BProbeTec ET Legionella pneumophila (LP) Amplified DNA ... - BD
BProbeTec ET Legionella pneumophila (LP) Amplified DNA ... - BD
BProbeTec ET Legionella pneumophila (LP) Amplified DNA ... - BD
You also want an ePaper? Increase the reach of your titles
YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.
Program 5: Dette program aspirerer 100 µL; dispenserer 100 µL, og blander 50 µL tre gange Pipettorens display<br />
skal vise som følger:<br />
Fill 100 µL – SII<br />
Dispense 100 µL – SII<br />
Mix 50 µL – SIII<br />
Zero (nul) (blinker skiftevis)<br />
C Pladelayout:<br />
Pladelayoutrapporten genereres fra <strong>BD</strong> ProbeTec <strong>ET</strong> instrumentet efter analysetype, præparatidentifikation,<br />
kontrollotnumre, og kitlotnumre logges ind i systemet Pladelayoutrapporten viser det fysiske layout af præparater<br />
og kontroller for hver plade, der skal testes Denne orientering bruges til både primermikrobrøndpladen og<br />
amplifikationsmikrobrøndpladen For <strong>LP</strong> analysen er primermikrobrøndene fuldkommen grå mikrobrøndstrimler<br />
Amplifikationsmikrobrøndene er gråstribede mikrobrøndstrimler<br />
D Bearbejdning af præparater fra de nedre luftveje:<br />
Procedurerelaterede bemærkninger:<br />
• Gennemse QIAGEN QIAamp <strong>DNA</strong> fæces minikit håndbogen for vigtige procedurerelaterede bemærkninger og<br />
forholdsregler inden De starter<br />
• Fyld et vandbad med destilleret vand og opvarm til 70 °C (± 5 °C) inden De starter på bearbejdning af præparater<br />
• Brug sprit-resistente penne til at mærke beholdere og glas<br />
• Skift pipettespidser mellem alle væskeoverførsler Det anbefales at bruge spidser med aerosolbarriere<br />
• Lad <strong>BD</strong> ProbeTec <strong>ET</strong> luftvejspræparat- og mediefortynder (CF/<strong>LP</strong>/MP) opnå stuetemperatur og bland forsigtigt<br />
ved at vende den op og ned inden brug<br />
• Afmål den nødvendige mængde <strong>BD</strong> ProbeTec <strong>ET</strong> luftvejspræparat- og mediefortynder (CF/<strong>LP</strong>/MP) ned i en ren<br />
beholder Den nødvendige mængde bestemmes ved at bruge 0,4 mL for hvert præparat og tilsætte yderligere<br />
1 - 2 mL, så det er let at pipettere Undgå kontaminering af fortynderen - Hæld ikke tiloversbleven<br />
fortynder tilbage i flasken<br />
1 Klargør QIAGEN reagenser (se "Klargøring af reagenser" i QIAamp <strong>DNA</strong> fæces minikit håndbogen)<br />
2 Lad præparaterne nå stuetemperatur<br />
3 Mærk et 2 mL glas med trykhætte for hvert præparat, der skal testes<br />
Følgende trin skal udføres i et biologisk sikkerhedsskab (BSC):<br />
4 Udsæt præparaterne for impulsslyngning i 5 - 15 s for at blande grundigt<br />
5 Pipettér 350 µL af præparatet i det mærkede glas<br />
BEMÆRK: Det kan være vanskeligt at pipettere nøjagtige prøver fra ekspektoratpræparater Hvis dette er tilfældet,<br />
bruges gradueringerne på glassets side som en hjælp til at sikre, at det korrekte volumen tilføres i glasset<br />
Alternativt bruges et glas, hvori der er blevet dispenseret 350 µL vand som en vejledning<br />
6 SKIFT HANDSKER efter tilsætning af præparater<br />
7 Pipettér 150 µL QIAGEN ASL buffer i hvert prøveglas<br />
8 Pipettér 25 µL QIAGEN proteinase K i hvert prøveglas<br />
9 Pipettér 500 µL QIAGEN ASL buffer i hvert prøveglas<br />
10 Sæt hætte på hvert glas og foretag impulsslyngning i 5 s Anbring glassene i et vandbadstativ med et låg, der<br />
kan skrues på<br />
Følgende trin kan udføres uden for et biologisk sikkerhedsskab (BSC):<br />
11 Inkubér glassene i det 70 °C (± 5 °C) vandbad i 15 min<br />
12 Efter 15 min tages glassene op af vandbadet, og de centrifugeres (16 000 x g) i ca 5 s<br />
13 Tag glassene ud af centrifugen Åbn hvert glas og tilsæt 500 µL af 96 - 100 % ethanol<br />
14 Sæt igen hætte på hvert glas og udsæt det for impulsslyngning i 5 s<br />
15 Centrifugér præparaterne (16 000 x g) i ca 5 s<br />
16 Mærk en QIAGEN udskillelseskolonne og et opsamlingsglas for hvert præparat<br />
17 Overfør 700 µL af præparatet i den korrekt mærkede QIAGEN udskillelseskolonne<br />
18 Centrifugér glassene (16 000 x g) i 1 min<br />
19 Overfør kolonnerne til de nye QIAamp opsamlingsglas Bortskaf glassene med filtratet<br />
20 Overfør forsigtigt 700 µL mere af præparatet i den korrekte kolonne<br />
21 Centrifugér glassene (16 000 x g) i 1 min<br />
22 Overfør kolonnerne til rene QIAamp opsamlingsglas Bortskaf glassene med filtratet<br />
23 Åbn QIAamp kolonnerne og tilsæt 500 µL QIAGEN AW1 vaskebuffer til hver<br />
24 Centrifugér glassene (16 000 x g) i 1 min<br />
25 Overfør kolonnerne til de nye QIAamp opsamlingsglas Bortskaf glassene med filtratet<br />
26 Åbn QIAamp kolonnerne og tilsæt 500 µL QIAGEN AW2 vaskebuffer til hver<br />
27 Centrifugér glassene (16 000 x g) i 3 min<br />
28 Overfør kolonnerne til endelige, mærkede QIAamp opsamlingsglas Bortskaf glassene med filtratet<br />
BEMÆRK: Opsamlingsglasset skal være mærket på dette tidspunkt<br />
BEMÆRK: Vær omhyggelig med at sørge for, at der ikke hænger væske fast i bunden af kolonnen Overførsel af<br />
residualvask i opsamlingsglasset kan påvirke resultaterne<br />
29 Åbn kolonnerne og tilsæt 225 µL QIAGEN AE elueringsbuffer til hver<br />
30 Inkubér ved stuetemperatur i 1 min<br />
31 Centrifugér glassene (16 000 x g) i 1 min<br />
32 Bortskaf kolonnerne<br />
4