TITRE THESE

MINISTERE DE L’EDUCATION NATIONALE 

REPUBLIQUE DU MALI 

************************* UN PEUPLE – UN BUT – UNE FOI 

UNIVERSITE DE BAMAKO 

Faculté de Médecine, de Pharmacie et d’Odonto-Stomatologie (FMPOS) 

Année universitaire : 2006– 2007 

TITRE 

N°……… 

Etude de la phytochimie et des 

activités antibactériennes et 

antifongiques de cinq plantes médicinales 

utilisées dans le traitement tradtionnel 

des dermatoses au Mali. 

THESE 

Présentée et soutenue publiquement le 27 février 2007 

Devant la Faculté de Médecine de Pharmacie et d’Odontostomatologie 

par 

Mlle Marjorie EYANG ESSENG 

Pour obtenir le Grade de Docteur en Pharmacie (Diplôme d’état) 

COMPOSITION DU JURY 

Président: Professeur Ibrahim I. MAIGA 

Membre: 

Docteur KONARE Habibatou DIAWARA 

Membre: 

Docteur Rokia SANOGO 

Directeur de thèse: Professeur Drissa DIALLO

FACULTE DE MEDECINE, DE PHARMACIE ET D’ODONTO-STOMATOLOGIE 

ANNEE UNIVERSITAIRE 2005 - 2006 

ADMINISTRATION 

DOYEN : Anatole TOUNKARA- PROFESSEUR 

1 er ASSESSEUR : Drissa DIALLO - MAITRE DE CONFERENCES AGREGE 

2 ème ASSESSEUR : Sekou SIDIBE - MAITRE DE CONFERENCES 

SECRETAIRE PRINCIPAL : Yénimégué Albert DEMBELE - PROFESSEUR 

AGENT COMPTABLE : MADAME COULIBALY Fatoumata TALL -CONTROLEUR 

DE FINANCES 

PROFESSEURS HONORAIRES 

Mr Alou BA 

Mr Bocar SALL 

Mr Souleymane SANGARE 

Mr Yaya FOFANA 

Mr Mamadou L TRAORE 

Mr Balla COULIBALY 

Mr Mamadou KOUMARE 

Mr Mohamed TOURE 

Mr Ali Nouhoum DIALLO 

Mr Aly GUINDO 

Ophtalmologie 

Orthopédie Traumatologie-Secourisme 

Pneumo- phtisiologie 

Hématologie 

Chirurgie Générale 

Pédiatrie 

Pharmacognosie 

Pédiatrie 

Médecine Interne 

Gastro-Entérologie 

LISTE DU PERSONNEL ENSEIGNANT PAR D.E. R & PAR GRADE 

D.E.R.CHIRURGIE ET SPECIALITES CHIRURGICALES 

1. PROFESSEURS 

Mr Abdel Karim KOUMARE 

Mr Sambou SOUMARE 

Mr Abdou Alassane TOURE 

Mr Kalilou OUATTARA 

Mr Amadou DOLO 

Mr Alhousseini Ag MOHAMED 



Orthopédie–Traumatologie. Chef de D.E.R 

Urologie 

Gynéco-Obstétrique 

O.R.L. 

