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UNIVERSIDAD MICHOACANA DE SAN NICOLÁS DE
HIDALGO
FACULTAD DE MEDICINA VATERINARIA Y ZOOTECNIA
TITULO DEL TRABAJO:
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO.
SERVICIO PROFESIONAL QUE PRESENTA
JESÚS ANTONIO JIMÉNEZ RAMÍREZ.
PARA OBTENER EL TITULO DE MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA.
Morelia, Michoacán, agosto 2007

UNIVERSIDAD MICHOACANA DE SAN NICOLÁS DE
HIDALGO
FACULTAD DE MEDICINA VATERINARIA Y ZOOTECNIA
TITULO DEL TRABAJO:
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO.
SERVICIO PROFESIONAL QUE PRESENTA:
JESÚS ANTONIO JIMÉNEZ RAMÍREZ.
PARA OBTENER EL TITULO DE MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA.
Asesor:
MC. JOSÉ ANTONIO SANTAMARÍA LLANO.
Morelia, Michoacán, agosto 2007

AGRADECIMIENTO
Le agradezco a Dios por darme vida y salud para poder concluir mis
estudios de licenciatura.
corta vida.
Gracias abuelos por darme una excelente madre y por su apoyo durante mi
Gracias madre por su apoyo incondicional que me ha brindado, por su
tiempo, confianza, por el gran sacrificio que ha hecho para que pueda culminar
mis estudios de licenciatura. No tengo palabras para agradecer lo único que se es
que este logro es para ti madre.
carrera.
Agradezco a mis hermanos por su amor, apoyo y confianza durante toda mi
A todos mis tíos por todo el apoyo que me brindaron en el transcurso de
toda mi carrera.
Agradezco a mi esposa, por el amor, cariño, ternura, palabras que me
dieron fuerza en los momentos de tristeza, gracias por hallar en ti más que una
esposa una gran compañera y amiga.
Agradezco a usted, MC. José Antonio Santamaría Llano, por su tiempo,
paciencia, sabiduría, consejos y como asesor de mi servicio profesional gracias.
A: mis sinodales, MC. Víctor Manuel Sánchez Parra y al MAE. J. Santos
Ángel Urbina, por formar parte de la elaboración de mi trabajo profesional
A mis maestros por transferir e implantar parte de sus conocimientos en la
formación de mi carrera.

A ustedes amigos, Carla y Ramón, Sra. Ana Maria, Jesús Santos Gómez,
Criserio Gómez, Juan Antonio Flores, Irene y Beti Lang Martínez, Familia Sánchez
Arévalo, Maria y Alejandra, Areli. Que entre alegrías y tristezas, con consejos y
amistad hemos podido salir adelante gracias por su amistad.
A todos mis primos hermanos.
A Ángel López Gómez que me brindo su apoyo incondicional en todo el
transcurso de mi servicio profesional.
Por sus palabras de aliento y confianza, ahora que lo he logrado lo hemos
logrado juntos, gracias familia.

DEDICATORIA
El presente trabajo se lo dedico a: En primer lugar a mis abuelos Tomas
Antonio y Juana Estela por prestarme al ser que me dio la vida (a mi madre).
A mi madre, Irene Ramírez González. Que es el ser mas precioso que me
dio Dios y que me dio fuerzas y valor para luchar por una profesión.
A: mi tía Blanca Estela, consejera, pero sobre todo una gran amiga, por su
apoyo y confianza que me brindo.
A: mis hermanos Wilberth, Charbel Tomas, Estela Guadalupe y Juan
Antonio y mis sobrinos, David y Leonardo Daniel.
A mi esposa: por brindarme una confianza y un gran cariño al apoyarme
incondicionalmente durante todo mi periodo de estudios y al estar siempre
conmigo.
A mi primer hijo, que es un regalo de Dios (Ángel Arturo).
En general lo dedico a la familia Ramírez González.
A una gran amiga: Ana Maria Lara que me brindo un gran apoyo
incondicional.
A mis amigos Carla y Ramón; que me dieron sus consejos y apoyo
incondicional.

CURRICULUM VITAE
El autor del presente trabajo Jesús Antonio Jiménez Ramírez
Nació el día 25 de mayo de 1978, en Yajalón Chiapas, México.
ESTUDIOS REALIZADOS
1988 – 1993 Escuela “Primaria General Francisco Villa”, Yajalón, Chiapas.
1993 – 1995 Escuela “Secundaria Técnica # 9”, Yajalón, Chiapas.
1995 – 1998 Escuela “Centro Bachillerato Tecnologico Agropecuario #
44”.Yajalón, Chiapas.
2000 – 2005 Licenciatura “Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia”
UMSNH. Morelia Michoacán.

CURSOS DE ACTUALIZACION.
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Constancia por haber acreditado el curso de Inseminación Artificial en Bovinos,
impartido del 1 al 6 de marzo del 2004 en la Facultad de Medicina Veterinaria y
Zootecnia de la Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo, con una
duración de 40 horas.
----------------------------------------------------------------------------------------------------------
Constancia por haber aprobado el taller de estadista impartido del 21 de abril al
25 de mayo del 2004, en la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la
Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo, con una duración de 100
horas.
----------------------------------------------------------------------------------------------------------
Constancia por haber Asistido al Curso, “Reconocimiento de las Principales
Enfermedades Exóticas de los Animales, los Sistemas y Planes de Emergencia”.
Celebrado del 27 al 29 de junio de 2005, en la Facultad de Medicina Veterinaria y
Zootecnia de la Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo, con una
duración de 24 horas.
----------------------------------------------------------------------------------------------------------
Constancia por haber aprobado el taller de cirugía en pequeñas especies
impartido del 3 de octubre al 3 de diciembre, en la Facultad de Medicina
Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo,
con una duración de 150 horas.

INDICE GENERAL
1.- INTRODUCCION……………………………………………………….……..………1
2.- PROTOZOARIOS………………………………………………………………….….4
2.1.- COSTIASIS (Ichthyobodo necatrix)……………………………………….4
2.2.- ICTIOFTIRIASIS (Ichthyophthirius multifiliis)…………………………….7
2.3.- HEXAMITIASIS (Hexamita sp)…………………………………….….…..11
2.4. - OODINIUM U OODIANIASIS (Oodinium pillularis)……………......….16
3. - HELMINTOS (metazoos).…………………………………………………………..19
3.1.- DACTYLOGIROSIS (Dactylogyrus vastator)…………………………...20
3.2.- GYRODACTYLOSIS (Gyrodactylus salaris)……………………………23
4. - CRUSTACEOS………………………………………………………………………27
4.1.- ARGULOSIS (Argulus foliaceus)…………………………………………28
4.2.- ERGASILOSIS (Ergasilus sieboldi)……………………………………...32
4.3.- LERNEOSIS (Lernea cyprinacea)…………………………………….....34
5.- BACTERIAS…………………………………………………………………………..37
5.1.- PODREDUMBRE DE ALETAS (Aeromonas, Pseudomonas y
Mixobacterias)……………………………………………...…...………………..39
5.2.- COLUMNARIS (Flexibacter columnaris)…………………………..…….43
5.3.- TUBERCULOSIS (Mycobacterium sp. (piscium y marinum)) ..……....45
6.- HONGOS……………………………………………………………………………..48
6.1.- BRANQUIOMICOSIS (Branchiomyces sanguinis, Branchiomyces
demigrans)…………………………………..………………………….………...51
6.2.- ICTIOSPORIDIOSIS (Ychthyosporidium hoferi)……………………….53
6.3.- SAPROLEGNIASIS (Saprolegnia spp.)………………………………..…56
7.- VIRUS…………………………………………………………………......................64

7.1.- LINFOCISTOSIS (Iridovirus)……………………………………..……….66
7.2.- VIROSIS PRIMAVERAL (Rhabdovirus carpio)…………….…………...69
8.- OTRAS PATOLOGIAS (SIGNOS)………………………………………………....73
8.1.- HIDROPESÍA…………………………………………………………….…73
8.2.-EXOFTALMIA………………………………………………….……………78
9.- CONCLUSIONES……………………………………………………………………87
10.- BIBLIOGRAFIA…………………………………………………………………..…89

INDICE DE FIGURAS.
Figura N. 1. Ichthyobodo necatrix……………………………………………………….5
Figura N. 2. Pez infectado Ichthyobodo necatrix……………………………………....6
Figura N. 3. Costia vista a través del microscopio……………………………………7
Figura N. 4. Puntos blancos notables en un pez con Ich……………………………..8
Figura N. 5. Ciclo de vida de ichthyophthyrius multifiliis………………………………9
Figura N. 6. Pez infectado por Ichthyophthirius multifiliis……………………………10
Figura N. 7. Hexamita…………………………………………………………………...12
Figura N. 8. Agujeros en la cabeza vista con una lupa……………………………...13
Figura N. 9. Agujeros notables en un pez enfermo de Hexamita………………..…14
Figura N. 10. Ciclo biológico del protozoo Oodium sp …………………………….17
Figura N. 11. Pez con síntomas característicos de Oodium. ………………………18
Figura N. 12.Anatomia de un Dactilogyrus sp …...…………………………………..20
Figura N. 13. Dactylogyrus……………………………………………………………...22
Figura N. 14. Anatomia de un Gyrodactylus sp………………………………………24
Figura N. 15. Gyrodactylus………………………………………………….………….26
Figura N. 16. Macho adulto de Argulus sp……………………………………………29
Figura N. 17. Argulus vista ventral……………………………………………………..30
Figura N. 18. Pez infestado de argulus………………………………………………..30

Figura N. 19. Hembra adulta de Ergasilus sp………………………………………...32
Figura N. 20 Hembra adulta de lernea sp…………………………………………….34
Figura N. 21. Gusano ancla visible…………………………………………………….35
Figura N. 22. Pez infestado de lernea…………………………………………………36
Figura N. 23. Lernea…………………………………………………………………….36
Figura N. 24. Degeneración de una aleta vista a través de una lupa……………...41
Figura N. 25. Aletas afectadas…………………………………………………………41
Figura N. 26. Síntomas visibles. ..………………………………………………..……41
Figura N. 27. Síntoma característico de columnaris………………………………...44
Figura N. 28. Pez con síntomas de tuberculosis, deformación y abdomen
hundido……………………………………………………………………………………47
Figura N. 29. Pez con Saprolegnia…………………………………………………….59
Figura N. 30. Síntomas visibles de Saprolegnia……………………………………...59
Figura N.31. Saprolegnia vista a través del microscopio……………………………60
Figura N. 32. Tumor de aspecto granuloso en una molly dorada…………………..66
Figura N. 33. Presencia de Linfoquistes en aletas…………………………………...67
Figura N. 34. Hemorragias puntuales en un pez dorado…………………………...71
Figura N. 35. Escamas erizadas……………………………………………………….75
Figura N. 36. Abdomen hinchado………………………………………………………75

Figura N. 37. Ojos fuera de su órbita………………………………………………….78
INDICE DE CUADROS
Cuadro N. 1. Medicamentos genéricos………………………………………………..15
Cuadro N. 2. Resumen de las principales enfermedades de los peces de
acuario.……………………………………………………………………………………81

