22.08.2013 Views

BProbeTec ET Legionella pneumophila (LP) Amplified DNA ... - BD

BProbeTec ET Legionella pneumophila (LP) Amplified DNA ... - BD

BProbeTec ET Legionella pneumophila (LP) Amplified DNA ... - BD

SHOW MORE
SHOW LESS

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.

Program 5: Dette program aspirerer 100 µL; dispenserer 100 µL, og blander 50 µL tre gange Pipettorens display<br />

skal vise som følger:<br />

Fill 100 µL – SII<br />

Dispense 100 µL – SII<br />

Mix 50 µL – SIII<br />

Zero (nul) (blinker skiftevis)<br />

C Pladelayout:<br />

Pladelayoutrapporten genereres fra <strong>BD</strong> ProbeTec <strong>ET</strong> instrumentet efter analysetype, præparatidentifikation,<br />

kontrollotnumre, og kitlotnumre logges ind i systemet Pladelayoutrapporten viser det fysiske layout af præparater<br />

og kontroller for hver plade, der skal testes Denne orientering bruges til både primermikrobrøndpladen og<br />

amplifikationsmikrobrøndpladen For <strong>LP</strong> analysen er primermikrobrøndene fuldkommen grå mikrobrøndstrimler<br />

Amplifikationsmikrobrøndene er gråstribede mikrobrøndstrimler<br />

D Bearbejdning af præparater fra de nedre luftveje:<br />

Procedurerelaterede bemærkninger:<br />

• Gennemse QIAGEN QIAamp <strong>DNA</strong> fæces minikit håndbogen for vigtige procedurerelaterede bemærkninger og<br />

forholdsregler inden De starter<br />

• Fyld et vandbad med destilleret vand og opvarm til 70 °C (± 5 °C) inden De starter på bearbejdning af præparater<br />

• Brug sprit-resistente penne til at mærke beholdere og glas<br />

• Skift pipettespidser mellem alle væskeoverførsler Det anbefales at bruge spidser med aerosolbarriere<br />

• Lad <strong>BD</strong> ProbeTec <strong>ET</strong> luftvejspræparat- og mediefortynder (CF/<strong>LP</strong>/MP) opnå stuetemperatur og bland forsigtigt<br />

ved at vende den op og ned inden brug<br />

• Afmål den nødvendige mængde <strong>BD</strong> ProbeTec <strong>ET</strong> luftvejspræparat- og mediefortynder (CF/<strong>LP</strong>/MP) ned i en ren<br />

beholder Den nødvendige mængde bestemmes ved at bruge 0,4 mL for hvert præparat og tilsætte yderligere<br />

1 - 2 mL, så det er let at pipettere Undgå kontaminering af fortynderen - Hæld ikke tiloversbleven<br />

fortynder tilbage i flasken<br />

1 Klargør QIAGEN reagenser (se "Klargøring af reagenser" i QIAamp <strong>DNA</strong> fæces minikit håndbogen)<br />

2 Lad præparaterne nå stuetemperatur<br />

3 Mærk et 2 mL glas med trykhætte for hvert præparat, der skal testes<br />

Følgende trin skal udføres i et biologisk sikkerhedsskab (BSC):<br />

4 Udsæt præparaterne for impulsslyngning i 5 - 15 s for at blande grundigt<br />

5 Pipettér 350 µL af præparatet i det mærkede glas<br />

BEMÆRK: Det kan være vanskeligt at pipettere nøjagtige prøver fra ekspektoratpræparater Hvis dette er tilfældet,<br />

bruges gradueringerne på glassets side som en hjælp til at sikre, at det korrekte volumen tilføres i glasset<br />

Alternativt bruges et glas, hvori der er blevet dispenseret 350 µL vand som en vejledning<br />

6 SKIFT HANDSKER efter tilsætning af præparater<br />

7 Pipettér 150 µL QIAGEN ASL buffer i hvert prøveglas<br />

8 Pipettér 25 µL QIAGEN proteinase K i hvert prøveglas<br />

9 Pipettér 500 µL QIAGEN ASL buffer i hvert prøveglas<br />

10 Sæt hætte på hvert glas og foretag impulsslyngning i 5 s Anbring glassene i et vandbadstativ med et låg, der<br />

kan skrues på<br />

Følgende trin kan udføres uden for et biologisk sikkerhedsskab (BSC):<br />

11 Inkubér glassene i det 70 °C (± 5 °C) vandbad i 15 min<br />

12 Efter 15 min tages glassene op af vandbadet, og de centrifugeres (16 000 x g) i ca 5 s<br />

13 Tag glassene ud af centrifugen Åbn hvert glas og tilsæt 500 µL af 96 - 100 % ethanol<br />

14 Sæt igen hætte på hvert glas og udsæt det for impulsslyngning i 5 s<br />

15 Centrifugér præparaterne (16 000 x g) i ca 5 s<br />

16 Mærk en QIAGEN udskillelseskolonne og et opsamlingsglas for hvert præparat<br />

17 Overfør 700 µL af præparatet i den korrekt mærkede QIAGEN udskillelseskolonne<br />

18 Centrifugér glassene (16 000 x g) i 1 min<br />

19 Overfør kolonnerne til de nye QIAamp opsamlingsglas Bortskaf glassene med filtratet<br />

20 Overfør forsigtigt 700 µL mere af præparatet i den korrekte kolonne<br />

21 Centrifugér glassene (16 000 x g) i 1 min<br />

22 Overfør kolonnerne til rene QIAamp opsamlingsglas Bortskaf glassene med filtratet<br />

23 Åbn QIAamp kolonnerne og tilsæt 500 µL QIAGEN AW1 vaskebuffer til hver<br />

24 Centrifugér glassene (16 000 x g) i 1 min<br />

25 Overfør kolonnerne til de nye QIAamp opsamlingsglas Bortskaf glassene med filtratet<br />

26 Åbn QIAamp kolonnerne og tilsæt 500 µL QIAGEN AW2 vaskebuffer til hver<br />

27 Centrifugér glassene (16 000 x g) i 3 min<br />

28 Overfør kolonnerne til endelige, mærkede QIAamp opsamlingsglas Bortskaf glassene med filtratet<br />

BEMÆRK: Opsamlingsglasset skal være mærket på dette tidspunkt<br />

BEMÆRK: Vær omhyggelig med at sørge for, at der ikke hænger væske fast i bunden af kolonnen Overførsel af<br />

residualvask i opsamlingsglasset kan påvirke resultaterne<br />

29 Åbn kolonnerne og tilsæt 225 µL QIAGEN AE elueringsbuffer til hver<br />

30 Inkubér ved stuetemperatur i 1 min<br />

31 Centrifugér glassene (16 000 x g) i 1 min<br />

32 Bortskaf kolonnerne<br />

4

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!