Dissertation 09.05.10 Deckblatt - Stiftung Tierärztliche Hochschule ...

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1. Auflage 2010
© 2010 by Verlag: Deutsche Veterinärmedizinische Gesellschaft Service GmbH,
Gießen
Printed in Germany
ISBN 978-3-941703-74-2
Verlag: DVG Service GmbH
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Tierärztliche Hochschule Hannover
Überprüfung der Auswirkungen dreieckiger Zitzengummis in runden Becherhülsen
auf das Milchabgabeverhalten, Zitzenhautkondition und Neuinfektionsrate in einem
automatischen Melksystem
INAUGURAL-DISSERTATION
zur Erlangung des Grades einer
DOKTORIN DER VETERINÄRMEDIZIN
-Doctor medicinae veterinariae-
(Dr. med. vet.)
vorgelegt von
Mirjam Durstewitz
Castrop-Rauxel
Hannover 2010

Wissenschaftliche Betreuung: Univ.-Prof. Dr. Günter Klein
Institut für Lebensmittelqualität und -sicherheit
1. Gutachter: Univ.-Prof. Dr. Günter Klein
2. Gutachter: Univ.-Prof. Dr. Martina Hoedemaker, Ph. D.
Klinik für Rinder
Tag der mündlichen Prüfung: 05. Mai 2010

Teilergebnisse dieser Arbeit wurden in Form eines Posters auf folgender Fachtagung
präsentiert:
49. Arbeitstagung des Arbeitsgebietes Lebensmittelhygiene der Deutschen
Veterinärmedizinischen Gesellschaft e. V. (2008):
Durstewitz, M., Reinecke, F., Klein, G.:
Auswirkungen von dreieckigen Zitzengummis auf das Milchabgabeverhalten und die
Zitzenkondition bei Kühen der Rasse Deutsche Holstein in einem automatischen
Melksystem

INHALTVERZEICHNIS
Mirjam Durstewitz
I
______ _Inhaltsverzeichnis
Überprüfung der Auswirkungen dreieckiger Zitzengummis in runden Becherhülsen
auf das Milchabgabeverhalten, Zitzenhautkondition und Neuinfektionsrate in einem
automatischen Melksystem
1 Einleitung.................................................................................................. 1
2 Literatur .................................................................................................... 3
2.1 Anatomie und Physiologie der Milchdrüse................................................ 3
2.1.1 Drüsengewebe.......................................................................................... 5
2.1.2 Zitzengewebe ........................................................................................... 6
2.1.3 Muskulatur ................................................................................................ 6
2.1.4 Kreislaufsystem ........................................................................................ 7
2.1.5 Blutgefäßsystem....................................................................................... 7
2.1.6 Lymphgefäßsystem .................................................................................. 9
2.2 Milchentzugsverfahren............................................................................ 10
2.2.1 Kalb ........................................................................................................ 10
2.2.2 Hand ....................................................................................................... 12
2.2.3 Maschine ................................................................................................ 12
2.3 Zitzengewebsreaktionen......................................................................... 15
2.3.1 Arten von Zitzengewebsreaktionen......................................................... 15
2.3.2 Erfassung und Beurteilung von Zitzengewebereaktionen....................... 17
2.3.2.1 Adspektion und Palpation ....................................................................... 17
2.3.2.2 Kutimetrie ............................................................................................... 19
2.3.2.3 Ultraschallsensorik.................................................................................. 19
2.3.2.4 Radiographie .......................................................................................... 19
2.3.2.5 Thermographie ....................................................................................... 20
2.3.2.6 Laser-Doppler-Technik ........................................................................... 20
2.3.2.8 Endotoxinpenetration.............................................................................. 21
2.3.2.9 Plethysmographie (mechanisch)............................................................. 22
2.3.2.10 Plethysmographie (elektrisch)................................................................. 22
2.3.3 Einflussfaktoren für die Zitzengewebereaktion beim Melken .................. 23
2.3.3.1 Zitzengummi ........................................................................................... 23
2.3.3.2 Melkvakuum............................................................................................ 27
2.3.3.3 Pulsation................................................................................................. 28
2.3.3.4 Melkarbeit (Blindmelken) ........................................................................ 29
2.3.3.5 Melkintervall / Melkfrequenz ................................................................... 29
2.3.3.6 Melkdauer und Melkbarkeit (Milchflussrate) ........................................... 30
2.3.3.7 Laktationsstadium und Leistung ............................................................. 30
2.3.3.8 Melkzeug ................................................................................................ 31
2.3.3.9 Zitzenform............................................................................................... 31
2.3.3.10 Sonstige.................................................................................................. 32
2.4 Zitzengewebereaktionen und Eutergesundheit....................................... 33

Inhaltsverzeichnis
II
2.4.1 Maschinelle Melkverfahren und Auswirkungen auf die Eutergesundheit 33
2.4.2 Eutergesundheit...................................................................................... 35
2.4.3 Neuinfektionsrate.................................................................................... 36
2.4.4 Mastitisätiologie ...................................................................................... 37
2.4.5 Entzündungsparameter .......................................................................... 39
2.4.5.1 Somatische Zellen (SCC, somatic cell count)......................................... 39
2.4.5.2 N-Acetyl-ß-D-glukosaminidase (NAGase)-Aktivität................................. 41
2.4.5.3 Elektrische Leitfähigkeit (LF) .................................................................. 43
3 Material und Methoden ........................................................................... 45
3.1 Material................................................................................................... 45
3.1.1 Betrieb .................................................................................................... 45
3.1.2 Tiere ....................................................................................................... 45
3.1.3 Aufstallung.............................................................................................. 46
3.1.4 Fütterung ................................................................................................ 47
3.1.5 Melken .................................................................................................... 47
3.1.5.1 Melkparameter im VMS .......................................................................... 47
3.1.5.2 Zitzengummis ......................................................................................... 49
3.2 Methoden................................................................................................ 51
3.2.1 Versuchsplan.......................................................................................... 51
3.2.2 Versuchsdurchführung und Anordnung der Zitzengummis..................... 51
3.2.3 Methodik der Probennahme ................................................................... 53
3.2.3.1 Eutergesundheitsparameter ................................................................... 54
3.2.3.1.1 Bakteriologie........................................................................................... 55
3.2.3.1.2 Zytologie - Anzahl somatischer Zellen (SCC) ......................................... 56
3.2.3.1.3 Elektrische Leitfähigkeit (LF) .................................................................. 56
3.2.3.1.4 N-Acetyl-ß-D-glukosaminidase (NAGase)-Aktivität................................. 56
3.2.3.2 Zitzengewebsreaktion............................................................................. 58
3.2.3.2.1 Kutimetrie ............................................................................................... 58
3.2.3.2.2 Zitzenhautkondition................................................................................. 60
3.2.3.3 Melkphysiologische Parameter............................................................... 64
3.2.3.3.1 Dauer und Milchfluss .............................................................................. 64
3.2.3.3.2 Milchmenge ............................................................................................ 64
3.2.3.3.3 Sekretionsrate......................................................................................... 64
3.2.3.4 Auswertungsgrundlagen ......................................................................... 65
3.2.3.5 Verwendete Stichprobengröße ............................................................... 68
3.2.3.6 Statistik ................................................................................................... 69
4 Ergebnisse.............................................................................................. 70
4.1 Beschreibung der Herde......................................................................... 70
4.1.1 Versuchsablauf....................................................................................... 70
4.1.2 Alter, Laktationsnummer und Laktationsstadium .................................... 71
4.1.3 Klinisches Erscheinungsbild ................................................................... 72
4.2 Beschreibung der Melkparameter........................................................... 73
4.2.1 Melkfrequenz .......................................................................................... 73
4.2.2 Melkintervall (MI) .................................................................................... 75
4.2.3 Melkdauer (MD)...................................................................................... 77
4.2.4 Sekretionsrate......................................................................................... 80
4.3 Eutergesundheit...................................................................................... 81

III
______ _Inhaltsverzeichnis
4.3.1 Vorversuchszeitraum .............................................................................. 81
4.3.2 Hauptversuchszeitraum .......................................................................... 81
4.3.2.1 Gegenüberstellung der Zitzengummis .................................................... 83
4.3.3 Erregerspektrum..................................................................................... 93
4.4 Zitzenkondition...................................................................................... 101
4.4.1 Beurteilung der Zitzenkondition ............................................................ 101
4.4.2 Zitzengewebefestigkeit ......................................................................... 110
4.5 Milchabgabeverhalten........................................................................... 117
4.5.1 Milchmenge .......................................................................................... 117
4.5.2 Sekretionsrate....................................................................................... 118
4.6 Neuinfektion.......................................................................................... 123
4.7 Gegenüberstellung der Gruppen RRD und RDR.................................. 125
4.7.1 Gleichheit der Voraussetzungen (Phase 1) .......................................... 125
4.7.2 Grundsätzlicher Vergleich von RRD mit RDR....................................... 127
4.7.3 RRD und RDR im Vergleich zur Eutergesundheit................................. 129
4.7.4 RRD und RDR im Vergleich zu Versuchsphase und Laktationsstadium131
4.8 Referenzgruppe.................................................................................... 138
5 Diskussion ............................................................................................ 145
5.1 Material und Methoden ......................................................................... 146
5.2 Beschreibung der Herde....................................................................... 146
5.3 Beschreibung der Melkparameter......................................................... 147
5.4. Eutergesundheit.................................................................................... 149
5.5 Zitzenkondition...................................................................................... 152
5.6 Milchabgabeverhalten........................................................................... 156
5.7 Neuinfektion.......................................................................................... 157
5.8 Gegenüberstellung der Gruppen RRD und RDR.................................. 158
5.9 Referenzgruppe.................................................................................... 161
6 Schlussfolgerung .................................................................................. 163
7 Zusammenfassung ............................................................................... 166
8 Summary .............................................................................................. 169
9 Literaturverzeichnis............................................................................... 171
10 Anhang ................................................................................................. 192

Abbildungsverzeichnis
ABBILDUNGSVERZEICHNIS
IV
Abb. 2-1: Injektionspräparat der Zitzenblutgefäße eines laktierenden Euter (links),
Querschnitte von Zitzen mit injizierten Venen (rechts)........................... 9
Abb. 2-2: Folgen der Ödembildung an der Zitzenkuppe; Hypothetisches Modell
(nach HAMANN et al. 1994c)............................................................... 17
Abb. 2-3: extreme Ringbildung............................................................................ 18
Abb. 2-4: Ringbildung.......................................................................................... 18
Abb. 3-1: Dreieckiger Zitzengummi TLC–A6 der Firma Milk-Rite, .......................
Zahlenangaben in mm (www.zitzengummis-billiger.de)....................... 50
Abb. 3-2: Fixieren des kurzen Milch- und Pulsschlauch an der Melkbecherhülse50
Abb. 3-3: Federkutimeter der Firma Hauptner, modifiziert nach HAMANN (1985)
bzw. HAMANN et al. (1996)................................................................. 58
Abb. 3-4: Schwankungsbereich wiederholter Messungen der Gewebefestigkeit
der Zitzenkuppe, am Beispiel der Zitze vl von Kuh Nr. 664 ................. 60
Abb. 4-1: Anzahl der Melkungen am Probentermin im Vergleich zur
durchschnittlichen Anzahl der Melkungen sieben Tage vor und nach
dem Versuchstermin............................................................................ 73
Abb. 4-2: Durchschnittliche prozentuale Verteilung der Melkungen pro Kuh in 24
Stunden während des Hauptversuchs, n = 746 Melkungen................. 74
Abb. 4-3: Prozentuale Häufigkeitsverteilung der Melkungen auf die Melkintervalle
(eingeteilt im Stundentakt), n = 746 Melkungen................................... 76
Abb. 4-4: Häufigkeitsverteilung der Viertelgemelke auf im Minutentakt eingeteilte
Melkdauer, getrennt nach Zitzengummiform: rund/eckig (n = 1192/1192)
............................................................................................................. 77
Abb. 4-5: Durchschnittliche Gemelksdauer in Bezug zur Laktation und
Laktationsstadium, n = 2984................................................................ 79
Abb. 4-6: Mittlere Milchsekretion in Abhängigkeit vom Laktationstag und
Melkintervall (MI) ................................................................................. 80
Abb. 4-7: Eutergesundheit der Gruppe RDR (rund-dreieckig-rund), aufgeteilt nach
Phase, Auswahldaten1, n = 360 .......................................................... 84
Abb. 4-8: Eutergesundheit der Gruppe RRD (rund-rund-dreieckig), aufgeteilt nach
Phase, Auswahldaten1, n = 360 .......................................................... 85
Abb. 4-9: Eutergesundheit Viertel VR, Gruppe RRD (rund-rund-dreieckig),
Auswahldaten1, eingeteilt nach Phasen, n = 180 ................................ 86
Abb. 4-10: Eutergesundheit Viertel HR, Gruppe RDR (rund-dreieckig-rund),
Auswahldaten1, eingeteilt nach Phasen, n = 180 ................................ 86
Abb. 4-11: Eutergesundheit Viertel VL, Gruppe RDR (rund-dreieckig-rund),
Auswahldaten1, eingeteilt nach Phasen, n = 180 ................................ 87
Abb. 4-12: Eutergesundheit Viertel HL, Gruppe RRD (rund-rund-dreieckig),
Auswahldaten1, eingeteilt nach Phasen, n = 180 ................................ 87
Abb. 4-13: Verteilung der Gesundheitskategorien nach Wechsel der Zitzengummis
von eckig nach rund, von VT 3-6 (eckige Zitzengummis) zu VT 7-10
(runde Zitzengummis), Gruppe RDR (rund-dreieckig-rund), n = 1192
Viertel .................................................................................................. 91

V
Abbildungsverzeichnis
Abb. 4-14: Verteilung der Gesundheitskategorien nach Wechsel der Zitzengummis
von rund nach eckig, von VT 3-6 (runde Zitzengummis) zu VT 7-10
(eckige Zitzengummis), Gruppe RRD (rund-rund-dreieckig), n = 1192
Viertel .................................................................................................. 92
Abb. 4-15: Adspektion der Zitzenspitze vor dem Melken, Gruppe RRD (rund-runddreieckig)
getrennt nach Phasen („P“), Auswahldaten1, n = 360....... 101
Abb. 4-16: Adspektion der Zitzenspitze vor dem Melken, Gruppe RDR (runddreieckig-rund)
getrennt nach Phasen („P“), Auswahldaten1, n = 360
........................................................................................................... 102
Abb. 4-17: Adspektion des Zitzenschaftes vor dem Melken, Gruppe RRD (rundrund-dreieckig)
getrennt nach Phasen („P“), Auswahldaten1, n = 360
........................................................................................................... 102
Abb. 4-18: Adspektion des Zitzenschaftes vor dem Melken, Gruppe RDR (runddreieckig-rund)
getrennt nach Phasen („P“), Auswahldaten1, n = 360
........................................................................................................... 103
Abb. 4-19: Verhärtung der Zitzenspitze nach dem Melken, Gruppe RRD (rundrund-dreieckig),
eingeteilt nach Phasen („P“), Auswahldaten1, n = 360
........................................................................................................... 104
Abb. 4-20: Verhärtung der Zitzenspitze nach dem Melken, Gruppe RDR (runddreieckig-rund),
eingeteilt nach Phasen („P“), Auswahldaten1, n = 360
........................................................................................................... 104
Abb. 4-21: Feuchtigkeit an der Zitzenspitze nach dem Melken, Gruppe RRD (rundrund-dreieckig),
eingeteilt nach Phasen („P“), Auswahldaten1, n = 360
........................................................................................................... 105
Abb. 4-22: Feuchtigkeit an der Zitzenspitze nach dem Melken, Gruppe RDR (runddreieckig-rund),
eingeteilt nach Phasen („P“), Auswahldaten1, n = 360
........................................................................................................... 105
Abb. 4-23: Beurteilung der Farbe des Zitzenschaftes nach dem Melken, Gruppe
RRD (rund-rund-dreieckig), Auswahldaten, n = 360 .......................... 106
Abb. 4-24: Beurteilung der Farbe des Zitzenschaftes nach dem Melken, Gruppe
RDR (rund-dreieckig-rund), Auswahldaten1, n = 360 ........................ 106
Abb. 4-25: Beurteilung der Ringbildung am Zitzenschaft nach dem Melken, Gruppe
RRD (rund-rund-dreieckig), Auswahldaten1, n = 360 ........................ 107
Abb. 4-26: Beurteilung der Ringbildung am Zitzenschaft nach dem Melken, Gruppe
RDR (rund-dreieckig-rund), Auswahldaten1, n = 360 ........................ 107
Abb. 4-27: Ausprägung der Formveränderung der Zitzenspitze nach dem Melken
mit dreieckigem Zitzengummi, (n = 288), Auswahldaten1, Phase 2 bis 3
........................................................................................................... 108
Abb. 4-28: Prozentuale Änderung der Gewebefestigkeit an den Probenterminen.
Der markierte Bereich (± 5 %) entspricht dem von ZECCONI et al.
(1992) geforderten Grenzwert............................................................ 110
Abb. 4-29: Prozentuale Änderung des Zitzengewebes an der Kuppe in Bezug zur
Eutergesundheitskategorie, Gruppe RRD (rund-rund-dreieckig),
Auswahldaten1, n = 360 .................................................................... 112
Abb. 4-30: Prozentuale Änderung des Zitzengewebes an der Kuppe in Bezug zur
Eutergesundheitskategorie, Gruppe RDR (rund-dreieckig-rund),
Auswahldaten1, n = 360 .................................................................... 112

Abbildungsverzeichnis
VI
Abb. 4-31: Prozentuale Änderung des Zitzengewebes an der Kuppe, getrennt nach
Viertelposition, Gruppe RRD (rund-rund-dreieckig), Auswahldaten1, n =
360..................................................................................................... 114
Abb. 4-32: Prozentuale Änderung des Zitzengewebes an der Kuppe, getrennt nach
Viertelposition, Gruppe RDR (rund-dreieckig-rund), Auswahldaten1, n =
360..................................................................................................... 115
Abb. 4-33: Durchschnittliche Viertelgemelksmenge an den Probenterminen,
getrennt nach Zitzengummiform ........................................................ 117
Abb. 4-34: Mittlere Milchsekretion [g/h] getrennt nach Zitzengummiform,
Auswahldaten, n = 800 ...................................................................... 122
Abb. 4-35: Prävalenz von Neuinfektionen in Abhängigkeit vom Zitzengummityp,
alle Viertel (n= 2984).......................................................................... 123
Abb. 4-36: Überlebenszeitkurve nach Kaplan-Meier, Anteil gesunder Viertel in
Abhängigkeit vom Zitzengummityp, alle Viertel, (n = 2984)............... 124
Abb. 4-37: Parameter: Spitze1, Gruppe RRD, n = 200/200 (Phase2/Phase3).... 134
Abb. 4-38: Parameter: Schaft1, Gruppe RRD, n = 200/200 (Phase2/Phase3).... 135
Abb. 4-39: Parameter: Spitze trocken feucht, Gruppe RRD, n = 200/200
(Phase2/Phase3) ............................................................................... 135
Abb. 4-40: Parameter: Schaft Form, Gruppe RRD, n = 200/200 (Phase2/Phase3)
........................................................................................................... 136
Abb. 4-41: Parameter: Spitze 1, Gruppe RDR, n = 200/200 (Phase2/Phase3)... 136
Abb. 4-42: Parameter: Schaft1, Gruppe RDR, n = 200/200 (Phase2/Phase3).... 137
Abb. 4-43: Parameter: Schaft Form, Gruppe RDR, n = 200/200 (Phase2/Phase3)
........................................................................................................... 137

TABELLENVERZEICHNIS
VII
Tabellenverzeichnis
Tab. 2-1: Beurteilung zytologisch-mikrobiologischer Befunde im Rahmen der
Mastitis-Kategorisierung (in Anlehnung an IDF, 1967) ........................ 35
Tab. 3-1: Parameter zur Auswahl der Tiere ........................................................ 46
Tab. 3-2: Parameter und Arbeitsschritte des Melkroboters................................. 48
Tab. 3-3: Technische Daten der verwendeten Zitzengummis............................. 50
Tab. 3-4: Versuchstermine.................................................................................. 52
Tab. 3-5: Versuchsplan und Anordnung der Zitzengummis ................................ 53
(o = rund; = dreieckig)...................................................................... 53
Tab. 3-6: Gemelksfraktion und untersuchte Parameter zur Eutergesundheit...... 55
Tab. 3-7: Charakteristika des verwendeten Federkutimeters.............................. 59
Tab. 3-8: Wiederholungsmessungen an der Zitzenkuppe zur Einschätzung der
Genauigkeit des Federkutimeters........................................................ 59
Tab. 3-9: Melkintervallgruppen............................................................................ 65
Tab. 3-10: Vierfeldertafel zur Kategorisierung der Eutergesundheit (in Anlehnung
an IDF, 1967)....................................................................................... 65
Tab. 3-11: Eutergesundheit während des Vorversuchs, Diagnose Ia ................... 66
Tab. 3-12: Modifizierte Vierfeldertafel zur Kategorisierung der Eutergesundheit
nach Diagnose II.................................................................................. 67
Tab. 3-13: Modifizierte Vierfeldertafel zur Kategorisierung der Eutergesundheit
nach Diagnose IV ................................................................................ 68
Tab. 3-14: Statistisch relevante Untergruppen des Gesamtdatenmaterials .......... 68
Tab. 4-1: Vorversuch, Versuchstage (VT), Anzahl der untersuchten Kühe, Viertel,
Melkungen und Messungen................................................................. 70
Tab. 4-2: Versuchstage (VT), Anzahl der untersuchten Kühe, Viertel, Melkungen
und Messungen ................................................................................... 71
Tab. 4-3: Durchschnittliches Alter, Laktationsnummer, Laktationstadium zum
jeweiligen Versuchstermin ................................................................... 71
Tab. 4-4: Laktationsnummer und –tage von Kühen, die durchgehend im
Hauptversuch involviert waren............................................................. 72
Tab. 4-5: Einteilung der Versuchstage nach durchschnittlicher Melkfrequenz (MF)
und Melkintervall (MI) .......................................................................... 75
Tab. 4-6: Einteilung der Melkintervalle (MI), 2984 Messungen, 746 Melkungen. 76
Tab. 4-7: Durchschnittliche Melkdauer [min.] mit verschiedener Zitzenposition und
-gummiform.......................................................................................... 78
Tab. 4-8: Durchschnittliche Gemelksdauer auf Viertelebene eingeteilt nach
Melkfrequenzgruppen, Auswahldaten, n = 800.................................... 78
Tab. 4-9: Darstellung der durchschnittlichen Melkdauer im Vergleich der
Laktationen innerhalb der Laktationsstadien, n = 2984........................ 79
Tab. 4-10: Darstellung der Eutergesundheitskategorien auf Viertelebene,
Vorversuch (VT -3, -2, -1), n = 416 Vierteldiagnosen........................... 81
Tab. 4-11: Darstellung der Eutergesundheitskategorien auf Viertelebene,
Hauptversuch, Auswahldaten, n = 800 Vierteldiagnosen..................... 82

Tabellenverzeichnis
VIII
Tab. 4-12: Gesundheitsparameter (elektrische Leitfähigkeit [mS/cm], NAGase-
Aktivität [lg von nmol * min -1 * ml -1 ], SCC [lg von Zellen/ml]), aufgeteilt
nach Gesundheitskategorie, Hauptversuch, Auswahldaten, n = 800... 82
Tab. 4-13: Laktationsphysiologische Parameter, getrennt nach
Gesundheitskategorie, Hauptversuch, Auswahldaten, n = 800 ........... 83
Tab. 4-14: Einteilung der Euterviertel in Gruppen und Phasen............................. 84
Tab. 4-15: Aufteilung der Versuchstage nach Zitzengummiform, Gruppe RRD,
Auswahldaten1, n = 360 ...................................................................... 89
Tab. 4-16: Aufteilung der Versuchstage nach Zitzengummiform, Gruppe RDR,
Auswahldaten1, n = 360 ...................................................................... 90
Tab. 4-17: Vergleichende Darstellung der Eutergesundheitskategorien auf
Viertelebene, getrennt nach Zitzengummiform (n = 2384), Phase 2, 3 93
Tab. 4-19: Verteilung des Erregerspektrums im Vorversuch, (n = 249
bakteriologisch positive Vierteldiagnosen)........................................... 94
Tab. 4-20: Übersicht über die Verteilung der Mischinfektionen (n = 42 Viertel) .... 95
Tab. 4-21: Verteilung des Erregerspektrums im Hauptversuch (Abschnitt 1, 2),
runde Zitzengummis, (n = 340 bakteriologisch positive
Vierteldiagnosen)................................................................................. 95
Tab. 4-22: Übersicht über die Verteilung der Mischinfektionen, Abschnitt 1-2, (n =
35 Viertel) ............................................................................................ 96
Tab. 4-23: Verteilung des Erregerspektrums im Hauptversuch (Abschnitt 3-6),
getrennt nach Zitzengummiform, (eckig = 278, rund = 303
bakteriologisch positive Vierteldiagnosen)........................................... 97
Tab. 4-24: Übersicht über die Zusammensetzung der Mischinfektionen [n] in
Abschnitt 3-6, n = 15 mit runden, n = 25 mit dreieckigen Zitzengummis
gemolkene Viertel ................................................................................ 97
Tab.4-25: Verteilung des Erregerspektrums im Hauptversuch (Abschnitt 7-10),
getrennt nach Zitzengummiform, (eckig = 254, rund = 196
bakteriologisch positive Vierteldiagnosen)........................................... 98
Tab. 4-26: Übersicht über die Zusammensetzung der Mischinfektionen [n] in
Abschnitt 7-10, n = 13 mit runden, n = 11 mit dreieckigen Zitzengummis
gemolkene Viertel ................................................................................ 99
Tab. 4-27: Verteilung des Erregerspektrums nach Laktationsstadium,
Hauptversuch..................................................................................... 100
Tab. 4-28: χ²-Homogenitätstest: Vergleich der verschiedenen Zitzenkonditionen
zwischen den Phasen, Auswahldaten1, P1-P3 durchgängig 1.Messung
........................................................................................................... 109
Tab. 4-29: Zitzengewebefestigkeit vor und nach dem Melken (n = 2984)........... 111
Tab. 4-30: Veränderungen der Zitzengewebefestigkeit, RRD/RDR (n = 360/360)
Auswahldaten1, P1 bis P3 durchgehend 1. Messung........................ 111
Tab. 4-31: Prozentuale Änderung des Zitzengewebes der Kuppe, getrennt nach
Gesundheitskategorie, Auswahldaten1, n = 720 ............................... 113
Tab. 4-32: Prozentuale Veränderung des Zitzengewebes der Kuppe, getrennt nach
Gesundheitskategorie und Viertelposition der Gruppe RRD,
Auswahldaten1, (Phase 1: n = 36 VV/ 36 HV, Phase 2: n = 72 VV/ 72
HV, Phase 3: n = 72 VV/ 72 HV)........................................................ 114

IX
Tabellenverzeichnis
Tab. 4-33: Prozentuale Veränderung des Zitzengewebes der Kuppe, getrennt nach
Gesundheitskategorie und Viertelposition der Gruppe RDR,
Auswahldaten1, (Phase 1: n = 36 VV/ 36 HV, Phase 2: n = 72 VV/ 72
HV, Phase 3: n = 72 VV/ 72 HV)........................................................ 116
Tab. 4-34: Milchsekretionsrate, getrennt nach Gesundheitskategorie,
Hauptversuch, n = 2984..................................................................... 118
Tab. 4-35: Milchsekretionsrate getrennt nach Gesundheitskategorie und
Versuchstagen, Gruppe RRD, Auswahldaten1, n = 360.................... 119
Tab. 4-36: Milchsekretionsrate getrennt nach Gesundheitskategorie und
Versuchstagen, Gruppe RDR, Auswahldaten1, n = 360.................... 119
Tab. 4-37: Milchsekretionsrate getrennt nach Viertelposition, Auswahldaten1, n =
720..................................................................................................... 120
Tab. 4-38: Milchsekretionsrate [g/h] pro Viertel, Mittelwerte getrennt nach
Melkintvervall (MI), Auswahldaten (n = 800)...................................... 121
Tab. 4-39: Milchsekretionsrate [g/h] pro Viertel, Mittelwerte getrennt nach
Melkintervall (MI) und Zitzengummiform, Auswahldaten (n = 800) .... 121
Tab. 4-40: Mittelwerte und Standardabweichungen der verschiedenen Parameter
in Phase 1, (RRD n = 74; RDR n = 74).............................................. 126
Tab. 4-41: Vergleich der Differenzen der Gruppen RRD und RDR (t-Test, n = 832)
........................................................................................................... 127
Tab. 4-42: Mittelwerte der untersuchten Parameter in Phase 2, getrennt nach
Gruppe (1. Messung), RDR = dreieckig, RRD = rund, Auswahldaten 128
Tab. 4-43: Mittelwerte der untersuchten Parameter in Phase 3, getrennt nach
Gruppe (1. Messung), RDR = rund, RRD = dreieckig, Auswahldaten 128
Tab. 4-44: Anzahl der gesunden (hier: normal sezernierenden) und kranken Viertel
in Phase 2, Gruppe RRD und RDR, Auswahldaten........................... 129
Tab. 4-45: Einfluss des Gesundheitszustandes (krank/gesund) auf die ............. 130
untersuchten Parameter der Gruppen RRD und RDR, (Varianzanalyse)
........................................................................................................... 130
Tab. 4-46: Einfluss von Gruppe (RDR gegen RRD), Gesundheitszustand (gesund
gegen krank) und Wechselwirkung von Gruppe und Gesundheitsstatus
auf die Parameter (Varianzanalyse) .................................................. 131
Tab. 4-47: Einfluss von Zitzengummiform und Phase auf die Parameter (n = 800)
........................................................................................................... 131
Tab. 4-48: Vergleich des Wechsels von Phase 2 zu Phase 3, Gruppe RRD,
Auswahldaten, (n = 400).................................................................... 132
Tab. 4-49: Vergleich des Wechsels von Phase 2 zu Phase 3, Gruppe RDR,
Auswahldaten, (n = 400).................................................................... 133
Tab. 4-50: χ²-Homogenitätstest, Vergleich der Verteilung von
Zitzenkonditionsparameter in Phase 2 und Phase 3.......................... 134
Tab. 4-51: Mittelwerte und Standardabweichungen von runden und dreieckigen
Zitzengummis (n = 203) ..................................................................... 138
Tab. 4-52: Einfluss von Zitzengummiform und Phase auf die Parameter (n = 203)
........................................................................................................... 139
Tab. 4-53: Mittelwerte und Standardabweichungen getrennt nach Phasen (n = 203)
........................................................................................................... 140
Tab. 4-54: Vergleich Phase 2 und 3 der Gruppe RDR........................................ 141

Tabellenverzeichnis
X
Tab. 4-55: Vergleich Phase 2 und 3 der Gruppe RRD........................................ 142
Tab. 4-56: Varianzanalyse: getrennt nach Kuh-Nummer, Gruppe RDR, n = 121 143
Tab. 4-57: Varianzanalyse: getrennt nach Kuh-Nummer, Gruppe RRD, n = 82 . 144
Tab. 6-1: Einfluss des Zitzengummityps auf die untersuchten Parameter ........ 165
Tab. A-1: Laktationsnummer und -stadium zum jeweiligen Versuchstermin ..... 192
Tab. A-2: Vergleichende Darstellung der Eutergesundheitskategorie auf
Viertelebene, getrennt nach Probenterminen .................................... 193

Abkürzungsverzeichnis
AMS Automatisches Melksystem
AMV Automatisches Melkverfahren
et al. et alii = und andere
g Gramm
ges. gesamt
Gr. Gruppe
h Stunde
HL hinten links
HR hinten rechts
IGF-I Insulin-like grow factor-I
kg Kilogramm
KNS Koagulase-negative Staphylokokken
kPa Kilopascal
l Liter
Laktationsnr. Laktationsnummer
Lakt.stadium Laktationsstadium
LF elektrische Leitfähigkeit (mS/cm)
lg/Log Logarithmus zur Basis 10
Melk. Melkungen
Mess. Messungen
MI Melkintervall
min. Minute
ml Milliliter
mm Millimeter
mS Millisiemens
n Anzahl
NAG bzw. NAGase N-Acety-ß-D-Glucosaminidase (nmol x min -1 x ml -1 )
PKME pulsierender kontinuierlicher Milchentzug
PMN polymorphkernige neutrophile Granulozyten
p.p. post partum
RRD rund rund dreieckig
RDR rund dreieckig rund
S. agalactiae Streptococcus agalactiae
S. aureus Staphylococcus aureus
S. dysgalactiae Streptococcus dysgalactiae
S. chromogenes Staphylococcus chromogenes
S. epidermidis Staphylococcus epidermidis
S. simulans Staphylococcus simulans
S. uberis Streptococcus uberis
SCC Anzahl somatischer Zellen (1000/ ml)
sec. Sekunde
sd Standardabweichung
Sign. Signifikanz/ signifikant
STH Somatotropes Hormon
T3 Trijodthyronin
XI
Abkürzungsverzeichnis

Abkürzungsverzeichnis
T4 Thyroxin
VL vorne links
VR vorne rechts
VAG Viertelanfangsgemelk
VGH Viertelhandgemelk
VMS ®
XII
Voluntary Milking System ®
VMS automatisch gemolkene Tiere
VT Versuchstag
x Mittelwert (arithmetisch)
ZMZ Zwischenmelkzeit
Zeichenerklärung
χ²-homogenitästest Chiquadrathomogenitätstest
∑ Summe
% Prozent
O rundes Zitzengummi
dreieckiges Zitzengummi
< kleiner
≤ kleiner gleich
> größer
≥ größer gleich
∅ Durchschnitt, durchschnittlich
+ Plus oder Zunahme
- Minus oder Abnahme
≠ ungleich
Statistik
p < 0,05 signifikant

1 Einleitung
1
Einleitung
In den letzten Jahren ist die weltweite Nachfrage nach Milch und Milchprodukten
stärker angestiegen als das Angebot. Als Gründe dafür können das
Wirtschaftswachstum in China, Brasilien, Russland und Indien, sowie die weltweite
Anpassung der Konsumenten an westliche Ernährungsgewohnheiten angesehen
werden. Diese Entwicklung führte zu einem Anstieg der Preise für Milchprodukte auf
dem Weltmarkt (VON KOERBER et al. 2008).
Im Bundesdurchschnitt erhielten Milcherzeuger im Februar 2009 für Milch mit 3,7 %
Fett und 3,4 % Eiweiß 24,4 Cent je Kilogramm und somit 13 Cent weniger als im
Vorjahresmonat (ZMP, 2009). Aufgrund kontinuierlich steigender Produktionskosten
besteht die Notwendigkeit zur kostendeckenden Milchgewinnung. Obwohl der
Beitrag der Milchviehwirtschaft (im Vergleich zu anderen Nutztierhaltungen) an der
Produktion von Treibhausgasen eher als gering einzustufen ist, wäre eine Steigerung
der individuellen Leistung (längere Verweildauer im Betrieb, höhere
Einstiegsleistung) wünschenswert (SCHWERIN 2009).
Eine weitere, unmittelbar einsetzbare Möglichkeit zur Steigerung der Milchproduktion
besteht durch den Einsatz von automatischen Melkverfahren (AMV), die seit 1992
unter Praxisbedingungen eingesetzt werden. Zurzeit gibt es weltweit ca. 14.000
verkaufte Anlagen (HOENLE 2009). In Deutschland sind schätzungsweise ca. 2000-
2200 Melkboxen installiert (HARMS 2009).
Ein Vorteil dieser Systeme ist, dass durch mehrmaliges Melken eine höhere
Milchleistung erzielt werden kann, vor allem dann, wenn sich (frühlaktierende) Tiere
an ihre selbtgewählten Melkintervalle halten (REINECKE 2002). Die tierartgerechte
Haltungsweise und der freie Tierverkehr erlauben, dass das Tier seine Melkfrequenz
selbst wählt. Weiterhin soll das AMV zur Arbeitsentlastung des Milcherzeugers
dienen.
Dabei sind automatische Melksysteme Ausdruck eines stetigen technologischen
Wandels, der seit ca. 150 Jahren in der Melktechnik besteht und alle Bauteile betrifft,
da es trotz aller Innovation bislang nicht gelungen ist, den Saugvorgang des Kalbes,
der neben dem Handmelken die schonendste Art des Melkes darstellt, zufrieden

Einleitung
2
stellend nachzuahmen. Somit stellt die Melktechnik weiterhin einen Riskofaktor in der
Multifaktoren-Erkrankung ‚Mastitis’ dar.
Viel Augenmerk wurde beispielsweise der Verbesserung der Zitzengummis
gewidmet, denen als direktes Bindeglied zwischen Tier und Maschine besondere
Bedeutung zukommt. Dieses Bauteil ist von fundamentaler Bedeutung für die
Funktionsweise des Zweiraummelkbechers, der durch die Abfolge von zwei
Betriebsphasen (Saugphase und Entlastungsphase) den Gewebsschaden möglichst
gering zu halten versucht. Die Mehrzahl der verwendeten Zitzengummis hat einen
runden Durchschnitt („runde Zitzengummis“); während der Entlastungsphase
kollabieren diese Gummis in Form einer 8, d.h., sie schließen nicht vollständig,
weswegen die Zitzenspitze auch während der Entlastungsphase unter Vakumm
steht. Da hier ein vollständiger Abschluss wünschenswert wäre, gibt es aufgrund der
ständigen Weiterentwicklung heutzutage Zitzengummis aus verschieden Materialien
und in unterschiedlichen Formen auf dem Markt, darunter auch Zitzengummis mit
dreieckigem Durchschnitt, im Folgenden der Einfachheit „dreieckige Zitzengummis“
genannt.
Hersteller von dreieckigen Zitzengummis berichten, dass durch deren Einsatz die
Milchleistung erhöht wird. Weitere Vorteile seien eine Reduktion von
Hyperkeratosen, eine Verringerung von Zitzenverletzungen und eine gleichmäßigere
Komprimierung der Zitze, sodass beim Kollabieren der Zitzengummis eine geringere
Belastung der Zitzen stattfindet (www.zitzengummis-billiger.de) 1 . Diese Angaben
suggerieren eine Verbesserung der Eutergesundheit in automatischen Melksystemen
durch die geringere Belastung der Zitzen, sowie die Elimination von Mastitiserregern
durch häufigeres Melken.
Somit ist es das Ziel der vorliegenden Arbeit, die Auswirkungen dreieckiger und
konventioneller Zitzengummis in Bezug auf Milchabgabeverhalten,
Zitzenhautkondition und Neuinfektionsrate vergleichend gegenüberzustellen.
1 Auf www.zitzengummis-billiger.de wird unter dem Untermenü „Impulse-Zitzengummis“ der
Pulsationsunterschied zwischen runden und dreieckigen Zitzengummis anhand einer Animation
dargestellt.

2 Literatur
2.1 Anatomie und Physiologie der Milchdrüse
3
Literatur
Die bovine Milchdrüse ist eine modifizierte Hautdrüse. Sie ist in der Inguinalgegend
gelegen und entwickelt sich bei beiden Geschlechtern bis zur Geschlechtsreife in
gleicher Weise (KOCH 1956).
Als erste Anlage der Milchdrüse ist eine Epidermisverdickung sichtbar, die als
Milchstreifen oder Milchlinie bezeichnet wird. Durch weitere Zellvermehrung der
Epidermis entsteht die Milchleiste. Durch örtliche Wucherungen entstehen vier
Milchhügel, die die Anlage der Mammarkomplexe darstellen. Das Epithel der
Milchhügel wuchert als Milchknospe in die Tiefe und wird vom Mesenchym umgeben.
An der Oberfläche verhornt das Epithel und durch Schrumpfung des Hornpfropfes
entsteht die Mammar- oder Zitzentasche. Von der Mammarknospe aus wachsen
Primärsprosse ins Mesenchym. Die Anzahl der Primärsprosse entspricht der der
Hohlraumsysteme pro Mammarkomplex. Die Entwicklung der Proliferationszitze des
Rindes erfolgt durch Anhebung der Mammarknospe und des Kutiswalls. Der
Primärspross wächst ins Parenchym ein und an den Enden knospen
Sekundärsprosse hervor. Durch Zellverlagerung beginnt die Kanalisierung der
Primär- und Sekundärsprosse. Der Hornpfropf, welcher den Kanal der Primärsprosse
verschließt, zerfällt erst nach der Geburt und öffnet so das Lumen nach außen.
Aus dem Primärspross gehen der Strichkanal und die Zisterne hervor, der
Sekundärspross entwickelt sich zu den Milchgängen. Aus dem Mesenchym hat sich
Bindegewebe und reichlich Fettgewebe entwickelt, das als Platzhalter für die
Alveolen dient. Die Alveolen entstehen erst nach der Pubertät aus Tertiärsprossen.
Mit Beginn der Pubertät wachsen die Milchgänge ohne Alveolenbildung durch
Einwirkung von Östrogen, Progesteron, Wachstumshormon und adrenalen
Steroiden. Während der ersten Trächtigkeit erfolgt die endgültige Entwicklung der
Milchdrüse mit Bildung der Alveolen, welche das Fettgewebe verdrängen.
(SEIFERLE 1949; KNIGHT u. PEAKER 1982; MICHEL 1983).

Literatur
4
Bei der Entwicklung der Milchdrüse werden drei Abschnitte unterschieden, die
jeweils unter endokriner Kontrolle stehen: die Mammogenese (morphologische
Entwicklung), die Laktogenese (Einsetzen der Drüsenfunktion) und die Galaktopoese
(Aufrechterhaltung der Laktation).
Mammogenese: In der präpubertären Entwicklungsphase wird das
Milchdrüsenwachstum von Hormonen beeinflusst, die für das Körperwachstum
verantwortlich sind (somatotropes Hormon STH, Trijodthyronin T3, Thyroxin T4,
Insulin, Glukokortikosteroide). Während der Pubertät kommt es durch die sich
wiederholenden Geschlechtszyklen zu einem weiteren Wachstum der Milchdrüse.
Östrogene bewirken eine Proliferation der Milchgänge, während das lobuloalveoläre
Wachstum der stimulierenden und synergistischen Förderung von Östrogenen und
Progesteron unterliegt (MIELKE 1994; LAMOTE et al. 2004).
Für die Differenzierung der Drüsenalveolen sind die Östrogene und das Prolaktin
wichtige Stimulatoren. Darüber hinaus wird ein plazentäres Laktogen synthetisiert,
welches eine prolaktinähnliche Wirkung hat und dadurch die Ausbildung der
Milchdrüse fördert.
Laktogenese: Durch einen Abfall des Progesterons, welches einen hemmenden
Effekt auf die sekretorische Eigenschaft der Alveolarzellen hat, können Prolaktin und
Glukokortikosteroide ihre laktogene Wirkung entfalten (GÜRTLER u. SCHWEIGERT
2000).
Galaktopoese: Die Aufrechterhaltung der Laktation wird hauptsächlich durch das
Wachstumshormon STH beeinflusst. STH stimuliert den insulinähnlichen
Wachstumsfaktor I (IGF-I), der weitere Effekte vermittelt (anabole Wirkung), d.h.
Lipolyse (Steigerung der Blutkonzentration an freien Fettsäuren), Steigerung der
Euterdurchblutung, Erhöhung der Glukoseaufnahme durch die Alveolarepithelzellen,
Erhöhung des Zellmetabolismus. Neben dem STH sind auch Glukokortikosteroide,
Schilddrüsenhormone, Östrogene und Progesteron an der Milchsynthese beteiligt
(MIELKE 1994; LAMOTE et al. 2004).