UMSNH Jesús Antonio Jiménez Ramírez FMVZ
1.-INTRODUCCION
Existen una gran variedad de especies de peces de acuario, cada una de las
cuales tiene diferentes formas, comportamientos y necesidades, como
consecuencia de esta diversidad lo que puede ser un síntoma de enfermedad en
una especie, puede ser perfectamente normal en otra. La mayoría de los peces
nadan de la forma considerada como normal, pero otros, habitualmente o en
ocasiones, nadan al revés o de costado, mientras que algunos ocupan la mayor
parte de su tiempo descansando en el fondo porque tienen escasa o nula
flotabilidad, y todos están sanos. Algunas especies comen casi continuamente, por
lo que la pérdida de apetito indica la existencia de un problema, pero los que se
alimentan de otros peces pueden atracarse un día y no comer nada los siguientes.
Por tanto, es importante establecer los signos de salud en cualquier especie, tanto
antes de comprarlos, como para ser capaces de detectar problemas posteriores.
Hay muchos manuales sobre peces que proporcionan la información necesaria
sobre lo que es normal, y pueden apuntar sobre algunas de las "anormalidades" a
las que se ha hecho alusión. Cuando los catálogos indican que un pez es
piscívoro, aunque tenga un pequeño tamaño, se debe utilizar el sentido común
para evitar que terminen con los demás integrantes del acuario. Esta situación nos
provocaría una sensación de malestar. (Camarero, 2006)
En los peces como en cualquier especie animal la prevención juega un papel
fundamental para evitar enfermedades. Muchas veces los peces mueren sin razón
aparente, pero siempre hay una y debe ser investigada. Es bueno contar con un
tanque alternativo de emergencia para tratar enfermedades. También se
recomiendan los baños de sal para distintas enfermedades. Siempre es bueno
consultar a un especialista en caso de detectar comportamientos anómalos en los
peces. Aquí se describen algunas de las enfermedades que pueden sufrir en el
acuario, estanque de exhibición de vidrio, acrílico sintéticos transparentes.
La mayoría de enfermedades son provocadas por las condiciones inadecuadas del
agua donde mantenemos a nuestros peces, el Ph, la dureza, temperatura,
concentraciones altas de nitratos, amonia, etc. También pueden ser provocadas
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
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UMSNH Jesús Antonio Jiménez Ramírez FMVZ
por una carencia de vitaminas, oligoelementos o una dieta desequilibrada. Los
sistemas de filtración deben de ser los adecuados.
En casos extremos de ectoparásitos (lernea sp. y argulus sp.) pueden
anestesiarse ejemplares valiosos o de alta estima y desprenderlos manualmente.
Es importante que antes de adquirir un pez lo observemos detenidamente durante
un tiempo, analizando la respiración, que no sea muy acelerada sino acompasada
y constante. Se debe tener en cuenta la coloración del pez, que no se muestre
extremadamente oscuro y asustadizo, esto es sinónimo de que el pez no se
encuentra en óptimas condiciones. Es importante que el propietario del
establecimiento o criador nos muestre que los peces comen. Otro signo evidente
de que el pez no se encuentra bien es el oscurecimiento del cristalino del ojo. Los
diagnósticos pueden llegar a ser muy complicados ya que hay muchas
enfermedades que se manifiestan de formas muy similares, es conveniente
consultar con un especialista. Los tratamientos deben realizarse en un acuario
hospital. En diferentes artículos sobre enfermedades se encuentran para la
misma enfermedad tratamientos diferentes. Es muy importante observar el
comportamiento de los peces durante la primera media hora de su tratamiento, en
caso de anomalías, trasladar al animal a un acuario libre de medicación. Durante
la utilización de fármacos se debe retirar el carbón activo del filtro. En los
establecimientos dedicados a la acuariofilia existen medicamentos para tratar
multitud de enfermedades con resultados óptimos. Los peces de fondo no toleran
el Sulfato de cobre, que en dosis elevadas es tóxico. (Pecesdisco, 2006)
Las principales enfermedades de los peces de acuario están presentes en los mas
de 100 acuarios distribuidos en el estado de Michoacán, actividad económica
importante porque se combina en clínicas de animales domésticos de diversas
especies, los cuales como mascotas tienen demanda y existe mucho movimiento,
trueque, venta comercial internamente en el estado y con los estados productores
y peces de importación en los cuales no se aplican cuarentenas y cuando se
enferman es parte del negocio el regreso al acuario para la compra de
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
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UMSNH Jesús Antonio Jiménez Ramírez FMVZ
medicamentos y visitas a los negocios a recibir instrucciones curativas y
preventivas.
Este trabajo recopila algunas enfermedades incluyendo parásitos que en la
literatura se rotulan para una especie pero en realidad las pueden padecer otras
especies de acuario y de granja piscícola.
Esta investigación documental y práctica se apoya legalmente con la norma
sanitaria vigente que le da importancia legal a un buen número de enfermedades
de peces vivos referidos en el documento.
El manual Merck de Veterinaria en su primera edición de 1970 refiere que le
etiología, fisiología y patología de las enfermedades de los peces son similares en
muchos aspectos a aquellas encontradas en cualquier grupo vertebrado. Los
cambios patológicos incluyen hiperemia, anemia, hemorragia, edema, inflamación,
atrofia, hipertrofia, neoplasia, hiperplasia y necrosis. La evidencia histológica y
citológica ha sido establecida para trastornos del metabolismo de las grasas, de
las proteínas, de pigmentos y minerales. Estas manifestaciones patológicas
pueden ser causadas por agentes infecciosos o parasitarios o pueden ser debidas
directa o indirectamente a carencias, desequilibrios hormonales, defectos
embriológicos, factores hereditarios, edad, condiciones físico químicas anormales,
lesiones o fuerzas ambientales. Como cada especie acuática esta adaptada a una
temperatura y variaciones de pH, cualquier cambio en uno u otros valores causara
desequilibrio de los mecanismos homeostáticos resultado mortalidad por choque.
Disminución de oxigeno o exceso, aumento de dióxido carbónico pueden causar
asfixia. La contaminación por silicones o pinturas de los adornos artificiales
pueden causar problemas a los habitantes de los acuarios y por ultimo aspecto,
que no se abarcara e este trabajo se refiere a las inmunoglobulinas presentes en
el mucus y el organismo acuático (Iga, Igm, Igg, etc.).
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
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UMSNH Jesús Antonio Jiménez Ramírez FMVZ
2.- PROTOZOARIOS
Generalidades de los protozoario.
Son animales unicelulares, algunos presentan pigmentos de clorofila, los
fitoflagelados. Se desplazan mediante pseudópodos, cilios y flagelos.
Son de tamaño microscópico desde varias micras hasta cientos.
Su reproducción es sexual y asexual. La taxonomía es muy complicada y
cambiante.
Destacan:
- Los protozoos ciliados (Ciliophora), con cilios y núcleos de dos tipos.
- Los Flagelados (Mastigophora), tienen flagelo en toda o parte de su vida.
- Los Aplicomplexos, endoparásitos con emisión de esporas.
- Los Microsporidios (Microsporas y Myxozoas). Son parecidos a los anteriores
pero con una o dos células infectantes en cada espora.
Los protozoos forman parte de la flora comensal de los peces sin dañarles, pero al
ser oportunistas, cuando bajan las defensas del pez, atacan enfermando al animal
(Aberiak, 2006).
2.1.- COSTIASIS (Ichthyobodo necatrix)
Etiología: El Ichthyobodo necatrix es un protozoario dotado de un flagelo largo,
mediante el cual nada, y dos flagelos cortos. Es muy común en el acuario pero
sólo ataca al pez cuando éste tiene su organismo debilitado, actuando
preferentemente sobre las aletas blandas. Fuera del pez este protozoario muere
en 30 o 50 minutos, especialmente si se lleva la temperatura del agua más allá de
los 30ºC (Petracini, 2006).
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
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UMSNH Jesús Antonio Jiménez Ramírez FMVZ
Figura N. 1. Ichthyobodo necatrix
(Cordero, et al. 1999).
Definición: La costiasis es una enfermedad que se difunde por lo general en
lugares donde existe una gran concentración de peces. Por eso es una
enfermedad que suele aparecer con mayor frecuencia en los criaderos de truchas
y carpas las factorías de peces ornamentales luego de los períodos de hibernación
Es una enfermedad casi siempre asociada a otros procesos, y que por lo tanto
puede considerarse a Ichthyobodo necatrix como un parásito de la debilidad. Un
ataque prolongado producirá necrosis de las células epidérmicas (Camarero, 2006
Y Petracini, 2006).
Sinonimia: ninguna.
Epidemiología: Es uno de los patógenos más peligrosos en el pez dorado, siendo
más habitual de lo que se cree. Los brotes de Costiasis suelen ocurrir
principalmente en la primavera, sobre todo en peces de estanque. Es el más
pequeño de todos los parásitos y no se puede apreciar en cualquier microscopio.
Los daños que produce en las branquias del pez son severos, y un brote de este
parásito suele ocasionar muchas muertes, a menos que sea identificado y
medicado con prontitud (Pecesdiscos, 2006).
Patogenia: Es causado por un parásito protozoo externo Ichthyobodo necatrix que
penetra en las células epiteliales por medio de una especie de gancho y se
reproduce sobre la superficie corporal del pez (Camarero, 2006).
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
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Signos: No es fácil identificarlo debido a que no se encuentra en todo el pez, por
lo que a menos que se tomen muestras de toda la superficie del pez (lo cual no es
práctico) es posible que no lo detectemos (Pecesdiscos, 2006).
Síntomas: Los peces infectados por Ichthyobodo necatrix desarrollan pequeños
parches en la cabeza y los recubrimientos de las branquias, también permanecen
en el fondo del acuario. Algunos peces mueren sin presentar estos síntomas. En
otros casos, los peces boquean desesperadamente por oxígeno mientras el
parásito destruye las branquias del pez (Petracini, 2006).
Manchas grises. Frotamientos contra los objetos del acuario. Congestión de las
branquias. Se observa una fina capa turbia y viscosa, más notable en los discos
oscuros, nadan bruscamente y se frotan contra la decoración. Puede observarse
en la superficie del acuario el pez respirando. La enfermedad es curable en casi
todos los casos si se interviene a tiempo (Camarero, 2006).
Figura N. 2. Pez infectado Ichthyobodo necatrix
(Camarero, 2006).
Un síntoma que se aprecia en algunos peces (siempre de color claro), son
pequeńisimas hemorragias en las escamas, las cuales también se asocian a
concentraciones altas de amonia y el estrés originado por el traslado o bien por
ser perseguido con una red. Si los niveles de amonia son de cero y el pez no ha
sido estresado, entonces es factible asumir que se trata de Costiasis (Petracini,
2006).
Diagnóstico de laboratorio: Identificación en laboratorio (Pecesdiscos, 2006).
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
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Figura N. 3. Costia vista a través del microscopio
(Pecesdiscos, 2006).
Diagnostico diferencial: Al parecer no se puede confundir con otra enfermedad
(González, 2006).
Tratamiento: Composición madre. Un 1 litro de agua destilada, 4 gr. de Sulfato de
cobre, 2,4 gr. de ácido cítrico. Subir temperatura a 31º ó 32º, aumentar
oxigenación, añadir 20 ml de la solución madre, por cada 100 litros. Durante tres
días, al finalizar cambio parcial de agua (Camarero, 2006).
También se puede tratar esta enfermedad utilizando los siguientes medicamentos
que se encuentran en cualquier acuario tales como Verde de Malaquita, Azul de
Metileno y acriflavina a dosis indicadas (Fernández, 2006).
Prevención: buena alimentación, no sobre poblar, y evitar estresarlos (González,
2006).
2.2.- ICTIOFTIRIASIS (Ichthyophthirius multifiliis)
Etiología: Ichthyophthirius multifilis produce el Punto Blanco en Agua Dulce y
Cryptocaryon irritans en Agua Salada. Es la más generalizada de las
enfermedades de los peces de acuario. Los animales que sobreviven adquieren
inmunidad (Fernández, 2006).
El punto blanco que se ve en realidad se trata de la piel del pez, estirada sobre el
parásito que se aloja debajo de ella. Este organismo se aloja bajo la epidermis del
pez infectado. También se ven casos en los cuales el pez esta contagiado de Ich y
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UMSNH Jesús Antonio Jiménez Ramírez FMVZ
no muestra los puntos blancos, esto se debe a diversas variables como la
temperatura del agua, el sistema inmunológico del pez y su pigmentación
(Petracini, 2006).
Figura N. 4. Puntos blancos notables en un pez con Ich
(Petracini, 2006).
Definición: La enfermedad más común en los acuarios (tanto o más que
enfermedades bacterianas) es sin dudas el “punto blanco”.
Esta producida por Ichthyophthirius multifiliis un protozoo cilíado que
normalmente es tolerado por los peces y que, mediante frotis y análisis
microscópico, puede localizarse en muchos peces sanos (ornamentales o no).
De hecho conviven en equilibrio hasta que algún factor externo rompe ese
equilibrio y el parásito reactiva su ciclo vital. Es decir que es un parásito
oportunista, ya que hasta ese momento permanecía en reposo o nutriéndose
en semi letargo. Mientras el parásito permanece enquistado en el cuerpo de un
pez puede ser considerado indestructible con los medicamentos
convencionales ya que el propio pez construye un recubrimiento de mucosa
epitelial que aísla el parásito del agua (Petracini, 2006).
Sinonimia: Ich y punto blanco (Petracini, 2006 y Fernández, 2006).
Gránulos de arena. (Heinz, 1982).
Epidemiología: Es uno de los parásitos más comunes en el acuario. El pez tiene
la apariencia de estar empolvado en finos granitos de sal, los cuales cubren el
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cuerpo y aletas; de ahí que se le conozca como enfermedad del punto blanco
(Pesce, 2005).
Patogenia: La mayoría de los casos de Ich se presentan a los pocos días de
haber ańadido un pez al acuario sin haberlo puesto en cuarentena primero. Los
cambios bruscos en la temperatura del agua, así como un temperatura muy baja
menor a los 13C pueden desencadenar el Ich (Petracini, 2006).
Figura N. 5. Ciclo de vida de ichthyophthyrius multifiliis
(Smyth, 1965, Brown, 2000, Jiménez, et. al., 2000).
El ich suele hacer su aparición en acuarios con malos parámetros del agua, por lo
que deberán de hacerse tests hasta garantizar que los parámetros se encuentran
en los niveles óptimos. Más vale prevenir que lamentar. Este parásito se elimina
con facilidad cuando esta en las primeras fases, por lo cual no conviene dejar
pasar el tiempo antes de suministrar el medicamento (Salas y Garrido, 1997).
Signos: Aletas pegadas al cuerpo y fricción contra objetos. Se aprecian puntos
blancos por todo el cuerpo, en las aletas y agallas. En individuos muy afectados se
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unen formando manchas irregulares. Los peces se frotan contra las rocas y
mueven rápidamente las branquias. Aparecen muy pocos puntos blancos del
tamaño de una cabeza de alfiler, en un día puede estar enteramente recubierto de
puntos (Fernández, 2006).
Figura N. 6. Pez infectado por Ichthyophthirius multifiliis (punto blanco)
(Fernández, 2006).
Síntomas: Los peces infectados suelen mostrar los mismos síntomas: se apartan
del resto, se muestran letárgicos, con las aletas retraídas y con puntos blancos a
lo largo del cuerpo y aletas. En algunos casos donde la temperatura del agua es
baja, el pez muestra dificultad para respirar y la piel adquiere una tonalidad rojiza
(Pemau, 2006).
Hay dos formas de contagio: ingresa al acuario a través de agua contaminada, o
bien a través de un pez infectado. El organismo debajo de la piel se hincha hasta
provocar una erupción y caer al fondo del acuario. Es entonces cuando se abre y
miles de crías de Ich salen en busca de un pez donde alojarse, hasta penetrar la
piel de un pez y repetir nuevamente el ciclo. Pequeños puntos blancos que dan al
pez el aspecto de estar espolvoreados de azúcar. En un estado avanzado crecen
los puntos y se unen formando manchas amarillentas (Fernández, 2006).
Diagnóstico de laboratorio: identificación en laboratorio realizando un raspado al
pez enfermo (Pemau, 2006).
Diagnostico diferencial: Se puede confundir con el protozoo Oodium (Martínez,
2001).
Tratamiento: Subir temperatura gradualmente hasta los 32º, aumentar
oxigenación. Hacer una composición madre, Azul de Metileno 9 gr., Etanol 90 ml,
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Fenol 26 ml, 1 litro Agua destilada. Añadir 20 ml de esta composición por cada 100
litros de agua del acuario, a los 3 días cambio parcial de agua (Petracini, 2006).
La manera más común de eliminar este parásito es con sal de acuario. Se debe
tratar el acuario entero ya que el Ich es sumamente contagioso. Antes de iniciar el
tratamiento se extraen las plantas (la sal de acuario puede dañarlas e incluso
matarlas) y se realiza un cambio parcial de un 30% del agua, asegurándonos que
todos los parámetros del agua sean correctos: amonia, nitratos, nitritos, pH. Una
vez esto, se ańade 1 cucharadita chica por cada galón (3.78 litros) de agua, cada
12 horas hasta completar 3 aplicaciones. Por ejemplo, si ańades la sal a las 12
AM, se debe ańadir la misma cantidad a las 12 PM y de nueva cuenta a las 12 AM
del día siguiente. Hasta el día 14 de iniciado el tratamiento se realiza un cambio
parcial de un 30% del agua. Es normal que los puntos blancos se multipliquen al
día siguiente de iniciado el tratamiento con sal. Hasta transcurridas las primeras
24 a 36 hrs. se percibe una disminución en el número de puntos blancos. Después
del cuarto o quinto día el parásito debe haber sido eliminado por completo
(Petracini, 2006 y Fernández, 2006).
Prevención: Elegir bien los peces nuevos (sin heridas, puntos o granos, que
naden sin esfuerzo, que no estén ni delgados ni obesos y que coman
regularmente), lavar bien las plantas que se introduzcan ya que pueden introducir
parásitos en el acuario u otros animales como los caracoles que indirectamente
pueden contagiar enfermedades a los peces y evitar la superpoblación de peces,
lo que aumentaría el estrés de los peces y también sus desechos (González,
2006).
2.3.- HEXAMITIASIS (Hexamita sp).
Etiología: La Hexamitiasis está causada por un protozoo flagelado llamado
Hexamita. Los peces normalmente portan en sus intestinos protozoos parásitos en
pequeñas cantidades ingeridos con el alimento. Situaciones de estrés como una
población inadecuada, unas calidades erróneas del agua, cambios bruscos de
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temperatura, dieta desequilibrada y un largo etcétera de factores, puede
desencadenar la multiplicación de los inquilinos (Pemau, 2006).
Figura N. 7. Hexamita
(Cordero, et al. 1999).
Definición: Conocida vulgarmente como la enfermedad de los agujeros en la
cabeza. Provoca en fases avanzadas la aparición en la parte superior de los ojos
de unos agujeros por los que se puede observar como se desprenden unos
filamentos blanquecinos gelatinosos derivados de la necrosis de los músculos de
la cabeza del animal. La enfermedad ataca a especies determinadas de peces,
siendo las más afectadas los Cíclidos, Serrasálmidos y Gouramis (González,
2006).
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Figura N. 8. Agujeros en la cabeza vista con una lupa
(González, 2006).
Antiguamente se consideraba al Pez Scalare como portador sano del protozoo
causante de la enfermedad. Posteriormente se ha determinado que tiene más
relación con los desajustes en las condiciones ambientales y alimentarías en las
que se mantiene a los animales (Fernández, 2006).
Sinonimia: Enfermedad de los agujeros en la cabeza (González, 2006).
Epidemiología: Esta enfermedad se encuentra y se difunde con facilidad en la
mayoría de los acuarios en mal estado ya que esto provoca estrés y el pez se
debilita (Pemau, 2006).
Patogenia: Los protozoos invasores causan infecciones en los órganos
intestinales. Los intestinos se inflaman y están cubiertos de mucosidad y sangre.
También ataca a la vesícula inflamándola y endureciéndola. Generalmente estos
protozoos llegan al intestino al ser ingeridos con alimentos vivos portadores de
dichos parásitos. Los parásitos siempre presentes son controlados por el sistema
inmunológico del pez. Una vez las condiciones exteriores deterioran este sistema
de protección es cuando el protozoo tiene el campo abierto para su propagación
(Petracini, 2006).
Infecciones no curadas convenientemente pueden generar estados latentes donde
los parásitos permanecen controlados hasta que se provoca otra situación
extrema que causa el desajuste (Cuadrado, 2000).
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Signos: Los primeros signos que podemos ver son un oscurecimiento general y
un enflaquecimiento de la zona ventral del animal. Los peces afectados perderán
el apetito y producirán unas heces pálidas gelatinosas. Se mostrarán retraídos y
apáticos, pudiendo presentar desgarros en la base de las aletas y en la línea
lateral (González, 2006).
Síntomas: En fases avanzadas de la enfermedad el pez mostrara un agudo
enflaquecimiento y una serie de orificios en la cabeza a través de los cuales
colgará una sustancia gelatinosa procedente de la destrucción de los músculos. La
Hexamitiasis es una enfermedad grave que puede ocasionar la muerte sino se
toman medidas a tiempo (González, 2006).
Figura N. 9. Agujeros notables en un pez enfermo de Hexamita
(González, 2006).
Diagnóstico de laboratorio: En un microscopio, se observan millones de
pequeñísimos microorganismos incluso más pequeños que el parásito conocido
como Costia. Para identificarlos, es necesario un microscopio con un aumento de
al menos 400X. Para apreciar los vellitos de este parásito es necesario un
aumento de 1000X (Petracini, 2006).
Diagnostico diferencial: Este parásito no es común, y no debe confundirse con el
deshilachamiento de las aletas ocasionado por una mala calidad del agua
(Petracini, 2006).
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Tratamiento: Aunque todavía no hay un tratamiento cien por cien eficaz. Si
podemos utilizar diferentes compuestos más o menos efectivos. Podemos acudir a
los medicamentos genéricos como el Dimetridazol y el Metronidazol, mucho más
