coagulants of moringa oleifera lam. seeds purification ... - EPFL

More documents

Recommendations

Info

of Coagulating Activity of Different Compo- Measurement Present in M.oleifera Seed Extracts . . . . . . . . . . 91 nents . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .92 Abstract . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 92 Introduction of Coagulation Efficiency . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .92 Testing of the Particle Concentration on Influence Coagulating Activity . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .94 the of colloid material for coagulation experiments . . . . . . . . 95 Choice of the Coagulation Rate . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 96 Measurement of Coagulation and Flocculation . . . . . . . . . . . . . . . . . 97 Definition and Methods . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .99 Materials . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .99 Chemicals Seed Extracts . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .99 M.oleifera Assay . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .99 Coagulation and Discussion . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 101 Results Extraction Procedures . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 106 Different of Fractions prepared by Chromatographic separation Analysis Extracts . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 108 of extract . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 108 Non-reduced after Reduction of the Sample . . . . . . . . . . . . . . . . . . 111 Separation of Suspensions of Glassbeads and Bentonite . . . . . 114 Flocculation . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 116 Conclusions activity of M.oleifera extracts . . . . . . . . . . . . . . . . . 117 Coagulating . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 120 References of M.oleifera Seed Proteins . . . . . . 123 Characterisation . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 124 Abstract . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 124 Introduction Proteins . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 126 Seed and Methods . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 131 Materials . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 131 Chemicals extraction and quantification . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 131 Protein Separation (prep. HPLC + Äkta) . . . . . . . . . . 132 Chromatographic SDS PAGE / Western Blotting . . . . . . . . . . . . . . . . 132 Tris-Tricine Protein Staining and Immuno Staining . . . . . . . . . 132 Non-Specific Staining of Glycosylated Proteins . . . . . . . . . . . . . . . . . 132 Specific . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 133 MALDI/TOF-MS Mapping / Mass Mapping . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 133 Peptide and Discussion . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 134 Results Sequences of Selected Protein Fractions . . . . . . . . . . . . . . . 134 Tag molecular weight proteins present in oil body fractions . . . 135 Low Separated by Reverse Phase Chromatography Proteins Sample Reduction . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 137 after digest . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 139 Tryptic Digest . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 142 Chymotryptic Immuno Detection of Proteins with Anti-Flo Antibodies . . . . . . 144 v
vi . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 146 Conclusions of Purification of M.oleifera seed proteins . . . . . . . 146 Difficulties of Isolated Fragments to Mo2.1 . . . . . . . . . . . . . . . . 146 Homology Homologies of Mo2.1 with seed proteins . . . . . . . . . 147 Sequence References . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 149 of the Extraction Procedure . . . . . . . . . . . . . 151 Scale-up . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 152 Abstract . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 152 Introduction from Laboratory to Pilot Scale . . . . . . . . . . . . . . . . . . 154 Transfer and Methods . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 156 Materials . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 156 Chemicals Cake Extraction . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 156 Press Extraction . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 156 Batch . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 156 Percolation and Diafiltration . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 156 Ultrafiltration Scale . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 156 Laboratory Scale . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 157 Pilot . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 157 Diafiltration . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 158 Analytics SDS-PAGE . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 158 Tris-Tricine Determination (BCA & Bradford) . . . . . . . . . . . . . . . . . 158 Protein and Discussion . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 159 Results Separation . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 159 Solid-Liquid Concentration . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 161 Product Extraction by Percolation . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 164 Protein . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 169 Conclusions Separation . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 169 Solid-Liquid Concentration . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 169 Product Extraction . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 172 Solid-Liquid References . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 174 of Moringa oleifera Lam. Seeds . . . . . . . . 175 Coagulants Conclusions and Future Perspectives . . . . . . . . . . . . . . . . 176 General References . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 181 Figures and Tables . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 183 Additional 3 - Characterisation of Non-Proteinaceous Chapter Present in M.oleifera Extracts . . . . . . . . . . . . . . . . . . 184 Components Calculation of Secondary Metabolite Concentration from Signal Direct Areas Observed in Standard Protein HPLC Chromatograms 190 Peak 4 - Measurement of Coagulating Activity of Different Components Chapter in M.oleifera Seed Extracts . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 191 Present change during coagulation Absorption a glass powder suspension . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 195 of 5 - Characterisation of M.oleifera Seed Proteins . . . . . . . 198 Chapter
Page 1 and 2: COAGULANTS OF MORINGA OLEIFERA LAM.
Page 3: iv Reverse Phase Chromatography . .
Page 7 and 8: SUMMARY Water has been declared a h
Page 9 and 10: ZUSAMMENFASSUNG Wasser ist von den

coagulants of moringa oleifera lam. seeds purification ... - EPFL

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

Delete template?

Save as template?