FLORACIONES ALGALES NOCIVAS EN EL CONO SUR AMERICANO

FLORACIONES ALGALES NOCIVAS EN EL CONO SUR AMERICANO
Sar, E.A., M.E. Ferrario & B. Reguera
Instituto Español de Oceanografía, 2002
Fig. 9. Izquierda: sonda CTD sujeta por el torno oceanográfico a punto de ser lanzada. Centro: pequeña red de plancton de 10 µm de
apertura de malla, con aro de sujeción y colector de PVC. Derecha: botella oceanográfica de 5 l, sujeta por el torno oceanográfico
(Fotos de M. Lion tomadas a bordo del B/O “J.M. Navaz”, en la Ría de Vigo, durante el “V Curso COI-AECI-IEO sobre Fitoplancton
Tóxico y Ficotoxinas”, junio de 2001).
Cubos y Mallas
El muestreo de fitoplancton más sencillo consiste
en recoger agua superficial con un cubo u otro
recipiente cerrado desde un muelle o embarcadero.
En zonas de aguas poco profundas y bien mezcladas,
este método, tan primitivo en apariencia, puede ser
suficente para la detección precoz de especies problema
si se concentra la muestra (5-50 l) a través de
mallas de 10-20 µm. Las especies desnudas pueden
deformarse con la manipulación del concentrado, por
lo que éste debe hacerse con delicadeza, preferiblemente
manteniendo el cilindro de filtrado dentro de
otro cerrado para que las células no sufran presión
contra el fondo de malla, ni se queden secas en ningún
momento. Si la red es de 10-20 µ de apertura de
malla, y se mide el volumen filtrado, este método permite
realizar un análisis cuantitativo bastante fiable
de las células grandes (> 40 µm). Alternativamente,
se pueden fijar muestras del agua del cubo, sin concentrar,
y sedimentarlas en columnas de sedimentación
para su posterior identificación y contaje al microscopio
invertido mediante el método de Utermöhl
(1931). Una tercera posibilidad sería centrifugar un
volumen conocido de la muestra del cubo, y eliminar
la mayor parte del sobrenadante.
Redes de Plancton
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Las redes de plancton troncocónicas, de mayor
o menor tamaño (según la riqueza fitoplanctónica del
lugar) constituyen el método más tradicional de
muestreo (Fig. 9). Para la detección de especies
fitoplanctónicas potencialmente tóxicas se utilizan
redes muy finas, de 20 µm, o mejor aún de 10 µm, de
apertura de malla. La muestra no es adecuada para
análisis cuantitativo (incluso aunque se estimara el
volumen filtrado con un flujómetro), ya que se pierden
numerosas células de pequeño tamaño, y la eficiencia
de filtrado disminuye en proporción inversa a
la concentración de fitoplancton, o se ve alterada por
la presencia de mucílagos. Pero la gran cantidad de
agua filtrada mediante un simple arrastre vertical en
la zona fótica, podrá permitir la detección de especies
que suelen ser poco abundantes (Ej.: Dinophysis
spp.), o de otras especies potencialmente tóxicas (Ej.:
Alexandrium spp.) que se encuentran en los estadios
iniciales de desarrollo de la floración, en concentraciones
inferiores al límite de detección mediante
la técnica de Utermöhl (20-40 cel · l -1 si se emplean
columnas de sedimentación de 25-50 ml).
Hay que evitar los arrastres horizontales u oblicuos,
que muestrean tan sólo ciertas capas de la columna
de agua. El arrastre debe ser vertical, y dejando
hundir la red hasta la profundidad donde se pue-