2.1.1 Drüsengewebe
5
Literatur
Das Euter (Uber) des Rindes besteht aus vier Mammarkomplexen mit jeweils einer
Zitze. Das Organ ist durch Bänder und Lamellen, dem sogenannten
Aufhängeapparat (Apparatus suspensorius mammarius) fest mit der ventralen
Bauchwand verbunden. Dieser geht aus dem tiefen Blatt der äußeren Rumpffaszie
hervor, welche beim Pflanzenfresser aufgrund ihrer gelben Farbe durch zahlreiche
elastische Fasern auch gelbe Bauchhaut (Tunica flava) genannt wird. In ihrer
Gesamtheit bilden die Lamellen die Euterkapsel (Capsula uberis). Der
Aufhängeapparat besteht aus vier Hauptblättern, wobei das Ligamentum
suspensorium uberis zwischen den beiden Euterhälften verläuft und so zur Bildung
des Sulcus intermammarius beiträgt, welcher das Euter in zwei Hälften teilt. Die
meistens etwas schwächer ausgebildeten kranialen Euterviertel werden als Bauch-
oder Vorderviertel, die kaudalen als Schenkel- oder Hinterviertel bezeichnet
(MOSIMANN 1949; SEIFERLE 1949; HABERMEHL 1996).
Der Drüsenkörper stellt ein Hohlraumsystem dar, welches sich aus dem Zitzenkanal,
der Zitzenzisterne, den Milchgängen und den Alveolen zusammensetzt.
Bindegewebssepten verleihen dem Drüsenparenchym ein blattartiges Aussehen.
Innerhalb dieser Drüsenblätter liegen die Milchgänge, wodurch sich eine weitere
Aufteilung in Drüsenläppchen ergibt. Grundlage der Drüsenläppchen bildet die
Endaufteilung eines Milchganges mit den dazugehörenden Alveolen, welche für die
Bildung der Milchinhaltsstoffe verantwortlich sind. Die Wand der Alveole besteht aus
einer Basalmembran (Membrana propria), den Korbzellen (Myoepithel) und dem
Drüsenepithel (Alveolarepithelzellen). Die Membrana propria sorgt mit ihren
Kapillarnetzen für einen Nährstoffaustausch für die Milchbildung. Die Korbzellen
liegen unmittelbar auf der Basalmembran und können eine Verkleinerung der Alveole
bewirken. Auf diesem Weg wird die Milchbildung unter Einfluss des Hormons
Oxytocin unterstützt (MICHEL 1994).

Literatur
2.1.2 Zitzengewebe
6
Die Wand der Zitze besteht aus der äußeren Haut, einer bindegewebig-muskulösen
Mittelschicht und dem Epithel des Zitzenkanals bzw. der Zisterne. Die äußere Haut
der Zitze ist fest und unverschieblich mit der bindegewebigen Unterlage verbunden,
da eine Subkutis fehlt. Die starke Verzweigung des Papillarkörpers führt zu einer
elastischen Verbindung. Diese ermöglicht die beim Melkakt erforderlichen
Verformungen und überträgt diese auf die bindegewebig-muskulöse Mittelschicht.
Die Zitze des Rindes ist im Durchschnitt 60-80 mm lang und weist nur einen
Strichkanal mit einer Länge von durchschnittlich 8-12 mm auf. Dieser ist mit einem
mehrschichtig verhornenden Plattenepithel ausgekleidet .
Während der Verhornung wird eine besondere Form des Keratins gebildet, das
sogenannte Laktosebum, welches den oberflächlichen Anteil des Stratum corneum
darstellt und dem eine bakterizide Wirkung zugeschrieben wird. Das gebildete Horn
wird nach außen vorgeschoben und kann die Zitzenkanalmündung kranzförmig
überragen. Diese Hyperkeratosen können zu fransenartigen Fortsätzen auswachsen
und bei sehr starker Ausbildung zu Melkstörungen führen.
Der an den Strichkanal anschließende Hohlraum wird in die Zitzenzisterne und
basalwärts in die Drüsenzisterne unterteilt. Den Übergang zur Zitzenzisterne bildet
ein vorspringender Faltenkranz, die sogenannte Fürstenbergsche Rosette. Diese
besteht vorwiegend aus kollagenen Fasern und verhindert rein passiv den
Milchabfluss. Häufige Ansammlungen von Abwehrzellen deuten auf eine Beteiligung
an den Abwehrprozessen hin (RUBELI 1915; MICHEL 1986).
2.1.3 Muskulatur
Die Muskelfasern bilden ein längsorientiertes, netzartiges Spiralsystem. Im Bereich
der Zitzenspitze ordnen sich die Fasern mehr zirkulär an und lassen den
Schließmuskel (Musculus sphincter papillae) entstehen (MICHEL 1986). Trotz des
noch ausstehenden anatomischen Beweises für das Vorhandensein eines

7
Literatur
Zitzenschließmuskels sensu stricto sind physiologische Beweise vorhanden, die die
Existenz eines Schließmuskels im Bereich des Strichkanals nahe legen (HAMANN u.
BURVENICH 1994).
Die glatte Muskulatur der Zitzenwand führt spontane Kontraktionen aus (SAMBRAUS
1971; MIELKE 1994). Diese Kontraktionen treten mit einer Frequenz von 0-20/ min.
auf und dauern 2-15 sec. an (LEFCOURT 1982). Die Frequenz der Kontraktionen
nimmt mit zunehmender Zeit, die nach dem Melken vergangen ist, zu, was auf eine
Erhöhung des intramammären Druck zurückzuführen ist (PEETERS u. DE
BRUYCKER 1975; LEFCOURT 1982).
Die Kontraktionen werden sowohl von der Art des Milchentzuges (Kalb, Hand,
Maschine) als auch von der Rasse nicht beeinflusst. Die Aktivität der Kontraktion ist
von der Euterfüllung abhängig. Neun Stunden nach dem Melken konnte bei allen
Kühen eine Kontraktion der Zitzen festgestellt werden (SAMBRAUS 1971).
In der glatten Muskulatur der Zitzenwand sind α- und β-Rezeptoren vorhanden.
Aufgrund pharmakologischer Studien konnte gezeigt werden, dass eine Aktivierung
der α-Rezeptoren zu einer Kontraktion und eine Aktivierung der β-Rezeptoren zu
einer Relaxation der Muskeln führt (PEETERS u. DE BRUYCKER 1975; BERNABÉ
u. PEETERS 1980).
2.1.4 Kreislaufsystem
Voraussetzung für die Milchbildung ist eine intensive Blutversorgung des Euters, da
für 1 l Milch ca. 400 l Blut das Euter durchströmen müssen (MICHEL 1994).
2.1.5 Blutgefäßsystem
Elastische Fasernetze und kollagene Fasern bilden das bindegewebige Grundgerüst
der Zitzenwand. Durch diese Anordnung wird eine Beeinflussung der Blutströmung
während des Melkvorganges verhindert (MEISSNER 1964).

Literatur
8
Die gefäßreiche Mittelschicht der Zitze weist Arterien mit einer zum Teil verdickten
und stark muskulösen Media auf, und die Intima enthält Einlagerungen von
Bindegewebe und glatten Muskelzellen (MICHEL 1994).
Die arterielle Versorgung der Zitzen wird jeweils von einer Arteria papillaris
übernommen. Sie verläuft von der Basis zur Zitzenspitze, nahe der Innenfläche der
Zitzenwand zwischen den größeren, stark verzweigten Venen, mit denen sie sich im
distalen Bereich verbindet (LE ROUX u. WILKENS 1959). Die Venen der Zitze bilden
einen für die Rinderzitze typischen, längsmaschigen Schwellkörper (Plexus venosus
papillaris). An der Zitzenbasis vereinigen sich die Venen zu einem Gefäßkranz, dem
Fürstenbergschen Venenring (Circulus venosus papillae) (SEIFERLE 1949). Die
Venen besitzen eine relativ dicke Media und Einlagerungen von glatten Muskelzellen
in der Intima (MICHEL 1994), sowie zahlreiche Venenklappen (GHAMSARI et al.
1995). Der größte relative Blutfluss befindet sich im Epithel des Zitzenkanals
(JANKUS u. BAUMANN 1986).
Abbildung 2-1 gibt einen Überblick über die Blutgefäße der Zitze und deren
umgebendes Gewebe.

a Hautvene, in starke Windungen gelegt A Querschnitt durch die Mitte der milchleeren Zitze (1)
9
Literatur
b Zitzenarterie B, C, D Querschnitte in verschiedener Höhe einer milchgefüllten
c Zitzenvenen, durch Queranastomosen Zitze
ein Längsgeflecht bildend a Haut h Fürstenbergsche Rosette
d Schenkelzitze b Gefäß-Muskelzone i Strichkanal (verschlossen)
e basale Venenringe c Schleimhaut der Zitzenzisterne k Strichkanalschleimhaut
f Bauchzitze d Zitzenlumen (verschlossen) l Längsmuskelfasern
g aus Begleitvenen entspringende e Venen (gefüllt) m Schließmuskel
Wurzeläste der Hautvene (a) f Muskulatur (erschlafft)
g Venen (geleert)
Abb. 2-1: Injektionspräparat der Zitzenblutgefäße eines laktierenden Euter (links),
Querschnitte von Zitzen mit injizierten Venen (rechts)
Es handelt sich hierbei um die Abbildungen 11 und 12 aus dem Buch „Anatomie und Physiologie der
Rindermilchdrüse“ von H. Ziegler und W. Mosimann, Verlag Paul Parey Berlin und Hamburg 1960
2.1.6 Lymphgefäßsystem
Die Zitzenlymphgefäße nehmen ihren Ursprung aus dem Kapselfettkörper an der
medialen Fläche der Drüse und treten in den Euterlymphknoten ein (ZIEGLER u.
MOSIMANN 1960).
In der oberflächlichen Schicht des Coriums bilden die Lymphkapillaren ein
dreidimensionales, weitmaschiges Netz. In der tiefsten Schicht des Coriums
verlaufen die Lymphgefäße radiär und treten in die Mittelschicht der Zitzenwand ein.
Hier werden sie zu stärkeren Lymphgefäßen, welche schließlich in starke

Literatur
10
längsorientierte klappenhaltige Sammelgefäße münden (HAMPL u. JELINEK 1971).
Das lymphatische System der Zitzenwand ist sehr markant. Die Tunica media der
größeren Lymphgefäße enthält einige glatte Muskelzellen, kollagene und elastische
Fasern. Alle Lymphgefäße sind mit Klappen ausgestattet (GHAMSARI et al. 1995),
diese Gefäße transportieren Lymphe und Fett aus der Gewebeflüssigkeit des Euters
in das regionäre Lymphzentrum (ZIEGLER u. MOSIMANN 1960).
2.2 Milchentzugsverfahren
Durch den Milchejektionsreflex kann Milch aus dem Hohlraumsystem der Milchdrüse
ermolken werden. Taktile, akustische, olfaktorische und optische Reize sind Auslöser
für diesen Reflex. Eine taktile Reizung der sensiblen Nervenendigungen in der
Zitzenwand löst den neurohormonalen Reflexbogen aus. Über afferente
Nervenbahnen wird der Reiz über das Rückenmark zum Hypothalamus geleitet. Aus
dem Hypophysenhinterlappen erfolgt dann die Sekretion von gespeichertem
Oxytocin. Mit dem Blut gelangt Oxytocin ins Euter und wird an spezifische
Rezeptoren der Myoepithelzellen gebunden. Diese Rezeptorbindung führt zu einer
Kontraktion des Myoepithels, was zur Milchejektion führt (MIELKE 1994).
Um Milch aus dem Euter zu gewinnen, muss der Widerstand des Zitzenkanals
überwunden werden. Zur Öffnung des Zitzenkanals ist eine Druckdifferenz zwischen
der Milch in der Zitzenzisterne und dem die Zitze umgebenden Raum notwendig.
Diese Druckdifferenz kann aufgrund von Zitzenausbildung und rassetypischen
Besonderheiten zwischen 8,0 und 13,3 kPa betragen (WEHOWSKY u. TRÖGER
1994).
2.2.1 Kalb
Das Saugen des Kalbes ist die einzige natürliche Methode des Milchentzuges
(VENNMANN 1953). Dabei werden die vorderen Euterviertel bevorzugt besaugt
(HAMANN u. HEERMANN 1989).

11
Literatur
Der Milchentzug durch das Kalb erfolgt in zwei Phasen. Zum einen wird die Milch
durch Erzeugung eines Unterdruckes in Höhe von maximal 83 kPa entzogen.
Des Weiteren erfolgt ein mechanisches Auspressen, indem die Zitzenbasis durch
Gegeneinanderdrücken von Zunge und Gaumen abgedrückt wird (VENNMANN
1953; HAPPEL 1963b, a; WEHOWSKY u. TRÖGER 1994).
Die Saugstärke des Kalbes beträgt etwa 15 kPa und die Schluckzahl pro Minute 120
bis 150. Das zeitliche Verhältnis von Saug- und Entlastungsakt beträgt 2:1
(VENNMANN 1953).
Das beim Saugen im Kälbermaul erzeugte Vakuum dient zur Überwindung des
Strichkanalwiderstandes. Ein Saugimpuls erfolgt meist zweimal in der Sekunde.
Zwischen zwei Saugimpulsen wird die Zitze durch atmosphärischen Druck entlastet.
Das erzeugte Vakuum beträgt zwischen 49 kPa und 83 kPa, kann also deutlich
überhalb des regulären Melkvakuums liegen, das eine Melkanlange erzeugt. Die
dicht anliegende Zunge schützt die Zitze vor dem Vakuum. Nur in einem relativ
kleinen Bereich vor der Zitze ist das Vakuum messbar. Beim Zusammendrücken der
Zitzenspitze wird durch die wellenförmige Bewegung der Zunge zur Zitzenbasis hin
der Blutrückfluss in Richtung Venenring unterstützt. Diese Druckmassage trägt dazu
bei, dass keine Blutstauungen und keine Gewebeverfestigungen der Zitzenwand
festzustellen sind (HAPPEL 1963b; HAMANN u. STANITZKE 1990).
Die Zitzenlänge wird nur unwesentlich beeinflusst. Die Änderungen liegen in einem
Bereich von ±1 mm. Der Durchmesser der Zitzenkuppe verringert sich
durchschnittlich um 0,22 mm, die Gewebefestigkeit der Zitzenenden nach dem
Melken (im Vergleich zu den Werten vor dem Melken) um -9,10 % ±1,91 %. Nach 15-
30 min. erreichen die Zitzenmaße wieder die Ausgangswerte.
Durch das Saugen des Kalbes wird die Temperatur der Zitzenkuppenhaut um 1,95 %
erhöht. Es erfolgt ein Rückfluss von Blut und Gewebeflüssigkeit von der Zitzenkuppe
in proximal gelegene Bereiche der Zitzenwand (HAMANN u. STANITZKE 1990).

Literatur
2.2.2 Hand
12
Der klassische und schonendste Melkgriff ist das Vollhandmelken (KÄSTLI et al.
1985), auch „Fäusteln“ genannt. Durch Abdrücken der Zitzenbasis und
anschließendem Ausdrücken der milchgefüllten Zitze von der Basis zur Spitze hin,
wird die Milch per Hand ermolken. Dabei werden mit Daumen und Zeigefinger die
Zitzenbasis abgeschnürt und die restlichen Finger nacheinander gekrümmt. So
erfolgt eine schonende Milchgewinnung mit einer Druckeinwirkung zwischen 50 und
121 kPa. Dieses Druckgefälle ist erforderlich, um den Widerstand des
Zitzenschließmuskels zu überwinden. Andere Handmelkverfahren wie z.B. das
Strippen haben sich als weniger schonend für das Eutergewebe erwiesen
(VENNMANN 1953; WEHOWSKY u. TRÖGER 1994).
Das Handmelken führt durchschnittlich zu einer Zunahme des
Zitzenkuppendurchmessers von +0,17 mm, während sich die Gewebefestigkeit des
Zitzenendes nach dem Melken um -5,75 % reduziert. Nach 30 min. sind die Werte
der Gewebefestigkeit vor dem Melken wieder erreicht. An der Zitzenkuppe kommt es
zu einer Temperaturerhöhung von 4,16 % (HAMANN u. STANITZKE 1990).
2.2.3 Maschine
Heute werden zum Melken konventionelle und automatische Melksysteme
eingesetzt.
Konventionelle Melkverfahren
Allgemeine Funktion
Die heute üblichen Systeme entziehen Milch über die Applikation von Unterdruck vor
dem Strichkanal mit Hilfe eines Zweiraummelkbechers (HAMANN 1989).

Komponenten
13
Literatur
Das Melken erfolgt mit einer Melkeinheit, welche einen Satz von Bauteilen darstellt,
der für die Melkung eines einzelnen Tieres erforderlich ist und in einer Melkanlage
mehrfach vorhanden sein kann, (so dass mehr als ein Tier gleichzeitig gemolken
werden kann) (DIN ISO 3918:2007).
Die funktionelle Einheit zum Melken einer Kuh wird „Melkzeug“ genannt und besteht
aus Zitzen- bzw. Melkbechern, kurzen Milch- und Pulsschläuchen, Sammelstück,
sowie langem Milch- und Pulsschläuchen (HAMANN 1989).
Zweiraummelkbecher
Das Prinzip der konventionellen Melkmaschine beruht auf dem
Zweiraummelkverfahren im Zweitaktsystem (KIELWEIN 1994).
Durch den in den Melkbecher eingezogenen Zitzengummi wird der Melkbecher in
einen Innen- und Außenraum geteilt. Im Zitzengummiinnenraum herrscht ständig ein
Unterdruck, der von der Vakuumpumpe erzeugt und vom Regelventil in seiner Höhe
begrenzt wird. Im Pulsraum dagegen wird der Druck durch einen Pulsator gesteuert
und wechselt zwischen Betriebsvakuum und Atmosphärendruck. Durch die
periodisch entstehende Druckdifferenz zwischen Pulsraum und
Zitzengummiinnenraum wird die Bewegung des Zitzengummis gesteuert. In der
Saugphase stehen beide Räume unter Melkvakuum, der Zitzengummi ist geöffnet
und die Milch wird entzogen. Steht dagegen der Pulsraum unter atmosphärischem
Druck, kollabiert der Zitzengummi und bewirkt ein Sistieren des Milchflusses, was
gleichzeitig die Zitze zirkulatorisch entlastet. Dieser Zustand wird Entlastungs- oder
Ruhephase genannt. Saug- und Entlastungsphase bilden einen Pulszyklus, die
Anzahl der Pulszyklen pro Minute ergibt die Pulszahl (HAMANN 1989). Je nach
Herstellervorschrift arbeiten Pulsatoren, die für das Melken von Kühen vorgesehen
sind, mit 45 bis 70 Pulszyklen pro Minute (WEHOWSKY u. TRÖGER 1994). Andere
Spezies benötigen in der Regel mehr Pulszyklen pro Minute.

Literatur
Automatische Melkverfahren
Allgemeine Funktionen
14
Automatische Melkverfahren übernehmen neben dem Melken noch weitere zum
Melkprozess gehörende Aufgaben, wie Prüfung der Melkberechtigung, Reinigung
des Euters vor dem Melken, Dippen des Euters nach dem Melken, Beurteilung der
Milchqualität, Steuerung und Reinigung der Melkeinheit.
Das Prinzip des automatischen Melkverfahrens unterscheidet sich kaum vom Prinzip
des konventionellen Melkverfahrens. Hier findet ebenfalls der konventionelle
Zweiraummelkbecher Anwendung, allerdings erfolgt die Ableitung der Milch
euterviertelspezifisch. Die Tiere entscheiden weitgehend selbst, wann und wie oft sie
den Melkroboter aufsuchen. Daraus ergeben sich tierindividuell determinierte
Melkfrequenzen und variierende Zwischenmelkzeiten. Automatische Melkverfahren
können zu einer erheblichen Arbeitserleichterung des Landwirtes, sowie zu einem
verbesserten Leistungs- und Gesundheitsstatuts des Milchtieres führen (HAMANN
2001). Der Landwirt wird von der Bindung an feste Melkzeiten gelöst. Allerdings
erfordert diese zeitliche Entbindung weitreichende Entwicklungen zur Überwachung
von Tier und Technik (WORSTORFF 2001).
In Versuchen zum Einsatz automatischer Melksysteme wird deutlich, dass die
Motivation zum Milchentzug im Vergleich zu Futteraufnahme und Ruhephase sehr
schwach ist. Das freiwillige Aufsuchen des Melkstandes findet nur sehr selten statt.
Daher ist es notwendig, durch einen selektiv-gelenkten Kuhverkehr und
Kraftfuttergabe im Melkstand die Melkfrequenz zu steigern (WINTER u. HILLERTON
1995; KETELAAR-DE LAUWERE et al. 1998; PRESCOTT et al. 1998).

2.3 Zitzengewebsreaktionen
15
2.3.1 Arten von Zitzengewebsreaktionen
Literatur
Gleich nach dem Melken zeigt das Zitzengewebe mehr oder weniger starke
Symptome von Kongestionen und Ödemen. Diese Reaktionen beeinflussen den
Durchmesser, die Durchdringbarkeit und die lokalen Abwehrfunktionen der Zitzen
(MCDONALD 1975; SCHULTZE u. BRIGHT 1983; HAMANN 1985a).
Akute Reaktionen
Aufgrund von einmaligem Milchentzug sind Kurzzeiteffekte an den Zitzen zu
beobachten. Es können Veränderungen der Farbe, Festigkeit, Dicke, Schwellungen
der Zitzen, sichtbarer oder fühlbarer Ring an der Zitzenbasis, Weitung der
Zitzenkanalöffnung und petechiale Blutungen auftreten (HAMANN et al. 1994a; MEIN
et al. 2001).
Die nach einem Milchentzug sichtbaren Formveränderungen der Zitzenspitze treten
aufgrund der unterschiedlichen Verteilung von Gewebeflüssigkeit auf. Die Ursachen
für eine erhöhte Gewebefestigkeit sind Stauungen und Ödeme. Stauungen sind
intravaskuläre Ansammlungen von Flüssigkeiten und Vorbedingungen für die
Entwicklung von Ödemen (HAMANN u. MEIN 1990). Ödeme sind definiert als eine
übermäßige Ansammlung von aus den Gefäßen stammender Flüssigkeit im Gewebe.
Die typischen Zeichen sind Schwellung, geringe Temperatur und teigige Konsistenz
(SCHULZ 1990).
Des Weiteren verursacht das Melkvakuum eine Weitung der Blutgefäße und dadurch
einen Übertritt von Flüssigkeit in den extrazellulären Raum (HAMANN u. MEIN
1990). Daraus resultiert eine reduzierte Blutversorgung, sowie eine Dehnung bis hin
zu einer Zerreißung des Gewebes (SCHULZ 1990).

Literatur
Chronische Reaktionen
16
Als Hyperkeratose wird eine vermehrte Keratinbildung oder eine Hyperplasie des
verhornenden, mehrschichtigen Plattenepithels (Stratum corneum) bezeichnet
(MICHEL et al. 1974; NEIJENHUIS et al. 2001c).
Die Entwicklung einer Hyperkeratose kann unter anderem durch das Kollabieren des
Zitzengummis am Zitzenende, den initialen Befund der Zitzenkondition, die Dauer
des Melkvorgangs, sowie durch Umweltbedingungen beeinflusst werden
(SCHUKKEN et al. 2006; ZUCALI et al. 2008) und trägt zu einem Unwohlsein der
Kuh beim Melken bei (HAMANN 2000).
Aufgrund der Vakuumbelastung durch wiederholte Melkvorgänge treten durch den
maschinellen Milchentzug häufig Hyperkeratosen an der Strichkanalöffnung auf
(HAMANN et al. 1994a; MEIN et al. 2001).
Wirken Vakuum und Pulsation bei fehlendem Milchfluss auf die Zitzen ein, spricht
man vom sogenannten Blindmelken. Das Vakuum kann in das Zitzenlumen
vordringen und in Verbindung mit der Pulsation mechanische Epithelschäden
verursachen.
Durch Blindmelken kann es zu fortsatzartigen Vergrößerungen der Hyperkeratosen
an der Zitzenspitze kommen. Die Hyperkeratose stellt zunächst eine normale
Anpassungs- und Schutzreaktion dar und dient zum Schutz der darunter liegenden
Schichten vor mechanischer Überbeanspruchung und bildet einen wichtigen Anteil
der Zitzenbarriere. Ausgeprägte Hyperkeratosen können allerdings zu Störungen des
Melkprozesses in Verbindung mit Läsionen führen, welche die Zitzenbarriere
beeinträchtigen und eine Eintrittspforte für Erreger darstellen (MICHEL 1986).
Außerdem zeigen Viertel, die an klinischer Mastitis erkrankt sind, vermehrt
Hyperkeratosen an den Zitzenenden als gesunde Euterviertel. Eine mäßige
Hyperkeratose scheint das Risiko einer Mastitis nicht zu erhöhen und wird als
physiologische Antwort auf das Maschinenmelken gesehen (NEIJENHUIS et al.
2001a).

17
Literatur
Weiterhin ist in einer Studie festgestellt worden, dass durch wiederholtes Melken die
Gewebefestigkeit der Zitzen aufgrund maschineninduzierter Ödeme zunimmt
(HAMANN u. MEIN 1990). Aufgrund dieser Ödembildung an der Zitzenkuppe kann
es zu gravierenden Zitzenläsionen kommen (HAMANN et al. 1994c). In Abbildung 2-
2 wird dies verdeutlicht.
Ödembildung an der Zitzenkuppe
Juckreiz an der Zitzenkuppe
Reiben der Zitzenkuppe am Boden
mit Hilfe der Sprunggelenke
leichte Zitzenläsionen
verstärkter Juckreiz
gravierende Zitzenläsionen
Abb. 2-2: Folgen der Ödembildung an der Zitzenkuppe; Hypothetisches Modell
(nach HAMANN et al. 1994c)
2.3.2 Erfassung und Beurteilung von Zitzengewebereaktionen
Grundsätzlich lassen sich Zitzengewebsreaktionen auf unterschiedliche Weise
erfassen und beurteilen.
2.3.2.1 Adspektion und Palpation
Um Zitzengewebereaktionen zu beurteilen, können die Zitzenenden nach
NEIJENHUIS et al. (2000) nach Melkbecherabnahme sofort fotografiert und zunächst
in fünf Klassen eingeteilt werden.

Literatur
Die Ringbildung an der Zitzenkanalöffnung wird wie folgt eingeteilt:
1) keine
2) schwache
3) leichte
4) dicke
5) extreme Ringbildung (Abb. 2-3)
Zusätzlich wird der Ring als weich oder rau klassifiziert (NEIJENHUIS et al. 2000).
18
Der Status des Zitzengewebes nach dem Melken sollte sich nicht von dem zu
Melkbeginn unterscheiden. Aufgrund der Beurteilung des Zitzengewebestatus kann
das spezifische Neuinfektionsrisiko bewertet werden (KRÖMKER u. HAMANN 1998):
• Ringbildung an der Zitzenbasis (Abb. 2-4)
• Ödeme an Zitzenschaft und –kuppe
• petechiale Blutungen
• Zyanosen der Zitzenhaut
• Hyperkeratosen und Indurationen
Abb. 2-3: extreme Ringbildung
Abb. 2-4: Ringbildung
Eine Verdickung und örtliche Schmerzhaftigkeit der Zisternenschleimhaut kann durch
Rollen der Zitzen zwischen den Fingern festgestellt werden (GÖTZE 1951).

2.3.2.2 Kutimetrie
19
Literatur
Mit Hilfe eines Federkutimeters kann der Zitzendurchmesser bestimmt werden.
Durch Verwendung einer geeigneten Feder ist es möglich, auch die
Gewebefestigkeit zu erfassen (HAMANN 1985b; HAMANN et al. 1996); siehe Kapitel
3.2.3.2.1.
Die Entwicklung eines elektronischen Messgerätes ermöglicht die Bestimmung der
Gewebefestigkeit in Abhängigkeit vom applizierten Druck. Das Gerät besteht aus
einem festen und einem, durch einen Motor angetriebenen, beweglichen
Messschenkel (je 20x20 = 400 mm 2 ). Der auf die Zitze applizierte Druck wird
stufenweise in 0,5-mm-Schritten durch einen Sensor gemessen (HAMANN et al.
1988).
2.3.2.3 Ultraschallsensorik
Zur Anwendung kommt ein Linearscanner mit 7,5-MHz-Schallkopf. Während der
Messung muss der Kontakt zwischen Zitze und Schallkopf vermieden werden.
Deshalb wird die Zitze in einen mit Wasser gefüllten Latexbecher getaucht. Mit Hilfe
von Kontaktgel wird der Scanner an die Latexhülle angelegt und die
unterschiedlichen Zitzendimensionen (z. B. Länge des Zitzenkanals, Breite der
Zitzenwand und -spitze, Weite der Zitzenzisterne) können anhand der
Ultraschallbilder gemessen und ausgewertet werden (NEIJENHUIS et al. 2001b).
2.3.2.4 Radiographie
Zur Untersuchung der Zitzenanatomie, des Milchflusses und Wirkungsmechanismen
von Zitzengummis während des Melkens werden radiographische Techniken
verwendet (MCDONALD 1973; MEIN et al. 1973a; MCDONALD 1975).
Darum erfolgt zunächst die sterile Milchgewinnung eines Viertels mit Hilfe eines
Katheters. Die gewonnene Milch wird mit dem euterschonenden Kontrastmittel
Propyliodon vermischt und durch den Katheter wieder zurück in das Euterviertel

Literatur
20
verbracht. Um Längenveränderungen der Zitze während des Melkens zu bestimmen,
werden Zitzengummi und Zitze kontrastreich in Abständen von 10 mm markiert.
Während des Melkvorganges wird die Zitze in regelmäßigen Zeitabständen geröntgt
(MEIN et al. 1973a).
2.3.2.5 Thermographie
Die Durchblutung der Zitze vor und nach dem Melken kann mit Infrarotmessungen
beurteilt werden (HAMANN u. DÜCK 1984; HAMANN 1985).
Das Prinzip der Infrarot-Thermographie beruht darauf, dass alle Körper entsprechend
ihrer Temperatur Infrarot-Strahlung aussenden. Da diese Infrarot-Strahlung nicht
sichtbar ist, werden Detektoren eingesetzt, die diese Strahlung in elektronische
Impulse umwandeln und auf einem Bildschirm sichtbar machen. Kalte Bereiche
werden als schwarze und warme Bereiche als weiße Flächen dargestellt.
Untersuchungen zeigen bei Einsatz eines konventionellen Melksystems eine
Temperaturerhöhung an der Zitzenkuppe und eine Abnahme an der Zitzenbasis. Bei
dem Einsatz eines PKME-Systems (Pulsierender kontinuierlicher Milchentzug) mit
nur an der Zitzenbasis pulsierendem Gummi kommt es an beiden Bereichen zu einer
Temperaturabnahme. Daraus lässt sich schließen, dass das kollabierende
Zitzengummi des konventionellen Systems die Durchblutung an der Kuppe
unterstützt, während die Einwirkung des Zitzengummikopfes an der Basis der Zitze
zu einer Beeinträchtigung der Blutzirkulation führt (HAMANN u. DÜCK 1984).
2.3.2.6 Laser-Doppler-Technik
Mit Laser-Doppler-Instrumenten kann der Blutfluss der äußeren Kapillaren der
Zitzenhaut gemessen werden. Zum Einsatz kommen verschiedene Geräte
unterschiedlicher Wellenlängen (780 und 632,8 nm), wobei das zu messende
Volumen in einem Bereich zwischen 1,0 und 1,5 mm 3 liegt. Die Messsonden werden
2,5 cm oberhalb der Zitzenkuppe angebracht. Die empfangenen Signale werden mit
einem Computer ausgewertet. Nach dem Melken steigt die Blutflussintensität

21
Literatur
deutlich an, wenn die Änderungen der Zitzengewebefestigkeit gering sind. Der
Blutfluss nimmt ab, wenn die Zitzengewebefestigkeit zunimmt. Die Zunahme des
Blutflusses wird als aktive Hyperämie angesehen, während die Abnahme in
Verbindung mit melkvorgangsinduzierten Ödemen des Zitzengewebes steht
(HAMANN et al. 1994b).
2.3.2.7 Infrarotsensorik
Zur Messung des Milchflusses dient die Infrarotsensorik, wodurch indirekt Hinweise
auf milchentzugsbedingte Gewebeveränderungen erkannt werden können. Die
ermolkene Milch fließt in einem lichtdurchlässigen Silikonschlauch durch eine
Lichtschranke. Diese Lichtschranke besteht aus einem Signalgeber, der infrarote
Strahlung sendet, und einem Phototransistor. Die von der Milch absorbierte
elektromagnetische Strahlung wird gemessen und mit Hilfe eines Oszillographen
aufgezeichnet (WILLIAMS et al. 1981).
2.3.2.8 Endotoxinpenetration
Durch Implantation eines Endotoxins in den Zitzenkanal wird dessen
Durchdringbarkeit untersucht. An fünf aufeinander folgenden Tagen wird E. coli
Endotoxin 3 mm tief in den Zitzenkanal verbracht. Die Zeiten des Einbringens nach
dem Melken variieren. Durch Eindringen des Endotoxins in die Zitzenzisterne steigt
der Zellgehalt im Eutersekret an. Eine Kontrolle der somatischen Zellen findet mit
Hilfe des Wisconsin-Mastitistests aus Viertelgemelksproben statt. Die höchste
Durchdringbarkeit des Zitzenkanals wird in den ersten 30 Minuten nach dem Melken
beobachtet. Die Penetrationshäufigkeit sinkt um 75% innerhalb von zwei Stunden
nach dem Milchentzug. Vier und acht Stunden nach dem Melken steigt die
Durchdringbarkeit des Zitzenkanals wieder auf 55% an (SCHULTZE u. BRIGHT
1983).

Literatur
22
2.3.2.9 Plethysmographie (mechanisch)
Es werden spontane Muskelkontraktionen und Reaktionen auf Injektion
verschiedener Hormone bzw. Arzneistoffe aufgezeigt. Die Zitze wird in eine
Glasröhre platziert, welche mit Hilfe eines geringen Vakuums an der Zitzenbasis
befestigt wird. Das trichterförmige Ende der Glasröhre ist mit einem Kolben
verbunden. Ein Schreiber erfasst die Längenänderungen der Zitze und zeichnet sie
auf. Des Weiteren kann zur Aufzeichnung ein Kymograph verwendet werden, der
aus einem an einer Quecksilbersäule befestigten Schreiber besteht und die
Kontraktionen auf einer Papierrolle aufzeichnet (PEETERS u. DE BRUYCKER
1975).
2.3.2.10 Plethysmographie (elektrisch)
Anhand der Plethysmographie kann der Füllungszustand der Gefäße bestimmt
werden (Durchblutungsmessung).
Das Prinzip der Impedanzmessung (Scheinwiderstand) basiert auf der Entwicklung
eines elektrischen Plethysmographen. Mit Hilfe einer 4-Elektroden-Impedanz-
Messung wird die Zitzenkongestion nicht-invasiv und quantitativ bestimmt. Um
zwischen interstitieller Flüssigkeit und Plasma zu unterscheiden, werden
verschiedene Frequenzen eingesetzt. Die Messelektroden werden im Abstand von
5,5 mm zu den Spannungselektroden an der Zitze platziert. Die für jede Kuh
angelegte Spannung wurde kuhindividuell eingestellt.
Einige Minuten vor dem Melken sinkt die Impedanz ab, was als zentraler
Zirkulationseffekt aufgrund Konditionierung auf das Melken betrachtet wird. Nach
dem Melken fällt die Impedanz ab, gefolgt von einem Anstieg auf das Niveau vor
dem Melken. Viele Zitzen, die mit pulsierendem Melkzeug gemolken werden, zeigen
eine hohe Impedanz nach dem Melken, was auf eine effektive Massagewirkung der
Pulsation zurückzuführen ist (MAYNTZ u. ALMGREN 1985).

2.3.3 Einflussfaktoren für die Zitzengewebereaktion beim Melken
2.3.3.1 Zitzengummi
23
Literatur
Der Zitzengummi ist das wichtigste Element einer Melkeinheit, da er unmittelbar auf
die Zitze einwirkt. Der Durchmesser, die Wanddicke, die Spannung und die
Druckdifferenz zwischen Puls- und Zitzengummiinnenraum bestimmen, welche Kraft
der Zitzengummi auf die Zitze ausübt (HAMANN et al. 1994c).
Der Gummi soll folgende Aufgaben erfüllen:
- effektives Kollabieren unter der Zitze, um eine adäquate Massage der Zitze zu
gewährleisten
- schnelles und vollständiges Ausmelken unter Vermeidung von
Zitzenkongestionen und Verletzungen (MEIN et al. 2004).
Die Höhe der Druckbelastung wird durch mehrere verschiedene Eigenschaften des
Zitzengummis beeinflusst (MUTHUKUMARAPPAN et al. 1993). Dieser Druck ist von
der Größe des Luftraumes unterhalb der Zitzenspitze und der Druckdifferenz
zwischen Zitzengummiinnenraum und Pulsraum abhängig. Die ausgeübte
Druckbelastung liegt zwischen 8-12 kPa (MEIN et al. 1987).
Des Weiteren ist der Druck, bei dem der Zitzengummi kollabiert (Einfaltdruck),
sowohl von dessen Größe und Material als auch von der Zitzengröße abhängig
(BUTLER u. HILLERTON 1989). Eine Druckbelastung wird nur auf die Zitzenspitze
ausgeübt, dort wo sich der Zitzengummi beim Kollabieren um die Zitze legt
(REINEMANN et al. 1994).
Material
Zitzengummis werden aus natürlichem (Kautschuk) oder synthetischem Material
(Nitril, Silikon) hergestellt. Diese Materialeigenschaften bestimmen die Lebensdauer,
welche in Anzahl der Melkungen gemessen wird. Folgende Zeiten werden empfohlen
(MEIN et al. 2004):

Literatur
- 600-800 Melkungen für Zitzengummis aus natürlichem Rohstoff
- 2500 Melkungen für Nitril-Zitzengummis
- 3000-5000 Melkungen für Silikon-Zitzengummis
24
Die Annahme, dass synthetische Zitzengummis, trotz ihrer längeren Lebenszeit,
nicht so gut melken wie Zitzengummis aus natürlichem Rohstoff und dadurch die
Milchleistung sinken würde, lässt viele Landwirte von deren Einsatz absehen.
Untersuchungen zeigen, dass der Zitzengummityp keinen deutlichen Einfluss auf die
Milchleistung hat (WARD et al. 1961).
In einer Studie von HECKMANN et al (1985) hatten Kühe, die mit Zitzengummis aus
synthetischem Kautschukmaterial (Nitril) gemolken wurden, allerdings eine höhere
somatische Zellzahl, mehr Läsionen an der Zitzenspitze und eine höhere
Wahrscheinlichkeit an klinischen Mastitiden zu erkranken als Kühe, die mit
Zitzengummis aus Silikon gemolken wurden. Außerdem entwickeln Zitzengummis
aus synthetischem Kautschukmaterial schon nach 500 – 1000 Gemelken Risse und
weisen auch nach dem Waschen eine hohe Keimzahl auf.
Anhand einer Untersuchung von 104 Zitzengummis aus synthetischem Kautschuk
und aus Silikonmaterial auf Veränderung der Parameter (Einfaltdruckdifferenz,
Einsenktiefe, Lochaufweitung) und des Keimbesatzes nach Reinigung und
Desinfektion ergeben sich für die Nutzungsdauer folgende Zeiten: für Zitzengummis
aus synthetischem Kautschuk 800 Einsatzstunden, für Zitzengummis aus Silikon-
Markenware 3000 bis 3500 Einsatzstunden (MODEL u. RUDOVSKY 1999).
Charakteristika
Der Zitzengummi beeinflusst durch verschiedene Eigenschaften die Zitzenkondition.
Zitzengummi-Länge
Nach Ansetzen der Melkbecher dehnt sich die Zitze um 35-50 % in longitudinaler
Richtung aus (MEIN et al. 1973a). Daher muss der Schaft des Zitzengummis (in
dieser Phase) etwa 25 mm länger sein als die Zitze, um ein vollständiges Kollabieren
unter der Zitze zu gewährleisten (MEIN et al. 1970).

25
Literatur
Beim Einsatz von verkürzten Zitzengummis kommt es zu einer Verdopplung der
Mastitisneuinfektionsrate. Die Zitzen dringen so weit in den Zitzengummi ein, dass er
nicht vollständig unter der Zitzenspitze kollabieren kann. Weiterhin treten vermehrt
Zitzen mit petechialen Blutungen auf (MEIN et al. 1983).
Es besteht ein Zusammenhang zwischen der Eindringtiefe der Zitzen in die
Zitzenbecher und der Zitzengewebefestigkeit mit der Folge einer erhöhten
Mastitisrate. Durch die fehlende Massagewirkung des Zitzengummis aufgrund zu
tiefer Penetration der Zitze, kommt es zu Verhärtungen an der Zitzekuppe
(RONNINGEN u. REITAN 1990a). Gleiches kann bei zu geringer Penetration
festgestellt werden.
Zitzengummi-Durchmesser
Die Ausdehnung der Zitze während des Melkens wird durch den
Zitzengummidurchmesser bestimmt. Eine Studie mit zwei verschiedenen
Zitzengummis unterschiedlicher Durchmesser zeigte, dass Zitzen, die mit engeren
Zitzengummis gemolken werden, nur eine leichte Längenzunahme zeigen (BAKKE u.
BINDE 1984).
Untersuchungen nach der Anwendung eines Zitzengummis mit geringem
Durchmesser (21,0 mm) und eines mit großem Durchmesser (24,6 mm) zeigen nur
geringe Änderungen der Gewebefestigkeit bei den engen Zitzengummis sowie eine
Zunahme der Blutflussintensität. Eine Zunahme der Gewebefestigkeit nach
Anwendung des Zitzengummis mit dem größeren Durchmesser geht mit einer
Reduktion des Blutflusses einher. Als aktive Hyperämie wird die Zunahme des
Blutflusses in der Zitzenhaut bezeichnet, während melkvorgangsinduzierte Ödeme
mit einer Abnahme des Blutflusses einhergehen (HAMANN et al. 1994b).
Auch GLEESON et al. (2003) bestätigen ein verringertes Vorkommen von Ödemen
an der Zitze nach Einsatz enger Zitzengummis.
Zitzengummi-Kopfdurchmesser
Zitzengummis mit breiteren, größeren Köpfen und elastischen Lippen weisen
bessere Melkeigenschaften auf. Durch den größeren Kopfdurchmesser werden die

Literatur
26
Zitzengummilippen länger und elastischer, wodurch ihre Beweglichkeit zunimmt.
Augrund einer stärkeren Ablenkung nach unten während der Saugphase wird das
Mundstück aufgeweitet und dadurch der Blutkreislauf der Zitze positiv beeinflusst.
(RABOLD et al. 1985).
Die Öffnung (Nennweite) des Zitzengummikopfes darf nur so groß wie nötig, aber
niemals zu klein sein. Die Zitze sollte frei im Zitzengummischaft hängen, zu große
Nennweiten fördern allerdings den Lufteinbruch während des Melkens (MODEL u.
RUDOVSKY 1999).
RASMUSSEN et al. (1998) untersuchten den Einfluss von Zitzengummis mit
unterschiedlicher Höhe des Kopfes des Innenraumes. Verfärbungen sind
hauptsächlich an den Zitzen zu finden, die mit einem Zitzengummi mit größerer
Kopfhöhe gemolken werden, was auf eine unzureichende Massagewirkung
zurückzuführen ist.
Zitzengummi-Spannung
Da Zitzengummis kürzer als die Melkbecher sind, werden sie unter Spannung
eingebaut und erfahren dadurch eine Streckung von 5-15 % (MEIN et al. 2004).
Dadurch steigt sowohl die Druckbelastung der Zitze (MEIN et al. 1987; REINEMANN
et al. 1994), als auch der Keratingehalt (10-20 %) im Zitzenkanal (CAPUCO et al.
2000).
Zitzengummi-Wand-Stärke
Die Steifheit des Zitzengummis wirkt dem Einfalten entgegen und ist von Bedeutung
für die Öffnungs- und Schließdauer während der Melkphasen, sowie für die
mechanische Beanspruchung der Zitzenspitze. Die Einfaltdruckdifferenz gibt das
Maß für die Steifheit des Zitzengummis an und wird als „touch point pressure
difference“ bezeichnet. Es ist die Druckdifferenz zwischen Zitzenbecherpulsraum und
dem Zitzenbecherinnenraum unterhalb der Zitze, die für eine Berührung der
Zitzengummiwände beim Einfalten an einem beliebigen Punkt erforderlich ist. Die
international gebräuchlichen Einfaltdruckdifferenzen liegen zwischen 10 und 22 kPa
(WEHOWSKY u. TRÖGER 1994).

