PLAQUETTE L3 10-02-2012 - Université Paris Diderot-Paris 7

L3 S5 : Premier Semestre 

TRONC COMMUN 

Parcours BBM 

Parcours BEE 

PROGRAMME des COURS, TD, TP 

UFR Sciences du Vivant : Bâtiment Lamarck - Case 7044 

35 rue Hélène Brion - 75205 Paris Cedex 13 

Scolarité : Marie CHARGELÈGUE 

e-mail : marie.chargelegue@univ-paris-diderot.fr 

01 57 27 82 30 

Directrice des Etudes : Josiane WANTYGHEM 

e-mail : josiane.wantyghem@univ-paris-diderot.fr 

01 57 27 82 51 

UFR SCIENCES du VIVANT 

ANNÉE 2011 / 2012 

L3 mention : Sciences du Vivant 

Parcours BIOCHIMIE et BIOLOGIE MOLÉCULAIRE 

Parcours BIOTECHNOLOGIE et 

ÉCONOMIE de l’ENTREPRISE

FEUILLE de ROUTE : Année 2011-2012 

Les Licences de Biochimie Biologie Moléculaire (BBM) et de Biotechnologie et Economie d’Entreprise 

(BEE) comportent 6 semestres. Le niveau L3 correspond aux semestres S5 et S6. 

Le semestre L3S5 présenté dans ce document est commun aux 2 parcours. 

Il est constitué de 4 UE (Unité d’Enseignement) : 

• UE 30 UA CM 35 Métabolisme et Chimie (4 + 4 ECTS) 

• UE 30 UB ES 35 Enzymologie et Structure (4 + 4 ECTS) 

• UE 30 UC BG 35 Biologie Moléculaire et Génétique (6 + 2 ECTS) 

• UE 30 UD TP 35 Travaux pratiques à thème (6 ECTS) 

Un semestre comporte 30 ECTS (European credit transfert system). 

Rappel : 1 ECTS (ou crédit) correspond à 10 h de présence + 10 h de travail personnel. 

Contrôle des connaissances 

La note attribuée à chaque matière des UE UA-UC est la somme d’un contrôle dit partiel ou continu et de 

l’examen final. La participation exacte du contrôle continu sera affichée en octobre. 

Les contrôles continus sont obligatoires. Seuls les étudiants travaillant plus de 25 h par semaine 

pourront obtenir une dispense à condition qu’ils en fassent la demande avant le 23 octobre, avec 

un justificatif de leur activité. 

La note de l’UE de TP est la moyenne des notes obtenues à chaque séance de TP et de la note obtenue au 

cours d’hygiène et sécurité. 

A chaque matière est attribué un coefficient qui correspond aux ECTS. 

La session d’examen pour le semestre S 5 aura lieu du 03 au 18 janvier 2012. 

Validation du diplôme de la licence 

Chaque semestre doit être validé individuellement. 

Au sein d’un semestre, les UEs se compensent entre elles. 

Au sein de la même UE, les 2 matières se compensent. 

Une compensation entre semestres pourra être accordée exceptionnellement par le jury de la Licence. 

Cette indulgence ne pourra vous être accordée qu’une seule fois sur les 3 années de licence. 

Quelques rappels : 

- Les TD et les TP sont obligatoires. 

• Lors de l’inscription pédagogique, vous choisissez un groupe de TD (5 possibles) et un groupe de TP 

(8 possibles). Vous devez respecter les horaires correspondant à votre groupe pour chaque matière. 

• Votre absence lors d’un TP ou toute absence prolongée devront être signalées (au secrétariat de 

Licence ou à J. Wantyghem). Une absence non justifiée sera sanctionnée par un zéro. 

Pour toutes les informations concernant l’organisation de l’enseignement (programme, modalités de contrôle 

des connaissances….), vous pourrez vous connecter sur le portail ENT de l’Université. 

Vie étudiante à l’Université P7 

Des élections auront lieu en cours d’année aux différents conseils de l’Université et de l’UFR. 

Il est important que vous envisagiez d’être candidat. C’est le meilleur moyen pour faire bouger les choses… 

et nous avons besoin de vous. 

Association Etudiants : Scivip7.Org (scivip7@gmail.com) 

Information sur le second semestre : une réunion aura lieu fin novembre/début décembre pour vous guider 

dans vos choix du second semestre. 

La plaquette correspondant aux options du second semestre (L3S6) peut être consultée sur le site de l’UFR 

Sciences du Vivant. 

VACANCES : du 16 décembre 2011 au 2 janvier 2012 

L3 BBM / BEE 2

PROGRAMME des DIFFÉRENTES U E 

30 BM EN 35 E N Z Y M O L O G I E 4 ECTS 

Enseignants : J-M. Dupret, F. Rodrigues-Lima, V. Arluison, J. Dairou, W. Grange 

Cours : 24 heures - TD : 18 heures 

PROGRAMME des COURS 

1 CINÉTIQUE RÉACTIONNELLE et ÉQUILIBRES CHIMIQUES 

Vitesse de réactions et constantes de vitesse de premier et deuxième ordres. 

Equilibres chimiques. 

Cinétique de formation des complexes. 

2 RÉACTION ENZYMATIQUE à UN SUBSTRAT 

Rappels sur les propriétés générales des enzymes. 

Modèles cinétiques. 

Hypothèse de l’état stationnaire. 

3 ANALYSE et SIGNIFICATION des PARAMÈTRES CINÉTIQUES 

Caractéristiques cinétiques des enzymes michaeliennes. 

Détermination pratique des paramètres cinétiques. 

Signification physique des paramètres cinétiques kcat, K M, kcat / K M 

Effet du pH sur les paramètres cinétiques. 

4 CATALYSE ENZYMATIQUE 

Les principaux mécanismes de catalyse : Catalyse acide-base. 

Catalyse covalente nucléophile ou électrophile. 

5-6 ENZYMES de DÉGRADATION des PROTÉINES 

i) Structure et fonction de protéases. 

ii) Mécanisme catalytique des protéases à sérine et à cystéine. 

iii) Implications pathologiques et thérapeutiques. 

7-8 INHIBITEURS d’ENZYMES et LEUR RÔLE THÉRAPEUTIQUE 

Rôle et intérêt thérapeutique des inhibiteurs d’enzymes. 

i) Inhibiteurs réversibles immédiats et à interaction lente. 

ii) Inhibiteurs irréversibles covalents : marqueurs d’affinité, inhibiteurs-suicide. 

iii) Application à des problèmes thérapeutiques majeurs. 

9-10 IDENTIFICATION de RÉSIDUS ESSENTIELS par MARQUAGE CHIMIQUE et MUTAGENÈSE 

DIRIGÉE 

11 CINÉTIQUES à DEUX SUBSTRATS et DEUX PRODUITS 

Principaux types de réactions et de mécanismes à deux substrats et deux produits, séquentiels (aléatoires 

ou ordonnés) et non séquentiels (ping-pong). 

PROGRAMME des TRAVAUX DIRIGÉS 

1 - Cinétiques d’ordre I et pseudo-premier ordre 

Ordre de réaction (ordres zéro, un, pseudo 1 er ordre), loi de vitesse, constantes de vitesse. 

Ex : Cinétiques d'association apoenzyme / coenzyme, de dissociation d'un complexe récepteur hormone 

par dilution isotopique, de modification chimique de groupements NH2 d'une protéine par acétylation…. 

2 - Interactions protéine - ligand et équilibres 

Complexes protéine - ligand. Détermination et signification de KD, fonction de saturation, fraction de 

sites occupés. Représentation de Scatchard et autres représentations. 

Ex : Interaction anticorps - antigène, comparaison de liaisons à haute et basse affinité. 

Exemple du complexe entre la NO - synthase et son substrat, l’arginine. 

3 - Equation de Michaelis - Vitesse initiale - Etat stationnaire - Constantes cinétiques 

Etude sur des exemples des courbes [P] = f (t), [S] = f (t); vi = f ([S0]); Vmax = f ([E]). 

Equation de Michaelis. Détermination et signification des constantes cinétiques K M, kcat, kcat / K M. 

4 - Mécanismes de catalyse enzymatique 

Catalyse enzymatique : catalyse générale acide et basique, catalyse électrophile par les métaux, catalyses 

covalentes nucléophile et électrophile. 


5 - Les enzymes de dégradation des protéines 

Intermédiaires multiples dans les réactions enzymatiques à plusieurs étapes. 

α-Chymotrypsine : mise en évidence de l'acyl-enzyme ; détermination des constantes de vitesse (état préstationnaire, 

état stationnaire). 

Caspases : mécanisme et intermédiaires de réaction. 

Subtilisine : mise en évidence d’acides aminés essentiels par mutagenèse dirigée, 

Comparaison des constantes cinétiques. Mécanisme catalytique. 

6, 7 - Inhibiteurs réversibles et inhibiteurs covalents - Analogues de l’état de transition - Marqueurs 

d’affinité - Inhibiteurs suicides 

Caractéristiques et analyse cinétique. Détermination des inhibitions mises en jeu et de leurs constantes 

cinétiques (K I, Ki, kinactivation). 

Marqueurs de photo-affinité. 

Intérêt pharmacologique des analogues d’état de transition, des marqueurs d'affinité, des inhibiteurs 

suicide. Etudes sur des exemples. 

Modification chimique de résidus essentiels : identification, inactivation. 

8 - Cinétiques à 2 substrats, effet du pH sur la cinétique, identification de résidus essentiels de protéines 

Analyse cinétique avec exemples de différents mécanismes. 

Effet inhibiteur par les produits. 

Etude en fonction du pH : Effet sur l’activité, sur la fixation du substrat, sur l’efficacité catalytique. 

