Micro SSP HLA DNA Typing Trays, DANISH VERSION - One Lambda
Micro SSP HLA DNA Typing Trays, DANISH VERSION - One Lambda
Micro SSP HLA DNA Typing Trays, DANISH VERSION - One Lambda
Create successful ePaper yourself
Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.
21001 Kittridge Street, Canoga Park, CA 91303-2801 USA | Tlf.: (818) 702-0042 Fax: (818) 702-6904 | WEB:www.onelambda.com<br />
INDLÆGSSEDDEL<br />
MICRO <strong>SSP</strong> <strong>HLA</strong> <strong>DNA</strong> TYPING TRAYS<br />
(MICRO <strong>SSP</strong> <strong>HLA</strong> <strong>DNA</strong>-TYPEBESTEMMELSESBAKKER)<br />
Til in vitro-diagnostisk brug.<br />
VIGTIGT: Se <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> produktreferencetabel (Dokument-id: M<strong>SSP</strong>_REF_TABLE_PI.DOC) til OLIproduktkatalognumre,<br />
specifikke produktkomponenter og krav<br />
TILSIGTET ANVENDELSE<br />
<strong>DNA</strong> typebestemmelse af <strong>HLA</strong> alleler, klasse I eller klasse II.<br />
SAMMENDRAG OG REDEGØRELSE<br />
Historisk har fastlæggelsesmetoden for bestemmelse af <strong>HLA</strong>-antigener været lymfocytotoksicitetstesten. 1 Ved fremkomsten<br />
af PCR-teknologier er <strong>DNA</strong>-baserede vævstypeteknikker imidlertid blevet rutine i laboratoriet. For de fleste <strong>DNA</strong>-baserede<br />
metodologier anvendes PCR-processen kun som et forstærkende trin til at opnå den nødvendige mål-<strong>DNA</strong>. <strong>HLA</strong>typebestemmelsesprocessen<br />
kræver dernæst et efterforstærkende trin for at kunne skelne mellem de forskellige alleler (feks.<br />
RFLP, SSOP, omvendt punktdiagram). I modsætning til andre PCR-baserede metoder, skelner den anvendte <strong>SSP</strong>-metodologi<br />
i <strong>One</strong> <strong>Lambda</strong>, Inc., <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <strong>DNA</strong>-typebestemmelsestesten mellem de forskellige alleler under PCR-processen. 2 Dette<br />
forkorter efterforstærkningsprocestiden til et enkelt gel-elektroforese detektionstrin. I modsætning til<br />
lymfocytotoksicitetsreaktionsskalaen (1 = negativ til 8 = positiv), er <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> testresultater enten positive eller negative.<br />
Dette afskaffer behovet for den komplicerede fortolkning af resultater. Yderligere kan enkelte nukleotide-ændringer være<br />
diskriminante i PCR-<strong>SSP</strong>, mens krydsreagerende grupper (CREG'er) giver større udfordringer til serologisk<br />
typebestemmelse. 3 Endelig, pga. <strong>DNA</strong>-typereagensernes syntetiske natur (feks. oligonukleotide-primere), er stabiliteten<br />
blevet tydeligt forbedret og lot til lot-varians reduceret.<br />
PRINCIP(PER)<br />
PCR-<strong>SSP</strong>-metodologien er baseret på princippet om, at fuldstændigt matchede oligonukleotide primere anvendes mere<br />
effektivt ved at forstærke en målsekvens, end en mismatchet oligonukleotid primer via rekombinant Taq-polymerase.<br />
Primerpar er designet til kun at have perfekte matcher med en enkelt allele eller gruppe alleler. Under strengt kontrollerede<br />
PCR-forhold, resulterer perfekt matchede par i forstærkelse af målsekvenser (dvs. et positivt resultat), mens mismatchede<br />
primerpar ikke resulterer i forstærkelse (dvs. et negativt resultat). Efter PCR-processen adskilles de forstærkede <strong>DNA</strong>fragmenter<br />
via agarose-gelelektroforese og visualiseres af farvning med ethidiumbromid og eksponering af ultraviolet lys.<br />
Fortolkning af PCR-<strong>SSP</strong>-resultater er baseret på tilstedeværelsen eller fraværet af et specifikt forstærket <strong>DNA</strong>-fragment.<br />
Eftersom forstærkning under PCR-reaktionen kan påvirkes uhensigtsmæssigt af forskellige faktorer (pipetteringsfejl, ringe<br />
<strong>DNA</strong>-kvalitet, tilstedeværelse af inhibitorer, osv.) er et internt kontrolprimerpar inkluderet i hver PCR-reaktion.<br />
Kontrolprimerparret forstærker et bevaret område af det humane -globin gen, som er til stede i alle humane <strong>DNA</strong>-prøver og<br />
anvendes til at verificere PCR-reaktionens integritet. Ved tilstedeværelsen af et positivt typebestemmelsesbånd (specifik<br />
forstærkelse af en <strong>HLA</strong>-allele) kan produktet af det interne kontrolprimerpar blive svag eller fraværende pga. forskellene i<br />
koncentrationen og smeltetemperaturer mellem de specifikke primerpar og det interne kontrolprimerpar. De forstærkede<br />
<strong>DNA</strong>-fragmenter af de specifikke <strong>HLA</strong> primerpar er mindre end produktet af det interne kontrolprimerpar, men større end det<br />