2. MAITRES DE CONFERENCES AGREGES 

Mr Abdoulaye DIALLO 

Mr Djibril SANGARE 

Mr Abdel Kader TRAORE Dit DIOP 


Mr Gangaly DIALLO 

Mr Mamadou TRAORE 

Mr Sadio YENA 

Mr Youssouf COULIBALY 

Ophtalmologie 



Anesthésie- Réanimation 

Chirurgie viscérale 


Chirurgie Générale et Traumatologie 

Anesthésie -Réanimation

3. MAITRES DE CONFERENCES 

Mme SY Aïda SOW 

Mr Salif DIAKITE 

Mr Filifing SISSOKO 

Mr Sekou SIDIBE 


Mr Tiéman COULIBALY 

Mme TRAORE J. THOMAS 

4. MAITRES ASSISTANTS 

Mme DIALLO Fatimata S. DIABATE 

Mr Issa DIARRA 

Mr Samba Karim TIMBO 

Mme TOGOLA Fanta KONIPO 

Mr Zimogo Zié SANOGO 

5. ASSISTANTS CHEFS DE CLINIQUE 

Mme Diénéba DOUMBIA 

Mr Mamadou L. DIOBANA 

Mr Nouhoum ONGOIBA 

Mr Zanafon OUATTARA 

Mr Adama SANGARE 

Mr Sanoussi BAMANI 

Mr Doulaye SACKO 

Mr Ibrahim ALWATA 

Mr Lamine TRAORE 

Mr Mady MAKALOU 

Mr Aly TEMBELY 

Mr Niani MOUNKORO 

Mr Tiemoko D. COULIBALY 

Mr Souleymane TOGORA 

Mr Mohamed KEITA 

D.E.R DES SCIENCES FONDAMENTALES 


Mr Daouda DIALLO 

Mr Siné BAYO 

Mr Amadou DIALLO 

Mr Moussa HARAMA 

Mr Ogobara DOUMBO 

Mr Yénimégué Albert DEMBELE 

Mr Anatole TOUNKARA 

Mr Bakary M. CISSE 

Mr Abdourahamane S. MAIGA 

Mr Adama DIARRA 

Mr Massa SANOGO 




Orthopédie – Traumatologie 

Anesthésie - Réanimation 

Orthopédie – Traumatologie 

Ophtalmologie 


Gynéco-obstétrique 

ORL 

ORL 


Anesthésie-Réanimation 

Stomatologie 

Anatomie & Chirurgie Générale 

Urologie 

Orthopédie-Traumatologie 

Ophtalmologie 

Ophtalmologie 

Orthopédie- Traumatologie 

Ophtalmologie 

Orthopédie-Traumatologie 

Urologie 

Gynécologie-Obstétrique 

Odontologie 

Odontologie 

ORL 

Chimie Générale & Minérale 

Anatomie-Pathologie-Histoembryologie 

Biologie 

Chimie Organique 

Parasitologie- Mycologie 


Immunologie Chef de D.E.R 

Biochimie 

Parasitologie 

Physiologie 

Chimie Analytique


Mr Amadou TOURE 

Mr Flabou BOUGOUDOGO 

Mr Amagana DOLO 


Mr Mamadou KONE 

Mr Mamadou CISSE 

Mr Sekou F.M. TRAORE 

MR Abdoulaye DABO 

Mr Ibrahim I. MAIGA 


Mr Abdourahamane TOUNKARA 

Mr Moussa Issa DIARRA 

Mr Kaourou DOUCOURE 

Mr Bouréma KOURIBA 

Mr Souleymane DIALLO 

Mr Cheik Bougadari TRAORE 

Mr Lassana DOUMBIA 

Mr Mounirou BABY 

Mr Mahamadou A. THERA 

5. ASSISTANTS 

Mr Mangara M. BAGAYOGO 

Mr Guimogo DOLO 

Mr Abdoulaye TOURE 

Mr Djibril SANGARE 

Mr Mouctar DIALLO 

Mr Boubacar TRAORE 

Mr Bokary Y. SACKO 

Histoembryologie 

Bactériologie-Virologie 

Parasitologie 

Physiologie 

Biologie 

Entomologie médicale 

Malacologie-Biologie animale 

Bactériologie - Virologie 

Biochimie 

Biophysique 

Biologie 

Immunologie 

Bactériologie-Virologie 

Anatomie-Pathologie 


Hématologie 

Parasitologie 

Entomologie Moléculaire Médicale 


Entomologie moléculaire médicale 


Biologie parasitologie 

