PASTOREX™ MENENJİT ÇÖZÜLEBİLİR ANTİJENLERİN ... - Bio-Rad

PASTOREX MENENJİT
25 Test
61607 61611 61616
61608 61613 61618
61610 61614 61717
ÇÖZÜLEBİLİR ANTİJENLERİN
BELİRLENMESİ VE STREPTOKOK B,
STREPTOKOK ZATÜRRE, BAKTERİYAL
GRİP b, B/E.KOLI K1, NEISSERIA
MENENJIT A,C,Y/W 135’İN TEŞHİSİ.

1-KLİNİK DEĞERİ
Bakteriyal menenjit, beyin- omurilik zarı enfeksiyonudur. Neden olan
başlıca organizmalar: Streptokok grup B, Haemophilus grip tip b,
streptokok zatürre, Neisseria menenjit.
Menenjit ciddi bir durumdur, bu nedenle uygun tedavinin başlaması için
enfeksiyonun hızla teşhis edilmesi önemlidir. Kültür ile belirleme
alışılagelmiş yöntemdir, teşhisin konfirmasyonu ve antibiyogram için
mutlaka gereklidir. Eğer numune transfer edilecek ise, uygun olmayan
koşullarda saklanmamış ise ve numune alınmadan önce antibiyotik
tedavisine başlanmış ise yanlış negatif sonuçlar verebilir.
İnfeksiyon esnasında serum, idrar ve CSF gibi biyolojik sıvıların içindeki
neden olan organizmalar ile serbest kalan çözünür antijenlerin
belirlenmesi için immünolojik yöntemdir ve teşhisin daha hızlı olmasını
sağlar. Bu kitle dedekte edilebilen çözünür antijenler, kesin serogrup
veya serotipler için spesifik polisakkaridlerdir: Streptokok zatürre(83 tip),
Haemophilus grip tip b, Neisseria menenjit A grubu, grup B/E.koli K1,
grup C, grup Y/W 135ve streptokok grup B.
Meningococcus serogrup B için spesifik polisakkarid antijeni sadece çok
yavaş antijeniktir ve bu antijene karşı direkt özel olan tekrar üretilebilir
tavşan antikorlarını elde etmek her zaman çok zor olmuştur.
Monoklonal antikor tekniği,Meningococcus serogrup B polisakkarid
antijeninin yeniden üretilebilirliğini tanımlayan ve özelliğini belirleyen
monoclonal fare antikorlarının üretimine izin veren spesifik bakteriyal
polisakkarid antijenlerinin hazırlanması için uygulandı.
Meningococcus serogrup B için bu polisakkarid spesifik antijen, E.koli
K1 ile bulunan polisakkarid antijeni ile benzerdir. Meningococcus B ve
E. koli K1 arasındaki bu antijenik benzerlik . yenidoğanlarda yaklaşık
%80 K1 türünden olan E.koli menenjitin teşhisini sağlar.
E.koli ve streptokok B yenidoğan veya premature doğumlarda menenjit’e
neden olan en önemli bakteridir ve meningococcal infeksiyon bu yaş
grubunda çok seyrek görülür.
2-PRENSİP
Spesifik homolog antikorları ile kaplı lateks partikülleri kullanılarak
numunenin içerdiği antijeni test eder. Homolog antijenlerin varlığında
lateks partiküllerine yapışır. Antijenin yokluğunda homojen süspansiyon
içinde kalır.

