therapeutischer Bereich: 10 – 20 µg/ml
Thiamazol (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Thiamazol-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Thiocyanat im Blut (U)
Synonyme: Rhodanid
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse sollte das Blut nach dr Abnahme zentrifugiert
und das Serum in ein separates Röhrchen ohne Zusätze abpipettiert werden.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Intoxikation, Ingestion bzw. Inhalation
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
354 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Thiopental (W)(N)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Thiopental-Therapie
Methode: GC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Thiopurin-S-Methyltransferase (W)
Thiopental (W)(N)
Synonyme: TPMT-Phänotypisierung
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Das EDTA-Blut NICHT einfrieren!
Einflussfaktoren:
Bei Bluttransfusionen bis zu 3 Monaten vor der
Blutentnahme kann es zu einer Erhöhung der TPMT-Aktivität durch patientenfremde Erythrozyten
kommen.
Als Begleitmedikation verabreichte Medikamente
können die TPMT-Aktivität beeinflussen. Eine
Steigerung wird durch Thiopurine, eine Hemmung wird durch Sulfasalazin und Mesalazin verursacht.
Klinische Indikationen: Im Rahmen einer geplanten oder durchgeführten Therapie mit Thiopurinen
(Azathioprin, 6-Mercaptopurin, 6-Thioguanin).
Methode: HPLC
Referenzbereiche: normal: > 20 nmol/gHb*h
heterozygote Schädigung: 10 – 20 nmol/gHb*h
homozygote Schädigung: < 10 nmol/gHb*h
Thiopurin-S-Methyltransferase Genotypisierung (U)(N)
Synonyme: TPMT-Genotypisierung
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Kontamination der Probe bitte ein separates
Probenröhrchen einsenden !
Klinische Indikationen: Im Rahmen einer geplanten oder durchgeführten Therapie mit Thiopurinen
(Azathioprin, 6-Mercaptopurin, 6-Thioguanin).
Methode: PCR
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Thioridazin (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Thioridazin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Thrombin-Antithrombin-Komplex (W)
Synonyme: TAT-Komplex
Probenmaterial: 1 ml Citrat-Plasma
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 355

Thrombozyten-Antikörper (U)
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Verbrauchskoagulagulopathie (DIC), arterielle Verschlusskrankheit
fibrinolytische Therapie
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Thrombinzeit
Synonyme: TZ, Plasmathrombinzeit
Probenmaterial: 1 ml Citrat-Plasma
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Fibrinpolymerisationsstörungen (Dysfibrinogenämie, Fibrin(ogen)-
Spaltprodukte),
Fibrinogenmangel,
Heparin-oder Hirudintherapie,
Verbrauchskoagulopathie
Methode: Koagulometrie
Referenzbereiche: 10,3 – 16,6 Sek.
Thromboplastinzeit
Synonyme: TPZ, Prothrombinzeit, Quick, INR
Referenzbereiche: 70 – 130 %
Thrombozyten
Probenmaterial: Korrekt gefüllte EDTA-Monovette.
Bei EDTA-induzierter Pseudothrombozytopenie Abnahme
einer Citratblut-Monovette.
Abnahmehinweise: Monovette direkt nach der Abnahme durch Schwenken gründlich mischen
Klinische Indikationen: Unklare Blutungen, Abklärung einer Blutungsneigung, Therapiekontrolle
bei Bestrahlung, Chemotherapie u.a., Verdacht auf Knochenmarkerkrankung, Therapiekontrolle bei
Medikemanten
Methode: maschinelle Zellzählung
Referenzbereiche: Erwachsene: 150 – 351 /nl
Thrombozyten-Antikörper (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum (freie Thrombozyten-Antikörper)
2 ml EDTA-Blut (gebundene Thrombozyten-Antikörper)
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei unklarer Thrombozytopenie oder Verdacht auf
Autoimmun-Thrombozytopenie
Methode: EIA (freie Thrombozyten-Antikörper)
Durchflusszytometrie (gebundene Thrombozyten-Antikörper)
Referenzbereiche: negativ
356 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Thymidin-Kinase
Thymidin-Kinase
Synonyme: TK, Thymidinkinase
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring bei Tumoren mit hoher Zellumsatzrate (Proliferationsrate), insbesondere
bei hämatoonkologischen Erkrankungen (Leukämien, Lymphome)
Methode: CLIA
Referenzbereiche: 2,0 – 7,5 U/l
Thyreoglobulin
Synonyme: hTG, TG
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verlaufskontrolle des differenzierten Schilddrüsenkarzinoms, destruierende
Thyreoiditis (Thryeoiditis de Quervain), Thyreotoxicosis factitia
Methode: CMIA
Referenzbereiche: < 4,11 IE/ml
Tiagabin (U)
Synonyme: Gabitril ®
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Tiagabin-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Tiaprid (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Tiaprid-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 1,0 – 2,0 mg/l
Tilidin (U)
Synonyme: Handelsname: Valoron ®
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Tilidin-Therapie, Missbrauchskontrolle
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Tilidin im Urin, qualitativ (U)
Probenmaterial: 10 ml Spontanurin
Klinische Indikationen: Nachweis von Tilidin-Missbrauch.
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: negativ
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 357

Toxic-schock-syndrome-Toxin-Nachweis (U)
tissue-Plasminogen-Aktivator (t-PA) (U)
Synonyme: t-PA immunologisch
Probenmaterial: 2 ml Citrat-Plasma
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Beurteilung des fibrinolytischen Potenzials bei speziellen, meist wissenschaftlichen
Fragestellungen
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Tobramycin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bestimmung des Talspiegels: Entnahme direkt vor nächster Gabe
Bestimmung des Spitzenspiegels: ca. 60 Minuten nach i.v.-Gabe
Klinische Indikationen: Monitoring der Tobramycin-Therapie
Methode: PETNIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Tollwut-Antikörper (U)
Synonyme: Rabies, Lyssa
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Kontaktaufnahme mit dem Nationalen Tollwutreferenzlabor in Wusterhausen
(Tel.: 033979-80186) wird dringend empfohlen
Klinische Indikationen: Feststellung des Immunstatus
Methode: Neutralisationstest
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Toluol im Blut (W)
Probenmaterial: 8 ml NaF-Blut
Klinische Indikationen: Kontrolle der Belastung mit aromatischen Kohlenwasserstoffen am Arbeitsplatz,
Vergiftungsausschluss
Methode: GC
Referenzbereiche: < 20 µg/l
Topiramat (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Monitoring einer Topiramat-Therapie
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Toxic-schock-syndrome-Toxin-Nachweis (U)
Synonyme: TSST-1-PCR, Toxisches Schock-Syndrom, Mikrobiologie
Probenmaterial: Vaginal-, Cervixsekret
Tampons
358 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Toxocara canis-Antikörper (U)
Wundabstriche mit Transportmedium
Klinische Indikationen: Verdacht auf Toxisches Schock-Syndrom bei Risikopatienten mit folgenden
Symptomen:
- Fieber > 39°C
- diffuses makulöses Exanthem
- Hypotonie
- ggf. Multiorganversagen
- Erbrechen, Übelkeit, Diarrhoe
- ausgeprägte Myalgien (Kreatininerhöhung im Serum)
- Hyperämie der Schleimhäute
- Pyurie ohne Nachweis einer Harnwegsinfektion
- Erhöhung von Transaminasen, Bilirubin, AP
- Desorientiertheit, Bewusstseinsstörung
Methode: PCR
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Toxocara canis-Antikörper (U)
Synonyme: Hundespulwurm
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit kann Wochen bis Monate betragen
Klinische Indikationen: Verdacht auf Hundespulwurm-Infektion bei möglichem Risikokontakt
(Tierkontakt, Sandkasten) bzw. klinischer Symptomatik: Eosinophilie, Hepatomegalie, Asthma, einseitige
Augeninfektion, Abdominalschmerzen, Chorioretinitis.
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Toxoplasma gondii-Antikörper (IgG-Avidität) (W)
Synonyme: Toxoplasmose
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkukubationszeit beträgt ca. 2-4 Wochen, das diagnostische Fenster beträgt
ca. 7-21 Tage.
Klinische Indikationen: Bei reaktivem T. gondii-Suchtest sowie Verdacht auf Toxoplasmose nach
Kontakt (z.B. kontaminierte bzw. nicht ausreichend gegarte oder gesäuberte Nahrungsmittel, Katzen,
Katzenkot)
bei grippeähnlichen Symptomen, Lymphadenitis,
bei Immunsupprimierten mit Myokarditis, Enzephalitis, Pneumonie,
in der Schwangerschaft (Gefahr der konnatalen Toxoplasmose mit Hydrozephalus, intrazerebralen
Verkalkungen, Retinochorioiditis)
Methode: Aviditätstest
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Toxoplasma gondii-Antikörper (IgG-Suchtest)
Synonyme: Toxoplasmose
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkukubationszeit beträgt ca. 2-4 Wochen, das diagnostische Fenster beträgt
ca. 7-21 Tage.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 359

Toxoplasmose-Antikörper (Liquor/Serum) (W)
Klinische Indikationen: Verdacht auf Toxoplasmose nach Kontakt (z.B. kontaminierte bzw. nicht
ausreichend gegarte oder gesäuberte Nahrungsmittel, Katzen, Katzenkot)
bei grippeähnlichen Symptomen, Lymphadenitis,
bei Immunsupprimierten mit Myokarditis, Enzephalitis, Pneumonie,
in der Schwangerschaft (Gefahr der konnatalen Toxoplasmose mit Hydrozephalus, intrazerebralen
Verkalkungen, Retinochorioiditis)
Methode: CMIA
Referenzbereiche: nicht reaktiv: < 1,6 IE/ml
Grauzone: 1,6 – 2,9 IE/ml
reaktiv: >= 3,0 IE/ml
Toxoplasma gondii-Antikörper (IgM-Suchtest)
Synonyme: Toxoplasmose
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkukubationszeit beträgt ca. 2-4 Wochen, das diagnostische Fenster beträgt
ca. 7-21 Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Toxoplasmose nach Kontakt (z.B. kontaminierte bzw. nicht
ausreichend gegarte oder gesäuberte Nahrungsmittel, Katzen, Katzenkot) bei grippeähnlichen Symptomen,
Lymphadenitis, bei Immunsupprimierten mit Myokarditis, Enzephalitis, Pneumonie, in
der Schwangerschaft (Gefahr der konnatalen Toxoplasmose mit Hydrozephalus, intrazerebralen
Verkalkungen, Retinochorioiditis)
Methode: CMIA
Referenzbereiche: nicht reaktiv: < 0,5 Index
Grauzone: 0,5 – 0,6 Index
reaktiv: > 0,6 Index
Toxoplasma gondii-DNA-Nachweis (W)
Synonyme: Toxoplasma gondii-PCR
Probenmaterial: je nach Indikation:
1 ml Liquor
3 ml EDTA-Blut
Bronchialsekret
Fruchtwasser
Abnahmehinweise: Für diese Untersuchung ist ein separates Röhrchen zu entnehmen.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Primärinfektion mit Toxoplasma gondii und auffälliger Ultraschalluntersuchung
(Hydrozephalus, intrazerebrale Verkalkungen) in der Schwangerschaft,
Verdacht auf konnatale Toxoplasmose,
Verdacht auf ZNS-Toxoplasmose bei Immunsuppression
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Toxoplasmose-Antikörper (Liquor/Serum) (W)
Synonyme: Toxoplasmose-AI
Probenmaterial: 1 ml Serum und 1 ml Liquor
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen.
360 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Toxoplasmose-Serologie
Klinische Indikationen: Nachweis einer intrathekalen Synthese von Antikörpern gegen Toxoplasma
gondii bei Verdacht auf eine Enzephalitis durch Toxoplasma gondii.
Methode: IFT
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Toxoplasmose-Serologie
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkukubationszeit beträgt ca. 2-4 Wochen, das diagnostische Fenster beträgt
ca. 7-21 Tage.
Klinische Indikationen: Diagnose, Bestätigung oder Eingrenzung des Infektionszeitpunktes bei
Verdacht auf Toxoplasmose nach Kontakt (z.B. kontaminierte bzw. nicht ausreichend gegarte oder
gesäuberte Nahrungsmittel, Katzen, Katzenkot)
bei grippeähnlichen Symptomen, Lymphadenitis,
bei Immunsupprimierten mit Myokarditis, Enzephalitis, Pneumonie,
in der Schwangerschaft (Gefahr der konnatalen Toxoplasmose mit Hydrozephalus, intrazerebralen
Verkalkungen, Retinochorioiditis)
Referenzbereiche: s. Befundbericht
TPA
Synonyme: Tissue Polypeptide Antigen
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise:
Klinische Indikationen: Aufgrund verminderter Spezifität wurde die Untersuchung weitgehend verlassen
Methode: CLIA
Referenzbereiche: < 75 U/l
TPPA (Lues-Suchreaktion)
Synonyme: Treponema-pallidum-Partikel-Assay, Syphilis
Probenmaterial: 1 ml Serum und/oder
1 ml Liquor
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 14 (3-90) Tage. Das diagnostische Fenster beträgt
ca. 3-5 Wochen.
Klinische Indikationen: Verdacht auf eine Treponema pallidum-Infektion (Lues, Syphilis), insbesondere
bei unklarem Exanthem, Schwangerschaftsvorsorge
Methode: Partikelagglutination
Referenzbereiche: negativ
Tramadol (U)(N)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Tramadol-Therapie, Missbrauchskontrolle
Methode: HPLC
Referenzbereiche: therapeutischer Bereich: 100 – 800 ng/ml
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 361

