enfermedad vesicular porcina - Oficina Regional de la FAO para ...

Capítulo 2.1.3. — Enfermedad vesicular porcinafuertemente positivos. Los sueros que registren una media de más del 70% de inhibición en la dilución1/7,5, pero menos del 70% de inhibición en la dilución 1/22,5 se consideran débilmente positivos odudosos. Se consideran negativos los sueros que muestren menos del 70% de inhibición en ambasdiluciones. Deberán confirmarse todos los resultados positivos y los dudosos utilizando la prueba deNV.SUEROS DE REFERENCIA ESTÁNDAR PARA LAS PRUEBAS SEROLÓGICAS DE LA EVPEl Laboratorio de Referencia Mundial para la Fiebre Aftosa de la FAO/OIE mantiene una serie de sueros dereferencia que han sido exhaustivamente validados por los Laboratorios de Referencia Nacionales de la EVP delos Estados Miembros de la Unión Europea.C. REQUISITOS PARA LAS VACUNAS Y LOS MATERIALES DE DIAGNÓSTICOActualmente no existen vacunas disponibles comercialmente de EVP. Los sueros estándar pueden obtenerse delLaboratorio de Referencia Mundial para la Fiebre Aftosa de la OIE/FAO (véase nota a pie de página 1). Elanticuerpo MAb 5B7 puede conseguirse en el Laboratorio de Referencia de la OIE para la enfermedad vesicularporcina, que se encuentra en Italia (véase el cuadro mostrado en la Parte 3 de este Manual).REFERENCIAS1. BROCCHI E., BERLINZANI A., GAMBA D. & DE SIMONE F. (1995). Development of two novel monoclonal antibodybasedELISAs for the detection of antibodies and the identification of swine isotypes against swine vesiculardisease virus. J. Virol. Methods, 52, 155–167.2. BROCCHI E., ZHANG G., KNOWLES N.J., WILSDEN G., MCCAWLEY J.W., MARQUARDT O., OHLINGER V.F. & DESIMONE F. (1997). Molecular epidemiology of recent outbreaks of swine vesicular disease: two geneticallyand antigenically distinct variants in Europe, 1987–1994. Epidemiol. Infect., 118, 51–61.3. CALLENS M. & DE CLERCQ K. (1999). Highly sensitive detection of swine vesicular disease virus based on asingle tube RT-PCR system and DIG-ELISA detection. J. Virol. Methods, 77, 87–99.4. DONALDSON A.I., FERRIS N.P., KNOWLES N.J. & BARNETT I.T.R. (1983). Comparative studies of United Kingdomisolates of swine vesicular disease virus. Res. Vet. Sci., 35, 295–300.5. GOLDING S.M., HEDGER R.S., TALBOT P. & WATSON J. (1976). Radial immunodiffusion and serumneutralisation techniques for the assay of antibodies to swine vesicular disease. Res. Vet. Sci., 20, 142–147.6. KITCHING R.P. & DONALDSON A.I. (1987). Collection and transportation of specimens for vesicular virusinvestigation. Rev. sci. tech. Off. int. Epiz., 6, 263–272.7. LIN F., MACKAY D.K.J. & KNOWLES N.J. (1997). Detection of swine vesicular disease virus RNA by reversetranscription-polymerase chain reaction. J. Virol. Methods, 65, 111–121.8. LOXAM J.R. & HEDGER R.S. (1983). Swine vesicular disease: clinical signs, diagnosis, epidemiology andcontrol. Rec. sci. tech. Off. int. Epiz., 2, 11–24.9. MANN J.A. (1981). Swine vesicular disease. In: Virus Diseases of Farm Animals, Vol. 2, Gibbs E.P.J., ed.Academic Press, London, UK, 365–381.10. NUNEZ J.I., BLANCO E., HERNANDEZ T., GOMEX-TEJEDOR C., MARTIN M.I., DOPAZO J. & SOBRINO F. (1998). A RT-PCR assay for the differential diagnosis of vesicular viral diseases of swine. J. Virol. Methods, 72, 227–235.11. VANGRYSPERRE W. & DE CLERCQ K. (1996). Rapid and sensitive polymerase chain reaction based ondetection and typing of foot-and-mouth disease virus in clinical samples and cell culture isolates, combinedwith a simultaneous differentiation with other genomically and/or symptomatically related viruses. Arch.Virol., 141, 331–344.** *NB: Existen laboratorios de referencia de la OIE para la Enfermedad vesicular porcina (ver Cuadro en laparte 3 de este Manual de animales terrestres o consultar la página web de la OIE para una listaactualizada: www.oie.int)Manual de la OIE sobre animales terrestres 2004 155