diffuse, ikke-inkorporerede primerbånd. Således visualiseres en positiv reaktion på en specifik <strong>HLA</strong> allele eller allele-gruppe<br />
på gel'en som et forstærket <strong>DNA</strong>-fragment mellem det interne kontrolproduktbånd og det ikke-inkorporerede primerbånd (se<br />
Forventede værdier/Gel-fortolkning).<br />
<strong>SSP</strong>-<strong>DNA</strong>T-PI-DA-00, Rev. 18 Side 1 af 9
<strong>One</strong> <strong>Lambda</strong> | Indlægsseddel: <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <strong>HLA</strong> <strong>DNA</strong>-typebestemmelsesbakker<br />
REAGENSER<br />
A. Identifikation<br />
<strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <strong>DNA</strong>-typebestemmelsesbakker giver sekvensspecifikke oligonukleotide primere til forstærkelse af <strong>HLA</strong>alleler<br />
og det humane -globin-gen via polymerase kædereaktionen (PCR). Præ-optimerede primere er til stede (tørrede)<br />
i forskellige brønde på en 96-brøndglasbakke på 0,2 ml med tynde sider til PCR og er klar til tilføjelsen af <strong>DNA</strong>-prøver,<br />
rekombinant Taq-polymerase og specielt formulerede dNTP-bufferblanding (<strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> D-blanding). Hver<br />
typebestemmelsesbakke omfatter et negativt kontrolreaktionsglas, der detekterer tilstedeværelsen af det interne kontrol-<br />
PCR-produkt genereret af <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <strong>DNA</strong>-typebestemmelsesbakken. Det interne kontrol-PCR-produkt, forstærket af<br />
det humane -globin-gen, er det PCR-produkt, der efter størst sandsynlighed er kontaminerende pga. dets forstærkelse i<br />
hver brønd. Mængden af hver primer justeres til optimal forstærkelse af 100 ng prøve <strong>DNA</strong>, når anvendt sammen med<br />
<strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> D-blanding, den foreskrevne mængde rekombinant Taq-polymerase og PCR-reaktionsprofilen, beskrevet<br />
yderligere i dette dokument (side 2). Se det vedlagte arbejdsark for specifikke alleler, som kan forstærkes via hvert<br />
primersæt under de specificerede PCR-forhold for prøven. For at få mere at vide om lotspecifikke primerlokationer, se<br />
Primerinformationsdokumentet.<br />
B. Advarsel eller forsigtighed<br />
1. Til in vitro-diagnostisk brug.<br />
2. Pipetter anvendt til post-PCR-manipulationer bør ikke anvendes til præ-PCR manipulationer.<br />
3. Advarsel om biologisk fare: Ethidiumbromid, der anvendes til farvning af <strong>DNA</strong> er en mulig carcinogen. Der skal<br />
altid bæres handsker, når farvet gel håndteres.<br />
4. Advarsel om biologisk fare: Alle blodprodukter skal behandles som potentielt infektiøse. Kildematerialet, som dette<br />
produkt stammer fra, blev fundet negativt ved testning i overensstemmelse med de test, der i øjeblikket er påkrævet<br />
af FDA (Food and Drug Administration i USA). Ingen kendte testmetoder kan med sikkerhed fastslå, at produkter<br />
fra humant blod ikke transmitterer infektiøse stoffer.<br />
5. Forsigtig: Bær UV-blokerende øjenbeskyttelse og se ikke direkte ind i UV-lyskilden direkte, når der kigges på eller<br />
fotograferes gel.<br />
6. Se sikkerhedsdatabladet (MSDS) for at få yderligere oplysninger.<br />
C. Brugsanvisning<br />
Se Brugsanvisning.<br />
D. Opbevaringsanvisninger<br />
Opbevar reagenser ved den temperatur, der er angivet på emballagen. Skal anvendes før den påtrykte udløbsdato.<br />
E. Påkrævet rensning eller behandling før anvendelse<br />
Se Brugsanvisning.<br />
F. Indikationer for ustabilitet<br />
1. Primersætbakkerne må ikke anvendes, hvis der er revner i glas eller på tudene, da revner kan resultere i<br />
fordampningstab.<br />
2. Hvis der er udfældet salte af opløsningen i D-blandingsalikvoterne under forsendelse eller opbevaring, opløses disse<br />
igen vha. langvarig vortex ved stuetemperatur (20 til 25 C).<br />
3. D-blandingsalikvoter bør være lyserøde til lyselilla i farve ved optøning ved stuetemperatur (20 til 25C). Ethvert<br />
D-blandingsalikvot uden den specificerede farve bør betragtes som ubrugelig.<br />
<strong>SSP</strong>-<strong>DNA</strong>T-PI-DA-00, Rev. 18 Side 2 af 9
<strong>One</strong> <strong>Lambda</strong> | Indlægsseddel: <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <strong>HLA</strong> <strong>DNA</strong>-typebestemmelsesbakker<br />
INSTRUMENTKRAV<br />
A. Programmering af den termiske cycler<br />