9 - Problèmes d’ensemble sur enzymes impliqués dans des problématiques actuelles. 

MODALITES de CONTRÔLE des CONNAISSANCES 

Examen final : 60% 

Contrôle continu : 40% 


30 BM ST 35 STRUCTURE et INTERACTIONS des MACROMOLÉCULES BIOLOGIQUES 4 ECTS 

Enseignants : C. Etchebest, N. Caulet, T. De Caldas, K. Moncoq, M. Roué 



1 THERMOCHIMIE 

Notions fondamentales : Système et paramètres thermodynamiques - Energie interne - Grandeurs extensives 

et intensives liées. 

Rappels des propriétés des fonctions caractéristiques d'un système thermodynamique : Energie libre F. 

Entropie S - Enthalpie H et Enthalpie libre G - Potentiel chimique µ. 

Evolution d'un système : Critères d'évolution - Equilibres - Réactions chimiques - Nombre de sites - K D. 

Equation de Scatchard - Distribution d'un ligand sur n sites. 

2 TECHNIQUES d’ÉTUDE des MACROMOLÉCULES 

Calorimétrie : Titrage en H de K, détermination du S. 

Dialyse, loi de Donnan. 

Spectrométrie de masse. 

Absorption optique : UV, visible. 

Fluorescence : émission, excitation. Loi de Lehrer. 

Activité optique : pouvoir rotatoire et dichroïsme circulaire. 

3 ACIDES AMINÉS et PEPTIDES 

Acides aminés libres et Peptides. 

Propriétés physico-chimiques : Solubilité ; ionisation et détermination du pK des acides aminés ; pouvoir 

rotatoire. 

Propriétés chimiques. 

4 STRUCTURE des PROTÉINES 

Détermination de la séquence en acides aminés : Méthodes chimiques (Edman, Gray et Hartley) et 

enzymatiques, le séquenceur automatique. 

Diagramme de Ramachandran. 

Structures secondaires : hélices, feuillets ß, coudes. 

Prédiction de structures secondaires. 

Profil d'hydrophobicité (Kyte & Doolittle), moment d'amphiphilicité (Eisenberg). 

Structures tertiaires : protéines globulaires et fibreuses. 

Structures quaternaires. 

5 ACIDES NUCLÉIQUES 

Propriétés physico-chimiques des constituants. 

Tautomérie des bases et ionisation des groupes phosphates, bases et sucres. 

Appariement et coordonnées linéaires et angulaires. 

Conformation du squelette des acides nucléiques : Diagramme de Olson et Flory. 

Polymorphisme structural de l'ADN. 

6 GLUCIDES 

Oses : Structure linéaire et cyclique, filiation; effet anomère, propriétés chimique et principaux oses. 

Dérivés d'oses. 

Holosides ; principaux diholosides, méthodes d'étude ; polyosides homogènes ou mixtes ; hétérosides 

7 LIPIDES et MEMBRANES BIOLOGIQUES 

Les acides gras : Structure, propriétés physico-chimiques, méthodes d'analyse. 

Lipides majeurs : membranaires (phospholipides, stérols, glycolipides), circulants et non membranaires. 

Lipides mineurs à activité biologique spécifique (prostaglandines, leucotriènes, vitamines, hormones 

stéroïdes). 



Thermodynamique chimique (1 séance) 

Potentiels chimique, électrochimique, REDOX. 

Détermination du Δ G. 

Force proton motrice ; réactions couplées. 

Détermination d'équilibres monomère / oligomère. 

Complexes protéine - ligand, nombre de sites, détermination du KD 

Structure primaire des protéines (1 séance) 

Analyse de séquence par exo- et endo-peptidases, réactions chimiques, séquenceur automatique. 

Charge des protéines : pK de l'acide aminé isolé et effet de l'environnement protéique, pI et pHi, titration 

acido-basique des protéines. 

Structure secondaire des protéines (1 séance) 

Diagramme de Ramachandran. 

Détermination de la structure secondaire des protéines en solution : ORD et spectroscopie infra-rouge. 

Energie des interactions non covalentes dans les protéines. 

Cas des Interactions hydrophobes. Amphiphilicité des hélices. 

Glucides (1 séance) 

Stéréoisomérie des oses. Propriétés chimiques des oses. 

Détermination de la structure d'oligosaccharides, de glucides de réserve (glycogène, amidon) : réactions 

enzymatiques, perméthylation 

Lipides (1 séance) 

Les acides gras : Structure, point de fusion, chromatographie en phase gazeuse. 

Triglycérides, phospholipides et autres lipides complexes : structure et propriétés chimiques, méthodes 

d'analyse. 

Structure de l'ADN (1 séance) 

Structure canonique de l'ADN, sites de courbure, étude de la fixation de petites molécules à l'ADN, 

dénaturation thermique. 

Interaction ADN / protéines (1 séance) 

Analyse de la fixation de peptides ou de protéines sur l'ADN B : Localisation de sites, interactions mises en 

jeu, modification de conformations induites 

Structure tertiaire des protéines / Application des techniques d'étude aux macromolécules (2 séances) 

Comportement hydrodynamique des protéines : coefficient de friction ; constantes de diffusion ; estima-tion 

des surfaces accessibles. 

Application de l'émission de fluorescence à l'étude des protéines. 

Contribution électrique à la stabilité des protéines : pH optimum, effet de la force ionique. 

Dénaturation des protéines. 

MODALITÉS de CONTRÔLE des CONNAISSANCES 

Examen : 70% 

Contrôle continu : 30% (2 contrôles continus) 


30 BM BM 35 B I O L O G I E M O L É C U L A I R E 6 ECTS 


Enseignants : P. Régnier, P. Vicart, D. Buffard, J.C. Cadoret, M. Franco, V. Régnier, G. Velasco 


1 TECHNIQUES de GÉNIE GÉNÉTIQUE 

L’ADN, caractérisation et détection. 

Isolement et caractérisation d’un fragment d’ADN particulier, 

PCR, clonage et séquençage, banques génomiques et ADNc. 

2 STRUCTURE de l’ADN 

Superstructure de l’ADN, compaction, courbure, super-enroulement, topologie de l’ADN circulaire. 

Interactions ADN - protéines : exemples et méthodes d’étude. 

3 RÉPLICATION de l’ADN 

L’ADN polymérase III de E. coli : mécanisme des étapes du démarrage et de l'élongation; problèmes 

topologiques. Réplication des plasmides : compatibilité et maintenance. 

4 GÉNÉRALITÉS sur la TRANSCRIPTION 

Les ARN polymérases : Exemples chez les phages, les procaryotes, les eucaryotes. 

Les promoteurs et la régulation de la transcription. Transcription des ARN ribosomaux et des ARN de 

transfert. Méthodes d’étude des transcrits. 

5 RÉGULATION de la TRANSCRIPTION 

L’opéron lactose, régulation par l’inducteur et répression catabolique. 

Régulation de la transcription chez les phages : Exemple des phages lambda et T4. 

Transcription eucaryote : Généralités ; régulations ; épissage. 

Les virus eucaryotes : Adénovirus. Notion de vecteur pour la thérapie génique. 

6 TRADUCTION et sa RÉGULATION 

Code génétique : Les ARNt assurent la correspondance triplet / acide aminé. 

Structure des ARNt et notions « d’identité » des ARNt, de codons synonymes et de Wobble. 

Mutants suppresseurs de non sens : Le code génétique est modifié. 

Le ribosome bactérien : Les sites A, P, E. 

La dynamique de la traduction : facteurs d’initiation, d’élongation et de terminaison. 

Régulation de la synthèse des protéines et des ARNr qui composent les ribosomes. 

Rôle des structures secondaires de l’ARNm dans la régulation de la traduction, accessibilité des sites de 

démarrage. 

7 TECHNIQUES d’ANALYSE de l’EXPRESSION 

Techniques mettant en jeu l’hybridation ARN-sonde spécifique. 

Gènes rapporteurs. 

Vecteurs d’expression. 


Méthodes d’étude des acides nucléiques : PCR, clonage… 

Réplication de l’ADN 

Transcription 

Opérons : Régulation de l’expression 

Traduction 

Génie génétique 


Examen : 55% 



30 BM GE 35 G É N É T I Q U E 2 ECTS 

Enseignants : P. Silar, F. Malagnac, S. Brun, P. Grognet, H. Lalucque 



Histoire de la génétique 

Génétique mendélienne : caractères, gènes et génomes 

Mitose - Méiose 

Relation génotype / phénotype 

Du gène à l'ADN 

La démarche génétique : crible de sélection de mutants 

Notions de Génétique Humaine 


Mitose - Méiose 

Génétique mendélienne (Ségrégation) 

Sélection de mutants 

Pedigrees 


Examen : 100% 


30 BM ME 35 M É T A B O L I S M E 4 ECTS 

Enseignants : G. Richarme, O. Agbulut, F. Auchère, J. Wantyghem 



1 MÉTABOLISME des SUCRES 

Glycolyse, néoglucogenèse, voie des pentoses. 

Glycogénolyse, glycogénogenèse. 

Métabolisme chez les microorganismes, plantes, vertébrés. 

Insuline, glucagon, diabète. 

2 CYCLE de KREBS 

Présentation. 

Aspect énergétique. 

Aspects anabolique et catabolique. 

Voies primitives du cycle de Krebs. 

3 RESPIRATION, FERMENTATION 

Chaîne respiratoire. 

Force proton motrice, potentiel de membrane, Δ pH. 

Synthèse d’ATP par l’ATP synthase. 

Respiration chez les différents organismes. 

Fermentations et synthèse d’ATP au niveau du substrat. 

Maladies et mutants des chaînes respiratoires. 