27
Literatur
Mit steigender Wandstärke und steigendem Härtegrad des Zitzengummis steigt die
Druckbelastung der Zitze. Wäre die Zitzengummiwand unendlich dünn, würde nur ein
sehr geringer Druck auf die Zitze einwirken. Ebenso nimmt die Druckbelastung bei
einer zu dicken Wand ab, da der Zitzengummi nicht mehr in der Lage ist zu
kollabieren (REINEMANN et al. 1994; MEIN et al. 2003).
Alter
Mit der Zeit entstehen an der Zitzengummioberfläche Haarrisse, in denen sich auch
nach der Reinigung und Desinfektion noch Erreger befinden können. Während des
Melkens werden diese Erreger dann an die Zitze gesprüht oder kontaminieren die
Milch. Des Weiteren verschlechtern sich die elastischen Eigenschaften des
Zitzengummis, was sich negativ auf den Milchentzug und die Eutergesundheit
auswirkt, indem sich die Melkzeit verlängert und der Euterentleerungsgrad sinkt
(MODEL u. RUDOVSKY 1999).
Alternde Zitzengummis rufen einen verminderten Spitzenmilchfluss, erhöhte
Vakuumschwankungen, erhöhte Melkdauer und ein geringeres Mundstückvakuum
hervor, wobei Veränderungen im Spitzenmilchfluss den besten Indikator für
Zitzengummikonditionen darstellen (DAVIS et al. 2000).
In einer Studie wird festgestellt, dass mit zunehmender Nutzungsdauer des
Zitzengummis die Zitzen länger und im Durchmesser schmaler sind. Außerdem
treten vermehrt gerötete oder blaue Zitzen auf. Im Gegensatz dazu nimmt die Anzahl
von palpierbaren Ringen an der Zitzenbasis ab (HILLERTON et al. 2004a)
2.3.3.2 Melkvakuum
Die Zitzenspitze ist während des Melkvorgangs ununterbrochen einem Unterdruck
ausgesetzt (HAPPEL 1963a). Die Zitze erfährt unmittelbar nach Ansetzen des
Melkzeuges eine Dehnung in Längsrichtung um 33-50 % (MEIN et al. 1973a; MEIN
et al. 1973c). Nach einer stufenweise durchgeführten Erhöhung der Vakua (30, 50,
70 kPa) nehmen die prozentualen Änderungen der Gewebefestigkeit zu (HAMANN

Literatur
28
1988). Melken mit einem niedrigen Vakuum hat keinen Einfluss auf die
Zitzenkondition und Eutergesundheit (RASMUSSEN u. MADSEN 2000).
Bei Vakuumeinstellungen von 40-50 kPa ist eine Zunahme der Gewebefestigkeit
von 7-25 % nachweisbar, während die Anwendung eines Melkvakuums von 25-30
kPa keine Veränderung der Gewebefestigkeit bedingt. Die Veränderungen am
Zitzenschaft bleiben bei einem Melkvakuum von 50 kPa über 30 min. bestehen. Die
Autoren nehmen an, dass Änderungen der Zitzenkondition durch Melken mit
niedrigem Vakuum die normalen physiologischen Reaktionen der Zitze auf den
Milchentzug und die damit einhergehende Verringerung des Euterinnendrucks,
Veränderung der Blutzirkulation und eine basale Muskelspannung widerspiegeln.
Veränderungen der Zitzenkondition nach Anwendung eines hohen Melkvakuum sind
hingegen auf melkmaschinen-induzierte Ödeme zurückzuführen (HAMANN et al.
1993).
2.3.3.3 Pulsation
Der Hauptzweck der Pulsierung (Öffnen und Schließen des Zitzengummis) besteht
darin, dass Entstehen von zirkulatorischen Beeinträchtigungen (Kongestion, Ödeme)
während des Melkens zu minimieren (HAMANN et al. 1994c). Eine effektive
Pulsation hält einen gleichbleibenden hohen Milchfluss aufrecht, verringert das
Auftreten von Kongestionen, reduziert das Neuinfektionsrisiko und stimuliert die
Milchejektion (MEIN et al. 2004). O´CALLAGHAN (1998) zeigte, dass es keinen
Unterschied zwischen einer alternierenden und simultanen Pulsation gibt. Wenn eine
Zitzengummioffenphase von 0,5–0,6 sec. gewährleistet ist, dann ist die
Melkgeschwindigkeit optimal (WILLIAMS et al. 1981). Eine Rückkehr des
Pulsraumes zum vollen atmosphärischen Druck für mindestens 150 msec. während
eines Pulszyklus muss gewährleistet sein (DIN ISO 5707:2007), ansonsten besteht
die Gefahr von vakuumbedingten Zitzenveränderungen (HAMANN u. MEIN 1996).
Eine Erhöhung der Pulszahl von 20 über 40 auf 60 Zyklen/min. geht mit einer
Verringerung der Zitzengewebefestigkeit einher (HAMANN 1988), welche als

29
Literatur
Anzeichen einer Ansammlung von Blut- und Lymphflüssigkeit angesehen werden
kann (PORTZ 2005).
2.3.3.4 Melkarbeit (Blindmelken)
Im Moment des Unterschreitens der Mindestdurchflussmenge bildet sich ein
geringeres Vakuum in der Zitze, wodurch die Zitze tiefer in den Melkbecher gezogen
wird. Die Passage zwischen Euter- und Zitzenzisterne verengt sich und die in die
Euterzisterne fließende Milch kann nicht entzogen werden: Das Blindmelken hat
eingesetzt (WEHOWSKY u. TRÖGER 1994).
Nach einer Blindmelkzeit von > 5 min. kommt es zu einer Zerstörung des
Zitzengewebes und zu einer Reduktion des Keratin im Strichkanal. Da die vorderen
Viertel weniger Milch produzieren als die hinteren Viertel, kommt es bei
konventionellen Melksystemen in den Vordervierteln verstärkt zum Blindmelken
(GLEESON et al. 2003). Mit zunehmender Blindmelkzeit (2 u. 5 min.) ergeben sich
Verfärbungen der Zitzenhaut, Ringbildung an der Zitzenbasis und eine Verhärtung
der Zitze (HILLERTON et al. 2002).
2.3.3.5 Melkintervall / Melkfrequenz
Wenn die Zwischenmelkzeit für die Rückbildung des Zitzengewebes in den Zustand
von vor dem Melken zu kurz ist, dann kann es durch Anwendung von hohen
Melkfrequenzen über einen längeren Zeitraum zu irreversiblen chronischen
Zitzengewebeschäden kommen (HAMANN u. STANITZKE 1990).
Bei einer Melkfrequenz von vier- bis fünfmal pro Tag, wie es in einem automatischen
Melksystem möglich ist, werden die Erreger aus dem Strichkanal eliminiert und
haben keine Möglichkeit, sich zu vermehren. Allerdings haben die unterschiedlichen
Melkintervalle auch Nachteile. Kurze Melkintervalle bieten der Zitze zu wenig Zeit,
sich zu erholen, wohingegen lange Melkintervalle Bakterien die Möglichkeit geben,
sich im Gewebe zu vermehren (RASMUSSEN et al. 2001a).

Literatur
30
In einer Studie über Rückbildungszeiten unterschiedlicher anatomischer Strukturen
der bovinen Zitze kommen NEIJENHUIS et al. (2001b) zu folgenden Ergebnissen:
Die Rückbildungszeit für Zitzenkanal und Zitzenkuppe liegt bei mehr als acht
Stunden, das Zitzengewebe benötigt eine Zeit von etwa sechs Stunden, um den
Status von vor dem Melken zu erreichen. Die Zitzenzisterne der hinteren Viertel hat
sich nach drei Stunden regeneriert, wohingegen die der Vorderviertel nach acht
Stunden den Ursprungszustand erreicht hat. Daraus ergibt sich, dass bei einer
Erhöhung der Melkfrequenz besonders auf die Zitzenkondition geachtet werden
muss.
2.3.3.6 Melkdauer und Melkbarkeit (Milchflussrate)
Die Gewebefestigkeit der Vorderzitzen nimmt mit steigender Melkdauer zu. Dagegen
wird die Gewebefestigkeit der hinteren Viertel von der Melkdauer nicht beeinflusst.
Die Unterschiede werden auf die Blindmelkzeit der vorderen Viertel infolge
geringerer Milchmenge zurückgeführt (RONNINGEN u. REITAN 1990a). Auch bei
NEIJENHUIS et al. (2000) steigt die Wahrscheinlichkeit, dass an der
Zitzenkanalöffnung Hyperkeratosen entstehen durch eine längere Melkdauer an.
Je kürzer das Melkintervall innerhalb von 24 h ist, desto länger wird die
Gesamtmelkdauer pro Tag. Bei zweimaligem Melken (Melkintervall 12 h) beträgt die
Melkdauer 13,7 min, sechsmaliges Melken (Melkintervall 4 h) führt zu einer
Melkdauer von insgesamt 30,9 min. (NEIJENHUIS u. HILLERTON 2003). Allerdings
verlängert sich die Melkdauer, je schlechter die Zitzenhautkondition ist (MCKINZIE u.
HEMLING 1995).
2.3.3.7 Laktationsstadium und Leistung
Die Ausprägung einer Hyperkeratose an der Zitzenkuppe wird durch das
Laktationsstadium beeinflusst und ändert sich im Lauf der Laktation (NEIJENHUIS et
al. 2000; MEIN et al. 2001). Der Zitzendurchmesser nimmt mit jeder Laktation zu,
wobei die größten Änderungen von der ersten bis zur vierten Laktation zu

31
Literatur
beobachten sind. Einen Unterschied zwischen Vorder- und Hinterviertel gibt es nicht
(ANDREAE 1963). Die Milchsekretionsrate bleibt für bis zu 12 Stunden konstant und
beträgt je nach Laktationsstadium 1,06 – 4,46 kg/ h (KNIGHT et al. 1994). Die
Milchmenge verringert sich um 9 %, wenn die Melkzeit auf einmal pro Tag
beschränkt wird (CARRUTHERS et al. 1993).
2.3.3.8 Melkzeug
Die Verwendung von leichten Melkzeugen (1,6 kg) reduziert die Zeit, in der die
Maschine auf die Zitzen einwirkt (RASMUSSEN u. MADSEN 2000). Leichte
Melkzeuge sind im Gegensatz zu schweren Melkzeugen mit besseren
Zitzenkonditionen nach dem Melken verbunden (HILLERTON et al. 2000). So sind
Veränderungen der Zitzenfarbe und Öffnung der Zitzenkanalmündung bei
Anwendung von schweren Melkzeugen zu beobachten (MEIN et al. 2001). Eine
geringere Eindringtiefe der Zitze in den Melkbecher kann durch Erhöhung des
Melkzeuggewichtes erreicht werden (O´CALLAGHAN 2001).
OHNSTAD (1998) stellte in einer Studie fest, dass durch den Einsatz von schweren
Melkzeugen der Ausmelkgrad vollständiger und „Liner-slips“ (Klettern der
Zitzengummis) seltener vorkommen. Allerdings hat dies negative Auswirkungen auf
das Wohlbefinden der Kühe, was sich als Unruhe, erhöhte Defäkation und Urination
im Melkstand bemerkbar macht. Ähnliche Verhaltensänderungen werden bei der
Verwendung von leichten Melkzeugen im Zusammenhang mit fehlerhafter Pulsation
beobachtet. Nach dem Milchentzug mit schweren Melkzeugen werden vermehrt rote
oder blaue Zitzen und an der Zitzenbasis palpierbare Ringe festgestellt.
2.3.3.9 Zitzenform
a) Zitzenlänge
Sowohl sehr kurze als auch sehr lange Zitzen haben eine erhöhte Anfälligkeit für das
Auftreten von Hyperkeratosen, da die effektive Massagewirkung des Zitzengummis

Literatur
32
bei unterschiedlich langen Zitzen variiert. Zu kurze Zitzen werden vom
kollabierenden Zitzengummi nicht massiert. Zu lange Zitzen dagegen reichen über
den Bereich der effektiv kollabierenden Zitzengummis hinaus. Der Zitzengummi
schließt daher in der Entlastungsphase nicht ab und die Zitzen sind daher
ununterbrochen einem Vakuum ausgesetzt. Das Gewebe wird belastet und
Hyperkeratosen bilden sich aus (HAMANN et al. 1994c).
b) Zitzendurchmesser
Mit zunehmendem Zitzendurchmesser verringert sich die Häufigkeit der
Hyperkeratosen.
c) Zitzenkuppenform
Die Form des Zitzenendes steht im Zusammenhang mit der Eutergesundheit. Eine
Reduzierung von Kühen mit spitzen, flachen und eingezogenen Zitzenkuppen
reduziert das Auftreten von Mastitis (SEYKORA u. MCDANIEL 1985). Auch
NEIJENHUIS et al. (2001a) stellen bei Zitzen mit spitzen Enden eine erhöhte
Mastitisrate fest.
Die Zitzenkuppe hat eine konvexe Rundung auf deren Höhe der Zitzenkanal mündet.
Teller-, Trichter- oder Taschenzitzen begünstigen die Entstehung einer Mastitis
(GÖTZE 1951). RONNIGEN und REITAN (1990b) finden zu 24 % trichterförmige und
76% zylindrische Zitzen. Die Zitzenenden weisen überwiegend (77 %) eine runde
Form auf, während 23% ein plattes Ende zeigen.
2.3.3.10 Sonstige
Der Status des Zitzengewebes wird außerdem beeinflusst durch (HAMANN u.
BURVENICH 1994):
• Milchentzug (Auslösung des Milchejektionsreflex)
• Klima / Jahreszeit
• Haltung
• Management

2.4 Zitzengewebereaktionen und Eutergesundheit
33
Literatur
2.4.1 Maschinelle Melkverfahren und Auswirkungen auf die Eutergesundheit
Konventionell
Innerhalb der Mastitis-Pathogenese kommt der Melktechnik eine entscheidende
Rolle zu, denn grundsätzlich verursacht der maschinelle Milchentzug (v.a. eine lange
Melkdauer, ein hohes Melkvakuum und eine unzureichende Pulsierung) eine
Zunahme der Gewebefestigkeit der Zitzenkuppe durch Anschoppung von
interstitieller Flüssigkeit und Blut. Diese Zirkulationsstörungen in der Zitze führen zu
einer reduzierten Infektionsabwehr (MEIN u. WILLIAMS 1984; KRÖMKER u.
HAMANN 1998).
Darüber hinaus begünstigt maschinelles Melken die Kontamination der Zitzenhaut
und Zitzenkanalöffnung mit bakteriellen Erregern, das Eindringen von Erregern durch
den Zitzenkanal durch Rückfluss und Rückspray sowie die Verbreitung der Erreger
innerhalb des Euters (O´SHEA 1987).
Automatisch
Wenngleich einige Probleme des konventionellen Milchentzuges (z.B. das
Blindmelken) bei AMV weitestgehend behoben worden sind, wartet diese Art des
Melkens mit systemimanenten Schwierigkeiten auf, die sich ebenfalls auf die
Eutergesundheit auswirken können. Funktioniert das automatische Ansetzen der
Melkbecher meist fehlerfrei, können bei regulärem Betrieb mitunter diesbezügliche
Probleme auftreten, die sich letztendlich in Verzögerungen des Melkvorganges
äußern. Folgen sind eine unzureichende Stimulation und ein unvollständiges
Ausmelken von Drüsenkomplexen, was zu Verlusten der Milchleistung und zu einem
erhöhten Neuinfektionsrisiko der Milchdrüse führen kann. Es ist aber möglich, dass
die genannten negativen Aspekte bei mehr als drei Melkungen pro Kuh und Tag
kompensiert werden (HAMANN 2001).
Die hygienische Beschaffenheit der Milch und der Einrichtung ist in vielen AMS-
Betrieben schlechter als in Betrieben mit konventioneller Milchgewinnung (JEPSEN

Literatur
34
u. RASMUSSEN 2000; KNAPPSTEIN et al. 2002; REINHOLD u. HILDEBRANDT
2002). In einer Studie wird eine Abnahme der Milchqualität in AMS-Betrieben im
Vergleich zu konventionellen Betrieben festgestellt (KLUNGEL et al. 2000). Daher
sollte, um eine hohe Milchqualität zu erzielen, besonders auf die Sauberkeit der
Kühe und des Melkstandes geachtet werden (HAMANN 1999).
In einer Studie von RASMUSSEN et al. (2001b) stieg mit Einführung des
automatischen Melkens die somatische Zellzahl signifikant im Vergleich zum Vorjahr
im konventionellen Melksystem an. Nach ca. drei Monaten sank die erhöhte Zellzahl
langsam. Wenn aber der Gesundheitsstatus der Kühe von Beginn an gut ist, dann
hat das automatische Melkverfahren keinen negativen Einfluss auf die Inzidenz von
Eutererkrankungen, Zellzahl und Zitzenkondition (ZECCONI et al. 2003).
Die erhöhte Melkfrequenz im automatischen Melksystem kann sich positiv auf die
Eutergesundheit auswirken, indem euterpathogene Erreger vermehrt ausgespült
werden (LANSER 2000) und durch Anregung der Zellaktivität die Abwehrbereitschaft
erhöht wird (HILLERTON u. WINTER 1992). Die viertelindividuelle Melkung und
Melkbecherabnahme hat ebenfalls einen signifikant positiven Effekt auf die
Eutergesundheit (SVENNERSTEN-SJAUNJA u. PETTERSSON 2008).
Untersuchungen zur Zitzenkondition ergeben, dass diese unbeeinflusst bleibt oder
sich verbessert (BERGLUND et al. 2002; SCHRIDDE 2006). Andererseits resultiert
die erhöhte Melkfrequenz in einer verkürzten Zwischenmelkzeit. Das stärker
beanspruchte Zitzengewebe hat dadurch weniger Zeit, den Zustand vor dem Melken
zu erreichen (IPEMA u. BENDERS 1992). Ebenfalls ist der Zitzenkanal durch
frequenteres Melken öfter geöffnet, wodurch das bakterielle Infektionsrisiko in der
Zwischenmelkzeit erhöht ist (HILLERTON u. WINTER 1992).

2.4.2 Eutergesundheit
35
Literatur
Eine definitorische Klassifizierung mit einer scharfen Grenze zwischen gesund und
krank ist für das Euter ebenso wenig möglich wie für jedes andere Organ (HAMANN
u. FEHLINGS 2002). Aus praktischen Gründen lässt sich die Eutergesundheit
allerdings nach zwei unterschiedlichen Schemata kategorisieren: nach
Laborbefunden (Zytobakteriologie) und nach klinischen Ausprägungen.
Die Deutsche Veterinärmedizinische Gesellschaft (DVG) definierte vier Kategorien
der Eutergesundheit für die Beurteilung zytologisch-mikrobiologischer Befunde von
Viertelanfangsgemelken (HAMANN u. FEHLINGS 2002). Tabelle 2-1 zeigt das von
der DVG festgelegte Schema.
Tab. 2-1: Beurteilung zytologisch-mikrobiologischer Befunde im Rahmen der
Mastitis-Kategorisierung (in Anlehnung an IDF, 1967)
Zellgehalt pro ml
Euterpathogene Mikroorganismen
Milch nicht nachgewiesen nachgewiesen
< 100.000 normale Sekretion latente Infektion
> 100.000 unspezifische Mastitis Mastitis
IDF = International Dairy Federation
Der Zellgehaltgrenzwert von 100.000 pro ml Milch wurde aufgrund von
Untersuchungen von Viertelanfangsgemelken klinisch eutergesunder Färsen
festgelegt. Das Maximum der Häufigkeitsverteilung (Modalwert) betrug 20.000 Zellen
pro ml Milch. Unter Berücksichtigung der zweifachen Standarbabweichung ergab
sich ein Grenzwert von 100.000 Zellen pro ml Milch (DOGGWEILER u. HESS 1983).
Die Milch erkrankter Euterviertel kann bis zu mehrere Millionen Zellen pro ml
aufweisen (HAMANN 1992a).
Euterentzündungen in Form von unspezifischer Mastitis oder Mastitis treten in
unterschiedlichen Verlaufsformen und in Verbindung mit verschiedenartigen
klinischen Symptomen auf, oder kursieren subklinisch. Bei einer subklinischen
Mastitis tritt eine Entzündung ohne äußerlich erkennbare Symptome auf, der

Literatur
36
Zellgehalt ist jedoch erhöht. Eine geringgradige klinische Mastitis ist durch Auftreten
von Flocken in der Milch ohne zusätzliche klinische Symptome des Euters
gekennzeichnet, während bei einer mittel- bis hochgradigen klinischen Mastitis die
klassischen Entzündungssymptome wie erhöhte Temperatur, Schmerz, Rötung und
Schwellung im Vordergrund stehen und die Milch makroskopisch verändert ist.
Die Begriffe ‚subakut’, ‚akut’ und ‚chronisch’ beschreiben die zeitliche Dauer der
Erkrankung. Bei der chronischen Mastitis kommt es nicht zu einer Ausheilung des
Erkrankungsgeschehens (HAMANN u. FEHLINGS 2002).
2.4.3 Neuinfektionsrate
Das Risiko einer Neuinfektion der Milchdrüse wird durch eine Vielzahl von Faktoren
wie dem Grad der Mastitiserregerexpostition, dem systemischen und lokalen
Abwehrpotential oder der Zitzengewebefestigkeit bestimmt (KRÖMKER u. HAMANN
1998). ZECCONI et al. (1992) stellten fest, dass eine Änderung der
Zitzengewebefestigkeit von mehr als 5 % nach dem Melken zu einer Verdopplung
der Neuinfektionsrate gegenüber den Vierteln führt, deren Gewebereaktionen
weniger als 5 % Prozent betrugen.
In Zeitabschnitten mit erhöhten physiologischen Anforderungen z.B. Frühlaktation,
kann die Abwehrbereitschaft gegenüber Neuinfektionen so geschwächt sein, dass
Neuerkrankungen der Milchdrüse auftreten (HAMANN 1992b). Weitere Phasen der
hormonellen Umstellung und dadurch mit einem erhöhtem Neuinfektionsrisiko
verbunden, sind der Beginn der Trockenperiode sowie das Aufeutern vor der
Kalbung (KRÖMKER u. HAMANN 1998). Die Neuinfektionsrate in diesem Zeitraum
liegt um den Faktor drei bis fünf höher als in den übrigen Laktationsstadien
(HAMANN u. KRÖMKER 1999).
Untersuchungen mit konventionellen, mit Überdruck arbeitenden und nur an der
Zitzenbasis pulsierenden Melksystemen zeigen, dass sowohl eine Zunahme als auch

37
Literatur
eine Abnahme der Gewebefestigkeit der Zitzenkuppe mit einem erhöhten
Neuinfektionsrisiko einhergehen (HAMANN 1988).
2.4.4 Mastitisätiologie
Mastitiden sind multifaktorielle Infektionskrankheiten, an denen drei Biosysteme -
Wirt, Erreger und Umwelt – beteiligt sind (HAMANN 1992b). Überwiegend handelt es
sich bei mikrobiellen Mastitiserregern um Bakterien, aber auch Hefen, Algen und
Viren verursachen eine Euterentzündung (SCHULZ 1994).
Die Infektion der Milchdrüse mit Mastitiserregern erfolgt meist exogen über den
Zitzenkanal, in einzelnen Fällen auch hämatogen, lymphogen oder perkutan.
(HAMANN 1992b; HAMANN u. FEHLINGS 2002). Der eigentliche Mechanismus ist
noch ungeklärt (HAMANN u. FEHLINGS 2002). Durch ein Zusammenwirken von
Mastitiserregern, endogenen und/oder exogenen Stressoren werden die lokalen oder
systemischen Abwehrmechanismen beeinträchtigt (HAMANN u. FEHLINGS 2002).
Es werden folgende Gruppen von bakteriellen Mastitiserregern unterschieden
(HAMANN u. FEHLINGS 2002):
• kuhassoziierte Mastitiserreger: Staphylococcus (S.) aureus, Streptococcus
(S.) agalactiae, S. dysgalactiae: Das Erregerreservoir sind infizierte
Milchdrüsen und das Melkzeug. Eine Übertragung erfolgt fast ausschließlich in
Verbindung mit dem Melkvorgang. Die Übertragungsmöglichkeit kann durch eine
gute Melkhygiene und Zitzendesinfektion nach dem Melken reduziert werden. Beim
Einsatz von automatischen Melkverfahren (AMV) besteht die Gefahr einer
Übertragung von euterassoziierten Erregern, wenn keine entsprechenden
Desinfektionsmaßnahmen angewendet werden, da die ganze Herde mit einem oder
wenigen Melkzeugen gemolken wird.
• umweltassoziierte Mastitiserreger: S. uberis, Escherichia coli, Enterococcus
spp., Klebsiellen, sowie sonstige Enterobacteriaceae: Die Hautoberfläche und

Literatur
38
die unmittelbare Umgebung (z.B. Einstreu, Stalleinrichtung) des Tieres werden
als Reservoire angesehen. Das Übertragungsrisiko ist vor allem während der
Zwischenmelkzeit besonders groß, weshalb die Faktoren Stallhygiene und
Haltungsvorraussetzungen von besonders großer Bedeutung sind.
• Koagulase-negative Staphylokokken (KNS): Diese opportunistischen
Hautbesiedler haben in den letzten Jahren vermehrt an Bedeutung als
Mastitiserreger gewonnen (HAMANN u. FEHLINGS 2002; PYÖRÄLÄ u. TAPONEN
2009). Dabei scheinen Bedeutung und Häufigkeit der einzelnen Spezies regional zu
variieren. TAPONEN et al. (2006) identifizierten S. simulans als häufigste KNS-
Spezies in bovinen Viertelanfangsgemelken in der Umgebung von Helsinki, gefolgt
von S. chromogenes. In einer gesamtdeutschen Studie wurden hauptsächlich S.
chromogenes, S. simulans und S. epidermidis nachgewiesen (LÜTHJE u.
SCHWARZ 2006).
Bis vor wenigen Jahren wurde der Nachweis von koagulase-negativen
Staphylokokken in der Milch überwiegend als Vorteil (im Sinne probiotischer
Prophylaxe gegenüber dem Auftreten von durch Staphylococcus aureus oder
Streptokokken ausgelösten Mastitiden) denn als eigentliches Mastitisproblem
angesehen (HAMANN 1992a). Koagulase-negative Staphylokokken verursachen
allerdings in nicht-laktierendem Drüsenparenchym (Färsen) histologisch
nachweisbare Schädigungen des sekretorischen Gewebes (TRINIDAD et al. 1990).
Die Infektion hat ihren Höhepunkt in der Frühlaktation und unterscheidet sich im
klinischen Verlauf nicht von einer Staphylokokkenmastitis (SCHUMANN u. MERCK
1999). Nach NICKERSON und BODDIE (1994) schützen KNS vor Infektionen mit
Staphylococcus aureus, aber es besteht eine erhöhte Anfälligkeit für S. agalactiae.
HOGAN et al. (1988) konnten hingegen keine prophylaktische Schutzwirkung der
KNS feststellen. MATTHEWS et al. (1991) nehmen an, dass eine bestehende
Infektion mit KNS eine Besiedlung mit euterpathogenen Keimen reduziert. Für
bakteriologisch negative Euterviertel besteht ein doppelt so großes Infektionsrisiko
wie für bereits KNS-infizierte Viertel, wobei es sich aber hauptsächlich um
Neuinfektionen mit KNS handelt.

39
Literatur
Des Weiteren werden in hohem Maße auch coryneforme Bakterien (v.a.
Corynebacterium bovis) aus der bovinen Milchdrüse isoliert, wobei diesen Erregern
aber nur eine mäßige Euterpathogenität zugeschrieben wird (HUXLEY et al. 2004),
obwohl es auch einige pathogenere Spezies und Serovare zu geben scheint.
2.4.5 Entzündungsparameter
2.4.5.1 Somatische Zellen (SCC, somatic cell count)
In Milch mit physiologischen Zellgehaltsbefunden kommen als Hauptzellarten
Makrophagen (60 %), Lymphozyten (25 %) und polymorphkernige neutrophile
Granulozyten (15%) vor (PAAPE et al. 1981; HAMANN 1992b). Weiterhin sind
Epithelzellen (2%) und, im geringen Maße, eosinophile Granulozyten, Monozyten
sowie Plasmazellen vorhanden. Die primäre biologische Bedeutung der somatischen
Zellen liegt in der multifaktoriellen Infektionsabwehr der Milchdrüse, vor allem in Form
von Phagozytose (HAMANN 1992b).
20.000 – 50.000 Zellen pro ml Milch werden als „normaler“ physiologischer Zellgehalt
bezeichnet, daraus ergibt sich ein physiologischer Schwankungsbereich von bis zu
100.000 Zellen pro ml Milch (s. Kapitel 2.4.3). Die Milch erkrankter Euterviertel kann
mehrere Millionen Zellen pro ml Milch aufweisen, wobei die Zellgehaltserhöhung als
Abwehrantwort auf die verschiedenen Noxen einer exponentiellen Gesetzmäßigkeit
folgt (HAMANN 1992b).
Im Folgenden werden einige Parameter und deren Einfluss auf die somatische
Zellzahl erläutert.
Melkintervall / Melkfrequenz
Melkintervall bzw. Melkfrequenz nehmen nach folgender Art und Weise Einfluss auf
die Zellzahl.

Literatur
40
Einmal tägliches Melken führt im Vergleich zu zweimaligen Melken zu einem
Zellzahlanstieg (STELWAGEN u. LACY-HULBERT 1996; HAMANN 2001b; CLARK
et al. 2006). HOGEVEEN et al. (2001) haben dreimaliges Melken mit zweimaligen
Melken pro Tag verglichen und stellten hingegen fest, dass die Zellzahl bei
frequenterem Melken sinkt.
In einer Studie von DAHL et al. (2004) wiesen Kühe, die sechsmal am Tag gemolken
wurden, niedrigere Zellzahlen als Kühe auf, die dreimal täglich gemolken wurden.
Nach einem Melkintervall von 10 h ist die Zellzahl höher als nach einem Melkintervall
von 14 h (HAMANN u. GYODI 1999). HAMANN und GYODY (2000) stellten bei
einem Melkintervall von 4 Stunden eine Erhöhung des Zellgehalts fest (Anstieg der
Gesamtzellzahl um 16 %), während nach 12 Stunden die Zellzahl reduziert war.
Die Zellmigration in die Milchdrüse ist aufgrund einer Lockerung der Verbindung
zwischen den Epithelzellen (tight junctions) direkt nach dem Melken am höchsten.
Allerdings wird durch ein frequenteres Melken die Eutergesundheit verbessert, indem
Bakterien und ihre Stoffwechselprodukte entfernt werden. Weiterhin wird die Melkzeit
reduziert und dadurch die mechanische Belastung der Zitzen verringert (VAN DER
IEST u. HILLERTON 1989).
Laktationsstadium
Ein Anstieg der Zellzahl mit fortschreitender Laktation wird von DOGGWEILER und
HESS (1983) und LABOHM et al. (1998) beobachtet. LAEVENS et al. (1997)
hingegen lehnen einen Einfluss des Laktationsstadiums auf den Zellgehalt für
bakteriologisch negative Euterviertel ab. Diese Aussage wird von NG-KWAI-HANG et
al. (1984) nicht bestätigt. Sie beobachteten zu Beginn der Laktation hohe Zellzahlen,
nach zwei Monaten ein Minimum und anschließend einen kontinuierlichen Anstieg
der Zellzahl bis zum Ende der Laktation.
Das Laktationsstadium hat im Vergleich zu Infektionen mit Staphylococcus aureus
nur einen minimalen Einfluss auf die Zellzahl (SHELDRAKE et al. 1983).

Laktationsnummer
41
Literatur
Für eutergesunde Kühe konnte kein Einfluss der Laktationsnummer festgestellt
werden (SHELDRAKE et al. 1983; LAEVENS et al. 1997). Junge Tiere (< 2 Jahre)
weisen einen niedrigeren Zellgehalt auf als ältere Tiere (NG-KWAI-HANG et al.
1984). Auch LABOHM et al. (1998) beobachten einen Anstieg der Zellzahl mit
fortschreitender Laktationszahl.
Gemelksfraktion
HAMANN und GYODI (1999) beobachten einen Anstieg der Zellzahl im Verlauf des
Melkvorganges mit maximalen Zellzahlwerten im Viertelnachgemelk, wobei das
Viertelanfangsgemelk einen niedrigeren Zellgehalt aufweist als das Viertelvorgemelk.
Auch VANGROENWEGHE et al. (2002) finden den höchsten Zellzahlgehalt im
Residualgemelk.
Stress
Stresssituationen können das Infektionsrisiko der bovinen Milchdrüse erhöhen oder
bei bereits infizierten Eutervierteln einen Zellanstieg auslösen (HAMANN u.
REICHMUTH 1990; HAMANN 1992b). Exogene Stressfaktoren, wie zum Beispiel der
Weideaustrieb, führen in gesunden Drüsenkomplexen zu keinem Zellzahlanstieg,
während in bereits vorgeschädigten Eutervierteln deutliche zytologische Reaktionen
beobachtet werden können (HAMANN u. REICHMUTH 1990).
2.4.5.2 N-Acetyl-ß-D-glukosaminidase (NAGase)-Aktivität
NAGase ist ein lysosomales Enzym, das von polymorphkernigen neutrophilen
Granulozyten und epithelialen Zellen freigesetzt wird. Es dient als Katalysator zur
Zerstörung der Zellwand von Mikroorganismen und kann ein empfindlicher Indikator
für Eutergesundheitsstörungen sein (KRÖMKER et al. 1999). In der löslichen
Molkeproteinfraktion besitzt NAGase die höchste Aktivität (KITCHEN et al. 1978).

Literatur
42
Der physiologische Referenzbereich eutergesunder Kühe liegt zwischen 1,1 – 2,8
nmol x min -1 x ml -1 (SCHÜTTEL 1999).
Im Gegensatz zur somatischen Zellzahl ist die NAGase-Aktivität nur beim Vorliegen
von entzündlichen Prozessen im Euter erhöht, bei einem physiologisch bedingtem
Zellanstieg bleibt sie niedrig (STELWAGEN u. LACY-HULBERT 1996; SCHÜTTEL
1999).
Nur beim Vorliegen mastitisassoziierter Zellzahlbefunde zeigt die NAGase-Aktivität
eine parallele Entwicklung zur Zellzahl, nicht jedoch bei einem physiologisch
bedingten Anstieg der Zellzahl. Dies ermöglicht eine Unterscheidung infizierter und
nicht infizierter Euterviertel (HAMANN et al. 1999). Dadurch kann auch im niedrigen
Zellzahlbereich (100.000 – 200.000 Zellen pro ml Milch) zwischen physiologischen
Variationen und entzündlich bedingten Anstieg der Zellzahl unterschieden werden
(NOGAI et al. 1996; HAMANN et al. 1999).
Im Falle einer Mastitis kann die NAGase-Aktivität in der Milch um das zehnfache
ansteigen. Sie korrelliert eng mit dem Zellgehalt (SCHULTZE 1985). Daher kann die
Aussagefähigkeit der NAGase-Aktivität mit der der Zellzahl in der Mastitisdiagnostik
gleichgestellt werden (HAMANN et al. 1999). Ein weiterer Vorteil dieses Indikators
ist, dass er nicht durch klinische Allgemeinerkrankungen beeinflusst wird (KRÖMKER
et al. 1999).
Über einen Einfluss der Melkfrequenz auf die NAGase-Aktivität in Milch liegen
unterschiedliche Ergebnisse vor. In einer Studie über automatische Melksysteme
findet REINECKE (2002) bei kurzen Zwischenmelkzeiten (< 6 Stunden) die höchsten
und bei Zwischenmelkzeiten von 6 - 8 Stunden die niedrigsten NAGase-Werte.
STELWAGEN und LACY HULBERT (1996) stellen fest, dass die NAGase-Aktivität
durch den Wechsel zwischen ein- und zweimal täglichem Melken nicht beeinträchtigt
wird. Des Weiteren wird eine Abnahme der NAGase-Aktivität durch höherfrequentes
Melken beschrieben (KAARTINEN et al. 1990).

43
Literatur
Im Viertelvorgemelk (VVG) werden höhere NAGase-Werte gefunden als im
Viertelanfangsgemelk (VAG). Es kommt außerdem zu einem Anstieg der NAGase-
Konzentration vom VAG zum Viertelgesamtgemelk (HAMANN et al. 1999).
NAGAHATA et al. (1987) stellen ebenfalls in erkrankten Vierteln einen Anstieg der
NAGase-Aktivität vom Anfangs- zum Nachgemelk fest.
Auch im Gesamtgemelk von gesunden Kühen werden niedrigere NAGase-Werte
gefunden als in den Anfangs- und Nachgemelken, was auf den Verdünnungseffekt
der Milchejektion zurückzuführen ist. Der NAGase-Anstieg im Nachgemelk wird mit
einer Zunahme an Leukozyten in dieser Gemelkfraktion begründet (BERNING et al.
1987). Eine Erhöhung der NAGase-Aktivität mit steigender Laktationszahl
beobachten MATILLA und SANDHOLM (1985). MILLER und PAAPE (1988)
hingegen finden keinen Einfluss der Laktationszahl.
2.4.5.3 Elektrische Leitfähigkeit (LF)
Die elektrische Leitfähigkeit ist ein Maß für die Konzentration und Beweglichkeit der
Ionen, die in der Milch dissoziiert vorliegen (v.a. Chlorid-, Kalium- und Natrium-
Ionen). Da der Natriumchloridgehalt physiologisch starken Schwankungen unterliegt,
können nicht mit Sicherheit Rückschlüsse auf eine Eutererkrankung gezogen werden
(SCHULZ u. SYDOW 1957).
Der Referenzbereich von Milch gesunder Euterviertel liegt zwischen 4,8 – 6,2 mS/cm
bei 25 °C (HAMANN u. FEHLINGS 2002). Im Zusammenhan g mit größeren
Herdenzahlen und der Anwendung von automatischen Melksystemen wird die
elektrische Leitfähigkeit zunehmend automatisch, während des Melkvorgangs,
bestimmt (HAMANN u. GYODI 1999). Die elektrische Leitfähigkeit nimmt zum Ende
des Melkvorgangs stetig ab, was auf die erhöhte Fettkonzentration in diesen
Gemelkfraktionen zurückzuführen ist (HAMANN u. GYODI 1999).
Laktationsphysiologische, fütterungsbedingte, melkzeitabhängige, tierindividuelle
Faktoren (HAMANN 1986; HAMANN u. ZECCONI 1998), sowie die Rasse (HAMANN
u. ZECCONI 1998) beeinflussen die diagnostische Genauigkeit.

Literatur
44
Während einer Euterentzündung gelangen, aufgrund einer Schädigung der Blut-
Euter-Schranke, vermehrt Natrium- und Chlorid-Ionen in die Milch, wobei der Gehalt
an Kalium-Ionen und Laktose abnimmt (HAMANN u. ZECCONI 1998).

3 Material und Methoden
3.1 Material
3.1.1 Betrieb
45
Material und Methoden
Die Probennahmen und Untersuchungen wurden auf dem Lehr- und Forschungsgut
Ruthe der Tierärztlichen Hochschule Hannover durchgeführt.
Die insgesamt aus ca. 80 laktierenden Tieren bestehende Milchviehherde war in
zwei Gruppen geteilt. Die eine Gruppe wurde konventionell in einem 2 x 4 Auto-
Tandem- Melkstand gemolken, die andere Gruppe automatisch durch das Voluntary
Milking System ® (VMS ® ) - beides Firma: DeLaval. In den Versuch wurde lediglich
die Milchviehherde am automatischen Melksystem einbezogen. Sie bestand zum
Zeitpunkt der Probenentnahme aus ca. 37 laktierenden Tieren der Rasse Deutsche
Holstein, Farbrichtung schwarz-bunt. Die Remontierung der Tiere erfolgte aus der
eigenen Nachzucht. Die durchschnittliche Jahresmilchleistung lag bei 9806 kg Milch
mit einem Fettgehalt von 4,24 % und einem Eiweißgehalt von 3,46 %. Das
durchschnittliche Alter der Tiere betrug 3,9 Jahre bei 334 Melktagen pro Laktation.
Die Zwischenkalbezeit lag bei 405 Tagen, die Kalberate bei 83,9 %.
3.1.2 Tiere
Vor Versuchsbeginn fand eine Auswahl der Tiere statt, wobei Laktationsstadium und
Laktationsnummer als Selektionskriterien dienten.
Tabelle 3-1 gibt einen Überblick über die Parameter, die zur Auswahl beachtet
wurden.

