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1. Digestion de l'ADN par les enzymes de - Département de biologie

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Dé<strong>par</strong>tement <strong>de</strong> <strong>biologie</strong> Page 3 sur 6<br />

Commentaire : 1 unité d’enzyme peut digérer 1µg d’ADN en une heure. Vous allez<br />

utiliser 5 unités d’enzyme (contenues dans un microlitre d’enzyme) pendant 30 minutes<br />

ce qui est plus que suffisant pour digérer 1µg <strong>de</strong> plasmi<strong>de</strong>. On utilise habituellement plus<br />

d’enzyme que nécessaire (= on dit que l’on travaille en excès d’enzyme).<br />

Étape 3 : l’inactivation <strong>de</strong>s <strong>enzymes</strong> <strong>de</strong> restriction à la fin <strong>de</strong>s digestions<br />

À la fin <strong>de</strong> la digestion, il faut chauffer <strong>les</strong> <strong>de</strong>ux tubes à 70°C (en <strong>les</strong> transférant<br />

dans un bain-marie chauffé à cette température) pendant 10 minutes, pour inactiver <strong>les</strong><br />

<strong>enzymes</strong>. Les <strong>enzymes</strong> sont <strong>de</strong>s protéines et à 70°C leurs structures secondaires et<br />

tertiaires sont fortement modifiées, et <strong>de</strong> ce fait, el<strong>les</strong> ne sont plus actives.<br />

Étape 4 : la ligation<br />

Il faut d’abord centrifuger brièvement <strong>les</strong> <strong>de</strong>ux tubes car pendant l’inactivation il<br />

se produit un peu d’évaporation : <strong>de</strong>s gouttelettes se sont formées sur la <strong>par</strong>oi et le<br />

capuchon <strong>de</strong>s tubes. Donc, vous centrifugez <strong>les</strong> <strong>de</strong>ux tubes pendant 10 secon<strong>de</strong>s dans la<br />

microfuge (une petite centrifugeuse <strong>de</strong> paillasse). Les gouttelettes retombent au fond du<br />

tube.<br />

ATTENTION à la manière <strong>de</strong> disposer <strong>les</strong> tubes dans la centrifugeuse !!! Ils<br />

doivent être dans <strong>de</strong>s supports diamétralement opposés !<br />

Mettre ensuite <strong>les</strong> tubes dans <strong>de</strong> la glace pilée, dans une boîte <strong>de</strong> polystyrène, pendant<br />

que vous pré<strong>par</strong>ez <strong>les</strong> tubes <strong>de</strong> l’étape suivante.<br />

Vous allez faire maintenant 3 ligations, chacune dans un tube Eppendorf différent :<br />

<strong>1.</strong> une fraction du plasmi<strong>de</strong> digéré plus 2µl <strong>de</strong> l’ADN lambda digéré<br />

2. une fraction du plasmi<strong>de</strong> digéré plus 4µl <strong>de</strong> l’ADN lambda digéré<br />

3. une fraction du plasmi<strong>de</strong> digéré seul (= sans ajouter <strong>de</strong> l’ADN <strong>de</strong> lambda)<br />

Les ligations se font dans un volume final <strong>de</strong> 10µl.<br />

Vous avez dans le portoir <strong>les</strong> tubes contenant :<br />

− du tampon <strong>de</strong> ligation (5X [concentré 5 fois] ; donc il <strong>de</strong>vra être dilué 5 fois)<br />

− <strong>de</strong> l’enzyme ligase (concentration <strong>de</strong> l’enzyme dans le tube : 1unité/µl)<br />

• Ligation <strong>de</strong>s molécu<strong>les</strong> : Dans chacun <strong>de</strong>s 3 tubes Eppendorf<br />

(contenance :1,5ml), vous ajoutez dans l'ordre indiqué:<br />

− 2 µl <strong>de</strong> plasmi<strong>de</strong> digéré<br />

− 2 µl <strong>de</strong> tampon <strong>de</strong> ligation 5X<br />

Ligation 1 : on ajoute 2 µl l’ADN lambda digéré plus 3 µl d’eau<br />

Ligation 2 : on ajoute 4 µl l’ADN lambda digéré plus 1 µl d’eau<br />

Ligation 3 : on ajoute 5 µl d’eau<br />

Et enfin1 µl <strong>de</strong> ligase

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