3-TANITIM
1. PASTOREX MENENJİT, 25 testlik kit- kod 61607 şunları içerir:
• Reaktif 1 (R1): N. menenjıt B/E. koli K1
1 şişe, 0.4 ml, N. menenjıt grup B/E. koli K1 için fare monoclonal
özel antikorları ile hassaslaştırılmış kırmızı lateks.
• Reaktif 2 (R2): N. menenjıt B/E. koli K1 negatif kontrol
1 şişe, 0.4 ml, tetanus toxoidler için fare monoclonal özel antikorları
ile hassaslaştırılmış kırmızı lateks.
• Reaktif 3 (R3): H. grip b
1 şişe, 0.4 ml, H. grip tip b için tavşan özel antikorları ile
hassaslaştırılmış beyaz lateks.
• Reaktif 4 (R4): S. zatürre
1 şişe, 0.4 ml, S.zatürre için tavşan özel antikorları ile
hassaslaştırılmış yeşil lateks.
• Reaktif 5 (R5): Steroptokop B
1 şişe, 0.4 ml, Steroptokop B için tavşan özel antikorları ile
hassaslaştırılmış sarı lateks.
• Reaktif 6 (R6): N.Menenjit A
1 şişe, 0.4 ml, N.Menenjit A grubu için tavşan özel antikorları ile
hassaslaştırılmış mavi lateks.
• Reaktif 7 (R7): N.Menenjit C
1 şişe, 0.4 ml, N.Menenjit C grubu için tavşan özel antikorları ile
hassaslaştırılmış kırmızı lateks.
• Reaktif 8 (R8): N.Menenjit Y/W 135
1 şişe, 0.4 ml, N.Menenjit Y/W 135 için tavşan özel antikorları ile
hassaslaştırılmış pembe lateks.
• Reaktif 9 (R9): Polivalent negatif kontrol
1 şişe, 0.4 ml, bağışıklığı olamayan tavşan’dan alınan IgG
immünglobülinleri ile hassaslaştırılmış mor lateks.
• Reaktif 10 (R10): Polivalent pozitif kontrol
Pozitif control: Dondurularak kurutulmuş antijenik madde.1 ml distile su
ile çözülür. S.zatürre, storoptokok B, H. grip b, N.menenjit
A,C,B,Y/W135’in polisakkarid antijenlerini içerir. Miktar 20 reaksiyon
için yeterlidir.
Tüm reaktifler %0.02 trimesol içerir.
R1,R2,R3,R4,R5,R6,R7,R8,R9 reaktifleri %0.1’den az sodium azid
içerir.

• Tek kullanımlık aglütinasyon kartları
• Tek kullanımlık karıştırma çubukları
2. PASTOREX MENENJİT LATEKS TEST (her biri25 testlik):
• Tek lateks testi (kontrolsüz)
1. N.Menenjit A (R6) kod:61608
2. N.Menenjit C (R7) kod:61610
3. N.Menenjit B/E Koli K1 (R1) kod:61611
4. Streptokok B(R5) kod:61613
5. zatürre streptokok (R4) kod:61614
6. Grip b Hemaphilius (R3) kod:61616
• Pastorex Menenjit Kontrol
1. Kontrol reaktif kitleri tek lateks testi için (2x25 test) kod: 61618
2. 2 şişe, 0.4 ml polyvalent negatif control (R9)
3. 2 şişe, dondurularak kurutulmuş polivalent pozitif control(R10),1
ml distile su ile çözülür.
4. 2 şişe, 0.4 ml N.m.B./E koli K1 (R2) negatif control
5. Tek kullanımlık kart
6. Tek kullanımlık karıştırma çubuğu
• Pastorex Menenjit Dilüent
1 şişe, 40 ml serum için dilüent kod: 61717
4-DEPOLAMA
• Tüm reaktifler 2-8ºC’de saklandığındaa ve açılan şişeler dahil
mikrobiyal kontaminasyon olmadığında,son kullanma tarihine kadar
stabildir.
• Polivalent kontrol R10, çözüldükten sonra mikrobiyal kontaminasyon
yok ise 2-8ºC’de 1 ay stabildir veya hemen porsiyonlanıp -20ºC’de
saklanır ise daha uzun süre kullanılabilir.
• Lateks reaktiflerini dik pozisyonda tutun
• LATER REAKTİFLERİ DONDURULMAMALIDIR..
5-GEREKLİ AMA SAĞLANMAYAN MATERYALLER
• Serum dağıtmak için 40-50µl’lik pipet.
• Kapiler veya Ependorf tüpler
• Kurutma inkübatörü veya 100ºC’de su banyosu
• Kapiler veya ependorf tüpler için santrifüj