económicos y disponibles en cualquier farmacia.
Dichas sustancias se han de disolver en el agua a tratar y aunque no son tan
efectivas como el medicamento mezclado con la comida, si suelen tener cierto
grado de éxito en repetidos tratamientos (González, 2006).
Cuadro N. 1. Medicamentos genéricos
Medicamento
Dimetridazol
Metronidazol
(González, 2006).
Dosis
5 mg/l
40 mg/l
7 mg/l
Forma de empleo
3 veces, una vez por semana, en
acuario enfermería. Cambio del 20%
del agua antes de nueva dosis.
Baño durante 48 horas. Acuario
enfermería. Peces muy afectados
Baño en Acuario enfermería. 3
veces, con una separación de 48
horas. Tras tres baños cambio de
agua del 25%. Repetir tratamiento
hasta total curación.
Prevención: Aislar a los recién llegados en acuarios de cuarentena, para evitar
que los peces nuevos enfermos contagien a los demás, elegir bien los peces
nuevos (sin heridas, puntos o granos, que naden sin esfuerzo, que no estén ni
delgados ni obesos y que coman regularmente), alimentar regularmente y con
variedad de alimentos alternando los copos con otro tipo de alimento como
dafnias, tubifex, larvas de mosquito, etc., mantener una buena oxigenación, evitar
sobrecargas del filtro para que no se pudran los residuos tóxicos procedentes de
la descomposición de los alimentos y de la excreciones de los peces (González,
2006).
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2.4. - OODINIUM U OODIANIASIS (Oodinium pillularis)
Etiología: Se trata de un dinoflagelado que está altamente adaptado a
condiciones de parasitismo. Este protozoo infeccioso tiene un diámetro
aproximado de 10 micras, en su fase infectiva son de un color amarillo-verdoso,
conforma piriforme (forma de pera). En la fase de división cada protozoo puede
dar lugar hasta a 256 dinosporas, aunque por norma general dan lugar a unas 64
dinosporas aproximadamente (Martínez, 2001).
Definición: Oodinium pillularis causa la enfermedad del terciopelo de Agua Dulce
y Amyloodinium ocellatum la de Agua Salada. El cuerpo aparece recubierto por
una capa como de terciopelo. Los peces se rozan contra las rocas y adelgazan.
En estados avanzados la piel se cae a jirones, y los peces afectados realizan
rápidos movimientos respiratorios (Camarero, 2006).
Sinonimia: Enfermedad del terciopelo (González, 2006).
Epidemiología: Este parásito es muy raro y es el causante de que los peces
afectados parezcan estar cubiertos en un fino polvillo dorado (González, 2006).
Patogenia: La causa del ataque de estos parásitos dinoflagelados son, los
cambios bruscos en las condiciones del agua (Temp., pH, etc.) porque debilitan el
epitelio (González, 2006).
Se transmite a través del contacto directo o mediante agua contaminada
(Camarero, 2006).
Al igual que el "Ich", este parásito se abre y suelta miles de crías, las cuales nadan
en busca de otro pez en donde hospedarse (Martínez, 2001).
Su ciclo de vida se completa el plazo de 10 a 14 días en unas condiciones óptimas
de mantenimiento, a una temperatura de 23 - 25 ºC (Fernández, 2006).
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El ciclo biológico de estos dinoflagelados es muy simple: cuando la forma
parasítica ataca a un individuo y se alimenta durante un período de tiempo, ésta
se separa del hospedador, retrae sus rhizoides, estructura utilizada por el parásito
para fijarse al epitelio del pez; segrega una cubierta de celulosa, lo que le
proporciona una forma de resistencia frente a condiciones adversas, cayendo al
fondo del acuario. En el interior de esta cubierta de celulosa se producen múltiples
divisiones muy rápidas, dando lugar a un elevado número de esporas flageladas
(dinosporas), que rompen la cubierta de celulosa y nadan libremente por el acuario
hasta que son capaces de fijarse a un nuevo hospedador y parasitarlo. Si este
proceso de fijación a un nuevo individuo no ocurre en un plazo aproximado de 48
horas, las dinosporas mueren (Martínez, 2001).
Figura N. 10. Ciclo biológico del protozoo Oodium sp.
(Martínez, 2001).
Signos: El pez afectado se "rasca" contra los objetos y luego aparece una capa
blanca (entalcado) sobre los ojos y las aletas (Martínez, 2001).
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Síntomas: Se manifiesta con un recubrimiento del pez que recuerda al terciopelo
opaco, afectando a las aletas y branquias. Altera la respiración provocando la
muerte, la enfermedad es curable en casi todos los casos si se interviene a
tiempo, puede durar varios días (Martínez, 2001).
Figura N. 11. Pez con síntomas característicos de Oodium
(Fernández, 2006).
Diagnóstico de laboratorio: Se le observa con facilidad bajo una lente de
aumento de 100X. Tiene forma ya sea de esfera o bien pentagonal y permanece
inmóvil. Se sujeta por medio de un aguijón en forma de aguja, la cual penetra
profundamente la piel del pez (González, 2006).
Diagnostico diferencial: Debido a la apariencia externa, puede confundirse con
el punto blanco, aunque a diferencia de este, en el que se ven puntos
perfectamente identificados, en el caso del terciopelo, da la sensación de que el
pez ha sido espolvoreado con polvo blanco (Martínez, 2001).
Tratamiento: Composición madre. Un 1 litro de agua destilada, 4 gr. de Sulfato de
cobre, 2,4 gr. de ácido cítrico. Subir temperatura a 31º ó 32º, aumentar
oxigenación, añadir 20 ml de la solución madre, por cada 100 litros, durante tres
días, al finalizar cambio parcial de agua. Si no mejora repetir tratamiento con 3
días de descanso (Fernández, 2006).
El uso de sal es ineficaz para eliminar este parásito. Se recomienda utilizar un
medicamento con formalìn. Este parásito es devastador por lo cual debe de
eliminarse de inmediato (González, 2006).
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Prevención: Aislar a los recién llegados en acuarios de cuarentena, para evitar
que los peces nuevos enfermos contagien a los demás. Mantener el agua en
condiciones estables (temperatura constante y adecuada, limpiar filtros
regularmente, cada 15 días, y realizar cambios de agua frecuentemente, cada 2
semanas) (González, 2006).
3.- HELMINTOS (metazoos).
Generalidades de los metazoos.
Este suborden incluye a todos los animales pluricelulares. El conjunto de células
puede organizarse en tejidos más o menos complejos. La vida de todos los
individuos se origina de una única célula, que por sucesivas divisiones va dando
lugar a las restantes que formaran el organismo, diferenciándose entonces en los
diversos tejidos y formando los órganos correspondientes.
Es difícil establecer el origen de los Metazoos. Se admite que los primeros
organismos animales evolucionaron hasta formar los Protozoos, separándose
estos en varias ramas, principalmente la de los Flagelados y los Poríferos. De la
línea común surgieron formas con células agregadas que acabaron por constituir
organismos pluricelulares. Sin embargo, no llegaban a formar tejidos por lo que
quedaron al nivel de Mesozoos. El siguiente paso fue la organización de esas
células en verdaderos tejidos, apareciendo los Celentéreos. Estos animales se
denominan diblásticos porque su cuerpo está formado por dos únicas capas
celulares, una externa (ectodermo) y otra interna (endodermo). Con la aparición de
una tercera capa celular intermedia (mesodermo) aparecen el resto de los
Metazoos, que reciben el nombre de triblásticos.
En el desarrollo embrionario de los triblásticos se forma primero un tubo digestivo
simple con dos aberturas: una boca y un ano. Después, para dar el individuo
adulto, en algunos se mantiene esta disposición, mientras que en otros la boca
aparece en distinto lugar. De este modo se distinguen dos líneas principales de
Metazoos: los Prostóstomos (donde la boca embrionaria, el blastóporo, se
conserva todavía en el adulto) y Deuteróstomos (el blástoporo se cierra y la boca
del adulto aparece en un lugar distinto). Los Protóstomos comprenden, entre otros,
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tres grandes grupos: Anélidos, Moluscos y Artrópodos, mientras que en los
Deuteróstomos se incluyen otros grupos importantes: Equinodermos y Cordados
(Mendivil, 2006).
3.1.- DACTYLOGIROSIS (Dactylogyrus vastator)
Etiología: El Dactylogyrus vastator es un gusano parásito de las branquias y se
aferra a ellas mediante unos garfios, se alimentan de mucus piel y sangre de los
peces, éstos generan una mucosidad en las branquias más de lo habitual, lo que
les impide respirar, el ciclo de infección del parasito hace que sea difícil erradicarlo
(Díez, 2006).
Figura N. 12. Anatomia de un Dactilogyrus sp.
(Cordero, et al. 1999).
Estos tremátodos son monogénicos, es decir, no necesitan de un agente
intermediario para reproducirse y volver a infectar a un pez. Ponen huevos, que a
veces poseen un flagelo sobre los filamentos branquiales; de ellos sale una larva
ciliada que va provista de un disco adhesivo. Durante un tiempo nada, hasta que
se fija en las branquias del mismo u otro pez (Alex, 2006).
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Definición: Se trata de una infestación por tremátodos monogènicos. Los géneros
más frecuentes son: Dactylogyrus vastator, cuatro ojos en la parte anterior, dos
grandes ganchos en la posterior unidos por un solo conectivo, y un disco adhesivo
rodeado de muchos y pequeños garfios. Monocoelium, que posee cuatro ganchos
grandes en su disco adhesivo y un conectivo, siendo bastante frecuente en los
acuarios. Neodactylogirus, como el Dactylogyrus, pero con dos piezas conectivas.
El Acyrocephalus, que es como el Monocoelium, pero con dos piezas conectivas
y, además, la región anterior es redondeada. Diplectanum, que tiene el órgano
conectivo en forma de pentágono irregular y las dos piezas conectivas más largas
que los ganchos. Diplozoom, fácil de reconocer, ya que siempre se encuentran
dos individuos juntos, unidos por un punto medio, tomando así la pareja forma de
X. Son ciegos y miden entre 1 y 3 mm. Lo s individuos se unen ya en estado
larvario, quedando enfrentados los conductos deferentes (por donde circulan los
epermatozoides0, de uno, con los oviductos del otro (González, 2006).
Sinonimia: Planaria de las Agallas (González, 2006).
Epidemiología: Se encuentra en todos los acuarios en pésimas condiciones
(Pemau, 2006).
Patogenia: Se producen daños en las branquias, agallas enrojecidas y
hemorrágicas, hinchazones y mucosidad excesiva. El pez no puede respirar y
muere por asfixia (Camarero, 2006).
Signos: Los peces suben a la superficie, respiran con dificultad y el ritmo
respiratorio es muy elevado. Uno o los dos opérculos suelen estar levantados
(Pemau, 2006).
Síntomas: Los síntomas no son visibles en una primera etapa de la infestación.
Recién cuando el proceso está avanzado se observa un engrosamiento de los
bordes branquiales y los opérculos un poco abiertos.
Sin embargo el comportamiento del pez debe ser necesariamente anormal desde
un principio por cuanto se le dificulta la respiración, se le irritan las láminas
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branquiales y tiende a frotarse en busca de desprenderse del parásito (Petracini,
2006).
Diagnóstico de laboratorio: Con el auxilio de una lupa (o mejor aún, de un
microscopio de hasta 120 aumentos) se puede confirmar el diagnóstico. Para
observación microscópica puede utilizarse material conservado en formol al 10%,
colocando la muestra en un portaobjeto con una gota de agua y utilizando entre 60
y 120 aumentos. Para muestra será suficiente un corte de filamentos branquiales
contaminados (Petracini, 2006).
Figura N. 13. Dactylogyrus
(Petracini, 2006).
Diagnostico diferencial: se puede confundir con gyrodactilosis si no se hace bien
el diagnostico de laboratorio (Petracini, 2006 y González, 2006).
Tratamiento: El tratamiento de la enfermedad, aparte de echar algún
desinfectante en el agua, es hacer muchos y abundantes cambios de agua,
recogiéndola del fondo del acuario donde puede haber acumulados mas huevos
de Dactylogyrus vastator, de esta forma diluimos mucho la concentración de
huevos que mas tarde parasitarian a los peces, si además añadimos algún
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desinfectante cada vez que les veamos respirar mal, al llegar a la edad adulta ya
no tendremos que preocuparnos (Díez, 2006)
Se obtiene éxito agregando 25~50 ppm de Formol al 40% durante 5 días (Alex,
2006).
Composición madre. Un 1 litro de agua destilada, 2 gr. de permanganato potásico.
Solo debe utilizarse en acuarios desnudos, sino el efecto es nulo. Continua
observación ya que este tratamiento puede ser catastrófico. Máxima atención en la
primera hora. Añadir 1 ml de la solución madre, por cada litro de agua del acuario.
Es decir para un acuario de 100 litros serían 100 ml. Esto nos da una proporción
de 2 ppm. La composición madre es de color púrpura, el acuario se tornará de
este color, pasadas unas horas se va tornando a marrón y va dejando de ser
efectivo. No se debe prolongar la coloración púrpura por más de 8 horas, haciendo
un cambio parcial de agua del 30% o 50%.Este tratamiento debe realizarse
durante 3 días seguidos con cambio parcial de agua, es necesario volver a repetir
a la semana para acabar con las posibles larvas que hayan podido nacer. La
composición madre debe mantenerse en un sitio fresco y en un recipiente opaco.
Esta no es estable, es aconsejable realizarla nuevamente si transcurren muchas
semanas (Pecesdiscos, 2006 y Petracini, 2006).
Prevención: Aislar a los recién llegados en acuarios de cuarentena, para evitar
que los peces nuevos enfermos contagien a los demás y elegir bien los peces
nuevos (sin heridas, puntos o granos, que naden sin esfuerzo, que no estén ni
delgados ni obesos y que coman regularmente) (González, 2006).
3.2.- GYRODACTYLOSIS (Gyrodactylus salaris).
Etiología: Gyrodactylosis es causado por un trematodo monogénico, Gyrodactylus
salaris. Este género del parásito es absolutamente común alrededor del mundo. A
diferencia de los Dactylogyrus este no suele parasitar las branquias, más fácil de
erradicar. Este se reproduce, alojando en su interior un embrión, no es necesario
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
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repetir el tratamiento, acabando con el reproductor se acaba con los embriones
(Pecesdiscos, 2006).
Definición: Los trematodos parásitos de los peces son varios. Los hay
parasitarios de la piel y las branquias, que son poseedores de uno o más pares de
ganchitos utilizados para fijarse. Algunos trematodos en estado larvario son
encontrados en órganos internos, piel, branquias, ojos, músculos y hasta en la
sangre (Petracini, 2006).
Figura N. 14. Anatomia de un Gyrodactylus sp.
(Cordero, et al. 1999).
Sinonimia: Planaria de la piel (González, 2006).
Epidemiología: Este parásito es absolutamente común alrededor del mundo.
Algunos parásitos no causan ningún problema a las poblaciones sanas, pero las
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infestaciones masivas conducen a la resistencia comprometida a los virus y a las
bacterias (Pecesdiscos, 2006).
Patogenia: Los trematodos monogésicos parásitos de los peces son siempre
localizados en la piel y branquias y su reproducción se produce en el mismo pez
parasitado o pasando por el estado larval de libre natación, que busca nuevos
huéspedes para parasitar. En uno de sus extremos poseen los ganchos de fijación
y uno o varios huesos pequeños dentro de los cuales calza otro (acetábulos) que
utilizan con la misma finalidad que los ganchos. La ingesta de alimento la
producen por succión utilizando una ventosa (González, 2006).
Signos: Conducta temerosa, movimientos de refregado, pérdida de peso,
obscurecimiento y excreción de babas azuladas por la piel (Pemau, 2006).
Síntomas: Gyrodactylus se localiza en el tegumento de los peces, pudiendo
atacar en cualquier parte del cuerpo, incluyendo los ojos. No son muy visibles los
síntomas externos sino hasta muy avanzada la enfermedad, por lo que estamos
ante un caso en que la observación del comportamiento de los peces es
fundamental. En etapa avanzada se observa turbidez de la piel y algunas zonas,
fuertemente invadidas, presentan un enrojecimiento. En los ojos puede
presentarse una opacidad generalizada o parcial, según el grado de invasión del
parásito (Pecesdiscos, 2006).
Diagnóstico de laboratorio: Con microscopio a 60-120 aumentos o menos es
posible efectuar un diagnóstico cierto, ante la posible presencia de otros parásitos
de la piel menos comunes y a los cuales se debe medicar de modo diferente.
Para ello debe tomarse material fresco ya que Gyrodactylus abandona
rápidamente los peces muertos (Petracini, 2006).
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Figura N. 15. Gyrodactylus
(Petracini, 2006).
Diagnostico diferencial: Comparando la observación con la ilustración (muy
difundida en publicaciones de acuarismo), no se tendrán dudas sobre ante quién
nos encontramos. Aún si se tratara del bastante parecido Dactylogyrus y nos
confundiéramos en el diagnóstico, la medicación a utilizar es semejante por lo que
podremos tener éxito igualmente. Casi seguramente si el parásito se localiza en
las branquias se trata de Dactylogyrus, mientras que su pariente cercano se
localiza con preferencia en el cuerpo (Petracini, 2006).
Tratamiento: La utilización de preparados a base de formalina, sulfato de cobre (o
algunos organoclorados para el caso de factorías de peces ornamentales) son
recomendables (Petracini, 2006).
Composición madre. Un 1 litro de agua destilada, 2 gr. de permanganato potásico.
Solo debe utilizarse en acuarios desnudos, sino el efecto es nulo. Continua
observación ya que este tratamiento puede ser catastrófico. Máxima atención en la
primera hora. Añadir 1 ml de la solución madre, por cada litro de agua del acuario.
Es decir para un acuario de 100 litros serían 100 ml. Esto nos da una proporción
de 2 ppm. La composición madre es de color púrpura, el acuario se tornará de
este color, pasadas unas horas se va tornando a marrón y va dejando de ser
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efectivo. No se debe prolongar la coloración púrpura por más de 8 horas, haciendo
un cambio parcial de agua del 30% o 50%. Este tratamiento debe realizarse
durante 3 días seguidos con cambio parcial de agua, es necesario volver a repetir
a la semana para acabar con las posibles larvas que hayan podido nacer. La
composición madre debe mantenerse en un sitio fresco y en un recipiente opaco.
Esta no es estable, es aconsejable realizarla nuevamente si transcurren muchas
semanas. (Pecesdiscos, 2006).
Prevención: Aislar a los recién llegados en acuarios de cuarentena, para evitar
que los peces nuevos enfermos contagien a los demás, elegir bien los peces
nuevos (sin heridas, puntos o granos, que naden sin esfuerzo, que no estén ni
delgados ni obesos y que coman regularmente) y evitar la superpoblación de
peces, lo que aumentaría el estrés de los peces y también sus desechos
(González, 2006).
4.- CRUSTACEOS.
Características generales de los crustáceos acuáticos:
• Respiración branquial
• Reproducción sexual y en ocasiones hermafrodita
• Caparazón externo, con cefalotórax (cabeza y tórax unidos)
• Al nacer aspecto de nauplio que va cambiando hasta su aspecto adulto, es
decir sufren una metamorfosis.
• Son ectoparásitos, es decir que viven en la superficie del pez, en su piel, en
escamas, branquias, aletas......
• Se alimentan succionando las sustancias del pez (sangre)
• Las heridas que originan son a su vez vías de entrada para infecciones de
bacterias y crecimiento de hongos (A.E.K, 2006 y Aberiak, 2006).
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4.1.- ARGULOSIS (Argulus foliaceus)
Etiología: La enfermedad está producida por un crustáceo del género Argulus
foliaceus, del cual existen diferentes especies y es por ello, que como agente
patógeno simplemente hemos colocado Argulus foliaceus,., pero algunas de estas
especies son: A. pellucidus (peces de agua fría principalmente), A. funduli
(cíclidos), A. coregoni (peces de agua fría), etc... (Maceda y González, 2006).
El crustáceo adulto presenta un cuerpo aplanado protegido por un escudo y un
tamaño total que supera los 5 mm. de longitud. Las mandíbulas típicas de los
crustáceos no parásitos, aquí se han convertido en un aparato picador-chupador,
algo muy usual en los organismos ectoparásitos y a su vez, las maxilas se han
convertido en ventosas para garantizar un buen anclaje al pez que los hospeda.
(González, 2006).
Son organismos dioicos, es decir, presentan sexos separados. Los machos
poseen dos testículos en los lóbulos abdominales y las hembras un único ovario
en el tórax aparte de dos receptáculos donde almacenan el esperma de los
machos. La reproducción es un proceso curioso, puesto que las hembras poseen
una especie de estiletes que les permiten perforar los óvulos maduros para que
éstos puedan ser fecundados por los espermatozoides. Una vez tiene lugar la
fecundación, los huevos son depositados sobre plantas o piedras y de los cuales
saldrán unas larvas que guardan una gran semejanza con los adultos. (Petracini,
2006).
Definición: Parásito externo muy visible, algunas especies miden hasta 13 mm. y
parasitan cualquier parte del cuerpo. Conocido como "garrapata" o "piojo" de los
peces, se adhieren mediante sus dos ventosas y valiéndose de sus extremidades
(Pemau, 2006).
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Figura N. 16. Macho adulto de Argulus sp.
(Cordero, et al. 1999).
Sinonimia: "garrapata" o "piojo" de los peces (Pemau, 2006).
Epidemiología: Pese a que muchos aficionados no lo tienen en cuenta, los
Argulus foliaceus, poseen una glándula venenosa. No es un grave peligro ni para
nosotros ni para los peces de cierta envergadura pero para los más pequeños
puede suponer la muerte casi instantánea según sea la sensibilidad de la especie
afectada (Maceda y González, 2006).
Patogenia: Tienen una trompa provista de un instrumento picador formado por
dos mandíbulas y por las maxilas que se ubican entre ambos ojos (Pemau, 2006).
Esta trompa contiene una glándula productora de toxinas que está rodeada por un
tubo que se introduce en la herida y sirve como instrumento suctorio de la sangre
y jugos tisulares.
Peces ornamentales de porte pequeño pueden perecer por acción de las toxinas.
Cuando Argulus foliaceus abandona el cuerpo de los peces, busca superficies
verticales y planas para querochar entre 30 y 200 huevos.
Las heridas causadas por sus patas que no dejan de moverse durante la fijación
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
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en el pez, produce un desprendimiento de la mucosa y tejido epitelial, quedando el