Immunologie 

Biochimie 

D.E.R. DE MEDECINE ET SPECIALITES MEDICALES 


Mr Abdoulaye Ag RHALY 

Mr Mamadou K. TOURE 

Mr Mahamane MAIGA 

Mr Baba KOUMARE 

Mr Moussa TRAORE 

Mr Issa TRAORE 

Mr Mamadou M. KEITA 

Mr Hamar A. TRAORE 

Mr Dapa Aly DIALLO 

Mr Moussa Y. MAIGA 

Mr Somita KEITA 


Cardiologie 

Néphrologie 

Psychiatrie Chef de D.E.R 

Neurologie 

Radiologie 

Pédiatrie 


Hématologie 

Gastro-Entérologie- Hépatologie 

Dermato-Léprologie


Mr Toumani SIDIBE 

Pédiatrie 

Mr Bah KEITA 

Pneumo-phtisiologie 

Mr Boubacar DIALLO 

Cardiologie 

Mr Abdel Kader TRAORE 


Mr Siaka SIDIBE 

Radiologie 

Mr Mamadou DEMBELE 


Mme SIDIBE Assa TRAORE 

Endocrinologie 


Mr Mamady KANE 

Mr Saharé FONGORO 

Mr Bakoroba COULIBALY 

Mr Bougouzié SANOGO 

Mr Adama D. KEITA 


Mme Tatiana KEITA 

Mme TRAORE Mariam SYLLA 

Mme Habibatou DIAWARA 

Daouda K. MINTA 

Radiologie 

Néphrologie 

Psychiatrie 

Gastro-entérologie 

Radiologie 

Pédiatrie 

Pédiatrie 

Dermatologie 

Maladies Infectieuses 

5. ASSISTANTS CHEFS DE CLINIQUE 

Mr Bou DIAKITE 

Psychiatrie 

Mr Kassoum SANOGO 

Cardiologie 

Mr Seydou DIAKITE 

Cardiologie 

Mr Mahamadou B.CISSE 

Pédiatrie 

Mr Arouna TOGORA 

Psychiatrie 

Mme DIARRA Assétou SOUCKO Médecine Interne 

Mr Boubacar TOGO 

Pédiatrie 

Mr Mahamadou TOURE 

Radiologie 

Mr Idrissa A CISSE 

Dermatologie 

Mr Mamadou B DIARRA 

Cardiologie 

Mr Anselme KONATE 

Hépato-Gastro -Entérologie 

Mr Moussa T. DIARRA 

Hépato-Gastro-Entérologie 

Mr Souleymane DIALLO 

Pneumologie 

Mr Souleymane COULIBALY 

Psychologie 

Mr Soungalo DAO 

Maladies Infectieuses 

Mr Cheick Oumar GUINTO 

Néphrologie

D.E.R. DES SCIENCES PHARMACEUTIQUES 


Mr Boubacar Sidiki CISSE 

Mr Gaoussou KANOUTE 

Toxicologie 

Chimie analytique, Chef de D.E.R 


Mr Ousmane DOUMBIA 

Pharmacie Chimique 

Mr Drissa DIALLO 

Matières Médicales 


Mr Boulkassoum HAIDARA 

Mr Elimane MARIKO 

Mr Bénoit KOUMARE 

Mr Alou KEITA 

Mr Ababacar I. MAIGA 

Législation 

Pharmacologie 

Chimie Analytique 

Galénique 

Toxicologie 


Mr Yaya KANE 

Mme Rokia SANOGO 

5. ASSISTANTS 

Mr Saïbou MAIGA 

Mr Ousmane KOITA 

Galénique 

Phamacognosie 

Législation 

Parasitologie Moléculaire 

D.E.R . DE SANTE PUBLIQUE 

1. PROFESSEUR 

Mr Sidi Yaya SIMAGA 

2. MAITRE CONFERENCES AGREGE 

Mr Moussa A MAIGA 

3. MAITRE DE CONFERENCES 

Mr Sanoussi KONATE 


Mr Bocar G.TOURE 

Mr Adama DIAWARA 

Mr Hamadoun SANGHO 

Mr Massambou SACKO 

Mr Alassane A. DICKO 

5. ASSISTANTS 

Mr Samba DIOP 

Mr Seydou DOUMBIA 

Mr Oumar THIERO 

Santé Publique, Chef de D.E.R 

Santé Publique 







Anthropologie Médicale 

Epidémiologie 

Biostatistique

CHARGES DE COURS & ENSEIGNANTS VACATAIRES 

Mr N’Golo DIARRA 

Mr Bouba DIARRA 

Mr Salikou SANOGO 

Mr Boubacar KANTE 