• Dezenfektan banyosu
• Steril distile su, steril izotonik veya dilüent (kod:61717)
6-ÖNLEMLER
Sonuçların kalitesi ,iyi laboratuvar çalışmalarının sıkıca uygulanmasına
bağlıdır.
• Tüm numune ve reaktifler oda ısısısnda 18-25 ºC’de kullanılmalıdır.
• Aglütünasyon kartının reaksiyon yüzeyine dokunmayınız.
• Test edilecek her numune için pipet veya pipet ucunu değiştirin.
• Kullanım öncesi latex şişesini çalkalayın.
• İyi kalibre edilmiş damlaları elde etmek için kit şişe damlalığının
ucunu temizleyin.
• Kalıntı damlalar için kit şişesini yatay tutun.
• Her reaksiyon için test çubuğunu değiştirin.
• Tüm tek kullanımlık materyalleri otoklavlanabilir çöp kutularına veya
infeksiyonu arındırıcı banyolara atın.
• Polivalent pozitif kontrolü herhangi bir kontaminasyondan sakınmak
için steril distile su ile çözün.
HİJYEN VE GÜVENLİK TALİMATLARI
Daima ,mikrobiyal tehlikelere karşı korunma ile ilgili güncel teknikleri
ve önlemleri gözlemleyin.
• Tüm numuneleri potensiyal infekte edici gibi düşünün.
7- SERUM, İDRAR VE CSF İÇİN KULLANIM TALİMATLAR
Numuneler
Numuneler toplanır toplanmaz işleme alınmalıdır. Eğer bu mümkün değil
ise,2-8 ºC’de birkaç saat saklanabilirler veya daha uzun süreler için –20
ºC’de derecede (santrifüjden sonra -20ºC’de sadece üstfaz tutulabilir)
saklanabilir. Tekrar çözündürüp dondurmaktan sakının. Numunenin
kontaminasyonunu önlemek için öncelikli olarak bakteriyal inceleme(kültür)
yapılmalıdır. Lateks kit ile test için minumum numune volümü 0.5 ml’dir.
A) KLİNİK NUMUNELERİN HAZIRLANMASI
Dikkat: Su banyosu kullanırken suyun tüpe girmemesi için su geçirmez
tüpler kullanın. Eğer mümkünse kurutma inkübatörü kullanın.

a)CSF (Omurilik sıvısı)
Eğer CSF çok bulanık veya kırmızı kan hücreleri içeriyor ise 350 g’de 5
dakika santriüj edin ve süpernatant’ı toplayın.
• Numuneyi 100ºC’de (kurutma inkübatörü veya su banyosu) 3
dakika ısıtın. Numunenin oda ısısına gelmesini sağlayın. 3000
g’de 5 dakika santrifüj edin veya 0.45 µm’lik filtre kullanarak
süzün.
b)Serum
• Bir volüm seruma (0.5 ml) 3 volüm (1,5 ml) dilüent
(kod:61717) eklenir.
• 100ºC’de (kurutma inkübatörü veya su banyosu) 3 dakika ısıtın.
• 3000 g’de 5 dakika santrifüj edin.
Dikkat: Plazma numunesi kullanmayın. Albumin, lipit,
hemoglobin ve bilirubin fazlalığından oluşan etkileşim test
edilmedi. En iyi sonuçlar taze serum kullanılarak elde edildi.
c)İdrar
Testten önce antijen konsantrasyonunu artırmak için Amikon B15 tipi
memran üzerinde 25 kat’a kadar numune konsantre edilebilir.
• 100ºC’de (kurutma inkübatörü veya su banyosu) 3 dakika ısıtın.
• 3000 g’de 5 dakika santrifüj edin veya 0.45 µm’lik filtre
kullanarak süzün.
B)TEST İŞLEMİ
• Aglütinsyon kartının her bir dairesine ön işlem yapılan numunenin
süpernatantı bir damla (40 – 50 µl) koyulur.
• Lateks reaktif şişesini iyice çalkalayın.
• Şişeyi dik pozisyonda tutunuz, Dispozıbl kart’ın üzerine her bir lateks
reaktifinden bir damla koyunuz. Aşağıdaki belirtilen dağıtım şeklini
uygulayın. Beyaz daire içinde R9, R6,R7,R1,R2 ve siyah daire içinde
R8, R3,R4,R5.
• Çubuk kullanarak numuneleri ve lateks reaktiflerini karıştırın ve her
bir lateks için çubuğu değiştirin.
• Kartı 10 dakika 120 RPM’de döndürün. 10 dakika içinde çıplak gözle
görülebilir herhangi bir aglütünasyon oluşumunu izleyin (120 RPM
hız da orbital tipli agitatör kullanılabilir.)
8 – KAN KÜLTÜRÜ İŞLEMİ:
Olası oryantasyon için gram boyası ve şekilleri kontrol edin.
• Pozitif kan kültüründen 1-2 ml alın.
• 2000 g’de 5 dakika santrifüj edin.