Material und Methoden
46
Tab. 3-1: Parameter zur Auswahl der Tiere
Laktationsstadium Ausprägung
1 1 - 100 Tage p.p.
2 101 - 200 Tage p.p.
3 201 - 200 Tage p.p.
4 > 300 Tage p.p.
Laktationsnummer
1 1. Laktation
2 2. Laktation
3 3. Laktation
4 4. Laktation
p.p. = post partum
Ziel war es, das Tiermaterial über den gesamten Versuchszeitraum konstant zu
halten. Aufgrund von Krankheiten, Abkalbungen und Merzungen konnten Variationen
im Tiermaterial dennoch nicht vermieden werden. Um später den Vergleich der
Viertelpositionen zu ermöglichen (zwei Viertel versus zwei Viertel), wurden
Dreistriche vom Versuch ausgeschlossen. Während der Versuchsperiode wurden
antibiotisch behandelte Tiere jeweils für den Zeitraum der Behandlung in der
konventionellen Herde gemolken. Nach Abschluss der Behandlung – d.h. während
der Restwartezeit - erfolgte die sofortige Wiedereingliederung in die VMS-Herde.
3.1.3 Aufstallung
Die Tiere der VMS-Herde wurden in einem Liegeboxenlaufstall mit Spaltenboden
gehalten, in welchem ein voll-gelenkter Tierverkehr umgesetzt wurde: Der Stall war in
einen Liege- und einen Fressbereich unterteilt. Auf dem Weg in den Liegebereich
mussten die Kühe ein Einwegtor passieren, und von dort führte wegen einer
Rücklaufsperre nur der Weg über das AMS in den Fressbereich.
Im Fressbereich befanden sich 35 erhöht angeordnete Fressplätze mit einer Breite
von 73 cm und einer Länge von 150 cm. Der Laufgang hinter den Fressplätzen hatte
eine Breite von 235 cm. Der Liegebereich bestand aus 33 Hochliegeboxen. Die 17

47
Material und Methoden
wandständigen Boxen waren mit einer Komfort-Gummimatte, die 16 Boxen in der
Stallmitte mit einer Kuhmatratze (M 100 ® ) - beides Firma DeLaval - ausgestattet.
Jede Liegebox war 235 cm lang und 120 cm breit. Der Laufgang zwischen den
zweireihig angeordneten Hochliegeboxen hatte eine Breite von 250 cm.
Im Stall befanden sich zwei Beckentränken, eine Schalentränke, sowie eine
Kraftfutterstation.
Die Spaltenböden wurden zweimal täglich manuell abgeschoben. Die Liegeboxen
wurden täglich mit Strohmehl und Carbokalk eingestreut.
3.1.4 Fütterung
Die Grundfutteraufnahme erfolgte ad libitum am Futtertisch. Zum größten Teil
handelte es sich dabei um Gras- und Maissilage. Zudem konnte die Ration - je nach
Verfügbarkeit - aus Kuhschrot, Trockenschnitzel, Heu und Mineralfuttermischung
bestehen. Die Kraftfuttergabe erfolgte tierindividuell in Abhängigkeit von
Laktationsstadium und –leistung über eine Transpondererkennung in den
Kraftfutterstationen. Einen Teil der Kraftfutterration, circa 1500 g pro Tag, bekamen
die Tiere als Lockfuttermittel im VMS.
3.1.5 Melken
Die Tiere der VMS-Herde wurden in einem 24-stündigen Melkbetrieb gemolken, der
nur durch Reingungsphasen der Melkanlage unterbrochen wurde.
3.1.5.1 Melkparameter im VMS
Die wichtigsten Eigenschaften und Arbeitsschritte des Melkroboters auf dem Lehr-
und Forschungsgut Ruthe sind in Tab. 3-2 zusammengefasst.

Material und Methoden
Tab. 3-2: Parameter und Arbeitsschritte des Melkroboters
48
Parameter Voluntary Milking System ®
System • Bei diesem Einboxenmelksystem in rechtsseitiger
Ausführung mit Melkergrube betrat die Kuh die Melkbox
von rechts und verließ sie auf der linken Seite der Station.
• Die Melkergrube ermöglichte einen direkten Zugang zum
Euter.
Bedienung • Die Bedienung erfolgte über einen Touchscreen am
Melkstand oder über den PC.
Tierverkehr • gelenkter Tierverkehr: ein Wechsel vom Fress- in den
Liegebereich erfolgte durch ein Einwegtor; nur durch
Passieren des Melkroboters gelangten die Tiere vom
Liegebereich in den Fressbereich
Tiererkennung • Die allgemeine Tiererkennung erfolgte über eine
Lichtschranke, die tierindividuelle Erkennung über einen
Transponder.
Fixierung • Die Standlänge wurde durch Verschieben des Futtertroges
für jedes Tier individuell angepasst. Das am hinteren Ende
des Standes angebrachte Kotblech lag den
Hinterschenkeln der Kuh locker an.
Melkberechtigung • Das Melkanrecht für jede einzelne Kuh wurde
folgendermaßen festgelegt:
1. Laktation:
0-3 Monate nach Abkalbung: 300 Min./8 kg erwartete
Milchmenge
3 Monate – Trockenstellen:
360 Min./8 - 11 kg erwartete Milchmenge
2. Laktation und aufwärts:
0-3 Monate nach Abkalbung: 300 Min./10 kg erwartete
Milchmenge
3 Monate - Trockenstellen:
390 Min./10 -13 kg erwartete Milchmenge
Melkmodul • Die vier Melkbecher und der Vorbereitungsbecher
befanden sich mit der Kopföffnung nach unten in einem
Magazin.
Zitzenerkennung • Mit einer Digitalkamera und zwei Lasern wurde die Zitze
erkannt.
• Durch „Teachen“ (manuell gesteuertes Heranfahren des
Multifunktionsarms an die Zitzen) wurden dem Melkroboter
die Zitzenpositionen mitgeteilt; dies war bei jedem

49
Material und Methoden
erstmaligen Melken notwendig.
Zitzenreinigung, • Der Multifunktionsarm ergriff den
Vormelken
Zitzenvorbereitungsbecher aus dem Melkmodul und
Anrüsten
reinigte die Zitzen mit warmem Wasser und Druckluft in der
Reihenfolge vl, hl, vr, hr, melkte sie vor und trocknete die
Zitzen anschließend.
• Das Vorgemelk wurde zusammen mit dem Waschwasser
über ein separates Leitungssystem abgeführt.
Ansetzen • Der Multifunktionsarm setzte den jeder Zitze zugeordneten
Melkbecher in der Reihenfolge hl, hr, vl, vr einzeln an.
Melken
• Die Ableitung der Milch erfolgte viertelindividuell, wobei
jeder Milchschlauch mit einer Zwangsbelüftung
•
ausgestattet war.
Melkvakuum: 45 kPa
• Pulsator: 65/35, 60 Pulszyklen pro Minute
Abnahme • Die viertelindividuelle Abnahme der Zitzenbecher erfolgte
bei einem Milchfluss unter 200 g pro Minute und Viertel.
Zitzendesinfektion • Der Multifunktionsarm besprühte Zitzen und Euterboden
mit DeLaval Proactive (1500 ppm verfügbares, 4 ppm
freies Jod, pH 5 - 6 und 2,2 % Pflegestoffe).
Reinigung • Alle 12 Stunden fand eine Systemreinigung statt.
• Nach 45-minütiger Nichtnutzung wurde vom System eine
„kurze Systemspülung“ durchgeführt.
• Nach Ableitung von Milch (Hemmstoffe, Mastitis) erfolgte
eine „lange Systemspülung“.
• Nach jeder Melkung wurden die Zitzenbecher einer
automatischen Klarspülung unterzogen (Backflush).
3.1.5.2 Zitzengummis
Für den Versuch wurden zwei verschiedene Zitzengummitypen verwendet, zum
einen konventionelle, runde Zitzengummis der Firma DeLaval und zum anderen
dreieckige Zitzengummis der Firma Milk-Rite (Abb. 3-1). Eine Übersicht über diese
beiden Zitzengummis gibt Tabelle 3-3.
Die Monoblockzitzengummis wurden in die Becherhülsen eingesetzt und die kurzen
Milchschläuche abgeschnitten. Ein Metallröhrchen schaffte den Übergang zum
kurzen Milchschlauch, der kurze Pulsschlauch konnte direkt auf einem Adapter an
der Becherhülse gesteckt werden (Abb. 3-2).

Material und Methoden
Tab. 3-3: Technische Daten der verwendeten Zitzengummis
Zitzengummi,
Hersteller
50
Bezeichnung Bohrung
(Kopföffnung)
[mm]
Schaft-
durchmesser
[mm]
Kopfform
Länge
[mm]
rund, DeLaval 20 M - EX 20 23 klein 335
dreieckig, Milk-Rite TLC - A6 20 23 klein 310
Abb. 3-1: Dreieckiger Zitzengummi TLC–A6 der Firma Milk-Rite,
Zahlenangaben in mm (www.zitzengummis-billiger.de)
kurzer Milchschlauch
Metallröhrchen
Abb. 3-2: Fixieren des kurzen Milch- und Pulsschlauch an der Melkbecherhülse

3.2 Methoden
3.2.1 Versuchsplan
51
Material und Methoden
Die Studie umfasste, in einem Zeitraum von sechs Monaten, insgesamt 13
Probenentnahmen.
3.2.2 Versuchsdurchführung und Anordnung der Zitzengummis
Im Rahmen eines Vorversuches wurden an drei Terminen im wöchentlichen Abstand
Milchproben (Viertelanfangsgemelke) von allen Tieren der VMS-Herde gewonnen,
um einen Überblick über den Eutergesundheitsstatus der Herde zu bekommen.
Im Hauptversuch wurden an zehn Terminen jeweils über einen Zeitraum von 24
Stunden Viertelanfangs- und Viertelhandgemelke entnommen, sowie die
Zitzenhautkondition vor und nach dem Melken ermittelt. Die Milchmengenleistung auf
Viertelebene und die Zeit pro Melkvorgang wurden ebenfalls bestimmt.
Die Probenentnahmen fanden in einem zweiwöchigen Abstand statt. Dabei wurden
alle Tiere beprobt, die ein Melkanrecht hatten. Tiere, die den Melkstand nach zwölf
Stunden noch nicht aufgesucht hatten, wurden vom Probennehmer in den Melkstand
geholt und beprobt.
Die Versuchstermine sind in Tabelle 3-4 dargestellt.

Material und Methoden
Tab. 3-4: Versuchstermine
Vorversuch
Hauptversuch
Probenkürzel Datum
52
-3 14.05.2007
-2 21.05.2007
-1 29.05.2007
1 11.06.2007
2 25.06.2007
3 09.07.2007
4 23.07.2007
5 06.08.2007
6 20.08.2007
7 03.09.2007
8 17.09.2007
9 01.10.2007
10 15.10.2007
Grundsätzlich wurden die Zitzengummis alle vier Wochen – nach ca. 2500
Melkungen – durch fabrikneue Exemplare ersetzt. Darüber hinaus wurden zu den
Terminen verschiedene Arten von Zitzengummis verwendet:
• Während der Probenentnahmen des Vorversuchs und der ersten beiden
Terminen des Hauptversuchs waren nur konventionelle (runde) Zitzengummis
in die Melkbecherhülsen eingezogen worden.
• Im Anschluss wurden für acht Wochen dreieckige Zitzengummis der Firma
Milk-Rite TM in die rechte hintere und linke vordere Melkbecherhülse bzw. in die
verbleibenden Becherhülsen neue runde Zitzengummis der Firma DeLaval
verwendet.
• Nach diesen acht Wochen kamen für den gleichen Zeitraum neue dreieckige
Zitzengummis in der rechten vorderen und linken hinteren Melkbecherhülse,
sowie runde Zitzengummis in den übrigen Hülsen zum Einsatz.
Einen Überblick über die Anordnung der Zitzengummis gibt Tabelle 3-5.

Tab. 3-5: Versuchsplan und Anordnung der Zitzengummis
(o = rund; = dreieckig)
Versuch Zahl der
Gemelke
Vorversuch
(-3 bis -1)
Hauptversuch
Phase 1 (1,2)
Hauptversuch
Phase 2 (3,4)
Hauptversuch
Phase 2 (5,6)
Hauptversuch
Phase 3 (7,8)
Hauptversuch
Phase 3 (9,10)
3.2.3 Methodik der Probennahme
53
Zitzengummi
Material und Methoden
VR HR VL HL
o o o o
2500 o o o o
2500 o o
2500 o o
2500 o o
2500 o o
Zu Beginn eines jeden Probentermins wurde das VMS ® in den manuellen Modus
versetzt und die Vakuumhöhe des Systems erfasst. Sobald die erste Kuh den
Melkstand betrat, begann die eigentliche Probenentnahme. Die im Rahmen des
Vormelkens gewonnenen Milchstrahlen wurden mit dem Handgerät Mastitron ® plus V
aufgefangen, die elektrische Leitfähigkeit bestimmt bzw. makroskopische
Sekretabweichungen protokolliert.
Die Zitzen wurden anschließend trocken gereinigt. Nach der Reinigung erfolgte eine
optische Beurteilung des Zitzenschaftes und der Zitzenspitze. Die Kategorisierung
der Befunde ist im Kapitel 3.2.3.2.2 enthalten. Anschließend wurden die Zitzen
nochmals trocken gereinigt und mit 70 %-igem Alkohol zur sterilen Entnahme der
Viertelanfangsgemelke desinfiziert. Dabei wurden ca. 10 ml Milch je Viertel in ein
steriles 10 ml Reagenzglas ermolken.
Nach diesem Schritt erfolgte die Bestimmung der Gewebefestigkeit im Bereich der
Zitzenkuppe mit Hilfe eines Federkutimeters der Firma Hauptner (Nr. 33865). Das

Material und Methoden
54
Kutimeter wurde so angelegt, dass die beiden Messschenkel mit der Zitzenspitze
eine Ebene bildeten.
Da die Messung des Zellgehaltes mittels Fossomatic ® 5000 im Labor des
Milchkontrollverbandes (MKV) Mittelweser e.V. in Rehburg nicht in Reagenzgläsern,
sondern in Kunststoffflaschen erfolgt, wurden nach der Kutimetrie von jedem
Euterviertel 20 ml Milch in eine unsterile Kunststoffflasche ermolken. Unmittelbar
danach erfolgte das manuelle Ansetzen der Melkbecher. Um die Melkdauer zu
erfassen, wurden zeitgleich Stoppuhren aktiviert.
Nach automatischer Melkbecherabnahme wurden die Stoppuhren angehalten und
eine erneute Adspektion des Zitzenschaftes und der Zitzenspitze durchgeführt.
Ebenfalls wurde die Konsistenz der Zitzenspitze beurteilt, sowie auf Vorhandensein
von Milch bzw. Feuchtigkeit an der Zitzenspitze geachtet. Während des Einsatzes
der dreieckigen Zitzengummis wurde auch die Form der Zitzen unmittelbar nach
Becherabnahme beurteilt. Außerdem fand eine zweite Messung der
Gewebefestigkeit der Zitzenkuppe mithilfe des Federkutimeters statt. Adspektion und
Kutimetrie erfolgten auf Viertelebene in der gleichen Reihenfolge, in der auch die
Zitzenbecher abgenommen wurden.
Das Dippen der Zitzen und das anschließende Entlassen der Kuh aus dem
Melkstand wurden vom Probennehmer durchgeführt. Die vom automatischen
Melksystem erfassten Milchmengenleistungen pro Viertel wurden protokolliert. An
zwei zusätzlichen Terminen (am Anfang und am Ende des Hauptversuchs) wurden
die Euter- und Zitzenform der Kühe des VMS beurteilt.
3.2.3.1 Eutergesundheitsparameter
Tabelle 3-6 enthält die untersuchten Parameter sowie die dazugehörigen
Milchfraktionen.

55
Material und Methoden
Tab. 3-6: Gemelksfraktion und untersuchte Parameter zur Eutergesundheit
Gemelks-
fraktion
Viertel-
vorgemelk
Viertel-
anfangs-
gemelk
(VAG)
Viertel-
handgemelk
(VGH)
Parameter Probengefäß
elektrische
Leitfähigkeit
Bakteriologie
NAGase-
Aktivität
Zytologie
(somatische
Zellen)
3.2.3.1.1 Bakteriologie
Mastitron ®
plus V
steriles
Reagenzglas
Volumen zur
Analyse
ca. 4 ml
0,01 ml per
Impföse
für einen Ausstrich
auf einer
Blutagarplatte
(ca. 10 ml) Umfüllen von 1,5
ml in ein
Reaktionsgefäß
nach Eppendorf
Kunststoff-
flasche
(unsteril)
ca. 20 ml
Konser-
vierung
nein
nein
0,06 ml
Bronopol
und
Eosin
Verwerfen
der Probe
Lagerung
Bebrütung
bei 37 °C
Einfrieren
bei -15 °C
Im Labor wurden jeweils 10 µl der Viertelanfangsgemelksproben auf einer halben
Agarplatte (Aesculin-Schafblutagar; Nutrient-Agar: CM 3 Oxoid ® ; Thermo Fischer
Scientific – Oxoid GmbH) ausgestrichen.
Die Platten wurden bei 37 °C inkubiert. Nach 24 und 48 h fand jeweils eine
Beurteilung der gewachsenen Kolonien nach Koloniemorphologie und
Hämolyseverhalten statt. Bei Verdacht auf Hefen und Schimmelpilze wurde
außerdem eine HGC-Agarplatte (Hefeextrakt-Glukose-Chloramphenicol-
Selektivnährboden, Thermo Fischer Scientific – Oxoid GmbH) angelegt.
In Zweifelsfällen diente die mikroskopische Beurteilung von nach Gram gefärbten
Präparaten zur näheren Identifizierung der Erreger.
6 °C

Material und Methoden
Weitere Untersuchungsverfahren zur Identifizierung von Mastitiserregern:
• Streptococcaceae: α-, β-, γ-Hämolyse; Äskulinspaltung, Gruppenanatigene
56
nach Lancefield; Hippurathydrolyse
• Micrococcaceae: Hämolyse; Clumping-Faktor; Koagulasereaktion;
Hyaluronidasenachweis; Agardiffusionstest gegen
Furazolidon
• Enterobacteriaceae: Bactident ® Escheria coli-Teststäbchen: ß-D-
Glucoronidasenachweis; Tryptophanasenachweis
(Indolbildung)
3.2.3.1.2 Zytologie - Anzahl somatischer Zellen (SCC)
Die Ermittlung des Zellgehaltes pro ml Milch VGH erfolgte durch Messung mit der
Fossomatic ® 5000 der Firma Foss Electric TM (Dänemark) im Labor des
Milchkontrollverbandes (MKV) Mittelweser e.V. in Rehburg. Das zur Anwendung
kommende fluoreszenzoptische Verfahren wurde von SCHMIDT-MADSEN (1975)
beschrieben.
3.2.3.1.3 Elektrische Leitfähigkeit (LF)
Mit dem Gerät Mastitron ® plus V der Firma Milku TM wurde durch die Messung des
elektrischen Widerstandes die elektrische Leitfähigkeit der Milch bestimmt. Die
ermittelten Werte wurden in Millisiemens pro Zentimeter (mS/cm) angezeigt,
(Präzision: Vk-Wert < 5 %).
3.2.3.1.4 N-Acetyl-ß-D-glukosaminidase (NAGase)-Aktivität
Die Konzentration der NAGase wurde mit Hilfe einer Enzym-Substrat-Reaktion
gemessen. Die Bestimmung der NAGase-Aktivität erfolgte

57
Material und Methoden
fluoreszenzspektroskopisch mit dem Gerät Fluoroskan II ® (Firma Labsystems,
Finnland) nach dem Mikrotiterplattenverfahren. Mit der Software SeroCalc ® wurde die
ermittelte optische Dichte in die entsprechende Enzymkonzentration (nmol x ml -1 x
min -1 ) umgerechnet. Die Messmethode entsprach der detaillierten Beschreibung von
NOGAI et al. (1996).

Material und Methoden
3.2.3.2 Zitzengewebsreaktion
3.2.3.2.1 Kutimetrie
58
Die Gewebefestigkeit [mm] der Zitzenkuppe wurde vor und nach dem Melken mit
einem Federkutimeter (Abb. 3-3) bestimmt.
Abb. 3-3: Federkutimeter der Firma Hauptner, modifiziert nach HAMANN (1985)
bzw. HAMANN et al. (1996)
Mit einem Kutimeter wird ursprünglich die Hautdicke von Rindern im Rahmen eines
Tuberkulintests gemessen. Mit einer weicheren Feder kann auch die
Gewebefestigkeit der Zitze bestimmt werden. In Anlehnung an (HAMANN 1985;
HAMANN et al. 1996) wurde eine Feder ausgewählt, die eine Kraft von 4 – 6 N
ausübt, wenn die Messschenkel 10 mm voneinander entfernt sind. Angaben zu dem
genannten Kutimeter sind in der Tabelle 3-7 wiedergegeben.

Tab. 3-7: Charakteristika des verwendeten Federkutimeters
59
Material und Methoden
Kutimeter Firma Hauptner, Nr. 33865, Anlagefläche pro Messschenkel 4 cm 2 (2 x 2 cm)
Firma Gutekunst, Nr. 001 RZ-081K-02
Material Chrom-Nickel-Stahl
Feder maximale Länge 87,9 mm
maximale Federkraft 23 N
Vorspannung 2,06 N
Die prozentuale Änderung der Gewebefestigkeit (G) wird nach folgender Formel
berechnet (HAMANN et al. 1996):
(G nach dem Melken – G vor dem Melken)
Gewebefestigkeit in %= * 100
G vor dem Melken
Sicherheit der Methode
Um die Messgenauigkeit des Federkutimeters zu überprüfen, wurden bei sechs
Kühen aus der VMS-Herde für die Dauer von fünf Minuten
Wiederholungsmessungen von der Zitzenkuppe der linken vorderen Zitze
durchgeführt.
Die Anzahl der gemessenen Werte, die Mittelwerte, die Standardabweichungen und
die Variationskoeffizienten der Zitzengewebsdicke werden in Tab. 3-8
wiedergegeben. Es wurden an jeder Zitze 34 bis 42 Messungen durchgeführt.
Tab. 3-8: Wiederholungsmessungen an der Zitzenkuppe zur Einschätzung der
Genauigkeit des Federkutimeters
Parameter Kuh Nr. Kuh Nr. Kuh Nr. Kuh Nr. Kuh Nr. Kuh Nr.
672 664 656 653 679 661
n 41 42 41 34 41 42
x [mm] 8,31 9,87 12,31 11,60 10,21 11,29
sd 1,92 1,60 2,78 0,33 2,30 1,83
Vk 23,08 16,22 22,56 2,84 22,56 16,18
n = Anzahl, x = Mittelwert, sd = Standardabweichung, VK = Variationskoeffizient

Material und Methoden
60
Die Daten zeigen, dass bei der Kutimetrie mit ausgeprägten, tierindividuellen
Schwankungen gerechnet werden muss. Allerdings bewegen sich die Messwerte,
wie Abb. 3-4 exemplarisch darstellt, in einem relativ engen Messbereich, hier < 2
mm.
Gewebefestigkeit [mm]
11
10
9
1 6 11 16 21 26 31 36 41
Anzahl der Messungen in 5 min.
Abb. 3-4: Schwankungsbereich wiederholter Messungen der Gewebefestigkeit
der Zitzenkuppe, am Beispiel der Zitze vl von Kuh Nr. 664
3.2.3.2.2 Zitzenhautkondition
Während des Hauptversuches wurde die Zitzenkondition vor und nach dem Melken
mittels Adspektion und Palpation bestimmt. Zitzenkuppe und Zitzenhaut wurden in
Anlehnung an GOLDBERG et al. (1994) und MEIN et al. (2001) bewertet. Weiterhin
wurde die Zitzenspitze nach dem Melken hinsichtlich Verhärtungen und Feuchtigkeit
beurteilt.
Am Anfang und am Ende des Versuchs erfolgte die Beurteilung der Euter- und
Zitzenform in Anlehnung an GRUNERT (1990).

61
Schlüssel zur Beurteilung der Zitzenkondition:
Adspektion der Zitzenkuppe vor dem Melken [Spitze 1]:
0 = Zitzenspitze nicht durch Melkmaschine verändert, z.B. Verletzung
Material und Methoden
1 = glattes Zitzenende, keine oder nur leichte glatte Ringbildung, keine Läsionen
2 = Ringbildung an der Zitzenkanalöffnung
3 = starke Ringbildung, beginnende Rauigkeit
4 = rauer Ring mit Hyperkeratose
5 = sehr rauer Ring mit starker Hyperkeratose, eventuell radiale Risse
6 = offene Stellen, Blutungen, Trauma oder Schorf
© F. R. 2006
1 2 2 3 4 5 6
Adspektion der Zitzenhaut vor dem Melken [Schaft 1]:
0 = Haut nicht durch Melkmaschine verändert, z.B. Strichverletzung
1 = Haut weich, ohne Schuppen und Risse
2 = wenige Schuppen
3 = Haut gerissen
4 = Haut gerissen und aufgeraut, eventuell Rötung
5 = Haut geschädigt, offene Läsionen
6 = Haut stark geschädigt, ulzerös, offene Läsionen
0 1 2 3 4 5 6
Palpation der Zitzenspitze nach dem Melken [Spitze 2]:
1 = Normal –Zitze ist weich
2 = Verhärtet – Zitzenspitze ist geschwollen, verhärtet oder sichtbar gequetscht

Material und Methoden
Feuchtigkeit an der Zitzenspitze nach dem Melken [Spitze feucht trocken]:
X = Zitze normal
O = Zitze ist feucht
Formveränderung der Zitzenspitze nach dem Melken:
1 = physiologisch/ leicht dreieckig
2 = dreieckig
3 = ausgeprägt dreieckig
62
Adspektion des Zitzenschaftes nach dem Melken:
Farbe [Schaft Farbe]:
A = Normal
B = Leicht gerötet
C = Rot
D = Blau
A B C D
Euterform
Schaft [Schaft Form]:
1 = Normal = (kein Ring, wenig oder gar keine
Schwellung)
2 = Einschnürung = Sichtbarer ringförmiger
Abdruck der Kopföffnung
3 = Ringwulst = Deutliche Schwellung / fühlbar
Verdickte Ringbildung
4 = Verformung = Sichtbarer Abdruck des Schafts
1 2 3 4 4
a = Schüsseleuter oder altmelkendes Euter b = Baucheuter
c = Bauch-Schenkeleuter, erwünschte Form d = Schenkeleuter
e = Kugeleuter f = Etageneuter
g = unregelmäßiges Euter (Ziegeneuter) h = Asymmetrie (Wildeuter)

63
Material und Methoden
Quelle: Abbildung 395, Seite 527 aus Gustav Rosenberger, Die klinische
Untersuchung des Rindes, Verlag Paul Parey
Zitzenform
a = erwünschte Form b = Flaschenzitze
c = Kegelzitze d = Kurzzitze
e = milchbrüchige Zitze f = Fleischzitze
g = Bleistiftzitze
Quelle: Abbildung 398, S. 528 aus Gustav Rosenberger, Die klinische Untersuchung
des Rindes, Verlag Paul Parey

Material und Methoden
64
3.2.3.3 Melkphysiologische Parameter
3.2.3.3.1 Dauer und Milchfluss
Die Länge der Melkzeit wurde für jedes Viertel mit einer Stoppuhr ermittelt. Der
mittlere Milchfluss errechnete sich aus den Angaben über Milchmenge (s.u.) und
Melkdauer nach folgender Formel:
Milchmenge pro Viertel [ml]
mittlerer Milchfluss [ml/min] =
Melkdauer pro Viertel [min.]
3.2.3.3.2 Milchmenge
Die Messung der Milchmengenleistung pro Viertel erfolgte durch das
Milchmengenmessgerät FreeFlow ® VC der Firma DeLaval. Die Milchmenge wurde
auf Viertelebene mit Hilfe infraroten Lichts ermittelt, welches von den Milchpfropfen
absorbiert wird. Dabei wurden Länge, Geschwindigkeit, Beschleunigung und Dichte
der Milchpfropfen in der Milchleitung gemessen. Mit dem
Hochgeschwindigkeitsprozessor des FreeFlow ® VC wurden 100.000 Messungen pro
Sekunde ausgeführt. Das Gesamtgemelk wurde aus den Angaben der
Viertelgemelksmengen ermittelt.
3.2.3.3.3 Sekretionsrate
Die Berechnung der Sekretionsrate erfolgte aus den Angaben über
Viertelgemelksmenge und Melkintervall (s.u.) nach folgender Formel:
Sekretionsrate [g/h] =
Viertelgemelksmenge [g]
Melkintervall [h]

3.2.3.4 Auswertungsgrundlagen
65
Material und Methoden
Für die Auswertung war es notwendig, das Datenmaterial nach unterschiedlichen
Kriterien einzuteilen; die Einteilung der Gemelke in Melkintervallgruppen ist eine
davon (Tabelle 3-9).
Tab. 3-9: Melkintervallgruppen
Melkintervall Gruppe
≤ 6 Stunden 1
> 6 Stunden ≤ 8 Stunden 2
> 8 Stunden ≤ 10 Stunden 3
> 10 Stunden ≤ 12 Stunden 4
> 12 Stunden 5
Auch die Eutergesundheit war ein wichtiges Kriterium; die Beurteilung erfolgte
grundsätzlich basierend auf der Vierfeldertafel, d.h., ein Grenzwert von 100 000
somatischen Zellen/ml Viertelanfangsgemelk sowie das Auftreten (oder Fehlen)
eines euterpathogenen Keimes in dieser Milchfraktion (IDF 1967; DVG 2002), (Tab.
3-10) und wurde in Abhängigkeit der Versuchsphase und –ebene mitunter leicht
modifiziert.
Tab. 3-10: Vierfeldertafel zur Kategorisierung der Eutergesundheit (in Anlehnung
an IDF, 1967)
Gehalt somatischer
Zellen [Zellen/ml
Viertel-anfangsgemelk]
< 100 000
> 100 000
pathogene Erreger Kategorie* Diagnose
nicht nachgewiesen normale Sekretion 1
nachgewiesen latente Infektion 2
nicht nachgewiesen unspezifische Mastitis 3
nachgewiesen Mastitis 4
* Die hier angeführte „Kategorie“ bezieht sich laut Definition der DVG auf die Ergebnisse dreier, im
Wochenabstand aufeinander folgender Beprobungen. Ein Erreger gilt dann als nachgewiesen, wenn
er in mind. zwei von drei Beprobungen auftrat („2 aus 3“).

Material und Methoden
Kategerisierung der Eutergesundheit während des Vorversuchs
66
Der Eutergesundheitsstatus wurde während des Vorversuches auf die klassische Art
erhoben, d.h. pro Versuchstermin wurde jedes Viertel einmal beprobt und
zytobakteriologisch untersucht (Tab. 3-11). Allerdings lagen zwischen den
Versuchsterminen sieben und nicht, wie für die anderen Untersuchungen üblich, 14
Tage.
Tab. 3-11: Eutergesundheit während des Vorversuchs, Diagnose Ia
Zellgehalt Diagnose Nachweis von bakteriologischen Erregern
Probe enthält
weniger als
1 keine Feststellung eines bakteriologischen Erregers
100.000 Zellen
pro ml Milch 2 Feststellung eines bakteriologischen Erregers
Probe enthält
größer/gleich
100.000 Zellen
pro ml Milch
3 keine Feststellung eines bakteriologischen Erregers
4 Feststellung eines bakteriologischen Erregers
Kategorisierung der Eutergesundheit während des Hauptversuchs
Wie bereits zuvor erwähnt, wurden während des Hauptversuchs 24 Stunden
dauernde Beprobungstermine abgehalten, d.h. hier entstanden letztendlich mehr als
eine zytobakteriologische Untersuchung pro Viertel und Versuchstermin, meist zwei
bis drei. Zunächst wurde jede einzelne Beprobung nach den o.a. Kriterien einer
Diagnose (1 bis 4) zugewiesen (Eutergesundheit während des Hauptversuchs,
Diagnose Ib).
Um für alle Proben, die während der 24-stündigen Probenentnahme pro Kuh
anfallen, eine zusammenfassende Diagnose formulieren zu können, wurden die
Maßgaben der Vierfeldertafel modifiziert (Tab. 3-12). So bezeichnet „n“ alle
vorliegenden Diagnosen pro Viertel und Beprobungstermin. Dergestalt wurde jedem

67
Material und Methoden
Viertel eine Eutegesundheitskategorie (1 bis 4; Diagnose II“) pro Beprobungstermin
zugewiesen
Tab. 3-12: Modifizierte Vierfeldertafel zur Kategorisierung der Eutergesundheit
nach Diagnose II
Zellgehalt Diagnose Nachweis von bakteriologischen Erregern
alle Proben
enthalten
weniger als
100.000 Zellen
pro ml Milch
mind. eine
Probe enthält
größer/gleich
100.000 Zellen
pro ml Milch
1
2
3
4
Weitere Kategorisierungen der Eutergesundheit
keine Feststellung eines identischen bakteriologischen
Erregers in zwei von n Proben, bzw. bei n = 2 in keiner
der Proben
Feststellung eines identischen bakteriologischen
Erregers in zwei von n Proben, bzw. bei n = 2 in einer
der Proben
keine Feststellung eines identischen bakteriologischen
Erregers in zwei von n Proben, bzw. bei n = 2 in keiner
der Proben
Feststellung eines identischen bakteriologischen
Erregers in zwei von n Proben, bzw. bei n = 2 in einer
der Proben
Basierend auf diesen Diagnosen pro Viertel, konnten die Diagnosen aller Viertel
eines Euters an einem Beprobungstermin zu einer einzigen Diagnose, die den
Eutergesundheitszustand des Tieres wiedergibt, zusammengefasst werden
(„Diagnose III“). Ausschlaggebend war hier das Viertel mit der weitestreichenden
Diagnose. Auch die Befunde aus dem Vorversuch konnten so subsummiert werden.
Schließlich wurden Ergebnisse der Diagnosen II pro Viertel und Phase zu einer
„Diagnose IV“ oder „Phasendiagnose“ zusammengefasst. Eine Phase wird hier, in
Anlehnung an Tab. 3-5 als jeweils achtwöchiger Beprobungsabschnitt mit gleicher
Zitzengummisorte bezeichnet. Auch für diese Kategorisierung wurde das
Vierfelderschema geringfügig abgeändert (Tab. 3-13). So war ein Viertel innerhalb
einer Phase bakteriologisch positiv, wenn mindestens zweimal derselbe Erreger
auftrat.

Material und Methoden
68
Tab. 3-13: Modifizierte Vierfeldertafel zur Kategorisierung der Eutergesundheit
nach Diagnose IV
Zellgehalt Diagnose Nachweis von bakteriologischen Erregern je
Phase
alle Proben enthalten
weniger als 100.000
Zellen pro ml Milch
1
2
keine Feststellung eines identischen
bakteriologischen Erregers
Feststellung eines identischen
bakteriologischen Erregers
mind. eine Probe
enthält größer/gleich
3
keine Feststellung eines identischen
bakteriologischen Erregers
100.000 Zellen pro ml
Milch
4
Feststellung eines identischen
bakteriologischen Erregers
3.2.3.5 Verwendete Stichprobengröße
Das Studiendesign und die statistischen Möglichkeiten bedingten, dass das
Gesamtdatenmaterial in verschiedene Untergruppen aufgeteilt werden musste (Tab.
3-14). Bei den sog. „Auswahldaten“ wurde jeweils die erste Messung pro Viertel und
Versuchstag berücksichtigt, um sicherzustellen, dass von jeder am Versuch
teilnehmenden Kuh dieselbe Anzahl an Daten vorhanden ist.
Tab. 3-14: Statistisch relevante Untergruppen des Gesamtdatenmaterials
Untergruppe n =
alle Viertel (Phase 1 bis Phase 3) 2984
alle Viertel1 (Phase 2 bis Phase 3) 2384
Auswahldaten (durchgängig in Phase 2 bis Phase 3, 1. Messung) 800
Auswahldaten1 (durchgängig in Phase 1 bis Phase 3, 1. Messung) 720

3.2.3.6 Statistik
69
Material und Methoden
Die Daten wurden mit dem Tabellenkalkulationsprogramm Excel ® (Microsoft)
erfasst und bearbeitet. Für die statistische Auswertung wurde das Statistikpaket
SAS ® Version 9.1 (Statistic Analysing Systems, SAS Institute) angewendet.
Folgende Berechnungen wurden verwendet:
1. PROC UNIVARIATE: Prüfung auf Normalverteilung
2. PROC MEANS: Berechnung deskriptiver Statistiken
3. PROC GLM: Varianzanalysen mit komplexen Fragestellungen
4. PROC FREQ: Chiquadrathomogenitätstest zum Vergleich qualitativer
Merkmale
5. PROC TTEST: Vergleich der Mittelwerte zweier unabhängiger
Stichproben
Das Signifikanzniveau wurde auf 5 % (p

Ergebnisse
4 Ergebnisse
4.1 Beschreibung der Herde
70
Um einen Überblick über die Herde zu bekommen, die am Versuch teilgenommen
hat, werden in diesem Kapitel der Versuchsablauf, das Alter und das
Laktationsstadium der Tiere näher beschrieben. Anschließend erfolgt eine kurze
Übersicht über das klinische Erscheinungsbild der Euter- und Zitzenformen dieser
Herde.
4.1.1 Versuchsablauf
Der Vorversuch bestand aus drei aufeinanderfolgenden Terminen in einem Abstand
von einer Woche, der Hauptversuch aus 10 Probeentnahmeterminen in einem
Abstand von je 14 Tagen, an denen insgesamt 49 verschiedene Kühe (196 Viertel)
beprobt wurden. Tabellen 4-1 und 4-2 stellen die Anzahl der Kühe und Messungen
dar.
Tab. 4-1: Vorversuch, Versuchstage (VT), Anzahl der untersuchten Kühe, Viertel,
Melkungen und Messungen
VT n (Kühe) n (Viertel) Melkungen Messungen
-3 36 144 36 144
-2 34 136 34 136
-1 34 136 34 136
gesamt 54* 216* ∑ 104 ∑ 416
*: Anzahl unterschiedlicher Kühe bzw. Viertel im Vorversuch; ∑: Summe

71
Ergebnisse
Tab. 4-2: Versuchstage (VT), Anzahl der untersuchten Kühe, Viertel, Melkungen
und Messungen
VT n (Kühe) n (Viertel) Melkungen Messungen
1 34 136 75 300
2 36 144 75 300
3 37 148 75 300
4 37 148 76 304
5 37 148 72 288
6 37 148 75 300
7 37 148 74 296
8 37 148 75 300
9 37 148 75 300
10 37 148 74 296
gesamt 49 *
196 *
∑ 746 ∑ 2984
*: Anzahl unterschiedlicher Kühe bzw. Viertel im Hauptversuch; ∑: Summe
Für den Hauptversuch variierte die Tierzahl zwischen 34 und 37 Tieren pro
Versuchstag bei durchschnittlich 15,22 Beprobungen pro Tier und Versuchszeitraum.
Daraus resultierten im Mittel 2,04 Melkungen pro Kuh und Probetag.
4.1.2 Alter, Laktationsnummer und Laktationsstadium
Tabelle 4-3 gibt einen Überblick über das Alter, die Laktationsnummer und das
Laktationsstadium der Herde zum jeweiligen Versuchstermin.
Tab. 4-3: Durchschnittliches Alter, Laktationsnummer, Laktationstadium zum
jeweiligen Versuchstermin
Probentermin
-3 -2 -1 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
ø Alter (Jahre) 3,48 3,49 3,50 3,36 3,46 3,51 3,55 3,42 3,51 3,57 3,80 2,81 3,64
sd 1,04 1,07 1,08 1,07 1,10 1,10 1,10 1,09 1,10 1,11 1,19 1,22 1,25
ø Laktationsnr. 1,83 1,85 1,82 1,68 1,75 1,86 1,86 1,73 1,78 1,89 1,95 1,84 1,92
sd 0,88 0,89 0,90 0,84 0,91 1,03 1,03 1,02 1,03 1,13 1,10 1,09 1,14
ø Lakt.stadium 1,86 1,85 2,00 2,12 2,14 2,03 2,05 2,11 2,16 2,19 2,19 2,16 2,19
sd 0,90 0,93 1,02 0,95 0,93 0,87 0,91 0,88 0,90 0,94 0,94 0,90 0,88
Anzahl 36 34 34 34 36 37 37 37 37 37 37 37 37
(sd = Standardabweichung)

Ergebnisse
72
Zwischen Vor- und Hauptversuch bestanden in Hinsicht auf das durchschnittliche
Alter der Tiere (jeweils 3,49 bzw. 3,46 Jahre) und die durchschnittliche
Laktationsnummer (1,84 bzw. 1,83 Laktationen) kaum Unterschiede. Im Vorversuch
befanden sich die Kühe durchschnittlich 144,42 Tage in Laktation, während sich die
Tiere im Hauptversuch durchschnittlich 163,15 Tage in Laktation befanden. Der
Tabelle A-1 im Anhang ist ein Überblick über Laktationsnummer und
Laktationsstadium zum jeweiligen Versuchstermin zu entnehmen.
Die im Hauptversuch untersuchten Tiere wurden entweder über den gesamten
Versuchszeitraum oder über einzelne Phasen beprobt. Letzteres ergab sich, wenn
der Versuchstag in die Trockenstehzeit fiel oder die Kuh krankheitsbedingt temporär
aus der Herde entfernt wurde. Auch Abgänge waren der Grund für diese
unvollständigen Datensätze. Insgesamt waren es n = 18 Tiere, die durchgängig
beprobt wurden (Tab. 4-4). Bei Versuchsende betrug ihr Durchschnittsalter 3,27
Jahre. Die Tiere befanden sich meist in der ersten Laktation (1,39). Die Kühe waren
164,9 Tage in Laktation und die mittlere Beprobungshäufigkeit betrug 20,44-mal.
Tab. 4-4: Laktationsnummer und –tage von Kühen, die durchgehend im
Hauptversuch involviert waren
Probentermin
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
ø Laktationsnr. 1,39 1,39 1,39 1,39 1,39 1,39 1,39 1,39 1,39 1,39
sd 0,78 0,78 0,78 0,78 0,78 0,78 0,78 0,78 0,78 0,78
ø Lakt.tage* 101,94 115,94 129,94 143,94 157,94 171,94 185,94 199,94 213,94 227,94
sd 61,7 61,7 61,7 61,7 61,7 61,7 61,7 61,7 61,7 61,7
Anzahl 18 18 18 18 18 18 18 18 18 18
*= Laktationstage
4.1.3 Klinisches Erscheinungsbild
Die Euter- und Zitzenformen wurden adspektorisch beurteilt (s. Kptl. 3.2.3.2.2). Es
wurden 49 Euter und 184 Zitzen zur Untersuchung herangezogen. Die Mehrzahl der
Tiere (87,76 %) hatte ein Bauch-Schenkeleuter (C), entsprach also der heutigen,

73
Ergebnisse
gewünschten Norm. Einige Tiere (10,20 %) entwickelten ein Etageneuter (F),
vereinzelt (2,04 %) trat ein Schüsseleuter (A) auf. Die sogenannte erwünschte
Zitzenform (a) kam bei ca. 80% der Zitzen vor. Eine Abweichung von dieser Form
zeigten ca. 20 % der Zitzen, wobei sich eine Häufung im Bereich der Fleisch- (f) und
Kurzzitzen (d) ergab.
4.2 Beschreibung der Melkparameter
4.2.1 Melkfrequenz
Als erster Melkparameter wurde die Melkfrequenz an den Probennahmetagen mit
der an den korrespondierenden Tagen verglichen. An einem Probennahmetag
wurden aufgrund der manuellen Probenentnahme durchschnittlich 74,60±1,07
Melkungen berücksichtigt, während an den korrespondierenden sieben Tagen vor
und nach dem Probentermin 96,51±5,95 Melkungen stattfanden (Abb. 4-1).
Melkungen/ 24 h
140
120
100
80
60
40
20
0
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
Probentermin
Melkungen am
Probentermin
Melkungen, 7 Tage
vorher und 7 Tage
hinterher
Abb. 4-1: Anzahl der Melkungen am Probentermin im Vergleich zur
durchschnittlichen Anzahl der Melkungen sieben Tage vor und nach
dem Versuchstermin

Ergebnisse
74
Die Verteilung der Melkungen an den Versuchstagen unterschied sich nicht
signifikant von der an den entsprechend umliegenden Tagen (Chiquadrat-
Homogenitätstest).
Da die Melkfrequenz die Anzahl der Melkungen in 24 Stunden pro Kuh darstellt,
ergaben sich aufgrund der individuellen Zwischenmelkzeiten im automatischen
Melksystem unterschiedliche Melkfrequenzen. Dabei erschien die Mehrheit der Kühe
(57,37 %) durchschnittlich zweimal in 24 Stunden zum Melken (Abbildung 4-2).
Anteil der Melkungen [%]
70
60
50
40
30
20
10
0
9,25
57,37
33,38
1 2 3
Melkungen / 24 h
Abb. 4-2: Durchschnittliche prozentuale Verteilung der Melkungen pro Kuh in 24
Stunden während des Hauptversuchs, n = 746 Melkungen
Einen Überblick über die Melkfrequenz, die Anzahl der Melkungen und das
durchschnittliche Melkintervall stellt Tabelle 4-5 dar. Die durchschnittliche
Melkfrequenz lag bei 2,24 Melkungen pro Kuh in 24 Stunden, das mittlere
Melkintervall betrug 10,51 Stunden.