pez expuesto al ingreso de enfermedades secundarias, por lo general por acción
de bacterias y hongos. Según Amlacher, la picadura de Argulus foliaceus, puede
transmitir el agente causal de ascitis infecciosa o, al menos, favorecer su invasión.
Figura N. 17. Argulus vista ventral
(Petracini, 2006).
Signos: Se observan en la superficie del pez la presencia de unos organismos
con forma de escudo de varios milímetros de longitud o sus picaduras en forma de
puntitos rojos (petequias) dispersos por la epidermis (Maceda y González, 2006).
Figura N. 18. Pez infestado de argulus
(Pemau, 2006).
Síntomas: Enturbiamiento de la piel, exceso de mucosidad, apatía, etc. (Maceda y
González, 2006).
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La presencia de esta enfermedad puede desencadenar epizootias secundarias
que aprovechan el debilitamiento del pez para manifestarse tales como: micosis,
enfermedades bacterianas, etc. (Pemau, 2006).
Diagnóstico de laboratorio: Se puede observar a simple vista o con la ayuda de
una lupa (González, 2006).
Diagnostico diferencial: no se puede confundir con ninguna otra enfermedad ya
que es de fácil diagnostico (Pemau, 2006).
Tratamiento: El método más sencillo es la extracción manual de los parásitos con
ayuda de unas pinzas. Para ello, simplemente cogeremos al pez o peces
afectados de nuestro acuario y los colocaremos sobre un paño húmedo y
procederemos a la extracción de los Argulus foliaceus. Posteriormente,
desinfectaremos la zona con un poco de tintura de yodo y devolveremos los peces
a su acuario (González, 2006).
Si la mucosa de los peces está irritada en exceso, colocaremos a los peces en un
acuario enfermería con un tratamiento preventivo (tónico general) antes de
devolverlos a la instalación general para prevenir la aparición de infecciones
secundarias. Si los peces acaban de desencadenar la enfermedad, actuando de
esta manera no sería necesario medicar todo el acuario. Para todos aquellos
aficionados que se vean incapaces de realizar el proceso, pueden acudir a un
comercio especializado o iniciar un tratamiento de todo el acuario. Son
especialmente útiles los compuestos: 0,0 dimetil, 2,2,2 tricloro-1-hidroxietil fosfato,
permanganato potásico, formol, etc... o también productos comerciales tipo:
Paracure, Multicure, etc...Tanto en un caso como en el otro se puede encontrar las
dosis a aplicar en los productos comerciales. (Maceda y González, 2006).
Baño con sal común (Cloruro de sodio) 2 o 3 gr. por litro de agua durante un
máximo de 10 minutos, observarlos durante todo el tratamiento (Pecesdiscos,
2006).
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Prevención: Elegir bien los peces nuevos (sin heridas, puntos o granos, que
naden sin esfuerzo, que no estén ni delgados ni obesos y que coman
regularmente), lavar bien las plantas que se introduzcan ya que pueden introducir
parásitos en el acuario u otros animales como los caracoles que indirectamente
pueden contagiar enfermedades a los peces y Mantener el agua en condiciones
estables (temperatura constante y adecuada, limpiar filtros regularmente, cada 15
días, y realizar cambios de agua frecuentemente, cada 2 semanas) (González,
2006).
4.2.- ERGASILOSIS (Ergasilus sieboldi)
Etiología: Entre los crustáceos parásitos en acuarios solemos encontrar
aisladamente a Ergasilus sieboldi y con menos frecuencia otras especies del
mismo Género. Si bien externamente no presentan síntomas visibles, se trata de
parásitos que atacan las branquias y producen un malestar muy intenso en los
peces (Petracini, 2006).
Definición: Si bien externamente no presentan síntomas visibles, se trata de
parásitos que atacan las branquias y producen un malestar muy intenso en los
peces (Petracini, 2006).
Figura N. 19. Hembra adulta de Ergasilus sp.
(Cordero, et al. 1999).
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Sinonimia: piojo de la piel (Pemau, 2006).
Patogenia: En ataques avanzados se produce un adelgazamiento del pez que
puede ser confundido con otros síntomas. Levantando los opérculos se pueden
llegar a distinguir a simple vista o con ayuda de una lupa (Petracini, 2006).
Signos: Son muy difíciles de observarse (Petracini, 2006).
Síntomas: Degeneración de la piel, zonas rojizas y sobretodo hipersegragación
de mucosa branquial (Pecesdiscos, 2006).
Diagnóstico de laboratorio: La confirmación al microscopio deberá realizarse a
40-120x de modo que habrá de obtenerse una muestra, cortando filamentos
branquiales y trasladándolos en agua hasta el portaobjetos del microscopio. Su
tamaño puede variar según la especie, pero normalmente son de 1 mm. La única
especie citada de menor tamaño es Ergasilus boettgeri Reichenbach-Klinke, cuyas
dimensiones reportadas son 0,63-0,75 mm de largo por 0,03 de ancho y que se
suele encontrar, según el autor citado, en las branquias de peces ornamentales
del Género Poecilia (Mollis) (Pemau, 2006).
Diagnostico diferencial:
Tratamiento: El tratamiento, puede realizarse con formalina (2,5 ml. de formol
40% en 10 litros de agua durante 30 minutos) (Petracini, 2006).
Prevención: Aislar a los recién llegados en acuarios de cuarentena, para evitar
que los peces nuevos enfermos contagien a los demás. Elegir bien los peces
nuevos (sin heridas, puntos o granos, que naden sin esfuerzo, que no estén ni
delgados ni obesos y que coman regularmente). Lavar bien las plantas que se
introduzcan ya que pueden introducir parásitos en el acuario u otros animales
como los caracoles que indirectamente pueden contagiar enfermedades a los
peces. Mantener el agua en condiciones estables (temperatura constante y
adecuada, limpiar filtros regularmente, cada 15 días, y realizar cambios de agua
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frecuentemente, cada 2 semanas). Evitar la superpoblación de peces, lo que
aumentaría el estrés de los peces y también sus desechos (González, 2006).
4.3.- LERNEOSIS (Lernea cyprinacea)
Etiología: Los crustáceos pertenecientes a la especie Lernea cyprinacea suelen
ser encontrados en peces ornamentales con mayor frecuencia que sus parientes
de los Géneros Argulus y Ergasilus. Aunque las demás especies de éste Género
también son parásito de peces, por lo general son encontrados en peces marinos.
Conocido popularmente como el "gusano con ancla", recibe esa denominación por
los instrumentos de fijación, en forma de ganchos (Pemau, 2006).
Definición: Se trata de un copépodo parásito cuya talla máxima son 2 cm. de
longitud aproximadamente. Presenta la particularidad que las hembras son las
únicas que parasitan, ya que los machos únicamente participan en la fecundación
de éstas aprovechando el cobijo ofrecido por las branquias de los peces y
después mueren (González, 2006).
Figura N. 20. Hembra adulta de lernea sp.
(Cordero, et al. 1999).
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Sinonimia: "gusano de ancla" (Pemau, 2006).
Epidemiología: Los crustáceos pertenecientes a la especie Lernea cyprinacea
suelen ser encontrados en peces ornamentales con mayor frecuencia que sus
parientes de los Géneros Argulus y Ergasilus. Aunque las demás especies de
éste Género también son parásito de peces, por lo general son encontrados en
peces marinos (González, 2006).
Patogenia: Los peces ya las suelen traer ancladas a su cuerpo o bien vienen en
estado larvario y pasan inadvertidas a nuestros ojos. (Maceda y González, 2006)
Signos: Se observa en la superficie del pez la presencia de unas “varillas”
ancladas que corresponden a una parte del cuerpo del ectoparásito. No es raro
que a lado y lado de éste, existan un par de masas globosas que correspondan a
los sacos ovígeros (Pemau, 2006).
Figura N. 21. Gusano ancla visible
(Pemau, 2006).
Síntomas: Suelen anclarse a la base de las aletas aunque también pueden
hacerlo en otras zonas del cuerpo del pez y es común la aparición de cierta
inflamación en la zona donde está anclado el parásito (González, 2006).
Las Lerneas se alimentan del pez, pero su intención no es causarle la muerte, sin
embargo, provocan el debilitamiento del animal y la aparición de infecciones
secundarias oportunistas que pueden agravar la situación (Petracini, 2006).
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Figura N. 22. Pez infestado de lernea
(Petracini, 2006).
Diagnóstico de laboratorio: Si arrancásemos entera una de estas varillas
podríamos observar la estructura de este peculiar animal. Se caracteriza por
presentar una región cefálica provista de varias prolongaciones que rodean su
boca y que le permiten anclarse a la superficie del pez que parasitan. Lo que
nosotros observamos externamente con forma de “varilla” es el cuerpo globoso del
animal, del cual no es infrecuente que cuelguen dos sacos a los lados que
corresponden a los sacos ovígeros (no olvidemos que son ellas las únicas
parásitas) (González, 2006).
Figura N. 23. Lernea
(González, 2006).
Tratamiento: Si encontramos alguna Lernea sobre un pez, una solución es
retirarla de forma mecánica. Para ello, agarraremos al pez con un paño húmedo
para evitar que se reseque y con ayuda de unas pinzas (las de depilar pueden
servir a falta de otras), procederemos a coger el parásito desde su base y
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estiraremos hasta arrancarlo por completo. Se recomienda tanto antes como
después de la extirpación desinfectar la zona con un poco de tintura de yodo o
mercurocromo. Es muy importante extirpar por completo al parásito con el fin de
evitar que queden restos de éste en el interior que nos puedan causar alguna
infección. Puesto que no todo el mundo se ve capaz de realizar este trabajo,
recomendamos que llevéis al pez a vuestro comercio de confianza donde os lo
deberían poder realizar sin problemas. Para ir sobre seguros, todos los peces a
los cuales se les haya extirpado una Lernea pueden ir a un pequeño acuario
enfermería donde se les aplique un tratamiento preventivo para evitar la aparición
de cualquier infección secundaria de las llamadas oportunistas (Maceda y
González, 2006).
Prevención: Aislar a los recién llegados en acuarios de cuarentena, para evitar
que los peces nuevos enfermos contagien a los demás, elegir bien los peces
nuevos (sin heridas, puntos o granos, que naden sin esfuerzo, que no estén ni
delgados ni obesos y que coman regularmente) y lavar bien las plantas que se
introduzcan ya que pueden introducir parásitos en el acuario u otros animales
como los caracoles que indirectamente pueden contagiar enfermedades a los
peces (González, 2006).
5.- BACTERIAS.
BACTERIA.
Las bacterias:
Son junto los virus el grupo de organismos patógenos más importantes. Se
clasifican siguiendo criterios biológicos y metabólicos. Según su pared celular se
coloree con tinte Gram, se clasifican en Gram+ y Gram-Las bacterias forman uno
de los tres dominios en los que se dividen los seres vivos. En los antiguos
sistemas taxonómicos, las bacterias formaban un subreino del reino Monera. El
término bacteria también se emplea para denominar a todos los organismos
unicelulares sin núcleo diferenciado que constituyen el nivel de organización
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procarionte. Los organismos procariontes se subdividen en Eubacterias (dominio
Bacteria) y Arqueobacterias (dominio Archaea). Son los organismos más
abundantes del Planeta y su tamaño ronda entre las 0.5 y 5 μm (micras). Pueden
ser de carácter patógeno o no. Generalmente poseen una pared celular, similar a
la de plantas u hongos, pero compuesta por peptidoglicanos; muchos antibióticos
son efectivos sólo contra las bacterias ya que inhiben la formación de esta pared
celular. Muchas de ellas también poseen cilios o flagelos (Aberiak, 2006).
Enfermedades provocadas por Bacterias:
Sin recurrir a una prueba de sensibilidad bacteriana es difícil lograr la identificación
de la bacteria causante de la enfermedad. Las enfermedades bacteriales pueden
mostrarse en forma de ulceras, bultos enrojecidos o putrefacción de la piel o las
aletas. Bacterias causantes de enfermedad en peces:
· Flexibacter Columnaris (podredumbre de aletas y cola).
· Aeromonas (heridas abiertas en los costados, semejantes a un agujero).
· Pseudomonas.
· Vibro.
Una de las principales causas de la mortalidad de peces son las infecciones por
bacterias. Excepto en el caso de "Columnaris", casi todas las infecciones
bacterianas ocurren como causa secundaria tras un episodio de estrés (Wikipedia,
2001).
La mayoría de las bacterias responsables de las infecciones son organismos
Gram negativos (A. E. K, 2004)
Muchas bacterias están relacionadas con más de una enfermedad, según la cepa
bacteriana responsable. Algunas enfermedades parecen tener un origen mixto,
vírico y bacteriano, uno de los cuales con un papel más secundario en la infección.
Un aspecto interesante de las bacterias es el conocimiento de su fisiología y sus
estrategias metabólicas utilizadas para alimentarse. Distinguimos así a las
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autótrofas y las heterótrofas, las primeras quimiosintéticas o fotosintéticas, las
segundas necesitan para nutrirse sustancias orgánicas. (Aberiak, 2006).
5.1.- PODREDUMBRE DE ALETAS
Etiología: La podredumbre de aletas causada por colonias de bacterias puede
desencadenarse a consecuencia de un mal estado del entorno o de la salud del
animal o como efecto secundario de otras afecciones. Existen diversas bacterias
causantes de la enfermedad como Aeromonas, Pseudomonas y Mixobacterias
(Pemau, 2006).
Aeromonas:
Bacilos G (-), pertenece a la familia de las Vibrionaceas. Tenemos: la Aeromona
Salmonicida y la Aeromona Hidrophyla. La Salmonicida es inmóvil, psicrofila, no
crece a 37º, produce pigmentación marron, no es patógeno para el hombre. La
hidrophyla es móvil, mesofila, Crecen entre 0 y 45º, el hábitat es el agua tanto
dulce como salado, pueden estar presentes en aguas tanto como cloradas como
no, sobre todo en los meses de verano; de ahí que los alimentos que hayan
estado en contacto con ellas tengan el riesgo, sobre todo pescados y mariscos.
Producen enterotoxinas citotóxicas, detectándose una hemolisina beta (Aberiak,
2006).
Pseudomonas
Las especies del género Pseudomonas son organismos ubícuos, bacterias Gram
negativas que se encuadran dentro del grupo γ de las proteobacterias. Se han
aislado bacterias de este género tanto en suelos limpios como en suelos
contaminados por productos biogénicos y xenobióticos. También son microbiota
predominante en la rizosfera y en la filosfera de plantas; del mismo modo, se han
aislado de ambientes acuáticos, tanto de agua dulce como de aguas marinas. En
general inocuas para el hombre también existen: patógenos oportunistas como
P.aeruginosa; patógenos de animales y patógenos de plantas como P.syringae.
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Este género es uno de los más proclives a la degradación de compuestos
orgánicos, especialmente cepas de la especie Pseudomonas putida (A.E.K,
2006).
Mixobacterias
Las Mixobacterias (bacterias deslizantes) son bacilos unicelulares que semejan a
las bacterias, pero carecen de una pared celular rígida; se desplazan por
deslizamiento. Se trata de bacterias con dos fases dentro de su ciclo de vida: una
fase a base de enjambres donde todas las células se mueven coordinadamente, y
otra fase a base de cuerpos fructificantes en los que se aloja un tipo especializado
de célula llamado mixospora (Wikipedia, 2001).
Definición: La enfermedad producida por diversidad de bacterias del género
aeromona y pseudomona suele acompañar normalmente a otras afecciones o a
lesiones cutáneas, o deficiencias alimentarias (Salas y Garrido, 1997).
Sinonimia: Fin and Tail Rot (Martinez, 2001).
Epidemiología: Esta enfermedad se encuentra en todos los acuarios con malas
condiciones (Pemau, 2006).
Patogenia: La afección se extiende, asimismo, a la cola, por lo que esta
enfermedad se conoce, en inglés, como Fin and Tail Rot. Las causas que pueden
provocar esta enfermedad son las siguientes:
a) Tuberculosis pisciaria;
b) Infección bacteriana;
c) Alcalosis;
d) Infección por lchthyophonus. (Petracini, 2006).
Signos: Un signo de que el problema es efectivamente de origen microbiano es
que las aletas se desprenden a excepción de los radios (Pemau, 2006).
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Las aletas se pueden mostrar deshilachadas, rotas o partidas o simplemente
desintegradas. (Fernández, 2006).
Figura N. 24. Degeneración de una aleta vista a través de una lupa.
(Fernández, 2006).
Síntomas: Degeneración de las aletas, degeneración branquial, inflamación de la
boca y mucus amarillento alrededor de las áreas afectadas. Las aletas del lomo y
las codales son las más afectadas. Puede llevar a la pérdida total de las aletas en
casos extremos (Pemau, 2006).
Figura N. 25. Aletas afectadas Figura N. 26. Síntomas visibles
(Pemau, 2006).
(González, 2006).
Diagnostico diferencial: Es difícil diagnosticar la bacteriosis de aletas en los
inicios de la enfermedad. Esto es así porque apenas existen síntomas visibles,
como no sea un ligero enturbiamiento del borde de una o más aletas. Por lo
general esta enfermedad comienza en la aleta caudal (González, 2006).
Tratamiento: Acriflavina, nitrofurans, oxytetracyclina, kanamycina, cloranphenicol,
sulfamidas, sal marina, etc. En forma de pomada, por ingestión, inyectadas o en la
comida (A.E.K, 2006).
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Un aumento de la temperatura junto con una buena higiene son un buen remedio
(Pesce, 2005).
La Enrofloxaxina (Producto de venta exclusivamente en veterinarias) a razón de 1
ml de solución inyectable cada 100 litros de agua, diluidos directamente en el
acuario es la medicación que recomendamos. En nuestro caso utilizamos
Enrofloxacina de diversas marcas comerciales con excelentes resultados en casos
bastante avanzados (incluyendo los ataques de Aeromonas en Symphysodon sp.
y Myxobacterias). La dosis se repite a las 48 horas. La Enrofloxacina se extrae
mediante una jeringa provista de aguja (desinfectando la tapa y la aguja con
alcohol puro), y se puede agregar directamente en el acuario o diluirlo previamente
en un recipiente adecuado para luego distribuirlo en el acuario. El Dr. Carlos
Moreno (Salta) recomienda la utilización simultánea de Tripaflavina al 1% (1
gramo cada 100 litros) como antiinflamatorio. El autor de esta nota ha observado
que la Tripaflavina produce efectos fotofóbicos en los peces, por lo que deberá
mantenerse el acuario con muy poca luz mientras dure el tratamiento. Por otro
lado, toda manipulación de tripaflavina debe realizarse con cuidado puesto que al
menos uno de sus componentes es altamente cancerígeno.
En todos los comercios del ramo podemos encontrar fácilmente preparados útiles
contra la enfermedad que se aplican directamente en el agua del tanque. Existen
otros productos disponibles más específicos como la Clortetraciclina, Nifurpirinol y
azul de metileno entre otros. Pero nos sirven perfectamente los preparados
comerciales que además son fáciles de conseguir (Fernández, 2006).
Prevención: Mantener el agua en condiciones estables (temperatura constante y
adecuada, limpiar filtros regularmente, cada 15 días, y realizar cambios de agua
frecuentemente, cada 2 semanas), elegir bien los peces nuevos (sin heridas,
puntos o granos, que naden sin esfuerzo, que no estén ni delgados ni obesos y
que coman regularmente), y alimentar regularmente y con variedad de alimentos
alternarnando los copos con otro tipo de alimento como dafnias, tubifex, larvas de
mosquito, etc. (González, 2006).
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5.2.- COLUMNARIS (Flexibacter columnaris)
Definición: Es una enfermedad que afecta a la región bucal, donde se produce un
penacho de células epiteliales y bacterias, puntitos grisáceo-blancos sobre la
cabeza y las aletas rodeadas de un aro rojo. Afecta también a las branquias
(Pemau, 2006).
Sinonimia: Hongos de la boca (González, 2006).
Etiología: La enfermedad conocida como columnaris es causa por Flexibacter
columnaris. Este microorganismo se encuentra asociado al mucus de los peces
sanos y enfermos. No se desarrolla por debajo de 12 ºC y prácticamente no es
viable a menos de 15 ºC. Por encima de 25 ºC es fulminante. A veces se confunde
con infecciones de hongos de la boca por presentar síntomas parecidos. Su
aparición es menos probable en agua dulce con bajo pH y bajas concentraciones
de materia orgánica (Pemau, 2006).
Epidemiología: La enfermedad está extendida entre todos los peces de agua
dulce, y suele aparecer en acuarios o estanques con condiciones inadecuadas. El
empeoramiento en la calidad del agua puede originar la infección de los peces
sanos (Camarero, 2006).
Patogenia: Una infección por Flexibacter columnaris se puede reconocer por una
pelusilla blanca formada por pequeños filamentos muy próximos unos a otros, en
la boca, en las aletas y en los bordes de las escamas. Las zonas blancas se
extienden con rapidez sobre la piel de los peces. En las etapas finales, a veces las
aletas se descomponen, empezando por los bordes, y los peces empiezan a
permanecer y tambalearse justo bajo la superficie del agua. En este punto es
fundamental una reacción inmediata, ya que la enfermedad se extiende con tanta
rapidez que todos los peces están en peligro (Camarero, 2006).
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Signos: Es fácil de diagnosticar, ya que los peces presentan formaciones
algodonosas en la boca (no confundir con hongos), que se extienden con rapidez
sobre los labios, es de propagación rápida y mortal (Pesce, 2005).
Síntomas: Los principales síntomas son manchas blanquecinas alrededor de la
boca, en la cabeza, agallas y cuerpo del pez, aletas deshilachadas. Con el tiempo
aparecen formaciones algodonosas en la región bucal y úlceras en el cuerpo
(Pemau, 2006).
Figura N. 27. Síntoma característico de columnaris
(Pemau, 2006).
Diagnóstico de laboratorio: Identificación en laboratorio (Pecesdiscos, 2006).
Diagnostico diferencial: Pelusa algodonosa que se puede llegar a confundir con
el hongo Saprolegnia. La cabeza y las aletas muestran pústulas blancuzcas. Las
aletas se destruyen como en el caso de la podredumbre. Movimientos oscilantes
cerca del fondo (Pemau, 2006).
Tratamiento: Acriflavina, nitrofurans, oxytetracyclina, kanamycina, cloranphenicol,
sulfamidas, sal marina, etc. En forma de pomada, por ingestión, inyectadas o en la
comida (A.E.K, 2006).
Medicamentos comerciales.
Antibióticos.
Trimetoprim.
Metronidazol.
Nimerazol + Nistatina + Tetraciclina.
Todos a dosis indicadas. (Pemau, 2006).
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Prevención:
Mantener el agua en condiciones estables (temperatura constante y adecuada,
