Memoria Seminarios _IIZD - eVirtual UASLP - Universidad ...

COMPOSICÓN QUÍMICA Y MICROBIOTA FUNGICA EN VAINAS DE MEZQUITE
(Prosopis laevigata)
L.Y. Peña-Avelino a , J.M. Pinos-Rodríguez b , B.I. Juárez-Flores b , L. Yáñez-Estrada c
Palabras clave: P. laevigata, hongos contaminantes
Introducción En las zonas áridas y
semiáridas de México existen recursos
naturales espontáneos de uso múltiple.
El mezquite (P. laevigata) con un sistema
radical profundo, está adaptado a las
condiciones ambientales de las regiones
de baja precipitación pluvial. Los frutos
de esta leguminosa son considerados
como un recurso alimenticio para
humanos y animales de las zonas áridas
y semiáridas del mundo. Al presentar las
vainas un valor importante de nutrientes
y sumado a una inadecuada
deshidratación, pueden ser susceptibles
al desarrollo de hongos contaminantes
ambientales, algunos de ellos,
productores de micotoxinas, tal como las
aflatoxinas que representa un riesgo a la
salud (Cabral et al., 2007) (1). Los
trabajos relacionados al estudio de
antinutrientes en el mezquite son
escasos y más aún en sus fracciones,
por esta razón el estudio detallado de
esta leguminosa puede conducir a un
mejor aprovechamiento que beneficiaria
en mayor medida a las poblaciones
rurales.
Objetivo Caracterizar los nutrientes y
antinutrientes de vainas completas y
fracciones (endocarpio, exo-mesocarpio
y semillas) de mezquite.
Metodología Se determinó el contenido
de proteína según lo establecido en la
AOAC. (1997) (2). Se realizó la
identificación y el recuento de las
unidades formadoras de colonias
(UFC/g) para mohos y levaduras,
siguiendo la metodología de Allaert y
Escola, (2002) (3). En tanto, se validó el
método analítico para la cuantificación de
taninos (ISO 1948:1988) (4) realizado por
(UV-Vis). Así también se llevo a cabo la
validación instrumental y analítica para la
cuantificación de azucares (Ribosa,
Xilosa, Fructosa, Glucosa y Sacarosa)
por medio del método de Estándar
Interno (Lactosa) (5) según lo que
mencionan la AOAC, (2006) (6) y
Barreira et al.,(2010) (7).
Resultados Con relación al contenido de
proteína, la vaina completa blanca resultó
con mayor concentración con respecto a
la vaina roja completa. Al contrario del
contenido de taninos. El método analítico
para la cuantificación de taninos resulto
ser preciso lineal y confiable. El rango
lineal fue de 0.05 a 0.5 mg/ml, el límite de
detección y de cuantificación fue de 0.02,
0.05 mg/ml, respectivamente. El
contenido de taninos esta inversamente
proporcional las UFC/g. De las especies
de hongos contaminantes identificadas,
Asperillus nidulans fue el de mayor
porcentaje. En lo concerniente al método
de validación para azucares, la precisión
del sistema fue menor al 2%, de CV (%)
según lo establecido por Horwitz, (1984).
Se observo un efecto de matriz
importante al usar el método del estándar
interno por lo cual, la cuantificación se
realizó por el método de adición de
estándar.
Bibliografía
(1) Cabral Jr., C. R., E. P. R. Amorim, E.C. Miranda, D.M.
Pinheiro, D.A. Silva, M.V.M. Andrade e M.S.C. Pinto. 2007.
Microbiota fungica em vagens desidratadas e armazenadas
de Prosopis juliflora (SW) D.C.
(2) Association of Official Analytical Chemists (AOAC).
1997. Official Methods of analysis. 15 th ed. Washington, D.
C. USA. 1289 p.
(3) Allaert y Escola (2002). Métodos de análisis
microbiológicos de los alimentos. Ed. Diaz Santos. Madrid,
España. 272p.
(4) ISO, 1988. Sorghum. Determination of tannin content.
International Organization for Standardization, ISO
9648:1988.
(5) Quattrocchi O. A., 1992. Introducción a la HPLC.
Aplicación y práctica. Buenos Aires, Argentina. 407p.
(6) AOAC International. 2006. Offcial method 982.14.
Glucose, Fructose, Sucrose and maltose in preweetened
cereals.
(7) Barreira, J. C. M., J. A.Periera, P.P. Oliviera, I.C.F.R.
Ferreira. 2010. Sugar profiles of different chestnut by
HPLC- RI. Plant Foods. Hum Nutri. 6:38-43.
(5) Horwitz, W. 1984. Evaluation of analytical methods used
for regulation of foods and drugs. Food and Drug
Administration. Washinton, D.C.
16