4 MÉTABOLISME des LIPIDES 

Acétyl ~ CoA, métabolite central. 

Dégradation des lipides. 

Synthèse des lipides. 

Anabolisme à partir des lipides ou de l’acétate : le shunt glyoxylique. 

Transport des lipides dans le sang. 

Régulations hormonales. 

5 MÉTABOLISME des ACIDES AMINÉS et de l’AZOTE 

Assimilation de N2 (nitrogénase), NH4 + , acides aminés. 

Glutamate déshydrogénase, glutamate synthase, glutamine synthétase, transaminases. 

Biosynthèse des acides aminés (acides aminés essentiels chez l’homme). 

Dégradation des acides aminés. 

Excrétion de l’azote sous forme de NH4 + , urée, acide urique, cycle de l’urée. 

Régulations hormonales du métabolisme des acides aminés. 

6 PHOTOSYNTHÈSE 

Absorption de la lumière par les photosystèmes. 

Chaînes de transport d’électrons de l’O2 vers NADPH et synthèse d’ATP. 

Assimilation du CO2, cycle de Calvin et cycle des plantes C4. 


Les séances s’articulent sur des exercices ou des commentaires d’expériences portant sur les sujets suivants 

(donnés à titre d’exemple) : 

Cycles métaboliques essentiels, leur localisation dans la cellule, leur régulation. 

Oxydations phosphorylantes mitochondriales. 

Métabolisme des acides gras. 

Métabolisme de l’azote. 

Relations entre les voies cataboliques et anaboliques des glucides, des lipides et des acides aminés. 


Examen : 60% 


Interrogations écrites en séances de TD : 15% 

Travail bibliographique et exposé oral : 10% 


L3 BBM / BEE 

30 BM CH 35 C H I M I E B I O-O R G A N I Q U E 4 ECTS 

Enseignants : N. Serradji, G. Anquetin, S. Zrig 

Cours: 24 heures - TD: 20 heures 

PROGRAMME des COURS : BASES de la SYNTHÈSE ORGANIQUE : Modifier et créer des molécules 

organiques 

1 STÉRÉOCHIMIE et RÉACTIVITÉ 

Les électrons dans les molécules 

Polarisation des liaisons σ et π. Liaisons hydrogène. Effets de substituants. 

Les molécules dans l'espace 

Rappels : Conformations, isoméries, chiralité, pro-chiralité et nomenclatures. 

Les molécules réagissent : Approche mécanistique 

Que savons-nous des réactions ? 

Quelles interrogations sur les réactions ? 

A : Pourquoi ? (Réactivité absolue et relative). 

B : Comment ? (Intermédiaires) 

C : Où ? Par où ? Vers quoi ? (sites réactifs, compétitions, contrôles cinétique et thermodynamique, 

régio/stéréo-sélectivité) 

D : Sous quelle forme ? (Conformations réagissantes) 

E : Dans quel milieu ? (Effets de solvants) 

2 MODIFICATIONS du SQUELETTE CARBONÉ 

Alkylation, arylation d'un carbonyle : organo-métalliques, action des acétylures et des cyanures. 

Alkylation en alpha d'un carbonyle : énolates, aldolisation, Claisen, Knoevanegel, énamines, Mannich, 

Favorsky. 

Alkylation en beta d'un carbonyle : Michael. 

Alkylation d'un aromatique : Friedel et Craft et substitution nucléophile aromatique. 

Alkylation d'un alcène : réarrangements et polymérisations. 

Alkylation, Acylation des RX : Wurtz, action des acétylures et des cyanures. 

Alkylation des époxydes. 

Réaction de Wittig. 

Electro-cyclisations (Diels-Alder). 

3 AMÉNAGEMENT FONCTIONNEL 

Désaménagement : L'élimination et sa stéréochimie ; Zaïtzev et Hofmann. 

Comment faire disparaître hydroxyle, amino et autres halogènes. 

Création de liaison C-O : 

Addition électrophile sur les liaisons multiples carbone-carbone, Markovnikov ou non. 

Hydro-boration et oxy-mercuration. 

Oxydations, époxydation. 

Désamination nitreuse. 

Substitution nucléophile : Hydrolyse des halogénures, Williamson. 

Addition nucléophile sur les carbonyles : Hydratation, acétalisation. 

Transposition : Baeyer-Villiger. 

Hydrolyse des esters, amides et chlorures d’acides. 

Estérification et trans-estérification. 

Coupures oxydantes des alcènes. 

Création de liaison C-N : 

Substitution nucléophile des halogènese et tosylates: Hofmann et Gabriel. 

Addition nucléophile sur le carbonyle : amides, imines, oximes (transposition de Beckman, 

dégradation de Wohl et hydrazones. 

Transposition: dégradation d'Hofmann. 

Réduction du groupe nitro. 

Création de liaison C-X : 

Addition électrophile sur les liaisons multiples carbone-carbone de HX, X2 et XOH : Régiosélectivité 

et stéréochimie, Markovnikov ou Karash. 

Substitution nucléophile des hydroxyles et tosylates : Stéréochimie. 

Substitution radicalaire sur les alcanes. 

10

Substitution en alpha, beta d'un carbonyle. 

Création de liaison C-H : 

Hydrogénation : alcènes, alcynes et autres. 

Réduction des carbonyles : hydrures, magnésiens, réaction MVP, Clemmensen. 

Réduction des carbonyles insaturés. 

Réduction des C = N (imines et oximes) : hydrures, Wolf-Kischner. 

Réduction des C = N : hydrures. 

Réduction des époxydes. 

Réaction de Birch sur aromatiques et alcènes (trans). 

Créations de liaisons C-S, C-P 

4 SYNTHÈSE ORGANIQUE 

Principes de l'analyse rétro-synthétique 

Protections de fonctions 

Synthèses asymétriques 

Exemples de synthèses multi-étapes 

PROGRAMME des TRAVAUX DIRIGÉS (10 séances au total) 

TD 1 : Stéréo-isomères 

TD 2 : Mécanismes 

TD 3 : Modifications du squelette carboné 

TD 4 : Aménagement fonctionnel 

TD 5 : Synthèses multi-étapes 

Les n° des TD se rapportent aux chapitres du cours et ne correspondent pas directement au nombre de 

séances. 


Examen : 70% 



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30 UD TP 35 T R A V A U X P R A T I Q U E S à T H É M E 6 ECTS 

Enseignant responsable : J. Wantyghem 

ENZYMOLOGIE : 2 JOURS 

1 Etude cinétique de l’activité de la chymotrypsine 

Etude de l’état stationnaire : Substrats étudiés : Deux paranitro-anilides de spécificité différente. 

Traitement des données cinétiques : Représentations graphiques permettant de déterminer KM et Vmax. 

Calcul de kcat et kcat / K M. 

Traitement statistique des données cinétiques - Ajustement des points expérimentaux à un modèle théorique. 

Utilisation du logiciel Sigma-plot. 

Confrontation des différentes déterminations. 

Titrage de sites actifs. 

Etude de l’état pré-stationnaire : Substrats étudiés : Para-nitrophénylesters. 

Phénomène de jet. 

Approfondissement du mécanisme réactionnel et détermination des constantes de vitesse des différentes 

étapes. 

2 Utilisation de la chymotrypsine pour sonder la structure tertiaire d'une protéine 

Intérêt d’une protéolyse ménagée. 

Visualisation des résultats sur un gel de poly-acrylamide de type SDS-PAGE-Tricine. Quantification des 

résultats par un logiciel d'analyse d'image (ImageJ). 

STRUCTURE et BIO-INFORMATIQUE : 2 JOURS 

1 Etude structurale de l’Alcool-Déshydrogénase (ADH) 

Etude de la cinétique de digestion de l’ADH par la trypsine. 

Analyse des fragments obtenus par électrophorèse en conditions dénaturantes sur gel de polyacrylamide 

(SDS-PAGE). 

Analyse des spectres de masse correspondant aux différents temps de digestion trypsique. 

Comparaison des résultats expérimentaux aux prédictions établies à partir de la séquence de l’ADH. 

Analyse du spectre de masse obtenu pour une digestion complète de l’ADH par la trypsine (mass peptide 

finger-printing). 

Spectre de fragmentation d’un des peptides issus de l’ADH par MS-MS et reconstitution de sa séquence. 

2 Traitement informatique des données 

Analyse des séquences primaire et secondaire et caractérisation de la structure tridimensionnelle des ADH. 

Recherche dans les banques de données de la carte d’identité de l’ADH (code Swiss Prot, séquence 

consensus….). 

Recherche de protéines homologues. 

Alignement de séquences des protéines homologues. 

Prédiction de structures secondaires des protéines homologues. 

Structure 3 D sous Rasmol, degré d’oligomérisation, visualisation du NADH et du zinc catalytique ou 

structural, accessibilité des peptides obtenus lors de la digestion ménagée de l’ADH par la trypsine…. 

MÉTABOLISME : 2 JOURS 

Etude du métabolisme oxydatif de la levure de boulangerie 

Mesure de la vitesse de respiration des cellules entières. 

Préparation des mitochondries de levure et de fractions sub-mitochondriales. 

Vitesse de respiration des mitochondries et des fractions. 

Action des inhibiteurs. 

Localisation de la phosphorylation oxydative et de l’ordre des complexes de la chaîne respiratoire. 

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IMMUNOLOGIE : 1,5 JOURS 

Purification d’immunoglobulines. Analyses quantitative et qualitative du matériel purifié. 

BIOLOGIE MOLÉCULAIRE : 2 JOURS 

Transformation bactérienne : Sélection par α-complémentation. 

Etablissement de cartes de restriction : Orientation d’un insert de plasmide recombinant. 