75
Ergebnisse
Tab. 4-5: Einteilung der Versuchstage nach durchschnittlicher Melkfrequenz (MF)
und Melkintervall (MI)
VT n (Kühe) n (Melk.)
1
MF
2 3
Ø MF Ø MI [h]
1 34 75
n (Kühe)
MI (h)
2
11,38
23
11,20
9
9,37
2,33 10,55
2 36 75
n (Kühe)
MI (h)
5
12,65
23
10,52
8
8,82
2,25 10,12
3 37 75
n (Kühe)
MI (h)
9
13,39
18
11,44
10
8,2
2,28 10,38
4 37 76
n (Kühe)
MI (h)
5
12,70
25
11,22
7
9,35
2,21 10,80
5 37 72
n (Kühe)
MI (h)
10
16,54
19
11,07
8
7,88
2,19 10,82
6 37 75
n (Kühe)
MI (h)
6
16,54
24
11,07
7
7,88
2,20 10,61
7 37 74
n (Kühe)
MI (h)
8
13,41
21
11,23
8
8,49
2,22 10,58
8 37 75
n (Kühe)
MI (h)
8
13,38
20
10,53
9
8,85
2,25 10,23
9 37 75
n (Kühe)
MI (h)
7
14,89
22
11,12
8
8,89
2,23 10,76
10 37 74
n (Kühe)
MI (h)
9
13,64
19
10,90
9
8,24
2,24 10,26
ges. 49
n (Kühe)
MI (h)
69
14,07
428
11,02
249
8,65
2,24 10,51
* ∑ 746
sd 1,58 0,30 0,49 0,04 0,25
*: Anzahl unterschiedlicher Kühe im Hauptversuch; ∑: Summe
4.2.2 Melkintervall (MI)
Tabelle 4-5 beinhaltet bereits einige Daten zum Melkintervall. Um einen Einfluss des
Melkintervalls auf das Zitzengewebe festzustellen, wurden die Kühe und die
Messungen in Melkintervallgruppen eingeteilt (Tab. 4-6).

Ergebnisse
Tab. 4-6: Einteilung der Melkintervalle (MI), 2984 Messungen, 746 Melkungen
MI
76
1 2 3 4 5
≤ 6 h > 6 h ≤ 8 h > 8 h ≤ 10 h > 10 h ≤ 12 h > 12 h
n (Mess.) 112 664 696 640 872
n (Melk.) 28 166 174 160 218
x (min.) 307,20 430,20 548,40 663,00 867,00
sd 69,00 32,40 33,00 34,20 147,60
Da es in einem automatischen Melksystem keine festgelegten Melkzeiten gibt,
können diese zwischen den Kühen und innerhalb eines Tages sehr unterschiedlich
sein. Abbildung 4-3 stellt die Verteilung der Melkungen auf die einzelnen
Melkintervalle dar. Der Hauptteil der Melkungen fand im Abstand von 5-13 Stunden
statt. Das durchschnittliche Melkintervall betrug 630±196 min (10 h und 30 min±3 h
und 16 min).
Anteil der Melkungen [%]
14
12
10
8
6
4
2
0
18
Melkintervall [h]
Abb. 4-3: Prozentuale Häufigkeitsverteilung der Melkungen auf die Melkintervalle
(eingeteilt im Stundentakt), n = 746 Melkungen

4.2.3 Melkdauer (MD)
77
Ergebnisse
Die Melkdauer wird unter anderem durch verschiedene Faktoren, wie Milchleistung,
Laktationsstadium und Melkeigenschaft beeinflusst. Die Einzelbecherabnahme auf
Viertelebene erlaubte eine Messung der Melkdauer für jedes Viertel. In Abbildung 4-4
ist die Melkdauer für runde und dreieckige Zitzengummis im Minutenintervall
dargestellt.
Anzahl der Viertelmelkungen [n]
400
350
300
250
200
150
100
50
0
< 2 2-3 3-4 4-5 5-6 6-7 7-8 8-9 9-10 >10
Melkdauer [min.]
rund
eckig
Abb. 4-4: Häufigkeitsverteilung der Viertelgemelke auf im Minutentakt eingeteilte
Melkdauer, getrennt nach Zitzengummiform: rund/eckig (n = 1192/1192)
An dieser Stelle soll mit den Vergleichen zwischen runden und eckigen
Zitzengummis begonnen werden. Eine Gegenüberstellung der Melkzeiten runder und
dreieckiger Zitzengummis ergab keine signifikanten Unterschiede (p = 0,0787). Die
Viertel mit runden Zitzengummis wurden im Durchschnitt 3,34 ± 1,42 min., die mit
dreieckigen Zitzengummis 3,44 ± 1,36 min. gemolken. Tabelle 4-7 gibt einen
Überblick über die durchschnittliche Melkdauer an unterschiedlichen
Viertelpositionen im Zusammenhang mit unterschiedlicher Zitzengummiform.

Ergebnisse
78
Tab. 4-7: Durchschnittliche Melkdauer [min.] mit verschiedener Zitzenposition und
-gummiform
Viertel Zitzengummiform
Melkdauer [min.]
x sd
hinten eckig 3,84 1,51
hinten rund 3,76 1,57
vorne eckig 3,05 1,05
vorne rund 2,92 1,10
Im Durchschnitt war der Melkvorgang bei den hinteren Vierteln mit 3,80±1,54 min.
signifikant (p< 0,0001) länger als bei den vorderen Vierteln (2,98±1,08 min.).
In Tabelle 4-8 wird die Melkdauer im Zusammenhang mit der Melkfrequenz
dargstellt. Es wird ersichtlich, dass mit zunehmender Melkfrequenz die
durchschnittliche Dauer der Gemelke auf Viertelebene geringer wurde.
Tab. 4-8: Durchschnittliche Gemelksdauer auf Viertelebene eingeteilt nach
Melkfrequenzgruppen, Auswahldaten, n = 800
Melkungen / Tag n (Messungen)
Ø Dauer der Gemelke [min.]
x sd Signifkanz*
1 180 4,06 1,47 A
2 456 3,52 1,33 B
3 164 2,96 1,08 C
*:Tukey´s Studentized Range Test; unterschiedliche Buchstaben unterscheiden sich signifikant (p <
0,05) voneinander
Als nächstes wurde die Melkdauer in Bezug zur Laktation und zum
Laktationsstadium betrachtet (Abbildung 4-5, Tab. 3-1). Wie aus der Abbildung 4-5
zu erkennen ist, sank die durchschnittliche Gemelksdauer tendenziell mit
zunehmendem Laktationsstadium.

Dauer der Gemelke [min.]
4,5
4
3,5
3
2,5
2
79
1 2 3 4
Laktationsstadium
Laktation 1 Laktation 2
Laktation 3 Laktation 4
Ergebnisse
Abb. 4-5: Durchschnittliche Gemelksdauer in Bezug zur Laktation und
Laktationsstadium, n = 2984
In Tabelle 4-9 schließlich werden die unterschiedlichen Laktationen innerhalb eines
Laktationsstadiums verglichen. Eine Varianzanalyse zeigte, dass sich die erste
Laktation innerhalb eines Laktationsstadiums in den meisten Fällen signifikant von
den anderen Laktationen unterschied.
Tab. 4-9: Darstellung der durchschnittlichen Melkdauer im Vergleich der
Laktationen innerhalb der Laktationsstadien, n = 2984
Lakt.
n
Laktationsstadium [Tage]
1-100 101-200 201-300 >300
x [min]
sd
Sign.*
n
x [min.]
sd
Sign.*
1 372 3,48 1,05 B 712 3,34 1,14 B 452 2,73 1,06 B 60 3,91 2,14 A
2 160 3,52 1,54 B 332 3,18 1,36 CB 236 3,27 1,12 A 36 2,47 1,54 B
3 140 4,34 1,87 A 76 3,84 1,33 A 88 2,87 0,92 B 48 2,85 1,02 B
4 160 4,30 1,97 A 44 2,92 1,16 C 36 3,37 1,01 A 32 2,55 1,02 B
*Ryan-Einot-Gabriel-Welsch Multiple Range Test (unterschiedliche Buchstaben unterscheiden sich
signifikant)
n
x [min.]
sd
Sign.*
n
x [min.]
sd
Sign.*

Ergebnisse
4.2.4 Sekretionsrate
80
Die Sekretionsrate beschreibt die Milchmenge, die innerhalb einer Stunde von der
Milchdrüse produziert wird. Abbildung 4-6 gibt die Milchsekretionsrate in
Abhängigkeit vom Laktationsstadium und Melkintervall wieder.
Milchsekretionsrate [g/h]
450
400
350
300
250
200
150
MI ≤ 6 h MI 6 - 8 h MI 8 - 10 h
MI 10 - 12 h MI > 12 h
1 - 100 101 - 200 201 - 300 > 300
Laktationstag
Abb. 4-6: Mittlere Milchsekretion in Abhängigkeit vom Laktationstag und
Melkintervall (MI)
Die Grafik zeigt einen deutlichen Laktationseinfluss auf die Milchsekretion. Die
Milchmenge verringerte sich im Laufe der Laktationsperiode um fast 50 %. Auch die
Zwischenmelkzeit hatte einen deutlichen Einfluss auf die Milchsekretion; mit
steigendem Melkintervall sank die Sekretionsrate. Eine 2-faktorielle Varianzanalyse
stellte einen signifikanten Einfluss beider Faktoren auf die Sekretion dar (p < 0,0001).

4.3 Eutergesundheit
81
Ergebnisse
In diesem Kapitel werden die verschiedenen Eutergesundheitsparameter sowie
laktationsphysiologische Parameter mit den Eutergesundheitskategorien in Bezug
gebracht.
4.3.1 Vorversuchszeitraum
Im Rahmen des Vorversuches wurden an drei Terminen im wöchentlichen Abstand
Milchproben (Viertelanfangsgemelke 2 ) von allen Tieren der VMS-Herde gewonnen,
um einen Überblick über den Eutergesundheitsstatus der Herde zu bekommen. Zur
zytobakteriologischen Auswertung kamen n = 416 Viertelanfangsgemelke.
Tabelle 4-10 gibt die prozentuale Verteilung der Gesundheitskategorien der
beprobten Viertel im Vorversuch wieder.
Tab. 4-10: Darstellung der Eutergesundheitskategorien auf Viertelebene,
Vorversuch (VT -3, -2, -1), n = 416 Vierteldiagnosen
Zellgehalt pro ml Milch
Euterpathogene Mikroorganismen
nicht nachgewiesen nachgewiesen
≤ 100.000/ml
rel. [%]
abs. [n]
34,62
144
43,27
180
> 100.000/ml
rel. [%]
abs. [n]
5,53
23
16,59
69
4.3.2 Hauptversuchszeitraum
Während des Hauptversuchs wurden insgesamt n = 2984 Viertelanfangsgemelke
gewonnen und zytobakteriologisch untersucht. Von diesen Viertelanfangsgemelken
2 Faktisch wurden zur Bewertung der Eutergesundheit nach DVG-Vorgaben (2002)
Viertelanfangsgemelke (Bakteriologie) und Viertelhandgemelke (Anzahl somatischer Zellen)
verwendet. In der Diskussion (Kapitel 5.1) wird auf diese Vorgehensweise eingegangen. Nachfolgend
bezieht sich „Viertelanfangsgemelk“ in Hinsicht auf die Kategorisierung der Eutergesundheit auf beide
Probenarten.

Ergebnisse
82
kamen 800 Viertel (Datensatz „Auswahldaten“, s. 3.2.3.5) zur statistischen
Auswertung. Tabelle 4-11 stellt die prozentuale Verteilung des Gesundheitsstatus
der Herde anhand der Auswahldaten während des Hauptversuchs dar. Tabelle A-2
im Anhang stellt die Eutergesundheitskategorie auf Viertelebene getrennt nach
Probentermin für alle beprobten Viertel dar. Wie daraus ersichtlich, wiesen 80,63 %
der Viertel eine Zellzahl ≤ 100.000 Zellen/ml Milch auf.
Tab. 4-11: Darstellung der Eutergesundheitskategorien auf Viertelebene,
Hauptversuch, Auswahldaten, n = 800 Vierteldiagnosen
Zellgehalt pro ml Milch
Euterpathogene Mikroorganismen
nicht nachgewiesen nachgewiesen
Gesamt
≤ 100.000/ml
rel. [%]
abs. [n]
48,75
390
31,88
255
80,63
645
> 100.000/ml
rel. [%]
abs. [n]
5,63
45
13,75
110
19,38
155
In Tabelle 4-12 sind weitere Gesundheitsparameter dargestellt. Elektrische
Leitfähigkeit, NAGase-Aktivität und Anzahl somatischer Zellen wiesen in den
Kategorien „unspezifische Mastitis“ und „Mastitis“ höhere Werte auf als in den beiden
anderen und unterschieden sich signifikant (Varianzanalyse; p < 0,05).
Tab. 4-12: Gesundheitsparameter (elektrische Leitfähigkeit [mS/cm], NAGase-
Aktivität [lg von nmol * min -1 * ml -1 ], SCC [lg von Zellen/ml]), aufgeteilt
nach Gesundheitskategorie, Hauptversuch, Auswahldaten, n = 800
Eutergesundheitskategorie
[n]
LF NAG [lg] SCC [lg]
x sd Sign.* x sd Sign.* x sd Sign.*
normale Sekretion 390 5,88 0,51 C -0,24 0,39 C 4,16 0,39 C
latente Infektion 255 5,89 0,46 C -0,22 0,40 C 4,40 0,36 B
unspezifische Mastitis 45 6,84 1,09 A 0,47 0,37 A 5,63 0,56 A
Mastitis 110 6,46 1,13 B 0,29 0,47 B 5,57 0,54 A
*:Tukey´s Studentized Range Test; unterschiedliche Buchstaben innerhalb einer Spalte unterscheiden
sich signifikant (p < 0,05)

83
Ergebnisse
Da die Melkdauer und Milchmenge auf Viertelebene erfasst wurden, ließ sich auch
der durchschnittliche Milchfluss errechnen. In Tabelle 4-13 sind diese
laktationsphysiologischen Parameter den Gesundheitskategorien zugeordnet.
Tab. 4-13: Laktationsphysiologische Parameter, getrennt nach
Gesundheitskategorie, Hauptversuch, Auswahldaten, n = 800
Eutergesundheitskategorie
[n]
Melkdauer [min.]
x sd Sign.*
Viertelgemelksmenge [g]
x sd Sign.*
ø Milchfluss [ml/min.]
x sd Sign.*
normale Sekretion 390 3,77 1,39 A 3425,03 1565,35 A 907,24 249,58 B
latente Infektion 255 3,47 1,24 BA 3503,88 1506,58 A 1032,27 344,91 A
unspezifische Mastitis 45 2,62 1,32 C 2020,89 1452,86 B 716,04 273,48 C
Mastitis 110 3,18 1,33 B 3020,82 1716,22 A 968,86 593,79 BA
*:Tukey´s Studentized Range Test; unterschiedliche Buchstaben innerhalb einer Spalte unterscheiden
sich signifikant (p < 0,05)
Tabelle 4-13 zeigt, dass die Milchmenge bei den Vierteln mit unspezifischer Mastitis
und Mastitis herabgesetzt war, außerdem zeigten diese Viertel eine verkürzte
Melkdauer, sowie einen geringeren Milchfluss. Die Unterschiede zu den Kategorien
„normale Sekretion“ und „latente Infektion“ waren meist signifikant.
4.3.2.1 Gegenüberstellung der Zitzengummis
Um einen genauen Überblick über den Einfluss der verschiedenen
Zitzengummiformen auf die Eutergesundheit zu bekommen, wurden zwei Gruppen
(RRD, RDR) gebildet und diese in drei verschiedene Phasen, entsprechend dem
Wechsel des Zitzengummityps, aufgeteilt (Tab. 4-14).

Ergebnisse
Tab. 4-14: Einteilung der Euterviertel in Gruppen und Phasen
Probentermin 1-2 3-6 7-10 Gruppe
Viertel Zitzengummiform
VR rund rund eckig RRD *
HR rund eckig rund RDR *
VL rund eckig rund RDR *
HL rund rund eckig RRD *
Phase 1 2 3
*: RRD = rund-rund-dreieckig; RDR = rund-dreieckig-rund
84
Für die nachfolgenden Darstellungen wurden nur Daten von Kühen verwendet, die
von Phase 1 bis Phase 3 durchgängig am Versuch teilgenommen haben (Datensatz
„Auswahldaten1“, s. 3.2.2.5).
Die Abbildungen 4-7 und 4-8 zeigen, dass ein Wechsel der Zitzengummiform von
rund zu dreieckig und umgekehrt keinen negativen Einfluss auf die Eutergesundheit
hatte (Auswahldaten1).
Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
normale Sekretion latente Infektion
unspezifische Mastitis Mastitis
RDR Phase 1 RDR Phase 2 RDR Phase 3
Abb. 4-7: Eutergesundheit der Gruppe RDR (rund-dreieckig-rund), aufgeteilt nach
Phase, Auswahldaten1, n = 360

Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
85
normale Sekretion latente Infektion
unspezifische Mastitis Mastitis
RRD Phase 1 RRD Phase 2 RRD Phase 3
Ergebnisse
Abb. 4-8: Eutergesundheit der Gruppe RRD (rund-rund-dreieckig), aufgeteilt nach
Phase, Auswahldaten1, n = 360
Ein χ²-Homogenitätstest zeigte in beiden Gruppen keine signifikanten Unterschiede
in der Verteilung der Eutergesundheitskategorien bei den verschiedenen
Phasenwechseln.
In den nachfolgenden Darstellungen, wird jedes Viertel einzeln betrachtet. Die
Abbildungen 4-9 bis 4-12 zeigen die Verteilung der Eutergesundheit entsprechend
der jeweiligen Viertel, eingeteilt in die entsprechenden Gruppen. Wie aus den
Abbildungen zu erkennen ist, stieg der Anteil an Vierteln mit „normaler Sekretion“ für
jedes Viertel stetig.

Ergebnisse
Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
86
Viertel VR
normale Sekretion latente Infektion
unspezifische Sekretion Mastitis
RRD Phase 1 RRD Phase 2 RRD Phase 3
Abb. 4-9: Eutergesundheit Viertel VR, Gruppe RRD (rund-rund-dreieckig),
Auswahldaten1, eingeteilt nach Phasen, n = 180
Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
Viertel HR
normale Sekretion latente Infektion
unspezifische Mastitis Mastitis
RDR Phase 1 RDR Phase 2 RDR Phase 3
Abb. 4-10: Eutergesundheit Viertel HR, Gruppe RDR (rund-dreieckig-rund),
Auswahldaten1, eingeteilt nach Phasen, n = 180

Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
87
Viertel VL
normale Sekretion latente Infektion
unspezifische Mastitis Mastitis
RDR Phase 1 RDR Phase 2 RDR Phase 3
Ergebnisse
Abb. 4-11: Eutergesundheit Viertel VL, Gruppe RDR (rund-dreieckig-rund),
Auswahldaten1, eingeteilt nach Phasen, n = 180
Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
Viertel HL
normale Sekretion latente Infektion
unspezifische Mastitis Mastitis
RRD Phase 1 RRD Phase 2 RRD Phase 3
Abb. 4-12: Eutergesundheit Viertel HL, Gruppe RRD (rund-rund-dreieckig),
Auswahldaten1, eingeteilt nach Phasen, n = 180
Im χ²-Homogenitätstest zeigten sich bei den einzelnen Vierteln keine signifikanten
Unterschiede in der Verteilung der Eutergesundheitskategorie zwischen den
Phasenwechseln.
Die Tabellen 4-15 und 4-16 zeigen die Aufteilung der Versuchstage nach den
Zitzengummiformen für die Auswahldaten1. In jeder Versuchsphase berechnete

Ergebnisse
88
Varianzanalysen für unabhängige Stichproben ergaben in der Regel signifikante
Unterschiede (p < 0,05). Vor allem unterschieden sich die Kategorien „normale
Sekretion“ und „latente Infektion“ von den Parametern „unspezifische Mastitis“ und
„Mastitis“.

Ergebnisse
89
Tab. 4-15: Aufteilung der Versuchstage nach Zitzengummiform, Gruppe RRD, Auswahldaten1, n = 360
VT 1,2
NAGase
LF [mS/cm]
[nmol * min -1 * ml -1 NAGase
SCC
Parameter n [Mess.]
Sign.*
] Sign.* [lgnmol* min-1*ml-1] Sign.* [lgZellen/ml] Sign.*
x sd
x sd
x sd
x sd
normale Sekretion 31 5,71 0,32 B 1,16 0,83 B -0,01 0,24 A 4,09 0,34 B
latente Infektion 33 5,74 0,39 B 0,87 0,61 B -0,21 0,51 A 4,22 0,41 B
unspezifische Mastitis 2 6,65 0,35 A 2,49 0,07 A 0,40 0,01 A 5,15 0,00 A
Mastitis 6 6,00 0,41 B 1,27 0,22 B 0,10 0,07 A 5,50 0,36 A
VT 3-6
NAGase
LF [mS/cm]
[nmol * min -1 * ml -1 NAGase
SCC
Parameter n [Mess.]
Sign.*
] Sign.* [lgnmol* min-1*ml-1] Sign.* [lgZellen/ml] Sign.*
x sd
x sd
x sd
x sd
normale Sekretion 63 5,72 0,49 B 0,87 0,50 B -0,15 0,34 B 4,08 0,42 B
latente Infektion 53 5,83 0,47 B 0,73 0,49 B -0,22 0,28 B 4,36 0,36 B
unspezifische Mastitis 9 6,28 0,58 A 3,60 1,28 A 0,53 0,17 A 5,79 0,36 A
Mastitis 19 6,27 0,72 A 4,73 8,73 A 0,31 0,50 A 5,74 0,74 A
VT 7-10
NAGase
LF [mS/cm]
[nmol * min -1 * ml -1 NAGase
SCC
Parameter n [Mess.]
Sign.*
] Sign.* [lgnmol* min-1*ml-1] Sign.* [lgZellen/ml] Sign.*
x sd
x sd
x sd
x sd
normale Sekretion 69 5,87 0,49 C 0,89 0,57 B -0,19 0,42 B 4,21 0,37 C
latente Infektion 46 5,91 0,41 C 0,90 0,49 B -0,14 0,35 B 4,50 0,29 B
unspezifische Mastitis 9 7,32 0,81 A 4,20 2,90 BA 0,50 0,38 A 5,52 0,38 A
Mastitis 20 6,51 1,20 B 4,99 11,47 A 0,23 0,48 A 5,39 0,31 A
*:Tukey´s Studentized Range Test; unterschiedliche Buchstaben innerhalb einer Spalte unterscheiden sich signifikant (p < 0,05)

90
Ergebnisse
Tab. 4-16: Aufteilung der Versuchstage nach Zitzengummiform, Gruppe RDR, Auswahldaten1, n = 360
VT 1,2
NAGase
LF [mS/cm]
[nmol * min -1 * ml -1 NAGase
SCC
Parameter n [Mess.]
Sign.*
] Sign.* [lgnmol* min-1*ml-1] Sign.* [lgZellen/ml] Sign.*
x sd
x sd
x sd
x sd
normale Sekretion 28 5,85 0,43 A 1,13 0,61 BA -0,01 0,25 A 4,22 0,43 B
latente Infektion 33 5,66 0,29 A 0,94 0,80 B -0,13 0,29 A 4,30 0,36 B
unspezifische Mastitis 2 6,05 0,92 A 1,47 0,30 BA 0,16 0,09 A 5,19 0,11 A
Mastitis 9 5,87 0,37 A 3,16 3,42 A 0,31 0,41 A 5,57 0,63 A
VT 3-6
NAGase
LF [mS/cm]
[nmol * min -1 * ml -1 NAGase
SCC
Parameter n [Mess.]
Sign.*
] Sign.* [lgnmol* min-1*ml-1] Sign.* [lgZellen/ml] Sign.*
x sd
x sd
x sd
x sd
normale Sekretion 72 5,88 0,50 BA 0,71 0,38 B -0,24 0,34 B 4,15 0,39 B
latente Infektion 43 5,70 0,36 B 0,70 0,43 B -0,26 0,36 B 4,35 0,38 B
unspezifische Mastitis 8 6,21 0,39 A 3,04 2,92 A 0,32 0,40 A 5,51 0,60 A
Mastitis 21 5,94 0,51 BA 3,54 5,38 A 0,26 0,45 A 5,62 0,62 A
VT 7-10
NAGase
LF [mS/cm]
[nmol * min -1 * ml -1 NAGase
SCC
Parameter n [Mess.]
Sign.*
] Sign.* [lgnmol* min-1*ml-1] Sign.* [lgZellen/ml] Sign.*
x sd
x sd
x sd
x sd
normale Sekretion 75 5,93 0,52 B 0,84 0,58 B -0,20 0,40 B 4,29 0,34 B
latente Infektion 37 5,86 0,38 B 0,73 0,43 B -0,29 0,51 B 4,44 0,35 B
unspezifische Mastitis 10 7,32 1,46 A 4,41 3,89 A 0,51 0,37 A 5,58 0,60 A
Mastitis 22 6,64 1,70 A 4,61 6,57 A 0,31 0,58 A 5,55 0,56 A
*:Tukey´s Studentized Range Test; unterschiedliche Buchstaben innerhalb einer Spalte unterscheiden sich signifikant (p < 0,05)

91
Ergebnisse
Als nächstes wurde untersucht, ob sich die Eutergesundheitskategorien zwischen
den beiden Zitzengummiformen unterscheiden. In den Abbildungen 4-13 und 4-14
sind die Übergänge von Phase 2 zu Phase 3 für die Gruppen RRD und RDR unter
Berücksichtigung der Eutergesundheitskategorien dargestellt. Der Wechsel von
eckigen Zitzengummis zu runden Zitzengummis in der Gruppe RDR verursachte
einen Anstieg von Vierteln mit normaler Sekretion, wobei die Anteile an latent
infizierten Vierteln, Vierteln mit spezifischer Mastitis und Vierteln mit Mastitis nach
dem Wechsel zu runden Zitzengummis abnahmen bzw. gleich blieben (Abb. 4-13).
Der χ²-Homogenitätstest zeigte signifikante Unterschiede (p < 0,0001) bei der
Verteilung der Eutergesundheitskategorien zwischen runden und dreieckigen
Zitzengummis an (Gruppe RDR).
VGH [%]
100
90
80
70
60
50
40
30
20
10
0
normale
Sekretion
latente Infektion unspezifische
Mastitis
VGH = Viertelhandgemelk
eckig rund
Mastitis
Abb. 4-13: Verteilung der Gesundheitskategorien nach Wechsel der Zitzengummis
von eckig nach rund, von VT 3-6 (eckige Zitzengummis) zu VT 7-10
(runde Zitzengummis), Gruppe RDR (rund-dreieckig-rund), n = 1192
Viertel
Nach einem Wechsel von runden zu dreieckigen Zitzengummis in der Gruppe RRD
stieg ebenfalls der Anteil an Vierteln mit normaler Sekretion. Ebenfalls war eine
Abnahme von Vierteln mit latenter Infektion, unspezifischer Mastitis und Mastitis zu
erkennen (Abb. 4-14).

Ergebnisse
92
Auch in dieser Gruppe zeigte der χ²-Homogenitätstest signifikante Unterschiede (p =
0,0041) bei der Verteilung der Eutergesundheitskategorien zwischen runden und
dreieckigen Zitzengummis der Gruppe RRD an.
VGH [%]
100
90
80
70
60
50
40
30
20
10
0
normale
Sekretion
latente
Infektion
VGH = Viertelhandgemelk
unspezifische
Mastitis
rund eckig
Mastitis
Abb. 4-14: Verteilung der Gesundheitskategorien nach Wechsel der Zitzengummis
von rund nach eckig, von VT 3-6 (runde Zitzengummis) zu VT 7-10
(eckige Zitzengummis), Gruppe RRD (rund-rund-dreieckig), n = 1192
Viertel
Aus den Abbildungen 4-13 und 4-14 wird kein Hinweis auf einen negativen Einfluss
des Zitzengummiwechsels ersichtlich, da sowohl in Gruppe RRD als auch in RDR
der Anteil an Viertelhandgemelken (VGH) mit „normaler Sekretion“ ansteigt.
Tabelle 4-17 gibt einen Überblick über die prozentuale Verteilung der
Gesundheitsdiagnosen der beprobten Viertel, aufgeteilt nach Zitzengummiform und
zusammengefasst in den Phasen 2 und 3, wieder.

93
Ergebnisse
Tab. 4-17: Vergleichende Darstellung der Eutergesundheitskategorien auf
Viertelebene, getrennt nach Zitzengummiform (n = 2384), Phase 2, 3
Euterpathogene Mikroorganismen
Zellgehalt pro ml Milch nicht nachgewiesen nachgewiesen
rund eckig rund eckig
≤ 100.000/ml
rel. [%]
abs. [n]
25,80
615
24,87
593
14,60
348
15,02
358
> 100.000/ml
rel. [%]
abs. [n]
3,27
78
2,81
67
6,33
151
7,30
174
Der χ²-Homogenitätstest zeigte, dass es keine signifikanten Unterschiede (p =
0,3909) in der Verteilung der Eutergesundheitskategorien zwischen den
Zitzengummiformen gab. Auch zeigte ein Vergleich der Werte für SCC, NAGase-
Aktivität und elektrischer Leitfähigkeit mittels Varianzanalyse keinen signifikanten
Einfluss durch runde oder dreieckige Zitzengummis.
4.3.3 Erregerspektrum
In diesem Abschnitt wurde die Auswertung der bakteriologischen Befunde für alle
Viertelanfangsgemelke durchgeführt. Tabelle 4-18 gibt zunächst einen Überblick
über die Anzahl bakteriologisch positiver Proben in den verschiedenen
Versuchsabschnitten.
Tab. 4-18: Übersicht über bakteriologisch positive Vierteldiagnosen pro
Versuchsabschnitt
Versuchsabschnitt Anzahl Viertel gesamt [n] bakt. pos. Vierteldiagnose [%]
Vorversuch 416 59,86
Hauptversuch (1,2) 600 56,67
Hauptversuch (3-6) 596/596* 50,84/46,64*
Hauptversuch (7-10) 596/596* 32,89/42,62*
*=Leseart: mit rundem Zitzengummi gemolkene Viertel / mit dreieckigem Zitzengummi gemolkene
Viertel

Ergebnisse
94
Im Vorversuch erfolgte die Auswertung der bakteriologischen Befunde aller
Viertelanfangsgemelke für insgesamt n = 416 Proben. Davon waren 249 (59,86 %)
bakteriologisch positiv (latente Infektion und Mastitis); 2,01 % der untersuchten
Proben waren kontaminiert (Tab. 4-19).
Tab. 4-19: Verteilung des Erregerspektrums im Vorversuch, (n = 249
bakteriologisch positive Vierteldiagnosen)
Erreger pos. Vierteldiagnose [%] Viertel [n]
Corynebacterium spp. 48,19 120
KNS 25,30 63
Staphylococcus aureus - -
Streptococcus uberis 2,81 7
Streptococcus dysgalactiae 0,40 1
Streptokokken der Gr. D, E 0,40 1
Escherichia coli 0,80 2
Enterococcus spp. 2,01 5
Streptococcus spp. 1,20 3
Mischinfektionen* 16,87 42
andere Erreger - -
kontaminiert 2,01 5
Summe 100 249
*= mehr als zwei euterpathogene Spezies/Gruppen pro Probe
Tabelle 4-20 gibt einen Überblick über die unterschiedlichen Zusammensetzungen
der Mischinfektionen.

Tab. 4-20: Übersicht über die Verteilung der Mischinfektionen (n = 42 Viertel)
Erreger
Corynebacterium
spp.
Streptococcus
uberis
95
KNS
Streptocossus
spp.
Enterococcus
spp.
Aerococcus
spp.
Corynebacterium spp.
Streptococcus uberis -
KNS 16 7
Streptococcus spp. - - 2
Enterococcus spp. 1 - 8 -
Aerococcus spp. 1 1 5 - -
E. coli 1 - - - - -
Ergebnisse
Während des Hauptversuchs wurden n = 2984 Viertelanfangsgemelke untersucht
und n = 1371 bakteriologisch positive Viertel befundet, die sich wie folgt auf die
verschiedenen Versuchsabschnitte verteilten (Tab. 4-21 bis 4-26). Im
Versuchsabschnitt 1 und 2 wurden insgesamt 600 Viertelanfangsgemelke
untersucht. Es konnten 340 (56,67 %) bakteriologisch positive Vierteldiagnosen
gestellt werden (Tab. 4-21).
Tab. 4-21: Verteilung des Erregerspektrums im Hauptversuch (Abschnitt 1, 2),
runde Zitzengummis, (n = 340 bakteriologisch positive
Vierteldiagnosen)
Erreger pos. Vierteldiagnose [%] Viertel [n]
Corynebacterium spp. 61,18 208
KNS 19,41 66
Staphylococcus aureus - -
Streptococcus uberis 2,06 7
Streptococcus dysgalactiae 0,88 3
Streptokokken der Gr. D, E 0,29 1
Escherichia coli - -
Enterococcus spp. 3,82 13
Streptococcus spp. 0,88 3
Mischinfektionen 10,29 35
andere Erreger 0,59 2
kontaminiert 0,59 2
Summe 100 340
E. coli

Ergebnisse
In Tabelle 4-22 sind die Mischinfektionen detailliert dargestellt.
96
Tab. 4-22: Übersicht über die Verteilung der Mischinfektionen, Abschnitt 1-2, (n =
35 Viertel)
Erreger
Corynebacterium
spp.
Corynebacterium spp.
Streptococcus uberis 1
Streptococcus
uberis
KNS 20 1
KNS
Enterococcus
spp.
Enterococcus spp. 2 - 8
E. coli - - - 2
Streptococcus dysgalactiae - 1 - - -
E. coli
Streptococcus
dysgalactiae
In den Versuchsabschnitten 3-6 wurden insgesamt 596 Viertel mit runden und 596
Viertel mit dreieckigen Zitzengummis untersucht. Bei den Zitzen, die mit dreieckigen
Zitzengummis gemolken wurden, konnten 278 (46,64 %) bakteriologisch positive
Vierteldiagnosen gestellt werden. Bei den runden Zitzengummis betrug die Anzahl
bakteriologisch positiver Ergebnisse 303 (50,84 %; Tab. 4-23).

97
Ergebnisse
Tab. 4-23: Verteilung des Erregerspektrums im Hauptversuch (Abschnitt 3-6),
getrennt nach Zitzengummiform, (eckig = 278, rund = 303
bakteriologisch positive Vierteldiagnosen)
Zitzengummiform eckig rund
Erreger
pos.
Vierteldiag-
nose [%]
Viertel [n]
pos.
Vierteldiag-
nose [%]
Viertel [n]
Corynebacterium spp. 59,35 165 64,69 196
KNS 24,46 68 20,79 63
Staphylococcus aureus - - - -
Streptococcus uberis 0,72 2 3,96 12
Streptococcus dysgalactiae - - 0,33 1
Streptokokken der Gr. D, E 0,36 1 0,33 1
Escherichia coli 0,36 1 0,33 1
Enterococcus spp. 3,60 10 2,31 7
Streptococcus spp. 0,36 1 2,31 7
Mischinfektionen 8,99 25 4,95 15
andere Erreger 1,08 3 - -
kontaminiert 0,72 2 - -
Summe 100 278 100 303
Die Tabelle 4-24 gibt einen Überblick über die festgestellten Mischinfektionen.
Tab. 4-24: Übersicht über die Zusammensetzung der Mischinfektionen [n] in
Abschnitt 3-6, n = 15 mit runden, n = 25 mit dreieckigen Zitzengummis
gemolkene Viertel
Erreger
Corynebacterium
spp.
Corynebacterium spp.
Streptococcus uberis -
Streptococcus
uberis
KNS 8/16* 3/1*
KNS
Streptococcus spp. - - 1/2*
Enterococcus spp. 1/0* - 1/6*
E. coli - - 1/0*
*= Leseart: n mit rundem Zitzengummi gemolkener Viertel / n mit dreieckigem Zitzengummi
gemolkener Viertel

Ergebnisse
98
Im letzten Versuchsabschnitt wurden jeweils 596 Viertel beurteilt. Für die eckige
Zitzengummiform konnten 254 (42,62 %) Viertel als bakteriologisch positiv gewertet
werden. Bei den runden Zitzengummis wurden 196 (32,89 %) bakteriologisch
positive Vierteldiagnosen festgestellt (Tab. 4-25).
Tab.4-25: Verteilung des Erregerspektrums im Hauptversuch (Abschnitt 7-10),
getrennt nach Zitzengummiform, (eckig = 254, rund = 196
bakteriologisch positive Vierteldiagnosen)
Zitzengummiform eckig rund
Erreger
pos.
Vierteldiag-
nose [%]
Viertel [n]
pos.
Vierteldiag-
nose [%]
Viertel [n]
Corynebacterium spp. 55,12 140 59,18 116
KNS 32,80 82 23,47 46
Staphylococcus aureus 0,79 2 1,02 2
Streptococcus uberis 3,15 8 2,04 4
Streptococcus dysgalactiae - - - -
Streptokokken der Gr. D, E - - - -
Escherichia coli - - - -
Enterococcus spp. 2,36 6 6,12 12
Streptococcus spp. 1,57 4 0,51 1
Mischinfektionen 4,33 11 6,63 13
andere Erreger 0,39 1 0,51 1
kontaminiert - - 0,51 1
Summe 100 254 100 196
Einen Überblick über die Mischinfektionen gibt die Tabelle 4-26.

99
Ergebnisse
Tab. 4-26: Übersicht über die Zusammensetzung der Mischinfektionen [n] in
Abschnitt 7-10, n = 13 mit runden, n = 11 mit dreieckigen Zitzengummis
gemolkene Viertel
Erreger
Corynebacterium spp.
Corynebacterium
spp.
Streptococcus uberis 1/0*
Streptococcus
uberis
KNS
KNS 6/7* 1/2*
Streptococcus spp. - - 1/0*
Enterococcus spp. 0/1* - 3/1*
Staphylococcus aureus 1/0* - -
*= Leseart: n mit rundem Zitzengummi gemolkener Viertel / n mit dreieckigem Zitzengummi
gemolkener Viertel
Der Anteil an Corynebakterien war bei den Eutervierteln, die mit einem eckigen
Zitzengummi gemolken wurden, etwas geringer gegenüber den Vierteln, die mit
runden Zitzengummis gemolken wurden. Allerdings war der Unterschied nicht
signifikant. Die Verteilung der KNS war nur im Versuchsabschnitt 7-10 für dreieckige
Zitzengummis signifikant höher (p < 0,0008).
In den Versuchsabschnitten 3-6 gab es keine Viertel, die mit Staphylococcus aureus
infiziert waren. Dagegen wurden in den Versuchsabschnitten 7-10 sowohl bei den
runden als auch bei den eckigen Zitzengummis Viertel mit Staphylococcus aureus
beobachtet.
Tabelle 4-27 gibt einen Überblick über das Erregerspektrum während des
Hauptversuchs zu den unterschiedlichen Laktationsstadien (siehe Kapitel 3.1.2).

Ergebnisse
100
Tab. 4-27: Verteilung des Erregerspektrums nach Laktationsstadium,
Hauptversuch
Laktationsstadium 1-100 Tage 101-200 Tage 201-300 Tage >300 Tage
Erreger
pos.
Viertel-
diagnose
[%]
Viertel
[n]
pos.
Viertel-
diagnose
[%]
Viertel
[n]
pos.
Viertel-
diagnose
[%]
Viertel
[n]
pos.
Viertel-
diagnose
[%]
Viertel
[n]
Corynebacterium
spp.
50,33 151 59,58 311 64,48 285 72,90 78
KNS 34,00 102 24,52 128 17,87 79 14,95 16
Staphylococcus
aureus
0,33 1 - - 0,45 2 0,93 1
Streptococcus
uberis
2,67 8 2,30 12 2,94 13 - -
Streptococcus
dysgalactiae
0,33 1 - - - - 2,80 3
Streptokokken der
Gr. D, E
0,67 2 0,19 1 - - - -
Escherichia coli - - 0,19 1 3,39 15 - -
Enterococcus spp. 3,00 9 4,60 24 3,39 15 - -
Streptococcus spp. 2,67 8 0,38 2 1,36 6 - -
Mischinfektionen 5,67 17 7,66 40 8,60 38 8,41 9
andere Erreger 0,33 1 0,57 3 0,68 3 - -
Summe 100,00 300 100,00 522 100,00 422 100,00 107
Daraus wird ersichtlich, dass mit fortschreitender Laktation der Anteil an
Corynebacterium spp. stetig anstieg und der an KNS abnahm.

