3 - IARC
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MESAPPARIEMENT DE BASES UNIQUES<br />
hMSH6<br />
hMSH2<br />
hMSH6<br />
hMutSα<br />
CTAGGTTA<br />
GATCCGAT<br />
hMSH2<br />
hMLH1<br />
CTAGGCTA<br />
GATCCGAT<br />
hPMS2<br />
hPMS2<br />
hMLH1<br />
hMutLα<br />
Fig. 3.13 Voies de réparation des mésappariements: après la synthèse de l'ADN, les erreurs d'appariement<br />
des bases qui ont échappé à la fonction de correction de l'ADN polymérase sont reconnues<br />
par les protéines de réparation des mésappariements.<br />
reconnaissance d’une modification dans<br />
l'ADN par des enzymes qui détectent soit<br />
des formes spécifiques de lésions, soit une<br />
distorsion dans l’hélice d’ADN. La reconnaissance<br />
d'une lésion est suivie d'une<br />
étape d'excision au cours de laquelle l’ADN<br />
contenant le nucléotide modifié est<br />
supprimé. La fermeture du brin d’ADN par<br />
synthèse et ligation des extrémités libres<br />
BOUCLES D’INSERTION OU DE DELETION<br />
hMSH6<br />
hMSH2<br />
hMutSα<br />
or hMutSβ<br />
hMSH6<br />
hMSH2<br />
CA<br />
CACACACA<br />
GTGTGTGT<br />
hPMS2<br />
hMLH1<br />
CACACACA<br />
GTGTGTGT<br />
hPMS2<br />
hMLH1<br />
hMutLα<br />
termine le processus de réparation de<br />
l'ADN.<br />
La réparation par excision de nucléotides<br />
peut avoir lieu dans les régions non transcrites<br />
(ne codant pas pour des<br />
protéines) de l'ADN (fig. 3.10, étapes I à<br />
V). Une distorsion de l'ADN est reconnue,<br />
probablement par la protéine XPChHR23B<br />
(I). Une structure de bulle ouverte<br />
se forme alors autour de la lésion lors<br />
d’une réaction qui fait appel aux activités<br />
hélicases ATP-dépendantes de XPB et de<br />
XPD (deux des sous-unités de TFIIH) et qui<br />
recrute aussi XPA et RPA (II-III). Les<br />
nucléases XPG et ERCC1-XPF excisent et<br />
libèrent un oligonucléotide de 24 à 32<br />
résidus (IV), la fermeture du brin d'ADN<br />
est réalisée par des polymérases (POL) ε<br />
et δ PCNA-dépendantes et les extrémités<br />
libres sont ligaturées par une ADN-ligase,<br />
que l'on présume être LIG1 (V). La réparation<br />
par excision de nucléotides dans des<br />
régions qui sont transcrites (et qui, par<br />
conséquent, codent pour des protéines)<br />
requiert l'action de TFIIH [11].<br />
La réparation par excision de bases (fig.<br />
3.11, étapes I à VI ou étapes III à IX)<br />
implique le retrait d'une seule base grâce<br />
au clivage de la liaison sucre-base par une<br />
ADN-glycosylase spécifique de la lésion<br />
(par exemple, hNth1 ou l’uracile ADNglycosylase)<br />
et l'incision par une nucléase<br />
apurinique/apyrimidinique (AP1 humain)<br />
[12]. La fermeture du brin d'ADN peut se<br />
faire par remplacement d'une seule base<br />
ou par re-synthèse de plusieurs bases dans<br />
le brin lésé, selon la voie utilisée.<br />
Des formes plus complexes et moins<br />
habituelles des lésions de l’ADN, telles<br />
que des cassures d’ADN double-brin, des<br />
sites groupés de lésions de bases et des<br />
lésions non codantes qui bloquent le<br />
processus de réplication normal, sont<br />
Agent Région hypersensible aux mutations Type de mutation Tumeurs associées<br />
(> = changement en)<br />
Benzo[a]pyrène Codons 157, 158, 248, 273 Transversions G>T Poumon, larynx<br />
(fumée de tabac)<br />
Amino-4 biphényl Codons 280, 285 Transversions G>C Vessie<br />
(colorants aromatiques,<br />
Transitions G>A<br />
fumée de tabac)<br />
Aflatoxine B 1 Codon 249 AGG>AGT Carcinome hépatocellulaire<br />
(arginine > sérine)<br />
Ultraviolet (UV) Codons 177-179, 278 Transitions C>T Cancer de la peau<br />
Transitions CC>TT<br />
(pas le mélanome)<br />
Chlorure de vinyle Plusieurs codons Transversions A>T Angiosarcome du foie<br />
Méchanisme endogène (favorisé Codons 175, 248, 273, 282 Transitions C>T aux dinucléo- Cancers du colon, de<br />
par NO) tides CpG l’estomac, du cerveau<br />
Tableau 3.2 Spectres de mutations p53 provoquées par des cancérogènes environnementaux ou des mécanismes endogènes<br />
94 Mécanismes du développement tumoral