• Dispozıbl kartların her bir dairesine süpernatant’ın bir damlasınını
(40-50 µl) koyun.Gram boyasına göre ilgili lateks reaktileri test
edilmelidir.
• Test için seçilen lateks reaktif şişeleri iyice çalkalanmalıdır.
• Şişeyi dik pozisyonda tutunuz, süpernatant damlalarının dış
yüzeyine her bir seçili lateks reaktifinin bir damlası koyulur.
• Çubuk kullanarak numuneleri ve lateks reaktiflerini karıştırın ve
her bir lateks için çubuğu değiştirin.
• Kartı 5 dakika 120 RPM’de döndürün. 5 dakika içinde
aglütünasyon oluşumunu kontrol edin.
Bazı kan kültürleri spesifik reaksiyon vermeyebilir veya yorumu
problemli olabilir. Negatif kontrol olarak steril kan ile aşılı kan
kültürü kullanın veya Pastorex Menenjit ile dedekte edilenden farklı
bir organizma kullanın.
9-SONUÇLARIN YORUMLANMASI
POSİTİF REAKSİYON
Positif reaksiyon iyi aglütünasyon ile belirlenir, çıplak gözle görülebilir,
negatif kontrol ile karşılaştırılır.
Aglütünasyonun şiddeti ve görünme zamanı test edilen numunedeki
antijen konsantrasyonuna bağlıdır.
Pozitif antijen testi ile negatif kültür arasındaki fark, kültür yapılan
numunedeki uygun bakterinin yokluğu ile açıklanabilir (Numune,
antibiotik tedavisi başlamadan önce alınmalıdır veya transfer koşulları
narin bakterilerin hayatta kalmasına uygun olmamalıdır.
Çogu zaman yeni veya pramatüre doğumda anti-N.menenit B/E koli K1
lateks ile pozitif bir reaksiyon E.koli K1 ile infeksiyon oluşturur. Eski
konularda meningococcus B daha fazla olasıdır.. Numune kültürü teşhis
ile konfirme edilmelidir.
NEGATİF REAKSİYON
Kümesiz homojen süspansiyon.
YORUMLANAMAYAN SONUÇLAR
Lateks negatif kontrolleri (R2 veya R9) ile numune aglütine olursa veya
kitin içinde birden fazla lateks reaktifi var ise bu durumda reaksiyon
yorumlanmazdır. Bu durumda test bir başka numune ile tekrarlanmalıdır ve
kültür sonucu için beklenmelidir.( Çok seyrek olarak infeksiyon iki farklı
bakteri türünden olabilir.)