4.4 Zitzenkondition
101
4.4.1 Beurteilung der Zitzenkondition
Ergebnisse
Während des Hauptversuches wurde die Zitzenkondition jeweils vor und nach dem
Melken mittels Adspektion und Palpation bestimmt. Vor dem Melken wurden die
Zitzenkuppe und der -schaft visuell beurteilt. Die Einteilung in die Gruppen RRD und
RDR blieb bestehen. Auch hier wurden nur Daten von Kühen berücksichtigt, die
während des Versuchs durchgängig anwesend waren (Auswahldaten1).
Vor dem Melken nahm in beiden Gruppen während des Versuchsablaufs von Phase
1 zu Phase 3 der Anteil an Ringbildungen an der Zitzenkanalöffnung zu und der
Anteil an glatten Zitzenenden ab (Abb. 4-15, 4-16).
Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
glattes Zitzenende
Ringbildung an Zitzenkanalöffnung
starke Ringbildung
rauer Ring mit Hyperkeratose
sehr rauer Ring mit starker Hyperkeratose
RRD-P1 RRD-P2 RRD-P3
Abb. 4-15: Adspektion der Zitzenspitze vor dem Melken, Gruppe RRD (rund-runddreieckig)
getrennt nach Phasen („P“), Auswahldaten1, n = 360

Ergebnisse
Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
102
glattes Zitzenende
Ringbildung an Zitzenkanalöffnung
starke Ringbildung
rauer Ring mit Hyperkeratose
sehr rauer Ring mit starker Hyperkeratose
RDR-P1 RDR-P2 RDR-P3
Abb. 4-16: Adspektion der Zitzenspitze vor dem Melken, Gruppe RDR (runddreieckig-rund)
getrennt nach Phasen („P“), Auswahldaten1, n = 360
Die anschließende visuelle Untersuchung des Zitzenschaftes beider Gruppen vor
dem Melken ist aus den Abbildungen 4-17 und 4-18 ersichtlich.
Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
Haut weich, ohne Schuppen und Risse
wenige Schuppen
Haut gerissen
Haut gerissen und aufgeraut
Haut geschädigt, offene Läsionen
RRD-P1 RRD-P2 RRD-P3
Abb. 4-17: Adspektion des Zitzenschaftes vor dem Melken, Gruppe RRD (rundrund-dreieckig)
getrennt nach Phasen („P“), Auswahldaten1, n = 360

Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
103
Haut weich, ohne Schuppen und Risse
wenige Schuppen
Haut gerissen
Haut gerissen und aufgeraut
RDR-P1 RDR-P2 RDR-P3
Ergebnisse
Abb. 4-18: Adspektion des Zitzenschaftes vor dem Melken, Gruppe RDR (runddreieckig-rund)
getrennt nach Phasen („P“), Auswahldaten1, n = 360
In beiden Gruppen zeigte sich ein ähnlicher Verlauf. Der Anteil an Zitzenschäften mit
„wenigen Schuppen“ nahm in Phase 2 ab und erreichte in Phase 3 wieder das
Nieveau von Phase 1. Die übrigen Ausprägungen veränderten sich kaum,
beziehungsweise zeigten eine abnehmende Tendenz. Auch in der Gruppe RDR war
eine Zunahme an Zitzenschäften mit wenigen Schuppen zu erkennen.
Im direkten Anschluss an das Melken wurden an der Zitzenspitze die Verhärtung,
das Auftreten von Feuchtigkeit und die Formveränderung, am Zitzenschaft Farbe und
Ringbildung beurteilt. Die Abbildungen 4-19 bis 4-22 stellen die Beurteilung der
Kondition der Zitzenspitze nach dem Melken dar.

Ergebnisse
Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
104
weich verhärtet
RRD-P1 RRD-P2 RRD-P3
Abb. 4-19: Verhärtung der Zitzenspitze nach dem Melken, Gruppe RRD (rundrund-dreieckig),
eingeteilt nach Phasen („P“), Auswahldaten1, n = 360
Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
weich verhärtet
RDR-P1 RDR-P2 RDR-P3
Abb. 4-20: Verhärtung der Zitzenspitze nach dem Melken, Gruppe RDR (runddreieckig-rund),
eingeteilt nach Phasen („P“), Auswahldaten1, n = 360

Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
105
feucht trocken
RRD-P1 RRD-P2 RRD-P3
Ergebnisse
Abb. 4-21: Feuchtigkeit an der Zitzenspitze nach dem Melken, Gruppe RRD (rundrund-dreieckig),
eingeteilt nach Phasen („P“), Auswahldaten1, n = 360
Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
feucht trocken
RDR-P1 RDR-P2 RDR-P3
Abb. 4-22: Feuchtigkeit an der Zitzenspitze nach dem Melken, Gruppe RDR (runddreieckig-rund),
eingeteilt nach Phasen („P“), Auswahldaten1, n = 360
Die Mehrheit der Zitzenspitzen zeigte sich in beiden Gruppen nach dem Melken
weich, mit einer leicht abnehmenden Tendenz in Phase drei. In Phase 1 wurden
vermehrt „trockene“ Zitzenspitzen beobachtet.
Bei der nachfolgenden Beurteilung der Farbe des Zitzenschaftes nach dem Melken
gab es weder zwischen den Gruppen RRD und RDR noch zwischen den

Ergebnisse
106
verschiedenen Phasen signifikante Unterschiede. Die Mehrheit der Zitzen war leicht
gerötet und der Anteil an Zitzen mit normaler Farbe ging zurück (Abb. 4-23, 4-24).
Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
normal leicht gerötet rot blau
RRD-P1 RRD-P2 RRD-P3
Abb. 4-23: Beurteilung der Farbe des Zitzenschaftes nach dem Melken, Gruppe
RRD (rund-rund-dreieckig), Auswahldaten, n = 360
Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
normal leicht gerötet rot blau
RDR-P1 RDR-P2 RDR-P3
Abb. 4-24: Beurteilung der Farbe des Zitzenschaftes nach dem Melken, Gruppe
RDR (rund-dreieckig-rund), Auswahldaten1, n = 360
Die anschließende Beurteilung einer Ringbildung am Zitzenschaft nach dem Melken
fiel sowohl in der Gruppe RRD als auch in der Gruppe RDR ähnlich aus. Den

107
Ergebnisse
größten Anteil stellten Einschnürungen mit sichtbarem ringförmigen Abdruck der
Kopföffnung des Zitzengummis dar (Abb. 4-25; 4-26).
Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
normal Einschnürung Ringwulst
RRD-P1 RRD-P2 RRD-P3
Abb. 4-25: Beurteilung der Ringbildung am Zitzenschaft nach dem Melken, Gruppe
RRD (rund-rund-dreieckig), Auswahldaten1, n = 360
Anteil [%]
100,00
90,00
80,00
70,00
60,00
50,00
40,00
30,00
20,00
10,00
0,00
normal Einschnürung Ringwulst
RDR-P1 RDR-P2 RDR-P3
Abb. 4-26: Beurteilung der Ringbildung am Zitzenschaft nach dem Melken, Gruppe
RDR (rund-dreieckig-rund), Auswahldaten1, n = 360
Zusätzlich wurde nach dem Melken auf Formveränderungen der Zitzenspitze durch
die dreieckige Zitzengummiform geachtet. Nach dem Melken zeigten 41,32 % der
Zitzenspitzen eine physiologische bis leicht dreieckige Form, 43,40 % hatten eine

Ergebnisse
108
erkennbare dreieckige Form und 15,28 % ließen eine ausgeprägte dreieckige
Verformung der Zitzenspitze erkennen.
In Abbildung 4-27 ist die Formveränderung der Zitzenspitze nach dem Melken,
getrennt nach Vorder- und Hintervierteln dargestellt.
Anteil [%]
25,00
20,00
15,00
10,00
5,00
0,00
physiologisch /
leicht dreieckig
dreieckig ausgeprägt
dreieckig
Vorderviertel
Hinterviertel
Abb. 4-27: Ausprägung der Formveränderung der Zitzenspitze nach dem Melken
mit dreieckigem Zitzengummi, (n = 288), Auswahldaten1, Phase 2 bis 3
Der χ²-Homogenitätstest zeigte keine signifikanten Unterschiede zwischen Vorder-
und Hintervierteln.
Die vor und nach dem Melken ermittelten Zitzenkonditionsparameter wurden in
einem χ²-Homogenitätstest verglichen. Dabei wurden die Phasenwechsel sowie die
Gruppen gegenübergestellt (Tab. 4-28).

109
Ergebnisse
Tab. 4-28: χ²-Homogenitätstest: Vergleich der verschiedenen Zitzenkonditionen
zwischen den Phasen, Auswahldaten1, P1-P3 durchgängig 1.Messung
Zitzenkondition
Gruppe
Vergleich von Phase zu Phase
Phase 1 (n = 72) zu
Phase 2 (n = 144)
Phase 2 (n = 144) zu
Phase 3 (n = 144)
Adspektion Spitze vor dem RRD* n.s. 0,0030
Melken RDR* n.s. 0,0087
Adspektion Schaft vor dem RRD* n.s. 0,0036
Melken RDR* n.s. 0,0030
Adspektion Spitze nach dem RRD* n.s. 0,0236
Melken (hart/weich) RDR* n.s. n.s.
Adspektion Spitze nach dem RRD* 0,0159 0,0133
Melken (trocken/feucht) RDR* 0,0268 n.s.
Adspektion Spitze nach dem RRD* n.s. 0,0350
Melken (Farbe) RDR* n.s. n.s.
Adspektion Spitze nach dem RRD* n.s. 0,0035
Melken (Ringbildung) RDR* n.s. 0,0032
*: RRD = rund-rund-dreieckig; RDR = rund-dreieckig-rund
n.s. = nicht signifikant (p > 0,05)
Im direkten Vergleich zwischen den Gruppen RDR und RRD ergaben sich allerdings
keine signifikanten Unterschiede (p > 0,05).

Ergebnisse
4.4.2 Zitzengewebefestigkeit
110
Um den Einfluss von runden und dreieckigen Zitzengummis auf die Gewebefestigkeit
zu beurteilen, wurden die Veränderungen an jedem Versuchstag gegenübergestellt.
Die durchschnittliche prozentuale Änderung der Gewebefestigkeit lag bei 0,89 ± 0,68
% (Abb. 4-28).
durchschnittl. Änderung der
Gewebefestigkeit [%]
15
10
5
0
-5
-10
-15
rund eckig
3 4 5 6 7 8 9 10
Probentermine
Abb. 4-28: Prozentuale Änderung der Gewebefestigkeit an den Probenterminen.
Der markierte Bereich (± 5 %) entspricht dem von ZECCONI et al.
(1992) geforderten Grenzwert
Ein Vergleich der Gewebefestigkeit zwischen runden und eckigen Zitzengummis an
den jeweiligen Versuchstagen zeigte lediglich einen signifikanten Unterschied (p =
0,0498) an Versuchstermin 9.
Eine getrennte Betrachtung der Zitzengummiformen zeigte keinen signifikanten (p >
0,05) Einfluss der Versuchstage auf die Zitzengewebefestigkeit.
Zur Übersicht sind die Mittelwerte der Kutimetermessungen vor und nach dem
Melken, getrennt nach Gruppe RRD und RDR, in Tabelle 4-29 dargestellt.

111
Tab. 4-29: Zitzengewebefestigkeit vor und nach dem Melken (n = 2984)
Ergebnisse
Gruppe RRD RDR
Änderung
Änderung
Proben- [n] vorher nachher [%] vorher nachher [%]
termin Mess. x
[mm]
sd
x
[mm]
sd x sd
x
[mm]
sd
x
[mm]
sd x sd
1-2 300 10,52 0,14 10,46 1,39 -0,07 10,09 10,36 1,28 10,40 1,36 0,77 9,57
3-6 596 10,64 1,38 10,60 1,25 0,17 8,80 10,71 1,44 10,74 1,37 0,67 8,74
7-10 596 10,91 1,33 10,96 1,32 0,87 9,34 10,90 1,33 10,98 1,30 1,14 8,81
RRD = rund-rund-dreieckig; RDR = rund-dreieckig-rund
x = Mittelwert; sd = Standardabweichung; n = Messungen
Im Einzelnen traten, im Vergleich zu den Messwerten vor dem Melken, Zunahmen
(+), Abnahmen (-) und Gleichstände (0) auf. Tabelle 4-30 spezifiziert diese Ausgänge
für die Gruppen RRD und RDR.
Tab. 4-30: Veränderungen der Zitzengewebefestigkeit, RRD/RDR (n = 360/360)
Auswahldaten1, P1 bis P3 durchgehend 1. Messung
Proben-
Gruppe RRD Gruppe RDR
termin n [Messungen] n [%] x [%] sd n [Messungen] n [%] x [%] sd
∑ 72 100 -1,54 9,78 72 100 0,12 8,39
1-2
+
0
25
4
34,72
5,56
9,10
0,00
8,11
0,00
37
6
51,39
8,33
6,65 4,50
0,00 0,00
- 43 59,72 -7,78 -3,95 29 40,28 8,20 4,94
∑ 144 100 -0,48 8,65 144 100 0,83 8,35
3-6
+
0
62
18
43,06
12,50
6,97
0,00
4,85
0,00
70
14
48,61
9,72
7,34 5,28
0,00 0,00
- 64 44,44 -7,83 6,12 60 41,67 -6,57 5,50
∑ 144 100 1,55 11,38 144 100 0,51 9,63
7-10
+
0
73
18
50,69
12,50
8,27
0,00
11,68
0,00
70
13
48,61
9,03
7,76 7,08
0,00 0,00
- 53 36,81 -7,18 5,01 61 42,36 -7,71 5,78
= dreieckige Zitzengummis; RRD = rund-rund-dreieckig; RDR = rund-dreieckig-rund
x = Mittelwert; sd = Standardabweichung; n = Messungen; ∑ = Summe; + = Zunahme; - = Abnahme;
0 = unverändert
Anschließend wurden die Veränderungen der Gewebefestigkeit den
Eutergesundheitskategorien zugeordnet.

Ergebnisse
112
Die Abbildungen 4-29 und 4-30 zeigen die arithmetischen Mittelwerte der
Veränderungen der Gewebefestigkeit von der Zitzenkuppe beider Gruppen.
Änderung der Gewebefestigkeit [%]
20,00
15,00
10,00
5,00
0,00
-5,00
-10,00
-15,00
normale Sekretion latente Infektion
unspezifische Mastitis Mastitis
1-2, rund 3-6, rund 7-10, eckig
Probentermin
Abb. 4-29: Prozentuale Änderung des Zitzengewebes an der Kuppe in Bezug zur
Eutergesundheitskategorie, Gruppe RRD (rund-rund-dreieckig),
Auswahldaten1, n = 360
Änderung der Gewebefestikeit [%]
20,00
15,00
10,00
5,00
0,00
-5,00
-10,00
-15,00
normale Sekretion latente Infektion
unspezifische Mastitis Mastitis
1-2, rund 3-6, eckig 7-10, rund
Probentermin
Abb. 4-30: Prozentuale Änderung des Zitzengewebes an der Kuppe in Bezug zur
Eutergesundheitskategorie, Gruppe RDR (rund-dreieckig-rund),
Auswahldaten1, n = 360

113
Ergebnisse
In der Gruppe RDR war auffällig, dass nach dem Wechsel von dreieckigen zu runden
Zitzengummis die Gewebefestigkeit bei Vierteln mit unspezifischer Mastitis und
Mastitis zunahm. In Gruppe RRD nahm die Gewebefestigkeit nach dem Wechsel zu
dreieckigen Zitzengummis in der Kategorie „Mastitis“ zu.
In Tabelle 4-31 sind die prozentualen Änderungen der Zitzengewebefestigkeit
getrennt nach Gesundheitskategorie und Gruppe dargestellt.
Tab. 4-31: Prozentuale Änderung des Zitzengewebes der Kuppe, getrennt nach
Gesundheitskategorie, Auswahldaten1, n = 720
Gruppe RRD Gruppe RDR
Probentermin/
Probentermin/
Zitzengummiform
Zitzengummiform
1,2/ rund n (Mess.) x [%] sd 1,2/ rund n (Mess.) x [%] sd
normale Sekretion 31 -0,67 11,87 normale Sekretion 28 1,31 8,93
latente Infektion 33 -2,43 8,34 latente Infektion 33 -1,34 8,02
unspezifische Mastitis 2 -2,34 4,55 unspezifische Mastitis 2 9,16 0,47
Mastitis 6 -0,85 7,34 Mastitis 9 -0,26 8,03
3-6/ rund n (Mess.) x [%] sd 3-6/ eckig n (Mess.) x [%] sd
normale Sekretion 63 -0,01 8,95 normale Sekretion 72 2,30 8,24
latente Infektion 53 -0,34 8,41 latente Infektion 43 0,09 9,01
unspezifische Mastitis 9 0,39 5,12 unspezifische Mastitis 8 -0,06 7,32
Mastitis 19 -2,84 9,76 Mastitis 21 -2,33 6,94
7-10/ eckig n (Mess.) x [%] sd 7-10/ rund n (Mess.) x [%] sd
normale Sekretion 49 1,96 14,71 normale Sekretion 75 0,98 9,09
latente Infektion 46 1,05 7,72 latente Infektion 37 -1,97 9,35
unspezifische Mastitis 9 1,07 6,07 unspezifische Mastitis 10 1,75 7,41
Mastitis 20 1,52 6,48 Mastitis 22 2,51 12,27
In Abbildung 4-31 und Tabelle 4-32 werden die arithmetischen Mittelwerte der
Veränderungen der Gewebefestigkeit getrennt nach Zitzenlokalisation für die Gruppe
RRD dargestellt. Es zeigte sich bei den Vordervierteln eine Zunahme der
Zitzengewebefestigkeit von Vierteln mit normaler Sekretion, sowie eine Zunahme der
Gewebefestigkeit von Vierteln mit Mastitis. Bei den Hintervierteln, die eine normale
Sekretion zeigten, konnte eine leichte Abnahme der Gewebefestigkeit festgestellt
werden.

Ergebnisse
Änderung [%]
25
20
15
10
5
0
-5
-10
-15
-20
114
Gruppe RRD
normale Sekretion latente Infektion unsp. Mastitis Mastitis
VV HV VV HV VV HV
Phase 1 Phase 2 Phase 3
VV = Vorderviertel; HV = Hinterviertel
Abb. 4-31: Prozentuale Änderung des Zitzengewebes an der Kuppe, getrennt nach
Viertelposition, Gruppe RRD (rund-rund-dreieckig), Auswahldaten1, n =
360
Tab. 4-32: Prozentuale Veränderung des Zitzengewebes der Kuppe, getrennt nach
Gesundheitskategorie und Viertelposition der Gruppe RRD,
Auswahldaten1, (Phase 1: n = 36 VV/ 36 HV, Phase 2: n = 72 VV/ 72
HV, Phase 3: n = 72 VV/ 72 HV)
RRD
Phase 1
VV HV
Phase 2
VV HV
Phase 3
VV HV
x [%] -2,54 0,86 1,00 -1,06 5,62 -1,21
normale Sekretion sd 8,65 14,06 7,90 9,95 19,40 7,90
n 14 17 32 31 32 37
x [%] -2,55 -2,24 -0,84 0,26 1,61 -0,01
latente Infektion sd 9,82 5,74 9,20 7,50 7,51 8,25
n 20 13 29 24 30 16
x [%] - -2,34 3,04 -1,72 5,39 -1,09
unspezifische Mastitis sd - 4,55 6,07 3,50 2,28 6,33
n - 2 4 5 3 6
x [%] -3,90 0,67 -0,37 -4,28 1,26 1,65
Mastitis sd 8,47 7,52 12,19 8,29 5,27 7,25
n 2 4 7 12 7 13
RRD = rund-rund-dreieckig; VV = Vorderviertel; HV = Hinterviertel

115
Ergebnisse
Eine durchgeführte 2-faktorielle Varianzanalyse zeigte keinen signifikanten Einfluss
der Phase auf die Gesundheitskategorie, jedoch hatte allein die Viertelposition einen
signifikanten Einfluss (p = 0,0393) auf die Zitzengewebefestigkeit der Kategorie
„unspezifische Mastitis“.
In Abbildung 4-32 und Tabelle 4-33 werden die arithmetischen Mittelwerte der
Veränderungen der Gewebefestigkeit getrennt nach Zitzenlokalisation für die Gruppe
RDR dargestellt.
Änderung [%]
30
25
20
15
10
5
0
-5
-10
-15
Gruppe RDR
normale Sekretion latente Infektion unsp. Mastitis Mastitis
VV HV VV HV VV HV
Phase 1 Phase 2 Phase 3
VV = Vorderviertel; HV = Hinterviertel
Abb. 4-32: Prozentuale Änderung des Zitzengewebes an der Kuppe, getrennt nach
Viertelposition, Gruppe RDR (rund-dreieckig-rund), Auswahldaten1, n =
360

Ergebnisse
116
Tab. 4-33: Prozentuale Veränderung des Zitzengewebes der Kuppe, getrennt nach
Gesundheitskategorie und Viertelposition der Gruppe RDR,
Auswahldaten1, (Phase 1: n = 36 VV/ 36 HV, Phase 2: n = 72 VV/ 72
HV, Phase 3: n = 72 VV/ 72 HV)
RDR
Phase 1
VV HV
Phase 2
VV HV
Phase 3
VV HV
x [%] 0,70 2,12 1,36 3,54 -0,09 2,48
normale Sekretion sd 9,40 8,59 7,32 9,29 7,84 10,57
n 16 12 41 31 44 31
x [%] -4,49 0,70 -3,16 2,22 -3,90 -0,14
latente Infektion sd 8,56 7,13 9,13 8,43 9,85 8,72
n 13 20 17 26 18 19
x [%] 9,16 - -0,98 0,86 0,09 2,46
unsp. Mastitis sd 0,47 - 10,48 3,58 8,51 7,50
n 2 - 4 4 3 7
x [%] 0,25 -0,89 -3,76 -1,03 6,56 0,61
Mastitis sd 8,35 8,82 6,29 7,54 20,13 6,33
n 5 4 10 11 7 15
RDR = rund-dreieckig-rund; VV = Vorderviertel; HV = Hinterviertel
Eine 2-faktorielle Varianzanalyse zeigte keinen signifikanten Einfluss der Phase auf
die Gesundheitskategorie, jedoch hatte ähnlich wie in der Gruppe RRD die
Viertelposition einen signifikanten Einfluss (p = 0,0048) auf die Gewebefestigkeit der
Kategorie „latente Infektion“.

4.5 Milchabgabeverhalten
4.5.1 Milchmenge
117
Ergebnisse
Um festzustellen, ob es einen Unterschied zwischen runden und dreieckigen
Zitzengummis im Hinblick auf die produzierte Milchmenge gab, wurden die
Milchmengen an den Probenterminen gegenübergestellt. Abbildung 4-33 stellt die
durchschnittliche Viertelgemelksmenge an den Probenterminen getrennt nach
Zitzengummiform dar.
durchschnitttliche
Viertelgemelksmenge [g]
5000
4500
4000
3500
3000
2500
2000
1500
1000
500
0
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
Probentermine
rund
eckig
Abb. 4-33: Durchschnittliche Viertelgemelksmenge an den Probenterminen,
getrennt nach Zitzengummiform
Wie aus Abbildung 4-33 ersichtlich, bestanden keine signifikanten Unterschiede
(Varianzanalyse; p > 0,05) zwischen den Viertelgemelksmengen, weder innerhalb
der Gruppe mit dreieckigen bzw. runden Zitzengummis, noch zwischen diesen
beiden Gruppen.

Ergebnisse
118
Um Unterschiede in der Milchmenge zwischen runden und dreieckigen Zitzengummis
darzustellen, wurden zur genaueren Betrachtung nur Viertel herangezogen, die
während Phase 2 und 3 durchgängig beprobt wurden („Auswahldaten“).
Die durchschnittliche Milchmengenleistung auf Viertelebene betrug für runde
Zitzengummis 3296,00 ± 1551,40 g und für dreieckige Zitzengummis 3335,20 ±
1646,50 g. Der Unterschied war nicht signifikant (p = 0,7287; n = 400 rund / 400
eckig; Auswahldaten).
4.5.2 Sekretionsrate
Da meistens nur einzelne Viertel von einer Erkrankung betroffen sind, wurde die
Sekretionsrate (s. 3.2.3.3.3) auf Viertelebene bestimmt. In erkrankten Vierteln war
die Sekretionsrate geringer als in Vierteln mit normaler Sekretion. Die geringste
Milchsekretion wiesen Viertel mit unspezifischer Mastitis auf (Tab. 4-34).
Tab. 4-34: Milchsekretionsrate, getrennt nach Gesundheitskategorie,
Hauptversuch, n = 2984
Parameter
n
Sekretionsrate - Viertel [g/h]
x sd Sign.*
normale Sekretion 1424 319,64 116,28 A
latente Infektion 941 299,89 100,11 B
unspez. Mastitis 189 238,94 122,14 C
Mastitis 430 264,32 132,25 D
*Ryan-Einot-Gabriel-Welsch Multiple Range Test (unterschiedliche Buchstaben unterscheiden sich
signifikant) p

119
Ergebnisse
Tab. 4-35: Milchsekretionsrate getrennt nach Gesundheitskategorie und
Versuchstagen, Gruppe RRD, Auswahldaten1, n = 360
VT Parameter
n x [g/h]
RRD
sd Sign.*
normale Sekretion 31 298,47 101,67 A
1-2
latente Infektion
unspez. Mastitis
33
2
273,15
158,36
57,93
10,60
BA
B
Mastitis 6 283,14 45,88 BA
normale Sekretion 63 323,53 93,22 A
3-6
latente Infektion
unspez. Mastitis
53
9
291,74
209,06
86,83
72,15
A
B
Mastitis 19 287,67 55,67 A
normale Sekretion 69 299,86 113,16 A
7-10
latente Infektion
unspez. Mastitis
46
9
282,82
153,46
123,19
94,59
A
B
Mastitis 20 263,18 172,02 A
= dreieckige Zitzengummis; RRD = rund-rund-dreieckig; VT = Versuchstag *:Tukey´s
Studentized Range Test; unterschiedliche Buchstaben unterscheiden sich signifikant (p < 0,05)
Der χ²-Homogenitätstest zeigte keine signifikanten Unterschiede in der Verteilung der
Eutergesundheitskategorien zwischen dem Phasenwechsel in der Gruppe RRD.
Tab. 4-36: Milchsekretionsrate getrennt nach Gesundheitskategorie und
Versuchstagen, Gruppe RDR, Auswahldaten1, n = 360
VT Parameter
n x [g/h]
RDR
sd Sign.*
normale Sekretion 28 262,92 77,76 A
1-2
latente Infektion
unspez. Mastitis
33
2
289,56
230,65
106,59
18,60
A
A
Mastitis 9 281,59 77,20 A
normale Sekretion 72 294,99 67,57 A
3-6
latente Infektion
unspez. Mastitis
43
8
283,18
287,47
61,78
165,97
A
A
Mastitis 21 285,17 124,90 A
normale Sekretion 75 275,22 89,12 A
7-10
latente Infektion
unspez. Mastitis
37
10
261,23
215,74
81,11
92,56
A
A
Mastitis 22 247,70 121,33 A
= dreieckige Zitzengummis; RDR = rund-dreieckig-rund; VT = Versuchstag *:Tukey´s
Studentized Range Test; unterschiedliche Buchstaben unterscheiden sich signifikant (p < 0,05)

Ergebnisse
120
Im χ²-Homogenitätstest wurde deutlich, dass keine signifikanten Unterschiede in der
Verteilung der Gesundheitskategorien zwischen dem Wechsel von runden zu
dreieckigen und von dreieckigen zu runden Zitzengummis in der Gruppe RDR
vorhanden waren.
Um den Einfluss der Zitzengummiform beurteilen zu können, wurde die
Sekretionsrate getrennt nach dem Einsatz runder und dreieckiger Zitzengummis
berechnet; dazu wurde der Datensatz „Auswahldaten“ verwendet. Die Sekretionsrate
der mit runden Zitzengummis gemolkenen Viertel betrug 303,14 g/h ± 119,57,
während die mit dreieckigen Zitzengummis gemolkenen Viertel eine Sekretionsrate
von 308,13 g/h ± 136,45 aufwiesen (p = 0,5828, Auswahldaten).
Im für diese Studie verwendeten automatischen Melksystem wurde die Milchmenge
auf Viertelebene erfasst, daher war die Berechnung der Sekretionsrate für jedes
Viertel getrennt möglich. Bei der Betrachtung der Viertelposition zeigten sich die
Vorderviertel mit einer signifikant (p < 0,0001) geringeren Sekretionsrate von 270,84
g/h ± 85,05 im Vergleich zu den Hintervierteln, die eine Sekretionsrate von 340,43
g/h ± 152,53 aufwiesen (basierend auf „Auswahldaten“).
In Tabelle 4-37 ist die Sekretionsrate getrennt nach Versuchsphase und
Viertelposition dargestellt.
Tab. 4-37: Milchsekretionsrate getrennt nach Viertelposition, Auswahldaten1, n =
720
Phase
VR
Sekretionsrate-Viertel [g/h]
HR VL HL
x 254,07 296,62 256,52 309,32
1 sd 48,59 90,80 87,84 97,41
n 36 36 36 36
x 264,32 314,84 264,39 335,58
2 sd 39,66 90,51 67,17 109,39
n 72 72 72 72
x 248,30 291,84 234,74 312,04
3 sd 66,79 101,74 74,80 163,66
n 72 72 72 72
= dreieckige Zitzengummis; VR = vorne rechts; HR = hinten rechts; VL = vorne links; HL =
hinten links

121
Ergebnisse
Die Tabellen 4-38 und 4-39 geben einen Überblick über den Zusammenhang von
Melkintervall und Sekretionsrate. Aus der letztgenannten Tabelle geht hervor, dass
die Sekretionsrate, unabhängig vom Melkintervall, weder durch die runden noch die
eckigen Zitzengummis signifikant beeinflusst wurde (Varianzanalyse). Das wird durch
die graphische Darstellung in Abb. 4-34 unterstrichen.
Tab. 4-38: Milchsekretionsrate [g/h] pro Viertel, Mittelwerte getrennt nach
Melkintvervall (MI), Auswahldaten (n = 800)
MI
Sekretionsrate [g/h], Probentermine 3-10
Alle Viertel
n (Mess.) x sd Signifikanz*
1 28 259,97 131,89 B
2 140 330,78 152,18 A
3 200 305,19 135,58 BA
4 148 322,71 110,52 A
5 284 289,16 114,78 BA
* Tukey´s Studentized Range Test (unterschiedliche Buchstaben unterscheiden sich signifikant), p <
0,05; MI = Melkintervall
Tab. 4-39: Milchsekretionsrate [g/h] pro Viertel, Mittelwerte getrennt nach
Melkintervall (MI) und Zitzengummiform, Auswahldaten (n = 800)
MI
n
(Mess.)
Sekretionsrate [g/h], Probentermine 3-10
runde Zitzengummis dreieckige Zitzengummis
x sd Signifikanz* x sd Signifikanz*
1 14 259,00 111,30 A 260,94 154,08 A
2 70 324,26 137,36 A 337,31 166,42 A
3 100 299,40 125,96 A 310,98 144,97 A
4 74 325,20 101,63 A 320,22 119,39 A
5 142 288,23 112,64 A 290,09 117,27 A
* Tukey´s Studentized Range Test (unterschiedliche Buchstaben unterscheiden sich signifikant), p <
0,05; MI = Melkintervall
Abbildung 4-34 zeigt den Verlauf der Milchsekretion in Abhängigkeit von Melkintervall
und Zitzengummiform.

Ergebnisse
Milchrekretion [g/h]
400
350
300
250
122
rund eckig
1 2 3 4 5
Melkintervall-Gruppe
Abb. 4-34: Mittlere Milchsekretion [g/h] getrennt nach Zitzengummiform,
Auswahldaten, n = 800

4.6 Neuinfektion
123
Ergebnisse
Definitorisch lag für diese Studie eine Neuinfektion dann vor, wenn ein neuer Erreger
auf VAG-Ebene gefunden wurde und dessen Auftreten die Tagesdiagnose
entsprechend veränderte. Dabei galten Keimgruppen wie KNS oder Coryneforme
mangels weiterer Differenzierung als jeweils derselbe Keim. Zur Auswertung wurden
alle Viertel (n = 2984) von Phase 1 bis Phase 3 herangezogen. Die
Wahrscheinlichkeit, dass ein Viertel an einem bestimmten Tag neuerkrankt verlief für
beide Gruppen ähnlich. Beide Gruppen begannen auf demselben Prävalenzniveau
und zeigten eine sinkende Tendenz mit fortschreitender Laktation (Abb. 4-35). In
beiden Gruppen wurde dennoch eine Erhöhung der Mastitisprävalenz um den 6.
Probentermin beobachtet. Der dazugehörige Log-Rank-Test ergab keine
signifikanten Unterschiede zwischen den Gruppen RRD und RDR.
Prävalenz
1,00
0,90
0,80
0,70
0,60
0,50
0,40
0,30
0,20
0,10
0,00
Wahrscheinlichkeit, dass ein Viertel an einem bestimmten Tag erkrankt ist.
0 2 4 6 8 10 12
Probentermin
RDR = rund-dreieckig-rund; RDR = rund-dreieckig-rund
Abb. 4-35: Prävalenz von Neuinfektionen in Abhängigkeit vom Zitzengummityp,
alle Viertel (n= 2984)
Die Berechnung der Inzidenz ergab für beide Gruppen ähnliche Werte. Die
Wahrscheinlichkeit, dass ein zuvor gesundes Viertel über den Zeitraum erkrankte
betrug für die Gruppe RRD und RDR 0,86 bzw. 0,81.
RDR
RRD

Ergebnisse
124
Die Überlebenszeitkurve nach Kaplan-Meier (Abb. 4-36) zeigt für beide Gruppen
einen ähnlichen Verlauf mit abnehmender Tendenz.
Anteil gesunder Viertel [%]
100
80
60
40
20
0
Anteil gesunder Viertel der Gruppe RDR
Anteil gesunder Viertel der Gruppe RRD
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
Versuchstage
RDR = rund-dreieckig-rund; RDR = rund-dreieckig-rund
Abb. 4-36: Überlebenszeitkurve nach Kaplan-Meier, Anteil gesunder Viertel in
Abhängigkeit vom Zitzengummityp, alle Viertel, (n = 2984)

125
4.7 Gegenüberstellung der Gruppen RRD und RDR
Ergebnisse
Nachdem die vorangegangenen Kapitel vor allem beschreibenden Charakter haben,
ist dieser Abschnitt dem direkten Vergleich der Gruppen RRD und RDR gewidmet.
Dabei werden die einzelnen Parameter in Abhängigkeit von jeweils zwei
Einteilungskriterien (Gruppe, Eutergesundheit, Versuchsphase etc.) untersucht. In
den kommenden Tabellen werden aus Platzgründen einige Parameter wie folgt
abgekürzt:
MengeViertel = Viertelgemelksmenge [g]
Cutimeter vorher = Gewebefestigkeit der Zitzenkuppe vor dem Melken [cm]
Cutimeter nachher = Gewebefestigkeit der Zitzenkuppe nach dem Melken [cm]
Ergebnis Kuppe = prozentuale Änderung der Zitzenkuppengewebefestigkeit [%]
Kuppe absolut = s. zuvor, aber ohne Betrachtung des Vorzeichens [%]
Zitzenkonditionsparameter (s. Kap. 3.2.3.2.2):
Spitze1 = Adspektion der Zitzenspitze vor dem Melken
Schaft1 = Adspektion des Zitzenschaftes vor dem Melken
Spitze2 = Verhärtung der Zitzenspitze nach dem Melken
Spitze feucht trocken = Feuchtigkeit an der Zitzenspitze nach dem Melken
Schaft Farbe = Farbe des Zitzenschaftes nach dem Melken
Schaft Form = Formveränderungen der Zitzenspitze
Einteilung der Euterviertel in Gruppen nach Zitzengummityp (s. Tab. 4-14):
RRD = rund-rund-dreieckig
RDR = rund-dreieckig-rund
4.7.1 Gleichheit der Voraussetzungen (Phase 1)
Um festzustellen, ob beide Gruppen dieselben Startbedingungen hatten, wurden die
Gruppen RRD und RDR in Phase 1 (Versuchstag 1 und 2) gegenübergestellt. Es
wurde für jedes Viertel pro Parameter ein Mittelwert pro Phase gebildet. Ein
Vergleich der Gruppen RRD und RDR ergab für keinen Parameter signifikante
Unterschiede (Varianzanalyse, Tab. 4-40).

Ergebnisse
126
Tab. 4-40: Mittelwerte und Standardabweichungen der verschiedenen Parameter
in Phase 1, (RRD n = 74; RDR n = 74)
Parameter
MengeViertel [g]
LF [mS/cm]
SCC [lgZellen/ml]
NAGase [lgnmol * min-1 * ml-1]
Cutimeter vorher [cm]
Cutimeter nachher [cm]
Ergebnis Kuppe [%]
Kuppe absolut [%]
Melkzeit [min]
Milchfluss [ml/min.]
Sekretionsrate [g/h]
Gruppe
RDR RRD
x 2965,43 2858,01
sd 1015,46 988,09
x 5,85 5,92
sd 0,44 0,51
x 4,53 4,59
sd 0,59 0,63
x -0,02 0,02
sd 0,32 0,35
x 1,05 1,07
sd 0,12 0,13
x 1,06 1,06
sd 0,12 0,12
x 0,62 -0,54
sd 5,28 6,85
x 6,94 7,62
sd 3,11 4,13
x 3,14 3,13
sd 1,08 1,13
x 970,51 941,15
sd 274,26 236,55
x 289,05 279,20
sd 100,54 99,65
Für die Beurteilung der Zitzenkondition wurden die Werte aller Viertel aus Phase 1,
allerdings nur das Ergebnis der jeweils 1. Messung pro Viertel und Versuchstag
verwendet und die Gruppen RRD und RDR gegenübergestellt. Auch hier ergaben
sich keine signifikanten Unterschiede (χ²-Homogenitätstest). Somit galten für alle
Viertel, in Bezug auf die untersuchten Parameter, sowie die Zitzenkondition, zu
Beginn des Versuchs dieselben Grundvoraussetzungen. Diese Information
ermöglichte alle weiteren Analysen.

127
4.7.2 Grundsätzlicher Vergleich von RRD mit RDR
Ergebnisse
In einem zweiten Schritt wurden getrennt für jede Gruppe die Differenzen der in Tab.
4-41 aufgeführten Meßparameter gebildet (Phase 2 minus Phase 3) und
anschließend mittels t-Test verglichen.
Wie aus Tabelle 4-41 zu erkennen ist, sind bis auf den Parameter „Cutimeter
nachher“ keine signifikanten Unterschiede vorhanden. Bei diesem Parameter
unterscheidet sich Phase 3 der Gruppe RDR von Phase 2 der Gruppe RRD. Es
macht für den Parameter „Cutimeter nachher“ einen Unterschied, ob zuerst mit
runden und dann mit eckigen Zitzengummis gemolken wird, oder umgekehrt.
Tab. 4-41: Vergleich der Differenzen der Gruppen RRD und RDR (t-Test, n = 832)
Parameter p-Wert
MengeViertel [g] n.s.
LF [mS/cm] n.s.
SCC [lgZellen/ml] n.s.
Nagase [lgnmol * min-1 * ml-1] n.s.
Cutimeter vorher [cm] n.s.
Cutimeter nachher [cm] 0,0160
Ergebnis Kuppe [%] n.s.
Kuppe absolut [%] n.s.
Melkzeit [min] n.s.
Milchfluss [ml/min.] n.s.
Sekretionsrate [g/h] n.s.
Die Gewebedicke nahm in Gruppe RRD (-0,03 cm) beim Wechsel von rund auf
dreieckig stärker ab als in Gruppe RDR (-0,01 cm) beim Wechsel von dreieckig auf
rund.
Im nächsten Schritt wurden die Phasen 2 und 3 getrennt ausgewertet. Alle
Berechnungen erfolgten mit den „Auswahldaten“ (P2 und P3; 1. Messung). Eine
Varianzanalyse mit den in Tabelle 4-42 und 4-43 genannten Parametern ergab mit
Ausnahme für den Milchfluss in Phase 2, für beide Phasen (2,3) keinen signifikanten
Unterschied zwischen den Gruppen RRD und RDR.

Ergebnisse
128
Tab. 4-42: Mittelwerte der untersuchten Parameter in Phase 2, getrennt nach
Gruppe (1. Messung), RDR = dreieckig, RRD = rund, Auswahldaten
Gruppe n
MengeViertel [g]
x sd
LF [mS/cm]
x sd
SCC [lg]
x sd
NAGase [lg]
x sd
RDR 200 3282,05 1535,75 5,95 0,59 4,48 0,75 -0,13 0,45
RRD 200 3443,65 1487,03 5,90 0,54 4,48 0,74 -0,09 0,38
Cutimeter vorher Cutimeter Ergebnis Kuppe absolut
Gruppe n [cm] nachher [cm] Kuppe [%] [%]
x sd x sd x sd x sd
RDR 200 1,09 0,16 1,09 0,15 0,98 8,72 6,60 5,77
RRD 200 1,08 0,15 1,07 0,13 -0,01 9,05 6,85 5,90
Gruppe n
Melkzeit [min.]
Milchfluss
[ml/min.]*
Sekretionsrate
[g/h]
x sd x sd x sd
RDR 200 3,59 1,33 916,13 285,19 311,71 126,90
RRD 200 3,60 1,30 977,87 326,90 325,98 118,38
* = schwach signifikanter Unterschied (p = 0,0448)
Tab. 4-43: Mittelwerte der untersuchten Parameter in Phase 3, getrennt nach
Gruppe (1. Messung), RDR = rund, RRD = dreieckig, Auswahldaten
Gruppe n
MengeViertel [g]
x sd
LF [mS/cm]
x sd
SCC [lg]
x sd
NAGase [lg]
x sd
RDR 200 3148,30 1603,36 6,15 0,94 4,56 0,63 -0,14 0,54
RRD 200 3388,40 1752,53 6,07 0,71 4,54 0,58 -0,11 0,47
Cutimeter vorher Cutimeter Ergebnis Kuppe absolut
Gruppe n [cm] nachher [cm] Kuppe [%] [%]
x sd x sd x sd x sd
RDR 200 1,11 0,15 1,12 0,14 1,32 9,08 6,73 6,22
RRD 200 1,11 0,15 1,12 0,15 1,60 10,93 7,07 8,47
Gruppe N
Melkzeit [min.]
Milchfluss
[ml/min.]
Sekretionsrate
[g/h]
x sd x sd x sd
RDR 200 3,43 1,43 904,82 280,25 280,30 116,63
RRD 200 3,49 1,38 980,42 486,20 304,54 145,60

129
Ergebnisse
Für die Untersuchung der Zitzenkonditionsparameter mittels χ²-Homogenitätstest galt
dasselbe.
4.7.3 RRD und RDR im Vergleich zur Eutergesundheit
In einem weiteren Ansatz wurde in Phase 2 eine Einteilung in gesunde (hier: normal
sezernierende) und kranke Viertel vorgenommen und diese mit den Daten aus
Phase 3 in Verbindung gebracht. Tabelle 4-44 gibt die Einteilung der Viertel in Phase
2 und die entsprechenden Stichprobengrößen wieder.
Tab. 4-44: Anzahl der gesunden (hier: normal sezernierenden) und kranken Viertel
in Phase 2, Gruppe RRD und RDR, Auswahldaten
Gruppe
RDR
RRD
Parameter in
Phase 2
n
(Anzahl)
1 68
2 132
1 44
2 156
1 = gesund (Phasendiagnose = 1); 2 = krank (Phasendiagnose >1)
Ein Vergleich der beiden Gruppen in Bezug auf den Gesundheitsstatus (Tab. 4-45)
zeigt, dass sich der Einfluss der Gewebefestigkeit (hier als Cutimeter vorher/nachher
definiert) hauptsächlich auf die gesunden Viertel beschränkt, während die
Sekretionsrate sich nur bei erkrankten Vierteln signifikant änderte.