TRAP 5b (W)
Transferrin
Probenmaterial: 1 ml Serum und/oder
10 ml Spontanurin
Klinische Indikationen: Diagnostik und Therapiekontrolle von Eisenmangel und Eisenüberladung
sowie von Eisenverteilungsstörungen
Referenzbereiche: Serum: 2,0 – 3,6 g/l
Urin: < 2,0 mg/l
Transferrinsättigung
Synonyme: TfS%
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Da bereits eine Mikrohämolyse den Messwert für Eisen beeinflussen kann, sollte
das Vollblut innerhalb von 30 Minuten nach der Blutentnahme zentrifugiert und nur das Serum
(hämolysefrei) eingeschickt werden
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufsbeurteilung von Eisenmangel, Eisenüberladung und
Eisenverteilungsstörungen
Referenzbereiche: Erwachsene: 16 – 45 %
Transglutaminase-Antikörper im Stuhl (IgA) (W)(N)
Probenmaterial: 1 g Stuhl
Klinische Indikationen: Screening-Untersuchung bei Verdacht auf Zöliakie bei erschwerter Blutentnahme
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Tranylcypromin (U)
Synonyme: Handelsname: Jatrosom ®
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Tranylcypromintherapie, Missbrauchskontrolle
Methode: HPLC
Referenzbereiche: therapeutischer Bereich: 20 – 50 ng/ml
toxisch ab: > 500 ng/ml
TRAP 5b (W)
Synonyme: Tartrat-resistente Saure Phosphatase
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Wegen der kurzen Haltbarkeit und zur Vermeidung einer die Analyse störenden
Hämolyse sollte das Blut innerhalb von 2 Stunden nach der Blutentnahme zentrifugiert, das Serum in
ein separates Röhrchen abpipettiert und dann eingefroren werden (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle bei Verdacht auf erhöhten Knochenabbau,
insbesondere bei Dialyse-Patienten oder sehr niedriger Kreatinin-Clearance (< 50 ml/min.)
Methode: ELISA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
362 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Trazodon (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Trazodon-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Treponema pallidum Antikörper in Liquor/Serum
Trazodon (U)
Synonyme: Lues-AI, Neurosyphilis
Probenmaterial: 1 ml Liquor und 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen.
Klinische Indikationen: Nachweis einer intrathekalen IgG-Synthese gegen Treponema pallidum bei
Verdacht auf Neurolues
Methode: Partikelagglutination
Referenzbereiche: < 4,0 Index
Treponema pallidum-Antikörper (IgG/IgM)
Synonyme: Lues-Suchreaktion, Lues, Syphilis
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 14 (3-90) Tage. Das diagnostische Fenster beträgt
ca. 3-5 Wochen.
Klinische Indikationen: Verdacht auf eine Treponema pallidum-Infektion (Lues, Syphilis), insbesondere
bei unklarem Exanthem, Schwangerschaftsvorsorge
Methode: CMIA
Referenzbereiche: negativ
Treponema pallidum-Antikörper (IgM-Westernblot) (U)
Synonyme: Lues-Bestätigung, Syphilis
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Bestätigung eines reaktiven Lues-Suchtestes (IgG/IgM)
Methode: Immunoblot
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Trichinella spiralis-Antikörper (U)
Synonyme: Trichinen-Infektion
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 7 Tage; das diagnostische Fenster beträgt ca. 10-
14 Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Infektion mit Trichinella spiralis (Nematode) bei blutiger Diarrhoe,
Muskelschmerzen, Augenödemen und Risikokontakt (nicht ausreichend gegartes Fleisch, meist
Schweinefleisch)
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 363

Trichlorethen (U)(N)
Trichloressigsäure im Urin (U)
Synonyme: TCE, TCA
Probenmaterial: 10 ml Urin
Abnahmehinweise: Urin am Schichtende bzw. nach mehreren vorangegangenen Schichten gewinnen.
Klinische Indikationen: Beurteilung einer Trichloressigsäure-Belastung, Intoxikation
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Trichlorethan im Blut (U)(N)
Synonyme: 1,1,1-Trichlorethan
Probenmaterial: Vollblut, spezielle Abnahmemonovetten verwenden
Abnahmehinweise: Spezielle Abnahmemonovetten können angefordert werden.
Abnahme möglichst unmittelbar nach der Exposition.
Klinische Indikationen: Beurteilung der Trichlorethanbelastung
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Trichlorethanol im Blut (U)
Probenmaterial: Vollblut, spezielle Abnahmemonovetten verwenden
Abnahmehinweise: Spezielle Abnahmemonovetten können angefordert
werden.
Klinische Indikationen: Beurteilung einer Trichlorethanol-Belastung, Intoxikation
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Trichlorethanol im Urin (U)
Synonyme: TCÄ
Probenmaterial: 10 ml Urin
Klinische Indikationen: Beurteilung einer Trichlorethanol-Belastung, Intoxikation
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Trichlorethen (U)(N)
Synonyme: Trichlorethylen, TRI
Probenmaterial: Vollblut, spezielle Abnahmemonovetten verwenden
Abnahmehinweise: Spezielle Abnahmemonovetten können angefordert
werden.
Abnahme möglichst unmittelbar nach der Exposition.
Klinische Indikationen: Beurteilung der Trichlorethylen-Belastung, Intoxikation
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
364 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Trichlormethan im Blut (U)(N)
Trichlormethan im Blut (U)(N)
Synonyme: Chloroform
Probenmaterial: Vollblut, spezielle Abnahmemonovetten verwenden
Abnahmehinweise: Spezielle Abnahmemonovetten können angefordert
werden.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Intoxikation bei entsprechender Anamnese und Symptomen
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Triglyceride
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nüchtern (ca. 12 Stunden Nahrungskarenz), langes Stauen vermeiden
Klinische Indikationen: Screening eines Atherosklerose-Risikos,
Diagnose und Verlaufsbeurteilung einer Fettstoffwechselstörung
Methode: enzymatisch
Referenzbereiche: < 200 mg/dl
Trimipramin
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Trimipramin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 20 – 200 µg/l
Triple-Test (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Trizyklische Antidepressiva im Urin (U)
Synonyme: qualitativer Medikamentennachweis
Probenmaterial: 10 ml Urin
Abnahmehinweise: ggf. Probennahme überwachen
Klinische Indikationen: Suchtest zum Nachweis des Gebrauchs von trizyklischen Antidepressiva
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Tropheryma whippelii-DNA-Nachweis (W)
Synonyme: T. whippelii-PCR, Morbus Whipple
Probenmaterial: je nach Indikation:
3 ml EDTA-Blut
2 g Stuhl
Dünndarmbiopsie (tiefgefroren)
Knochenmarkaspirat
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 365

Trypsin (U)
1 ml Liquor
Synovia
Klinische Indikationen: Verdacht auf Morbus Whipple bei
- Diarrhoe, Steatorrhoe
- Malabsorptions-Syndrom
- Abdominalschmerzen, Gewichtsverlust
- Enteropathische (seronegative) Arthritis
- Enteropathische (seronegative) Sakroiliitis
- Fieber, Polyserositis
- mesenteriale, retroperitoneale Lymphknotenvergrößerungen
- ggf. Manifestation kardial (z.B. Endokarditis)
- ggf. Manifestation im ZNS (z.B. Störung der Oculomotorik)
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Troponin I (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Myokardzellschädigung (akutes Koronar-Syndrom,
Myokardinfarkt, Angina pectoris,
Myokarditis, postoperativ nach Herzoperationen)
Methode: CMIA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Troponin T-Schnelltest (N)
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Blut
Klinische Indikationen: Verdacht auf Myokardzellschädigung (akutes Koronar-Syndrom,
Myokardinfarkt, Angina pectoris,
Myokarditis, postoperativ nach Herzoperationen)
Methode: IA
Referenzbereiche: negativ
Trypanosoma cruzi-Antikörper (U)
Synonyme: Chagas-Krankheit
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 1-4 Wochen.
Klinische Indikationen: Verdacht auf südamerikanische Trypanosomiasis (Chagas-Krankheit) bei
entsprechender Reiseanamnese und klinischer Symptomatik: Fieber, Lymphadenopathie, Hepatosplenomegalie,
später Herzrhythmusstörungen und gastrointestinale Symptome
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Trypsin (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufsbeurteilung der Pankreatitis, Pankreasfibrose,
Pankreaskarzinom, Neugeborenen-Screening (5. Lebenstag)
366 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: RIA
Referenzbereiche: Erwachsene: 10 – 57 µg/l
Tryptase
Tryptase
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Blutabnahme sollte ca. 15 Minuten bis 3 Stunden nach einer fraglichen anaphylaktischen
Reaktion erfolgen, im Einzelfall auch später.
Klinische Indikationen: Nachweis der Mastzellbeteiligung bei allergischen Reaktionen (besonders
nach Insektenstich, Nahrungsmittelkontakt, Pharmakagabe),
Differentialdiagnostik einer unklaren Schockreaktion,
Verdacht auf Mastozytose
Methode: FEIA
Referenzbereiche: < 11,4 µg/l
TSH basal
Synonyme: Thyreoidea stimulierendes Hormon, Thyreotropin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Screeninguntersuchung zur Diagnose einer Hypothyreose oder Hyperthyreose,
Verlaufskontrolle unter Therapie von Schilddrüsenfunktionsstörungen,
Abklärung einer Hypoprolaktinämie
Abklärung einer Hypercholesterinämie
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: Erwachsene: 0,27 – 4,2 µlU/ml
Tumor M2-PK (U)(N)
Synonyme: M2-PK
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: EDTA-Blut direkt nach der Abnahme zentrifugieren und das Plasma abpipettieren
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufskontrolle von Karzinomen von Niere, Pankreas,
Magen
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 15,0 U/ml
Tumor M2-PK im Stuhl (W)
Synonyme: M2-PK
Probenmaterial: 1 g Stuhl
Abnahmehinweise: Die Probe bitte unmittelbar nach der Gewinnung einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei Verdacht auf kolorektales Karzinom
Methode: EIA
Referenzbereiche: < 4,0 U/ml
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 367

Valproinsäure
Tumor Nekrose Faktor (U)
Synonyme: TNF α, Kachektin, Lymphotoxin
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Plasma oder Serum
1 ml Liquor
Abnahmehinweise: Das Blut innerhalb von 2 Stunden nach der Abnahme zentrifugieren, Plasma
bzw. Serum abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C)
Klinische Indikationen: Diagnostik und Verlaufsbeurteilung von SIRS und Sepsis
Methode: Flowzytometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
UDP-Galaktose-Epimerase (U)(N)
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Blut
Klinische Indikationen: Verdacht auf Galaktosämie
Referenzbereiche: 19 – 35 µmol/h/gHb
Urinsediment
Probenmaterial: 10 ml Urin
(Spontan-, Mittelstrahl-, Katheter-, Punktionsurin)
Klinische Indikationen: Diagnostik von Erkrankungen der Niere und der ableitenden Harnwege
Methode: Mikroskopie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Urinstatus
Probenmaterial: 10 ml Urin
(Spontan-, Mittelstrahl-, Katheter-, Punktionsurin)
Klinische Indikationen: Diagnostik von Erkrankungen der Niere und der ableitenden Harnwege
Methode: Teststreifen
Referenzbereiche: Leukozyten: negativ / +
Nitrit: negativ
pH-Wert: 4,8 – 7,5
Eiweiss: negativ / +
Glukose: normal
Keton: negativ
Urobilinogen: normal / +
Bilirubin: negativ
Erythrozyten/Hb: negativ / +
Hämoglobin: negativ / +
Spez. Gewicht: 1,015 – 1,025
Valproinsäure
Synonyme: Valproinat, Dipropylacetat
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Bestimmung des max. Spiegels: ca. 1-4 (-8) Stunden nach
368 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Medikamenteneinnahme
Bestimmung des Talspiegels: vor der nächsten Medikamenteneinnahme
Klinische Indikationen: Monitoring einer Valproinat-Therapie
Methode: PETNIA
Referenzbereiche: bis 13 Jahre: s. Befundbericht
> 13 Jahre: 50 – 100 µg/ml
Vanadium im Serum (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme am Ende der Expositionszeit (Schichtende)
Klinische Indikationen: Beurteilung der Vanadium-Belastung, Intoxikation
Methode: AAS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Vanadium im Urin (U)
Probenmaterial: 10 ml Urin
Abnahmehinweise: Probennahme am Ende der Expositonszeit (Schichtende)
Klinische Indikationen: Beurteilung der Vanadium-Belastung, Intoxikation
Methode: AAS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Vancomycin
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Bestimmung des Talspiegels: Entnahme direkt vor nächster Gabe
Bestimmung des Spitzenspiegels: ca. 60 Minuten nach i.v.-Gabe
Klinische Indikationen: Monitoring einer Vancomycin-Therapie
Methode: CMIA
Referenzbereiche: Talspiegel: 5 – 10 mg/l
Spitzenspiegel: 30 – 40 mg/l
Vanillinmandelsäure im Urin
Vanadium im Serum (U)
Synonyme: VMS, Katecholamine
Probenmaterial: 20 ml eines 24-Stunden-Sammelurins
(gesammelt in lichtgeschütztem Gefäß über 5-10 ml Salzsäure oder Eisessig)
Abnahmehinweise: Bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die
Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden) angeben.
Medikamente, sofern möglich, ca. 1 Woche vorher absetzen.
Ca. 3 Tage vorher Vermeiden von Kaffee, Tee,
Nikotin, Bananen, Käse, Nüssen, Schokolade, Eiern.
Klinische Indikationen: Tumoren des sympatho-adrenergen Systems, Neuroblastome, episodenhafte
oder therapieresistente Hypertonie, Inzidentalom, Familienuntersuchung
Methode: HPLC
Referenzbereiche: < 6,6 mg/24 Std.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 369