10-PROSEDÜR:AGAR’DA İZOLE EDİLEN BAKTERİ TÜRLERİNİN
GRUBU( Taze ve saf kültürden koloniler)
Lateks Y/W 135, bakteri türleri grubu için kullanılamaz.
Bu grubu belirlemek için alışılagelmiş antisera kullanımı önerilir (Kit Y,
W135,29E: Ref:58704,3x1 ml).
Test’e başlamadan önce olası oryantasyon için:
• Gram boyasını ve morfolojiyi kontrol edin.
• Gram negatif bakteri için oksidaz testi yapın (N menenjit için
pozitif, E koli K1 için negatif).
• Gram pozitif koküs için katalaz testi yapın.(Pozitif tür için katalaz
test etmeyin)
Sarmalanmayan S.zatürre ve hemophilis grip türleri bu teknik ile
belirlenemez.
a) Gruplandırma: N.menenjit (sadece A,B,C), H.grip, E.koli, S.zatürre.
• Steril izotonik solüsyonunun 30 µl’sini dispozıbl kartaki
yuvarlağın içine damlatın.
• Numune:
Eşşarie koli, hemolipus grip ve neserrria Menenjit için: 1 µl
düğümün eşdeğeri, maximum 2-3 koloni olanlar
• Stereptokok zatürre için düğümün 5 µl’sinin eşdeğeri
minumum, 10-12 kolonidir.
• Homojen süspansiyon elde etmek için numune kolonilerini
dikkatlice emilsiyon yapılmalı.
• Tanımlama için seçilen lateks reaktif şişesini iyice
çalkalayın, şişeyi dik konumda tutun, bakteri
süspansiyonunun damlasının dış kenarında bu lateksin bir
damlasını yerleştirin.
• Bir çubuk kullanarak süspansiyonu ve lateksi karıştırın.
• Kartı 120 RPM’de çevirin.
• 2 dakikadan az bir sürede temiz herhangi bir aglütünasyonun
oluşması gözlenir.
Alışılagelmiş biyokimyasal testler kullanılarak tür belirleme
konfirme edilir.
b)Gruplandırma: Stereptokok B( B-hemolitik koloni)
• Tood Hewitt’in 2 ml’sinin içinde 5 koloni durdurun.
• 37 ˚C su banyosund 2-3 saat inkübe edin.

• Süpernatantın 1 damlasını (40-50 µl) dispozıbl kartın
üzerindeki bir daireye yerleştirin.
• Lateks reaktif şişesini iyice çalkalayın, şişeyi dik
pozisyonda tutun, bu lateksin bir damlasını ,
süpernatantın damlasının dış kenarına yerleştirin.
• Bir çubuk kullanarak numuneyi ve lateksi karıştırın.
• Kartı 120 RPM’de döndürün.
• 1 dakikadan az bir sürede herhangi bir temiz
aglütünasyonun oluşmasını gözlemleyin.
Alışılagelmiş biyokimyasal testler kullanılarak tür belirleme
konfirme edilir. İzole kolonilerden direkt ekstraksiyon için
PASTOREX STREP kiti (kod:61721) kullanın.
11-TESTİN KALİTE KONTROLÜ
Lateks reaktifi çalkalandıktan sonra tamamen homojen hale gelmelidir.
Polivalent pozitif kontrol (R10), her bir lateks immuno reaktiviteyi
geçerlendirebilmek için kullanılır.
• Kalite kontrol testini çalışmak için, dispozıbl kartın her bir
dairesine pozitif kontrolün (R10) bir damlası (40 µl) yerleştirilir.
• Lateks reaktif şişesini iyice çalkalayın.
• Şişeyi dik pozisyonda tutun, dispozıbl karta her bir latek
reaktifinde 1 damla yerleştirin, aşağıda belirtilen dağıtım sırasına
uyun: beyaz yuvarlaklarda R9, R6, R7, R1,R2 ve siyah
yuvarlaklarda R8, R3, R4, R5.
• Çubuk kullanarak pozitif kontrol ve lateks reaktifini kullanın ve
her bir lateks için çubuğu değiştirin.
• Kartı 120 rpm’de 10 dakika döndürün. Bu 10 dakika içinde çıplak
gözle herhangi bir aglütünasyon oluşumunu kontrol edin (test
lateks reaksiyonunu, negatif kontrol lateksi ile karşılaştırın).
Aglütünasyon şiddeti ve oluşma hızı antijen/antikor aviditesine
bağlıdır. Sonuç olarak reaksiyonlar, her bir lateks’in değişkenliği ile
gözlenebilir. NmB/Koli K1 lateksi diğerlerinden daha iyidir.
• Her bir lateksin spesifik olmayan aglütünasyonlarının yokluğunu
izotonik solüsyonu veya dilüent (kod: 61717) kontrol eder.
Kalite kontrol testini çalışmak için, polivalent pozitif kontrol
protokolüne göre fizyolojik izotonik veya dilüent R11 (kod:61717)
kullanılır.