limpiar filtros regularmente, cada 15 dias, y realizar cambios de agua
frecuentemente, cada 2 semanas), mantener una buena oxigenación, evitar
sobrecargas del filtro para que no se pudran los residuos tóxicos procedentes de
la descomposición de los alimentos y de las excreciones de los peces, Aislar a los
recién llegados en acuarios de cuarentena, para evitar que los peces nuevos
enfermos contagien a los demás y elegir bien los peces nuevos (sin heridas,
puntos o granos, que naden sin esfuerzo, que no estén ni delgados ni obesos y
que coman regularmente). (González, 2006).
5.3.- TUBERCULOSIS (Mycobacterium sp. (piscium y marinum))
Etiología: El agente causal de la tuberculosis en los peces es Mycobacterium sp.
(piscium y marinum), un bacilo gram-positivo ácido resistente cuyo tamaño puede
variar entre 2 y 12 µ. La identificación positiva puede realizarse confirmando con el
“Manual de Bergey”, en el cual se ha incorporado y borrado un par de veces la
especie piscium de Mycobacterium. De todos modos, a los efectos prácticos,
existen diferencias notables entre ictiofoniasis y tuberculosis, ya que la primera es
una enfermedad producida por hongos y en la segunda son fácilmente
reconocibles los bastoncitos (bacilos largos) (Petracini, 2006).
Definición: La tuberculosis está causada por una bacteria, Mycobacterium sp.
(piscium y marinum). Los ejemplares infectados están extremadamente delgados,
pálidos, con úlceras y las aletas rotas (es común entre los neones). La
enfermedad afecta a los órganos y músculos y no se conoce cura (Pemau, 2006).
Epidemiología: Está muy presente por todos los acuarios pero solo es grave
cuando las condiciones del tanque no son las adecuadas. Los ejemplares
enfermos deben de ser eliminados lo antes posible y se deben mejorar las
condiciones del acuario al mismo tiempo. Existe la posibilidad de que esta
patología se transmita al hombre pero de forma leve (González, 2006).
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La enfermedad se contagia de un pez a otro. Los enfermos suelen mostrar apatía
antes de que se evidencie alguna modificación localizada o síntomas externos.
Suelen agruparse en los rincones del acuario (Petracini, 2006).
Patogenia: Tanto en los peces como en cualquier otro animal, la tuberculosis es
una enfermedad que sobreviene por contagio o por condiciones ambientales
deficientes (en particular falta de higiene o hacinamiento) (Petracini, 2006).
En los peces de acuario la enfermedad puede aparecer lentamente y
manifestarse de diversas maneras, tales como:
1. En los Poecílidos, en particular en Poecilia reticulata (Lebistes) se manifiesta
como una forma de tisis o raquitismo. Suele atacar con preferencia a las hembras
después de varios partos y por lo general en forma aislada.
2. Formación de nódulos en los Carassius y otros ciprínidos.
3. Formaciones tuberculosas en los anabántidos, en particular Macropodus.
4. Ascitis en Betta sp.
5. Formaciones tuberculosas en Cíclidos
6. Exoftalmia en los Danios.
Ciertas familias de peces de acuario tienen mayor sensibilidad a la tuberculosis
que otras. Así, en orden decreciente, los más sensibles serían:
Anabántidos, Caracínidos (en particular Hyphessobrycon flammeus y Pristella
riddlei), Aterínidos (Melanotaenia sp), Ciprinodóntidos, Ciprínidos, Poecílidos,
Cíclicos y Centrárquidos (Petracini, 2006).
Signos: Movimientos lentos, adelgazamiento, palidez de los colores (Cuadrado,
2000).
Síntomas: Caída de las escamas, ulceraciones y deformaciones de las
mandíbulas y de la columna vertebral.
Lesiones superficiales pálidas en la piel y otros síntomas, como hundimiento de la
región abdominal, "ojos saltones", perdida de color y decaimiento.
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Aspecto desmejorado, delgadez, anemia. Véase también Hexamitiasis. Nódulos
blanquecinos en los órganos internos del cuerpo (Pemau, 2006).
Figura N. 28. Pez con síntomas de tuberculosis, deformación y abdomen hundido.
(Cuadrado, 2000).
Diagnóstico de laboratorio: Para la investigación deberá recurrirse a peces
vivos, tomando muestras de los diversos órganos internos: bazo, riñón, hígado,
corazón, cámara ocular. La vejiga natatoria cuando está afectada adquiere un
color blanco. La observación se realizará a 80-600 aumentos. Si aparece una
necrosis amarillo-castaño, deberán obtenerse frotis de los órganos necrotizados y
observarlos a 1300 x, previo fijarlos en cuatro partes de agua y una parte de
formalina (González, 2006).
Diagnostico diferencial: alguna patologías como hidropesía abdominal y
exoftalmia (Pesce, 2005).
Tratamiento: Si bien no existe una terapéutica eficiente y mucho menos
satisfactoria, las experiencias realizadas con Kanamicina parecen ser las más
efectivas en el tratamiento de la tuberculosis. Los mejores resultados, aunque no
muy alentadores, se obtuvieron agregada al alimento a razón de 3 Mg. por gramo
de peso del pez, durante catorce días. Agregado a eso, baños de un día (día por
medio) en 20 Mg. de Kanamicina cada litro de agua.
La Aureomicina en baños renovados cada 48 hrs. también tuvo resultados
positivos de entre un 30 y un 50% utilizada a razón de 26-30 Mg. por litro de agua.
Una combinación de Kanamicina en el alimento y Aureomicina en los baños,
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puede ser adecuada para peces de gran porte, tales como cíclidos (Camarero,
2006).
En todos los casos deben aislarse de inmediato los peces enfermos
trasladándolos a un acuario de enfermería. Aún si no se tratara de tuberculosis es
aislamiento impedirá, en gran medida, la propagación de cualquier enfermedad
contagiosa (Petracini, 2006).
Prevención: Mantener el agua en condiciones estables (temperatura constante y
adecuada, limpiar filtros regularmente, cada 15 días, y realizar cambios de agua
frecuentemente, cada 2 semanas), evitar la superpoblación de peces, lo que
aumentaría el estrés de los peces y también sus desechos, elegir bien los peces
nuevos (sin heridas, puntos o granos, que naden sin esfuerzo, que no estén ni
delgados ni obesos y que coman regularmente) (González, 2006).
6.- HONGOS
GENERALIDADES DE LOS HONGOS.
Los hongos son organismos ampliamente distribuídos (ubicuos). Según
estimaciones de Rippon, existen alrededor de 200 especies patógenas, de las
cuales unas 60 se asocian de forma consistente a infecciones humanas. No
dependen de la luz y pueden crecer en cualquier dirección, incluso dentro del
substrato (un pensamiento desagradable, si se contempla que el substrato puede
ser una cavidad o un órgano humano). Tienen gran cantidad de hábitats, la
mayoría terrestres, característica importante porque con frecuencia intervienen en
la mineralización del carbono orgánico. Son avasculares, eucariotas, unicelulares
(levaduras) y multicelulares (micelios o filamentos). Son heterótrofos, lo que
implica que requieren de material orgánico preformado y carecen de clorofila, en
contraposición con los organismos autótrofos, que sintetizan los nutrientes por
fotosíntesis. Un dato curioso es que digieren la materia orgánica antes de ingerirla
y la almacenan en forma de glucógeno con la ayuda de exoenzimas.
La unidad fundamental anatómica y de crecimiento en los hongos lo constituye la
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hifa, cuya estructura es cilindroide; septada o aseptada (cenocítica), uni o
multinucleada, y presenta diferentes tamaños y formas. Una masa de hifas integra
el micelio, la forma filamentosa, con ramificaciones laterales y crecimiento apical;
las masas de micelios conforman colonias. Los micelios vegetativos crecen en o
sobre el medio (substrato) y absorben los nutrientes; las hifas aéreas forman la
porción más visible de la colonia; los micelios fértiles o reproductivos desarrollan
conidios o esporas. Su ciclo de vida inicia con la germinación de dichas esporas u
otras estructuras, prosigue con el crecimiento en un substrato y aumento de
biomasa, y termina con la esporulación y la diseminación de los propágulos a
partir del micelio inicial. La forma vegetativa predominantemente unicelular que
exhiben diversos hongos se denomina levadura (de estructura oval o cilíndrica).
Los hongos que presentan fases levaduriforme y micelial (la primera a temperatura
corporal y la segunda en el ambiente) son llamados hongos dimórficos. No tienen
motilidad, con excepción de algunas especies y de formas ameboideas que se
presentan en fase vegetativa. La pared celular, rígida, contiene una gran cantidad
de quitina (el equivalente en las plantas es la celulosa); difiere de las células de
mamíferos por la presencia de ergosterol, en lugar de colesterol. El crecimiento de
los hongos involucra habitualmente dos fases, vegetativa y reproductiva. En la
fase vegetativa las células son haploides y se dividen por mitosis, en tanto que en
la fase reproductiva se reproducen por medio de esporas, cuya producción puede
ser de manera sexual (meiosis) o asexual (mitosis), dependiendo de la especie y
las condiciones. Las esporas pueden permanecer en reposo por largos períodos
de tiempo, a veces años (Uribarren y Bazán, 2005).
Si bien existen más de 35 especies de hongos acuáticos, cuando nos referimos a
enfermedades solemos hacer mención a uno o dos Géneros como causantes de
enfermedades. En realidad para el acuarista no es muy importante saber cómo se
denomina científicamente el organismo que está atacando a sus peces. Más bien
le interesa cómo resolver el problema. Así que, para no agregar más nombres a
los ya bastante complicados en uso, diremos que los más comunes son
Saprolegnia y Achyla. A los efectos prácticos tampoco es muy importante saber
qué hongo está atacando a los peces ya que los síntomas y la terapéutica le son
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comunes a todos ellos. Para comprender cómo se produce un ataque por hongos
que afecte a más de un pez (epizootia), debemos comprender su proceso
biológico. Por lo tanto antes de emprenderla con las distintas formas en que se
manifiestan, analizaremos su biología en general. Los hongos son omnipresentes
en el medio ambiente. Su finalidad de limpieza fue expuesta más arriba y también
se explicó que al aumentar la cantidad de materia orgánica en descomposición
aumenta la población fúngica como una respuesta natural (¡afortunadamente!)
Poseen un cuerpo fructífero compuesto por cientos de filamentos (ramificados o
no) que surgen del mismo lugar. Esos filamentos se llaman hifas y contienen todas
las estructuras reproductivas, las cuales pueden ser sexuales o asexuadas.
Cuando un hongo ataca los tejidos de un pez automáticamente genera estructuras
reproductivas nuevas como una respuesta al nuevo ambiente. Esas estructuras
reproductivas nuevas que son asexuadas y se desarrollan en las terminaciones de
las hifas se denominan esporangios. Germinan muy rápido y comienzan a liberar
esporas muy móviles que dispersan el hongo y generan nuevas infecciones. Si
nosotros comparamos las esporas con “semillas”, podríamos decir que el hongo
original ha “sembrado” por todo el acuario cientos y cientos de semillas que
comenzarán a germinar en tejidos orgánicos muertos o dañados. La cantidad de
esporas producidas dependerá del Género y/o especie de hongo que se trate.
Cuando se infiltra en el cuerpo de un pez (por lo general por causa de una
lastimadura, un debilitamiento o destrucción de la mucosa, etc) se inicia el proceso
de crecimiento al que ya comparamos con una semilla. Introducida la espora en el
epitelio comienza a desarrollar micelios estructuras vegetativas de los hongos
comparables a raíces. A medida que penetran en los tejidos que utilizan para
nutrirse los van necrotizando. Hasta aquí el proceso es poco visible ya que el lugar
afectado sólo muestra una ligera opacidad, que de no mediar una atenta
observación puede pasar desapercibida. Sin embargo el pez afectado habrá
modificado su comportamiento y eso nos llevará a observar detenidamente el
cuerpo. (Popoff, 2006).
Entre 24 y 48 horas después comenzará el crecimiento del hongo hacia el exterior,
momento en que las hifas se hacen visibles al ojo como pequeñas manchitas
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blancas o blanquecinas. Transcurrido más tiempo comenzarán a adquirir la forma
de copos algodonosos (en el caso de Saprolegnia) o largos filamentos como
delgadas hebras de lana (cuando se trata de Achyla).Para ese entonces los
micelios habrán necrotizado una vasta extensión de los tejidos y, según la
localización del hongo, pueden haber necrotizado también algún órgano vital,
haciendo imposible la recuperación del pez (Petracini, 2006).
Las enfermedades fungiformes generalmente afectan a los peces que ya están
debilitados o estresados. De modo que revise siempre las condiciones del agua si
ocurre un brote de hongos. Igualmente, las lesiones ocasionadas por las peleas o
por un manejo brusco en la red son propensas al ataque de los hongos. Los
hongos se ven como crecimientos en forma de "mota de algodón", de color blanco
a gris, en el cuerpo o las aletas de los peces (Mars, 2006).
6.1.- BRANQUIOMICOSIS (Branchiomyces sanguinis y Branchiomyces
demigrans).
Etiología: Las enfermedades micóticas de las branquias son producidas
generalmente por Branchiomyces sanguinis y ocasionalmente por Branchiomyces
demigrans pertenecientes, como Saprolegnia y Achyla a la Clase Ficomicetes
(Popoff, 2006).
Definición: Es una enfermedad interna que alcanza las branquias vía sanguínea,
contrariamente a lo que ocurre con la saprolegniasis. De uno u otro modo, lo que
se sabe es que el genero branchiomyces tiene gran afinidad por el oxigeno hecho
por lo cual tiene predilección por la zona branquial (Croa, 2006).
Sinonimia: Micosis vascular branquial, gill root (Croa, 2006).
Epidemiología: Estadísticas más o menos actuales han demostrado que en 24
horas mueren el 95% de los peces afectados por Branchiomyces sp. En 48 horas
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la mortalidad llega al 100%. Como la visualización del hongo por medio de sus
hifas comienza 24 horas después (Popoff, 2006).
Patogenia: Deterioradas las branquias se produce el doble efecto de intoxicación
por CO2 y necrotización de sus órganos vitales por falta de oxígeno para la
función oxido-reductora (Pecesdiscos, 2006).
Signos: Inapetencia, los peces afectados tendrán dificultad respiratoria, que
manifiesta con boqueo en la superficie del agua y dificultad para nadar (Croa,
2006).
Síntomas: El tejido branquial aparece erosionado, necrótico, y adquiere un
aspecto marmóreo, debido a fenómenos isquémicos y hemorrágicos en forma
parcheada. Puede extenderse también a la superficie del pez, lo que dejara zonas
desnudadas de tejido epitelial (Pemau, 2006).
Diagnóstico de laboratorio: Para efectuar un diagnóstico correcto no tenemos
otro recurso que la observación visual de las branquias auxiliados con una lupa.
Para ello habrá que levantar el opérculo con un objeto adecuado, sin filos ni
rebabas, y observar las branquias con la lupa o un cuentahílos y auxiliados por
una luz en ángulo de 45º (Pesce, 2005).
Si se trata de un ataque por hongos veremos los filamentos branquiales
destruidos, mostrándose como si estuvieran disueltos. Si se trata de parásitos,
afortunadamente serán fáciles de distinguir de inmediato porque se adhieren a las
bránquias y son bien visibles (Popoff, 2006).
Diagnostico diferencial: Es de fácil diagnostico ya que si fuera un ataque por
parásitos estos son fáciles de detectarlos (Pemau, 2006).
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Tratamiento: Un tratamiento efectivo es la vitamina C o limpieza de branquias con
povidona yodada (Petracini, 2006).
La medicación será la indicada para fungosis y cuanto antes se aplique, mayores
posibilidades de curación existirán. Inmediatamente después de detectar la
presencia de este hongo, el o los peces afectados deben ser trasladados a un
acuario enfermería. También de inmediato se desinfectará el acuario y los peces
supuestamente sanos, utilizando 1 gramo de permanganato de potasio cada 100
litros de agua en peces tropicales o el doble de ésta dosis en peces de agua fría.
Esta desinfección durará 90 minutos, luego de lo cual se retiran los peces del
acuario, se duplica la dosis de permanganato y tras 30 minutos se renueva
totalmente el agua (Popoff, 2006).
Prevención: Aislar a los recién llegados en acuarios de cuarentena, para evitar
que los peces nuevos enfermos contagien a los demás, elegir bien los peces
nuevos (sin heridas, puntos o granos, que naden sin esfuerzo, que no estén ni
delgados ni obesos y que coman regularmente), mantener el agua en condiciones
estables (temperatura constante y adecuada, limpiar filtros regularmente, cada 15
días, y realizar cambios de agua frecuentemente, cada 2 semanas), mantener una
buena oxigenación, evitar sobrecargas del filtro para que no se pudran los
residuos tóxicos procedentes de la descomposición de los alimentos y de las
excreciones de los peces y evitar la superpoblación de peces, lo que aumentaría
el estrés de los peces y también sus desechos (González, 2006).
6.2.- ICTIOSPORIDIOSIS (Ychthyosporidium hoferi)
Etiología: Ychthyosporidium hoferi es un hongo interno descubierto por Hofer en
1893. Se lo denominó hoferi en homenaje a quien lo descubrió. Posteriormente
recibió la denominación de Ichthyosporidium hoferi (ichthyo=pex
+ osporidium=oospora). (Petracini, 2006).
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Definición: El llamado también papel de lija, ataca a la zona caudal. Forma zonas
con puntos negros debido a la necrosis de la piel. Se trata de un hongo de la
familia de los ficomicetos, de tamaño microscópico, llamado Ychthyosporidium
hoferi (Aberiak, 2006).
Sinonimia: Papel de lija (Aberiak, 2006).
Epidemiología: Como los peces enfermos liberan esporas con sus excrementos,
es posible que el acuario se contamine rápidamente si no tomamos la precaución
de aislar al pez enfermo ante el menor síntoma. De no resultar Ichthyosporidium,
el aislamiento no será dañino, pero de permanecer en el acuario comunitario un
pez enfermo, las consecuencias pueden ser imprevisibles (Petracini, 2006).
Esta enfermedad no reconoce cura, al menos con los medicamentos comunes
para peces. En cambio es posible evitar la diseminación mediante el uso de
funguicidas, para controlar la proliferación de esporas en el acuario, antes de que
ataquen a nuevos peces (Petracini, 2006).
Patogenia: Inicialmente se pensó que el origen de la enfermedad era la infección
por un protozoo del grupo de los microsporidios, si bien en la actualidad, se sabe
con seguridad que se trata de una infección causada por el hongo:
Icththyosporidium hoferi (antiguo Icththyophonus hoferi) (Pecesdiscos, 2006).
Esta enfermedad se conoce vulgarmente con el nombre de “enfermedad del papel
de lija”, debido al aspecto que presenta la piel cuando queda recubierta de los
pequeñísimos granitos de color negro que caracterizan a esta patología y que
corresponden a zonas necrotizadas de la dermis. Estos pequeños granitos dan un
aspereza a la piel muy particular, y que conforme avance la enfermedad, pueden
aparecer descamaciones y llagas que se abren dando lugar a hemorragias
(Pemau, 2006).
Signos: Exteriormente se manifiesta por un adelgazamiento, cambio de color,
inapetencia, desequilibrios al nadar etc. (Fernández, 2006).
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Síntomas: Esta enfermedad se conoce vulgarmente con el nombre de
“enfermedad del papel de lija”, debido al aspecto que presenta la piel cuando
queda recubierta de los pequeñísimos granitos de color negro que caracterizan a
esta patología y que corresponden a zonas necrotizadas de la dermis. Estos
pequeños granitos dan un aspereza a la piel muy particular, y que conforme
avance la enfermedad, pueden aparecer descamaciones y llagas que se abren
dando lugar a hemorragias. Esta sintomatología externa es evidente también a
nivel de ciertos órganos internos como el hígado, el riñón o el corazón. Los tejidos
pueden estar necrotizados, pero lo más común, aparte, es la presencia de unos
gránulos blancos, resultado del tejido conjuntivo que engloba a los patógenos y
que es el mecanismo de defensa que encuentran la células para combatir un
patógeno que son incapaces de destruir. Secundariamente, puede aparecer:
ascitis (acumulación de líquido en el abdomen), desequilibrios en la natación,
inapetencia, deformaciones óseas e incluso, enflaquecimiento, especialmente en
el caso de los peces jóvenes (Pemau, 2006).
Diagnóstico de laboratorio: La confirmación sólo será posible mediante
disección y estudio de los órganos internos (González, 2006)
Diagnostico diferencial: Uno de los principales problemas para diagnosticar esta
enfermedad, es que sus síntomas pueden confundirse con los de otras
enfermedades. Por ejemplo, los gránulos observados en los órganos internos son
comunes también a la tuberculosis, de modo que es necesario un análisis
histopatológico para efectuar un correcto diagnóstico (Petracini, 2006).
Tratamiento: Acriflavina, iodina, verde malaquita, azul de metileno, sal, formalina.
Aplicación como baño, tópica, o en el estanque (A.E.K, 2006).
No se conoce un tratamiento realmente eficaz. De todos modos, algunos autores
obtienen buenos resultados utilizando paraclorofenoxetol realizando una solución
madre de 1 ml de paraclorofenoxetol en 1 litro de agua destilada, y añadir 10 ml
por cada litro de agua. Se deberá añadir de forma gradual y dejarlo actuar durante
2 o 3 días. Pasado este tiempo, se procederá a hacer un cambio de agua y
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reanudar la medicación, después de eliminar la medicación con una filtración por
carbón activo durante 24h (González, 2006).
También se habla de éxito con tratamientos basados en sulfameracina a razón de
50 mg/l en acuario hospital durante 3 días. Como hemos dicho en el caso anterior,
si no se observan resultados, se deberá repetir el tratamiento realizando antes el
cambio parcial de agua pertinente y la eliminación de la medicación anterior con
ayuda de la filtración durante 24h a través de carbón activado (Maceda y
González, 2006).
Prevención: Elegir bien los peces nuevos (sin heridas, puntos o granos, que
naden sin esfuerzo, que no estén ni delgados ni obesos y que coman
regularmente), mantener el agua en condiciones estables (temperatura constante
y adecuada, limpiar filtros regularmente, cada 15 días, y realizar cambios de agua
frecuentemente, cada 2 semanas), mantener una buena oxigenación, evitar
sobrecargas del filtro para que no se pudran los residuos tóxicos procedentes de
la descomposición de los alimentos y de la excreciones de los peces y evitar la
superpoblación de peces, lo que aumentaría el estrés de los peces y también sus
