ОбзорыУДК 616-092:612.6.05]-07:577.21Клонирование и экспрессия геновв молекулярных колонияхТ.Р. САМАТОВ, Е.В. ЧЕТВЕРИНА, А.Б. ЧЕТВЕРИН *Институт белка РАН, Пущино, Московская областьКлонирование генов in vivo и in vitroОбщепринятый метод клонирования генов включаетв себя встраивание гена в векторную молекулу итрансформацию бактериальных клеток полученной генетическойконструкцией (клонирование in vivo). При этомв одну клетку попадает и далее размножается не болееодной рекомбинантной молекулы ДНК. В результатеразмножения в селективных условиях на твердой агаризованнойсреде (на чашке Петри) образуются колониибактерий, представляющие собой потомство единичныхклеток, то есть клоны. Помимо исследуемого гена, бактериальныеклоны содержат компоненты самих клеток,что обуславливает необходимость последующей очисткиинтересующей исследователя ДНК с целью полученияпрепарата, пригодного для анализа и дальнейших манипуляций.Использование живых клеток для клонированиягенов имеет и другие недостатки. Так, продолжительностьэксперимента определяется скоростью роста клетоки может составлять до нескольких суток. Кроме того,в процессе клонирования исследуемый ген неизбежноподвергается естественному отбору. И, наконец, однимиз наиболее существенных ограничений является эффективностьвстраивания генов в вектор и собственнотрансформации: в клетки проникает и затем дает началоиндивидуальным клонам от 0,0001 до 0,01% исходногопрепарата ДНК (содержимого генной библиотеки)(Roberts & Ja, 1999).К настоящему моменту описан ряд бесклеточныхподходов, с использованием которых в принципе можно* Автор для переписки:© 2006 г. Четверин Александр Борисович,д.б.н., член-корреспондент РАН, заведующий лабораториейбиохимии вирусных РНК Института белка РАН142290 Московская область, г. Пущино, ул. Институтская, 4Тел.: (496) 773-2524Факс: (495) 632-7871E-mail: alexch@vega.protres.ruполучить индивидуальные клоны и которые лишены вышеперечисленныхнедостатков. Эти подходы основанына той идее, что при истощающем разведении экспериментальногообразца в одном сортировочном компартментеокажется единичная молекула исследуемой геннойбиблиотеки. В качестве компартментов могут выступать,например, реакционная ячейка (Lukyanov et al., 1996[10]; Vogelstein & Kinzler, 1999 [22]), элемент микрочипа(Chetverin & Kramer, 1994) [4], микрошарик (Brenneret al., 2000) [3] или капля водно-масляной эмульсии(Tawfik & Griffiths, 1998 [21]; Dressman et al., 2003[7]). В результате размножения ДНК с использованиембесклеточной системы, например, ПЦР, данный компартментс некоторой долей вероятности будет содержатьмолекулярный клон. Однако сами разработчики этихметодов вынуждены в каждом случае проверять чистотуполученных клонов при помощи обычного клонированияс использованием векторов и живых клеток.Функциональный скрининг генов in vitroВажным компонентом бесклеточной биотехнологииявляется функциональный скрининг генных библиотек,то есть отбор из множества последовательностейименно тех, продуктами экспрессии которых являютсябелки с искомыми свойствами. В основе такого скринингалежит технология бесклеточных генетических дисплеев.Их суть заключается в том, что в результате экспрессиигенной библиотеки in vitro новосинтезированный белококазывается связанным с кодирующей его молекулойнуклеиновой кислоты. Исследователь осуществляетселекцию ДНК или РНК по свойствам синтезированногопродукта и вместе с этим продуктом автоматическивыделяет соответствующий генотип.Среди бесклеточных генетических дисплеев можновыделить несколько основных групп. В одной из них новосинтезированныйполипептид оказывается связаннымс кодирующей его мРНК. Связь может быть нековален-45