96-brønds GeneAmp® PCR-system 9600, 9700 eller Veriti 96-brønds termisk cykler (Applied Biosystems). Indstil<br />
rampehastigheden til 9600 for 96-brønds GeneAmp® PCR-systemet 9700. Indstil rampehastigheden til 9600<br />
emuleringstilstand for Veriti 96-brønds termisk cykler.<br />
<strong>One</strong> <strong>Lambda</strong> PCR-program (OLI-1)<br />
Antal cykler Trin Temp. (C) Tid (sek.)<br />
1 1 96 130<br />
2 63 60<br />
9 1 96 10<br />
2 63 60<br />
20 1 96 10<br />
2 59 50<br />
3 72 30<br />
Slut 1 4 ---<br />
For specifikke oplysninger om den termiske cykler, se fabrikantens brugermanual.<br />
B. 2,5% agarose gelpræparat<br />
(til <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> gel-system, OLI kat. nr. MGS108)<br />
1. Opsætning:<br />
a. Skub låsestiften på bundpladen til åben.<br />
b. Isæt gelboksen i bundpladen, der matcher de farvekodede sider for at sikre korrekt orientering.<br />
c. Lås gelboksen ind i bundpladen ved at skubbe låsestiften til den låste stilling.<br />
d. Anvend nivelleringsboblen og de tre højdejustérbare ben til nivellering af bundpladen.<br />
2. Vend og isæt de 14 gel-kamme helt ind i gelkammeholderen.<br />
3. Til 100 ml 1x tris-borat EDTA-buffer (1x TBE) med 0,5 g/ml ethidiumbromid (i en 500 ml glasflaske), tilføjes 2,5<br />
g agarose af elektroforesekvalitet. Varm indtil der dannes en homogen opløsning.<br />
4. Tilføj 30 ml gelopløsning i gelboksen. Sørg for, at agarosen dækker hele overfladen jævnt ved at hælde gelboksen frem<br />
og tilbage umiddelbart efter, at gelopløsningen er tilføjet. Anbring hurtigt gelkammeholderen på den fyldte gelboks ved<br />
at matche farvekodningen. Lad det stå i 15 minutter.<br />
5. Fjern gelkammene ved at løfte gelkammeholderen, mens der holdes i bundpladen. Tilsæt 10 ml 1xTBE, der<br />
indeholder 0,5 g/ml ethidiumbromim jævnt hen over gel'en, således at det fylder hver brønd.<br />
C. Gel-elektroforese<br />
(Til <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> gel-system, OLI kat. nr. MGS108)<br />
1. Efter færdiggørelse af PCR-reaktionen:<br />
Orientér <strong>DNA</strong>-primersætbakken og gelboksen med den negative kontrolbrønd i øverste venstre hjørne.<br />
Fjern forsigtigt bakkeforseglingen uden at stænke på prøverne.<br />
2. Overfør hver PCR-reaktion (10 l) i sekvens med 2,5% agarose-gel'en. Sørg for at overføre alle prøver i den korrekte<br />
sekvens. (Ingen tilsætning af elektroforesefarve er nødvendig.) Anvendelse af en 8 – 12 kanals Pipetman ® anbefales.<br />
Bemærk: Prøvernes rækkefølge er (for at matche arbejdsarket) fra venstre til højre, oven fra og ned.<br />
3. Dæk gelboksen med gelbokslåget ved at matche de farvekodede sider. Elektroforesér prøverne ved 140 - 150 volts, indtil<br />
den røde sporingsfarve er trængt omkring 0,5 cm ind i gel'en (ca. 3 – 5 minutter, afhængig af den anvendte agarose. Fjern<br />
låget.<br />
4. Skub låsestiften på bundpladen til åben og fjern gelboksen. Overfør gelboksen til en UV-transilluminator. Fotografér den<br />
færdige gel.<br />
5. Orientér fotografiet med den negative kontrolreaktion i øverste venstre hjørne og mærk de tilsvarende positive allelegrupper<br />
på arbejdsarket, der var vedlagt bakken.<br />
<strong>SSP</strong>-<strong>DNA</strong>T-PI-DA-00, Rev. 18 Side 3 af 9
<strong>One</strong> <strong>Lambda</strong> | Indlægsseddel: <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <strong>HLA</strong> <strong>DNA</strong>-typebestemmelsesbakker<br />
PRØVETAGNING OG -FORBEREDELSE<br />
A. <strong>DNA</strong> kan oprenses af humane leukocytter vha. en hvilken som helst foretrukket metode.<br />
B. <strong>DNA</strong>-prøven, der skal anvendes til PCR-<strong>SSP</strong>-analyse bør resuspenderes i sterilt vand eller i 10 mM Tris-HCl, pH 8,0 –<br />
9,0 ved en koncentration på 25 - 200 ng/l i A260/A280-forholdet på 1,65 – 1,80.<br />
C. Prøver bør ikke resuspenderes i opløsninger, der indeholder chelaterende agenter, såsom EDTA, over 0,5 mM i<br />
koncentration.<br />
D. <strong>DNA</strong>-prøver kan anvendes straks efter isolering eller opbevaret ved –20 C i længere tid (over 1 år) med ingen uheldige<br />
påvirkninger af resultater.<br />
E. <strong>DNA</strong>-prøver bør forsendes ved 4 C eller under for at bevare deres integritet under transport.<br />
PROCEDURE<br />
A. Leverede materialer<br />
1. <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <strong>DNA</strong>-primersætbakker<br />
2. Præ-alikvottede D-blandingsglas (korrekt antal til test)<br />
3. Bakkeforseglinger (korrekt antal til test)<br />