Ergebnisse
130
Tab. 4-45: Einfluss des Gesundheitszustandes (krank/gesund) auf die
untersuchten Parameter der Gruppen RRD und RDR, (Varianzanalyse)
Parameter gesund* krank*
MengeViertel [g] n.s. n.s.
LF [mS/cm] n.s. n.s.
SCC [lgZellen/ml] n.s. n.s.
NAGase [lgnmol * min-1 * ml-1] n.s. n.s.
Cutimeter vorher [cm] 0,0183 n.s.
Cutimeter nachher [cm] 0,0318 n.s.
Ergebnis Kuppe [%] n.s. n.s.
Kuppe absolut [%] n.s. n.s.
Melkzeit [min] n.s. n.s.
Milchfluss [ml/min.] n.s. n.s.
Sekretionsrate [g/h] n.s. 0,0186
*:1-fakt. Varianzanalyse für unabhängige Stichproben, getrennt nach Gesundheitsstatus des Viertels
in Phase 2; Fett gedruckte Werte unterscheiden sich signifikant (p < 0,05); n.s. = nicht signifikant (p >
0,05)
Tabelle 4-46 zeigt die Ergebnisse von Tab. 4-45 in einem größeren Zusammenhang,
indem das Material auch auf die Einflussgröße „Gruppe“ (RRD bzw. RDR) sowie auf
die Interaktion zwischen diesen Kriterien hin untersucht wurde. Demzufolge hat
selbstverständlich der Gesundheitszustand einen direkten Einfluss auf die
Milchmenge sowie die Entzündungsparameter, während der in Tab. 4-45
beobachtete Einfluss auf die Gewebsfestigkeit nicht direkt mit der Eutergesundheit
zusammenzuhängen scheint. Hier wurde die Signifikanz bei der Interaktion von
Eutergesundheit und verwendetem Zitzengummityp (hier als Kategorie „Gruppe“)
gefunden. Faktisch war in Gruppe RDR die Gewebefestigkeit der Zitzenspitze vor
dem Melken bei kranken Vierteln dicker als bei gesunden, während bei der Gruppe
RRD die Gewebefestigkeit bei den gesunden dicker war. Nach dem Melken zeigten
die Zitzen dieselbe Tendenz.

131
Ergebnisse
Tab. 4-46: Einfluss von Gruppe (RDR gegen RRD), Gesundheitszustand (gesund
gegen krank) und Wechselwirkung von Gruppe und Gesundheitsstatus
auf die Parameter (Varianzanalyse)
Parameter Gruppe* Gesundheitsstatus* Wechselwirkung*
MengeViertel [g] n.s. 0,0378 n.s.
LF [mS/cm] n.s. 0,0006 n.s.
SCC [lgZellen/ml] n.s. < 0,0001 n.s.
NAGase [lgnmol * min-1 * ml-1] n.s. 0,0007 n.s.
Cutimeter vorher [cm] n.s. n.s. 0,0092
Cutimeter nachher [cm] n.s. n.s. 0,0199
Ergebnis Kuppe [%] n.s. n.s. n.s.
Kuppe absolut [%] n.s. n.s. n.s.
Melkzeit [min] n.s. 0,0010 n.s.
Milchfluss [ml/min.] n.s. n.s. n.s.
Sekretionsrate [g/h] 0,0489 < 0,0001 n.s.
*:2-fakt. Varianzanalyse für unabhängige Stichproben; Fett gedruckte Werte unterscheiden sich
signifikant (p < 0,05), Gesundheitsstatus: gesund oder krank in Phase 2; n.s. = nicht signifikant (p >
0,05)
4.7.4 RRD und RDR im Vergleich zu Versuchsphase und Laktationsstadium
Ein Vergleich von runden und dreieckigen Zitzengummis (Auswahldaten) zeigt, dass
die Zitzengummiform keinen Einfluss auf die untersuchten Parameter hat. Die Phase
nimmt dagegen signifikanten Einfluss auf die Parameter (Tab. 4-47).
Tab. 4-47: Einfluss von Zitzengummiform und Phase auf die Parameter (n = 800)
Parameter Zitzengummiform* Phase*
MengeViertel [g] n.s. n.s.
LF [mS/cm] n.s. 0,0002
SCC [lgZellen/ml] n.s. n.s.
NAGase [lgnmol * min-1 * ml-1] n.s. n.s.
Cutimeter vorher [cm] n.s. 0,0173
Cutimeter nachher [cm] n.s. 0,0002
Ergebnis Kuppe [%] n.s. n.s.
Kuppe absolut [%] n.s. n.s.
Melkzeit [min] n.s. n.s.
Milchfluss [ml/min.] n.s. n.s.
Sekretionsrate [g/h] n.s. 0,0035
*:1-fakt. Varianzanalyse für unabhängige Stichproben; Fett gedruckte Werte unterscheiden sich
signifikant (p < 0,05); n.s. = nicht signifikant (p > 0,05)

Ergebnisse
132
Um das Laktationsstadium als möglichen Einflussfaktor zu untersuchen, wurde
zusätzlich ein χ²-Homogenitätstest durchgeführt. Das Laktationsstadium hatte
signifikanten (p < 0,0001) Einfluss, da der χ²-Homogenitätstest eine ungleichmäßige
Verteilung der Laktationsstadien auf die verschiedenen Phasen zeigte. Auch die
Zitzenkonditonsmerkmale zeigten keine signifikanten Unterschiede in der Verteilung
der Merkmale zwischen rund und eckig (χ²-Homogenitätstest).
Ein Vergleich der Phasenwechsel für jede Gruppe ist den Tabellen 4-48 und 4-49 zu
entnehmen (Auswahldaten).
Tab. 4-48: Vergleich des Wechsels von Phase 2 zu Phase 3, Gruppe RRD,
Auswahldaten, (n = 400)
MengeViertel [g] LF [mS/cm]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 200 3443,65 1487,03 A 5,90 0,54 B
3 200 3388,40 1752,53 A 6,07 0,71 A
SCC [lg] NAGase [lg]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 200 4,48 0,74 A -0,09 0,38 A
3 200 4,54 0,57 A -0,11 0,47 A
Cutimeter vorher [cm] Cutimeter nachher [cm]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 200 1,08 0,15 B 1,07 0,13 B
3 200 1,11 0,15 A 1,12 0,15 A
Ergebnis Kuppe [%] Kuppe absolut [%]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 200 -0,01 9,05 A 6,85 5,90 A
3 200 1,60 10,93 A 7,07 8,47 A
Melkzeit [min.] Milchfluss [ml/min.]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 200 3,60 1,30 A 977,87 326,99 A
3 200 3,49 1,38 A 980,42 486,20 A
Sekretionsrate [g/h]
Phase n x sd Sign.*
2 200 325,98 118,38 A
3 200 304,54 145,60 A
*:Tukey´s Studentized Range Test; unterschiedliche Buchstaben unterscheiden sich signifikant (p <
0,05) = dreieckig; n = Anzahl; x = Mittelwert; sd = Standardabweichung

133
Ergebnisse
Bei Gruppe RRD variierten nur die Leitfähigkeit (p = 0,0049) und die
Gewebefestigkeit vor (p = 0,0306) und nach (p = 0,0002) dem Melken signifikant in
Abhängigkeit von der Versuchsphase; bei Gruppe RDR waren es ebenfalls die
Leitfähigkeit (p = 0,0100), aber auch die Sekretionsrate (p = 0,0103; Tab. 4-49).
Tab. 4-49: Vergleich des Wechsels von Phase 2 zu Phase 3, Gruppe RDR,
Auswahldaten, (n = 400)
MengeViertel [g] LF [mS/cm]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 200 3282,05 1535,75 A 5,95 0,59 B
3 200 3148,30 1603,36 A 6,15 0,94 A
SCC [lg] NAGase [lg]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 200 4,48 0,75 A -0,13 0,45 A
3 200 4,56 0,63 A -0,14 0,54 A
Cutimeter vorher [cm] Cutimeter nachher [cm]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 200 1,09 0,16 A 1,09 0,15 A
3 200 1,11 0,15 A 1,12 0,14 A
Ergebnis Kuppe [%] Kuppe absolut [%]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 200 0,98 8,72 A 6,60 5,77 A
3 200 1,32 9,08 A 6,73 6,22 A
Melkzeit [min.] Milchfluss [ml/min.]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 200 3,59 1,33 A 616,13 285,19 A
3 200 3,43 1,43 A 904,82 280,25 A
Sekretionsrate [g/h]
Phase n x sd Sign.*
2 200 311,72 126,90 A
3 200 280,30 116,63 B
*:Tukey´s Studentized Range Test; unterschiedliche Buchstaben unterscheiden sich signifikant (p <
0,05) = dreieckig; n = Anzahl; x = Mittelwert; sd = Standardabweichung

Ergebnisse
134
Der χ²-Homogenitätstest zeigte signifikante Unterschiede zwischen Phase 2 und 3 in
den einzelnen Gruppen für die Zitzenkonditionsparameter (Tab. 4-50).
Tab. 4-50: χ²-Homogenitätstest, Vergleich der Verteilung von
Zitzenkonditionsparameter in Phase 2 und Phase 3
Gruppe
Parameter RRD Phase 2/ Phase 3
(n=200/200)*
RDR Phase 2/Phase 3
(n=200/200)*
Spitze1 p = 0,0025 p = 0,0045
Schaft1 p < 0,0001 p < 0,0001
Spitze2 p = 0,0664 p = 0,1861
Spitze feucht trocken p = 0,0357 p = 0,2299
Schaft Farbe p = 0,6111 p = 0,1310
Schaft Form p = 0,0046 p = 0,0074
* χ ²-Homogenitätstest, fett gedruckte Werte sind signifikant
Die Abbildungen 4-37 bis 4-43 stellen, getrennt nach Gruppen, die Verteilungen der
einzelnen Zitzenkonditionsparameter im Vergleich von Phase 2 zu Phase 3 dar.
Anteil [%]
100
90
80
70
60
50
40
30
20
10
0
glattes Zitzenende
Ringbildung an Zitzenkanalöffnung
starke Ringbildung
rauer Ring mit Hyperkeratose
sehr rauer Ring mit starker Hyperkeratose
offene Stellen, Blutungen
Phase 2 Phase 3
Abb. 4-37: Parameter: Spitze1, Gruppe RRD, n = 200/200 (Phase2/Phase3)

Anteil [%]
100
90
80
70
60
50
40
30
20
10
0
135
Haut weich, ohne Schuppen und Risse
wenige Schuppen
Haut gerissen
Haut gerissen und aufgeraut
Haut geschädigt, offene Läsionen
Phase 2 Phase 3
Abb. 4-38: Parameter: Schaft1, Gruppe RRD, n = 200/200 (Phase2/Phase3)
Anteil [%]
100
90
80
70
60
50
40
30
20
10
0
feucht
trocken
Phase 2 Phase 3
Ergebnisse
Abb. 4-39: Parameter: Spitze trocken feucht, Gruppe RRD, n = 200/200
(Phase2/Phase3)

Ergebnisse
Anteil [%]
100
90
80
70
60
50
40
30
20
10
0
136
normal Einschnürung Ringwulst
Phase 2 Phase 3
Abb. 4-40: Parameter: Schaft Form, Gruppe RRD, n = 200/200 (Phase2/Phase3)
Anteil [%]
100
90
80
70
60
50
40
30
20
10
0
glattes Zitzenende
Ringbildung an Zitzenkanalöffnung
starke Ringbildung
rauer Ring mit Hyperkeratose
sehr rauer Ring mit starker Hyperkeratose
Phase 2 Phase 3
Abb. 4-41: Parameter: Spitze 1, Gruppe RDR, n = 200/200 (Phase2/Phase3)

Anteil [%]
100
90
80
70
60
50
40
30
20
10
0
137
Haut weich, ohne Schuppen und Risse
wenige Schuppen
Haut gerissen
Haut gerissen und aufgeraut
Haut geschädigt, offene Läsionen
Phase 2 Phase 3
Abb. 4-42: Parameter: Schaft1, Gruppe RDR, n = 200/200 (Phase2/Phase3)
Anteil [%]
100
80
60
40
20
0
normal Einschnürung
Ringbildung
Phase 2 Phase 3
Ergebnisse
Abb. 4-43: Parameter: Schaft Form, Gruppe RDR, n = 200/200 (Phase2/Phase3)

Ergebnisse
4.8 Referenzgruppe
138
Um den Einfluss von Zitzengummiform und –wechsel auf normal sezernierende
Viertel zu untersuchen, wurde eine Referenzgruppe gebildet. Diese bestand aus
insgesamt zwölf verschiedenen Vierteln, die während des gesamten
Beprobungszeitraums gesund (alle drei Phasendiagnosen bakteriologisch negativ;
weniger als 100.000 Zellen/ ml Milch) waren (Gruppe RDR 7 verschiedene Viertel,
Gruppe RRD 5 verschiedene Viertel).
Als Erstes wurden runde und dreieckige Zitzengummis gegenübergestellt. Ein
Vergleich von Vierteln mit runden und dreieckigen Zitzengummis während Phase 2
und 3 ergab weder für die in Tabelle 4-51 genannten Parameter (Varianzanalyse)
noch für die Zitzenkonditionsmerkmale (χ²-Homogenitätstest) signifikante
Unterschiede.
Tab. 4-51: Mittelwerte und Standardabweichungen von runden und dreieckigen
Zitzengummis (n = 203)
Zitzen- MengeViertel [g] LF [mS/cm] SCC [lg] NAGase [lg]
gummiform
n
x sd x sd x sd x sd
1 101 3231,48 1220,34 5,85 0,43 4,12 0,29 -0,25 0,39
2 102 3130,88 1338,42 5,82 0,47 4,08 0,32 -0,27 0,35
Zitzen- Cutimeter vorher Cutimeter Ergebnis Kuppe Kuppe
gummi n [cm] nachher [cm] [%] absolut [%]
form
x sd x sd x sd x sd
1 101 1,04 0,16 1,05 0,14 1,40 9,51 7,40 6,10
2 102 1,05 0,17 1,06 0,16 2,26 9,06 7,26 5,83
Zitzengummi
n
Melkzeit [min.]
Milchfluss
[ml/min.]
Sekretionsrate
[g/h]
form
x sd x sd x sd
1 101 3,84 1,21 833,32 145,96 335,30 109,79
2 102 3,80 1,36 819,39 213,06 321,62 121,20
1= rund, 2= eckig

139
Ergebnisse
Mit Hilfe einer Varianzanlyse wurden verschiedene Einflussfaktoren auf die
genannten Parameter untersucht. Aus Tabelle 4-52 lässt sich erkennen, dass die
Zitzengummiform keinen Einfluss auf die Parameter hatte, ganz im Gegensatz zum
Einfluss der Viertelposition.
Tab. 4-52: Einfluss von Zitzengummiform und Phase auf die Parameter (n = 203)
Parameter Ziguform* Phase* Viertel* Wechselwirkung*
MengeViertel [g] n.s. n.s.

Ergebnisse
140
Tab. 4-53: Mittelwerte und Standardabweichungen getrennt nach Phasen (n = 203)
MengeViertel [g] LF [mS/cm]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 106 3230,09 1168,73 A 5,81 0,45 A
3 97 3127,22 1393,46 A 5,86 0,45 A
SCC [lg] NAGase [lg]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 106 4,08 0,33 A -0,31 0,39 B
3 97 4,11 0,28 A -0,20 0,34 A
Cutimeter vorher [cm] Cutimeter nachher [cm]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 106 1,03 0,17 A 1,04 0,14 A
3 97 1,06 0,16 A 1,07 0,15 A
Ergebnis Kuppe [%] Kuppe absolut [%]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 106 1,69 9,45 A 7,71 5,67 A
3 97 1,99 9,13 A 6,92 6,25 A
Melkzeit [min.] Milchfluss [ml/min.]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 106 3,86 1,21 A 843,86 188,9 A
3 97 3,77 1,36 A 807,16 174,10 A
Sekretionsrate [g/h]
Phase n x sd Sign.*
2 106 345,00 100,19 A
3 97 310,33 128,44 B
*:Tukey´s Studentized Range Test; unterschiedliche Buchstaben unterscheiden sich signifikant (p <
0,05); n = Anzahl; x = Mittelwert; sd = Standardabweichung
Ein Vergleich der Phasenwechsel (Phase 2 zu Phase 3) für jede Gruppe getrennt
zeigte keine signifikanten Unterschiede (Tab. 4-54 und Tab. 4-55).

141
Tab. 4-54: Vergleich Phase 2 und 3 der Gruppe RDR
Ergebnisse
MengeViertel [g] LF [mS/cm]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 63 2861,11 952,51 A 5,82 0,47 A
3 58 2831,72 1035,54 A 5,89 0,42 A
SCC [lg] NAGase [lg]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 63 4,14 0,35 A -0,33 0,34 A
3 58 4,21 0,27 A -0,23 0,34 A
Cutimeter vorher [cm] Cutimeter nachher [cm]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 63 0,99 0,13 A 1,01 0,11 A
3 58 1,00 0,10 A 1,02 0,10 A
Ergebnis Kuppe [%] Kuppe absolut [%]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 63 2,73 8,37 A 7,07 5,17 A
3 58 2,32 8,44 A 6,47 5,84 A
Melkzeit [min.] Milchfluss [ml/min.]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 63 3,55 1,20 A 829,66 219,18 A
3 58 3,48 1,17 A 810,09 152,16 A
Sekretionsrate [g/h]
Phase n x sd Sign.*
2 63 305,43 66,80 A
3 58 285,14 75,92 A
*:Tukey´s Studentized Range Test; unterschiedliche Buchstaben unterscheiden sich signifikant (p <
0,05) = dreieckig; n = Anzahl; x = Mittelwert; sd = Standardabweichung

Ergebnisse
142
Tab. 4-55: Vergleich Phase 2 und 3 der Gruppe RRD
MengeViertel [g] LF [mS/cm]
Phase N x sd Sign.* x sd Sign.*
2 43 3770,70 1253,83 A 5,81 0,43 A
3 39 3566,67 1722,04 A 5,81 0,48 A
SCC [lg] NAGase [lg]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 43 3,99 0,27 A -0,27 0,48 A
3 39 3,98 0,24 A -0,16 0,33 A
Cutimeter vorher [cm] Cutimeter nachher [cm]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 43 1,09 0,20 A 1,08 0,17 A
3 39 1,14 0,19 A 1,15 0,18 A
Ergebnis Kuppe [%] Kuppe absolut [%]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 43 0,15 10,77 A 8,54 6,28 A
3 39 1,49 10,16 A 7,57 6,83 A
Melkzeit [min.] Milchfluss [ml/min.]
Phase n x sd Sign.* x sd Sign.*
2 43 4,31 1,10 A 864,67 132,48 A
3 39 4,21 1,52 A 802,80 204,49 A
Sekretionsrate [g/h]
Phase n x sd Sign.*
2 43 402,96 112,77 A
3 39 347,78 175,00 A
*:Tukey´s Studentized Range Test; unterschiedliche Buchstaben unterscheiden sich signifikant (p <
0,05) = dreieckig; n = Anzahl; x = Mittelwert; sd = Standardabweichung
Im χ²-Homogenitätstest waren für beide Gruppen keine signifikanten Unterschiede in
der Verteilung der Zitzenkonditionsmerkmale bei einem Wechsel von Phase 2 zu
Phase 3 feststellbar.
Da das Tier selbst immer einen starken individuellen Einfluss hatte, war der Faktor
Tier in allen Modellen erwartungsgemäß signifikant. Ein Vergleich der verschiedenen
Kühe in den beiden Gruppen zeigte signifikante Unterschiede (Tab. 4-56; 5-57).

143
Ergebnisse
Tab. 4-56: Varianzanalyse: getrennt nach Kuh-Nummer, Gruppe RDR, n = 121
MengeViertel [g] LF [mS/cm]
Kuh n x sd Sign.* x sd Sign.*
664 42 2582,62 643,25 B 5,75 0,35 BDC
666 11 3936,36 857,70 A 5,55 0,39 D
675 16 3734,38 904,40 A 5,95 0,32 BAC
679 18 2996,11 580,20 CB 5,59 0,41 DC
685 17 3438,24 832,69 A 6,09 0,33 BA
690 17 1864,47 740,99 C 6,22 0,57 A
SCC [lg] NAGase [lg]
Kuh n x sd Sign.* x sd Sign.*
664 42 4,32 0,18 A -0,41 0,24 B
666 11 3,80 0,47 B -0,02 0,12 A
675 16 4,11 0,22 A -0,33 0,16 B
679 18 4,09 0,42 A -0,29 0,28 B
685 17 4,18 0,17 A -0,53 0,48 B
690 17 4,20 0,31 A 0,17 0,17 A
Cutimeter vorher [cm] Cutimeter nachher [cm]
Kuh n x sd Sign.* x sd Sign.*
664 42 0,94 0,07 DC 0,99 0,08 CB
666 11 1,07 0,07 BA 1,02 0,07 B
675 16 1,10 0,09 A 1,12 0,07 A
679 18 0,99 0,08 BC 1,01 0,07 B
685 17 0,88 0,08 D 0,92 0,07 C
690 17 1,12 0,11 A 1,12 0,11 A
Ergebnis Kuppe [%] Kuppe absolut [%]
Kuh n x sd Sign.* x sd Sign.*
664 42 5,26 6,34 A 6,37 5,18 A
666 11 -5,05 6,76 B 6,17 5,64 A
675 16 1,57 6,00 BA 4,50 4,12 A
679 18 1,71 9,94 BA 7,54 6,45 A
685 17 4,78 9,93 A 9,33 5,51 A
690 17 0,25 9,23 BA 7,01 5,75 A
Melkzeit [min.] Milchfluss [ml/min.]
Kuh n x sd Sign.* x sd Sign.*
664 42 3,10 0,74 B 840,93 142,15 CB
666 11 4,46 1,01 A 885,24 71,28 B
675 16 5,15 1,26 A 734,50 133,43 CD
679 18 3,40 0,68 B 707,69 119,68 CD
685 17 3,27 0,96 B 1069,57 127,18 A
690 17 2,76 1,05 B 677,58 230,35 D
Sekretionsrate [g/h]
Kuh n x sd Sign.*
664 42 385,67 39,71 B
666 11 290,98 49,70 B
675 16 381,26 37,11 A
679 18 256,94 37,64 CB
685 17 356,77 63,48 A
690 17 223,03 85,60 C

Ergebnisse
Tab. 4-57: Varianzanalyse: getrennt nach Kuh-Nummer, Gruppe RRD, n = 82
144
MengeViertel [g] LF [mS/cm]
Kuh n x sd Sign.* x sd Sign.*
616 15 2864,00 744,04 B 5,61 0,34 B
642 16 4085,63 909,83 A 5,77 0,36 BA
672 17 4877,06 1717,44 A 5,53 0,30 B
685 17 4129,41 1136,70 A 6,05 0,42 A
690 17 2341,18 1136,01 B 6,07 0,53 A
SCC [lg] NAGase [lg]
Kuh n x sd Sign.* x sd Sign.*
616 15 3,92 0,21 A -0,08 0,10 BA
642 16 3,93 0,27 A -0,47 0,45 C
672 17 3,95 0,24 A -0,19 0,23 BC
685 17 4,14 0,22 A -0,49 0,45 C
690 17 3,98 0,28 A 0,15 0,21 A
Cutimeter vorher [cm] Cutimeter nachher [cm]
Kuh n x sd Sign.* x sd Sign.*
616 15 1,37 0,12 A 1,36 0,12 A
642 16 0,97 0,09 C 1,00 0,12 C
672 17 1,17 0,13 B 1,16 0,09 B
685 17 0,89 0,10 C 0,91 0,07 C
690 17 1,18 0,09 B 1,16 0,08 B
Ergebnis Kuppe [%] Kuppe absolut [%]
Kuh n x sd Sign.* x sd Sign.*
616 15 -0,55 6,97 A 5,63 3,87 A
642 16 3,37 12,76 A 9,89 8,40 A
672 17 -3,33 9,29 A 7,35 5,39 A
685 17 3,23 13,47 A 11,49 7,22 A
690 17 -1,78 8,13 A 6,13 5,44 A
Melkzeit [min.] Milchfluss [ml/min.]
Kuh n x sd Sign.* x sd Sign.*
616 15 3,60 0,58 B 787,83 130,69 C
642 16 5,02 0,86 A 807,85 70,53 BC
672 17 5,05 1,55 A 935,27 164,33 BA
685 17 4,26 0,83 BA 958,98 133,29 A
690 17 3,34 1,42 B 679,08 173,88 C
Sekretionsrate [g/h]
Kuh n x sd Sign.*
616 15 235,71 47,15 C
642 16 395,95 35,91 B
672 17 523,15 163,08 A
685 17 430,23 93,49 BA
690 17 283,10 131,79 C
Es wird deutlich, dass sowohl in Gruppe RRD als auch in RDR der Parameter
„Kuppe absolut“ nie signifikante Unterschiede aufwies.

5 Diskussion
145
Diskussion
Dem Zitzengummi kommt eine besondere Bedeutung zu, weil es das direkte
Bindeglied zwischen Tier und Maschine ist. Aufgrund einer ständigen
Weiterentwicklung gibt es Zitzengummis aus verschiedenen Materialien und Formen.
Hersteller von dreieckigen Zitzengummis berichten, dass durch deren Einsatz die
Milchleistung erhöht wird. Außerdem soll die Zitze gleichmäßiger komprimiert
werden, sodass beim Kollabieren der Zitzengummis eine geringere Belastung der
Zitzen stattfindet (www.zitzengummis-billiger.de 3 ). Auch NOORLANDER und
HECKMANN (1982) stellen fest, dass dreieckige Zitzengummis die Kraft reduzieren,
die während der Massagephase auf die Zitze wirkt. KOCHMAN und LANEY (2009)
stellten fest, dass sogenannte „multi-sided“ Zitzengummis für eine bessere
Zitzenkondition sorgen als runde.
Der Einsatz von automatischen Melksystemen kann nicht nur zu einer
Arbeitserleichterung im Bereich der Milchproduktion führen, sondern soll auch den
Leistungs- und Gesundheitsstatus der Milchkuh und der Milchqualität verbessern
(HAMANN 2001). AMS sollen keinen negativen Einfluss auf die Eutergesundheit und
Zitzengewebskondition haben (CASIRANI et al. 2002).
In einem automatischen Melksystem werden durch häufigeres Melken
Mastitiserreger eliminiert (RASMUSSEN et al. 2001a). Auch WENDT (2000) sieht bei
2- bis 3-maligem Melken keine Schadwirkung für das Euter, wenn die
Zwischenmelkzeiten etwa gleichmäßig verteilt sind. Eine Gefährdung der
Eutergesundheit aufgrund häufigeren Melkens im AMS liegt vor, wenn die Zitzen
unsauber sind, die Melkzeugzwischendesinfektion fehlt sowie euterkranke und
gesunde Kühe mit gleichem Melkzeug gemolken werden.
Aus diesen Gründen ist eine Verbesserung der Eutergesundheit durch den Einsatz
dreieckiger Zitzengummis denkbar.
3 Auf www.zitzengummis-billiger.de wird unter dem Untermenü „Impulse-Zitzengummis“ der
Pulsationsunterschied zwischen runden und dreieckigen Zitzengummis anhand einer Animation
dargestellt.

Diskussion
146
Das Versuchsdesign brachte es mit sich, eine Vielzahl von Parametern
(parametrische und nicht-parametrische) unter Berücksichtung einer großen Anzahl
von Bewertungskriterien (Zitzengummityp, Versuchsphase, Eutergesundheitsstatus,
Laktationsabschnitt etc.) zu bewerten. Die umfangreiche Auswertung dieser Daten
unter Verwendung verschiedener Rechenmodelle steht stellvertretend für den
Wunsch, der Komplexität der Problematik Rechnung zu tragen. Dem steht die
Tatsache gegenüber, dass zwar laktationsphysiologische und pathologische Kriterien
nach wie vor die Ausprägung der untersuchten Parameter maßgeblich beeinflussten,
der Einfluss des Zitzengummityps allerdings eher gering einzuschätzen ist. Die
folgende Diskussion soll diese Ergebnisse bewerten und die Möglichkeiten und
Chancen, die die Verwendung von runden und dreieckigen Zitzengummis bietet,
darlegen.
5.1 Material und Methoden
Die Verwendung unsteriler Kunststoffflaschen für die Zellzahlprobe geschah aus
Praktikabilitätsgründen, da dieser Parameter außerhalb des Institutes bestimmt
wurde und die Kunststoffflaschen für eine zügige Messung vonnöten waren. Faktisch
ändert sich der Gehalt somatischer Zellen nach dem Abmelken des Vorgemelks über
200 ml nicht (SCHWESIG 2003), so dass Bakteriologie- und Zytologiebefunde, die
herkömmlicherweise aus derselben Probe bestimmt werden, auch hier in einem
Zusammenhang gebracht werden konnten.
5.2 Beschreibung der Herde
Aufgrund von Abgängen und Neuzugängen waren im Hauptversuch die Tiere im
Schnitt etwas jünger als im Vorversuch, was sich aber nicht auf den Versuchsablauf
auswirkte; im Schnitt waren die Tiere 3,5 Jahre alt. Die Tiere befanden sich in der
mittleren Laktation und es ergaben sich für beide Versuchszeiträume eine

147
Diskussion
vergleichbare Anzahl von Laktationen (Tab. 4-3). Es wurde deutlich, dass Ab- und
Zugänge keinen Einfluss hatten und dass alle Tiere dieselben
Grundvoraussetzungen zeigten.
Ideale Euter- und Zitzenform sind maßgebliche Grundvoraussetzungen für eine
optimale Milchqualität und Milchmenge (SEYKORA u. MCDANIEL 1985). Ca. 90 %
der untersuchten Tiere zeigten das gewünschte Bauch-Schenkeleuter und bei ca. 80
% der Zitzen lag ebenfalls die erwünschte Form vor.
Sowohl kurze als auch lange Zitzen zeigen eine erhöhte Anfälligkeit für das Auftreten
von Hyperkeratosen, da die effektive Massagewirkung des Zitzengummis bei
unterschiedlich langen Zitzen variiert. (HAMANN et al. 1994c).
Es wurde ein vermehrtes Auftreten von Mastitis bei spitzen, flachen und
eingezogenen Zitzenkuppen beobachtet (SEYKORA u. MCDANIEL 1985;
NEIJENHUIS et al. 2001a).
5.3 Beschreibung der Melkparameter
Die variierende Teilnahme der Kühe, bedingt durch die unterschiedlichen
Melkfrequenzen, Melkintervalle, Ab- und Neuzugänge, erwies sich als Schwierigkeit.
Um diese Schwankungen bewerten zu können, wurden verschiedene Tiergruppen
gebildet (Auswahldaten, Auswahldaten1), siehe Kapitel 3.2.3.5.
Melkfrequenz/ Melkintervall
Durch eine Verkürzung des Melkintervalls wird automatisch die Melkfrequenz erhöht.
Häufigeres Melken soll in Zusammenhang mit einer Steigerung der Milchleistung
(NEIJENHUIS u. HILLERTON 2003) und einer Verbesserung der Eutergesundheit
durch Ausschwemmung euterpathogener Erreger aus dem Zitzenkanal stehen.
Allerdings kann eine gesteigerte Melkfrequenz auch zu einer erhöhten Belastung des
Zitzengewebes führen, welche sich negativ auf die Zitzenkondition auswirkt
(HAMANN u. OSTERAS 1994; RASMUSSEN et al. 2001a).

Diskussion
148
Im Schnitt ergaben sich für die Versuchstage 2,24 Melkungen pro Tag bei einem
Melkintervall von durchschnittlich 10,51 Stunden (Tab. 4-5). Die Anzahl der
Melkungen war an den Versuchsterminen aufgrund der manuellen Probenentnahme
um 22 Melkungen pro Tag geringer als im Routinebetrieb, obwohl die
Versuchsarbeiten rasch erledigt wurden. REINECKE (2002), HALM (2003) und
SCHRIDDE (2006) stellten ebenfalls weniger Melkungen an den Versuchstagen fest.
Hier lag die Melkfrequenz an den Versuchstagen in einem Bereich von 2,60-2,72 und
im normalen Melkalltag zwischen 2,74 und 2,86 Melkungen pro Kuh und Tag.
Eine Erklärung für die unterschiedlichen Melkfrequenzen könnte das sicherere
manuelle Ansetzen der Melkbecher während der Probennahmen sein. Außerdem
erlangen die Kühe dann erst nach Ablauf der Mindestzwischenmelkzeit wieder ein
Melkanrecht.
Melkdauer
Aufgrund unterschiedlicher Melkeigenschaften der Einzeltiere traten Schwankungen
in der Melkdauer auf. Die Einzelbecherabnahme auf Viertelebene erlaubte eine
individuelle Messung der Melkdauer für jedes Viertel. In der hier vorliegenden Studie
wiesen die hinteren Viertel mit durchschnittlich 3,8 min. eine signifikant längere
Melkzeit auf als die Vorderviertel, durchschnittlich 3,0 min. (siehe Kapitel 4.2.3). Auch
RITTERSHAUS et al. (2002), ORDLOFF (2002) und WEISS et al. (2004) stellten in
jedem Viertel eine differierende Melkdauer fest, wobei die hinteren Viertel länger
gemolken wurden als die vorderen. Da die Vorderviertel eine um 30 - 40 % geringere
Milchproduktion aufweisen, werden sie ca. 15 % kürzer gemolken als die hinteren
Viertel (MEIN et al. 1973b). SCHÖNE et al. (1994) sehen den Grund für diese
signifikanten Unterschiede in einer vermehrten Blutversorgung der Hinterviertel.
Mit zunehmender Melkfrequenz nahm die durchschnittliche Gemelksdauer in dieser
Studie ab. Auch VAN DER IEST und HILLERTON (1989) stellten eine geringere
Melkzeit mit steigender Melkfrequenz fest. Dadurch werden die Zitzen weniger
belastet und die physikalische Barriere, über die Bakterien eindringen können, wird

149
Diskussion
nicht beschädigt. IPEMA und BENDERS (1992), NEIJENHUIS und HILLERTON
(2003) und SCHRIDDE (2006) allerdings beobachteten einen Anstieg der
Gemelksdauer bei steigender Melkfrequenz. Mit steigender Melkfrequenz erhöht sich
der Stress für die Zitzen, weshalb mehr Aufmerksamkeit einer guten Melktechnik
gewidmet werden sollte (IPEMA u. BENDERS 1992).
Das Laktationsstadium hat einen Einfluss auf die Sekretionsrate; mit
fortgeschrittenem Laktationsstadium sammelt sich weniger Milch in den Alveolen und
Milchgängen, wodurch die Leistung sinkt und sich die Melkdauer verkürzt (HUTH
1995). Auch in dieser Studie konnte eine verkürzte Melkdauer mit zunehmendem
Laktationsstadium gezeigt werden (Abb. 4-5).
Melkintervall und Laktationsstadium haben großen Einfluss auf die Sekretionsrate
(BACH u. BUSTO 2005). WEISS und BRUCKMAIER (2002) sowie HALM (2003)
beobachteten einen Rückgang der Sekretionsrate mit steigendem Melkintervall. Auch
in dieser Studie zeigten Laktationsstadium und Melkintervall einen signifikanten
Einfluss auf die Sekretionsrate. Mit steigendem Melkintervall und Laktationsstadium
nahm die Sekretionsrate ab.
Es ist davon auszugehen, dass der lokale Regulationsmechanismus „feedback
inhibitor of lactation“ (FIL) auf die sekretorischen Zellen einwirkt. Dieses Protein
reguliert die sekretorische Aktivität über eine negative Rückkopplung (HENDERSON
u. PAEKER 1984; WILDE et al. 1987; WILDE u. PEAKER 1990). Mit größer
werdendem Melkabstand steigt seine Wirksamkeit.
5.4. Eutergesundheit
Ergebnisse zum Einfluss des automatischen Melksystems auf die Eutergesundheit
sind unterschiedlich. Einige Autoren berichten von einer Verschlechterung der
Eutergesundheit aufgrund von erhöhten Zellzahlen (KNAPPSTEIN et al. 2002;
REINHOLD u. HILDEBRANDT 2002). In anderen Untersuchungen stellt sich eine

Diskussion
150
Verbesserung des Eutergesundheitsstatus dar (SVENNERSTEN-SJAUNJA et al.
2000; HILLERTON et al. 2004b). In dieser Studie wies die Eutergesundheit ein
zufriedenstellendes Ergebnis auf; ca. 80 % der Viertel zeigten sowohl im Vor- als
auch Hauptversuch, eine Zellzahl < 100.000 / ml Milch.
Elektrische Leitfähigkeit (LF), NAGase-Aktivität (NAG) und Anzahl somatischer
Zellen (SCC) sind Eutergesundheitsparameter. NAGase ist ein sensibler Marker für
eine Inflammation, wenn die Zellzahlgehalte niedrig sind (CASIRANI et al. 2002).
Während die Zellzahl unter den Bedingungen einer normalen Sekretion ansteigen
kann (z.B. durch Stress, Weideaustrieb), bleibt die NAGase-Aktivität unverändert
(STELWAGEN u. LACY-HULBERT 1996).
Während einer Euterentzündung gelangen, aufgrund einer Schädigung der Blut-
Euter-Schranke, vermehrt Natrium- und Chlorid-Ionen in die Milch, woraufhin die
Leitfähigkeit ansteigt (HAMANN u. ZECCONI 1998). Allerdings kann die elektrische
Leitfähigkeit durch physiologische Faktoren (Laktationsstadium, Fütterung,
Melkintervall) stark beeinflusst werden, sodass es allein auf der Grundlage von
Befunden der elektrischen Leitfähigkeit nicht möglich ist, an Mastitis erkrankte Viertel
zu identifizieren (HAMANN 1986; HAMANN u. ZECCONI 1998).
NAGase-Aktivität, Zellzahl und Leitfähigkeit lagen in dieser Studie auf niedrigem
physiologischem Niveau.
Auch SVENNERSTEN-SJAUNJA et al. (2000) und BERGLUND et al. (2002) stellten
fest, dass die Zellzahl in einem VMS auf niedrigem physiologischem Niveau lag.
Nach Einteilung in Eutergesundheitskategorien wurden Werte für die höchste
Leitfähigkeit und NAGase-Aktivität beim Auftreten unspezifischer Mastitiden ermittelt,
während die Anzahl somatischer Zellen beim Vorliegen von Mastitiden Maximalwerte
zeigte.
Der Milchfluss von Eutervierteln mit unspezifischer Mastitis war in dieser Studie
signifikant niedriger als bei gesunden Vierteln (Tab. 4-13). KÖHLER und

151
Diskussion
KAUFMANN (2003) stellten dagegen einen erhöhten Milchfluss in erkrankten
Eutervierteln fest.
Während des Hauptversuchs zeigten sich 45,95 % der untersuchten Viertel
bakteriologisch positiv. Die dominierenden Erreger waren Corynebacterium spp. und
KNS. Auffällig war, dass beim Einsatz von runden Zitzengummis der Anteil an
Corynebakterien größer war als bei dreieckigen Zitzengummis. Allerdings war dieser
Unterschied nur in Phase 2 signifikant. Die Verteilung der KNS verhielt sich genau
umgekehrt, hier zeigte nur Phase 3 signifikante Unterschiede. Zusammenfassend
kann gesagt werden, dass der Anteil an Corynebacterium spp. im Verlauf des
Versuchs zunahm und der Anteil an KNS zurückging.
Die Untersuchungen von REINECKE (2002) und HALM (2003) zeigten denselben
Verlauf von Corynebacterium spp. und KNS.
Die Rolle der KNS in der Eutergesundheit wird weiterhin diskutiert. Einerseits werden
sie als opportunistische Keime geringer Pathogenität angesehen, welche eine
tierärztliche Behandlung nicht erfordern (DE KRUIF et al. 1998). Außerdem sollen sie
vor Infektionen mit stärker pathogenen Erregern schützen (MATTHEWS et al. 1991;
NICKERSON u. BODDIE 1994). Andererseits werden sie mittlerweile als reguläre
Mastitiserreger identifiziert (SCHUMANN u. MERCK 1999).
Corynebakterien stammen vornehmlich von der Euterhaut und daher kommt der
Reinigung des Euters bzw. der Zitzen vor dem Melken eine besondere Bedeutung
zu. Da der eingesetzte Melkroboter nicht zwischen verschiedenen
Verschmutzungsgraden unterscheiden kann, kann sich dies begünstigend auf eine
Infektion mit Corynebakterien auswirken.
Ein hoher Anteil an Corynebacterium bovis wird mit einer ungenügenden
Zitzendesinfektion nach dem Melken in Verbindung gebracht (BRAMLEY et al. 1976;
HONKANEN-BUZALSKI et al. 1984). Auch in dieser Studie ist solch ein
Zusammenhang denkbar. Es konnte beobachtet werden, dass der Multifunktionsarm
vor allem die hinteren Viertel unzureichend mit Dippmittel besprüht hat.

Diskussion
152
Ein gutes AMV-Management wird auf eine ausreichende Stallhygiene und eine
zufriedenstellende Zitzenreinigung und –desinfektion daher nicht verzichten können.
5.5 Zitzenkondition
In beiden Gruppen (RRD/RDR) konnte während des Versuchablaufs vor dem Melken
eine Zunahme an Ringbildungen an der Zitzenkanalöffnung und eine Abnahme an
glatten Zitzenenden beobachtet werden. Allerdings waren diese Veränderungen nur
beim Wechsel von Phase zwei zu drei signifikant. SCHRIDDE (2006) machte
ähnliche Beobachtungen bei Kühen, die mit dem automatischen Melksystem
gemolken wurden.
Hyperkeratosen sind oft eine natürliche Antwort auf das Melken (SHEARN u.
HILLERTON 1996) und können daher eine physiologische Reaktion auf den
Milchentzug und Zeichen einer erfolgreichen Zitzenmassage sein (RASMUSSEN et
al. 2004). Außerdem tragen Zitzenkanäle mit physiologischer Hyperkeratose zur
biologischen Schutzfunktion des Rindereuters bei (WENDT u. LÜDER 1991), indem
es durch die verstärkte Keratinauskleidung im Strichkanal zur Abwehr von
Krankheitserregern kommt (HAMANN et al. 1994a).
In einer gesunden Milchviehherde sollten 50 % der Zitzen ohne Veränderungen an
der Zitzenöffnung sein und 20 % der Zitzen nur leichte Veränderungen aufweisen
(SHEARN u. HILLERTON 1996). Nach SHEARN und HILLERTON (1996) war die
beprobte Milchviehherde in dieser Studie nicht gesund, da keine der beiden Gruppen
diese Bedingungen erfüllten.
Die Zitzenhaut vor dem Melken zeigte in beiden Gruppen bis zu Versuchsende eine
gleichbleibende Tendenz (60 %) an „wenig Schuppen“. Der geringe Anteil an „Haut
weich, ohne Schuppen und Risse“ (10 %) im Bereich des Zitzenschaftes könnte auf
die kalkhaltige Einstreu der Liegeboxen zurückzuführen sein. Auch SCHRIDDE
(2006) vermutete die kalkhaltige Einstreu als Ursache für eine Verschlechterung des
Zustandes der Zitzenhaut.

