LSM 7 LIVE und LSM 7 DUO - Carl Zeiss

LSM 7 LIVE und LSM 7 DUO
Ihre Visionen bewegen
Mikroskopie von Carl Zeiss
Lokalisieren, manipulieren, visualisieren und analysieren

2
Inhalt
LIVE-Übertragung 4
Zugang zu lebenden Zellen 8
Dynamische Ereignisse analysieren
mit FRAP, FLIP und FRET 10
Moleküle verfolgen mit
PA-GFP, DRONPA und KAEDE 12
Geschwindigkeit zählt bei Ihren
physiologischen Messungen 14
Tief blicken durch Multiphotonenanregung 16
Detaillierte Bewegungsstudien 17
Schneller als in Echtzeit 18
Konfokale Mikroskopie ohne Limits 20
Technische Daten 22
Systemüberblick 24
Gut kombiniert 27
Titel:
Bewegungsbahnen von Bakterien der Spezies
Shewanella oneidensis. Maximum-Intensity-
Projektionen von 500 Bildern einer XYZ-
Zeitserie mit 44 fps.
Präparat: Dr. T. Teal, Dr. D. Newman,
Biological Imaging Center, Caltech,
Pasadena, USA
Seite 3:
GalT-Y BFP Washout von kultivierten Zellen,
Zeitserie der intraplasmatischen Bewegung.
Präparat: Dr. Lippincott-Schwartz, NIH,
Bethesda, USA

Schnelle Reaktion
von Nervenzellen
auf äußere Reize
LIVE–Übertragung
Bilden Sie lebende Zellen live in Bewegung ab,
um fundamentale Vorgänge zu entschlüsseln.
Teilung befruchteter
Eizellen von
Insekten
1μs
1ms
Lebenszyklus
von Drosophila
melanogaster
1s
10 3 s
10 6 s
Zeit
Zeitkonstanten ausgewählter zellulärer Prozesse.
4

5
Die ZEN Software –
Schnittstelle zu Ihren Applikationen.

6
Das LSM 7 DUO vereint LSM 7 LIVE und
LSM 710 am Axio Observer.Z1

Das LSM 7 LIVE mit dem Manipulationsmodul
LSM DuoScan am Axio Observer.Z1
7

8
Zugang zu lebenden Zellen
Die Flut hochaufgelöster und multidimensionaler digitaler Daten erfordert neue
Strategien bei der Aufnahme, Verarbeitung und Visualisierung von Bildserien.
Das LSM 7 LIVE navigiert und analysiert für Sie diese Datenströme zuverlässig und effektiv.
64-bit-Performance für Ihre Bilddaten
1000 Bilder von je 512x512 Pixeln in 10 Sekunden? Das sind
250 MB in 10 Sekunden, oder mehr als eine CD-ROM voller
Daten jede halbe Minute. Für das LSM 7 LIVE ist das nichts
Ungewöhnliches. Dank der neuen Echtzeit-Elektronik und
dem neuen Echtzeit-Computersystem mit Windows 64-bit
verarbeitet das LSM 7 LIVE diese riesigen 4D-Datenmengen
mit Übertragungsraten von bis zu 100 MB je Sekunde.
Erkennen Sie Objekte an ihren Bahnen
Ihre Zeitserien verarbeiten Sie zum Beispiel mit Offline-
Particle-Tracking-Software in AxioVision. So erfassen Sie die
Bewegungsbahnen Ihrer Objekte quantitativ und ziehen
wertvolle Schlüsse.
Präzises Spiel des Laserlichts
Kompakte und langlebige Festkörperlaser setzen auch
dicke oder nur schwach fl uoreszierende Präparate ins rechte
Licht und halten Gewebeschädigungen in Grenzen. Die
neue feinjustierte Lasereinkopplung und Strahlformung des
LSM 7 LIVE setzt einen neuen Standard für Bildqualität bei
schnellen Linienscannern. Aus den verfügbaren Lasern (405,
488, 532, 561 und 635 nm) können Sie die idealen Linien
für Ihre Farbstoffe auswählen.
Zytoskelett und Mitochondrien
einer kultivierten Zelle. Die neue
feinjustierte Lasereinkopplung und
Strahlformung des LSM 7 LIVE
verschafft Ihnen auch bei sehr
homogenen Präparaten ein artefaktfreies
Bild – eine Innovation bei
Linienscansystemen.