B. Påkrævede materialer, der ikke er vedlagte<br />
Rekombinant Taq-polymerase (5 enheder/l)<br />
Pipetteringsanordninger, såsom: Gilson ® P-20, Gilson ® P200 Pipetman ®<br />
Pipettespidser til engangsbrug<br />
Vortexmixer<br />
Mikrocentrifuge<br />
Mikroglasopbevaringsstativ til PCR-bakke og låg (Robbins Scientific, kat. nr. 1044-39-5)<br />
Trykpude til anvendelse sammen med bakke (OLI kat. nr. <strong>SSP</strong>PAD, <strong>SSP</strong>PAD384, <strong>SSP</strong>PADGRY). Anvend kun den<br />
trykpude, der specifikt passer til din termisk cykler. Se <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> trykpudeprotokol (PCR_PAD_INS.DOC.)<br />
Bemærk: Trykpuden kan anvendes til maksimalt 300 PCR-kørsler. Bestil venligst en ny trykpude, hvis overfladen<br />
på puden, der kontakter bakkeforseglingen ikke længere er jævn.<br />
Termisk cykler til PCR med 96-brønde-format og bakke/holder til 0,2 ml tyndvæggede reaktionsglas<br />
Varmeplade eller mikroovn til opvarmning af agaroseopløsninger<br />
Elektroforeseanordning/strømforsyning (150V minimumskapacitet)<br />
UV-transilluminator (Eksempel: Fotodyne FOTO/UV 21)<br />
Fotografisk eller billeddokumentationssystem<br />
1x TBE buffer (89mM tris-borat; 2 mM dinatrium EDTA, pH 8,0) med 0,5 g/ml ethidiumbromid eller 5XTBE<br />
buffer med ethidiumbromid (OLI kat. nr. 5XTBE100)<br />
Agarose af elektroforesekvalitet (feks. FMC Seakem ® LE)<br />
C. Fremgangsmåde trin for trin.<br />
Der henvises til Brugsanvisning nedenfor.<br />
BRUGSANVISNING<br />
A. Tilberedelse af prøve<br />
1. Oprens genomisk <strong>DNA</strong> af leukocytprøve med den foretrukne metode. Endelig <strong>DNA</strong>-koncentration bør være 25 -<br />
200ng/l (100ng/l er optimalt) med A260/A280-forholdet mellem 1,65-1,80.<br />
2. For specifikke oplysninger om prøvetilberedelse og -opbevaring, se Prøvetagning og –forberedelse ovenfor.<br />
3. Udfør PCR på den oprensede <strong>DNA</strong>-prøve vha. en <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <strong>HLA</strong> <strong>DNA</strong>-typebestemmelsesbakke eller opbevar<br />
<strong>DNA</strong>-prøven ved –20C eller under indtil klar til typebestemmelse.<br />
B. Tilberedelse af reagens/udstyr<br />
1. Programmér en termisk cykler til at køre <strong>One</strong> <strong>Lambda</strong> PCR-programmet. (Se "Instrumentkrav" ovenfor.)<br />
2. Hav klar: rekombinant Taq-polymerase (5 enheder/l) Opbevar ved -20 C.<br />
3. Forbered elektroforesegel (2,5% agarose) vha. <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> gel-systemet (kat. nr. MGS108) eller med mindst 96<br />
prøvebrønde (anbring rækker med brønde mindst 1 cm fra hinanden).<br />
<strong>SSP</strong>-<strong>DNA</strong>T-PI-DA-00, Rev. 18 Side 4 af 9
<strong>One</strong> <strong>Lambda</strong> | Indlægsseddel: <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <strong>HLA</strong> <strong>DNA</strong>-typebestemmelsesbakker<br />
C. Vejledning til pipettering af Taq-polymerase<br />
<strong>One</strong> <strong>Lambda</strong>'s kvalitetskontroltests angiver, at den viste mængde på Taq-polymeraseetiketten er mere end rigelig til<br />
antallet af tests angivet på dette produkt. Hvis yderligere Taq er påkrævet, skal det bestilles direkte fra F. Hoffmann-La<br />
Roche eller deres repræsentant.<br />
For at undgå spild, følges de simple instruktioner angivet nedenfor til pipettering af Taq-polymerase.<br />
Bemærk: Taq-polymerase er meget viskøs og der skal udvises megen forsigtighed ved alikvoteringsprocessen. Hvis de<br />
nedenfor beskrevne trin ikke følges, kan det resultere i reagenstab.<br />
1. Pipettér langsomt vha. en kalibreret Gilson ® Pipetman ® . (En P10 Pipetman ® anbefales til øget nøjagtighed.)<br />
2. Pipettespidsen bør blot akkurat passere Taq's overfladelag.<br />
Advarsel: Pipettespidsen må ikke nedsænkes i Taq.<br />
3. Tør omhyggeligt overskydende Taq fra pipettespidsen på kanten af hætteglasset.<br />
D. Trinvis procedure<br />
1. Fjern fra den angivne opbevaringstemperatur: Mængden (glasset) af <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> D-blanding, der matcher den<br />
valgte <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> primersætbakke, primersætbakken(erne) og det behørige antal <strong>DNA</strong>-prøver. Optø ved<br />
stuetemperatur (20 til 25 C).<br />
Bemærk: Du kan skære bakke og bakkeforsegling op i det antal tests, der er nødvendige for en enkelt arbejdssession.<br />
Sæt straks de ubrugte portioner tilbage i den korrekte opbevaringstemperatur.<br />
2. Vortex <strong>DNA</strong>-prøver til blanding.<br />