Varizella-Zoster-Virus-Antikörper (IgG, Liquor/Serum)
Varizella-Zoster Virus-DNA-Nachweis
Synonyme: VZV-PCR
Probenmaterial: je nach Indikation:
1 ml Liquor
3 ml EDTA-Blut
Bläscheninhalt (Trockenabstrich)
Kammerwasser
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit beträgt ca. 8-21 Tage
Klinische Indikationen: Nachweis von VZV bei unklarem Exanthem und Verdacht auf VZV-
Infektion
Methode: PCR
Referenzbereiche: negativ
Varizella-Zoster-Virus-Antikörper (IgA)
Synonyme: VZV
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit/das diagnostische Fenster beträgt ca. 8-21 Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf VZV-Primärinfektion, insbesondere in der Schwangerschaft
(Gefahr des kongenitalen VZV-Syndrom) bei typischem Exanthem und bei Verdacht auf reaktivierte
Infektion (Herpes zoster, Fazialisparese, Neuritis, ZNS-Erkrankung)
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ: < 35 U/ml
grenzwertig: 35 – 50 U/ml
positiv: > 50 U/ml
Varizella-Zoster-Virus-Antikörper (IgG)
Synonyme: VZV
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit/das diagnostische Fenster beträgt ca. 8-21 Tage.
Klinische Indikationen: Bestimmung der Immunitätslage bei Verdacht auf VZV-Primärinfektion,
insbesondere in der Schwangerschaft (Gefahr des kongenitalen VZV-Syndrom) bei typischem Exanthem
und bei Verdacht auf reaktivierter Infektion (Herpes zoster, Fazialisparese, Neuritis, ZNS-
Erkrankung)
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ: < 50 mIU/ml
grenzwertig: 50 – 100 mIU/ml
positiv: > 100 mIU/ml
Varizella-Zoster-Virus-Antikörper (IgG, Liquor/Serum)
Synonyme: VZV-AI, MRZ-Reaktion
Probenmaterial: 1 ml Liquor und 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Liquor und Serum gleichzeitig abnehmen.
Klinische Indikationen: Nachweis einer intrathekalen IgG-Synthese gegen VZV bei akuten und auch
chronischen ZNS-Erkrankungen.
370 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Methode: EIA
Referenzbereiche: 0,6 – 1,5 Index
Varizella-Zoster-Virus-Antikörper (IgM)
Varizella-Zoster-Virus-Antikörper (IgM)
Synonyme: VZV
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit/das diagnostische Fenster beträgt ca. 8-21 Tage.
Klinische Indikationen: Verdacht auf VZV-Primärinfektion, insbesondere in der Schwangerschaft
(Gefahr des kongenitalen VZV-Syndrom) bei typischem Exanthem.
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ: < 10 U/ml
grenzwertig: 10 – 15 U/ml
positiv: > 15 U/ml
Varizella-Zoster-Virus-Serologie
Synonyme: VZV, Zoster-Antikörper
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Inkubationszeit/das diagnostische Fenster beträgt ca. 8-21 Tage.
Klinische Indikationen: Bei Verdacht auf VZV-Primärinfektion (Windpocken), insbesondere in der
Schwangerschaft, sollte die Bestimmung der Immunitätslage im Vordergrund stehen. Bei den übrigen
Fällen und insbesondere bei der VZV-Reaktivierung (Herpes zoster, Gürtelrose) hat die serologische
Diagnostik eine nur eingeschränkte Bedeutung.
Methode: EIA
Referenzbereiche: siehe Einzelparameter
VDRL
Synonyme: Veneral Disease Research Laboratory Test, Lues, Syphilis
Probenmaterial: 1 ml Serum und/oder
1 ml Liquor
Klinische Indikationen: Beurteilung der Erkrankungsaktivität bei Verdacht auf eine T. pallidum-
Infektion (Lues)
Methode: Agglutination
Referenzbereiche: negativ
Venlafaxin (W)
Synonyme: SNRI
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Bitte beachten Sie, dass bei Verwendung von gelhaltigen Röhrchen die Resultate
niedriger ausfallen können. Wir empfehlen, das Blut 30 min nach Abnahme zu zentrifugieren, das
Serum abzutrennen und in ein zweites Neutral-Röhrchen zu überführen.
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Venlafaxin-Therapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 371

Vitamin A
Verapamil (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Verapamil-Therapie
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Verotoxin I und II-DNA-Nachweis
Synonyme: VTEC, Verotoxin bildende E. coli, EHEC
Probenmaterial: 1 g Stuhl
Klinische Indikationen: Verdach auf EHEC-Infektion, inbesondere bei Verdacht auf HUS
(hämolytisch-urämisches Syndrom) und bei blutig-schleimiger Enterokolitis im Kleinkindalter
Methode: PCR
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Vigabatrin (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutabnahme ca. 2 – 4 Stunden nach oraler Gabe
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Vigabatrin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
VIP (U)
Synonyme: Vasoaktives Intestinales Peptid
Probenmaterial: 1 ml mit Trasylol stabilisiertes EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: Die Blutentnahme sollte morgens am nüchternen Patienten erfolgen.
4 ml EDTA-Blut abnehmen, sofort in ein mit Trasylol präpariertes Glasröhrchen überführen und zentrifugieren.
Anschließend Plasma in ein Glasröhrchen ohne Zusatz umfüllen. Probe tiefgefroren einsenden.
Klinische Indikationen: Verlaufskontrolle und Verdacht bei/auf VIPom (VIP-produzierender Tumor,
APUDom), Verner-Morrison-Syndrom mit anhaltenden, schweren wässrigen Durchfällen, ausgeprägte
Hypokaliämie, Achlorhydrie
Methode: RIA DA PEG
Referenzbereiche: < 63 pg/ml
Vitamin A
Synonyme: Retinol
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Nach der Blutentnahme die Probe lichtgeschützt und gekühlt (+2°C – +8°C)
lagern
Klinische Indikationen: Verdacht auf Vitamin A-Mangel bei Maldigestion und Malabsorption, insbesondere
bei Störungen der Dunkeladaptation, Hyperkeratosen, Haarausfall oder Schleimhautatrophie,
Abklärung einer Hyperkalziämie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: Erwachsene: 0,3 – 0,7 mg/l
372 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Vitamin B1
Vitamin B1
Synonyme: Thiamin, Aneurin
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Das Blut bitte direkt nach der Entnahme gekühlt (+2°C – +8°C) und lichtgeschützt
lagern
Klinische Indikationen: Verdacht auf Vitamin B1-Mangel bei unklaren neurologischen Symptomen
(Neuritis, Areflexie, Parese) und Herzkreislaufsymptomen
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 28 – 85 µg/l
Vitamin B12
Synonyme: Cobalamin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Bestimmung ist nur sinnvoll, wenn zuvor über einige Wochen bis Monate
KEINE Vitamin B12-Substitution erfolgte.
Bei V.a. Vitamin B12-Mangel ggf. Bestimmung von Holotranscobalamin und Methylmalonsäure.
Klinische Indikationen: Verdacht auf Cobalamin-Mangel bei:
chronisch-atrophische Gastritis,
nach Magen(teil)resektion,
neuro-psychiatrische Symptomatik,
Erkrankungen am terminalen Ilium (M. Crohn, Colitis, Resektion, Infektion, Zöliakie/Sprue),
Makrozytäre Anämie,
Langjährige vegetarische Ernährung,
Methode: ECLIA
Referenzbereiche: bis 18 Jahre: s. Befundbericht
Erwachsene: 191 – 663 pg/ml
Vitamin B2 (FAD) (W)
Synonyme: FAD, Riboflavin
Probenmaterial: 5 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Das Blut bitte direkt nach der Entnahme gekühlt (+2°C – +8°C) und lichtgeschützt
lagern
Klinische Indikationen: Verdacht auf Vitamin B2-Mangel bei Rhagaden, Pruritus, Haut-
/Schleimhautentzündungen, Thrombosen, Arteriosklerosen
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Vitamin B6
Synonyme: Pyridoxal-5-Phosphat
Probenmaterial: 1 ml EDTA-Plasma
Abnahmehinweise: EDTA-Vollblut bitte lichtgeschützt lagern. Für eine Bestimmung aus Plasma Blut
bitte direkt nach der Entnahme zentrifugieren, Plasma abpipettieren und einfrieren (ca.-20°C) und
lichtgeschützt lagern.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 373

Vitamin K (W)
Klinische Indikationen: Verdacht auf Vitamin B6-Mangel bei unklaren Haut- und Schleimhautentzündungen,
Depression, Reizbarkeit, Neuritis, verminderte enterale Eisenaufnahme
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 3,6 – 18,0 µg/l
Vitamin C (W)
Synonyme: Ascorbinsäure
Probenmaterial: 4 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Vitamin C-Mangel
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 5 – 15 mg/l
Vitamin D-Rezeptor-Polymorphismus (U)
Synonyme: VDR-Gen (MIM 601769)
Probenmaterial: 3 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: Einverständniserklärung des Patienten (§ 8 GenDG)
Ausnahmekennziffer 32010
Klinische Indikationen: Bestimmung des individuellen Risikos für Osteoporose
Methode: PCR
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Vitamin E
Synonyme: Tocopherol
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutentnahme nüchtern (ca. 12 Stunden Nahrungskarenz); nach der Blutentnahme
die Probe lichtgeschützt und gekühlt (+2°C – +8°C) lagern
Klinische Indikationen: Verdacht auf Vitamin E-Mangel bei chronisch-entzündlichen
Darmerkrankungen, Störungen des oxidativen Stress
Methode: HPLC
Referenzbereiche: 5 – 20 mg/l
Vitamin H (W)
Synonyme: Biotin
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Verdacht auf Biotinmangel bei Haarausfall, Dermatitis, Anorexia, Übelkeit,
Depression
Referenzbereiche: > 200 pg/ml
Vitamin K (W)
Synonyme: Phyllochinone
Probenmaterial: 2 ml Serum oder EDTA-Plasma,
lichtgeschützt und tiefgefroren
374 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Vitamin-D-Bindungsprotein (W)(N)
Abnahmehinweise: Das Blut direkt nach der Blutentnahme zentrifugieren, abpipettieren und einfrieren
(ca. -20°C), lichtgeschützt (mit Alufolie umwickelt!) lagern
Klinische Indikationen: Verdacht auf Vitamin K-Mangel bei:
- zystischer Fibrose
- Malabsorption
- Maldigestion
- extrahepatische biliäre Abfluss-Störung
- Zöliakie (einheimische Sprue)
- Änderung der Darmflora unter Antibiose
- totale parenterale Ernährung
- unter Therapie mit Vitamin K-Antagonisten
Methode: HPLC
Referenzbereiche: nüchtern: 0,17 – 0,68 µg/l
nicht nüchtern: 0,15 – 1,55 µg/l
Vitamin-D-Bindungsprotein (W)(N)
Synonyme: VDBP, DBP
Probenmaterial: 1 ml Serum
1 ml Spontanurin
1 ml Dialysat
Klinische Indikationen: Weitere Untersuchung bei erhöhtem Bedarf an Vitamin D-Subsititution bei
Patienten mit hohem Proteinverlust (Nephrotisches Syndrom, Peritonealdialyse)
Methode: ILMA
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Von Willebrand Faktor (vWF) – Multimerenanalyse (W)(N)
Synonyme: Multimere
Probenmaterial: 3 ml Citrat-Plasma (bei Raumtemperatur 48 h stabil)
3 ml Citrat-Plasma, tiefgefroren (wenn kein bei Raumtemperatur gelagertes Plasma zur Verfügung
steht)
Klinische Indikationen: Verdacht auf von Willebrand Syndrom (vWS, erworben oder heriditär),
thrombotische Mikroangiopathien
Referenzbereiche: s. Befundbericht
von-Willebrand-Faktor-Antigen (U)(N)
Synonyme: vWF:Ag, früher Faktor VIII-assoziiertes Antigen
Probenmaterial: 1 ml Citrat-Plasma, gefroren
Abnahmehinweise: → Gerinnungsuntersuchungen, Seite 251
Klinische Indikationen: Diagnostik des von-Willebrand-Jürgens-Syndroms (vWS),
Differentialdiagnose des Faktor VIII C-Mangels,
Diagnostik unerklärter Blutungen,
Differentialdiagnostik einer verlängerten Blutungszeit bei fehlender Einnahme von Medikamenten
wie z.B. ASS
Methode: Photometrie
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 375

