Ciclo reproductivo, cultivo en criadero y en el medio natural de la ...
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6. Cultivo <strong>en</strong> <strong>el</strong> <strong>medio</strong> <strong>natural</strong><br />
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Se calculó <strong>el</strong> peso seco <strong>de</strong> <strong>la</strong> vianda liofilizando una muestra <strong>de</strong> tejido durante 24<br />
horas y para <strong>el</strong> peso seco <strong>de</strong> <strong>la</strong> concha se mantuvieron <strong>en</strong> estufa a 100ºC durante 24<br />
horas.<br />
El estudio <strong>de</strong> composición bioquímica se realizó según los sigui<strong>en</strong>tes métodos. La<br />
<strong>de</strong>terminación <strong>de</strong> proteínas se realizó a partir d<strong>el</strong> método <strong>de</strong> Lowry et al. (1951), <strong>la</strong><br />
cuantificación <strong>de</strong> los lípidos según <strong>el</strong> método <strong>de</strong> Marsh y Weinstein (1966) y los<br />
carbohidratos se utilizó <strong>el</strong> método <strong>de</strong> <strong>la</strong> Antrona (Fraga, 1956).<br />
Los métodos utilizados para <strong>la</strong> <strong>de</strong>terminación <strong>de</strong> proteínas y carbohidratos son<br />
los mismos que los utilizados para <strong>el</strong> análisis <strong>de</strong> los prog<strong>en</strong>itores, <strong>de</strong>scritos<br />
ampliam<strong>en</strong>te <strong>en</strong> los apartados 3.2.6.2 (proteínas) y 5.2.7 (carbohidratos).<br />
Los lípidos totales se hal<strong>la</strong>ron por <strong>el</strong> método <strong>de</strong> Marsh y Weinstein (1966),<br />
utilizando como estándar <strong>la</strong> tripalmitina <strong>en</strong> un rango <strong>de</strong> conc<strong>en</strong>traciones <strong>de</strong> 5‐50 μg<br />
para hacer <strong>la</strong> recta <strong>de</strong> calibración.<br />
Se partió <strong>de</strong> una muestra <strong>de</strong> tejido liofilizado (<strong>en</strong>tre 1‐2 mg), a <strong>la</strong> cual se le<br />
añadió 400 μl <strong>de</strong> agua Milli‐Q y se sonicó durante 30 segundos. Posteriorm<strong>en</strong>te, se<br />
añadió 1 ml <strong>de</strong> metanol y 500 μl <strong>de</strong> cloroformo, mant<strong>en</strong>iéndo<strong>la</strong> durante 10 minutos <strong>en</strong><br />
baño <strong>de</strong> hi<strong>el</strong>o y agitándo<strong>la</strong> a continuación durante 2 minutos. Se c<strong>en</strong>trifugó y se<br />
recogió <strong>el</strong> sobr<strong>en</strong>adante <strong>en</strong> otro tubo, al que se le añadió 500 μl <strong>de</strong> cloroformo y 500<br />
μl <strong>de</strong> agua Milli‐Q; se mantuvieron <strong>en</strong> baño <strong>de</strong> hi<strong>el</strong>o durante 5 minutos y a<br />
continuación se agitaron.<br />
Tras c<strong>en</strong>trifugar, se <strong>el</strong>iminó <strong>el</strong> sobr<strong>en</strong>adante y <strong>la</strong> parte inferior se evaporó a<br />
60ºC, para seguidam<strong>en</strong>te redisolver<strong>la</strong> <strong>en</strong> 2 ml <strong>de</strong> cloroformo. Se tomaron 3 alícuotas<br />
<strong>de</strong> 100 μl <strong>en</strong> tubos <strong>de</strong> reacción y se evaporaron a 60ºC. Se añadió 500 μl <strong>de</strong> ácido<br />
sulfúrico a los tubos <strong>de</strong> reacción y se prepararon 3 b<strong>la</strong>ncos <strong>de</strong> ácido sulfúrico. Los<br />
tubos se agitaron y se mantuvieron a 200ºC durante 30 minutos para luego <strong>en</strong>friarlos<br />
<strong>en</strong> hi<strong>el</strong>o, añadir 1,5 ml <strong>de</strong> agua Milli‐Q y leer <strong>la</strong> absorbancia a 375 nm <strong>en</strong><br />
espectrofotómetro.