3. Anbring primersætbakken i et mikroglasopbevaringsstativ til PCR-bakke (Robbins Scientific, kat. nr. 1044-39-5) og<br />
fjern bakkens etiket.<br />
4. Fjern rekombinant Taq-polymerase fra fryseren og opbevar på is, indtil det skal anvendes.<br />
5. Vha. en Pipetman® (eller tilsvarende) tilsættes 1 l <strong>DNA</strong>-fortynder til reaktionsglasset med den negative kontrol på<br />
primersætbakken.<br />
6. Vha. en Pipetman® (eller tilsvarende) tilføjes rekombinant Taq-polymerase (5 enheder/l) til <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> Dblandingsglasset.<br />
(Se <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> produkttabel vedrørende mængden.)<br />
7. Sæt hætten på glasset og vortex i 5 sekunder. Impulscentrifugér <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> D-blandingsglasset i en<br />
mikrocentrifuge for at bringe al væske ned fra siderne af glasset.<br />
8. Vha. en P20 Pipetman® (eller lignende), pipettér 9 l <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> D-blanding i det negative kontrolreaktionsglas.<br />
9. Vha. en Pipetman® (eller tilsvarende) tilføjes <strong>DNA</strong>-prøven til <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> D-blandingsglasset. (Se <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong><br />
produkttabel vedrørende mængden.)<br />
10. Sæt hætten på glasset og vortex i 5 sekunder. Impulscentrifugér <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> D-blandingsglasset i en<br />
mikrocentrifuge.<br />
11. Vha. en P20 Pipetman® eller en elektronisk Pipetman® alikvoteres 10 l af prøve-reaktionsblandingen fra <strong>Micro</strong><br />
<strong>SSP</strong> D-blandingsglasset i hvert reaktionsglas, med undtagelse af det negative kontrolreaktionsglas fra <strong>Micro</strong><br />
<strong>SSP</strong> primersætbakken.<br />
Vigtigt: Sørg for at give ovenstående prøve primerne (tørret i bunden af hver reaktionsglas) for at undgå<br />
krydskontaminering mellem glas. Rør den indvendige side af glasset med pipettespidsen for at lade prøven glide ned<br />
til bunden af glasset. Tjek, at alle prøver er faldet ned til bunden af hvert glas. Hvis ikke, bankes der let på<br />
arbejdsbordet, således at alle prøver bundfælder sig, før du begynder PCR.<br />
12. Dæk reaktionsglassene med den vedlagte bakkeforsegling. Sørg for, at alle reaktionsglas er helt dækket af<br />
bakkeforseglingen for at sikre fuldstændig tætning og for at forhindre fordampningstab under PCR.<br />
13. Anbring <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> primersætbakken i termisk cykler eller lignende model med en passende glasbakkeadapter.<br />
14. Anbring en trykpude oven på bakken med den teksturerede side op før termisk cyklerlåget lukkes. (Se <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong><br />
trykpudeprotokol for vejledning vedrørende den specifikke pude, der skal anvendes sammen med din termisk<br />
cykler.)<br />
15. Indtast dit <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> PCR-programnummer. Angiv en mulighed for 10 l reaktionsmængde.<br />
16. Start PCR-programmet. Programmet tager ca. 1 time og 16 minutter. Det sidste trin vil holde prøven på 4 C, indtil<br />
kørslen er stoppet.<br />
17. Fjern primersætbakken fra termisk cykler . Fjern forsigtigt bakkeforseglingen uden at stænke på prøverne. Eller<br />
opbevar prøverne i primersætbakken ved -20 C for senere gel-elektroforese.<br />
18. Overfør hver PCR-reaktion (10 l) i sekvens med en 2,5% agarose-gel i <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> gelsystemet (OLI kat. nr.<br />
MGS108). (Anvendelse af en 8- eller 12-kanals Pipetman® eller af 96-brøndsoverførselsanordningen (OLI kat. nr.<br />
TRNDV96) anbefales kraftigt.)<br />
<strong>SSP</strong>-<strong>DNA</strong>T-PI-DA-00, Rev. 18 Side 5 af 9
<strong>One</strong> <strong>Lambda</strong> | Indlægsseddel: <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <strong>HLA</strong> <strong>DNA</strong>-typebestemmelsesbakker<br />
Bemærk: Sørg for at overføre alle prøver i den korrekte sekvens, og vend primersætbakken med den negative<br />
kontrolreaktionsbrønd i øverste venstre hjørne. Prøvernes rækkefølge er (for at matche arbejdsarket)fra venstre til<br />
højre, oven fra og ned. Ingen tilsætning af elektroforesefarve er nødvendig.<br />
19. Elektroforesér prøverne ved 140 - 150 volts indtil den røde sporingsfarve er trængt omkring 0,5 cm ind i gel'en (ca.<br />
3 – 5 minutter, afhængig af den anvendte agarose.<br />