• Polivalent pozitif kontrol (R10) ile aglütine olmadığında, izotonik
veya dilüent (kod 61717) ile spesifik olmayan aglütünasyon
olmadığında lateks reaktifi kullanılmamalıdır (kitin yanlış
depolanmasından veya lateks reaktifinin kontaminasyonundan
kaynaklanabilir).
12-ÜRETİCİNİN KALİTE KONTROLÜ
Tüm üretilen reaktifler, ham maddeden başlayarak son olarak
ticari ürün haline gelene kadar bizim kalite sistemimize göre
hazırlanmıştır. Her bir lot kalite kontrol’e tabi tutulmuştur ve
kabul edilebilir sınırlar içinde olan ürünler pazara sunulmuştur.
Her bir lot için kalite kontrol kayıtları Bio-Rad’da tutulmaktadır.
13- TEST PERFORMANSI
HASSASİYET
Kitteki her bir reaktifin hassasiyeti aşağıda belirtilen numunelerin analizi ile
belirlenmiştir.
• Saflaştırılmış antijen izotonikde dilüe
• Alışılagelmiş analiz tekniği ile belgelenmiş beyin omurilik
sıvısının klinik numunesi
• Mueller Hinton agarı, çikolatalı + PVS agarı, Kolombia %+5
koyun kanlı agar üzerindeki kültürden izole edilen çeşitler.

ÖZGÜLLÜK
Her bir reaktifin hassasiyeti aşağıda belirtilen numunelerin analizi ile
belirlenmiştir.
• Steril CSF (a) veya menenjitden sorumlu bakteri ile kontamine olmuş
CSF ve lateks(b) ile belirlenenlerden farklı.
• Genuses Neisseria, Branhamella, Acinetobacter, streptokok,
Klepsiella, Haemophilus, Eschericha coli non K1, Pseudomonas’a ait
türler lateksden başka kaynaklar ile test edildi.

Neisseria flavescens’in 1/1 türü, Klebsiella pneumoniae ‘nin 2/4 türü,
Acinetobacter’in 2/5 türü spesifik olmayan reaksiyon verir.
KAN KÜLTÜRÜ
Pastorex Menenjit’in performansı kan kültüründe test edildi. Bu ölçümün
sonuçları:
• Hassasiyet: %100 (4/4 S.pneumoniae’nin 2çeşidini ve streptokok
B’nin 2 çeşidini içerir)
• Özgüllük: %100 (37/37). R3, R4, R5, R6, R7 ve R8 reaktifleri için.
• Özgüllük : %97.5 (39/40). R1 reaktifi için.
Klebsiella pneumoniae ile 3 kan kültürü içinde 1 tanesi spesifik
olmayan reaksiyon verir.
14.TESTİN LİMİTLERİ
• Pek çok vakada immunolojik lateks tekniği, organizmanın olası
teşhisini sağlar. Bununla beraber numunedeki antijen
konsantrasyonu lateksde belirtilen düşük limitin altında olabilir ve
sonuç negatif olarak kabül edilir. Bu durumda daha sonra
numunenin tekrarlanması yararlı olabilir.

