Том 2 №2 - Общество Ð‘Ð¸Ð¾Ñ‚ÐµÑ Ð½Ð¾Ð»Ð¾Ð³Ð¾Ð² России им. Ю.А. Овчинникова

И.И. Губайдуллин и др., с. 11–16Данные нарушения симбиоза вызываются либорастением-хозяином (как это наблюдал Брилл с соавт.на люцерне при интродукции в нее гена ее собственноголектина MsLEC1 в антисенс ориентации [20], что свидетельствуетоб участии лектина люцерны в инициацииклубенькообразования), либо мутациями ризобий [23] иизменениями их симбиотических факторов.При интродукции гена лектина PSL вM. sativa трансформант инокулировался бактериямиR. leguminosarum bv. viciae (симбионт P. sativum), содержащимиплазмиду с nod генами S. meliloti с образованиеминфекционных нитей и псевдоклубеньков [3]. То естьответные реакции, наблюдаемые на люцерне при инокуляцииее неспецифичными штаммами R. leguminosarumbv. viciae, схожи как при экспрессии гена лектина горохав ее корневых клетках, так и при экзогенной обработкеее лектином гороха.Подобное расширение лектинами чувствительностирастений к гетерологичным ризобиям обнаруженотакже, например, на трансгенном по гену лектина PSLкрасном клевере. Клевер не только становился отзывчивымна ризобии R. leguminosarum bv. viciae, но, болеетого, формировал псевдоклубеньки при инокуляции егоMesorhizobium loti и S. meliloti [4].ЗаключениеТаким образом, лектин P. sativum, синтезированныйв штаммах E. coli, сохранял не только своюуглеводспецифичность, почти идентичную выделенномуиз семян этого растения [9], но и, как было показанонами, сохраняет, будучи одноцепочечным полипептидом,также некоторые свои физиологические свойства, вызывающиеспецифические реакции клубенькообразованияпри экзогенной обработке им клубеньковых бактерий вризосфере люцерны. Данные результаты свидетельствуюто возможности выяснения синтезированными впрокариотических системах лектинами их функциональнойзначимости в тех или иных симбиотических системахпутем экзогенной обработки, что может значительно облегчитьисследования их роли, не прибегая к трудоемкойпроцедуре трансформации растений.Работа получила финансирование по программе«Государственная поддержка ведущих научных школРоссии» (НШ-2217.2003.4 и НШ-1003.2006.4),Российского фонда фундаментальных исследований(04-04-48884) и РФФИ-Агидель (02-04-97903).Литература1. Diaz C.L., Logman T.J.J., Stam H.C., Kijne J.W. Sugar-Binding activity of pea lectin expressed in white clover hairyroots // Plant Physiol. – 1995. – Vol. 109. – P. 1167–1177.2. van Eijsden R.R., Diaz C.L., de Pater B.S., Kijne Y.W.Sugar-binding activity of pea (Pisum sativum) lectin isessential for heterologous infection of transgenic white cloverhairy roots by Rhizobium leguminosarum biovar viciae //Plant. Mol. Biol. – 1995. – Vol. 29. – P. 431–439.3. van Rhijn P., Fujishige N.A., Lim P.O., Hirsh A.M. Sugarbindingactivity of pea lectin enhances heterologous infectionof transgenic alfalfa plants by Rhizobium leguminosarumbv. viciae // Plant Physiology. – 2001. – Vol. 126. – P.133–134.4. Diaz C. L., Spaink H.P., Kijne J.W. Heterologous rhizoballipochitin oligosaccharides and chitin oligomers induce corticalcell divisions in red clover root, transformed with the pea lectingene // Mol. Plant Microbe Interact. – 2000. – Vol. 13.– P. 268–276.5. van Rhijn P., Goldberg R.B., Hirsch A.M. Lotus corniculatusnodulation specificity is changed by presence of a soybean lectingene // Plant Cell. – 1998. – V. 10. – P. 1233–1250.6. He X.G. Signal molecules of plant-induced of gene expressionof bacteria // Acta Bot. Sin. –1990. – Vol. 32. – P.896–900.7. Higgins T.J.V., Chandler P.M., Zurawski G., Button S.C.,Spencer D. The biosynthesis and primary structure of peaseed lectin // J. Biol. Chem. – 1983. – Vol. 258. – P.9544–9549.8. Stubbs M.E., Carver J.P., Dunn R.J. Production of lectin inEscherichia coli // J. Biol. Chem. –1986. – Vol. 261. – P.6141–6144.9. Longstaff M., Powell K.S., Gatehouse J.A. Production andpurification of active snowdrop lectin in Escherichia coli //Eur. J. Biochem. – 1998. – Vol. 252. – P. 59–65.10. Jorrdan E.T., Goldstein I.J. The sequence of second memberof the Lima Bean lectin gene family and the expression andcharacterization of recombinant lectin in Escherichia coli //J. Biol. Chem. – 1993. – Vol. 269. – P. 7674–7681.11. Elgavish S., Shaanan B. Chemical characteristics of dimmerinterfaces in the legume lectin family // Protein Science.– 2001. – Vol. 10. – P. 753–761.12. Graham D.E. The isolation of high molecular weight DNAfrom whole organisms or large tissue masses // Anal. Biochem.– 1978. – Vol. 85. – P. 609–613.13. Sambrook J., Fritsch E.F., Maniatis T. Molecular cloning: alaboratory manual. Second ed. – Cold Spring Harbor, ColdSpring Harbor Laboratory Press, 1989. – 1682 p.14. Rouge P., Pere D., Bourne Y. Single- and two-chain legumelectins: a revisited question / Lectins: Biology, Biochemistry,Clinical Biochemistry, 1990. – P. 105–112.15