desechos (González, 2006).
6.3.- SAPROLEGNIASIS (Saprolegnia sp.)
Etiología: La mayoría de micosis externas que afectan a nuestros peces están
causadas por oomicetos del género Saprolegnia: S. parasítica y S. diclina. Ambas
especies son las más frecuentes y, dado su gran similitud, algunos autores optan
por referirse a ellas como el complejo S. parasítica - S. diclina (Fernández, 2006).
Pese a ser éste el género más común y debido al cual, la enfermedad recibe el
nombre de Saprolegniasis, lo cierto es que también se han identificado a otros
oomicetos en algunos peces enfermos: Achlya, Aphanomyces , Leptolegnia ,
Pythium y Leptomitus . Si bien, éstos dos últimos se comportan más como
saprotróficos (el término saprófito está en desuso) (González, 2006).
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Definición: Enfermedad infecciosa producida por varios hongos, principalmente
Oomicetos representantes del grupo de los Saprolegniales (Salas y Garrido,
1997).
Es un hongo que se encuentra en todos los medios acuáticos. La velocidad con
que se actúe puede significar la vida o la muerte (Pecesdiscos, 2006).
Se caracteriza por la aparición de formas algodonosas en zonas que con el tiempo
da lugar a un recubrimiento del cuerpo por una capa de hongos en forma de tela
de araña. Suele aparecer en heridas producidas por el punto blanco u otras
infecciones y si no se trata, se extenderá por todo el cuerpo del pez y le matará
(González, 2006).
Sinonimia: Enfermedad micótica o micosis (Fernández, 2006).
Epidemiología: Virtualmente, todas las especies de agua dulce son susceptibles
de sufrir esta patología. Debemos mencionar también que los saprolegniales son
los patógenos más frecuentes de los huevos de cría en agua dulce. Este hecho
puede hacer que se pierdan camadas completas, ya que los huevos poseen poca
(o ninguna) protección frente a este tipo de patología. La gran excepción a este
hecho está representada por las especies que “cuidan la prole”, ya que los
progenitores les brindan una excelente protección. Esto no descarta que puedan
infectarse, pero generalmente no ocurre, y cuándo pasa, sólo se afectan unos
pocos huevos. Las especies marinas no suelen padecer esta infección, ya que el
agua salada resulta letal para estos hongos. Si bien se ha obtenido desarrollo de
Saprolegnia parasítica con concentraciones de sal del 1,75 %, no se observó
desarrollo a 3,5 % de NaCl (Petracini, 2006).
Patogenia: La infección comienza cuándo las esporas del hongo alcanzan tejidos
necróticos (muertos) en un individuo incapaz de hacer frente a estos hongos. De
este modo se produce la colonización de los tejidos superficiales, principalmente la
epidermis. Entonces la espora comienza a desarrollarse, formando el micelio
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compuesto por hifas que darán lugar a la formación de nuevas esporas,
perpetuando el ciclo biológico del hongo (reproducción asexuada). En algunas
especies de hongos también existe una reproducción de tipo “sexual” en la que se
conjugan hifas femeninas y masculinas, es decir que existen “hongos macho” y
“hongos hembra” (dioicos). Pero además cabe citar que algunos hongos poseen
también la fase de reproducción sexual en ellos mismos, produciendo un mismo
organismo, tanto hifas macho como hifas hembras (monoicos). Cuándo el micelio
se desarrolla, se puede ver macroscopicamente la típica masa “algodonosa” que
nos facilitará el diagnóstico de ésta afección. En los tejidos del pez puede
observarse ulceración y necrosis, a causa de las enzimas que los hongos secretan
para digerir el alimento antes de consumirlo. Esto produce una leve reacción
inflamatoria de tipo mononuclear, en la que participan linfocitos, monocitos y
macrófagos. La muerte puede sobrevenir a consecuencia de las micosis
superficiales, esto no es frecuente, pero en individuos intensamente afectados, y
con algunas cepas particulares de hongos puede ocurrir. Esto sucede porque los
hongos destruyen la barrera osmótica que constituye la piel de los peces,
alterando así la osmorregulación, y produciendo una alteración hidroelectrolítica
letal. La invasión de los tejidos profundos no suele ocurrir en este tipo de micosis,
por lo que las micosis profundas no se consideran un grado avanzado de
Saprolegniasis (Salas y Garrido, 1997).
Signos: La enfermedad se manifiesta en forma de unas proliferaciones de
finísimos filamentos de color blanco grisáceo que flotan en el agua formando una
masa algodonosa sobre la superficie de: peces, huevos o incluso, cadáveres o
materia orgánica en descomposición que haya pululando por el acuario (las algas
no son blancas, ¡son hongos!) (Pemau, 2006).
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Figura N. 29. Pez con Saprolegnia.
(Pemau, 2006).
Síntomas: Al principio, suelen ser infecciones puntuales (aparecen en pequeñas
heridas que puedan tener los peces), pero conforme avanza la enfermedad, los
hongos van colonizando otras zonas del pez y pueden llegar a recubrirlo por
completo. Esto se observa frecuentemente en los cadáveres (Pemau, 2006).
Figura N. 30. Síntomas visibles de Saprolegnia
(Pecesdiscos, 2006).
Diagnóstico de laboratorio: cabe mencionar que para el diagnóstico específico
se utilizan técnicas microbiológicas, como la observación microscópica directa, el
cultivo en medios específicos y los procedimientos de análisis molecular (Salas y
Garrido, 1997).
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Figura N. 31. Saprolegnia vista a través del microscopio
(Pecesdiscos, 2006).
Diagnostico diferencial: La saprolegniasis es una enfermedad muy fácil de
diagnosticar. No necesitamos una lupa ni debemos tener una vista muy aguda
para percatarnos que nuestros peces están aquejados de hongos (Pemau, 2006).
Tratamiento: Composición madre, Azul de Metileno 9 gr., Etanol 90 ml, Fenol 26
ml, 1 litro. Agua destilada. Añadir 20 ml de esta composición por cada 100 litros de
agua del acuario, a los 3 días cambio parcial de agua. Si no se nota mejoría,
repetir tratamiento (Pecesdiscos, 2006).
Profilaxis. Como se ha podido ver, los hongos son organismos oportunistas que
aprovechan el debilitamiento de nuestros peces y las malas condiciones
ambientales para darnos disgustos. Se puede decir que es muy raro que en un
acuario en el que se realizan las labores de mantenimiento con la frecuencia
requerida y los peces cumplan una estricta cuarentena antes de entrar en el
acuario, se den problemas de micosis externas. Por tanto, ante una micosis
externa, aparte de tratar al pez afectado convenientemente, lo que se tiene que
hacer es un examen de conciencia y ver, si se esta haciendo las cosas como
debiéra. Un cambio parcial de agua sifoneando el fondo del acuario para eliminar
el exceso de materia orgánica que pudiera haberse ido acumulando, nunca está
de más, como primera medida de control. Otras cosas a revisar: filtración del
acuario, oxigenación del agua, densidad piscícola, compatibilidad interespecífica,
etc. Pensar que de nada sirve aplicar un tratamiento, si no se encuentra la causa
de fondo que origina los problemas en nuestro acuario (Fernández, 2006).
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Tratamientos inespecíficos.
Con este nombre, agrupamos a todo ese conjunto de compuestos químicos que
sirven para combatir un amplio espectro de enfermedades en nuestros peces, y
que también nos van a ayudar con los hongos. Algunos son más efectivos que
otros. Del mismo modo que algunos tratamientos son excesivamente agresivos, y
bien pudiera curarse la enfermedad con tratamientos más suaves. No hay que
pensar sólo en curar la enfermedad, sino también en el pez que la sufre (Maceda y
González, 2006).
Azul de metileno
Se prepara una solución madre diluyendo 1 gramo en un litro de agua destilada.
Se añaden 30 - 50 ml. de ésta por cada 100 litros de agua de acuario, pudiéndose
incrementar la dosis hasta 100 ml. / 100 litros en los casos más graves.
Verde de malaquita
Prepararemos una solución madre de 1 gramo de verde de malaquita libre en zinc
en 1 litro de agua destilada. Añadimos de 3 a 4 ml. de ésta por cada 100 litros de
agua del acuario. Los peces sin escamas y carácidos no toleran bien este
principio activo. Se debe reducir la dosis a la mitad u optar por otro tratamiento.
Sulfato de cobre
Prepararemos una solución madre de 1 gramos de sulfato de cobre
pentahidratado en 1 litro de agua destilada. La dosificación en acuario será a
razón de 1,5 ml. de esta disolución por cada litro de agua. Los invertebrados no
toleran el cobre y su aplicación en acuario de aguas blandas sería
desaconsejable.
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Formol
Es muy tóxico y deberá aplicarse con sumo cuidado. Es un tratamiento muy
agresivo. Se añadirán 2 ml. de formol al 40% por cada 10 litros de agua y se
realizarán baños de 30 minutos controlando en todo momento el estado del animal
enfermo.
Sal marina
Los baños de sal fueron utilizados por los acuariófilos de antaño para curar un sin
fin de patologías en sus peces. Afortunadamente, los tratamientos mejoran y son
más efectivos que los remedios de hace unos años, pero lo cierto es que los
baños en agua salada son altamente efectivos contra las micosis externas. Se
realizará en forma de baños en un acuario hospital y la única precaución que
debemos tener en cuenta, es que los peces enfermos toleren la presencia de sal
en el agua. Está contraindicado con: loricáridos, calíctidos, etc... (Maceda y
Gonzalez, 2006)
Tratamientos específicos.
Sin duda, el mejor tratamiento para curar una enfermedad, es un tratamiento
específico contra el agente patógeno que la causa. En el caso de las micosis
externas de nuestros peces, podemos utilizar antifúngicos de venta en farmacias
para uso humano y cuyos principios activos son: ketoconazol o nistatina (nos
interesa un producto lo más puro posible, hablar con nuestro farmacéutico). Antes
de entrar en la dosificación de sendos medicamentos, nos gustaría comentaros
(para los curiosos, al menos) en qué radica la especificidad de estos
tratamientos.La membrana plasmática de los hongos no contiene colesterol como
la nuestra, sino un esterol común a todos los hongos, y exclusivo de ellos, que
recibe el nombre de ergosterol . Se trata de una molécula muy próxima a la
vitamina D, que se convierte en ésta, por acción de la radiación ultravioleta. Aparte
de ser el ergosterol una herramienta con la que cuentan los micólogos para
cuantificar la biomasa viva fúngica que hay en un suelo (cuando el hongo muere,
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
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el ergosterol desaparece), también sirve a la industria farmacéutica para fabricar
tratamientos específicos contra ellos.
Son dos las vías de actuación:
1. Ataque directo al ergosterol que se encuentra en la membrana plasmática:
caso de la nistatina.
2. Ataque a nivel metabólico en la vía de biosíntesis del ergosterol: caso del
ketoconazol.
Sea por una vía o por otra, el resultado es el mismo: el hongo ve desestabilizada
su membrana plasmática al faltarle la molécula responsable de su estabilidad, el
ergosterol (González, 2006).
Ketoconazol
1 comprimido (200 mg.) por cada 30 litros de agua. Pasadas 48h realizamos un
cambio parcial de agua y observamos el estado del pez. Si éste está recuperado,
procedemos a filtrar por carbón activo 24h para retirar del agua cualquier resto de
medicamento y, en caso que no haya sido éste el resultado, volvemos a repetir la
dosis.
Nistatina
1 comprimido (100.000 U.I.) por cada 20 litros de agua. Esta posología es válida si
usas óvulos vaginales, si utilizáis comprimidos orales, ten en cuenta que contienen
más nistatina! Pasadas 48 horas de la aplicación del tratamiento, realiza un
cambio parcial de agua y observa el estado del pez. Si éste no ha mejorado, repIte
el tratamiento y, si éste está completamente recuperado, elimina la medicación del
acuario mediante una filtración a través de carbón activado.
Advertencia
Estos tratamientos son fruto de la sabiduría popular entre los aficionados.
Sabemos que son efectivos y funcionan realmente bien, sin embargo, la
bibliografía no contempla nada al respecto de los efectos secundarios que éstos
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
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pudieran tener. Lo que podemos decir, es que, aparentemente, no los parecen
tener por las diferentes exitosas probatinas que se han hecho a nivel doméstico.
De todas formas, faltan estudios científicos que avalen su uso acuariófilo. (Maceda
y González, 2006).
Prevención: Elegir bien los peces nuevos (sin heridas, puntos o granos, que
naden sin esfuerzo, que no estén ni delgados ni obesos y que coman
regularmente). Mantener una buena oxigenación, evitar sobrecargas del filtro para
que no se pudran los residuos tóxicos procedentes de la descomposición de los
alimentos y de la excreciones de los peces. Mantener el agua en condiciones
estables (temperatura constante y adecuada, limpiar filtros regularmente, cada 15
dias, y realizar cambios de agua frecuentemente, cada 2 semanas). Evitar la
superpoblación de peces, lo que aumentaría el estress de los peces y también sus
desechos (González, 2006).
7.- VIRUS.
Generalidades. Los virus no son organismos celulares, se consideran parásitos
intracelulares estrictos. El elemento viral más importante es el genoma, este
puede constituirse con DNA o RNA, dependiendo del tipo de virus. Básicamente
los virus tienen un ciclo de vida que se compone de dos fases: una extracelular en
donde toma el nombre de virión y en donde la información genética se cubre de
una sofisticada capa de proteínas, la función del virión es transmitir la información
genética a una célula susceptible. En la segunda fase el virus se encuentra sin la
cápside protéica y dentro de la célula infectada. Esta fase intracelular puede durar
días o años. Cuando la fase intracelular es larga se le llama latencia. A grandes
rasgos los virus se pueden clasificar en virus animales, vegetales o bacterianos. A
su vez los virus animales se clasifican en diferentes familias de acuerdo a su
tamaño, forma, estructura y al ácido nucléico que portan. Algo importante de notar
es que la cápside de algunos virus está envuelta en una estructura protectora que
no resiste a la desecación, aspecto importante en la infectividad del virus. Un
ejemplo de estos virus son los retrovirus y virus del herpes, que no resisten la
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exposición a un medio ambiente seco. Los viriones que no poseen estas
envolturas protectoras se llaman desnudos y permanecen infectantes por largos
periodos después de la desecación como es el caso de los virus del papiloma
(Romero, 1993).
Características. Los virus son parásitos intracelulares submicroscópicos,
compuestos por ARN o por ácido desoxirribonucleico (ADN) —nunca ambos— y
una capa protectora de proteína o de proteína combinada con componentes
lipídicos o glúcidos. En general, el ácido nucleico es una molécula única de hélice
simple o doble; sin embargo, ciertos virus tienen el material genético segmentado
en dos o más partes. La cubierta externa de proteína se llama cápsida y las
subunidades que la componen, capsómeros. Se denomina nucleocápsida, al
conjunto de todos los elementos anteriores. Algunos virus poseen una envuelta
adicional que suelen adquirir cuando la nucleocápsida sale de la célula huésped.
La partícula viral completa se llama virión. Los virus son parásitos intracelulares
obligados, es decir: sólo se replican en células con metabolismo activo, y fuera de
ellas se reducen a macromoléculas inertes. El tamaño y forma de los virus son
muy variables. Hay dos grupos estructurales básicos: isométricos, con forma de
varilla o alargados, y virus complejos, con cabeza y cola (como algunos
bacteriófagos). Los virus más pequeños son icosaédricos (polígonos de 20 lados)
que miden entre 18 y 20 nanómetros de ancho (1 nanómetro = 1 millonésima parte
de 1 milímetro). Los de mayor tamaño son los alargados; algunos miden varios
micrómetros de longitud, pero no suelen medir más de 100 nanómetros de ancho.
Así, los virus más largos tienen una anchura que está por debajo de los límites de
resolución del microscopio óptico, utilizado para estudiar bacterias y otros
microorganismos. Muchos virus con estructura helicoidal interna presentan
envueltas externas (también llamadas cubiertas) compuestas de lipoproteínas,
glicoproteínas, o ambas. Estos virus se asemejan a esferas, aunque pueden
presentar formas variadas, y su tamaño oscila entre 60 y más de 300 nanómetros
de diámetro. Los virus complejos, como algunos bacteriófagos, tienen cabeza y
una cola tubular que se une a la bacteria huésped. Los poxvirus tienen forma de
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ladrillo y una composición compleja de proteínas. Sin embargo, estos últimos tipos
de virus son excepciones y la mayoría tienen una forma simple (Aberiak, 2006).
7.1.- LINFOCISTOSIS (Iridovirus)
Etiología: Esta enfermedad de los peces producida por un virus del género
Iridovirus, muy común entre los anabántidos. Los factores predisponentes para
esta infección vírica son; agua contaminada, estrés como carencia en algún
componente básico alimenticio. En general esta familia de virus tiene un enorme
tropismo por las células del sistema inmune, mata selectivamente a macrófagos y
linfocitos (de allí su nombre, los quistes (cystes) se dan por el acumulo de células
linfoides muertas, la terminación osis en Patología significa degeneración,
entonces el nombre de la enfermedad significaría, degeneración quística linfoide),
al hacer esto las defensas del organismo se desploman y el pez queda a merced
de cualquier infección oportunista que acaba con su vida (Salas y Garrido, 1997).
Definición: Es una patología vírica poco común en los acuarios. Consiste en un
virus que se introduce en células vivas del pez, estas se hinchan dando lugar a
tumores de aspecto granuloso, blancos que se parecen a huevos colgando del
pez. No tiene cura y no es mortal pero es aconsejable eliminar al pez enfermo
(González, 2006).
Figura N. 32. Tumor de aspecto granuloso en una molly dorada
(Fernández, 2006).
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Epidemiología: Se transmite a través de contacto directo del virus con las heridas
del pez, la ingestión de partículas del virus, así como por las células afectadas. Lo
que si se ha comprobado es que los miembros de la familia de los anabántidos,
dentro de la que están los betas y gouramis; y los peces rojos japoneses, son muy
susceptibles de contraer esta afección (Saubot y Serrano, 2002)
Patogenia: El virus se reproduce dentro de una célula hasta que rompe
invadiendo otras células pudiendo pasar a los órganos internos. La enfermedad es
contagiosa y se manifiesta lentamente (Pecesdiscos, 2006).
Signos: Es difícil ver algunos signos ya que el pez actúa de forma normal solo se
le pueden ver los quistes en el cuerpo (González, 2006).
Síntomas: Crecimiento de nódulos de tejido conjuntivo sobre el cuerpo y las
aletas, en forma de verrugas (forma de coliflor) bien definidas de color gris o
blanco. Muchas veces en la boca. En el mesenterio y en el peritoneo forma
nódulos de color blanco (Pemau, 2006).
Presencia de unos "copos" blancos de 1 - 3 mm. en el cuerpo o las aletas (Rizzi,
2006).
Figura N. 33. Presencia de Linfoquistes en aletas
(Salas y Garrido, 1997)
Suele aparecer en las aletas y luego se extiende a todo el cuerpo, son como
protuberancias blancas en forma de zarzamora, también se presentan como hilos
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de perlas. Se puede confundir con una afección de hongos; se presenta más
frecuentemente en la familia de los anabántidos (Pesce, 2005).
Diagnóstico de laboratorio: Al verse bajo un microscopio, las células se ven más
grande de lo habitual y de un color ámbar (Salas y Garrido, 1997).
Diagnostico diferencial: No se puede confundir con ninguna otra enfermedad ya
que es de fácil diagnostico (Rizzi, 2006).
Tratamiento: No hay remedios para esta enfermedad, es preferible asilar al pez e
incluso cortarle el trozo de aleta afectada, se le puede poner tintura de yodo en las
zonas afectadas. Hay que dejar pasar hasta dos meses antes de saber si hay
contaminación en los otros peces ya que este es el tiempo que permanece
infeccioso el virus. (Pesce, 2005).
Extirpación del nódulo: Si sólo se trata de un nódulo lo mejor sería extirparlo. Este
procedimiento es una cirugía muy poco agresiva para el pez pero realmente eficaz
para eliminar estos pequeńos tumores de naturaleza vírica.
Para realizar esta sencilla operación se debe sacar al pez del acuario y sujetarlo
entre dos paños húmedos dejando al descubierto la zona del tumor. Con una
cuchilla muy afilada o bisturí previamente esterilizado en alcohol se separa el
nódulo. Después se dan algunas pinceladas de mercurocromo o de algún
antiséptico de uso veterinario con yodo en la herida, se deja unos segundos secar
y se devuelve el pez al acuario. Después se administra algún bactericida de
espectro general para el acuario para evitar posibles infecciones bacterianas
secundarias en la zona de la herida, y sobre todo debido al estado de mayor
debilidad y de estrés que va a padecer el pez en los días siguientes a la pequeńa
operación. Es recomendable manipular al pez con guantes finos de goma para no
deteriorar la mucosa de la piel. Es también posible la utilización de anestésicos,
como el etil-n-aminobenzoato, la benzocaína o la quinaldina, para reducir el
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trauma de la intervención. Aunque en este caso no es necesario, pues se trata de
una cirugía poco agresiva para el pez (Salas y Garrido, 1997).
Se utilizan baños de 6 a 8 horas en acriflavina para erradicar este virus. Se
regresa el pez al acuario principal entre un baño y otro. Las heridas adquieren un
tono verdoso, lo cual es normal. Al poco tiempo perderán color y desaparecerán.
(Camarero, 2006).
Prevención: Aislar a los recién llegados en acuarios de cuarentena, para evitar
que los peces nuevos enfermos contagien a los demás, elegir bien los peces
nuevos (sin heridas, puntos o granos, que naden sin esfuerzo, que no estén ni
delgados ni obesos y que coman regularmente), lavar bien las plantas que se
introduzcan ya que pueden introducir parásitos en el acuario u otros animales
como los caracoles que indirectamente pueden contagiar enfermedades a los
peces, mantener el agua en condiciones estables (temperatura constante y
adecuada, limpiar filtros regularmente, cada 15 días, y realizar cambios de agua