CHIMIE ORGANIQUE : 2 JOURS 

Les TP de Chimie ont pour but de familiariser les étudiants avec les méthodes de la synthèse organique : 

Préparation et purification des réactifs, conduite des réactions, séparation et identification des produits par 

leurs caractéristiques physiques. 

Les méthodes physiques telles que spectroscopies IR, UV, chromatographie, sont introduites et utilisées par 

les étudiants. 

Synthèse de la cholest-5-èn-3-one. 


Contrôle continu : 100% 

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L3 S6 : Second semestre 

UE obligatoires (UE E) : 6 ECTS 

Parcours spécifique BBM 

Parcours spécifique BEE 

UFR Sciences du Vivant : Bâtiment Lamarck - Case 7044 

35 rue Hélène Brion - 75205 Paris Cedex 13 

Scolarité : Marie CHARGELÈGUE 

e-mail : marie.chargelegue@univ-paris-diderot.fr 

01 57 27 82 30 

Directrice des Etudes : Josiane WANTYGHEM 

e-mail : josiane.wantyghem@univ-paris-diderot.fr 

01 57 27 82 51 




Parcours BIOCHIMIE et BIOLOGIE MOLÉCULAIRE 


ÉCONOMIE de l’ENTREPRISE 

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48 AN 3336 ANGLAIS SCIENTIFIQUE (ECUE 1) 3 ECTS 

Responsable de l’UE : Mme Carole CHAMPANHET 

Cet enseignement est obligatoire 

Cours : 22 heures 2 x 3 Groupes de niveau (test obligatoire) 

Mardi 16 h 30 - 18 h 30 Jeudi 17 h - 19 h 

Ces cours sont donnés au second semestre. Ils sont hebdomadaires à raison de deux heures consécutives. Un 

test de niveau (obligatoire) sera organisé pour constituer les groupes. 

CONTENU PÉDAGOGIQUE 

Dans le cadre de cet enseignement, les étudiants vont : 

- apprendre à faire un exposé sur un sujet général ou scientifique, 

- s’exercer à participer à une discussion à partir d’un exposé, 

- enrichir leur vocabulaire général et scientifique (autour des thèmes tels que movement and change, 

frequency, structures and processes, ainsi qu’à partir de la presse anglo-saxonne : Scientific American, 

Discover, etc), 

- approfondir leurs connaissances grammaticales, 

- s’exercer à la compréhension orale à partir d’exposés scientifiques donnés par des anglophones (audio- et 

vidéo-cassettes, BBC), 

- apprendre à rédiger dans le style scientifique anglais. 

Tous les étudiants, quel que soit leur niveau, suivront le même programme pédagogique dont l’objectif le 

plus concrètement visé est de développer les capacités nécessaires pour la participation aux conférences 

scientifiques en anglais et à un séjour professionnel dans un pays anglophone. La consolidation et le 

développement des connaissances grammaticales s’effectueront dans le cours de niveau moins élevé. 

BIBLIOGRAPHIE (obligatoire) 

Minimum Competence in Scientific English (Sue BLATTES, Véronique JANS, Jonathan UPJOHN) 

Collection Grenoble Sciences, nouvelle édition 2003, 2004. 

MODALITÉ d’ÉVALUATION 

Examen : 50% 


Modalités du Contrôle continu (50% de la note) 

1 - Expression orale (Coefficient 2) : Chaque étudiant fera une présentation orale d’environ quinze minutes, 

à partir d’un article de presse portant sur un sujet d’intérêt général ou scientifique, tirés, par exemple, de : 

The New York Times, Science Section ; The Guardian Science and Technology ; Newsweek Science Section ; 

Scientific American, Discovery ; etc. Les étudiants ne doivent pas « avoir le nez » dans leurs notes mais 

peuvent utiliser un transparent (quelques mots-clés indiquant les différentes parties de l’exposé, avec 

éventuellement un graphique ou un dessin…). 

La participation dans la période de questions/réponses (5 minutes) après la présentation sera également prise 

en compte pour attribuer la note finale d’expression orale. 

2 - Contrôles de vocabulaire et grammaire (Coefficient 1) : Plusieurs contrôles sous forme « tests à trous » 

seront effectués pour évaluer l’assimilation du vocabulaire du livre Minimum Competence in Scientific 

English (MCSE). 

3 - « Reaction paper » (Coefficient 2) : résumé + discussion d’un article de presse choisi par l’étudiant. 

Si l’étudiant n’a pas choisi un sujet à caractère scientifique pour l’exposé, il convient qu’il le fasse pour le 

« reaction paper », et réciproquement. 

Devoir sur table en fin de semestre (50% de la note) 

1 - Le devoir sur table comportera une réévaluation du vocabulaire et de la grammaire étudiés pendant le 

semestre à partir de MCSE (traductions, fill in the blanks). 

2 - Il comportera aussi la rédaction d’un bref essai écrit (250-300 mots), à partir de la lecture d’un article 

scientifique. L’étudiant montrera qu’il a assimilé le vocabulaire et les expressions nécessaires pour s’exprimer 

dans un contexte scientifique professionnel. 

15


30 BMBI 36 BIO-INFORMATIQUE (ECUE 2) 3 ECTS 

Enseignants : J-C. Gelly, S. Pasquali 

Cours : 10 heures - TD : 4 heures - TP : 8 heures 

Responsable de l’UE : Mme Samuela PASQUALI 

Cet enseignement est obligatoire. 

L’objectif de cet enseignement est d’initier l’étudiant à quelques principes de la bio-informatique, 

notamment la recherche de propriétés biologiques sur les serveurs WEB. 


1 La bio-informatique : 2 heures 

Pour quoi faire ? 

2 Fondements : 2 heures 

Matrices 

Scores 

Alignements 

3 Bases de données biologiques : 4 heures 

Swiss-Prot 

Genbank 

prosite 

Prodom 

PDB 

PFAM 

Bases de génomes 

4 Recherche d’homologie et fonctions biologiques : 2 heures 


Alignement de séquences 

Scores ; E-values et P-values ; Lois de distribution 

TRAVAUX PRATIQUES sur ORDINATEUR 

Les TP se déclinent sous forme d’un projet et visent essentiellement les deux points suivants : 

Alignements de séquences 

Recherche de fonctions et homologies 

MODALITÉS d’ÉVALUATION 

Cours : 60% 

TP : 40% 

16



COMPLÉMENT de FORMATION : 12 ECTS (UE F) 

AU CHOIX l’une des options suivantes : 

Biologie quantitative (30 UFBQ 36) 

Chimie du Vivant (30 UFCH 36) 

Physiologie cellulaire et intégrative (30 UFPH 36) 

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30 UFBQ 36 BIOLOGIE QUANTITATIVE 12 ECTS 

Responsable de la filière : Mme Anne BADEL 

Cet enseignement est obligatoire dans l’UE F : Complément de formation de Biologie quantitative du parcours 

BBM. 

L’UE Biologie quantitative comporte un enseignement de statistique de base [30BMB336] et deux éléments 

plus spécifiques, [30BMB136] qui introduit les méthodes de modélisation et d’analyse des modèles mathématiques 

simples et [30BMB236] qui fournit des éléments de base en Bio-informatique moléculaire et en 

analyse de séquences. 

Les étudiants intéressés par cette formation peuvent s’orienter ensuite vers les Masters de Biologie- 

Informatique, In silico Drug Design et de Bio-Mathématiques (Paris 6 - Paris 7). 

30 BMB 136 MODÉLISATION des SYSTÈMES BIOLOGIQUES 4 ECTS 

Responsable : M. Selim ESKIIZMIRLILER 



L'informatique est maintenant un outil du quotidien du biologiste. D'une part, l'abondance des données 

générées par les techniques à haut débit (puces à ADN, spectroscopie de masse, banques de données, traitement 

et analyse des images biologiques, etc.) oblige les biologistes à travailler avec des logiciels plus 

spécifiques et de plus en plus sophistiqués, d'autre part, le savoir faire des méthodes de modélisation et de 

simulation - réservé jusqu'à récemment à l'usage des ingénieurs pour la conception et/ou la production des 

produits industriels - devient aussi de plus en plus indispensable pour l'étude et l'analyse et ainsi pour la 

compréhension des phénomènes naturels. 

Ce cours présente, avant tout, les notions de programmation en informatique utiles pour parvenir à cette 

capacité de traiter les grands jeux de données, et aussi pour formaliser ces connaissances au sein des modèles 

fondés sur les principes mathématiques et physiques en vue de les employer dans la modélisation et la 

simulation du fonctionnement (comme le bactériophage, la division cellulaire, la génération des potentiels 

d'action par des neurones, etc.) et/ou du comportement (évolution dans le temps, réponse aux changements 

des conditions environnementales, etc.) des systèmes biologiques. Dans ce but, la révision des méthodes 

numériques de résolution des équations et des systèmes d’équations différentielles sera faite en parallèle avec 

l'apprentissage et les applications en langages Python et Scilab, les plus utilisés actuellement en bioinformatique. 

PROGRAMME des TRAVAUX DIRIGÉS (en Salle d’informatique) 

Un point important de cet enseignement est d'accorder une large part à la pratique afin de permettre à l'étudiant 

d'acquérir son autonomie. Ainsi, chaque séance de cours est suivie d'une séance de TP sur ordinateur. 

Attention, l'apprentissage d'un langage informatique demande un travail régulier, aussi cet enseignement 

s'appuie sur des outils de suivi à distance (via l'ENT de l'Université) et demande un travail assidu et continu. 

La notation est obtenue par un contrôle continu et la réalisation d'un projet final. 