Mr souleymane GUINDO 

Mme DEMBELE Sira DIARRA 

Mr Modibo DIARRA 

Mme MAIGA Fatoumata SOKONA 

Mr Mahamadou TRAORE 

Mr Yaya COULIBALY 

Botanique 

Bactériologie 

Physique 

Galénique 

Gestion 

Mathématiques 

Nutrition 

Hygiène du Milieu 

Génétique 

Législation 

ENSEIGNANTS EN MISSION 

Pr. Doudou BA 

Pr. Babacar FAYE 

Pr. Eric PICHARD 

Pr. Mounirou CISS 

Pr. Amadou Papa DIOP 

Bromatologie 

Pharmacodynamie 

Pathologie Infectieuse 

Hydrologie 

Biochimie

DEDICACES 

A Dieu le tout puissant : 

Le Seigneur est mon berger, je ne manquerais de rien. Il me fait reposer dans de verts 

pâturages. Il me dirige près des eaux paisibles. Il restaure mon âme, il me conduit dans les 

sentiers de la justice, à cause de son nom. 

Quand je marche dans la vallée de l’ombre, de la mort, je ne crains aucun mal, car tu es 

avec moi. Ta houlette et ton bâton me rassurent. Tu dresses devant moi une table. En face de 

mes adversaires ; tu oins d’huile ma tête. Et ma coupe déborde. 

Oui, le bonheur et la grâce m’accompagneront tous les jours de ma vie. Et je reviendrai 

dans la maison de l’Eternel pour la durée de mes jours. 

Psaume 23 

A mes parents 

Je ne pourrai jamais assez vous dire merci pour les conseils, le soutien, les encouragements et 

pour les prières qui m’ont accompagnés tout au long de mes études. Ce travail est le fruit de 

tous vos sacrifices, que mieux que des mots, il traduise tout l’amour que je ressens pour vous. 

Que Dieu vous garde longtemps près de nous. 

A mes frères et sœurs : Ursule, Léonce, Léonie, Yves, Isabelle, Sandrine, Ludwine, 

Anita, Leslie, Léandre, Paul. Ce travail est aussi le vôtre car sans votre soutien, vos 

encouragements et vos conseils il n’aurait pas vu le jour. 

A mes grands parents (in memorium) 

A Joel: Merci pour ton soutien, ta patience, tes encouragements et ton amour. Tu m’as 

donné la force et le courage de me relever à chaque fois que j’ai trébuché et l’un de mes plus 

grands regrets sinon le plus grand en ce jour est ton absence.

REMERCIEMENTS 

A mes tantes et oncles : merci pour vos conseils et votre soutien 

A mes cousins et cousines 

A mes neveux et nièces 

A mon pays le Gabon 

Au Mali et au peuple malien : merci pour la chaleur et l’hospitalité dont j’ai bénéficié durant 

mon séjour parmi vous. 

A la communauté gabonaise du Mali : Grâce à vous je ne me suis jamais sentie seule. Merci 

Au Docteur Huguette BERTHE : merci pour mon inscription à la Faculté de Médecine, de 

Pharmacie et d’Odonto-Stomatologie et pour ton accueil 

A mes « sœurs » : Lewise Nathalie CAESAR et NSENG NSENG ONDO Ingrid : plus que 

des amies vous avez été des sœurs. Vous avez été présentes autant pour les moments gais que 

les tristes. Je ne vous dirai jamais assez merci ! 