20. Fotografér gel'en på en UV-transilluminator.<br />
21. Fortolk typebestemmelsesresultaterne vha. arbejdsarket, der var vedlagt bakkerne eller vha. <strong>HLA</strong>-softwaret, der fås<br />
fra <strong>One</strong> <strong>Lambda</strong>, Inc.<br />
Bemærk: Når <strong>One</strong> <strong>Lambda</strong>'s <strong>DNA</strong>-typebestemmelsesbakker kun fylder nogle få rækker af elektroforesegel'en, er det muligt at<br />
anbringe adskillige prøver på én gel. Sørg for omhyggeligt at registrere gel'ens positioner.<br />
RESULTATER<br />
Allele-grupper DR 72<br />
serologi<br />
DRB1*01 12 12<br />
DRB1*15 24 24<br />
DRB1*16 2 2<br />
DRB1*0301, 0304 6 6<br />
DRB1*0302, 0303 6 6<br />
DRB1*04 14 14<br />
DRB1*11 23 a<br />
24<br />
DRB1*12 5 5<br />
DRB1*13 17 17<br />
DRB1*14 11 b<br />
<strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong><br />
10<br />
DRB1*07 16 16<br />
DRB1*08 7 7<br />
DRB1*09 5 5<br />
DRB1*10 5 5<br />
DRB5* 26 26<br />
DRB3* 57 c<br />
56<br />
DRB4* 32 d<br />
33<br />
DQB1*05 34 34<br />
DQB1*06 32 32<br />
DQB1*02 24 24<br />
DQB1*0301, 0304 22 22<br />
DQB1*0302, 0304 11 11<br />
DQB1*0303 3 3<br />
DQB1*04 11 11<br />
a, b) Afvigelserne på DRB1*11 og DRB1*14 er baseret på en prøve i<br />
hvilken serologi tildelte en DRB1*14 mens <strong>DNA</strong>-typebestemmelse<br />
tildelte DRB1*1117. DRB1*14 serologiske reagenser er<br />
monoklonale antistoffer, som forventes at detektere epitopen<br />
31 FHNQEEF 37 baseret på mønsteranalyse med DRB1*14 alleler.<br />
Denne aminosyresekvens deles også med DRB1*1117 (baseret på<br />
offentliggjorte aminosyresekvenser).<br />
c) Uoverensstemmelsen på DRB3 er baseret på en prøve, der blev<br />
tildelt en homozygous DRB1*08 både via serologi og <strong>DNA</strong>typebestemmelse,<br />
men blev tildelt endnu en DRB3* via serologi.<br />
DRB1*08 og DRB3* deler aminosyresekvenser, som under<br />
dobbeltdosiseffekterne af DRB1*08 homozygositet kan generere<br />
falskpositive reaktioner. 6<br />
d) Den falsknegative uoverensstemmelse på DRB4 er baseret på en<br />
prøve i hvilken kun <strong>DNA</strong>-typebestemmelse tildelte en DRB4.<br />
Opgaver både via serologi og <strong>DNA</strong>-typebestemmelse viser, at<br />
denne prøve indeholder DR7-DQ9-haplotypen, som man ved<br />
mangler udtryk for DRB4-allelen ved proteinniveauet. 7<br />
Bemærk: Lotspecifikke præstationsdata fås på anmodning.<br />
PROCEDURENS BEGRÆNSNINGER<br />
A. PCR-<strong>SSP</strong> er en dynamisk proces, der kræver yderst kontrollerede forhold for at sikre diskriminantforstærkelse. Proceduren,<br />
der er vedlagt dette produkt, skal overholdes nøje.<br />
B. Den ekstraherede prøve-<strong>DNA</strong> giver skabelonen for den specifikke forstærkelsesproces og skal således have dens<br />
koncentration og renhed inden for værdiområderne, der er specificeret i denne procedure.<br />
C. Alle instrumenter (feks. PCR-maskine, pipetteringsanordninger) skal kalibreres i henhold til fabrikantens anbefalinger. For<br />
at få lotspecifikke oplysninger, se dokumentet vedrørende Opløsningsbegrænsninger.<br />
D. For at få lotspecifikke oplysninger, se dokumentet vedrørende Opløsningsbegrænsninger.<br />
FORVENTEDE VÆRDIER<br />
A. Data-analyse<br />
1. Et internt kontrolbånd (langsomtvandrende) bør altid være synligt i negative brønde (med undtagelse af negative<br />
kontrolbrønde) som en kontrol for vellykket forstærkelse. Ikke-forstærkelse af enhver brønd kan annullere testresultater.<br />
2. Et hurtigtvandrende, positivt typebestemmelsesbånd vil blive observeret på den elektroforetiske gel, hvis et specifikt<br />
<strong>HLA</strong>-gen blev forstærket under PCR. Dette angiver et positivt restresultat.<br />
3. Det interne kontrolbånd kan være svagt eller mangle i positive brønde.<br />
<strong>SSP</strong>-<strong>DNA</strong>T-PI-DA-00, Rev. 18 Side 6 af 9
<strong>One</strong> <strong>Lambda</strong> | Indlægsseddel: <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <strong>HLA</strong> <strong>DNA</strong>-typebestemmelsesbakker<br />
4. Match mønstret af positive brønde med oplysningerne på <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> arbejdsarket for at opnå <strong>HLA</strong>-typebestemmelsen<br />
af prøve-<strong>DNA</strong>'en.<br />
5. Tilstedeværelsen af det interne kontrolbånd og/eller det positive typebestemmelsesbånd i negative kontrolbrønde<br />
ugyldiggør alle testresultater.<br />
6. Valgfri analyse – <strong>HLA</strong> Fusion software.<br />
B. Gelfortolkning*<br />
Positiv<br />
reaktion<br />