Вестник биотехнологии, 2006, 2, № 2тной, как в случае полисомного (Mattheakis et al., 1994)[11] и рибосомного (Hanes & Plueckthun, 1997) [9] дисплеев,либо ковалентной, как в мРНК-дисплее (Roberts& Szostak, 1997) [18], схожем с ним «in vitro вирусе»(Nemoto et al., 1997) [13] и при использовании «бифункциональнойтРНК» (Merryman et al., 2002) [12].Позднее были разработаны дисплеи, в которыхсинтезируемый белок связывается не с РНК, а с гораздоболее стабильной ДНК. В результате при анализеотобранных последовательностей отпадает надобностьв обратной транскрипции, которая малоэффективна ив процессе которой РНК-зависимой ДНК-полимеразоймогут быть внесены мутации. Большинство этихподходов основано на так называемой «cis-активности»некоторых белков, то есть их способности связываться сопределенными участками именно той молекулы ДНК,которая их кодирует. Здесь также возможно образованиекак нековалентного комплекса, например, при использованиибелка RepA (Odegrip et al., 2004) [15], так иковалентной связи в случае белков VirD2 (de Figueiredoet al., 2004) [8] и P2А (Reiersen et al., 2005) [17]. Существуетметод, в котором за основу взяты микрошарики– сферы из полистирола диаметром около 1 мкм, покрытыестрептавидином. Со стрептавидином связываютсябиотинилированные молекулы ДНК генной библиотекии биотинилированные антитела против специфическихпептидов, последовательности которых присутствуют вовсех новосинтезированных белках и благодаря которымэти белки оказываются присоединенными к данномумикрошарику (Nord et al., 2003) [14].В отдельную группу можно выделить метод,названный авторами «компартментализация in vitro» иоснованный на использовании водно-масляной эмульсии(Tawfik & Griffiths, 1998) [21]. В данном случае физическоеразделение последовательностей, составляющихгенную библиотеку, происходит за счет ее истощающегоразведения, в результате чего в большинстве капель оказываетсяне более одной молекулы ДНК. При экспрессиимолекула ДНК и кодируемый ею белок оказываютсяв одной и той же капле, за счет чего и осуществляетсясвязь генотипа и фенотипа. В некотором смысле этикомпартменты – капли эмульсии – можно рассматриватькак мини-клетки, в которых происходит экспрессиятолько одного гена.Генетические дисплеи in vitro обладают всемипреимуществами, свойственными для бесклеточных методов,однако ни один из таких дисплеев не гарантирует,что в результате проведенной селекции будут полученыистинные молекулярные клоны. Поэтому неизбежной46конечной стадией является обычное клонирование invivo отобранных последовательностей, что обесцениваетпреимущества подходов in vitro.Метод молекулярных колонийИстинные молекулярные клоны можно получитьin vitro с помощью метода молекулярных колоний(Четверин и Четверина, 1998) [1], экспоненциальноразмножая нуклеиновые кислоты в тонком слое иммобилизованнойсреды (например, в пластинке геля).В результате, по аналогии с ростом бактерий на чашкеПетри, в геле образуются колонии, каждая из которыхпредставляет собой истинный клон, то есть потомствоодной-единственной исходной молекулы. Ранее былапродемонстрирована возможность клонировать такимобразом молекулы РНК, размножая их с помощьюQ-репликазы (Chetverina & Chetverin, 1993) [5], ипоказана точность и количественность этого метода, названного«методом молекулярных колоний». РазработкаПЦР-версии этого метода сделала возможным клонированиелюбого генетического материала в виде ДНК,при этом специфичность размножения ограничиваетсялишь используемыми олигонуклеотидными праймерами(Chetverina et al., 2002 [6]; Samatov et al., 2005 [19]).Нами была разработана следующая схема выращиванияи детекции колоний ДНК (рис. 1; Chetverinaet al., 2002) [6]. ПЦР проводили в полиакриламидномгеле, находящемся в лунке микроскопного предметногостекла. Новосинтезированную ДНК переносили на нейлоновуюмембрану и выявляли колонии путем гибридизациис радиоактивно меченным зондом с последующейрадиоавтографией.Недавно нами была продемонстрирована возможностьобнаружения молекулярных колоний путемгибридизации на фильтре с флуоресцентными зондами(Четверина и др., в печати), а также бесконтактногообнаружения молекулярных колоний ДНК непосредственнов геле с использованием «гомогенных» флуоресцентныхсистем детекции (Samatov et al., 2006) [20]. Врезультате процедура клонирования стала значительнобыстрее, проще и дешевле.Колония ДНК содержит до 108 молекул продуктаПЦР длиной свыше 1500 пар оснований, а число колонийпропорционально и близко к числу добавленных молекулматрицы (Samatov et al., 2005) [19]. Иными словами,в отличие от клонирования in vivo с использованиемвекторов и трансформации клеток, в виде колонии ДНКвыявляется почти каждая исходная молекула гена. Таким