Xylol im Blut (U)(N)
Referenzbereiche: 50 – 160 %
40 – 160 % bei Blutgruppe 0
Wismut im Blut (U)(N)
Synonyme: Bi
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Beurteilung einer Wismut-Belastung, Intoxikation
bei Wismut-haltigem Dentalmaterial oder bei langdauernder Behandlung mit Wismut-Präparaten
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Wismut im Urin (U)(N)
Synonyme: Bi
Probenmaterial: 5 ml Spontanurin
Klinische Indikationen: Beurteilung einer Wismut-Belastung, Intoxikation
bei Wismut-haltigem Dentalmaterial oder bei langdauernder Behandlung mit Wismut-Präparaten
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Xanthin (U)(N)
Synonyme: Purin/Pyrimidin-Screening
Probenmaterial: 10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins und/oder
1 ml Serum
Abnahmehinweise: Das Blut nach der Abnahme direkt zentrifugieren, das Serum bzw. Plasma in ein
separates Röhrchen (ohne Zusätze)
abpipettieren und einfrieren (ca. – 20°C).
Urin direkt nach der Entnahme einfrieren (ca. – 20°C).
Mindestens 24 Stunden vor der Probennahme Vermeiden von Kakao, schwarzem Tee, Kaffee, Lakritz.
Klinische Indikationen: Verdacht auf (angeborene) Störung des Purin und Pyrimidin-Stoffwechsels
mit den Leitsymptomen
- des ZNS
variable psychomotorische Retardierung, Krampfanfälle, autistisches oder hyperaktives Verhalten,
Spastik, Ataxie, Dysarthrie
- der Niere
gehäufte Harnwegsinfekte, Nephrolithiasis, Gicht, Niereninsuffizienz
- des Knochenmarks
Anämie, Infektanfälligkeit, Immunschwäche
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Xylol im Blut (U)(N)
Synonyme: o-, m-, p-Xylol
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Blut
Abnahmehinweise: EDTA-Blut in Glasröhrchen
376 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Xylose im Blut (W)
Klinische Indikationen: Kontrolle der Belastung mit aromatischen Kohlenwasserstoffen am Arbeitsplatz,
Vergiftungsausschluss
Methode: GC-Headspace-MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Xylose im Blut (W)
Probenmaterial: 1 ml Natriumfluorid-Blut
Klinische Indikationen: Verdacht auf Kohlenhydratmalaborption
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Xylose im Urin (W)
Probenmaterial: 5 ml eines 5-Stunden-Sammelurins
Klinische Indikationen: Verdacht auf Kohlenhydratmalaborption, Prüfung der Resorptiosleistung
des Dündarms (z.B. bei entzündlichen Darmerkrankungen)
Methode: Photometrie
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Yersinien-Antikörper (IgA)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik der postinfektiösen/postenteritischen Arthritis, Erythema nodosum
(insbesondere bei HLA B27-positiven Patienten), akute Glomerulonephritis, Myokarditis.
Bei der akuten Yersinien-Enteritis sollte der direkte Erregernachweis aus einer Stuhlprobe erfolgen.
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ: < 9 Ratio
grenzwertig: 9 – 11 Ratio
positiv: > 11 Ratio
Yersinien-Antikörper (IgG)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik der postinfektiösen/postenteritischen Arthritis, Erythema nodosum
(insbesondere bei HLA B27-positiven Patienten).
Bei der akuten Yersinien-Enteritis sollte der direkte Erregernachweis aus einer Stuhlprobe erfolgen.
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ: < 9 Ratio
grenzwertig: 9 – 11 Ratio
positiv: > 11 Ratio
Yersinien-Serologie
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Diagnostik der postinfektiösen/postenteritischen Arthritis, Erythema nodosum
(insbesondere bei HLA B27-positiven Patienten).
Bei der akuten Yersinien-Enteritis sollte der direkte Erregernachweis aus einer Stuhlprobe erfolgen.
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 377

Zink im Urin (W)
Methode: EIA
Referenzbereiche: negativ: < 9 Ratio
grenzwertig: 9 – 11 Ratio
positiv: > 11 Ratio
Zahnpathogene Keime, DNA-Nachweis
Synonyme: parodontopathogene Keime, Zahnkeime
Probenmaterial: subgingivale Plaqueproben
Abnahmehinweise: Probenentnahme-Sets und Anforderungsscheine auf Anforderung
Klinische Indikationen: Verdacht auf Infektion mit parodontopathogenen Keimen (RPP = Rapid
progressive parodontitis oder juvenile progressive Parodontitis), ggf. auch vor einem geplanten Einsatz
von Zahnimplantaten
Methode: PCR
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Zink im Blut (W)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Abnahmehinweise: Zur Vermeidung einer Hämolyse das Blut nach der Abnahme und Gerinnung
zentrifugieren und das Serum abpipettieren
Klinische Indikationen: Diagnostik des Zinkstoffwechsels, insbesondere des Zinkmangels (bei
verzögerter Wundheilung, Acrodermatitis enteropathica, unklare Immunschwäche)
Methode: AAS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Zink im Sperma (U)
Probenmaterial: 1 ml Sperma
Abnahmehinweise: Sperma 1 + 1 mit physiologischer Kochsalzlösung verdünnen und in ein Fluoridröhrchen
geben, eine sexuelle Karenz von mindestens 48 Stunden vor der Untersuchung wird
empfohlen.
Klinische Indikationen: Abklärung der Infertilität beim Mann
Methode: AAS
Referenzbereiche: 80 – 230 µg/ml
Zink im Urin (W)
Probenmaterial: 10 ml Spontanurin oder
10 ml eines 24-Stunden-Sammelurins (ohne Zusätze)
Abnahmehinweise: bitte unbedingt die Sammelmenge und ggf. die Sammelzeit (wenn nicht 24 Stunden)
angeben.
Klinische Indikationen: Verdacht auf erhöhte Zinkbelastung (Galvanik, Glasindustrie, zinkhaltige
Insektizide oder Fungizide) bei: Anämie, Nieren- und Leberschädigung, “Metalldampf-Fieber“,
Lethargie, Temperaturerhöhung.
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
378 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Zinkprotoporphyrin (W)(N)
Synonyme: ZnPP, Eisenstoffwechsel
Probenmaterial: 2 ml EDTA-Blut
Klinische Indikationen: Differentialdiagnostik des Eisenmangels
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Zinn im Serum (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Beurteilung der Zinnbelastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: < 2,0 µg/l
Zinn im Urin (U)
Probenmaterial: 10 ml Spontanurin
Klinische Indikationen: Beurteilung der Zinnbelastung
Methode: ICP/MS
Referenzbereiche: < 2,0 µg/l
Ziprasidon (U)
Synonyme: Handelsname: Zeldox ®
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Ziprasidon-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Zirkulierende Immunkomplexe (W)
Zinkprotoporphyrin (W)(N)
Synonyme: CIC
Probenmaterial: 2 ml Serum, gefroren
Klinische Indikationen: Diagnose und Verlaufskontrolle bei Erkrankungen mit hoher pathogenetischer
Bedeutung der Immunkomplexe:
- Vaskulitiden
- Lupus erythematodes
- rheumatoide Arthritis (RA)
- Polyarthritis
- Purpura Schoenlein-Henoch
- post-/parainfektiöse Immunkomplexkrankheiten
- HIV-Infektion/AIDS
- Typ III-Allergien
- Tumorerkrankungen
Methode: EIA (C1q-Komplement, C3-Fragmente, IgA)
Referenzbereiche: s. Befundbericht
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 379

Zuclopenthixol (U)
Zolpidem (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Blutabnahme ca. 1 h nach oraler Gabe von 10 mg Zolpidem
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Zolpiden-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Zonisamid (W)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Abnahmehinweise: Die Blutentnahme sollte vor der nächsten Einnahme erfolgen (standardisierte
Entnahmezeit, maximale Plasmakonzentration
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle bzw. Monitoring einer Zinosamidtherapie
Methode: LC-MS/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Zopiclon (U)
Probenmaterial: 1 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Zopiclon-Therapie
Methode: LC/MS
Referenzbereiche: therapeutischer Bereich: 10 – 50 µg/l
Zotepin (U)(N)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Zotepin-Therapie
Methode: HPLC
Referenzbereiche: s. Befundbericht
Zuclopenthixol (U)
Probenmaterial: 2 ml Serum
Klinische Indikationen: Therapiekontrolle/Monitoring einer Zuclopenthixol-Therapie
Methode: GC/MS
Referenzbereiche: s. Befundbericht
380 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Index
Symbole
α 1 Antitrypsin im Stuhl (W) . . . . . . . . . . . . .149
α 1-Antitrypsin Genotypisierung (U) . . . . . 149
α 1-Antitrypsin Phänotypisierung (U)(N) . . 150
α 1-Antitrypsin im Serum . . . . . . . . . . . . . . 149
α 1-Mikroglobulin im Serum (U) . . . . . . . . . 150
α 1-Mikroglobulin im Urin . . . . . . . . . . . . . 150
α 2-Antiplasmin-Aktivität (U) . . . . . . . . . . . 150
α 2-Makroglobulin im Liquor (W) . . . . . . . . 150
α 2-Makroglobulin im Serum (U) . . . . . . . . 151
α 2-Makroglobulin im Urin (U) . . . . . . . . . . 151
α-Aminobuttersäure (W) . . . . . . . . . . . . . . . . 148
α-Galaktosidase (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 148
α-Glucosidase im Sperma (U) . . . . . . . . . . . .149
β 2-Mikroglobulin im Liquor (W) . . . . . . . . 189
β 2-Mikroglobulin im Serum . . . . . . . . . . . 189
β 2-Mikroglobulin im Urin . . . . . . . . . . . . . 189
β-Carotin im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . . . . .188
β-Galaktosidase (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 188
β-HCH im Blut (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 189
β-Trace-Protein (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . .189
β-hCG . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 188
γ-GT. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .249
γ-HCH im Blut (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 250
Östradiol im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 314
Östriol, frei im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . . . 314
Östron im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 314
1,25-Dihydroxy-Vitamin D . . . . . . . . . . . . . 136
1-Butanol im Blut (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 136
1-Hydroxypyren im Urin (W) . . . . . . . . . . . . 136
1-Propanol (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 136
10-Hydroxy-Carbazepin . . . . . . . . . . . . . . . 136
11-Desoxycorticosteron im Plasma (U) . . . 137
11-Desoxycorticosteron im Urin (U) . . . . . . 137
11-Desoxycortisol (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 137
17-Hydroxycorticoide im Urin (U) . . . . . . . .137
17-Hydroxyprogesteron (W) . . . . . . . . . . . . . 138
17-Ketosteroide im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . 138
18-Hydroxycorticosteron im Serum (U) . . . 138
18-Hydroxycorticosteron im Urin (U) . . . . . 138
25-Hydroxy-Vitamin D . . . . . . . . . . . . . . . . 138
4-Aminosalicylsäure (U) . . . . . . . . . . . . . . . . .139
4-Hydroxy-Tamoxifen (U)(N) . . . . . . . . . . . . . 139
5-Fluorouracil-Unverträglichkeit (U) . . . . . . 139
5-Hydroxyindolessigsäure . . . . . . . . . . . . . . 139
5-S-Cysteinyl-DOPA im Plasma (W) . . . . . . 140
5-S-Cysteinyl-DOPA im Urin (W) . . . . . . . . 140
9-OH-Risperidon (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 140
A
ACE . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 140
ACE im Liquor (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 141
Acetazolamid (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 141
Aceton im Blut (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 141
Aceton im Urin (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 141
Acetylcholinesterase im Fruchtwasser (W) .141
Acetylsalizylsäure (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 142
ACTH. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .142
Actinomykose-Antikörper (U)(N) . . . . . . . . . 142
ADAMTS 13 – Aktivität (U) . . . . . . . . . . . . . 142
ADAMTS 13 – Inhibitor (U) . . . . . . . . . . . . . 142
ADAMTS 13 – Konzentration (U) . . . . . . . . 142
Addis Count (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 143
Adenoviren-Antikörper (W) . . . . . . . . . . . . . . 143
Adenovirus-Antigen im Stuhl . . . . . . . . . . . 143
Adenovirus-DNA-Nachweis (W) . . . . . . . . . 143
Adiponectin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 144
Adrenalin im Plasma (W) . . . . . . . . . . . . . . . . 144
Adrenalin im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 144
AFP . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 144
Agomelatin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 145
Ajmalin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 145
Aktivierte T-Lymphozyten . . . . . . . . . . . . . 145
Alanin Aminopeptidase (W) . . . . . . . . . . . . . 145
Albumin im Liquor . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 145
Albumin im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 145
Albumin im Stuhl (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 146
Albumin im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 146
381

