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Ciclo reproductivo, cultivo en criadero y en el medio natural de la ...

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6. Cultivo <strong>en</strong> <strong>el</strong> <strong>medio</strong> <strong>natural</strong><br />

220<br />

Se calculó <strong>el</strong> peso seco <strong>de</strong> <strong>la</strong> vianda liofilizando una muestra <strong>de</strong> tejido durante 24<br />

horas y para <strong>el</strong> peso seco <strong>de</strong> <strong>la</strong> concha se mantuvieron <strong>en</strong> estufa a 100ºC durante 24<br />

horas.<br />

El estudio <strong>de</strong> composición bioquímica se realizó según los sigui<strong>en</strong>tes métodos. La<br />

<strong>de</strong>terminación <strong>de</strong> proteínas se realizó a partir d<strong>el</strong> método <strong>de</strong> Lowry et al. (1951), <strong>la</strong><br />

cuantificación <strong>de</strong> los lípidos según <strong>el</strong> método <strong>de</strong> Marsh y Weinstein (1966) y los<br />

carbohidratos se utilizó <strong>el</strong> método <strong>de</strong> <strong>la</strong> Antrona (Fraga, 1956).<br />

Los métodos utilizados para <strong>la</strong> <strong>de</strong>terminación <strong>de</strong> proteínas y carbohidratos son<br />

los mismos que los utilizados para <strong>el</strong> análisis <strong>de</strong> los prog<strong>en</strong>itores, <strong>de</strong>scritos<br />

ampliam<strong>en</strong>te <strong>en</strong> los apartados 3.2.6.2 (proteínas) y 5.2.7 (carbohidratos).<br />

Los lípidos totales se hal<strong>la</strong>ron por <strong>el</strong> método <strong>de</strong> Marsh y Weinstein (1966),<br />

utilizando como estándar <strong>la</strong> tripalmitina <strong>en</strong> un rango <strong>de</strong> conc<strong>en</strong>traciones <strong>de</strong> 5‐50 μg<br />

para hacer <strong>la</strong> recta <strong>de</strong> calibración.<br />

Se partió <strong>de</strong> una muestra <strong>de</strong> tejido liofilizado (<strong>en</strong>tre 1‐2 mg), a <strong>la</strong> cual se le<br />

añadió 400 μl <strong>de</strong> agua Milli‐Q y se sonicó durante 30 segundos. Posteriorm<strong>en</strong>te, se<br />

añadió 1 ml <strong>de</strong> metanol y 500 μl <strong>de</strong> cloroformo, mant<strong>en</strong>iéndo<strong>la</strong> durante 10 minutos <strong>en</strong><br />

baño <strong>de</strong> hi<strong>el</strong>o y agitándo<strong>la</strong> a continuación durante 2 minutos. Se c<strong>en</strong>trifugó y se<br />

recogió <strong>el</strong> sobr<strong>en</strong>adante <strong>en</strong> otro tubo, al que se le añadió 500 μl <strong>de</strong> cloroformo y 500<br />

μl <strong>de</strong> agua Milli‐Q; se mantuvieron <strong>en</strong> baño <strong>de</strong> hi<strong>el</strong>o durante 5 minutos y a<br />

continuación se agitaron.<br />

Tras c<strong>en</strong>trifugar, se <strong>el</strong>iminó <strong>el</strong> sobr<strong>en</strong>adante y <strong>la</strong> parte inferior se evaporó a<br />

60ºC, para seguidam<strong>en</strong>te redisolver<strong>la</strong> <strong>en</strong> 2 ml <strong>de</strong> cloroformo. Se tomaron 3 alícuotas<br />

<strong>de</strong> 100 μl <strong>en</strong> tubos <strong>de</strong> reacción y se evaporaron a 60ºC. Se añadió 500 μl <strong>de</strong> ácido<br />

sulfúrico a los tubos <strong>de</strong> reacción y se prepararon 3 b<strong>la</strong>ncos <strong>de</strong> ácido sulfúrico. Los<br />

tubos se agitaron y se mantuvieron a 200ºC durante 30 minutos para luego <strong>en</strong>friarlos<br />

<strong>en</strong> hi<strong>el</strong>o, añadir 1,5 ml <strong>de</strong> agua Milli‐Q y leer <strong>la</strong> absorbancia a 375 nm <strong>en</strong><br />

espectrofotómetro.

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