Das LSM 7 LIVE: leistungsfähige und bedienerfreundliche
ZEN Software mit 64-bit-Betriebssystem
und Scankopf für verbesserte Bildqualität
Nehmen Sie ROIs automatisiert auf
Defi nieren Sie komplexe wiederkehrende Abläufe in Zeitserien:
Der neue Multilocation Scan der ZEN 2009 Software
zeichnet Ihre gewählten Positionen oder eine ganze
Multiwellplatte automatisch auf – mit korrekter Z-Position
selbst in extrem langen Serien. So gewinnen Sie Zeit für
anspruchsvollere Aufgaben.
Multilocation Scan
für Ihre Zeitserien.
9

FRAP: Bleichen einer ROI
und Regeneration in einer
GFP-markierten CD3-
Zelle mit dem LSM 7 DUO.
10
Dynamische Ereignisse analysieren mit
FRAP, FLIP und FRET
Mit dem LSM 7 LIVE DuoScan und dem LSM 7 DUO untersuchen Sie die
Kinetik von Molekülen enorm präzise. In extrem schnellen Zeitserien führen
Sie Ihre FRAP- und FLIP-Experimente mit gezieltem Laserbleichen durch.
Das LSM 7 LIVE bildet Zellen zügig ab. Und es kann mehr:
Zwei unabhängige Scannergruppen in der Kombination als
LSM 7 DUO oder mit dem LSM DuoScan geben Ihnen wertvolle
Flexibilität für das Photobleichen. Sie führen schnelle
FRAP-Experimente in frei defi nierbaren ROIs bei unterschiedlichen
Wellenlängen durch – sogar gleichzeitig mit schneller
Bildaufnahme in zwei Kanälen. Das LSM 7 LIVE ermöglicht
so nicht nur FRAP und FLIP, sondern auch FLAP mit Doppelmarkierung,
wo das Dynamikverhältnis zwischen einem
ungebleichten und einem gebleichten Fluoreszenzmarker
verglichen wird.
In einem FRAP-Experiment wird eine definierte Region in einer Zelle,
die ein GFP-Fusionsprotein exprimiert, durch kurzzeitige intensive
Laserbestrahlung gebleicht. Zeitrafferaufnahmen dokumentieren und
messen die Regeneration der Fluoreszenz.
In einem FLIP-Experiment wird dieselbe Region innerhalb einer Zelle
mehrfach gebleicht und der Fluoreszenzverlust außerhalb dieser Region
gemessen.

Neben den gängigen Methoden zur Analyse der Kinetik und Mobilität von Molekülen
gibt Ihnen das LSM 7 LIVE noch weitere ausgefeilte Methoden an die Hand,
mit denen Sie molekulare Wechselwirkungen und Prozesse erforschen.
Mit FRET untersuchen Sie die räumliche Nachbarschaft und
die Wechselwirkung von Molekülen. Das LSM 7 LIVE ist
besonders geeignet für das Akzeptor-Photobleichen, eine
sehr sichere FRET-Methode.
In Entwicklungsstudien kann das selektive Bleichen von
Strukturen die Antworten auf viele Fragen der Lokalisierung
und Proliferation liefern, die mit bloßer Anfärbung allein
nicht gelöst werden können.
Hefezellen, Tubulinfärbung.
Die Mikrotubuli werden mit dem LSM 7 DUO präzise gebleicht.
Präparat: Prof. M. Yoshida, Chemical Genetics Laboratory,
RIKEN, Wako, Japan
-32 s 0 s
32 s
CFP
CFP
FRET-Auswertung von CFP und YFP in kultivierten Zellen,
Kontrollbleichung des Akzeptors und verstärktes Donor-Signal.
64 s 96 s 128 s 160 s
11
YFP
YFP