Negativ<br />
reaktion<br />
Ikkeforstærkelse<br />
Brønd<br />
Internt kontrolbånd<br />
Positivt<br />
typebestemmelsesbånd<br />
Primerbånd<br />
*Det interne kontrolbånd og brede uinkorporerede primerbånd tjener som størrelsesmarkører. Ethvert synligt bånd mellem<br />
de to markører i forskellige størrelse bør betragtes som positive typebestemmelsesbånd.<br />
SPECIFIKKE PRÆSTATIONSEGENSKABER<br />
En sammenligning mellem <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> og serologiske <strong>HLA</strong>-typebestemmelsesmetodologier blev udført for at vurdere<br />
nøjagtigheden af <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <strong>HLA</strong>-typebestemmelsessystemet. I denne sammenligning blev 81 tilfældige fuldblodsprøver<br />
indsamlet og analyseret for deres <strong>HLA</strong> klasse II-typebestemmelse vha. <strong>One</strong> <strong>Lambda</strong>, Inc., <strong>HLA</strong> klasse II<br />
vævstypebestemmelsesbakke DR72F og <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> generisk <strong>HLA</strong> klasse II <strong>DNA</strong> typebestemmelsesbakke. Resultaterne viser<br />
en 96% (78/81) overensstemmelse mellem de to metoder. Tabellen på næste side repræsenterer det samlede antal gange hver<br />
specificitet blev tildelt via de to forskellige metoder. (Fremhævede resultater angiver uoverensstemmelse mellem de to metoder.)<br />
BIBLIOGRAFI<br />
1) Terasaki, P.I., Bernoco, F., Park, M.S., Ozturk, G., and Iwaki, Y. <strong>Micro</strong>droplet testing for <strong>HLA</strong>-A, -B, -C and -D antigens.<br />
American Journal of Clinical Pathology 69:103-120, 1978.<br />
2) Newton, C.R., Graham, A., Heptinstall, E., Powell, S.J., Summers, C., Kalsheker, N., Smith, J.C., and Markham, A.F.<br />
Analysis of any point mutation in <strong>DNA</strong>. The amplification refractory mutation system (ARMS). Nucleic Acids Research 17:<br />
2503-2516, 1989.<br />
3) Slater, R.D. and Parham, P. Mutually exclusive public epitopes of <strong>HLA</strong>-A,B,C Molecules. Human Immunology 26: 85-89,<br />
1989.<br />
4) Bodmer J., Marsh S., Albert E., Bodmer W., Bontrop R., Charron D., Dupont B., Erlich H., Mach B., Mayr W., Parham P.,<br />
Sasazuki T., Schreuder G., Strominger J., Svejgaard A. and Terasaki P. Nomenclature for factors of the <strong>HLA</strong> system, 1995.<br />
Human Immunology 43:149-164, 1995.<br />
5) Terasaki, P.I. Histocompatibility Testing, 1980. UCLA Tissue <strong>Typing</strong> Laboratory, Los Angeles, California.<br />
6) Savage, D.A., Bidwell, J.L., Cullen, C., Bidwell, E.A., and Middleton, D. Identification of <strong>HLA</strong>-DRw52 associated antigens<br />
using <strong>HLA</strong> class II allogenotyping. Tissue Antigens 32: 278-285, 1988.<br />
7) Sutton, V.R., Kienzle, B.K., and Knowles, R.W. An altered splice site is found in the DRB4 gene that is not expressed in<br />
<strong>HLA</strong>-DR7, Dw11 individuals. Immunogenetics 29: 317-322, 1989.<br />
<strong>SSP</strong>-<strong>DNA</strong>T-PI-DA-00, Rev. 18 Side 7 af 9
<strong>One</strong> <strong>Lambda</strong> | Indlægsseddel: <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <strong>HLA</strong> <strong>DNA</strong>-typebestemmelsesbakker<br />
FEJLFINDING<br />
Problem Mulige årsager Løsninger<br />
Ingen bånd eller<br />
svage bånd<br />
<strong>DNA</strong> Ikke anvendt nok<br />
Ikke ren nok (A260/A280 ikke inden for<br />
1,65 – 1,80)<br />
PCR-inhibitor til stede (feks. EDTA over<br />
0,5 mM)<br />
Rekombinant Taqpolymerase<br />
Ikke anvendt nok<br />
Enzym degraderet<br />
Gentag test; angiv mængde<br />
angivet i <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <br />
produkttabel.<br />
Gentag <strong>DNA</strong>-præparationen;<br />
kontrollér at A260/A280 er inden<br />
for 1,65 – 1,80, og gentag<br />
dernæst testen.<br />
Gentag <strong>DNA</strong>-præparationen;<br />
resuspendér <strong>DNA</strong> i opløsning med<br />
EDTA < 0,5 mM, og gentag<br />
dernæst testen.<br />
Gentag test; angiv mængde<br />
angivet i <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <br />
produkttabel.<br />
Gentag test; anvend frisk glas<br />
enzym.<br />
EtBr Ikke anvendt nok Klargør 1 X TBE med EtBr à 0,5<br />
g/ml. Gentag test.<br />
Trykpude Trykpude slidt op Udskift trykpude efter 300 PCRkørsler.<br />
Falske bånd <strong>DNA</strong> For meget anvendt<br />
Ikke ren nok (A260/A280 ikke inden for<br />
1,65 – 1,80)<br />
Kontamineret (andet <strong>DNA</strong> eller PCRprodukt)<br />
Bånd i negativ<br />
kontrol<br />