Index
Albumin-Quotient (Liquor/Serum) . . . . . . 146
Aldolase (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 146
Aldosteron im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . . . .146
Aldosteron im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . 147
Aldosteron-18-Glucuronid im Urin (U) . . . 147
Alkalische Leukozytenphosphatase (U)(N) . 147
Alkalische Phosphatase . . . . . . . . . . . . . . . . 147
Alkalische Phosphatase-Isoenzyme. . . . . .148
Allopurinol (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 148
Alpha-Endosulfan (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 148
Alpha-Fetoprotein (AFP) im Fruchtwasser (W)
148
alpha-Linolensäure (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 149
Alprazolam (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 151
ALT . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 151
Aluminium im Serum (W)(N) . . . . . . . . . . . . . 151
Aluminium im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . 152
AMA-Subtypen (M2, M4, M9) . . . . . . . . . 152
Amantadin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 152
Ameisensäure im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . . 152
Amikacin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 152
Aminosäuren-Differenzierung im Serum (W)
153
Aminosäuren-Differenzierung im Urin (U) 153
Amiodaron im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . 153
Amisulprid (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 153
Amitriptylin im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . 154
Ammoniak im Plasma . . . . . . . . . . . . . . . . . 154
Amphetamin im Serum (N) . . . . . . . . . . . . . . 154
Amphetamin im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . . . 154
Amphotericin B (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 154
Amylase im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 154
Amylase im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 155
Amylase-Isoenzyme (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . 155
Amyloid β 1-42 im Liquor . . . . . . . . . . . . . 155
Amyloid A-Protein im Serum (W) . . . . . . . . 155
Analgetika im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . 156
ANCA-Zielantigene . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 156
Androstandiol-Glucuronid (W) . . . . . . . . . . . 156
Androstendion im Serum (W) . . . . . . . . . . . . 156
Angiotensin II (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 156
Anti-Faktor Xa-Aktivität . . . . . . . . . . . . . . . 157
Anti-HAV (IgG/IgM) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 157
Anti-HAV-IgM . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 157
Anti-HBc (IgG/IgM). . . . . . . . . . . . . . . . . . .157
Anti-HBc-IgM . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 158
Anti-HBe . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 158
Anti-HBs . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 158
Anti-HCV . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 158
Anti-HCV-Immunoblot . . . . . . . . . . . . . . . . 158
Anti-HDV (IgG/IgM) (W) . . . . . . . . . . . . . . . 159
Anti-HEV (IgG) (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 159
Anti-Müller-Hormon (W) . . . . . . . . . . . . . . . . 159
Anti-Staphylolysin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 159
Anti-Streptokokken DNAse B . . . . . . . . . . 159
Anti-Streptokokken-Hyaluronidase (W) . . . 160
Anti-Streptolysin O . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 160
Antidiuretisches Hormon (W) . . . . . . . . . . . . 160
Antikörper (IgA) gegen Gliadin . . . . . . . . . 160
Antikörper (IgG) gegen Gliadin . . . . . . . . . 161
Antikörper gegen ß2-Glykoprotein I . . . . . 162
Antikörper gegen Cardiolipin (IgG und IgM)
161
Antikörper gegen Erythropoietin (W) . . . . . 161
Antikörper gegen mutiertes citrulliniertes
Vimentin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . .161
Antikörper gegen p53 (U) . . . . . . . . . . . . . . . .161
Antikörper-Suchtest . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 162
Antimon im Serum (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 162
Antimon im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 162
Antioxidative Kapazität (W) . . . . . . . . . . . . . 162
Antithrombin-Aktivität . . . . . . . . . . . . . . . . 163
Antithrombin-Konzentration (U) . . . . . . . . . 163
APC-Resistenz . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 163
Apolipoprotein A1 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 164
Apolipoprotein B . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 164
Apolipoprotein B100-Genotypisierung (U) 164
Apolipoprotein E-Genotypisierung (U) . . . . 164
aPTT. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .164
Arachidonsäure (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 165
Aripiprazol (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 165
Arsen im Haar (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 165
Arsen im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 165
Arsen im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 165
Arylsulfatase A (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 166
Aspergillus-Antigen (W) . . . . . . . . . . . . . . . . .166
Aspergillus-Antikörper (W) . . . . . . . . . . . . . . 166
AST . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 166
Astrovirus-Antigennachweis. . . . . . . . . . . .166
Asymmetrisches Dimethylarginin (W) . . . . 167
Atenolol (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 167
Atypische Cholinesterasen (U) . . . . . . . . . . . 167
Auto-Ak gegen Acetylcholinrezeptor (W) . 167
Auto-Ak (IgA) gegen Endomysium . . . . . 167
382 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Auto-Ak (IgA) gegen Transglutaminase . 168
Auto-Ak (IgA, IgG) gegen Becherzellen (U)(N)
168
Auto-Ak (IgA, IgG) gegen exokrines
Pankreas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 168
Auto-Ak (IgA, IgG, IgM) gegen MAG (W) 168
Auto-Ak (IgG) gegen alveoläre Basalmembranen
. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 169
Auto-Ak (IgG) gegen Aquaporin 4 (W) . . . 169
Auto-Ak (IgG) gegen Asialoglycoprotein-
Rezeptor (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . 169
Auto-Ak (IgG) gegen BPI (U)(N) . . . . . . . . . 169
Auto-Ak (IgG) gegen Cathepsin G (U)(N) . . 169
Auto-Ak (IgG) gegen CCP . . . . . . . . . . . . . 170
Auto-Ak (IgG) gegen CV2 . . . . . . . . . . . . . 170
Auto-Ak (IgG) gegen dsDNS . . . . . . . . . . . 170
Auto-Ak (IgG) gegen Elastase (U)(N) . . . . . .170
Auto-Ak (IgG) gegen ENA-Gruppentest . 171
Auto-Ak (IgG) gegen glomeruläre
Basalmembran . . . . . . . . . . . . . . 171
Auto-Ak (IgG) gegen Herzmuskel . . . . . . 171
Auto-Ak (IgG) gegen Histone (U)(N) . . . . . . 171
Auto-Ak (IgG) gegen Hu . . . . . . . . . . . . . . . 172
Auto-Ak (IgG) gegen Jo-1. . . . . . . . . . . . . .172
Auto-Ak (IgG) gegen Ku (W) . . . . . . . . . . . . 172
Auto-Ak (IgG) gegen Laktoferrin (U)(N) . . .172
Auto-Ak (IgG) gegen Ma . . . . . . . . . . . . . . 172
Auto-Ak (IgG) gegen Myeloperoxidase . . 173
Auto-Ak (IgG) gegen Neuronenkerne Typ
3 (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 173
Auto-Ak (IgG) gegen NMDA-Rezeptoren (W)
173
Auto-Ak (IgG) gegen nRNP . . . . . . . . . . . . 173
Auto-Ak (IgG) gegen Nukleosomen (W) . . 174
Auto-Ak (IgG) gegen PM-Scl . . . . . . . . . . 174
Auto-Ak (IgG) gegen Proteinase 3 . . . . . . 174
Auto-Ak (IgG) gegen Ri . . . . . . . . . . . . . . . 174
Auto-Ak (IgG) gegen ribosomales P-
Protein (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 175
Auto-Ak (IgG) gegen Scl 70 . . . . . . . . . . . . 175
Auto-Ak (IgG) gegen Skelettmuskulatur . 175
Auto-Ak (IgG) gegen SLA/LP . . . . . . . . . . 175
Auto-Ak (IgG) gegen Sm . . . . . . . . . . . . . . 175
Auto-Ak (IgG) gegen SS-A. . . . . . . . . . . . .176
Auto-Ak (IgG) gegen SS-B. . . . . . . . . . . . .176
Auto-Ak (IgG) gegen ssDNS (W)(N) . . . . . . 176
Auto-Ak (IgG) gegen Thyreoglobulin . . . 176
Index
Auto-Ak (IgG) gegen TPO . . . . . . . . . . . . . 177
Auto-Ak (IgG) gegen Tr . . . . . . . . . . . . . . . 177
Auto-Ak (IgG) gegen tubuläre Basalmembran
177
Auto-Ak (IgG) gegen Yo . . . . . . . . . . . . . . . 177
Auto-Ak (IgG) gegen Zellkernantigene . . 178
Auto-Ak (IgG) gegen Zentromere . . . . . . . 178
Auto-Ak (IgG, IgM) gegen Ganglioside (W)
178
Auto-Ak gegen Amphiphysin . . . . . . . . . . . 178
Auto-Ak gegen Carboanhydrase II (W) . . . . 178
Auto-Ak gegen Desmoglein 1 (W) . . . . . . . . 179
Auto-Ak gegen Desmoglein 3 (W) . . . . . . . . 179
Auto-Ak gegen epidermale
Basalmembranen (W) . . . . . . . . . 179
Auto-Ak gegen Gallengangsepithel. . . . . .179
Auto-Ak gegen Gefäßendothel . . . . . . . . . . 179
Auto-Ak gegen glatte Muskulatur . . . . . . . 179
Auto-Ak gegen Glutamat-Decarboxylase 180
Auto-Ak gegen Granulozyten-Zytoplasma
180
Auto-Ak gegen Inselzellen . . . . . . . . . . . . . 180
Auto-Ak gegen Insulin (W) . . . . . . . . . . . . . . 180
Auto-Ak gegen Intrinsic Faktor (W) . . . . . . 181
Auto-Ak gegen LC-1 (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . 181
Auto-Ak gegen Leber-Nieren-Mikrosomen
181
Auto-Ak gegen Mitochondrien. . . . . . . . . .181
Auto-Ak gegen Nebennierenrinde (W) . . . . 181
Auto-Ak gegen Ovar (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . 182
Auto-Ak gegen Parietalzellen . . . . . . . . . . . 182
Auto-Ak gegen Parotisgangepithel (U)(N) . . 182
Auto-Ak gegen PCNA . . . . . . . . . . . . . . . . . 182
Auto-Ak gegen Phospholipase A2-
Rezeptor (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . 182
Auto-Ak gegen präsynaptischen P/Q-
Calcium-Kanal (W) . . . . . . . . . . . 182
Auto-Ak gegen Ribosomen (U) . . . . . . . . . . 183
Auto-Ak gegen RNA-Polymerase I (W) . . . 183
Auto-Ak gegen Stachelzelldesmosomen (W)
183
Auto-Ak gegen Thyroxin (U)(N) . . . . . . . . . . 183
Auto-Ak gegen Titin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . 183
Auto-Ak gegen Topoisomerase II (W) . . . . . 184
Auto-Ak gegen Trijodthyronin (U)(N) . . . . . 184
Auto-Ak gegen TSH-Rezeptor . . . . . . . . . . 184
Auto-Ak gegen Tyrosinphosphatase (U) . . . 184
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 383

Index
Autoantikörper gegen Spermien (U)(N) . . . . 184
Azathioprin als 6-Mercaptopurin (U) . . . . . .185
B
B-Lymphozyten . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 185
Babesia microti-Serologie (W) . . . . . . . . . . . 185
Baclofen (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 185
Barbiturate im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . 185
Barbiturate im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 186
Barium im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .186
Barium (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 186
Bartonella quintana-Serologie (W) . . . . . . . . 186
Basophilen Degranulationstest (U)(N) . . . . . 186
BCR/ABL Translokation (U) . . . . . . . . . . . . .186
Bence-Jones-Proteine (qualitativ) im Urin187
Benperidol (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 187
Benzodiazepine im Serum (N) . . . . . . . . . . . 187
Benzodiazepine im Urin . . . . . . . . . . . . . . . 187
Benzol im Blut (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .187
Beryllium im Serum (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . 188
Beryllium im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . .188
Bilirubin (direkt) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 190
Bilirubin (gesamt) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 190
Bilirubin (indirekt) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 190
Bilirubin im Fruchtwasser (N) . . . . . . . . . . . .190
Biperiden (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 190
Bisoprolol (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 191
BK-(Polyoma)-Virus-DNA-Nachweis . . . 191
Blei im Blut (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 191
Blei im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .191
Blutbild mit/ohne Differentialblutbild . . . 191
Blutgruppen-Serologie . . . . . . . . . . . . . . . . . 191
BNP . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 192
Bordetella parapertussis-Antikörper (IgA) (U)
192
Bordetella parapertussis-Antikörper (IgG) (U)
192
Bordetella pertussis-DNA-Nachweis . . . . 192
Bordetella pertussis-Serologie . . . . . . . . . . 193
Bordetella pertussis/parapertussis DNA
Nachweis. . . . . . . . . . . . . . . . . . .193
Borrelien-Antikörper (IgG) . . . . . . . . . . . . . 193
Borrelien-Antikörper (IgG, Liquor/Serum)
193
Borrelien-Antikörper (IgG-Westernblot) . 194
Borrelien-Antikörper (IgM) . . . . . . . . . . . . 194
Borrelien-Antikörper (IgM, Liquor/Serum
194
Borrelien-Antikörper (IgM-Westernblot) . 194
Borrelien-DNA-Nachweis . . . . . . . . . . . . . . 195
Borrelien-Serologie (Stufendiagnostik) . . 195
Bromazepam (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 195
Bromid im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 195
Bromid im Urin (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 196
Brucella-Antikörper (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . 196
BSG (N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 196
Buprenorphin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 196
Bupropion (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 196
C
C-Peptid im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 196
C-reaktives Protein (CRP) . . . . . . . . . . . . . . 197
C1-Esterase-Inhibitor-Aktivität (W) . . . . . . . 197
C1-Esterase-Inhibitor-Konzentration (W) . . 197
C1q-Komplementfaktor (W)(N) . . . . . . . . . . . 197
C2-Komplementfaktor (W) . . . . . . . . . . . . . . 197
C3-Komplementfaktor . . . . . . . . . . . . . . . . . 198
C3-Nephritisfaktor (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . .198
C4-Komplementfaktor . . . . . . . . . . . . . . . . . 198
C5-Komplementfaktor (W) . . . . . . . . . . . . . . 198
CA 125. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .198
CA 15-3 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 199
CA 19-9 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 199
CA 50 (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 199
CA 72-4 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 199
Cadmium im Blut (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 199
Cadmium im Haar (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 199
Cadmium im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 200
Calcitonin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 200
Calcium gesamt im Serum . . . . . . . . . . . . . 200
Calcium gesamt im Urin . . . . . . . . . . . . . . . 200
Calcium im Dialysat (N) . . . . . . . . . . . . . . . . .200
Calprotectin im Stuhl . . . . . . . . . . . . . . . . . . 201
Campylobacter-Antikörper (W) . . . . . . . . . . .201
Candida albicans DNA-Nachweis (W) . . . . 201
Candida-Antigen im Serum (U) . . . . . . . . . . 201
Candida-Antikörper . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 201
Cannabis im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 202
Carbamazepin. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .202
Carbamazepin-Epoxid . . . . . . . . . . . . . . . . . 202
Carnitin (frei) im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . 202
Carnitin gesamt (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 202
Carnitin im Sperma (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . 202
384 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