frecuentemente, cada 2 semanas), Alimentar regularmente y con variedad de
alimentos alternando los copos con otro tipo de alimento como dafnias, tubifex,
larvas de mosquito, etc., mantener una buena oxigenación, evitar sobrecargas del
filtro para que no se pudran los residuos tóxicos procedentes de la
descomposición de los alimentos y de la excreciones de los peces y evitar la
superpoblación de peces, lo que aumentaría el estrés de los peces y también sus
desechos (González, 2006).
7.2.- VIROSIS PRIMAVERAL (Rhabdovirus carpio)
Etiología: El agente etiológico de esta enfermedad es un Rhabdovirus con
morfología típica de bala y que antigénicamente se encuentra muy relacionado,
comparte antígenos comunes, con el Pike Fry Rhabdovirus del Lucio (Esox lucius).
Se trata de un agente sensible a los pH inferiores a 5 y superiores a 10 así como
al calor. Invitro se cultiva en líneas celulares continuas de pez EPC, FHM, BB, BF-
2, RTG-2 y en células de vertebrados mamíferos como BHK-21, VERO y en
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embrión de pollo. En condiciones naturales la temperatura óptima está en torno a
los 20ºC, no obstante in vitro puede llegar a replicarse entre los 4 y los 31ºC. La
infección con el virus SVC produce la síntesis de anticuerpos neutralizantes no
solamente en aquellos animales que manifiestan clínicamente la enfermedad, sino
también en los portadores asintomáticos, así como interferón y células
inmunológicas circulantes y en órganos. Si bien se ha observado que únicamente
existe un serotipo de este virus, si se ha puesto de manifiesto que se producen
variaciones en la virulencia del mismo en diferentes condiciones, variaciones que
podrían estar asociadas a las condiciones medioambientales en las que se
produce la enfermedad. (Laboratorio de ictiopatología, 2006).
Definición: La virosis primaveral de los peces es una infección viral contagiosa y
aguda. Solo puede introducirla al estanque los peces nuevos que estén infectados.
Si los peces sobreviven a la enfermedad, se inmunizan contra ella, pero son
transmisores latentes de los virus durante toda su vida (Untergasser).
Epidemiología: El estudio epidemiológico de la enfermedad pone de manifiesto el
carácter estacional de la misma, puesto que suele presentarse al comienzo de la
primavera y tras inviernos en los que se ha producido un importante descenso en
las temperaturas. Cuando la temperatura se encuentra entre los 15ºC y 20ºC, la
enfermedad se exacerba desde el punto de vista clínico, con temperaturas
superiores las manifestaciones clínicas escasamente se aprecian si bien se
mantienen las formas asintomáticas de la misma. Por debajo de los 15ºC tampoco
se manifiesta la enfermedad si bien el estado de portador asintomático puede
mantenerse largos periodos de tiempo. Por otro lado la enfermedad puede afectar
a animales de todas las edades, si bien los jóvenes son el grupo más sensible a la
misma, posiblemente debido a que son el grupo de población con una base
inmunológica menos desarrollada. La transmisión se produce a partir de la
eliminación del virus por los animales clínicamente enfermos y los portadores
asintomáticos. La eliminación se produce por heces, orina, productos sexuales,
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
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branquias e incluso por las heridas que se pueden abrir en la superficie corporal.
El virus se localiza fundamentalmente en riñón, bazo, branquias y cerebro, que
constituirán los órganos a muestrear para realizar el diagnóstico laboratorial. La
entrada del virus en los animales sanos se produce por vía oral o por branquias y
heridas abiertas. La transmisión de la enfermedad se produce de forma horizontal
no habiéndose demostrado hasta el momento la transmisión vertical de la misma,
aunque algunos autores la sospechan a partir de la localización del virus en los
fluidos seminales (donde el virus ha sido aislado en algunos casos). El virus
eliminado por los animales infectados permanece activo largos periodos de tiempo
en el agua, siendo ésta la principal fuente del agente. La transmisión horizontal
indirecta se produce a través del material de trabajo en las piscifactorías y a través
de algunos vectores, parásitos de las carpas, como son Argulus foliaceus y
Piscícola, así como por medio de aves ictiófagas que actúan como reservorios
mecánicos (Laboratorio de ictiopatología, 2006).
Patogenia: Aparecen hemorragias puntuales en la piel, las branquias y la base de
las aletas, que van creciendo con rapidez. Si se levanta el opérculo, las branquias
se muestran pálidas. En la etapa final los peces sufren hinchazón (Hidropesía
abdominal) y ojos salientes, el ano esta saliente y los excrementos son viscosos
(Untergasser).
Figura N. 34. Hemorragias puntuales en un pez dorado
(Saubot y Serrano, 2002).
Signos: Aumento de la mortalidad en la población, los peces entran en un estado
letárgico, se separan del cardumen y se concentran en las salidas o en los lados
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de un estanque, exoftalmia, coloración oscura y branquias descoloridas (Salas y
Garrido, 1997).
Síntomas: Los peces pueden experimentar una pérdida del equilibrio, distorsión
abdominal o hidropesía ano herniado generalmente con pérdida de mucosa y
arrastre de excrementos hemorragias de la piel tipo úlceras sangrantes, base de
las aletas y el ano (Pemau, 2006).
Diagnóstico de laboratorio: El virus debe aislarse a partir de triturados de los
principales órganos diana del virus, riñón, bazo e hígado principalmente, aunque
también puede utilizarse la sangre y el músculo esquelético en la fase de viremia.
Estos triturados que se inoculan por adsorción en cultivos celulares de la línea
continua EPC, incubándose posteriormente a 15 ºC. La identificación del virus se
realiza por test de Seroneutralización con antisueros específicos, Inmunodifusión,
Inmunofluorescencia o la técnica E.L.I.S.A (Laboratorio de ictiopatología, 2006).
Diagnostico diferencial:
• Eritrodermatitis de la carpa (Enfermedad ulcerosa estival).
• Septicemia Aeromonas Móvil (MAS).
• Edwardsielosis.
• Irritaciones provocadas por la infección del piojo de los peces (Argulus).
• Estrés debido a factores medioambientales (alto nivel de amoniaco, alto pH,
bajo nivel de oxígeno) especialmente en los sistemas de recirculación.
• Estrés del transporte y de la manutención (Saubot y Serrano, 2002).
Tratamiento: No existe ninguna vacuna completa y eficaz disponible que cure al
pez una vez infectado, solo sirve la prevención. En Israel se ha señalado que se
puede obtener un grado razonable de protección mediante vacunas con virus
inactivado o con virus vivos atenuados pero no ha sido difundido masivamente
(Laboratorio de ictiopatología, 2006).
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Prevención:
Para evitar esta enfermedad recomendamos:
1. Apenas termina el invierno y comienza la primavera es primordial poner al
estanque un tónico general con refuerzos de vitaminas. Con eso, las
defensas de los peces se desarrollan en 1 semana contra las 4 semanas
que tardaría si no se aplicara nada. Esto del refuerzo no es solo aplicable
para los peces de estanques europeos, es una recomendación que
hacemos a todos los estanqueros sin importar donde se encuentren.
2. No permitir que el agua del estanque baje de los 13C utilizando termostatos
flotantes. Pero es una opción muy cara para aquellos estanques grandes y
en especial, para los que están en zonas de congelamiento de las capas
superiores.
3. Limpiar bien los filtros, prefiltros, bottom drain y todo elemento que
contenga desperdicios del estanque a fines de otoño y a fines del invierno
(antes de la primavera).
4. Utilizar filtros UV. Estos filtros con los rayos UVC germicidas, modifican el
ADN de bacterias, parásitos, hongos, etc. dejando el agua sin ninguna
clase enfermedades o posibles causantes de enfermedades. Estos filtros no
afectan las plantas ni la colonia bacteriana nitrificante ya que solo mata las
bacterias en estado natatorio, no a las asentadas (Saubot y Serrano, 2002).
8.- OTRAS PATOLOGIAS (SIGNOS)
8.1.- HIDROPESÍA
Etiología: Este tipo de afectación suele estar provocada por la presencia de
bacterias de los tipos Aeromonas y Mycobacterium. Este último tipo de bacteria
comprende a las causantes de la denominada Septicemia Hemorrágica producida
por infección interna. Tanto en la generada por virus como por bacterias se
pueden observar sintomatologías similares a los de la Hidropesía. Otra de las
afecciones que provocan la sintomatología serían los trastornos físicos a nivel
interno por ejemplo de los riñones. Una de los principales motivos que parecen
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provocar este tipo de trastornos físicos serían el mantenimiento de unas malas
condiciones acuáticas ricas en nitritos y amoniaco (Fernández, 2006).
Definición: La Hidropesía en sí no es una enfermedad, se trata más bien de la
sintomatología que presenta un pez afectado por diversas infecciones, malas
condiciones acuáticas o trastornos en su metabolismo. Esta sintomatología queda
patente por la inflamación del abdomen debido a la retención de líquido en los
tejidos. Debido a esta inflamación las escamas se erizan. Cuando estos síntomas
aparecen debemos de mirar más allá del pez afectado puesto que la razón de esta
dolencia puede estar causada por algún trastorno que está presente en el acuario
puede afectar al resto de animales (González, 2006).
Epidemiología: Esta enfermedad se manifiesta en la mayoría de los acuarios con
mala calidad de agua y sobrecarga de materia orgánica (Fernández, 2006).
Patogenia: Se ha discutido durante años acerca de las causas de esta
enfermedad. Hoy en día, hay bastante consenso en cuanto a las causas que la
provocan, algunas de las cuales son:
1. Virus: un virus ataca el saco epiteliano y la inflamación se produce cuando
el epitelio se hace demasiado grueso para que los gases lo puedan atravesar.
Esta puede ser la causa principal en aquellas especies que no son carassius.
2. Bacterias: Las infecciones bacterianas pueden causar la misma clase de
ensanchamiento. Según KoiVet la hidropesía es el resultado terminal de las
bacterias que atacan el riñón del pez. Este tipo de hidropesía es causada por las
bacterias Aeromonas o Pseudomonas; incluso en KoiVet encontraron Aeromonas
en los órganos y granulomas de Mycobacterias en abundancia en el hígado.
3. Anatomía: los carassius y todos aquellos peces cuyo vientre ha sido
abultado por efecto de mutaciones genéticas, tienen tendencia a sufrir de
oclusiones intestinales, ya que su tripa está completamente aplastada hacia arriba
en su abdomen. Esta particular distribución los predispone a la constipación que
estorba el conducto pneumocístico.
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4. Dieta: alimentar a los peces con comida seca, que absorbe agua como una
esponja y se expande dentro del cuerpo del pez, también los predispone a la
constipación.
5. Parásitos: en algunos casos es también causada por costiasis y Oodinium,
argulus, lernea o gusanos trematodos (Beotegui, 2000).
Signos: Enrojecimiento de la zona anal o en la base de las aletas, perdida de
apetito, oscurecimiento, palidez en las agallas y ojos saltones (Fernández, 2006).
Figura N. 35. Escamas erizadas.
(Fernández, 2006).
Síntomas: Derrame de serosidad en el abdomen, como si el pez estuviera lleno
de huevos (Pemau, 2006).
La presencia de Hidropesía es muy sencilla de detectar a simple vista puesto que
el pez presenta las aletas erizadas y una hinchazón anormal en la zona abdominal
(Fernández, 2006).
Figura N. 36. Abdomen hinchado
(Fernández, 2006).
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Tratamiento: Debido a que los síntomas pueden estar causados por múltiples
agentes patógenos el tratamiento a aplicar se vuelve algo impreciso. Como resulta
imposible para el aficionado medio conocer si el origen de la dolencia es
infeccioso lo más recomendable es aislar a los animales afectados, cuidando al
máximo la calidad acuática y su alimentación. Podemos tratar el acuario hospital
con un medicamento de amplío espectro.La curación de los peces no siempre
será posible con estas prácticas. Habrá animales, siempre dependiendo de las
causas que la originaron, que se repondrán totalmente y otros en cambio no
reaccionarán ante ninguna iniciativa. En caso de no disponer de acuario auxiliar lo
primero que deberemos hacer será controlar los parámetros acuáticos y los
niveles de amoniaco. Si hubiese alguna desviación deberemos corregirla.
Podemos utilizar medicamentos de amplio espectro en sus medidas preventivas y
cuidaremos la alimentación. Para casos perdidos o especialmente avanzados
debemos aplicar antibióticos. (Fernández, 2006).
No hay un tratamiento específico para la hidropesía, ya que en definitiva no
sabemos a qué nos enfrentamos, pero los puntos básicos son:
1. Alimentar al pez con arvejas, paso a explicar el porqué: un profesor de
medicina ictiológica del N.C. State College of Veterinary Medicine hizo esto es
varios casos con muy buenos resultados. Según él, las arvejas animan de alguna
manera la destrucción de la oclusión intestinal. Donde obtuve esta información no
aclara si las arvejas deben estar hervidas o no, pero en mi caso preferiría hacerlo,
además de sacarles la piel. También hay que aclarar que aún no hay datos
científicos concretos respecto a esto. Yo lo he probado… ¡¡¡y funciona!!!
2. Hacer ayunar los peces un par de días, algunas veces basta sólo con esto
para romper la oclusión intestinal y hacer que las cosas vuelvan a la normalidad.
Recuerden que los peces pueden estar de una semana a 10 días sin comer.
3. Chuck’s Pets & Hobbies recomienda utilizar "K-MYCIN (Kanamycin)",
"Ácido Nalidixico", "Tetraciclina", pero no especifica las dosis y elevar la
temperatura a 26.6ºC.
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4. Para KoiVet es una enfermedad incurable, basados en 7 años de
experiencia y utilizando Azactam, Baytril, Cloramfenicol, Gentamicin y Amikacin.
Recomiendan aislar al pez, elevar la temperatura y la oxigenación, y empezar a
inyectarle intraperitonealmente antibióticos. También se puede dar los
medicamentos con un alimento medicado.
5. En Koi USA en el panel de enfermedades Bill (por más que busqué no
conseguí encontrar los registros para saber quien es) comenta que la hidropesía
es generalmente incurable, pero que existen posibilidades, incluso comenta que
pudo salvar a varios koi que estaban muy hinchados. Recomienda para ello el uso
de antibióticos inyectables. Comenta que el tratamiento es lento y si se recupera
hay que tener al pez en observación durante un año ya que frecuentemente
recaen. Él inyecta Baytril intraperitonealmente diariamente durante 14 días.
También aclara que esto es sumamente estresante para el pez, pero que si no se
hace esto el animal muere sin remedio. Otro panelista, REC, agrega que
alimentarlo con comida medicada complementa el tratamiento, además me aclaró
que la dosis de Kanamicina es de .1 ml cada 2" del animal.
6. En Pets Ware House recomiendan que ni bien se perciben los síntomas, el
pez debe ser alimentado durante 14 días con comida medicada (antibacteriana).
Un baño de 24 horas en 2ppm de nitroifurazone también se recomienda. También
se pude administrar Ceftazidima a razón de 30mg/kg IM para 3 tratamientos, cada
dos días (aunque es algo caro). Si después de 14 días no se ven mejorías,
entonces es probable que sea viral, metabólico o genético, y en ninguno de estos
casos es curable. Menciona también que en otros casos, los riñones del pez
simplemente se cierran, causando la acumulación de fluidos, y esto desde ya no
tiene solución.
7. El bueno de Onell Villalobos me comentó lo siguiente de los medicamentos
aquí mencionados:
8. Baytril que es un medicamento elaborado por los Laboratorios Bayer, que
genéricamente se lo conoce como Enrofloxacina en farmacias tanto de uso
humano como veterinario. En protocolos veterinarios se usa en dosis inyectable
intramuscular de 5 mg por kilo de peso cada 48 horas.
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
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• Kanamicina: en inyecciones intraperitoneales en dosis de 2mg cada 100 gr.
del pez por 10 días. Hay también posibilidad de usarlo en la comida a dosis de
0.01% de peso de alimento seco (Beotegui, 2000).
Prevención:
1. Como siempre, la regla de oro es la calidad del agua. Si esta enfermedad
tiene un origen infeccioso, los peces resistirán mejor esta y otras infecciones si el
agua está en buenas condiciones. Hay que tener en cuenta que los cambios
periódicos y el control del agua son una obligación.
2. Hay que humedecer previamente la comida seca. Esto permite que la
expansión de la misma se produzca antes de que el pez la coma y se disminuirán
así los riesgos de oclusión intestinal.
3. Pero mejor que lo anterior, es cambiar a otra forma de alimentación, como
los preparados en casa, los congelados o la comida viva (Beotegui, 2000).
8.2.-EXOFTALMIA
Etiología: Esta enfermedad reconocida por la desorbitación de uno o los dos ojos,
puede tener diferentes orígenes. Es decir, puede ser un signo inespecífico que se
asocia a muchas enfermedades (por ejemplo Ascitis infecciosa, tuberculosis, etc.)
(Petracini, 2006).
Figura N. 37. Ojos fuera de su órbita
(Petracini, 2006).
Definición: Esta enfermedad se reconoce por la desorbitación de uno o los dos
ojos y puede tener diferentes orígenes. Puede ser asociado a Ascitis infecciosa,
tuberculosis u otras enfermedades. También se puede generar por una mala
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
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condición del agua del acuario o una deficiencia alimenticia en el pez (Cuadrado,
2000).
Sinonimia: Ojo de popeye y ojo saltón. (González, 2006).
Epidemiología: La ausencia de párpados en los peces expone a los ojos a una
variada posibilidad de ataques bacterianos como consecuencia de cualquier
herida que haya sido causada por cualquier medio, incluso por las muy frecuentes
peleas territoriales en ciertas especies.
En muchas oportunidades los peces se asustan y golpean contra los muy diversos
objetos que se encuentran en su hábitat, produciendo una fisura por la cual
ingresan los agentes agresores. Estos agresores pueden ser cualquiera de las
bacterias patógenas de las que todo ambiente, por limpio que sea, las encuentra
omnipresentes (Petracini, 2006).
Patogenia: La Exoftalmia se produce cuando se acumula una excesiva cantidad
de líquido biológico en el interior del ojo o cavidad ocular del pez afectado. Este
exceso de líquidos produce la hinchazón del globo ocular que es proyectado hacia
el exterior. Esta hinchazón se produce como una reacción del organismo ante el
ataque de agentes agresores, pudiendo ser éstos microbianos, parasitarios,
agentes psicoquímicos y/o desarreglos fisiológicos debido a carencias
alimentarias. Este síntoma se puede presentar en peces con Tuberculosis, ya que,
las bacterias que producen la enfermedad pueden infectar el ojo produciendo la
reacción descrita anteriormente (Cuadrado, 2000).
Signos: Prominencia anormal del ojo. La enfermedad es curable en casi todos los
casos si se interviene a tiempo (Pemau, 2006).
Síntomas: Inflamación del ojo u ojos del pez debido a la retención de líquidos o
gases (Pemau, 2006).
Diagnostico diferencial: hidropesía abdominal y tuberculosis (Cuadrado, 2000).
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
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Tratamiento: Tetraciclina, 1gramo por cada 100 litros de agua, durante cuatro
días con cambio parcial de agua, renovando el tratamiento.
El tratamiento con medicamentos se debe aplicar según se trate de agentes
bacterianos o parasitarios. En el caso de enfermedad producida por bacterias, se
deberá recurrir a los antibióticos como el cloranfenicol, que se puede administrar
con el alimento (si el pez afectado acepta comer) a razón de 1 gramo por kilo de
peso. El cloranfenicol también puede ser utilizado en baños a razón de 250 mg.
por cada 20 litros de agua del acuario (Pecesdiscos, 2006).
Por muchos motivos es recomendable tratar al pez enfermo en acuario de
enfermería. El principal de esos motivos es la posibilidad de que se trate de un
signo que responde a una enfermedad más grave. En caso de que así no fuera,
resulta innecesario (y hasta contraproducente) tratar casos aislados en el acuario
comunitario. La aplicación de gotas oftálmicas con antibióticos (una gota en el ojo
afectado cada cuatro horas durante una semana) suele producir mejoras a partir
de 4º o 5º día aunque todavía el ojo no recupere su posición normal. Aún en este
caso deberá continuarse con la administración de antibiótico en la comida y/o en el
agua del acuario, hasta completar la curación (Cuadrado, 2000).
Prevención: Mantener el agua en condiciones estables (temperatura constante y
adecuada, limpiar filtros regularmente, cada 15 días, y realizar cambios de agua
frecuentemente, cada 2 semanas), evitar la superpoblación de peces, lo que
aumentaría el estrés de los peces y también sus desechos, elegir bien los peces
nuevos (sin heridas, puntos o granos, que naden sin esfuerzo, que no estén ni
delgados ni obesos y que coman regularmente) y Alimentar regularmente y con
variedad de alimentos alternarnando los copos con otro tipo de alimento como
dafnias, tubifex, larvas de mosquito, etc. (González, 2006).
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
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CUADRO N° 2. RESUMEN DE LAS PRINCIPALES ENFERMEDADES
DE LOS PECES DE ACUARIO
NOM. COMUN ETIOLOGIA SIGNOS Y
COSTIASIS Ichthyobodo
necatrix
(Petracini, 2006)
ICTIOFTIRIASIS Ichthyophthirius
multifiliis (Ich)
(Fernandez,
2006)
HEXAMITIASIS Hexamita sp
OODINIUM U
OODIANIASIS
(Pemau, 2006)
Oodinium
pillularis
(Martinez, 2001)
SINTOMAS
El color cambia a
gris o blanco
lechoso en
algunas zonas de
la piel; si los
peces tienen las
aletas largas,
estas comienzan
a desgastarse;
aletas
agarrotadas.
Puntos blancos
claramente
visibles (0.4 – 1.5
mm.) el la piel y
en las aletas.
Agujeros en y
alrededor de la
cabeza.
Pequeños puntos
blancos (< 0.3
mm) en la piel y
las aletas; los
peces parecen
cubiertos de
harina
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
TRATAMIENTO
Verde de malaquita,
azul de metileno, y
acriflavina a dosis
indicadas
comercialmente.
Subir temperatura
gradualmente hasta
los 32°, aumentar
oxigenación, utilizar
sal de acuario.
Dimetridazol y
metronidazol
Solución madre a
base de 4 grs. de
sulfato de cobre, 2.4
grs. De acido cítrico
en 1 lt. de agua.
Añadir 20 ml/ 100 lts.
81