• Bu yöntem bakteri ekimi yerine koyulamaz, antimikrobial süpheli
sonuçların oluşmasını sağlar.
• Kan kültürünün geniş çeşitliliği gözönünde bulundurularak tüm
ortamlar için performans garanti edilemez.(Cf. 7-D)
• Lateks reaktifi kullanarak serum ve idrardaki antijenin belirlenmesi
ile ilgili klinik ve biyolojik bilgiler şu anda sınırlıdır.
• Benzer antijen alakasız bakteri işlemine bir kaç örnek rapor edildi.
Her zaman çapraz reaksiyon olasılıgı göz önünde
bulundurulmalıdır (1,4,5).
• Tüm laboratuvar teşhisleri için son teşhis, bir test sonucuna
dayandırılmamalıdır, hastanın klinik verileri ve biyokimyasal,
stolojik ve immunolojik sonuçları da değerlendirilmelidir.
• Bakteri türünün spesifik olarak belirlenmesi için kan kültüründe
çözünür antijen belirlemenin yanısıra, agar’da isole türlerin
gruplandırılması da tamamlanmalıdır.
15-REFERANSLAR
1. BRADSHAW M.W., CHNEERSON R., PARKE J.C. Jr., ROBBINS
J.B. Bacterial antigens cross-reactive with the capsular
polysaccharide of Haemophilus influenzae, type b. Lancet, 1971,
i (May 29), 1095-1097
2. DENIS F. et MOUNIER M. Le diagnostic rapide des méningites
cérébrospinales: techniques, résultats, limites et perspectives.
Méd. Mal. Infect.,1984, 14, 27-36
3. DENIS F., SAULNIER M. et CHIRON J.P. Diagnostic étiologique
rapide des méningites purulentes par agglutination passive
indirecte de particules de latex et par contreimmunoéléctrophorèse
: expérience et perspectives. Bull. O.M.S.,
1981, 59, 143-151
4. KASPER D.L., WINKELHAKE J.L., ZOLLINGER W.D., BRANDT
B.L., and ARTENSTEIN M.S. Immunochemical similarity between
polysaccharide antigens of Escherichia coli 07:K1 (L) : NM and
group B Neisseria meningitidis. J. Immunol., 1973, 110, 262-268.
25

5. LEE P.C. and WETHERALL B.L. Cross-reaction between
Streptococcus pneumoniae and group C streptococcal latex
reagent. J. Clin. Microbiol., 1987, 25, 152-153
6. LEINONEN M. and HERVA E. The latex agglutination test for the
diagnosis of meningococcal and Haemophilus influenzae
meningitis. Scand. J. Infect.,1977, 9,187-191
7. LUND E. and HENRICHSEN J. Laboratory diagnosis, serology
and epidemiology of Streptococcus pneumoniae. In Methods in
Microbiology, T. Bergan and J.R. Norris edit., 1978, 12, chap. XI,
241-262 (Academic press, London, New-York, San Francisco)
8. TESSIER F. Dépistage et identification des streptocoques du
groupe B. Intérêt en périnatologie. Extrait de LABORAMA n°14,
oct. 1982, Institut Pasteur Production edit.
9. NEWMAN R.B., STEVENS R.W. and GAAFAR H.A. Latex
agglutination test for the diagnosis of Haemophilus influenzae
meningitis. J. Lab. Clin. Med., 1970, 76, 107-113
10. ROBBINS J.B., Mc CRACKEN G.H. Jr., GOTSCHLICH G.C.,
ORSKOV F., ORSKOV I., HANSON L.A. Escherichia coli K1
capsular polysaccharide associated with neonatal meningitis. New
Engl. J. Med. 1974, 290, 1216-1220
11. P. GESLIN et coll., Centre National de Référence des
Pneumocoques: Rapport d'activité 1997.
12. ASUNCIÓN FENOLL, ISABEL JADO, DOLORES VICIOSO,
AMALIA PÉREZ, and JULIO CASAL. Evolution of Streptococcus
pneumoniae Serotypes and Antibiotic Resistance in Spain :
Update (1990 to 1996). J. Clin. Microbiol.,1998, 36, 3447-3454
Bio-Rad
3, boulevard Raymond Poincaré
92430 Marnes-la-Coquette France
Tel. : +33 (0) 1 47 95 60 00 06/2008
Fax : +33 (0) 1 47 41 91 33 code : 881019