CASA (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 203
Caspofungin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 203
CDT – Carbohydrate Deficient Transferrin
203
CEA . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 203
CEA im Liquor (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . .203
Ceftazidim (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 203
CH 100 (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 204
Chinidin im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 204
Chlamydia trachomatis-Antikörper (IgA) 204
Chlamydia trachomatis-Antikörper (IgG) 204
Chlamydia trachomatis-DNA-Nachweis . 204
Chlamydophila pneumoniae-Antikörper
(IgA). . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .205
Chlamydophila pneumoniae-Antikörper
(IgG). . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .205
Chlamydophila pneumoniae-Antikörper
(IgM) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 205
Chlamydophila pneumoniae-DNA-Nachweis
205
Chlamydophila psittaci-Antikörper (W)(N) . 205
Chloramphenicol (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 206
Chlordiazepoxid (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 206
Chlorid im Dialysat (N) . . . . . . . . . . . . . . . . . 206
Chlorid im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 206
Chlorid im Urin (N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 206
Chloroquin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 207
Chlorpromazin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 207
Chlorpropamid (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .207
Chlorprothixen (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .207
Cholesterin (gesamt) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 207
Cholinesterase . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 207
Chrom im Blut (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 208
Chrom im Serum (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . 208
Chrom im Urin (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 208
Chrom in Erythrozyten (U) . . . . . . . . . . . . . . 208
Chromogranin A . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 208
Chromosomenanalyse von Abortund
Gewebematerial
(Fibroblastenkultur) (W) . . . . . . . 209
Ciprofloxacin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 209
Citalopram (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 209
Citrat im Sperma (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . 209
Citrat im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 209
CK gesamt . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 210
CK-Isoenzyme . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 210
CK-MB-Aktivität/Anteil . . . . . . . . . . . . . . . 210
Index
Clindamycin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 210
Clobazam (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 210
Clomethiazol (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 211
Clomipramin. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .211
Clonazepam (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 211
Clostridium difficile-Toxin A/B . . . . . . . . . 211
Clozapin im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 211
CO-Hämoglobin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 212
Cocain im Urin. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .212
Coenzym Q10 (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 212
Coeruloplasmin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 212
Coffein (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 212
Collagen Typ I A1-Gen-Polymorphismus (U)
213
Collagen-Bindungsaktivität (W) . . . . . . . . . . 213
Cortisol im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 213
Cortisol im Speichel (W) . . . . . . . . . . . . . . . . 213
Cortisol, freies im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . 213
Cotinin im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 214
Cotinin im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .214
Coxiella burnetii-Antikörper (W) . . . . . . . . . 214
Coxsackie Virus-Antikörper . . . . . . . . . . . . 214
CRP hochsensitiv . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 214
Cryptococcus neoformans-
Antigennachweis (W) . . . . . . . . . 215
CT-Pro-Arginin-Vasopressin (W) . . . . . . . . . 215
CTX (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 215
Cyanid im Blut (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 216
Cyclobarbital (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 216
Cyclosporin A monoklonal . . . . . . . . . . . . . 216
CYFRA 21-1 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 216
Cystatin C . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 216
Cysticercus cellulosae-Antikörper (U) . . . . 217
Cystin im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 217
Cystin-Aminopeptidase (W)(N) . . . . . . . . . . . 217
Cystische Fibrose (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 217
Cytomegalie-Virus pp65-Antigen-
Nachweis (W) . . . . . . . . . . . . . . . . 217
Cytomegalie-Virus-Antiörper (IgG,
Liquor/Serum) . . . . . . . . . . . . . . 218
Cytomegalie-Virus-Antikörper (IgG-
Avidität) (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . 218
Cytomegalie-Virus-DNA-Nachweis . . . . . 218
Cytomegalie-Virus-Serologie . . . . . . . . . . . 218
D
D-Dimere . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 219
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 385

Index
Daptomycin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 219
Delta-Aminolävulinsäure im Urin (W) . . . . 219
Demoxepam (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 219
Dengue-Virus-Antikörper (U) . . . . . . . . . . . . 220
Desethylamiodaron im Serum . . . . . . . . . . 220
Desipramin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 220
Desmethylclobazam (W) . . . . . . . . . . . . . . . . .220
Desmethylclozapin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . .220
Desmethyldiazepam (W) . . . . . . . . . . . . . . . . .221
Desmethylmethsuximid (U) . . . . . . . . . . . . . . 221
Desoxypyridinolin im Urin (W)(N) . . . . . . . . 221
DHEA (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 221
DHEAS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 221
Diaminooxidase (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 222
Diaphorase in Erythrozyten (U)(N) . . . . . . . . 222
Diazepam (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 222
Dibenzepin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 222
Dibucain-Zahl (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 222
Dichlormethan im Blut (U) . . . . . . . . . . . . . . 223
Didanosin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 223
Diethylenglykol (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 223
Differentialblutbild . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 223
Digitoxin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 223
Digoxin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 224
Dihydrotestosteron im Serum (W) . . . . . . . . 224
Diphenhydramin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 224
Diphtherie Toxoid-Antikörper im Serum . 224
Direkter Coombstest . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 224
Disopyramid (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 225
Donepezil (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 225
Dopamin im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 225
Doxepin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 225
Doxycyclin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 225
Doxylamin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 225
Drogen-Nachweis im Haar (U) . . . . . . . . . . . 226
Drogen-Screening im Serum (N) . . . . . . . . . 226
Drogen-Screening im Urin . . . . . . . . . . . . . 226
Dronedaron (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 226
Duloxetin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 226
E
Echinokokken-Serologie (U) . . . . . . . . . . . . . 227
ECHO-Virus-Antikörper (W) . . . . . . . . . . . . .227
ECP (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 227
Ehrlichien-Antikörper (IgG) (W) . . . . . . . . . 227
Ehrlichien-Antikörper (IgM) (W) . . . . . . . . . 227
Eisen im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 228
Eisen im Urin (Eisenstoffwechsel) (U) . . . . 228
Eiweiß (gesamt) im Liquor . . . . . . . . . . . . . 228
Eiweiß (gesamt) im Serum . . . . . . . . . . . . . 228
Eiweiß (gesamt, quantitativ) im Punktat (N) 229
Eiweiß (gesamt, quantitativ) im Urin . . . . 229
Eiweiß im Dialysat (N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 229
Eiweißelektrophorese im Serum . . . . . . . . 229
Elektrolyte im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . 229
Entamoeba histolytica-Antikörper (U) . . . . 230
Enterohämorrhagischer E.coli im Stuhl . . 230
Enteroviren-Antikörper . . . . . . . . . . . . . . . . 230
Enteroviren-Nachweis (W) . . . . . . . . . . . . . . . 230
Epstein-Barr-Virus-Antikörper
(Liquor/Serum) . . . . . . . . . . . . . 231
Epstein-Barr-Virus-DNA-Nachweis . . . . . 231
Epstein-Barr-Virus-Serologie . . . . . . . . . . . 231
Erythropoietin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 231
Escitalopram (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 232
Ethambutol (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .232
Ethanol im Blut . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 232
Ethosuximid . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 232
Ethylbenzol im Blut (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . 232
Ethylenglykol (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .233
Ethylglucuronid im Urin (W) . . . . . . . . . . . . .233
Everolimus (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 233
F
Faktor II-Aktivität (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 233
Faktor II-Gen-Mutation . . . . . . . . . . . . . . . . 233
Faktor IX-Aktivität (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 234
Faktor V-Aktivität (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 234
Faktor V-Gen-Mutation . . . . . . . . . . . . . . . . 234
Faktor VII-Aktivität (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . 234
Faktor VIII-Aktivität . . . . . . . . . . . . . . . . . . 235
Faktor X-Aktivität (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . .235
Faktor XI-Aktivität (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 235
Faktor XII-Aktivität (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . 235
Faktor XIII-Aktivität (U) . . . . . . . . . . . . . . . . 236
Familiäres Mittelmeerfieber (U) . . . . . . . . . . 236
Fasciolosis-Antikörper (U) . . . . . . . . . . . . . . .236
Felbamat (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 236
Ferritin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 237
Fetale Erythrozyten (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . 237
Fette im Stuhl (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 237
Fettsäuren, langkettige (C14-C20) (U) . . . . 237
Fettsäuren, sehr langkettige (C22-C26) (U) 237
386 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Fetuin (alpha2-HS-Glykoprotein, Calciumbindendes
Glykoprotein) (W) . . 238
FGF-23, C-terminal (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . 238
Fibrinogen . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 238
Fibrinspaltprodukte . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 238
Fibronectin im Aszites (W) . . . . . . . . . . . . . . 239
Fibronectin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .238
FK 506 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 239
Flecainid (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .239
Fluconazol (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 239
Flucytosin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 239
Flunitrazepam (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 239
Fluorid im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 240
Fluorid im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 240
Fluorid-Zahl (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .240
Fluoxetin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 240
Flupentixol (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .240
Fluphenacin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 241
Flurazepam (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 241
Fluvoxamin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 241
Folsäure . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 241
Folsäure in Erythrozyten (W) . . . . . . . . . . . . .242
Francisella tularensis-Antikörper (U) . . . . . 242
Freie Fettsäuren (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 242
Freie Leichtketten im Serum. . . . . . . . . . . .242
Freie Leichtketten im Urin (W) . . . . . . . . . . . 243
Freie Leichtketten Typ Kappa im Serum . 243
Freie Leichtketten Typ Kappa im Urin (W) 243
Freie Leichtketten Typ Lambda im Serum243
Freie Leichtketten Typ Lambda im Urin (W)
244
Freier Androgen-Index . . . . . . . . . . . . . . . . . 244
Freies β-HCG (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 244
Freies Carbamazepin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . 245
Freies Hämoglobin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . .245
Fruktosamin im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . . 245
Fruktose im Blut (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 245
Fruktose im Seminalplasma (U) . . . . . . . . . . 245
FSH . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 246
FSME-Antikörper (IgG, Liquor/Serum) (W)
246
FSME-Serologie (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 246
FSME-Virus-Antikörper (IgG) (W) . . . . . . . 246
FSME-Virus-Antikörper (IgM) (W) . . . . . . . 247
FSME-Virus-RNA-Nachweis (W) . . . . . . . . 247
fT3 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 247
fT4 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 247
Index
FTA-ABS-19s-IgM (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . 247
FTA-ABS-IgG (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .248
G
Gabapentin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .248
Galaktokinase in Erythrozyten (U) . . . . . . . . 248
Galaktose im Blut (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . 248
Galaktose im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 248
Galaktose-1-Phosphat (U) . . . . . . . . . . . . . . . 248
Galaktose-1-Phosphat-Uridyl-Transferase in
Erythrozyten (U) . . . . . . . . . . . . . 249
Gallensäuren im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . .249
Gallensäuren im Stuhl (U) . . . . . . . . . . . . . . . 249
Gamma-Linolensäure (U)(N) . . . . . . . . . . . . . 250
Gastrin im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 250
Gelbfieber-Antikörper (U) . . . . . . . . . . . . . . . 250
Gentamicin im Serum. . . . . . . . . . . . . . . . . .250
Gerinnungsuntersuchungen . . . . . . . . . . . . . 251
GFR nach CKD-Epi Formel . . . . . . . . . . . . 251
GHB im Serum (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . .251
GHB im Urin (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 251
GLDH . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 251
Gliadin-Antikörper im Stuhl (IgA) (W) . . . .252
Glibenclamid (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 252
Glibornurid (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 252
Glimepirid (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 252
Glucagon (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .252
Glukose im Blut . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 253
Glukose im Dialysat (N) . . . . . . . . . . . . . . . . . 253
Glukose im Liquor . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 253
Glukose im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 253
Glukose-6-Phosphat-Dehydrogenase in
Erythrozyten (W) . . . . . . . . . . . . . 253
Glutarsäure (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 254
Glutathion gesamt im Vollblut (W) . . . . . . . .254
Glutathion, reduziert im Vollblut (W) . . . . . 254
Glutathion-Peroxidase (W) . . . . . . . . . . . . . . .254
Glutathion-Reduktase in Erythrozyten (U) . 254
Gold im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 255
GOT . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 255
GPT . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 255
H
Hämochromatose, hereditär . . . . . . . . . . . . 256
Hämoglobin / Hämoglobin-Haptoglobin-
Komplex im Stuhl (W) . . . . . . . . 256
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 387