Examen : 70% 

TP : 30% 

30 BMB 236 ANALYSE du GÉNOME 4 ECTS 

Responsable : Mme Delphine FLATTERS 

Cet enseignement est obligatoire dans l’UE F : Complément de formation de Biologie quantitative du parcours BBM. 

Enseignants : D. Flatters, D. Casane, G. Moroy 

Cours : 16 heures - TD : 16 heures - TP : 2 x 3 heures 

Les 2 séances de travaux pratiques ont lieu en fin de semestre en salle informatique. 

Objectif : L’enseignement dispensé dans le cadre de ce module a pour but de donner une formation de base 

aux étudiants dans le domaine de l’analyse de séquences biologiques (nucléiques ou protéiques). Les principales 

méthodes bio-mathématiques et bio-informatique de recherche de motifs, d’alignement de séquences, 

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de modèles d’évolution moléculaire et de construction d’arbres phylogénétiques y sont abordées. Ces notions 

de base permettront aux étudiants de mieux appréhender le domaine de la bio-informatique génomique. 


Recherche de motifs et alignement de séquences 

Rappel de probabilités et alignement de séquences 

Recherche de motifs par la méthode de hachage 

Statistiques des mots répétés ou en commun 

Alignements global ou local 

Modèles d’évolution moléculaires et distances génétiques 

Modèle à un paramètre de Jukes et Cantor 

Modèle à deux paramètres de Kimura 

Construction d’arbres phylogénétiques 

Méthodes basées sur les distances : UPGMA, Neighbor Joining 

Méthodes de parcimonie. 




TP : 20% 


30 BMB 336 STATISTIQUES pour BIOLOGIE 4 ECTS 

Responsable : Mme Anne BADEL 

Cet enseignement est obligatoire dans l’UE F : Complément de formation de Biologie quantitative du parcours 

BBM ou peut constituer une UE libre du parcours BBM. 

Enseignants : A. Badel, R. Poncet 

Cours : 10 x 1 heure 30 - TD : 13 x 2 heures 

Les travaux dirigés ont lieu en salle informatique (SCRIPT). 

Objectifs : L’enseignement dispensé dans le cadre de ce module a pour but de donner une formation de base 

aux étudiants dans le domaine des statistiques appliquées à la biologie. Le programme de statistiques et de 

probabilités doit permettre aux étudiants de comprendre, d’appliquer et d’interpréter correctement les méthodes 

fondamentales de ce domaine. 


Probabilités et statistiques 

Rappel de probabilités (processus probabilistes, lois discrètes et continues). 

Notion de variabilité. 

Intervalle de confiance des variables. 

Théorie des tests 

Test de conformités (processus probabilistes, lois discrètes et continues) 

Tests du χ2 

Analyse de variance. Plans factoriels 

Coefficient de corrélations et régression linéaire. 

Statistiques avancées 

Régression linéaire 

Régression linéaire multiple 

Régression logistique 

Pratique d’un logiciel statistique : Application à l’analyse d’un jeu de données sous forme de projet. 


Cours : 40% 


TP : 30% 

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30 UFCH 36 CHIMIE du VIVANT 12 ECTS 

Responsable de la filière : Mme Nawal SERRADJI 

30 BMC 136 BIO - MOLÉCULES 3 ECTS 

Synthèse - Structure - Réactivité - Applications 

Responsable : M. Aazdine LAMOURI 

Cet enseignement est obligatoire dans l’UE F : Complément de formation de Chimie du Vivant du parcours 

BBM ou peut constituer une UE libre du parcours BBM. 

Enseignants : A. Lamouri 

Cours : 10 heures - TD : 20 heures 


1 Les sucres 

Classification. 

Corrélation de configuration et réactions caractéristiques. 

Structure hémi-acétal et représentations. 

Chimie des monosaccharides, oligo-, homo- et hétéro-polysaccharides. 

Les monosaccharides considérés comme pourvoyeurs de synthons en synthèse asymétrique. Exemple de 

synthèse. 

Applications industrielles. 

2 Synthèse peptidique 

Détermination des structures primaires des polypeptides : Principe et mécanismes réactionnels. 

Synthèse peptidique en phase liquide et en phase solide. 

Applications. 

3 Nucléosides - Nucléotides - Acides nucléiques 

Rappels sur les constituants des acides nucléiques. 

Méthodes des synthèses d’oligo-nucléotides en phase solide. 

Applications. 

4 Les lipides 

Définition, classification, extraction. 

Des glycérides aux glycéro-phospholipides : Stratégies de synthèse. 

Les phospholipases. 

Les médiateurs de l’inflammation issus du métabolisme des phospholipides membranaires (cascade de 

l’acide arachidonique, prostaglandines, leucotriènes, Platelet-Activating Factor). 

La lactone de Corey et la synthèse de PGE2 et PGF2-α. 

5 Les terpènes 

Définition, classification. 

Biosynthèse du cholestérol et des hormones stéroïdiennes. 

Synthèse chimique des stéroïdes. 

Recherche bibliographique 

Rapport sur des publications scientifiques : Un travail bibliographique est réalisé par binôme d’étudiants sur 

un sujet relatif aux bio-molécules ou aux médicaments. Il est présenté sous forme de document écrit, illustré 

principalement par des synthèses chimiques. 


Examen : 70% 

Rapport bibliographique : 30% 

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30 BMC 236 TRAVAUX EXPÉRIMENTAUX PERSONNALISÉS 3 ECTS 

De la molécule au médicament 

Coordinatrice : Melle Nawal SERRADJI 


BBM. 

Enseignants : N. Serradji, A. Lamouri, CZ. Dong 

Pourquoi une UE expérimentale de Chimie ? 

Les Travaux expérimentaux personnalisés (TEXP) permettront à l’étudiant d’acquérir une formation dans les 

techniques expérimentales spécialisées de différents domaines de la Chimie. Ce travail pourra être réalisé en 

binôme ou individuellement et comporte plusieurs points forts : lecture de publications, mise en œuvre expérimentale, 

interprétation des résultats, rédaction d’un rapport, présentation lors d’une très brève soutenance. 

Quel intérêt dans un cursus de Biochimie ? 

Les TEXP sont proposés sur la thématique « de la molécule au médicament ». 

Ces projets permettront aux étudiants de mettre en pratique les grandes réactions de la chimie organique, les 

techniques d’analyse et de purification classiques pour obtenir des composés d’intérêt pharmacologique. 

Organisation pratique : Répartition des 3 ECTS la semaine du 04-04-2011 

3 heures de travail personnel : lecture de un à trois articles bibliographiques fournis par l’enseignant 

chercheur qui propose le thème du travail expérimental. L’étudiant lit ces documents et élabore un protocole 

expérimental qu’il fait valider par l’enseignant. 

24 heures de travail expérimental au service de TP de Chimie, réparties en 3 journées de 8 heures (lundi, 

mardi et mercredi). 

Sur un groupe de 24 étudiants (fréquentation moyenne de la filière Chimie) répartis dans trois salles de TP, 

on peut concevoir de réaliser entre 4 et 6 projets expérimentaux différents. 

3 heures de présentation des manipulations devant tout le groupe d’étudiants (Vendredi 08/04/11 matin). 


70% de la note attribuée au compte rendu et à l’expérimentation 

30% de la note attribuée à la présentation orale du travail expérimental. 

30 BMC 336 PHYSICO-CHIMIE EXPÉRIMENTALE 6 ECTS 

Responsable : M. Mohamed JOUINI 


BBM. 

Enseignants : M. Jouini, S. Aeiyach 

Cours : 22 heures - TD : 22 heures - TP : 2 x 8 heures 

COMPÉTENCES VISÉES 

Accès aux informations relatives aux structures des molécules et particulièrement à celles des bio-molécules 

par la technique adéquate : élucidation partielle (parties fonctionnelles) ou totale des structures. 


Notions fondamentales et applications des spectroscopies : 

optique (UV, visible), de fluorescence, de phosphorescence, IR, Raman, Dichroïsme circulaire. 

de résonance (RMN, RPE). 

de masse. 

MODALITÉS D’ÉVALUATION : 

Examen : 50% 


TP : 20% 

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30 UFPH 36 PHYSIOLOGIE CELLULAIRE et INTÉGRATIVE 12 ECTS 

Responsable de la filière : Mme Virginie ROUILLER-FABRE 

30 BMP 136 PHYSIOLOGIE des GRANDES FONCTIONS 4 ECTS 

Responsables : Anne WIJKHUISEN et Hervé LE STUNFF 

Cet enseignement est obligatoire dans l’UE F : Complément de formation de Physiologie cellulaire et intégrative 

du parcours BBM. 

Enseignants : V. Rouiller-Fabre, A. Wijkhuisen, J-S. Silvestre, H. Le Stunff, M. Amar 

Cours : 22 heures - TD : 8 heures + Exposés (Travail personnel + présentation) : 10 h 


Sang - Hémostase 

Physiologie cardiaque 

Physiologie vasculaire 

Exemple de physiologie intégrée : La régulation de la pression artérielle 

Physiologie de la respiration 

Physiologie rénale 

Régulation des équilibres hydrique, électrolytique et acido-basique. 




Exposés : 15% 

30 BMP 236 ENDOCRINOLOGIE GÉNÉRALE 4 ECTS 

Responsable : M. Christophe MAGNAN 

Cet enseignement est obligatoire dans l’UE F : complément de formation de Physiologie cellulaire et intégrative 


Enseignants : C. Magnan, J. Corvisier, C. Cruciani, C. Tourel 

Cours : 16 heures - TD : 6 heures - TP : 2 jours 


Place de la signalisation endocrine dans les systèmes d’intégration de l’organisme. 

Contrôle de la synthèse et de la libération des hormones. 