Mit DRONPA transfizierte
Kulturzelle, mehrfach mit
Lichtimpulsen bei 405 nm
aktiviert; schnelle Bildaufnahme
mit Anregung bei
488 nm.
12
Moleküle verfolgen mit
PA-GFP, DRONPA und KAEDE
Erweitern Sie den Spielraum Ihrer biomedizinischen Forschung und führen Sie
Experimente mit fl exibler Probenmanipulation, beispielsweise Photoaktivierung
und Photokonversion – bei exzellenter Präzision und Zeitaufl ösung, durch.
PA-GFP
Die in jüngster Zeit entwickelten Fluoreszenzproteine PA-GFP,
DRONPA und KAEDE ermöglichen es Ihnen, dynamische Vorgänge
direkt zu untersuchen. Die beiden unabhängigen Scannergruppen
der kombinierten Systeme LSM 7 LIVE DuoScan und
LSM 7 DUO bieten Ihnen die für effi ziente Photoaktivierungs-
und Photokonversionsexperimente benötigte Flexibilität.
Mit PA-GFP, DRONPA oder KAEDE markiert, lassen sich defi nierte
Subpopulationen von Proteinen, ganze Organellen oder sogar
Zellen in einem Gewebeverband durch lokale Bestrahlung mit
violettem Licht selektiv aktivieren oder konvertieren. Mehrere
Hochleistungslaser der Wellenlängen 405, 488 und 561 nm, die
von beiden Scanmodulen arbeitsteilig genutzt und über eine
komfortable ROI-Bleach-Benutzeroberfl äche gesteuert werden,
sind für solche Anwendungen ideal geeignet. Sie können am
LSM 7 DUO darüber hinaus zwischen mehreren Detektionsmöglichkeiten
wählen: spektral über den QUASAR-Detektor des
LSM 710 oder superschnell durch Linienscannen in die CCD-
Detektoren des LSM 7 LIVE.
PA-GFP + DRONPA
Das Fluoreszenzprotein DRONPA wechselt durch optische Anregung
zwischen einem fluoreszierenden und einem nichtfluoreszierenden
Zustand.
DRONPA
Das Fluoreszenzprotein KAEDE wechselt bei Bestrahlung mit UV-Licht
von Rot nach Grün.

Photokonversion einer mit KAEDE
transfizierten Zelle. Bestrahlung bei 405 nm
in einer genau lokalisierten subzellulären
Region wandelt die Grünfluoreszenz
komplett in eine Rotfluoreszenz um.
Mit PA-GFP transfizierte
Kulturzelle, in ROI 1 kurzzeitig
mit Licht von 405 nm aktiviert;
Auswertung der Molekülbewegung
in ROI 2.
13

14
Geschwindigkeit zählt bei Ihren
physiologischen Messungen
Das LSM 7 LIVE ist ideal für Messungen, die der Geschwindigkeit und Farbänderung
von Ionenindikatoren und spannungsempfi ndlichen Farbstoffen angepasst sein müssen.
Das LSM DuoScan sorgt für höchste Präzision bei der Manipulation Ihrer ROIs.
Mit dem LSM 7 LIVE erzielen Sie Bildfrequenzen bis in den
Kilohertzbereich – zum Beispiel 1010 fps bei 512x50 Pixeln.
Diese außerordentliche Schnelligkeit nutzen Sie noch dazu
in einem echten konfokalen System mit simultaner Zweikanalaufnahme.
Um einen Punktscanner erweitert, gibt Ihnen das LSM 7 LIVE
DuoScan oder das LSM 7 DUO die benötigte Flexibilität für
das Uncaging und die Probenstimulation z.B. mit nahem
UV-Licht. Für die Mikromanipulation stehen diverse apochromatische
Tauchobjektive wie die Plan-Apochromate
20x/1.0 W und 63x/1.0 W zur Verfügung.
Die absolute Ca2+-Konzentration werten Sie
mit der Kalibrierfunktion der ZEISS ZEN
Software leicht aus.
Darstellung und Auswertung
von Ionenkonzentrationen
• Online- und Offl ine-Ratio für ratiometrische
Farbstoffe
• Online und Offl ine F/F0 für Einwellenlängen-
Farbstoffe
• Kalibrierung für ratiometrische und Einwellenlängen-
Farbstoffe
– in situ und in vitro
– einschließlich Untergrundkompensation
– nach Titration mit diversen Kurvenanpassungen
– nach Grynkiewicz
• Interaktive Skalierung von Bilddatenreihen
• Interaktive graphische Darstellungen der Messdaten
aus ROIs

Schnelle Ca2+-Übergänge in Fluo-4-markierten
Herzmuskelzellen einer Ratte,
aufgenommen mit 80 fps.
Präparat: Dr. W. J. Lederer und Dr. A. Ziman,
Medical Biotechnology Center,
Biotechnology Institute, University of Maryland,
Baltimore, USA
Mehrfach wiederholter Ca2+-Anstieg in
Fluo-4-markierten Herzmuskelzellen nach Stimulation.
15