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DACTYLOGIROSIS Dactylogyrus
vastator (Diez,
2006)
GYRODACTYLOSIS Gyrodactylus
salaris
(Pecesdisco,
2006)
ARGULOSIS Argulus foliaceus
(Maceda y
González, 2006)
ERGASILOSIS Ergasilus sieboldi
(Petracini, 2006)
La respiración se
hace mas pesada
cada día hasta
que los peces
quedan como
“colgados” bajo la
superficie del
agua y respiran
agitadamente.
Los peces se
frotan los
opérculos.
Los peces se
restriegan y están
apáticos
Crustáceos
planos, con forma
de concha, casi
transparentes, en
la piel; pequeños
“pinchazos”
sangrantes.
Crustáceos
blancos que
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
Hacer abundantes
cambios de agua,
recogiéndola desde
el fondo. 25 – 50
ppm de formol al 40
% durante 5 días.
Preparados a base
de formalina, sulfato
de cobre,
composición madre a
base de 2grs. De
permanganato de
potasio por 1 lt de
agua agregar 1 ml1lt
de agua de la
composición madre.
Extracción manual.
Aplicación de un
desinfectante en la
zona afectada.
Formalina al 40 %
2.5 ml de formol en
82

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LERNEOSIS Lernea
PODREDUMBRE DE
ALETAS
cyprinacea
(Pemau, 2006)
Aeromonas,
Pseudomonas y
Mixobacterias
(Pemau, 2006).
COLUMNARIS Flexibacter
columnaris
(Pemau, 2006).
TUBERCULOSIS Mycobacterium
sp. (piscium y
marinum)
(petracini, 2006).
miden de 0.5 – 2
mm en los
filamentos de las
branquias.
Formaciones
blancas, en forma
de barra, con
pequeñas bolsas
en el extremo
pegadas a la piel.
Degeneración de
aletas.
Labios blancos;
bordes de
escamas
blancas; se
expanden
constantemente,
aletas plegadas.
Movimientos
lentos,
adelgazamiento,
palidez de los
colores, caída de
las escamas,
ulceraciones
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
10 litros de agua
durante 30 minutos
Extracción manual y
aplicación de un
desinfectante en la
zona afectada.
Acriflavina,
nitrofuranos,
kanamicina
sulfamidas, sal
marina. Subir
temperatura y buena
higiene.
Antibióticos,
trimetroprim
metronidazol,
nimerazol + nistatina
+ tetraciclina, todos a
dosis indicadas.
Kanamicina y
aureomicina.
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BRANQUIOMICOSIS Branchiomyces
sanguis y B.
demigrans
(Popoff, 2006).
ICTIOSPORIDIOSIS Ychthyosporidium
hoferi (Petracini,
2006).
SAPROLEGNIASIS Saprolegnia
sp.(Fernandez,
2006).
deformación de
mandíbulas y de
la columna
vertebral.
Inapetencia,
dificultad
respiratoria
boqueo en la
superficie del
agua, dificultad
para nadar, tejido
branquial
erosionado y
necrótico
Adelgazamiento,
cambio de color,
inapetencia,
desequilibrio el
nadar,
descamaciones y
llagas,
hemorragias y
presencia de
unos gránulos
blancos.
Formación de
una masa
algodonosa sobre
el pez,
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
Vitamina c limpieza
de branquias con
povidona yodada.
Acriflavina, verde de
malaquita, sal,
formalina, aplicación
como baño, tópica o
en el estanque.
Azul de metileno,
verde de malaquita,
sulfato de cobre,
formol, sal marina,
ketoconazol,
nistatina.
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LINFOCISTOSIS Iridovirus (Salas y
VIROSIS
PRIMAVERAL
Garrido, 1997).
Rhabdovirus
Carpio
(Laboratorio de
ictiopatologia,
2006)
HIDROPESÍA Aeromonas y
Mycobacterium
(Fernández,
2006)
Quistes en el
cuerpo,
Estado letárgico,
separación del
cardumen,
perdida del
equilibrio,
distorsión
abdominal,
hemorragias de
la piel tipo
ulceras
sangrantes.
Enrojecimiento el
la zona anal o en
la base de las
aletas, perdida
del apetito,
palidez en las
agallas y ojos
saltones,
derrame de
serosidad en el
abdomen aletas
erizadas y una
hinchazón
anormal en la
zona abdominal.
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
Extirpación del
nódulo y
desinfección de la
zona afectada.
No existe
tratamiento, solo
sirve la prevención.
Medicamentos de
amplio aspectro.
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EXOFTALMIA
Bacterias,
parásitos etc.
(Petracini, 2006)
Prominencia
anormal del ojo
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
Tetraciclina, 1 gr.
/100lts de agua
durante 4 días con
cambio parcial de
agua, renovando el
tratamiento.
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9.- CONCLUSIONES
1. Es de suma importancia que los médicos veterinarios zootecnistas tengan
conocimientos sobre acuariología y de las principales enfermedades que se
presentan en los acuarios, así como su prevención, control y tratamiento de
los mismos ya que la acuariofilia esta desarrollándose con mucho éxito
como actividad económica.
2. La mayoría de las enfermedades se presentan en los acuarios con malas
condiciones (desequilibrios de mantenimiento), así como también una
sobrealimentación, mala calidad de nutrientes, cuarentena para peces
nuevos, también hay que tener muy en cuenta la conducta de los peces, el
tamaño y el tipo de alimento (vivo o balanceado) y requeriementos físicos,
químicos y biológicos.
3. Las enfermedades actuales se deben en parte a la no observancia de las
normas oficiales y al deficiente conocimiento de los acuariofilos
(importadores, saqueadores y consumidores de mascotas).
4. En México no existe en puertos de navegación carretero y aéreo inspección
para las enfermedades de los organismos acuáticos (peces, crustáceos,
moluscos, anfibios y reptiles) (NOM – 011– PESC – 1993)
5. En México no existe un laboratorio de referencia para el diagnostico de
enfermedades certificables y notificables de organismos acuáticos vivos el
cualesquiera de sus fases de desarrollo, destinados a la acuacultura u
ornato en los estados mexicanos.
6. La (NOM – 011 – PESC - 1993) norma oficial mexicana que regula la
aplicación de cuarentenas y previene la introducción y dispersión de
enfermedades de los organismos acuáticos, no describe, no menciona o
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
87

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alude a las enfermedades o parásitos zoonóticos, solo a los destinados a la
producción.
7. Hasta donde se conoce no se han detectado padecimientos zoonóticos.
8. Hace falta que en la posta zootécnica de la F.M.V.Z. de la U.M.S.N.H.
exista un laboratorio de organismos acuáticos con las enfermedades mas
comunes en acuarios y en estanques productivos.
PRINCIPALES ENFERMEDADES EN PECES DE ACUARIO
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UMSNH Jesús Antonio Jiménez Ramírez FMVZ
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