A mes « petites sœurs » : Mwetse, Peggy, Irène, Grâce, Sabrina, Frange, Sandy, Polle, 

Marouchka 

A mes « petites frères » : Hery, Romaric, Hytou 

A mes « frères » : Willy MINTSA, Laurent CAMARA, Armel NKOUAMBAT, Alain 

BOULENDE 

A mes « neveux » : Warel aimé, Maelle et Ianis : Vous avez été l’un de mes rayons de soleil 

au cours de cette année.

A corps professoral de la FMPOS 

Au personnel du Département Médecine Traditionnelle : merci pour tous les moments 

passés ensemble. Vous avez été et resterez une famille pour moi. 

Au personnel des sections Stérilisation et Bactériologie de l’INRSP 

A la promotion Drissa Diallo : merci. Je nous souhaite à tous beaucoup de satisfaction dans 

l’exercice de notre profession 

A mes camarades internes au DMT : Halima KARADJI, Adiza AMADOU, Aminata 

TOUNKARA, Awa COULIBALY, Lewise Nathalie CAESAR : merci pour tous les moments 

passés ensemble. Bonne chance pour l’avenir ! 

A mes cadets du DMT : Mory ELIMANE MARIKO, Boubacar TOUNKARA, Nana 

MAIGA, Samba SANOGO, Mahamane HAIDARA, Mariam DIAKITE : courage!

MENTION SPECIALE 

A l’Université d’Oslo à travers le projet CNRST – NUFU Plantes Médicinales 

Au Professeur Drissa DIALLO 

Au Docteur Rokia SANOGO 

Au Professeur Ababacar MAIGA 

Au Docteur Dominique ARAMA : pour ton aide et tes conseils dans la réalisation de ce 

travail. 

A tonton YOSSI : merci pour la disponibilité dont tu as fait preuve à mon égard. 

A tous ceux qui de près ou de loin ont contribué à la réalisation de ce travail.

HOMMAGES AUX MEMBRES DU JURY 

A notre maître et président de jury : Professeur Ibrahim I. MAIGA 

Maître de conférences de bactériologie - virologie, 

Chef de service du laboratoire de biologie médicale de l’Hôpital National du Point G, 

Responsable de l’enseignement de la bactériologie et de la virologie à la FMPOS. 

Cher maître, c’est un grand plaisir et grand honneur que vous nous faites en acceptant de 

Présider ce jury. 

Les mots nous manquent pour vous exprimer l’admiration que nous éprouvons à votre égard. 

Veuillez accepter cher maître, nos sentiments d’estime, de respect et de profonde 

reconnaissance. 

A notre maître et juge : Docteur Habibatou DIAWARA 

Maître Assistant en dermatologie 

Chargée de l’enseignement de la dermatologie à la FMPOS 

Vous nous faites beaucoup d’honneur en acceptant de siéger dans ce jury. Veuillez trouver 

ici, l’expression de notre profond respect.

A notre maître et juge : Docteur Rokia SANOGO 

PhD en pharmacognosie 

Maître Assistant en Pharmacognosie 

Chargée de l’enseignement de la Pharmacognosie à la FMPOS. 

Nous avons pour vous la plus vive reconnaissance et affection. Nous avons été très honorée 

de travailler avec vous sur ce document 

Trouvez ici cher maître l’expression de notre attachement et de notre gratitude 

A notre Maître et Directeur de thèse : Professeur Drissa DIALLO 

Maître de conférences agrégé en Pharmacognosie, 

Responsable de l’enseignement de la Pharmacognosie et de la Phytothérapie à la FMPOS, 

Chef du Département de Médecine Traditionnelle de l’INRSP. 