16
Tief blicken durch Multiphotonenanregung
Die Multiphotonenmikroskopie bedeutet einen entscheidenden Fortschritt für
Experimente mit lebenden Zellen, indem sie tiefe Einblicke in lebende Gewebe
gestattet, ohne hohe, gewebeschädigende Laserleistungen anwenden zu müssen.
Das LSM 7 DUO ermöglicht vorteilhaftes Photobleichen,
Photoaktivieren und Uncaging, vor allem mit violetten und
ultravioletten Lasern. Zusätzlich zum tief eindringenden
Multiphotonenmodus gibt Ihnen die schnelle Liniendetektion
mit dem LSM 7 DUO NLO die Möglichkeit, lebende
Präparate extrem schnell abzubilden und gleichzeitig Photomanipulation
tief im Gewebe mit dem Multiphotonenlaser
durchzuführen.
Ca-1-Pyramidenzellen im Hippokampus einer Maus.
Die Eindringtiefe der Multiphotonenmethode ermöglicht
die hohe Detailaufl ösung.
Präparat: M. Fuhrmann, Zentrum für Neuropathologie
und Prionforschung, LMU München, Deutschland
Femtosekundenlaser
regen den Farbstoff nur
am Fokuspunkt an.
Flexibles Manipulieren: Das Bleichmenü
gestattet die einfache Einstellung des Manipu
lationsschrittes und der Tiefenpositionen.
Energie
Energiediagramm der
Fluoreszenz erzeugung bei
Multiphotonenanregung.

Detaillierte Bewegungsstudien
Hochaufgelöste 3D-Abbildung von Blutgefäßen im Mäusegehirn
mittels Gelatineverfahren mit Fluoreszenzmarkierung.
Präparat: Dr. H. Hashimoto, Medizinische Fakultät
der Universität Jikei; Dr. M. Kusakabe, Institut für Matrixzellforschung,
Japan
____________
100 μm
Wenn komplexe Zellprozesse mit höherer Geschwindigkeit ablaufen als die
Videobildfrequenz, wird es spannend: Mit dem revolutionären Hochgeschwindigkeits-
Detektionsverfahren des LSM 7 LIVE verfolgen Sie diese Vorgänge in 3D und 4D.
Mehrere Neuerungen ermöglichen superschnelle parallele
Detektion mit bisher unerreichter Empfi ndlichkeit (z.B. 1010
Bilder/s bei 512x50 Pixeln). Mit AchroGate, einem bahnbrechenden
Strahlenteiler, detektieren Sie Emissionen mit
einem Wirkungsgrad von 95 % ohne jegliches mechanisches
oder elektrisches Umschalten. Mit den beiden eingebauten
CCD-Liniendetektoren (Quanteneffi zienz 75 % bei 550nm)
und den cleveren Doppelbandpassfi ltern können z.B. neuronale
Prozesse von nur einigen Mikrosekunden Dauer mit
zwei oder sogar mehr Markern verfolgt werden.
_______
100 μm
Zebrafi sch-Embryo. Erythrozyten markiert mit dsRed
(rot) und Endothelzellen mit eGFP (grün).
Gleichzeitige Aufnahme in 2 Kanälen mit 32 Bildern/s.
Präparat: Dr. S. Hermanson und Dr. S. C. Ekker,
Universität Minnesota, USA
17

18
Schneller als in Echtzeit
Entwicklungsprozesse mit ihren sprunghaften Veränderungen sind schwer darzustellen –
sie fi nden tief im Organismus statt. Ihre Entwicklungsuntersuchungen müssen Sie daher
schnell und in 4D, das heißt konfokal durchführen.
Das LSM 7 LIVE bietet die echte konfokale Abbildungspräzision,
die Sie für 4D-Entwicklungsstudien benötigen.
Die konfokalen Blenden sind je nach Bedarf und Objektiv
exakt einstellbar. Die Aufnahme optischer Bilder mit exzellenter
3D-Aufl ösung erfolgt superschnell in der 4. (Zeit-)
Dimension. Mittels moderner Piezo-Fokussiereinrichtungen
lassen sich Z-Bildstapel von bis zu 70 optischen Schnitten
je Sekunde aufnehmen und der Fokussierbereich bis auf
250 μm erweitern – das ist ideal für die Aufnahme lebender
Objekte. Mit modernen, speziell für das Live-Cell-Imaging
entwickelten Objektiven, wie den ZEISS LCI Plan-
Neofl uaren oder den LD C-Apochromaten, steht Ihnen ein
üppiger Arbeitsabstand mit Wasser- oder Glycerinimmersion
zur Verfügung.
Schneller Z-Bildeinzug mit
Piezo-Fokussierantrieb.