Index
Hämoglobin-Mutationsnachweis (W) . . . . . 256
Hämopexin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .256
Hämosiderin (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 257
Haemophilus influenzae Typ b-IgG-
Antikörper (W) . . . . . . . . . . . . . . . 255
Haloperidol (Haldol) (W) . . . . . . . . . . . . . . . . 255
HAMA (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 256
Hantavirus-Antikörper (IgG-Immunoblot,
Bestätigung) (W) . . . . . . . . . . . . . 257
Hantavirus-Antikörper (IgM-Immunoblot,
Bestätigung) (W) . . . . . . . . . . . . . 257
Hantavirus-Serologie (W) . . . . . . . . . . . . . . . . 257
Haptoglobin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 257
Harnsäure im Punktat (N) . . . . . . . . . . . . . . . .258
Harnsäure im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 258
Harnsäure im Urin. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .258
Harnstoff im Serum. . . . . . . . . . . . . . . . . . . .258
Harnstoff im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 258
Hb-Elektrophorese (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 259
HbA1c . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 259
HBDH . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 259
HBe-Antigen . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 259
HBs-Antigen. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .260
HDL-Cholesterin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 260
Helicobacter pylori-Antikörper (IgA-EIA)
260
Helicobacter pylori-Antikörper (IgG-EIA)
260
Helicobacter pylori-Nachweis im Atemtest
260
Helicobacter pylori-Serologie. . . . . . . . . . .261
Heparin-induzierte Thrombozytopenie. . .261
Hepatitis A-Serologie . . . . . . . . . . . . . . . . . . 261
Hepatitis A-Virus-PCR (W) . . . . . . . . . . . . . . 261
Hepatitis B-DNA-Nachweis quantitativ . . 262
Hepatitis B-Serologie . . . . . . . . . . . . . . . . . . 262
Hepatitis B-Virus-Resistenzbestimmung
(genotypisch, Pol-Gen) (W) . . . . 262
Hepatitis C-RNA-Nachweis quantitativ . . 262
Hepatitis C-Serologie . . . . . . . . . . . . . . . . . . 263
Hepatitis C-Virus-Genotypisierung . . . . . . 263
Hepatitis D-Diagnostik (W) . . . . . . . . . . . . . . 263
Hepatitis D-RNA-Nachweis (W) . . . . . . . . . 263
Hepatotrope Erreger . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 264
HER-2/neu-Protein im Serum (W) . . . . . . . . 264
Hereditäre Fruktose-Intoleranz (U) . . . . . . . 264
Hereditäre Pankreatitis (U) . . . . . . . . . . . . . . .264
Herpes simplex-Virus Typ 1/2-Antikörper
(IgG, Liquor/Serum). . . . . . . . .264
Herpes simplex-Virus Typ 1/2-DNA-
Nachweis. . . . . . . . . . . . . . . . . . .265
Herpes simplex-Virus Typ 1/2-Serologie . 265
Hexachlorbenzol im Blut (U) . . . . . . . . . . . . 265
Hippursäure im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . 265
Histamin im Blut (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 265
Histamin im Plasma (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . 266
Histamin im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 266
Histoplasma capsulatum-Antikörper (U) . . 266
HIV-1-RNA-Nachweis quantitativ. . . . . . .266
HIV-Antikörper (Bestätigung) . . . . . . . . . . 267
HIV-Antikörper (Suchtest) . . . . . . . . . . . . . 267
HLA-A-,B-,C-Typisierung (U) . . . . . . . . . . . 267
HLA-B*5701-Gentest (U) . . . . . . . . . . . . . . . 267
HLA-B27 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 267
HLA-DR-, DP-, DQ-Typisierung (U) . . . . . 268
HLA-Typisierung (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 268
Holo-Transcobalamin (W) . . . . . . . . . . . . . . . 268
Homocystein. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .269
Homogentisinsäure im Urin (U)(N) . . . . . . . . 269
Homovanillinsäure im Urin. . . . . . . . . . . . .269
hPLAP (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 269
Humane granulozytäre Ehrlichiose-
Antikörper (IgG) (W) . . . . . . . . . 270
Humane granulozytäre Ehrlichiose-
Antikörper (IgM) (W) . . . . . . . . . 270
Humanes Herpes-Virus Typ 6-Antikörper 270
Humanes Herpes-Virus Typ 7-Antikörper (W)
270
Humanes Herpes-Virus Typ 8-IgG-
Antikörper (W) . . . . . . . . . . . . . . . 270
Humanes Papilloma-Virus-DNA-Nachweis
271
Humanes placentares Lactogen (U)(N) . . . . . 271
Hydrochlorothiazid (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . .271
Hydroxybutyrat (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 271
Hydroxyprolin im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . 272
Hydroxyprolin, frei (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . .272
Hyperhomocysteinämie, hereditär . . . . . . . 272
Hypochrome Erythrozyten . . . . . . . . . . . . . 273
I
Ibuprofen (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .273
IgA (sekretorisch) (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 273
IgA im Liquor . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 273
388 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

IgA im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 273
IgA im Serum (allergenspezifisches) (W) . . 273
IgA im Stuhl (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 274
IgA im Urin (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .274
IgA-Subklassen (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 274
IgA&kappa; (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 274
IgA&lambda; (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 274
IgD im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 274
IgE im Serum (allergenspezifisches) . . . . . 275
IgE im Serum (gesamt) . . . . . . . . . . . . . . . . 275
IGFBP-3 (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .275
IgG 1 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 275
IgG 2 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 276
IgG 3 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 276
IgG 4 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 276
IgG im Liquor . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 276
IgG im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 276
IgG im Serum (allergenspezifisches) . . . . 276
IgG im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 277
IgG, oligoklonal (Liquor/Serum) . . . . . . . . 277
IgG-Subklassen . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 277
IgG&lambda; (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 277
IgM im Liquor . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 277
IgM im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 278
IgM&kappa; (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 278
IgM&lambda; (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 278
Imatinib (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 278
Imipramin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 278
Immunfixationselektrophorese im Serum 278
Immunfixationselektrophorese im Urin . . 279
Indometacin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 279
Influenza A-Virus-RNA-Nachweis . . . . . . 279
Influenza A/B-Virus-Serologie . . . . . . . . . . 279
Influenza B-Virus-RNA-Nachweis . . . . . . 280
Inhibin B (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 280
INR . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 280
Insulin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 280
Interferon-Antikörper (W) . . . . . . . . . . . . . . . 280
Interleukin 1 (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 281
Interleukin 28B Genotypisierung (IL28B)
OMIM #609532 (N) . . . . . . . . . . 281
Interleukin 6 (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 281
Interleukin 8 (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 281
Isoniazid (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 282
Isopropanol im Blut (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . 282
Itraconazol (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 282
J
Index
JC-(Polyoma)-Virus-DNA-Nachweis . . . . 282
Jod im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 282
Jod im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 282
K
Kälte-Agglutinine . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 283
Kalium im Dialysat . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 283
Kalium im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 283
Kalium im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 283
Kappa-/Lambda-Quotient im Serum . . . . . 283
Katecholamine im Plasma (W) . . . . . . . . . . . 284
Katecholamine im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . 284
Katzenkratzkrankheit-Serologie (W) . . . . . . 284
Kobalt im Blut (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 285
Kobalt im Haar (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 285
Kobalt im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .285
Konkrementanalyse (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . 285
Kreatinin im Serum. . . . . . . . . . . . . . . . . . . .285
Kreatinin im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 285
Kreatinin-Clearance (N) . . . . . . . . . . . . . . . . . 286
Kryoglobuline . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 286
Kryptosporidien-Antigen im Stuhl . . . . . . 286
Kupfer im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 287
Kupfer im Urin (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 287
L
Löslicher Interleukin 2-Rezeptor (W) . . . . . 294
Löslicher Transferrin-Rezeptor (W) . . . . . . . 295
Lacosamid (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 287
Lactat im Liquor (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 287
Lactat im Plasma (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 287
Lactat im Punktat (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . 288
Laktoferrin im Stuhl (W) . . . . . . . . . . . . . . . . 288
Laktoseintoleranz-Polymorphismus (MCM6-
Gen) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 288
Lamivudin (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 288
Lamotrigin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 289
LBP (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 289
LDH . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 289
LDH im Punktat (N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 289
LDH-Isoenzyme (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 289
LDL-Cholesterin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 289
LDL-Cholesterin-Subfraktionen (W)(N) . . . .290
Legionella pneumophilia-DNA-Nachweis290
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 389

Index
Legionellen-Serologie . . . . . . . . . . . . . . . . . 290
Leishmania donovani-Antikörper (W)(N) . . .290
Leptin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 291
Leptospiren-Antikörper (U) . . . . . . . . . . . . . . 291
Leukämie- und Lymphom-Diagnostik (U) . 291
Levetiracetam . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 291
Levodopa (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 292
Levomepromazin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 292
LH. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .292
Lidocain (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 292
Lipase. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .292
Lipidelektrophorese (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . 292
LipoDens-Lipoproteinprofil . . . . . . . . . . . . 293
Lipoprotein X (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 293
Lipoprotein(a) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 293
Lipoprotein-assoziierte Phospholipase
A2 (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 293
Listeria monocytogenes DNA-Nachweis (W)
293
Listerien-Antikörper (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . 293
Lithium . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 294
Lorazepam (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 294
Lormetazepam (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .294
LSD im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 295
Lues-Serologie (Stufendiagnostik) . . . . . . 295
Lupusantikoagulanz . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 295
Lycopene (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 296
Lymphotrope Erreger . . . . . . . . . . . . . . . . . . 296
Lymphozytendifferenzierung . . . . . . . . . . . 296
Lysozym im Liquor (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . 296
Lysozym im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . 296
Lysozym im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 296
M
Magnesium im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . 297
Magnesium im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 297
Malaria-Antikörper (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . .297
Malondialdehyd (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 297
Mandelsäure im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . 298
Mangan im Blut (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .298
Mangan im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 298
Maprotilin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 298
Masern-Serologie . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 298
Masern-Virus-Antikörper (IgG,
Liquor/Serum) . . . . . . . . . . . . . . 298
MDRD-Clearance . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 299
Mebendazol (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 299
Medikamentennachweis im Urin (U) . . . . . .299
Medroxyprogesteron (U) . . . . . . . . . . . . . . . . 299
Melanin im Urin (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 299
Melatonin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 300
Melperon (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .300
Met-Hämoglobin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 300
Metanephrin im Plasma (W) . . . . . . . . . . . . . 300
Metanephrin im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . 300
Methadon im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 301
Methanol im Blut (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 301
Methanol im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 301
Methotrexat. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .301
Methsuximid (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 301
Methylhippursäure gesamt im Urin (W) . . . 302
Methylhistamin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 302
Methylmalonsäure (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 302
Methylphenidat (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 302
Mexiletin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .302
Mianserin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 303
Micropolyspora faeni-Antikörper (IgG) . . 303
Midazolam (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 303
Mikrosomale Antikörper . . . . . . . . . . . . . . . 303
Mirtazapin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 303
Moclobemid (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .303
Molybdän im Serum (U) . . . . . . . . . . . . . . . . .304
Molybdän im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 304
MRSA-Schnelltest . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 304
Mumps-Serologie . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 304
Mumps-Virus-Antikörper (IgG,
Liquor/Serum) . . . . . . . . . . . . . . 304
Mutterschaftsvorsorge . . . . . . . . . . . . . . . . . 305
Mycobacterium tuberculosis-Komplex-DNA-
Nachweis. . . . . . . . . . . . . . . . . . .305
Mycophenolat Mofetil (W) . . . . . . . . . . . . . . .305
Mycoplasma pneumoniae-DNA-Nachweis
305
Mycoplasmen-Antikörper . . . . . . . . . . . . . . 306
Mykobakterium tuberculosis-spezifische T-
Lymphozyten . . . . . . . . . . . . . . . 306
Myoglobin im Serum (W) . . . . . . . . . . . . . . . .306
Myoglobin im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . 306
N
N-Acetylglucosaminidase (W) . . . . . . . . . . . 307
N-Desmethyl-Tamoxifen (U) . . . . . . . . . . . . . 307
Naproxen (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 307
Natürliche Killerzellen . . . . . . . . . . . . . . . . . 308
390 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Natrium im Dialysat (N) . . . . . . . . . . . . . . . . . 307
Natrium im Serum/Plasma . . . . . . . . . . . . . 307
Natrium im Urin (N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 307
Neisseria gonorrhoeae-DNA-Nachweis . . 308
Neopterin im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 308
Neopterin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 308
Netilmicin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 309
Nicht-tuberkulöse Mykobakterien, NTM-
DNA-Nachweis . . . . . . . . . . . . . 309
Nickel im Blut (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 309
Nickel im Urin (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 309
Nicotinamid (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 309
Nitrazepam (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 310
NMP22 (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 310
Noradrenalin im Plasma (W) . . . . . . . . . . . . . 310
Noradrenalin im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . . . 310
Normetanephrin im Plasma (W) . . . . . . . . . . 311
Normetanephrin im Urin (W) . . . . . . . . . . . . 311
Noro-Virus-RNA-Nachweis im Stuhl . . . . 311
Nortriptylin im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . 311
NSE . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 311
NSE im Liquor (N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 312
O
O-Desmethyl-Venlafaxin (W) . . . . . . . . . . . . 312
Olanzapin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 312
Opiate im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 312
Ortho-Kresol (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 312
Osmolalität im Serum. . . . . . . . . . . . . . . . . .313
Osmolalität im Urin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 313
Osmotische Resistenz der Erythrozyten (N) 313
Ostase (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 313
Osteocalcin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 313
Oxalsäure im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 314
Oxazepam (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 315
Oxcarbazepin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 315
Oxidativer Burst (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 315
Oxidiertes LDL-Cholesterin (W)(N) . . . . . . . 315
Oxypurinol (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 315
P
Palladium im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . .316
Palladium (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 315
Pankreas-Amylase im Serum (U) . . . . . . . . . 316
Pankreas-Elastase 1 im Serum (W) . . . . . . . .316
Pankreas-Elastase 1 im Stuhl . . . . . . . . . . . 316
Index
Pankreatisches Polypeptid (W) . . . . . . . . . . . 316
Pantothensäure (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .317
PAPP-A (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 317
Paracetamol . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 317
Parainfluenza-Virus-Serologie (W) . . . . . . . .317
Parathormon intakt . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 318
Paroxetin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 318
Parvovirus B19-Antikörper (IgG) . . . . . . . 318
Parvovirus B19-Antikörper (IgM) . . . . . . . 318
Parvovirus B19-DNA-Nachweis (W) . . . . . . 319
PCP im Serum (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 319
PCP im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 319
Perazin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 319
Perphenazin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 319
pH-Wert im Stuhl . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 319
Phenacetin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 320
Phencyclidin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .320
Phenobarbital . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 320
Phenol im Urin (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 320
Phenprocoumon (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .320
Phenylalanin im Plasma (U) . . . . . . . . . . . . . 320
Phenylbutazon (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 321
Phenylglyoxylsäure im Urin (U) . . . . . . . . . . 321
Phenytoin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 321
Phosphat im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 321
Phosphat im Urin. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .321
Phospho-Tau (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 322
Phosphohexose-Isomerase im Liquor (W)(N)
322
Phosphohexose-Isomerase im Serum (U) . . 322
Phospholipid-Antikörper . . . . . . . . . . . . . . . 322
Phytansäure (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 323
Pimozid (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 323
Pipamperon (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 323
Plasminogen-Aktivator-Inhibitor (U) . . . . . . 323
Plasminogen-Aktivität (W) . . . . . . . . . . . . . . .324
Plasminogen-Konzentration (W) . . . . . . . . . . 324
Platin im Serum (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 324
PMN-Elastase im Stuhl (W) . . . . . . . . . . . . . .324
Pneumocystis jiroveci DNA-Nachweis . . 324
Pneumokokken-Antikörper (W) . . . . . . . . . . 324
PNH-Diagnostik (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 325
Poliovirus-Antikörper (W) . . . . . . . . . . . . . . . 325
Polychlorierte Biphenyle (U) . . . . . . . . . . . . . 325
Porphobilinogen im Urin (W) . . . . . . . . . . . . 325
Porphyrie-Diagnostik (W) . . . . . . . . . . . . . . . 326
Porphyrine im Stuhl (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . 326
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 391