Rekombinant Taqpolymerase<br />
VAREMÆRKER ANVENDT I DETTE<br />
DOKUMENT/PRODUKT<br />
<strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <strong>One</strong> <strong>Lambda</strong> Inc.<br />
GeneAmp Perkin-Elmer<br />
Gentag test; angiv mængde<br />
angivet i <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <br />
produkttabel.<br />
Gentag <strong>DNA</strong>-præparationen;<br />
kontrollér at A260/A280 er inden<br />
for 1,65 – 1,80, og gentag<br />
dernæst testen.<br />
Anvend nye alikvotter for alle<br />
buffere/reagenser til <strong>DNA</strong>ekstraktion<br />
og PCR; gentag <strong>DNA</strong>ekstraktion<br />
og test.<br />
For meget anvendt Gentag test; angiv mængde<br />
angivet i <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <br />
produkttabel.<br />
EtBr For meget anvendt Klargør 1 X TBE med EtBr à 0,5<br />
g/ml. Gentag test.<br />
Reagenser Kontamineret (andet <strong>DNA</strong>- eller PCRprodukt)<br />
Fotodyne FOTO/UV 21 FOTODYNE Incorporated<br />
Anvend nye alikvotter for alle<br />
buffere/reagenser til <strong>DNA</strong>ekstraktion<br />
og PCR; gentag <strong>DNA</strong>ekstraktion<br />
og test.<br />
FMC SeaKem FMC Corporation<br />
ARMS <br />
Gilson ® og Pipetman ®<br />
Zeneca Limited<br />
Rainin Instrument Co., Inc.<br />
Veriti Applied Biosystems<br />
<strong>SSP</strong>-<strong>DNA</strong>T-PI-DA-00, Rev. 18 Side 8 af 9
<strong>One</strong> <strong>Lambda</strong> | Indlægsseddel: <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <strong>HLA</strong> <strong>DNA</strong>-typebestemmelsesbakker<br />
ANVENDTE PATENTER I DETTE DOKUMENT<br />
Bemærkning til køber vedrørende licenseret produkt: Købsprisen af dette produkt inkluderer begrænsede, ikke-overførbare rettigheder under<br />
amerikanske patenter 4,683,202; 4,683,195 og 4,965,188 og deres udenlandske modparter, ejet af Roche Molecular Systems, Inc. og F.<br />
Hoffmann-LaRoche Ltd ("Roche"), som består i kun at anvende denne mængde af produktet til at praktisere polymerase kædereaktions-<br />
("PCR") processen beskrevet i nævnte patenter kun til <strong>HLA</strong>-typebestemmelsesanvendelser af køber udelukkende til organ, knoglemarv eller<br />
vævstransplantation og ekskluderer udtrykkeligt analyse af retslægeligt bevis eller faderskabskontrol. Retten til at anvende dette produkt med<br />
henblik på at udføre og tilbyde kommercielle tjenesteydelser mht. <strong>HLA</strong>-typebestemmelse til organ- eller vævstransplantation vha. PCR,<br />
herunder rapportering af resultaterne af købers aktiviteter mod et gebyr eller andet kommercielt vederlag, gives hermed også. Yderligere<br />
oplysninger vedrørende køb af licenser til at anvende PCR kan fås ved i USA at kontakte Director of Licensing, Roche Molecular Systems,<br />
Inc., 1145 Atlantic Avenue, Alameda, California 94501, og uden for USA, PCR Licensing Manager, F. Hoffmann-La Roche Ltd,<br />
Grenzacherstr.124, CH-4070 Basel, Schweiz.<br />
<strong>SSP</strong>-teknologi er licenseret af Zeneca Limited, gennem dets Zeneca Diagnostics-virksomhed, Blacklands Way, Abingdon Business Park,<br />
Abingdon, Oxfordshire, England OX14 IDY og dækket under følgende patenter tilhørende Zeneca Corporation: Europæisk patentnr. 0 332 435<br />
B1, amerikansk patentnr. 5,595,890, ved navn "Method of detecting nucleotide sequences," og canadisk patentnr. 1323592 samt tilsvarende<br />
patenter og patentansøgninger verden over.<br />
<strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> <strong>DNA</strong>-typebestemmelsesreagenser fremstilles og forhandles af <strong>One</strong> <strong>Lambda</strong>, Inc., 21001 Kittridge Street, Canoga Park, CA<br />
91303, U.S.A. Rekombinant Taq-polymerase fremstilles af F. Hoffmann-LaRoche.<br />
EUROPÆISK AUTORISERET REPRÆSENTANT<br />
MDSS GmbH, Schiffgraben 41, D-30175 Hannover, Tyskland<br />
REVISIONSHISTORIE<br />
Revision Dato Beskrivelse af revision<br />
16 2009/07<br />
17 2011/12<br />
Side 3, Vedlagte materialer; fjern reference til <strong>Micro</strong> <strong>SSP</strong> referencetabel. Flyt Taq-polymrase til<br />
Påkrævede materialer, der ikke er vedlagt.<br />
Tilføj fodnote sammen med 0197 (0197 gælder kun for produkter i Bilag II, Liste B). Tilføj<br />
yderligere CE-mærke for produkter, der ikke indgår i Bilag II, Liste B.<br />
18 2012/11 Tilføj Fusion-software som en valgmulighed. Ændret øverste overskrift.<br />
*<br />
*0197 Gælder kun for produkter i Bilag II, Liste B.<br />
<strong>SSP</strong>-<strong>DNA</strong>T-PI-DA-00, Rev. 18 Side 9 af 9