0.0 μm
10.0 μm
19.0 μm μm
3 konfokale Schnitte
eines Einzelstapels.
Galerie der Projektionen einer XYZt-Zeitserie,
aufgenommen mit 40 Bildern/s
bzw. in 1,23 s pro Stapel;
Gesamtdauer des Experiments: 54 s.
Mobilität einer adulten Caenorhabditis elegans,
GFP-Exprimierung.
Präparat: Prof. R. Baumeister, Inst. Biologie III
und Dr. R. Nitschke, Life Imaging Center,
Universität Freiburg, Deutschland
19

20
Konfokale Mikroskopie ohne Limits
Strahlengang im LSM 7 LIVE
1 Laser Ports V und Vis
2 Spiegel
7
3 Strahlvereiniger
4 Anregungsstrahlformer
5 AchroGate (Hauptstrahlteiler)
6 Zoom-Optik
6
4
12
5
11
10
7 Scan- und Panspiegel
8 Nebenfarbteiler
9 Emissionsstrahlformer
10 Konfokale Blenden
11 Emissionsfilter
8
9
12 CCD Detektorzeile
9
2
3
10
11
1
1
12
A
B
C

Strahlengang im LSM 710
1 V/Flex PTC Laser Ports
(405, 440, In Tune; ps+cw)
2 IR PTC Laser Port
(durchstimmbare Ti:Sa)
3 Vis PTC Laser Ports & Vis AOTF
4 Monitordioden
5 InVis TwinGate Hauptfarbteiler
(aufrüstbar)
6 Vis TwinGate Hauptfarbteiler
(vom Nutzer wechselbar)
7 Scanspiegel (FOV 20, 6k × 6k)
A Strahlteiler DUO
B Objektiv
C Präparat
7
5
4
6
8 Master Pinhole
9 Teiler für externe Kanäle
10 Spektrale Aufspaltung und Recycling Loop
11 Spektrale Strahlführung
12 QUASAR PMT spektraler Kanal # 1
13 QUASAR PMT spektrale Kanäle # 2–33 (or # 2)
14 QUASAR PMT spektraler Kanal # 34 (or # 3)
15 Ext. Kanäle (# 4 + 5: APDs, FLIM, FCS etc.)
4
13
12
8
14
1
2
10
3
9
11
15
21

22
LSM 7 LIVE DuoScan und LSM 7 DUO
Technische Daten
Mikroskope
Stative Aufrecht: Axio Imager.Z2, Axio Examiner.Z1; Invers: Axio Observer.Z1 RP (Rear Port) oder SP (Side Port)
Z-Antrieb DC-Motor mit optoelektronischer Kodierung, kleinste Schrittweite 25 oder 50 nm
Feinfokuslösungen Zubehör: Piezo-Tisch- oder Objektivfokus, Gesamthub ca. 250 μm, kleinste Schrittweite 60.000 Linien/s
Scanzoom 0,5x bis 2,0x, digital, freier X/Y-Offset (je nach Konfi guration)
Scanfeld 18 mm Felddiagonale (max.) in der Zwischenbildebene mit homogener Bildfeldausleuchtung
Konfokale Blenden Individuell einstellbare Pinholes für jeden Detektionskanal
Detektion Bis zu zwei konfokale Kanäle für Fluoreszenz, mit hochempfi ndlichen Detektoren (QE 70 % oder besser).
Durchlicht-Hellfeld-Modus möglich.
Datentiefe Wählbar: 8 bit oder 12 bit
Lasermodul LSM 7 LIVE
Lasermodul VIS Polarisationserhaltende Einmodenfaser, temperaturstabilisierter VIS-AOTF (Acousto-Optical Tunable Filter)
für die simultane Intensitätsregelung, Schaltzeit < 5 μs)
Laser Sämtlich wartungsfreie Dioden- oder Festkörperlaser ohne wesentliche Wärmeableitung.
Laserdiode 405 nm, 50 mW, Laserdiode 488 nm, 100 mW;
diodengepumpter Festkörperlaser 532 nm, 75 mW;
Laserdiode 561 nm, 40 mW; Laserdiode 635 nm, 30 mW
Variable Strahlteilung
(LSM DuoScan)
Scanmodul LSM DuoScan
Zweiter Ausgang aus vorhandenem Lasermodul LIVE mit polarisationserhaltender Einmodenfaser;
Teilungsverhältnis zwischen Ausgängen per Software frei einstellbar; für Laserlinien 405, 488 oder 532 nm
Scanner Zwei unabhängige galvanometrische Scanspiegel, echtzeitgesteuert,
mit ultrakurzem Linien- und Frame-Flyback
Scangeschwindigkeit 13 x 2 Geschwindigkeitsstufen; bis zu 5 Regionen/s bei 512x512 Pixeln
(max. 77 Regionen/s bei 512x32 Pixeln), 0,38 ms für eine Linie mit 512 Pixeln
Scanzoom 0,7x bis 40x, digital in Schritten von 0,1 einstellbar
Scanrotation Frei drehbar (360°) in Schritten von 1°, freier X/Y-Offset
Scanfeld 18 mm Felddiagonale (max.) in der Zwischenbildebene mit homogener Bildfeldausleuchtung