Index
Porphyrine im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . 326
Porphyrine in Erythrozyten (W) . . . . . . . . . . 327
Präalbumin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 327
Prajmalin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .327
Prednisolon (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 327
Pregabalin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 327
Pregnandiol (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 327
Pregnantriol (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 328
Primidon . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 328
pro Gastrin Releasing Peptide (U) . . . . . . . . 328
Procalcitonin. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .328
Progesteron im Serum . . . . . . . . . . . . . . . . . 328
Proinsulin intakt (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 329
Prokollagen-I, N-terminales Propeptid (W) 329
Prokollagen-III-Peptid (W) . . . . . . . . . . . . . . .329
Prolaktin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 329
Promethazin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .330
Propafenon (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .330
Propranolol (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 330
Protein 14-3-3 im Liquor (W)(N) . . . . . . . . . . 330
Protein C-Aktivität . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 330
Protein C-Antigen (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 331
Protein C-Genotypisierung (W) . . . . . . . . . . .331
Protein S-100 im Liquor . . . . . . . . . . . . . . . 331
Protein S-100 im Serum. . . . . . . . . . . . . . . .331
Protein S-Aktivität . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 331
Protein S-Antigen, frei . . . . . . . . . . . . . . . . . 332
Protein S-Genotypisierung (W) . . . . . . . . . . . 332
Protein S-gesamt (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 332
Protein Z-Konzentration (W) . . . . . . . . . . . . . 332
Prothrombin-Fragmente F 12 (W) . . . . . . . . 333
PSA frei . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 333
PSA gesamt . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 333
PSA komplexiert (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 333
Pseudomonas aeruginosa-Antikörper (W) . 333
PTHrP (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 334
PTT. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .334
Pyrazinamid (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 334
Pyridinolin im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . 334
Pyrimethamin (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 334
Pyruvat im Plasma (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 335
Pyruvatkinase in Erythrozyten (U) . . . . . . . . 335
Q
Q-Fieber (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 335
Quecksilber im Blut (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . 335
Quecksilber im Haar (U) . . . . . . . . . . . . . . . . 335
Quecksilber im Speichel (W) . . . . . . . . . . . . . 335
Quecksilber im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . 336
Quetiapin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 336
Quick-Wert . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 336
Quotient APO B/APO A1 . . . . . . . . . . . . . . 336
R
Rötelnvirus-Antikörper (IgG, Liquor/Serum)
340
Rötelnvirus-Antikörper (IgG-Avidität) (W) 340
Rötelnvirus-Antikörper (IgG-Suchtest) . . 340
Rötelnvirus-Antikörper (IgM-Suchtest) . . 341
Rötelnvirus-RNA-Nachweis (W) . . . . . . . . . 341
Reboxetin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 336
Reiber Schema . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 337
Renin direkt . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 337
Reptilase-Zeit (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .337
Retikulozyten . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 337
Retikulozyten-Hb . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 337
Retinol-bindendes Protein (U) . . . . . . . . . . . .338
Rhagozyten im Punktat . . . . . . . . . . . . . . . . 338
Rhesusfaktor . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 338
Rheumafaktor . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 338
Rickettsien-Antikörper (IgG) (U) . . . . . . . . . 338
Rickettsien-Antikörper (IgM) (U) . . . . . . . . 338
Rifabutin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .339
Rifampicin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 339
Risperidon (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 339
Ristocetin-Cofaktor (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . 339
Ritalinsäure (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 339
Rotavirus-Antigen im Stuhl . . . . . . . . . . . . 340
Rotavirus-Antikörper (W) . . . . . . . . . . . . . . . .340
RSV-Antigen-Nachweis . . . . . . . . . . . . . . . . 341
RSV-Antikörper (IgA) (W) . . . . . . . . . . . . . . .342
RSV-Antikörper (IgG) (W) . . . . . . . . . . . . . . .342
RSV-RNA-Nachweis . . . . . . . . . . . . . . . . . . 342
Rufinamid (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 342
S
Saccharomyces cerevisiae-Antikörper (W) .342
Salicylate (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 343
Salmonella paratyphi B-Antikörper (U)(N) . 343
Salmonella typhi-Antikörper (H-
Antigene) (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . 343
Salmonellen-Antikörper. . . . . . . . . . . . . . . .343
Sandfliegen-Fieber-Virus-Antikörper (W) . 343
392 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Saure Phosphatase . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 344
Saure Prostata-Phosphatase. . . . . . . . . . . . .344
Saures α-1-Glycoprotein (U) . . . . . . . . . . . . . 344
SCC . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 344
Schilddrüsen-Autoantikörper . . . . . . . . . . . 344
Schistosomen-Antikörper (U) . . . . . . . . . . . . 344
Schwefel (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 345
SDS-PAGE-Elektrophorese. . . . . . . . . . . . .345
Selen im Blut (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .345
Selen im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 345
Septin9 (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 345
Serotonin im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . .346
Serotonin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 346
Sertralin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 346
SHBG. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .346
Shigellen-Antikörper (W) . . . . . . . . . . . . . . . . 346
Sialinsäure (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 347
Silber im Blut/Serum (U) . . . . . . . . . . . . . . . . 347
Silber im Speichel (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . .347
Silber im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 347
Silicium (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 347
Sirolimus (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 348
Somatomedin C im Serum . . . . . . . . . . . . . 348
Somatotropes Hormon . . . . . . . . . . . . . . . . . 348
Sotalol (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 348
Sterinämie-Screening (W) . . . . . . . . . . . . . . . 349
Stiripentol (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 349
Strongyloides stercoralis-Antikörper (U) . . 349
Strontium (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 349
Styrol im Blut (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 349
Sulpirid (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 349
Sultiam. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .350
Superoxiddismutase-Aktivität (W) . . . . . . . . 350
T
t,t-Muconsäure (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .350
T-Lymphozyten . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 350
T3 gesamt . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 350
T4 gesamt . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 351
Tamoxifen (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 351
Tau-Protein im Liquor . . . . . . . . . . . . . . . . . 351
Tb-Interferon-Test (N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . .351
TBG (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .352
Teicoplanin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 352
Temazepam (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 352
Testosteron . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 352
Testosteron, frei (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 352
Index
Tetanus-Toxoid-Antikörper im Serum . . . 353
Tetrachlorethen (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 353
Tetrachlormethan (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . 353
Tetrahydro-Aldosteron im Urin (U) . . . . . . . 353
Tetrahydrofuran (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 353
Tetrazepam (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 354
Thallium im Blut/Serum (W) . . . . . . . . . . . . . 354
Thallium im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 354
Theophyllin. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .354
Thiamazol (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 354
Thiocyanat im Blut (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 354
Thiopental (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 355
Thiopurin-S-Methyltransferase
Genotypisierung (U)(N) . . . . . . . . 355
Thiopurin-S-Methyltransferase (W) . . . . . . . 355
Thioridazin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 355
Thrombin-Antithrombin-Komplex (W) . . . . 355
Thrombinzeit . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 356
Thromboplastinzeit . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 356
Thrombozyten . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 356
Thrombozyten-Antikörper (U) . . . . . . . . . . . 356
Thymidin-Kinase. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .357
Thyreoglobulin. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .357
Tiagabin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 357
Tiaprid (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 357
Tilidin im Urin, qualitativ (U) . . . . . . . . . . . . 357
Tilidin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 357
tissue-Plasminogen-Aktivator (t-PA) (U) . . 358
Tobramycin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 358
Tollwut-Antikörper (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 358
Toluol im Blut (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 358
Topiramat (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 358
Toxic-schock-syndrome-Toxin-Nachweis (U)
358
Toxocara canis-Antikörper (U) . . . . . . . . . . . 359
Toxoplasma gondii-Antikörper (IgG-
Avidität) (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . 359
Toxoplasma gondii-Antikörper (IgG-
Suchtest) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 359
Toxoplasma gondii-Antikörper (IgM-
Suchtest) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 360
Toxoplasma gondii-DNA-Nachweis (W) . . 360
Toxoplasmose-Antikörper (Liquor/Serum) (W)
360
Toxoplasmose-Serologie . . . . . . . . . . . . . . . 361
TPA. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .361
TPPA (Lues-Suchreaktion) . . . . . . . . . . . . . 361
LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 393

Index
Tramadol (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 361
Transferrin. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .362
Transferrinsättigung . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 362
Transglutaminase-Antikörper im Stuhl
(IgA) (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 362
Tranylcypromin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 362
TRAP 5b (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 362
Trazodon (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 363
Treponema pallidum Antikörper in
Liquor/Serum . . . . . . . . . . . . . . . 363
Treponema pallidum-Antikörper (IgG/IgM)
363
Treponema pallidum-Antikörper (IgM-
Westernblot) (U) . . . . . . . . . . . . . . 363
Trichinella spiralis-Antikörper (U) . . . . . . . . 363
Trichloressigsäure im Urin (U) . . . . . . . . . . . 364
Trichlorethan im Blut (U)(N) . . . . . . . . . . . . . 364
Trichlorethanol im Blut (U) . . . . . . . . . . . . . . 364
Trichlorethanol im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . 364
Trichlorethen (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 364
Trichlormethan im Blut (U)(N) . . . . . . . . . . . . 365
Triglyceride. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .365
Trimipramin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 365
Triple-Test (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 365
Trizyklische Antidepressiva im Urin (U) . . 365
Tropheryma whippelii-DNA-Nachweis (W) 365
Troponin I (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 366
Troponin T-Schnelltest (N) . . . . . . . . . . . . . . .366
Trypanosoma cruzi-Antikörper (U) . . . . . . . 366
Trypsin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 366
Tryptase . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 367
TSH basal . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 367
Tumor M2-PK im Stuhl (W) . . . . . . . . . . . . . 367
Tumor M2-PK (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 367
Tumor Nekrose Faktor (U) . . . . . . . . . . . . . . . 368
U
UDP-Galaktose-Epimerase (U)(N) . . . . . . . . 368
Urinsediment . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 368
Urinstatus . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 368
V
Valproinsäure . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 368
Vanadium im Serum (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . 369
Vanadium im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . .369
Vancomycin . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 369
Vanillinmandelsäure im Urin . . . . . . . . . . . 369
Varizella-Zoster Virus-DNA-Nachweis . . 370
Varizella-Zoster-Virus-Antikörper (IgA) . 370
Varizella-Zoster-Virus-Antikörper (IgG) . 370
Varizella-Zoster-Virus-Antikörper (IgG,
Liquor/Serum) . . . . . . . . . . . . . . 370
Varizella-Zoster-Virus-Antikörper (IgM) . 371
Varizella-Zoster-Virus-Serologie . . . . . . . . 371
VDRL . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 371
Venlafaxin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 371
Verapamil (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 372
Verotoxin I und II-DNA-Nachweis . . . . . . 372
Vigabatrin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .372
VIP (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 372
Vitamin A . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 372
Vitamin B1 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 373
Vitamin B12 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 373
Vitamin B2 (FAD) (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 373
Vitamin B6 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 373
Vitamin C (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 374
Vitamin D-Rezeptor-Polymorphismus (U) . 374
Vitamin E . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 374
Vitamin H (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .374
Vitamin K (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .374
Vitamin-D-Bindungsprotein (W)(N) . . . . . . . 375
Von Willebrand Faktor (vWF) –
Multimerenanalyse (W)(N) . . . . . 375
von-Willebrand-Faktor-Antigen (U)(N) . . . . 375
W
Wismut im Blut (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . .376
Wismut im Urin (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 376
X
Xanthin (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 376
Xylol im Blut (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .376
Xylose im Blut (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 377
Xylose im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 377
Y
Yersinien-Antikörper (IgA) . . . . . . . . . . . . . 377
Yersinien-Antikörper (IgG) . . . . . . . . . . . . . 377
Yersinien-Serologie. . . . . . . . . . . . . . . . . . . .377
394 LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN

Z
Zahnpathogene Keime, DNA-Nachweis . 378
Zink im Blut (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 378
Zink im Sperma (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 378
Zink im Urin (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 378
Zinkprotoporphyrin (W)(N) . . . . . . . . . . . . . . . 379
Zinn im Serum (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 379
Zinn im Urin (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 379
Ziprasidon (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .379
Zirkulierende Immunkomplexe (W) . . . . . . . 379
Zolpidem (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .380
Zonisamid (W) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 380
Zopiclon (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 380
Zotepin (U)(N) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 380
Zuclopenthixol (U) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .380
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LABOR MÜNSTER – DR. LÖER, DR. TREDER UND KOLLEGEN 395