Tercer foro de camarón del Golfo de México y Mar Caribe - Inapesca

Acetilcolinesterasa como biomarcador de exposición a plaguicidasson fuertes inhibidores de la acetilcolinesterasa(AChE).El cultivo del arroz requiere estar inundado demanera permanente, por lo que existe una red decanales que pasan por los cultivos y drenan a lascorrientes que alimentan al SFLDERP, esto hace quelos escurrimientos pudieran contener residuos deplaguicidas tóxicos, ya que, en el caso del clorpirifos,además de ser un producto extremadamente tóxicopara peces de agua dulce, invertebrados acuáticos yorganismos marinos y estuarinos, puede persistir,dependiendo de las condiciones ambientales, desde 3semanas a un año (USEPA, 1986).Generalmente la determinación de residuos deplaguicidas es costosa y no representa el posibleefecto que pudiera tener el contaminante sobre unorganismo, por lo que una forma de evaluar la posiblepresencia y efectos de algunos plaguicidas esmediante la determinación de la actividad de lacolinesterasa, ya que el uso de estos biomarcadoresenzimáticos ayudan a estimar el riesgo que existe porla exposición a sustancias tóxicas en el ambiente.El objetivo de este biomonitoreo fue establecer lavariabilidad espacial y temporal de la colinesterasa enel pez Gambusia yucatana de acuerdo a lasactividades antropogénicas llevadas a cabo en tressitios a evaluar dentro del SFLDERP.Material y métodosÁrea de estudioSe seleccionaron tres sitios con actividades humanasdiferentes en el sistema fluvio lagunar deltaico del ríoPalizada. En la figura 1 se muestra el sitio A el cualse localiza en una área con una ganadería incipiente.El sitio B se localizaaproximadamente a 5 kilómetros deuna área de agricultura dedicada alarroz, y los principales plaguicidasson inhibidores de la AChE. El sitio Ces el Río Palizada el cual recibe eldrenaje de algunos campos decultivo, y a aproximadamente a 30kilómetros se localiza la Ciudad dePalizada que descarga al ríodesechos municipales.Para este biomonitoreo seseleccionó como bioindicador a lagambusia (Gambusia yucatana,Regan 1914) ya que es un organismoque se encuentra en abundancia yampliamente distribuido en arroyos yríos, asimismo es fácil de muestrear,identificar, transportar y procesar enel laboratorio. Se capturaron 15gambusias por sito mediante una redcon una malla de 2.0 mm en losmeses de marzo y noviembre del 2000 y marzo yseptiembre del 2001. Inmediatamente después de sucaptura se congelaron y se llevaron al laboratorio endonde se identificó el sexo, se pesaron, midieron yprocesaron para el análisis enzimático en músculo.La actividad de la colinesterasa en músculo sedeterminó por el método de Ellman (Ellman et al.1961) adaptado a microplaca tal y como se describeen Guilhermino et al. (1996) en el cual se usa 0.05 mlde homogeneizado y 0.250 ml de la solución dereacción (yoduro de acetiltiocolina + DTNB) y se leea una longitud de onda de 414 nm. La concentraciónde proteína se determinó mediante el método deBradford (1976). La actividad enzimática sedeterminó por triplicado y se expresó como Unidades(U) por mg de proteína; una U es un nmol desubstrato hidrolizado por minuto.El análisis estadístico se llevó a cabo mediante elprograma Statistica (StatSoft, 2000).ResultadosEn la figura 2, se muestra la media y el error estándarde los valores de la actividad de la AChE en músculode Gambusia yucatana durante los meses demuestreo. La media de la actividad (U/mg proteína)de la AChE en músculo fue de 230.5 ± 11.7 (Media ±ES) para el sitio con ganadería, de 132,0 ± 11.8(Media ± ES) para el sitio con agricultura y de 125,1± 10.5 (Media ± ES) para el río Palizada.La variación de la actividad enzimática entre sitiosy meses fue estimada mediante un análisis devarianza (ANOVA) y el resultado fue analizadomediante una prueba de Tukey para comparación demedias con muestras de tamaño desigual. LosFigura 1. Sitios de muestreo.