Elektronikmodul
LSM 7 LIVE Control Steuerung des Mikroskops, der Lasermodule, des Scanmoduls und weiterer Zubehörkomponenten,
Kontrolle und Datensynchronisierung durch Echtzeitrechner;
Datenaustausch mit dem Benutzer-PC über Gigabit Ethernet Interface
Computer I Standard-PC mit praxisgerechter Ausstattung an Arbeits- und Festplattenspeicher;
ergonomischer hochaufl ösender Flachbildschirm von 30“ (16:10), vielfältiges Zubehör;
Betriebssystem Windows 32+64-bit, Multi-User-fähig
Computer II PC der Spitzenklasse mit großzügigster Ausstattung an Arbeitsspeicher und ultraschnellem RAID 0
Festplattensystem; ergonomische hochaufl ösende Flachbildschirme von 30“ (16:10),
vielfältiges Zubehör; Betriebssystem Windows 32+64-bit, Multi-User-fähig
Standardsoftware ZEN
Systemkonfi guration Komfortable Steuerung und Konfi guration aller motorisierten Mikroskopfunktionen sowie der Laser- und Scanmodule;
Speichern und Wiederherstellen anwendungsspezifi scher Konfi gurationen per Mausklick
Systemselbsttest Automatische Justierung mit Kollimatik und System Maintenance Tool
Aufnahme-Modi Line, Frame, Z-Stack, Zeitserien und Kombinationen: xy, xyz, xyt, xyzt, xz, xt, xzt, Multilocation Scan mit Autofokus;
Online-Berechnung und Darstellung von Ratio-Bildern, Mittelung und Summierung
Auto-Z-Funktion Online-Adaption der Aufnahmeparameter für Z-Stapel zur gleichmäßigen Helligkeitsverteilung
Zoom-Crop-Funktion Komfortable Auswahl von Scan-Bereichen (Zoom, Crop, Offset)
ROI Bleach Lokalisiertes Bleichen in bis zu 99 Bleich-ROIs für Anwendungen wie FRAP oder Uncaging;
bis zu 99 ROIs beliebiger Form, pixelgenaue Laser-Dunkelschaltung
Multitracking Schneller Wechsel der Anregungslinien bei der Aufnahme von Multifl uoreszenzen
Darstellung Orthogonal-Ansicht (xy, xz, yz in einer Darstellung), Cut-Ansicht (3D-Schnitt unter frei defi nierbarem Raumwinkel),
2.5D-Ansicht für Zeitserien von Linien-Scans, Projektionen (Stereo-, Maximum-, Transparenzprojektion)
für Einzelbilder und Serien (Animationen), Tiefenkodierung (Falschfarben-Darstellung von Höheninformationen),
Helligkeits- und Kontrasteinstellung; Offl ine-Interpolation für Z-Stapel, Auswahl und Modifi kation von Farbtabellen (LUT),
Zeichenfunktion zur Dokumentation
Bildauswertung Moderne Werkzeuge zur Kolokalisations- und Histogrammanalyse mit individuellen Parametern und Optionen,
Profi lmessung an geraden und beliebig gekrümmten Linien, Messen von Längen, Winkeln, Flächen, Intensitäten, u.v.m.
Bildoperationen Addition, Subtraktion, Multiplikation, Division, Ratio, Shift, Filter (Tiefpass, Median, Hochpass, etc., auch benutzerdefi nierbar)
Datenarchivierung,
Export, Import
LSM-Bilddatenbank mit komfortablen Funktionen zur Verwaltung der Bilder und der dazugehörigen Aufnahme-Parameter;
Multiprint-Funktion zur Erstellung zusammengesetzter Bild- und Datenansichten;
über 20 Dateiformate (TIF, BMP, JPG, PSD, PCX, GIF, AVI, Quicktime …)
sichern Kompatibilität mit allen gängigen Bildverarbeitungsprogrammen.
Image Browser Kostenloses Software-Paket für die Darstellung, Bearbeitung, Sortierung, Druck und Export/Import von LSM 5-Bildern
Optionale Software für alle Systeme
Image VisArt plus Schnelle 3D- und 4D-Rekonstruktion und Animation
(verschiedene Modi: Schattenprojektion, Transparenzprojektion, Oberfl ächen-Rendering)
3D-Dekonvolution Bildrestaurierung auf Basis berechneter Point-Spread-Funktionen
Physiologie /
Ion concentration
Umfangreiche Auswertesoftware für Zeitserien-Aufnahmen, graphische Mean-of-ROI-Analysen,
Online- und Offl ine-Kalibrierung von Ionenkonzentrationen
FRET plus Auswertung von Experimenten mit den Methoden Sensitized Emission oder Akzeptor-Photobleichen
FRAP Benutzerführung und Auswertung von FRAP- und FLIP-Experimenten mit Berechnung der quantitativen Parameter
Visual Macro Editor Grafi sches Erstellen von Routinen für Scan- und Auswertefunktionen
VBA-Macro-Editor Aufnahme und Editieren von Routinen zur Automatisierung von Scan- und Auswertefunktionen
Multitime Series Erstellung komplexer Zeit- und 3D-Serien; Autofokus- und Bleichfunktionen
23