Interaction entre hormones et cellule - cibles. 

Exemples illustrant les modalités de la signalisation endocrine : métabolisme énergétique, métabolisme 

phospho-calcique. 

PROGRAMME des TRAVAUX DIRIGÉS et de TRAVAUX PRATIQUES 

TD 1 : Notion de K D, Vmax, liaison aux récepteurs. 

TD 2 : Effet biologique de l’insuline. 

TD 3 : Effet biologique des catécholamines, corticoïdes et hormones thyroïdiennes. 

TP : Contrôle du métabolisme glucidique et lipidique par les corticoïdes. 




TP : 15% 

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30 BMP 336 PHYSIOLOGIE de la REPRODUCTION 4 ECTS 

Responsable : M. René HABERT 

Cet enseignement est obligatoire dans l’UE F : Complément de formation de Physiologie cellulaire et intégrative 


Enseignants : R. Habert, V. Rouiller-Fabre, G. Livera, C. Racine, V. Simon. 

Cours : 18 heures - TD : 8 heures - TP : 1 jour et demi. 


La sexualité et la sexualisation 

La physiologie de la reproduction masculine 

La physiologie de la reproduction féminine 

La maîtrise de la reproduction humaine 

PROGRAMME des TRAVAUX DIRIGÉS et TRAVAUX PRATIQUES 

TD : Analyse de résultats expérimentaux et illustration du cours 

TP : Contrôle endocrine des fonctions différenciées de la cellule de Leydig adulte. 




TP : 15% 

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ÉCONOMIE de l’ENTREPRISE 


FILIÈRE de SPÉCIALITÉ : 18 ECTS (UE F) 

Biotechnologie majeure 

ou Economie de l’Entreprise majeure 

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L’objectif des deux filières du parcours BEE est de permettre l’acquisition de compétences en Biotechnologies 

et en Economie de l’Entreprise. Cette orientation qui tend vers une bi-compétence est un atout pour 

une future insertion professionnelle des étudiants biochimistes. 

Dans l’option Biotechnologie majeure, les trois UE de Biotechnologie (11 ECTS) sont obligatoires. Elles 

sont associées à deux UE d’Economie (7 ECTS) avec trois combinaisons possibles en tenant compte de la 

capacité d’accueil limitée pour l’Economie générale (Jeu de l’île) : 

(1) Economie de l’entreprise (30 BEEC 36 = 4 ECTS) + Economie générale (30 BEJI 36 = 3 ECTS) 

(2) Economie de l’entreprise (30 BEEC 36 = 4 ECTS) + Marketing 2 (30 BEMK 26 = 3 ECTS) 

(3) Marketing 1 (BEMK 16 = 4 ECTS) + Economie générale (30 BEJI 36 = 3 ECTS) 

Dans l’option Economie de l’Entreprise majeure, les trois UE d’Economie sont obligatoires ainsi que les 

UE Biotechnologie I et II. 

Ce parcours, au même titre que le parcours BBM, est bien adapté à la poursuite d’études dans les Masters 

(recherche ou pro) BC2T et IMVI de l’UFR Sciences du Vivant. 


30 UF BT36 BIOTECHNOLOGIE MAJEURE 18 ECTS 

Responsable de la filière : Mme Dominique Buffard 

Depuis la fin du XX e siècle, les biotechnologies ont connu un essor considérable. Les UE théoriques de Biotechnologie 

s’attachent à montrer comment les différentes disciplines des Sciences du Vivant - biologie 

moléculaire, biochimie, génétique, physiologie - mises en œuvre de manière coordonnée, ont permis des 

avancées majeures dans divers domaines tels que : santé, agronomie, environnement, énergie, industries 

agro-alimentaires et pharmaceutiques. 

Dans l’option « Biotechnologie majeure », elles sont associées à un solide apprentissage expérimental 

(Biotechnologie appliquée) réalisé sur deux semaines dans des conditions proches de celles rencontrées en 

laboratoire. Les thèmes abordés : « Diagnostic génotypique de la mucoviscidose » et « Production d’une 

protéine recombinante (HSP) de Plasmodium » complètent les éléments de cours et permettent de se 

confronter aux problèmes de mise en œuvre de techniques telles que la PCR. 

30 UF EC36 ECONOMIE MAJEURE 18 ECTS 

Responsable de la filière : Mme Annie Piffeteau 

Cet enseignement, rarement rencontré dans les formations universitaires scientifiques, est bien établi et 

reconnu. Il évolue avec l’actualité. Cette filière ne nécessite aucun pré-requis en économie. 

Notre objectif est de faire acquérir aux étudiants scientifiques non-spécialistes une réelle connaissance de 

l’entreprise et un complément de formation qui facilitera leur insertion professionnelle et, à court terme, leur 

entrée dans le Master de leur choix. 

En M2, certains étudiants renforcent cette double compétence de scientifique et d'économiste et intègrent des 

formations spécialisées d’Ecoles de commerce. 

En Licence, l'enseignement est constitué de trois modules différents : Economie générale ou jeu de l’île, Economie 

de l'Entreprise et Marketing approfondi appliqué aux Bio-industries. Il peut être complété en Master 

IMVI ou BC2T par un enseignement de « Gestion de l’Entreprise : Analyse financière de projets ». 

L’UE de Marketing peut également faire partie du cursus de M1 BC2T et IMVI. 

L'enseignement est assuré essentiellement par des professionnels extérieurs à l'Université, choisis pour leurs 

compétences dans le domaine concerné et par quelques universitaires économistes industriels. 

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30 BEBT 16 BIOTECHNOLOGIE I : Les grands axes des Biotechnologies 4 ECTS 

Responsable : Mme Jacqueline London 

Cet enseignement est obligatoire dans l’UE F du parcours BEE. 

Enseignants : D. Buffard, J. London, P. Régnier, V. Régnier 

Cours - TD : 30 heures Dossier bibliographique 

PROGRAMME des COURS - TD 

1 : Biotechnologie végétale 

Particularités de la cellule végétale et applications biotechnologiques : Paroi et pâte à papier, ADN mitochondrial 

et stérilité mâle cytoplasmique. 

Les cultures in vitro et leur place dans un programme de sélection : Fusion de protoplastes, cultures 

d’embryons immatures, cultures d’anthères, embryogenèse somatique. 

Les techniques de transfert de gènes : Transfert direct et transfert par Agrobacterium. 

Les plantes transgéniques actuelles : Résistances aux herbicides, aux insectes, aux virus. 

Les potentialités des plantes transgéniques. 

Les bio-carburants. 

2 : Biotechnologie animale 

Notions de mutations et mode de transmission des mutations. 

Maladies mono-génétiques, pluri-génétiques et multi-factorielles ; analyse des mutants. 

Obtention de modèles pour l’étude de mutants naturels : transgénèse. 

Invalidation de gènes dans différents organismes : Drosophile, C. elegans, souris. 

Maladies métaboliques : Déficit enzymatique et mucoviscidose. 

Les myopathies de Duchenne, les cardiomyopathies. 

3 : Microorganismes et enzymes d’intérêt industriel 

Microorganisme d’intérêt industriel : Production industrielle de métabolites. 

Fermentations : Production d’éthanol. 

Enzymes d’intérêt industriel et industrie agro-alimentaire. 

4 : Ethique et Biotechnologie 

Notions d’Ethique et de Bioéthique. 

Législation française en matière d’Ethique. 

Tests génétiques. 

Diagnostic prénatal et pré-implantatoire des maladies génétiques. 

Plantes génétiquement modifiées. 



Contrôle continu y compris Dossier bibliographique : 40% 

30 BEBT 36 BIOTECHNOLOGIE I (option) 3 ECTS 

Cet enseignement peut constituer une UE libre du parcours BBM. 

Programme identique à celui de Biotechnologie I sans dossier bibliographique 




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30 BEBT 26 BIOTECHNOLOGIE II : Stratégies et Méthodologies 3 ECTS 

Responsable : Mme Dominique Buffard 

Cet enseignement est obligatoire dans l’UE F de la filière de spécialité du parcours BEE. 

Enseignants : D. Buffard, A. Goarin, P. Lafaye, J. London, I. Verstraete. 

Cours : 20 heures - TD : 10 heures 

PROGRAMME DES COURS - TD 

1 : Génie génétique et génomique 

Etude de l’expression des gènes : Aspects quantitatifs (Northern, RT-PCR et PCR quantitative). 

Génomique des microorganismes : Séquençage, transcriptome, protéome. 

∗ Applications : Le métabolisme carboné de Lactococcus lactis. 

Application de la technologie des puces : 

∗ à la détection de nouvelles stratégies médicamenteuses. 

∗ au suivi thérapeutique (mucoviscidose, cancers...). 

Génomique fonctionnelle végétale : Création et étude de mutants par insertion de T-ADN 

2 : Production 

Production de métabolites secondaires par les plantes : Utilisation de cellules en culture, hairy-roots, 

élicitation. 

Immunotechnologie 

∗ Production d’anticorps monoclonaux à usage thérapeutique 

∗ Problème de l’immunogénicité des fragments murins : 

anticorps humanisés, sélection de Fab humains par phage display. 

Utilisation thérapeutique des anticorps monoclonaux. 

Production d’anticorps par les plantes. 

3 : Traçabilité, sécurité alimentaire et sanitaire 

Détection des plantes transgéniques : Gènes de résistance « marqueurs » de transformation, promoteur du 

transgène, produit du transgène. 

Diagnostic microbiologique : Techniques de biologie moléculaire et applications à la détection de contaminations 

dans le domaine alimentaire. 