153
Diskussion
Nach dem Melken zeigte sich die Mehrheit der Zitzenspitzen weich. In Phase zwei
war die Mehrheit der Zitzenspitzen nach dem Melken feucht, in den anderen Phasen
hingegen überwogen trockene Zitzenspitzen.
Während des Versuchs nahm der Anteil an leicht geröteten Zitzen zu und der Anteil
an Zitzen mit „normaler“ Farbe ging leicht zurück. Veränderungen der Zitzenfarbe
gehören zu den „short-term changes“ und sind meist Zeichen für Fehler der
Melkmaschine oder des Melk-Managements. Aber auch nicht korrekt passende
Zitzengummis werden als Ursache gesehen. Weitere Untersuchungen werden
erforderlich, wenn mehr als 10 - 20 % der Kühe mit leicht geröteten Zitzen eine oder
mehrere stark gerötete bis blaue Zitzen aufweisen (MEIN et al. 2001; HILLERTON
2005).
Nach dem Melken zeigte der überwiegende Teil Einschnürungen an der Zitzenbasis.
Es konnte ein leichter Anstieg mit „normaler“ Ringbildung während des
Versuchsablaufs beobachtet werden. Nicht mehr als 10 % der Kühe sollten eine oder
mehrere Zitzen mit starken Ringbildungen haben (HILLERTON 2005).
Auffällig ist, dass bei diesen Zitzenkonditionsparametern, unabhängig von der
Zitzengummiform, in beiden Gruppen der Wechsel von Phase 2 zu Phase 3
signifikant ist. Es ist denkbar, dass der Wechsel der Zitzengummis selbst die
Zitzenkondition beeinträchtigt. WENDT (2000) beobachtete im Zeitraum des
Zitzengummiwechsel vermehrt Störungen der Milchejektion, Hyperkeratosen (>10 %)
und Entzündungen der Zitzenspitze mit folgenden Abwehrbewegungen beim Melken.
EBENDORFF und ZIESACK (1991) beobachteten bei einem Anlagenvakuum von 45
kPa signifikant geringere Ausprägungen von Zitzenbelastungssymptomen. Es ist
denkbar, dass die Einschnürungen an der Zitzenbasis sowie der steigende Anteil an
geröteten Zitzen durch den Zitzengummi selbst ausgelöst wurde, oder der Zeitfaktor
die beeinflussende Größe war, weil während des Versuchs ebenfalls ein
Anlagenvakuum von 45 kPa herrschte.
Bei ca. 85% der Zitzen konnte unabhängig von der Viertelposition nach dem Melken
eine wenig bis starke dreieckige Verformung der Zitzen festgestellt werden.

Diskussion
Gewebefestigkeit
154
Prinzipiell sollten Gewebeveränderungen durch den maschinellen Milchentzug
vermieden werden, um Neuinfektionen zu vermeiden (HAMANN 1990).
Eine große Zunahme der Zitzengewebefestigkeit nach dem Melken steht im
Zusammenhang mit einem größeren Infektionsrisiko (HAMANN u. MEIN 1996) und
einem vermehrten Auftreten von klinischer Mastitis (RONNINGEN u. REITAN
1990b). Allerdings werden sowohl Gewebefestigkeitszunahmen als auch –abnahmen
mit einer Verminderung des Abwehrpotentials und Erhöhung der Neuinfektionsrate in
Verbindung gebracht (HAMANN 1988; BRONZO et al. 1995; ZECCONI et al. 1996).
Die prozentuale Änderung der Gewebefestigkeit lag durchschnittlich bei 0,89 ± 0,68
%. Der von Zecconi et al. (1992) postulierte Grenzwert von 5 % (bei dessen
Überschreitung mit einer Verdoppelung der Neuinfektionsrate zu rechnen ist) wurde
von beiden Zitzengummitypen regelmäßig überschritten.
Um die Durchführbarkeit und Aussagekraft der Kutimetermessung zu verbessern,
empfehlen HAMANN et al. (1996), nur die dem Probennehmer zugewandten Viertel
zu messen, da es sonst schwierig sei, die Skala auf dem Kutimeter genau
abzulesen. Die Genauigkeit der Kutimetermessung ist abhängig von der
Positionierung des Kutimeters, außerdem soll vermieden werden während einer
Zitzenkontraktion zu messen (HAMANN et al. 1988).
Da der Probennehmer in einer Melkergrube mit direktem Zugang zum Euter stand,
erleichterte diese Position das Ablesen des Federkutimeters. Zitzenkontraktionen
wurden nicht berücksichtigt, da die Messung sofort nach Beendigung des
Melkvorganges erfolgte.
In der Gruppe RRD kam es durch den Milchentzug zu einer Abnahme der
Gewebefestigkeit an der Zitzenkuppe in Phase 1 (-1,54 %) und 2 (-0,48 %). In Phase
3 nahm die Gewebefestigkeit zu (+1,55 %). Für die Gruppe RDR wurden in allen drei
Phasen Zunahmen der Gewebefestigkeit um durchschnittlich 0,12 % bis 0,83 %
beobachtet. Viele andere Untersuchungen stellten ebenfalls Gewebefestigkeitszu-
und abnahmen fest. So zeigten mit breiten Zitzengummis gemolkene Zitzen generell

155
Diskussion
eine Zunahme, während schmale Zitzengummis und mit Überdruck arbeitende
Melksysteme eine Abnahme der Gewebefestigkeit verursachten, was auf eine
Reduktion des Flüssigkeitsvolumens in der Zitzenkuppe zurückzuführen ist
(HAMANN u. MEIN 1990; HAMANN et al. 1994b; HAMANN et al. 2001). Für diese
Studie ist davon auszugehen, dass die dreieckige Zitzengummiform einen gewissen
Einfluss auf die Gewebefestigkeit ausübte, da die größte Zunahme der
Gewebefestigkeit in beiden Gruppen in Verbindung mit dreieckigen Zitzengummis
beobachtet wurde.
In beiden Gruppen war eine Euterinfektion (Mastitis) in den Phasen 1 und 2 mit einer
Abnahme der Gewebefestigkeit verbunden. In Phase 3 allerdings zeigte sich in
beiden Gruppen eine Zunahme der Gewebefestigkeit. Diese, treten sie nach dem
Milchentzug auf, können als Verschlechterung der Blutzirkulation anhand von
Kongestionen und Ödemen beobachtet werden (HAMANN 1991).
Nach dem Wechsel zu dreieckigen Zitzengummis in der Gruppe RRD zeigten die
Vorderviertel aller Gesundheitskategorien eine Zunahme der Gewebefestigkeit an.
Die größte Veränderung war beim Auftreten von „normaler Sekretion“ feststellbar. Bei
den Hintervierteln trat eine Zunahme der Gewebefestigkeit beim Auftreten von
Mastitiden auf. Mit Hilfe einer 2-faktoriellen Varianzanalyse konnte gezeigt werden,
dass die Viertelposition allerdings nur in der Kategorie „unspezifische Mastitis“ einen
signifikanten Einfluss hatte.
In Gruppe RDR waren die Veränderungen sehr unterschiedlich. Die größte Abnahme
der Gewebefestigkeit war in der Kategorie „unspezifische Mastitis“ der Vorderviertel
in Phase 2 (dreieckige Zitzengummis) feststellbar. Außerdem konnte für alle
Viertelpositionen vor und nach dem Zitzengummiwechsel sowohl Zu- als auch
abnahmen der Gewebefestigkeit beobachtet werden. Die Viertelposition hatte einen
signifikanten Einfluss auf die Gewebefestigkeit der Eutergesundheitskategorie
„latente Infektion“.
Es ist schwer, für jede Herde das passende Zitzengummi zu finden, da es eine
Vielzahl an unterschiedlichen Zitzenformen und -längen gibt (RASMUSSEN et al.

Diskussion
156
2004). Eine Zunahme der Gewebefestigkeit wird mit steigender Penetrationstiefe der
Zitzen in den Zitzenbecher beobachtet, da mit zunehmender Melkdauer der
Milchfluss sinkt und die Zitzen tiefer in den Zitzenbecher gezogen werden (BOTHUR
u. WEHOWSKY 1978). Je tiefer die Penetration der Zitze in den Zitzenbecher, desto
geringer ist die Massagewirkung des Zitzengummis und Gewebeflüssigkeit wird
angestaut (RONNINGEN u. REITAN 1990b, HAMANN et al. 1994c).
Wenn die Zitzen zu lang sind, kann der Zitzengummi nicht mehr unter der
Zitzenkuppe kollabieren und als Folge entstehen Kongestionen an der Zitze. Ein zu
langes oder zu breites Zitzengummi hingegen führt zu einer starken Dehnung der
Zitze, aus der petechiale Blutungen oder Verfärbungen resultieren können (MEIN et
al. 1983, MEIN u. WILLIAMS 1984, RASMUSSEN et al. 1998).
CASIRANI et al. (2002; 2003) zeigten nach Umstellung auf ein automatisches
Melksystem eine signifikante Verringerung der Gewebefestigkeit und sehen dies als
Zeichen für physiologischeres Melken.
5.6 Milchabgabeverhalten
Die durchschnittliche Milchmengenleistung auf Viertelebene betrug für runde
Zitzengummis 3296,00 g und für dreieckige 3335,20 g. Da zwischen den
Zitzengummiformen kein signifikanter Unterschied lag, konnte die Behauptung der
Hersteller, dass dreieckige Zitzengummis zu einer höheren Milchleistung führen
(www.zitzengummis-billiger.de), nicht bestätigt werden.
Tendenziell war die Milchsekretion in erkrankten Vierteln geringer als in Vierteln mit
normaler Sekretion. Die geringste Sekretion trat allerdings bei Vierteln mit
unspezifischer Mastitis auf. Ein Chiquadrathomogenitätstest zeigte, dass es in
beiden Gruppen zwischen den verschiedenen Phasen keine signifikanten
Unterschiede in der Verteilung der Gesundheitskategorien gab.
Die Hinterviertel zeigten eine signifikant größere Sekretionsrate als die Vorderviertel
(340,49 g/h; 270,84 g/h). Diese Aussage wird von MEIN et al. (1973b) und

157
Diskussion
RITTERSHAUS et al. (2002) bestätigt. Die Autoren stellten eine um 30 -40 %
geringere Milchproduktion der Vorderviertel fest.
Ein Unterschied der Sekretionsrate zwischen runden und dreieckigen Zitzengummis,
unabhängig vom Melkintervall, konnte nicht festgestellt werden. WANGLER et al.
(2002) sehen die Milchmenge, die Laktation, das Laktationsstadium, das
Management und die Kuh selbst als Einflussfaktoren für das Melkintervall.
5.7 Neuinfektion
Viele Faktoren sind in der Lage, die Neuinfektionsrate zu beeinflussen; in
konventionellen Melkanlagen ist das Blindmelken einer davon. Es sollte vermieden
werden, weil dadurch traumatische Zitzenverletzungen hervorgerufen werden
können, die das Neuinfektionsrisiko erhöhen (HAMANN et al. 1994a). Da in diesem
Versuch die Melkbecherabnahme viertelweise erfolgte, kann das Blindmelken als
Neuinfektionsrisiko ausgeschlossen werden.
Symptome von Durchblutungsstörungen (Kongestion, Ödeme) deuten auf ein
erhöhtes Neuinfektionsrisiko hin (PMN vom Blut in Milch-Phagozytose/O2-
Versorgung; HAMANN et al. 1994a). Da in jeder Phase dieses Versuchs der Anteil
an bläulichen Zitzenschäften nach dem Melken deutlich unter 5 % lag, kann ein
Neuinfektionsrisiko aufgrund von Durchblutungsstörungen ausgeschlossen werden.
In dieser Studie betrug die höchste Melkfrequenz drei Melkungen; 57,37 % der Kühe
wurden allerdings nur zwei Mal pro Tag gemolken. Somit kann nach HAMANN et al.
(1994a) ein erhöhtes Neuinfektionsrisiko ausgeschlossen werden. Die Autoren
fanden heraus, dass sich bei mehr als 3 Melkungen pro Tag das Neuinfektionsrisiko
aufgrund von mechanischer Beeinträchtigungen des Zitzengewebes erhöht.
Hintere Euterviertel haben eine erhöhte Infektionsrate, da sie einen geringeren
Bodenabstand aufweisen als die Vorderviertel (RONINNGEN u. REITAN 1990b;
KRÖMKER u. HAMANN 1998). Diese Aussage trifft für die hier untersuchte Herde

Diskussion
158
nicht zu, da bei 87,76 % der Tiere ein Bauch-Schenkel-Euter festgestellt wurde und
der Bodenabstand für die Vorder- und Hinterviertel in etwa gleich war.
Die Erhöhung der Mastitisprävalenz um den 6. Probentermin kann durch das
Laktationsstadium beeinflusst worden sein. Zu diesem Zeitpunkt befanden sich die
Tiere durchschnittlich im 170. Laktationstag. Auch GRABOWSKI et al. (2008) sehen
in diesem Zeitraum ein erhöhtes Neuinfektionsrisiko unter anderem aufgrund einer
negativen Energiebilanz.
5.8 Gegenüberstellung der Gruppen RRD und RDR
Ein Vergleich der Gruppen RRD und RDR ergab keine signifikanten Unterschiede für
die untersuchen Parameter (Tab. 4-40). Die beiden Gruppen begannen die
Versuchsperiode unter gleichen Grundvoraussetzungen.
Der Einsatz von runden und dreieckigen Zitzengummis zeigte keine signifikanten
Unterschiede in der Melkdauer (siehe Kapitel 4.2.3).
LAMB et al. (1984) beobachteten einen Anstieg der Melkzeit um 6 % bei Einsatz von
dreieckigen Zitzengummis aus Silikon. Auch in dieser Studie wurde ein Anstieg der
Melkzeit bei dreieckigen Zitzengummis beobachtet, allerdings war dieser nicht
signifikant. Es ist denkbar, dass das Material allein die Melkdauer signifikant
beeinflussen kann. In dieser Studie war das Zitzengummimaterial aus Nitril und nicht
wie in der Studie von LAMB et al. (1984) aus Silikon. Dreieckige Zitzengummis aus
Silikon sind weicher und elastischer und sollen außerdem das Auftreten von Mastitis
reduzieren und zu weniger Verletzungen der Zitzenspitze führen als runde
Zitzengummis aus Nitril (NOORLANDER u. HECKMANN 1982).
Die Anzahl normal sezernierender Viertel als Ausdruck für gesunde Drüsenkomplexe
lag bei Zitzen, die mit dreieckigen Zitzengummis (24,87%) gemolken wurden, leicht
unter der mit runden Zitzengummis (25,80%).
In der hier vorliegenden Studie unterschieden sich NAGase-Aktivität, Zellzahl und
Leitfähigkeit zwischen beiden Zitzengummiformen nicht signifikant. Sie lagen alle auf

159
Diskussion
niedrigem physiologischem Niveau. Dabei erklärt sich die Datenlage für die Zellzahl
aus der Tatsache, dass dieser Parameter zur Einordnung der Eutergesundheit
diente. Dennoch ist anzunehmen, dass die Zitzengummiform keinen
inflammatorischen Einfluss auf die Zitze ausübt.
Es waren keine Veränderungen in der Verteilung der Eutergesundheitskategorie
durch den Zitzengummityp erkennbar. Allerdings zeigte sich beim Vergleich der
Guppen RRD und RDR jeweils ein Anstieg von normal sezernierenden Vierteln mit
zunehmendem Versuchsverlauf.
Laut GRABOWSKI et al. (2008) gibt es drei Zeitpunkte innerhalb einer Laktation, an
denen die Euterviertel besonders anfällig für Neuinfektionen sind. Neuinfektionen
traten verstärkt in der Frühlaktation (Tage 20 bis 60 nach dem Kalben), dann von
Tag 120 bis 200 und während der letzten zwei Monate vor dem Trockenstellen auf.
Diese drei Phasen sind in der negativen Energiebilanz, den hormonellen
Veränderungen anlässlich der Trächtigkeit sowie der sistierenden Laktation
begründet. Da sich die Tiere zu Beginn des Versuchs durchschnittlich 108 Tage in
Laktation befanden, ist anzunehmen, dass das Laktationsstadium und nicht die
Zitzengummiform für die Zunahme an normal sezernierenden Viertel im Laufe des
Versuchs verantwortlich ist. Allerdings gab es keine signifikanten Veränderungen in
der Verteilung der Eutergesundheit beim Vergleich der Zitzengummiformen während
Phase 2 und 3 (Tab. 4-17).
Sowohl in Gruppe RRD als auch in Gruppe RDR stieg die Anzahl normal
sezernierender Viertel und Viertel mit Mastitis während des Versuchsablaufs.
SCHRIDDE (2006) beobachtete während ihrer Untersuchung einen Anstieg von
unspezifischen Mastitiden in der VMS-Herde. Allerdings zeigte der
Chiquadrathomogenitätstest keine signifikanten Unterschiede in der Verteilung der
Eutergesundheitskategorien zwischen den Versuchsphasen. Es ist denkbar, dass
der Zitzengummiwechsel an sich die Eutergesundheit negativ beeinflusst. WENDT
(2000) sieht den Zeitraum des Zitzengummiwechsels als Ursache für das vermehrte
Auftreten von Entzündungen und Hyperkeratosen an der Zitzenspitze.

Diskussion
160
Insgesamt infizierten sich in der Gruppe RDR 10 % weniger Viertel als in Gruppe
RRD. Es wäre denkbar, dreieckige Zitzengummis nur in bestimmten Phasen und bei
bestimmten Problemen einzusetzen, was einen größeren logistischen Aufwand nach
sich ziehen würde. Inwieweit dies das Infektionsrisiko senkt, müsste in späteren
Untersuchungen geklärt werden.
Ein Vergleich der Differenzen zwischen den beiden Gruppen ergab für den
Parameter „Cutimeter nachher“ signifikante Unterschiede.
Nach dem Melken nahm die Gewebedicke in Gruppe RRD (-0,03 cm) nach dem
Wechsel zu dreieckigen Zitzengummis stärker ab als nach dem Wechsel von
dreieckige auf runde Zitzengummis in der Gruppe RDR (-0,01 cm).
CASIRANI et al. (2003) sehen eine Reduktion der Zitzengewebefestigkeit nach
einem Melkvorgang in einem automatischen Melksystem als ein Zeichen für
physiologischeres Melken. Demnach könnte die stärkere Abnahme der Gewebedicke
in der Gruppe RRD für ein physiologischeres Melken der dreieckigen Zitzengummis
stehen.
Als nächstes folgte der Vergleich der Gruppen RRD und RDR mit Vierteln, die in
Phase 2 gesund waren. Im ersten Schritt dieser Gegenüberstellung stellte sich
heraus, dass sich der Einfluss der Gewebefestigkeit hauptsächlich auf die gesunden
Viertel beschränkte. Es ist denkbar, dass die Gewebefestigkeit bei kranken
Eutervierteln weniger beeinflussbar ist. Beim direkten Vergleich der Gruppen
(Änderung des Gesundheitszustandes gesunder Viertel aus Phase 2 beim Übergang
in Phase 3); wurde folgendes festgestellt: Wenn das Viertel in Phase 2 gesund war
nahm die Zitzendicke bei den kranken Vierteln der Gruppe RDR und bei den
gesunden der Gruppe RRD in Phase 3 zu. Daraus ist zu erkennen, dass die
dreieckigen Zitzengummis die Zitzengewebefestigkeit im gesunden Zustand erhöhen
und keine ausreichende Massage bieten.
In einer weiteren Varianzanalyse zeigten sich Milchmengenleistung, Leitfähigkeit,
Zellzahl, NAGase, Melkdauer Sekretionsrate als signifikant abhängig vom
Gesundheitszustand.
Die Zitzengummiform hatte keinen signifikanten Einfluss auf die untersuchten
Parameter, obwohl KOCHMAN und LANEY (2009) in einer Untersuchung

161
Diskussion
feststellten, dass sogenannte „multi-sided“ Zitzengummis für eine bessere
Zitzenkondition sorgen als runde. Es ist denkbar, dass die Kühe, an denen die
runden Zitzengummis getestet wurden, mehr Zitzen mit rauen Ringen und
Hyperkeratosen zeigten, denn dies führt zu einer erhöhten Anfälligkeit für Mastitis
(NEIJENHUIS et al. 2001a).
Im Gegensatz dazu zeigt die Versuchsphase bei den Parametern LF, Cutimeter
vorher, Cutimeter nachher und Sekretionsrate einen signifikanten Einfluss. In Gruppe
RRD nahmen beim Wechsel zu dreieckigen Zitzengummis die Leitfähigkeit und die
Zitzengewebefestigkeit sowohl vor als auch nach dem Melken zu, was wieder dafür
spricht, dass dreieckige Zitzengummis für keine zufriedenstellende Zitzenmassage
sorgen.
In der Gruppe RDR war nach dem Wechsel zu runden Zitzengummis nur ein Anstieg
der Leitfähigkeit und der Sekretionsrate zu verzeichnen. Zwar nahm auch hier die
Zitzengewebedicke zu, aber der Unterschied zwischen den Phasen war nicht
signifikant.
Als Ursache für den signifikanten Einfluss der Phase stellte sich das
Laktationsstadium heraus. Auch HUTH (1995) wies einen signifikanten Einfluss des
Laktationsstadiums auf die Sekretionsrate nach. HALM (2003) zeigte außerdem eine
steigende Tendenz der Leitfähigkeit mit zunehmendem Laktationsstadium. Des
Weiteren stellte ANDREAE (1963) eine Zunahme des Zitzendurchmessers im
Verlaufe jeder Laktation fest.
5.9 Referenzgruppe
Bei der Untersuchung des Einflusses von Zitzengummiform und –wechsel auf normal
sezernierende Viertel konnte kein Unterschied zwischen den Gruppen RRD und
RDR festgestellt werden. Allerdings hatte die Versuchsphase einen signifikanten
Einfluss auf den Parameter „Cutimeter nachher“.
Des Weiteren konnte ein signifikanter Einfluss der Viertelposition auf folgende
Parameter festgestellt werden: Viertelgemelksmenge, Zellzahl, Kutimetrie,

Diskussion
162
Melkdauer, Milchfluss, Sekretionsrate. Der Einfluss der Viertelposition ist in vielen
Studien dargestellt worden (SIEBER u. FARNSWORTH 1981; NEIJENHUIS et al.
2000) und wird auf den erhöhten Blutfluss der kaudalen Viertel zurückgeführt. Die
Ausmelkdauer ist ebenfalls von der Viertelposition abhängig, sowie vom Tier selbst
(SCHÖNE et al. 1994).

6 Schlussfolgerung
163
Schlussfolgerung
1. Die Eutergesundheit wurde in Anlehnung an das DVG-Schema und die IDF-
Empfehlungen auf der Basis zytobakteriologischer Befunde definiert. Es stellte
sich ein hoher Anteil von Corynebacterium spp. heraus, der im
Versuchsverlauf noch weiter anstieg. Eine unzureichende Zitzendesinfektion
könnte als Ursache mit der Ausbreitung des Erregers in Zusammenhang
stehen. Gleichzeitig war ein Rückgang der KNS-Infektionen zu beobachten.
2. Es gab keine signifikanten Unterschiede in der Verteilung der
Eutergesundheitskategorien zwischen runden und dreieckigen Zitzengummis.
Außerdem zeigte die Zitzengummiform keinen Einfluss auf die Parameter
elektrische Leitfähigkeit, Anzahl somatischer Zellen und NAGase-Aktivität.
3. Während des Versuchsablaufs konnte in beiden Gruppen (RRD/RDR),
unabhängig vom Zitzengummityp, ein Anstieg an normal sezernierenden
Vierteln festgestellt werden. Diese Entwicklung ist auf ein geringeres
Neuinfektionsrisiko mit fortschreitendem Laktationsstadium zurückzuführen.
4. Die Melkdauer zeigte keine signifikanten Unterschiede (p = 0,0787) zwischen
den Zitzengummitypen. Es wurde eine mittlere Melkdauer von 3,39 ± 1,39 min.
gemessen. Weiterhin konnten keine signifikanten Unterschiede im Hinblick auf
die Zitzengummiform für die Viertelgemelksmenge und Sekretionsrate
festgestellt werden.
5. Die Zunahme an moderaten Ringbildungen an den Zitzenkanalöffnungen (als
Ausdruck einer physiologischen Anpassung an den Melkakt) in beiden
Gruppen im Verlauf des Versuchs spricht für eine erfolgreiche Zitzenmassage
sowie sachgemäßes Melken, unabhängig von der Zitzengummiform.

Schlussfolgerung
164
6. Die Zitzengewebedicke nahm im Laufe des Versuchs zu. Es gab bei beiden
Zitzengummitypen sowohl Gewebefestigkeitszu- als auch abnahmen.
7. Die Neuinfektionsrate wurde durch die Zitzengummiform nicht beeinflusst.
8. Die untersuchten Melkparameter sowie die Zitzenkonditionsmerkmale
verhielten sich unabhängig von der Zitzengummiform. Das Laktationsstadium
dagegen zeigte signifikante Einflüsse auf Leitfähigkeit, Kutimetrie und
Sekretionsrate.
9. Auch bei einer durchgehend normal sezernierenden Referenzgruppe zeigte
die Zitzengummiform, im Gegensatz zur Viertelposition, keinen signifikanten
Einfluss auf die Melk- und Zitzenkonditionsparameter.
10. Dreieckige Zitzengummis, als weitere Möglichkeit für einen schonenden
Milchentzug, stellen im Vergleich zu runden Zitzengummis keine
Verbesserung, aber auch keine Verschlechterung des Milchabgabeverhaltens,
der Zitzenhautkondition und der Eutergesundheit dar.
Tabelle 6-1 stellt die möglichen Einflüsse des Zitzengummityps auf die untersuchten
Parameter dar.

Tab. 6-1: Einfluss des Zitzengummityps auf die untersuchten Parameter
Parameter [Einheit]
Milchmenge auf Viertelebene [g]
165
Einfluss durch
Zitzengummityp
nein
Erläuterung
runde Zitzengummis (ZG): 3296,0 g;
eckige Zitzengummis (ZG): 3335,2 g
el. Leitfähigkeit [mS/cm] nein -
Anzahl somatischer Zellen [lgZellen/ml] nein -
NAGase-Aktivität [lgnmol * min-1 * ml-1] nein -
Kutimetrie vor dem Melken [cm]
Kutimetrie nach dem Melken [cm]
möglich
möglich
Schlussfolgerung
dreieckige ZG erhöhen die Gewebefestigkeit
gesunder Zitzen (wenn Phase 2 gesund)
eckige ZG massieren Zitze evtl. besser, da
Gewebefestigkeit beim Wechsel von rund auf
eckig abnahm (Vergleich P2 minus P3);
eckige ZG erhöhen Gewebefestigkeit gesunder
Zitzen (wenn P 2 gesund)
Gewebefestigkeitsänderung der Kuppe
[%], relativ und absolut
nein -
Melkzeit [min] nein -
Milchfluss [ml/min.] nein -
Sekretionsrate [g/h] nein 303,14 g/h runde ZG; 308,13 g/h eckige ZG
Adspektion der Spitze vor dem Melken
möglich
Zunahme von moderaten „Ringbildungen“;
Zeichen für physiologisches Melken und
ausreichende Zitzenmassage
Adspektion des Schafts vor dem Melken nein -
Adsp. der Spitze nach dem Melken
(hart/weich)
Adspektion der Spitze nach dem Melken
(trocken/feucht)
Adspektion der Spitze nach dem Melken
(Farbe)
Adsp. der Spitze nach dem Melken
(Ringbildung)
nein -
nein -
nein -
nein -

Zusammenfassung
7 Zusammenfassung
Mirjam Durstewitz
166
Überprüfung der Auswirkungen dreieckiger Zitzengummis in runden Becherhülsen
auf das Milchabgabeverhalten, Zitzenhautkondition und Neuinfektionsrate in einem
automatischen Melksystem
Dem Zitzengummi kommt eine besondere Bedeutung zu, da es das direkte
Bindeglied zwischen Tier und Maschine ist. Hersteller von dreieckigen Zitzengummis
behaupten, dass durch deren Einsatz die Milchleistung erhöht wird. Des Weiteren
soll die Zitze gleichmäßiger komprimiert werden, sodass beim Kollabieren des
Zitzengummis eine geringere Belastung der Zitze stattfindet. Weitere Vorteile seien
eine Reduktion von Hyperkeratosen, sowie von Zitzenverletzungen.
Im Rahmen dieser Studie sollte der Einfluss von dreieckigen Zitzengummis auf die
Zitzenhautkondition, die Neuinfektionsrate und das Milchabgabeverhalten beurteilt
werden.
Die Probennahmen wurden auf dem Lehr- und Forschungsgut Ruthe der
Tierärztlichen Hochschule Hannover durchgeführt. Zu diesem Zweck wurden in dem
automatischen Melksystem (AMS) über einen Zeitraum von 6 Monaten
Zitzenkonditionsparameter (Gewebefestigkeit, Form, Farbe), Parameter der
Eutergesundheit, Milchleistung und Melkdauer untersucht. Dabei wurden an 13
Versuchstagen insgesamt 3400 Viertelgemelksproben gewonnen.
Um einen Überblick über den Gesundheitsstatus der Herde zu bekommen, wurden in
einem Vorversuch Viertelanfangsgemelke aller Tiere der VMS-Herde untersucht. In
drei Hauptversuchsphasen wurden die Viertel der zu melkenden Kühe alternierend
mit Zitzengummis mit runden („R“) bzw. dreieckigem Durchschnitt („D“) gemolken,
sodass sich die Viertel in die Gruppen „RDR“ und „RRD“ einteilen ließen.

167
Zusammenfassung
Die Bestimmung des somatischen Zellgehaltes erfolgte mittels Fossomatic ® 5000 im
Labor des Milchkontrollverbandes (MKV) Mittleweser e.V. in Rehburg. Die elektrische
Leitfähigkeit wurde mit dem Leitfähigkeitsmessgerät Mastitron ® im Vorgemelk
ermittelt. Die N-acetyl-ß-D-Glucosaminidase (NAGase)-Aktivität wurde im
Anfangsgemelk anhand eines Mikrotiterplattenverfahrens bestimmt. Des Weiteren
wurden die Milchproben mikrobiologisch auf das Vorhandensein von potentiell
euterpathogenen Keimen untersucht. Die Gewebefestigkeit wurde vor und nach dem
Melken mit einem Federkutimeter bestimmt. Die Ermittlung der Zitzenhautkondition
erfolgte ebenfalls vor und nach dem Melken mittels Adspektion und Palpation. Alle
Parameter wurden auf Viertelebene bestimmt.
Insgesamt wiesen 45,95 % der Proben (n = 2984) eine bakteriologisch positive
Vierteldiagnose auf. Corynebacterium spp. und KNS wurden in jeder Versuchsphase
sowohl bei runden als auch bei dreieckigen Zitzengummis nachgewiesen. Der χ²-
Homogenitätstest zeigte, dass es keine signifikanten Unterschiede (p = 0,3909) in
der Verteilung der Eutergesundheitskategorien zwischen den Zitzengummiformen
gab. Auch zeigte ein Vergleich der Werte für SCC, NAGase-Aktivität und elektrischer
Leitfähigkeit, deren Werte sich in den erwarteten Bereichen bewegten, mittels
Varianzanalyse keinen signifikanten Einfluss durch runde oder dreieckige
Zitzengummis.
In Phase 3 (VR/HL = dreieckige Zitzengummis; VL/HR = runde Zitzengummis)
zeigten etwa 60 % der Zitzen beider Gruppen Ringbildungen an der
Zitzenkanalöffnung. Dieser Verlauf spricht, unabhängig vom Zitzengummityp, für eine
erfolgreiche Zitzemassage und annähernd physiologisches Melken.
Es zeigten sich keine signifikanten Unterschiede zwischen den Zitzengummiformen
im Hinblick auf Melkdauer, Viertelgemelksmenge und Sekretionsrate. Auch die
untersuchten Zitzenkonditionsmerkmale zeigten keine signifikanten Unterschiede
zwischen den Zitzengummitypen.

Zusammenfassung
168
Dreieckige Zitzengummis stellen einen weiteren Versuch dar, den maschinellen
Milchentzug möglichst schonend für das Tier zu gestalten. Im Vergleich zu runden
Zitzengummis konnte jedoch weder eine Verbesserung noch eine Verschlechterung
des Milchabgabeverhalten, der Zitzenhautkondition und der Eutergesundheit
festgestellt werden.
Die Ergebnisse dieser Studie zeigen, dass besonders auf die richtige Anwendung
bzw. regelmäßige Auswechslung der Zitzengummis geachtet werden sollte.

8 Summary
Mirjam Durstewitz
169
Summary
Testing the impact of triangular-shaped liners inside conventional round shells on
milking and teat condition patterns, and on the new infection rate in an automatic
milking system
Data on teat condition (tissue elasticity, teat shape and colour) and udder health
parameters, milk yield and milk withdrawal time was raised in an automatic milking
system (AMS) over 5 months. A total of 3400 quarter milk samples was obtained on
13 sampling days. During the 3-phase main trial, quarters were milked alternately
using liners with round (“R”) and triangular (“D”) bores, so that they were assigned to
one of two groups (“RDR” and “RRD”). This study intended to measure the impact of
triangular liners on teat condition, new infection rate and milking pattern.
1 st Udder health was categorized according to IDF recommendations, i.e. on cyto
bacteriological findings of quarter foremilk samples. Many quarters harboured
Corynebacterium spp., with a growing tendency as the survey progressed. This
ample distribution of this pathogen might be associated with a deficient teat
disinfection. At the same time, a reduction of infections with CNS was observed.
2 nd There were no significant differences between quarters milked with round and
triangular liners regarding udder health categorisation. No influences were measured
of the liner type on electrical conductivity, somatic cell count and NAGase activity.
3 rd During the survey, the amount of normally-secreting quarters increased in both
groups (RRD/RDR) and regardless the type of liner used. This pattern may be due to
a reduced new infection risk while the lactation progresses.
4 th Milk withdrawal time did not differ significantly (p = 0.0787) between liner types. A
mean withdrawal time of 3.39 ± 1.39 min was calculated. Liner shape did not affect
quarter yield and secretion rate significantly.

Summary
170
5 th An amount of moderate callous ring formation at teat ends increasing with DIM
(regardless of the liner type, however) is suggestive of a successful teat massage
and approaching physiological milking.
6 th Teat tissue thickness increased during the survey. Tissue elasticity gains and
losses were observed with both liners.
7 th New infection remained unaffected by liner type.
8 th The milking and teat condition parameters were not changed by the liner shape.
However, lactation stage showed significant effects on electrical conductivity,
cutometry and secretion rate.
9 th Unlike quarter position, liner shape did not affect significantly the milking and teat
condition parameters of a reference group of quarters secreting normally throughout
the entire trial.
With triangular liners, another attempt was made to improve the technical milking
conditions for cows. Yet and in comparison to conventional liners, milking pattern,
teat skin condition and udder health were neither improved nor deteriorated by using
triangular liners.
The results of this study show however that special attention must be paid on correct
handling and regular replacement of liners. Liner and parlour hygiene goes with
saying.

9 Literaturverzeichnis
Mirjam Durstewitz
171
Literaturverzeichnis
Überprüfung der Auswirkungen dreieckiger Zitzengummis in runden Becherhülsen
auf das Milchabgabeverhalten, Zitzenhautkondition und Neuinfektionsrate in einem
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Anhang
10 Anhang
Tab. A-1: Laktationsnummer und -stadium zum jeweiligen Versuchstermin
192
Probentermin 1 Probentermin 2 Probentermin 3 Probentermin 4
Lakt. Lakt.Gruppe
/stadium
Kühe
(n)
Lakt.
Lakt.Gruppe
/stadium
Kühe
(n)
Lakt.
Lakt.Grupp
e /stadium
Kühe
(n)
Lakt.
Lakt.Gruppe
/stadium
4 3 1 4 3 1 4 3 1 4 3 1
3 4 1 4 1 1 4 1 3 4 1 3
3 3 3 3 4 1 3 4 1 3 4 2
3 2 1 3 3 3 3 3 2 3 3 1
2 4 2 3 2 1 3 2 1 3 2 1
2 2 5 2 4 2 3 1 1 3 1 1
2 1 3 2 3 1 2 3 2 2 3 2
1 3 4 2 2 5 2 2 5 2 2 5
1 2 7 2 1 3 2 1 3 2 1 3
1 1 7 1 3 4 1 3 6 1 3 6
- - - 1 2 8 1 2 7 1 2 7
- - - 1 1 6 1 1 5 1 1 5
Probentermin 5 Probentermin 6 Probentermin 7 Probentermin 8
Lakt. Lakt.Gruppe
/stadium
Kühe
(n)
Lakt.
Lakt.Gruppe
/stadium
Kühe
(n)
Lakt.
Lakt.Grupp
e /stadium
Kühe
(n)
Lakt.
Lakt.Gruppe
/stadium
4 3 1 4 3 1 4 4 1 4 4 1
4 1 3 4 1 3 4 1 3 4 2 1
3 3 1 3 4 1 3 4 1 4 1 3
3 2 1 3 2 1 3 3 1 3 4 1
3 1 1 3 1 2 3 2 1 3 3 1
2 3 4 2 3 4 3 1 3 3 1 4
2 2 4 2 2 4 2 3 3 2 3 4
2 1 1 2 1 1 2 2 4 2 2 3
1 4 2 1 4 2 2 1 1 2 1 1
1 3 4 1 3 4 1 4 2 1 4 1
1 2 10 1 2 11 1 3 4 1 3 6
1 1 5 1 1 3 1 2 11 1 2 9
- - - - - - 1 1 2 1 1 2
Probentermin 9 Probentermin 10
Lakt. Lakt.Gruppe
/stadium
Kühe
(n)
Lakt.
Lakt.Gruppe
/stadium
Kühe
(n)
4 4 1 4 4 1
4 2 2 4 2 3
4 1 2 4 1 2
3 2 1 3 2 2
3 1 3 3 1 2
2 3 5 2 3 5
2 2 3 2 2 2
1 4 1 2 1 1
1 3 7 1 4 1
1 2 7 1 3 7
1 1 5 1 2 7
- - - 1 1 4
Kühe
(n)
Kühe
(n)

193
Anhang
Tab. A-2: Vergleichende Darstellung der Eutergesundheitskategorie auf
Viertelebene, getrennt nach Probenterminen
Zellgehalt pro ml Milch
Probentermine 1-2
Euterpathogene Mikroorganismen
nicht nachgewiesen nachgewiesen
≤ 100.000/ml
rel. (%)
abs. (n)
34,67
52
45,33
68
> 100.000/ml
rel. (%)
abs. (n)
5,33
8
14,67
22
Zellgehalt pro ml Milch
Euterpathogene Mikroorganismen
nicht nachgewiesen nachgewiesen
≤ 100.000/ml
rel. (%)
abs. (n)
38
57
46,67
70
> 100.000/ml
rel. (%)
abs. (n)
4,67
7
10,67
16
Zellgehalt pro ml Milch
Euterpathogene Mikroorganismen
nicht nachgewiesen nachgewiesen
≤ 100.000/ml
rel. (%)
abs. (n)
37,33
56
34,67
52
> 100.000/ml
rel. (%)
abs. (n)
8,00
12
20,00
30
Zellgehalt pro ml Milch
Euterpathogene Mikroorganismen
nicht nachgewiesen nachgewiesen
≤ 100.000/ml
rel. (%)
abs. (n)
34,00
51
30,00
45
> 100.000/ml
rel. (%)
abs. (n)
11,33
17
Probentermine 3-6
24,67
37
Zellgehalt pro ml Milch
Euterpathogene Mikroorganismen
nicht nachgewiesen nachgewiesen
≤ 100.000/ml
rel. (%)
abs. (n)
44,3
132
40,60
121
> 100.000/ml
rel. (%)
abs. (n)
6,04
18
9,06
27
Zellgehalt pro ml Milch
Euterpathogene Mikroorganismen
nicht nachgewiesen nachgewiesen
≤ 100.000/ml
rel. (%)
abs. (n)
45,97
137
32,55
97
> 100.000/ml
rel. (%)
abs. (n)
5,7
17
15,77
47
Zellgehalt pro ml Milch
Euterpathogene Mikroorganismen
nicht nachgewiesen nachgewiesen
≤ 100.000/ml
rel. (%)
abs. (n)
48,32
144
30,20
90
> 100.000/ml
rel. (%)
abs. (n)
6,71
20
14,77
44
Zellgehalt pro ml Milch
Euterpathogene Mikroorganismen
nicht nachgewiesen nachgewiesen
≤ 100.000/ml
rel. (%)
abs. (n)
39,93
119
30,20
90
> 100.000/ml
rel. (%)
abs. (n)
8,05
24
21,81
65
VR = vorne rechts; HR = hinten rechts; VL = vorne links; HL = hinten links
Viertel
VR
HR
VL
HL
Viertel
VR
HR
VL
HL

DANKSAGUNG
Meinem Doktorvater, Herrn Prof. Dr. G. Klein, möchte ich für die Überlassung des
Themas und die wissenschaftliche Betreuung danken.
Frau Dr. Friederike Reinecke danke ich für die Aufstellung des Versuchsdesign und
die hilfreiche Betreuung während meiner Anfangszeit.
Herrn Dr. Nils Th. Grabowski danke ich ganz besonders für die Übernahme der
Betreuung, für zahlreiche wertvolle Anregungen zur Bewältigung des sehr
umfangreichen Datenmaterials, sowie für die Endkorrektur.
Mein Dank geht an die technischen Mitarbeiter des Labors, insbesondere Frau Sigrid
Kirchschlager-Heine, Frau Susanne Mock und Frau Selina Campbell, sowie an die
Mitarbeiter des Milchkontrollverbandes (MKV) Mittelweser in Rehburg, für die Mithilfe
bei den labortechnischen Untersuchungen der zahlreichen Proben.
Außerdem geht mein Dank an die Mitarbeiter des Lehr- und Forschungsgutes Ruthe,
die mir durch ihre freundliche Kooperativität die Durchführung des praktischen Teils
erleichtert haben.
Großer Dank an Dr. Nils Grabowski, Jürgen Falkenhagen, Dr. Friederike Reinecke,
die mir während der 24-stündigen Probenziehung am VMS ® tatkräftig zur Seite
standen.
Weiterer Dank gilt Frau Dr. Rosi Merle aus dem Institut für Biometrie, Epidemiologie
und Informationsverarbeitung für die Informationen und Hilfestellungen, die mir bei
der statistischen Auswertung der Ergebnisse sehr geholfen haben.

Meinen Mitdoktorandinnen, sowie Dr. Annika Boulaaba, Dr. Asmien Brix und Dr. Birte
Ahlfeld, die mir mit Rat und Tat zur Seite standen, danke ich für die vielen wertvollen
Tipps und die schöne Zeit.
Mein größter Dank gilt meinen Eltern, auf deren Unterstützung ich mich immer
verlassen konnte.