24
LSM 7 LIVE DuoScan und LSM 7 DUO
Systemübersicht

Gut kombiniert
Patente:
www.zeiss.de/mikro-patente
Literatur:
www.zeiss.de/lsm
27
LSM 7 LIVE
Sie müssen die unterschiedlichsten Experimente
durchführen. Weil wir das wissen, können in dem
LSM 7 LIVE, LSM 7 LIVE DuoScan und LSM 7 DUO
verschiedene Ausrüstungen kombiniert werden.
LSM 7 LIVE DuoScan
CCD-Linie mit
Doppelbandpässen
LSM 7 DUO –
Dieses eine System kann einfach alles:
Spektrale Bildaufnahme, schnelle Bildaufnahmen
von lebenden Zellen sowie Laser-Manipulation
für FRAP, FLIP, Photoaktivierung oder Uncaging.
Dabei beweist das LSM 7 DUO eindrucksvoll,
dass Vielseitigkeit nicht auf Kosten der quali ta -
tiven Leistung gehen muss.
Detektionsoptionen und Manipulationsmodi
CCD-Linie und
PMTs Spektral
CCD-Linie,
PMTs Spektral
und NDDs
1-/2-Kanal,
Streifenbleichen – –
1-/2-Kanal,
ROI-Manipulation – –
1-/2+34-Kanal,
ROI-Manipulation
LSM 7 DUO NLO – –
–
1-/2+34+9-Kanal,
ROI-Manipulation,
Multiphotonen-Laser

Optische Perfektion, kreativer Weitblick und ein sicheres Gespür
für die technischen Herausforderungen in den Biowissenschaften:
Das sind die Zutaten für brillante Mikroskopiekonzepte von Carl Zeiss.
Carl Zeiss MicroImaging GmbH
07740 Jena, Deutschland
BioSciences | Standort Jena
Telefon : + 49 3641 64 3400
Telefax : + 49 3641 64 3144
E-Mail : micro@zeiss.de
www.zeiss.de/mikro
Änderungen vorbehalten.
Gedruckt auf umweltfreundlich
chlorfrei gebleichtem Papier.
60-1-0017/d – gedruckt 05.09