Examen : 70% 


30 BETBT6 BIOTECHNOLOGIE EXPÉRIMENTALE 4 ECTS 

Responsable : Mme Vinciane RÉGNIER 

Cet enseignement est obligatoire dans l’UE F de la filière Biotechnologie majeure du parcours BEE. 

Enseignants : V. Joliot, V. Régnier 

PROGRAMME des TRAVAUX PRATIQUES : sur 2 semaines 

* Mise en œuvre de quelques techniques fondamentales d’analyse de l’ADN. 

Application au génotypage de deux loci appartenant au gène CFTR ou lui étant génétiquement 

liés : Diagnostic génotypique de la mucoviscidose. 

* Analyses d’interactions protéine-protéine. 

Application à l’étude de l’interaction entre la protéine de l’hétéro-chromatine HP1α et le facteur de 

transcription myoD. 


Contrôle continu : 100% 

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30 BEEC 36 ÉCONOMIE de l’ENTREPRISE 4 ECTS 

Responsable : Mme Annie Piffeteau 

13 Conférences de 2 heures (Jeudi 17-19 h) + travail de chargé d’étude en entreprise. 

Les conférences sont assurées par des professionnels, spécialistes du domaine concerné. 


Présentation de l'entreprise, de ses grands secteurs et des fonctions qui s’y rattachent 

Introduction au Marketing. 

La Recherche-Développement - La production. 

La conduite de projet. 

Formation au développement durable et assurance Qualité. 

Le recrutement, le projet professionnel. 

La recherche d’emploi : une démarche marketing. 

La Gouvernance d’entreprise. 

La Propriété industrielle. 

Les juniors-entreprises et la bi-compétence. 

La création d’entreprise. 


Connaissance des fonctions, des enjeux et de la structuration de l’entreprise racontée par ceux qui y travaillent. 

Développement de l’initiative, du travail de groupe par l’étude et l’analyse d’un problème concret, 

technique et économique sur le terrain d’une entreprise. 

Apprentissage de la rédaction claire et synthétique et de l’argumentation orale de propositions de 

solutions. 


Etude en entreprise 

Elle consiste en une étude qui analyse et apporte des solutions techniques et économiques à un problème 

précis qui se pose à une entreprise. Cela peut consister en une étude de marché ou en un problème de 

production, de propriété industrielle, de ressources humaines, de logistique... Les étudiants, par groupes de 2 

ou 3, jouent le rôle de chargés d’étude. Ils recherchent eux-mêmes leur sujet en contactant des sociétés et en 

présentant leur savoir-faire. 

Le suivi de ce sujet de travail est assuré par Mme Annie Piffeteau qui guide les étudiants sur la durée du 

semestre. 

La rédaction de l'étude et la soutenance orale devant un jury comprenant un professionnel sont prises en compte pour la 

note finale d’examen. 

30 BEEC 46 ÉCONOMIE de l’ENTREPRISE (en option) 3 ECTS 

En fonction des places disponibles, cette UE peut être prise en UE optionnelle de pré-professionnalisation ou 

libre (ECTS 30 BEEC 46 = 3 ECTS). 

Programme identique à celui de 30 BEEC36. 

Le volume et la difficulté de l’étude en entreprise seront aménagés afin que la charge de travail corresponde 

à 3 ECTS. 


Identiques à celles de 30 BEEC 36 

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30 BEMK 16 MARKETING APPLIQUÉ aux BIO-INDUSTRIES 4 ECTS 

(MARKETING 1) 

Responsables : Mme Annie Piffeteau et M. Philippe Cazes, professionnel 

L’enseignement Marketing 1 est obligatoire dans l’UE F de la filière Economie majeure du parcours BEE. 

Cours et Conférences : 30 heures - Etude de cas : 12 heures 


Cet enseignement est composé de trois cycles spécifiques comprenant chacun des cours - conférence, le 

témoignage d’un professionnel et une étude de cas par thème. 

Les thèmes de ces trois cycles sont : 

1 : Les études de marché 

Les études documentaires et les banques de données. 

Etudes qualitatives. Etudes quantitatives : sondages, panels.… 

La segmentation dans l’analyse de marché. 

2 : La stratégie 

La fixation des objectifs. 

Le marketing-mix. 

Plan de marketing et plan d’action commerciale. 

Les outils du contrôle de la progression. 

3 : La mise en place de la stratégie 

Le choix et l’animation des circuits de distribution. 

Le management des forces de vente. 

La stratégie de communication. 

L’enseignant coordonnateur, M. Philippe CAZES, est un professionnel ayant une expérience de formateur à 

l’ADETEM (Association Nationale du Marketing). Il est accompagné de professionnels en marketing. 


La consistance, le volume et le niveau de l’apprentissage du Marketing ainsi que la compétence des professionnels 

font de cette UE une véritable formation dans la discipline qui peut être développée par la suite. 

Cette UE est habilitée à la fois en L3 et en Master. Les exemples en bio-industries s’intègrent parfaitement à 

notre domaine scientifique. 


Examen : 60% 


Les trois études de cas, menées en groupes sur place, sont notées et constituent 40% de la note d’examen 

(contrôle continu) et l’examen final écrit 60%. 

30 BEMK 26 MARKETING APPLIQUÉ aux BIO-INDUSTRIES 3 ECTS 

(MARKETING 2) 

L’enseignement Marketing 2 est proposé comme UE de 3 ECTS de la filière Biotechnologie majeure du parcours 

BEE. 

Programme identique à celui de Marketing 1 (30 BEMK 16) 

Seules les études de cas des thèmes 1 et 3 seront obligatoires. 


Examen : 60% 


29


30 BEJI 36 ÉCONOMIE GÉNÉRALE : JEU de l’ÎLE 3 ECTS 

Responsables : Mme Annie Piffeteau et Mme Anne Corcos, Professeur d’Economie industrielle 

(Université de Picardie) 

Cet enseignement se déroule sur une semaine en continu (35 heures) sous forme d’un jeu, le « jeu de 

l’île », dans une salle spécialement affectée. 

Un effectif de 18 à 21 étudiants (6-7 x 3 groupes) est l’idéal pour une bonne dynamique du jeu. 

PROGRAMME 

L’objectif est de faire découvrir et comprendre les mécanismes économiques fondamentaux, de faire 

acquérir le vocabulaire économique de base par un jeu d'initiation, « le jeu de l'île », qui se déroule sur 

quatre jours, en une vingtaine de séquences. Les étudiants y tiennent les rôles de producteurs, de 

consommateurs, d’entrepreneurs et de financiers. Un retour sur le jeu a lieu le cinquième jour pour amorcer 

la réflexion et la rédaction. 

Au cours du jeu sont abordées les phases successives d'autarcie, d'échanges, de troc, les introductions de 

la monnaie et de la banque, de l'Etat, de la Bourse, de l'entreprise et du salariat. Seront assimilées les 

notions de marché, de consommation finale, de consommation intermédiaire, de produit net, de coût de 

production, d'investissement, de financement.… 


Acquérir le vocabulaire économique de base et la compréhension de l’évolution du contexte économique 

afin de faciliter l’insertion dans cette réalité économique. 

Prendre des décisions en groupe et analyser les répercussions de cette prise de décision sur la collectivité 

environnante. 

Les deux enseignants responsables encadrent les étudiants à plein temps. 


Rédaction d'un mémoire racontant l'histoire économique de la zone au cours de la semaine analysant des décisions 

prises au cours du jeu et évaluant les conséquences de l'une de ces décisions. 

Recherche dans la presse écrite d’un ou plusieurs articles illustrant les notions acquises dont les analogies 

avec les phases du jeu seront dégagées. 

30





UE APPROFONDIES 

L3 S6 - Second semestre 

UE APPROFONDIES (UE G) 

3 au choix pour le parcours BBM soit 9 ECTS 

2 au choix pour le parcours BEE soit 6 ECTS 

31


30 BMVI 36 IMMUNOLOGIE - MICROBIOLOGIE - VIROLOGIE 3 ECTS 

Responsable de l’UE : Mme Mireille Viguier 

Cet enseignement est proposé comme UE approfondie dans le parcours BEE et BBM ou comme UE libre dans le 

parcours BBM. 

MICROBIOLOGIE 

Enseignants : O. Dussurget, K. Moncoq, O. Soutourina 

PROGRAMME des COURS (Mercredi matin : 5 x 2 h) 

1 : Les bactéries dans le monde du vivant : La notion d’espèces bactériennes. 

2 : Les bactéries et le cycle de l’azote : Un exemple d’écosystème et d’un métabolisme symbiotique. 

3 : Les bactéries et l’homme : Commensalisme, pathogénicité, virulence…. 

4 : Génétique bactérienne : Bactériophages, plasmides, intégrons et autres. 


TD 1 : Métabolisme 

TD 2 : Génétique 




VIROLOGIE 

Enseignants : S. Van Der Werf, PE. Ceccaldi, I. Leclercq, D. Moisy, E. Petit-Koskas 


1 : Poliomyélite, Hépatite A, Méningites virales, Rhumes….. : Les Picornavirus. 

Structure, cycle, classification, pathologies associées et lutte antivirale. 

2 : Grippe et Para-influenza humains : Ortho et Paramyxovirus. 


3 : Cancers, Leucémies, SIDA : Les rétrovirus. 


4 : Arboviroses, Hépatite C : Les Flavivirus. 


5 : Les Adénovirus et les Virus Adéno-Associés (AAV). 

Structure, cycle, classification, pourquoi n’y a-t-il pas de lutte antivirale ? 

PROGRAMMES des TRAVAUX DIRIGÉS 

TD 1 : Emergence et SRAS. 

TD 2 : Les fièvres hémorragiques. 




IMMUNOLOGIE 

Enseignants : M. Viguier, A. Couëdel, H. Moreau 


1 : Reconnaissance immunitaire naturelle. 

2 : Reconnaissance immunitaire spécifique d’antigène. 

3 : Réaction immunitaire. 

4 : Tolérance immunitaire. 


TD 1 : Analyse de la réaction immunitaire lors d’une infection virale. 

TD 2 : Analyse de la réaction immunitaire lors d’une infection bactérienne. 




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30 BMGE 36 GÉNÉTIQUE APPROFONDIE 3 ECTS 

Responsable de l’UE : M. Philippe SILAR 

Cet enseignement est proposé comme UE approfondie dans les parcours BEE et BBM ou comme UE libre dans 

le parcours BBM. 

Enseignants : P. Silar, S. Brun, H. Lalucque, F. Malagnac 



1 : La génétique bactérienne 

La résistance d’Escherichia coli au phage lambda : Mutation, mutagenèse et identification de gènes. 

La virulence de Klebsiella : Mutagenèse par transposition. 

2 : La génétique eucaryote 

Les mutants de vieillissement chez Caenorhabditis elegans : La sélection et l’analyse de mutants par 

complémentation et recombinaison chez un diploïde, le clonage positionnel et l’épistasie. 

Les suppresseurs de coloration d’ascospores chez Podospora anserina. 

Le mutant peloric chez Linaria vulgaris : L’épigénétique. 


Génétique bactérienne. 

Ségrégation chez les eucaryotes. 

Complémentation chez les eucaryotes. 

Suppression et épistasie. 




30 BMEM 36 ENDOCRINOLOGIE MÉTABOLIQUE 3 ECTS 

Responsables : M. Christophe MAGNAN et M. Gilbert RICHARME 



Enseignants : C. Magnan, G. Richarme, F. Auchère 

Cours : 16 heures - TD : 14 heures (6 h en commun avec L3 BCP + 8 h). 

Les cours et certains travaux dirigés de cette UE sont communs avec ceux de l’ECUE 30 BMP236 Endocrinologie 

générale de la filière Physiologie cellulaire et intégrative du parcours BBM. 


1 : Les grands principes de l’endocrinologie et la réponse au stress. 

Axe corticotrope, catécholamines. 

2 : La régulation de l’homéostasie énergétique. 

Glycémie, prise alimentaire : Pancréas endocrine et le tissu adipeux comme glande endocrine. 

3 : L’équilibre hydrominéral. 

Aldostérone, rénine angiotensine et le métabolisme phosphocalcique. 

4 : La glande pinéale et la mélatonine, la glande thyroïde. 


1 : Données expérimentales et analyse de résultats sur les thèmes : 

TD 1 : Notion de K D, V max, liaison aux récepteurs. 

TD 2 : Effet biologique des catécholamines, corticoïdes. 

TD 3 : Effet biologique de l’insuline. 

2 : 3 séances de Cours - TD à la place des TP de l’UE 30 BMP236 d’Endocrinologie générale 

TD 4 et 5 : Signalisation cellulaire, transmission du signal hormonal, présentation des différents types de 

récepteurs hormonaux, seconds messagers 

TD 6 et 7 : Analyse d’articles, Récepteurs adrénergiques 

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Examen : 60% 

Contrôles continus : 25% et 15% 


30 BMEN 36 ENZYMES et PATHOLOGIES HUMAINES 3 ECTS 

Responsable de l’UE : M. Fernando Rodrigues-Lima 



Enseignants : N. Janel, F. Rodrigues-Lima, J. Dairou, V. Serre + Intervenants extérieurs 

Cours : 14 heures - TD : 10 heures - Analyse d’articles : 6 heures 


Protéases et Cancer 

Exemples de pathologies métaboliques 

1 : Métabolisme de l'homocystéine 

Les principales anomalies génétiques affectant ce métabolisme sont le déficit en cystathionine β 

synthase (CBS) et le déficit en méthylène tétrahydrofolate réductase (MTHFR). 

2 : Métabolisme du glycogène 

La maladie de McArdle est due à un déficit en glycogène phosphorylase responsable d’une surcharge 

en glycogène dans le muscle strié. 

3 : Pathologies mitochondriales 

Marqueurs enzymatiques et pathologies cardiaques 

Epilepsie et glycéraldéhyde-3-phosphate déshydrogénase (GAPDH). 



30 BMBM 36 BIOLOGIE MOLÉCULAIRE APPROFONDIE 3 ECTS 

Responsable de l’UE : Mme Jacqueline London 



Enseignants : J. London, D. Buffard, M. Franco 

Cours : 20 heures - TD : 10 heures Présentation d’un article scientifique 


Phage λ 

Régulation de l’expression des gènes eucaryotes 

Obtention des banques génomiques et des ADNc 

Les gènes de globine : Organisation, expression et régulations, rôle de l’hème et du fer ; Thalassémies 

Clonage et expression du gène de la dystrophine 


Examen : 60% 


34


30 BMTB 36 BIOLOGIE MOLÉCULAIRE EXPÉRIMENTALE 3 ECTS 

Responsable de l’UE : Mme Mélanie Franco 



Enseignants : D. Buffard, M. Franco, V. Régnier 

PROGRAMME des TRAVAUX PRATIQUES : 2 x 2 jours (Vendredi - Samedi). 

Mutagenèse par insertion d’un transposon chez Escherichia coli. 

Sélection de diverses mutations dans l’opéron lactose. 

Construction de méro-diploïdes par conjugaison et test de dominance et récessivité pour diverses mutations 

de lac I, gène du répresseur de l’opéron lactose. 

Localisation des modifications provoquées sur la structures tridimensionnelle de la protéine. 

Importance du dosage de gène pour une régulation. 



30 BMNA 36 NANO-BIOTECHNOLOGIES 3 ECTS 

Responsable de l’UE : M. Vincent Noël 



Cours : 18 h - TD : 12 h (Jeudi matin 8 h 30-10 h 30) 

OBJECTIFS PÉDAGOGIQUES 

Cette UE a pour objectif de présenter les nano-biotechnologies en soulignant l’aspect pluridisciplinaire du 

domaine. Ce cours propose une vue d’ensemble des applications (capteurs, électronique moléculaire....) utilisant 

les savoir-faire en biochimie structurale, enzymologie… et en physico-chimie (contrôle de la synthèse 

de nano-particules, assemblage programmé….). Cette UE permettra de présenter les nombreuses connexions 

entre les nano-sciences et les sciences du vivant et l’intérêt de combiner ces deux disciplines pour le développement 

de dispositifs innovants. 


Introduction 

Historique des nano-sciences. 

Contexte national et international des nano-sciences : marché / emploi. 

Les fondamentaux en nano-sciences 

Structure de la matière à l’échelle du nanomètre. 

Structure atomique et cohésion des nano-systèmes. 

Propriétés électroniques et optiques. 

Méthodes de caractérisation des nano-objets 

Imager des objets de quelques nanomètres. 

Principes de fonctionnement des microscopies à champ proche, des microscopies électroniques. 

Synthèse et fonctionnalisation des nano-objets 

Comment manipuler et modifier des nano-objets (nano-particules, nano-fils….). 

Synthèse par voie chimique, par voie enzymatique. 

Réalisation d’édifices nano-structurés 

Comment assembler des particules de quelques nanomètres. 

Nano-Lego. 

Méthodes d’auto-assemblage. 

Reconnaissance bio-moléculaire…. 

Applications 

Electronique moléculaire, Bio-capteurs, Vectorisation, Imagerie médicale. 




35





U E LIBRE (UE H) 

L3 S6 - Second semestre 

U E LIBRE (UE H) 

Parcours BBM : 3 ECTS 

36

Liste des UE pouvant être prises comme UE libre de 3 ECTS dans le parcours BBM 


Les différentes UEs mentionnées dans la liste ci-dessous peuvent être prises comme UE libre 

à condition de ne pas être déjà prises comme UE APPROFONDIE 

dans le parcours BBM 

Pour les programmes, se reporter aux pages précédentes 

30 BMVI36 Infectiologie / Microbiologie / Virologie / Immunologie 

30 BMGE36 Génétique approfondie 

30 BMEM36 Endocrinologie métabolique 

30 BMNA36 Nano-biotechnologies 

30 BMTB36 Biologie Moléculaire expérimentale 

30 BMBM36 Biologie moléculaire approfondie 

30 BMB336 Statistiques pour Biologie 

30 BMC136 Bio-molécules : Synthèse, structure, réactivité et applications industrielles 

30 BEBT36 Biotechnologie I (en option) 

30 BEEC46 Economie de l’Entreprise (en option) 

30 BMEXT6 Option extérieure 

Vous pouvez choisir l’UE libre dans une autre UFR. 

30 BMEXT6 Option extérieure 

Renseignez-vous auprès de l’UFR de Chimie et de la Licence SDV BCP. 

Vous pouvez également choisir une UE de sport, de langue… (dans la mesure des places disponibles). 

ECUE langue : Espagnol, Arabe, Russe…, Français pour les étudiants étrangers. 

Engagement étudiant (3 ECTS sans notation, validation par rédaction d’un rapport et entretien) 

P7EETDL0 : ECUE Engagement étudiant 

P7U1EEL0 : Tutorats d’accompagnement pédagogique et BRI 

P7U2EEL0 : Action solidaire (Relais Handicap Santé, AFEV….) 

P7U3EEL0 : Assistanat à l’étranger 

P7U4EEL0 : Associations culturelles 

P7U5EEL0 : Responsabilités sportives 

Contact : Florent Busi florent.busi@univ-paris-diderot.fr 

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PLAQUETTE L3 10-02-2012 - Université Paris Diderot-Paris 7

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