Permettez-nous de vous adresser nos remerciements pour l’honneur que vous nous avez 

fait en nous guidant dans la réalisation de ce travail. Nous avons été heureux de travailler 

sous votre direction ; vous avez fait preuve de patience et de disponibilité à notre égard et 

c’est avec intérêt que nous avons apprécié votre rigueur dans la démarche scientifique. 

Puissiez-vous trouver ici, cher Maître le témoignage de notre reconnaissance la plus 

sincère.

SOMMAIRE 

INTRODUCTION....................................................................................................................1 

MOTIVATIONS ET OBJECTIFS…………………………………………………………..3 

TRAVAUX ANTERIEURS 

1. Rappels ................................................................................................................................. 4 

1.1. Les dermatoses ................................................................................................................ 4 

1.1.1 Les dermatoses bactériennes ..................................................................................... 4 

1.1.2 Les dermatoses mycosiques ...................................................................................... 7 

1.2. Les antibiotiques et les antifongiques ........................................................................... 10 

1.2.1 Les antibiotiques ..................................................................................................... 10 

1.2.2 Les antifongiques .................................................................................................... 14 

1.2.3 Les méthodes d’étude des antibiotiques et des antifongiques................................. 16 

1.3 Les antioxydants............................................................................................................. 17 

1.3.1 Généralités............................................................................................................... 17 

1.3.2 Les radicaux libres .................................................................................................. 17 

1.3.3 Définition d’un antioxydant .................................................................................... 19 

1.3.4 Types d’antioxydants .............................................................................................. 19 

1.3.5 Sources d’antioxydants ........................................................................................... 19 

1.3.6 Quelques méthodes d’étude des antioxydants..............Erreur ! Signet non défini.3 

2. MONOGRAPHIE DES PLANTES .................................................................................. 24 

2.1 Psorospermum guineense Hochr.................................................................................... 24 

2.1.1 Données botaniques................................................................................................. 24 

2.1.2 Utilisations .............................................................................................................. 26 

2.1.3 Chimie ..................................................................................................................... 27 

2.1.4 Données toxicologiques et pharmacologiques ........................................................ 29 

2.1.5 Données cliniques ................................................................................................... 29 

2.1.6 Médicament traditionnel à base de Psorospermum guineense................................ 30 

2.2 Mitracarpus scaber Zucc ................................................................................................. 31 


2.2.2 Utilisations .............................................................................................................. 33 

2.2.3 Chimie ..................................................................................................................... 34 

2.2.4 Données pharmacologiques..................................................................................... 35 

2.2.5 Médicaments traditionnels améliorés à base de Mitracarpus scaber ..................... 36

2.3 Cassia nigricans Vahl .................................................................................................... 38 

3.1 Données botaniques.................................................................................................... 38 

3.2 Utilisations ................................................................................................................. 40 

3.3 Chimie de la plante..................................................................................................... 42 

3.4 Pharmacologie............................................................................................................ 42 

2.4 Swartzia madagascariensis Desv................................................................................... 44 


2.4.2 Utilisations ..............................................................................................................46 

2.4.3 Chimie de la plante.................................................................................................. 48 

2.4.4 Pharmacologie......................................................................................................... 50 

2.4.5 Toxicité.................................................................................................................... 50 

2.5 Fagara zanthoxyloïdes Lam.......................................................................................... 52 


2.5.2 Utilisations .............................................................................................................. 55 

2.5.3 Chimie de la plante.................................................................................................. 57 

2.5.4 Pharmacologie......................................................................................................... 60 

2.5.5 Etudes cliniques....................................................................................................... 61 

2.5.6 Toxicité.................................................................................................................... 62 

3. Les pommades .................................................................................................................... 63 

1. Définition ......................................................................................................................... 63 

2. Fiche technique des excipients......................................................................................... 63 

TRAVAUX PERSONNELS 

1. Méthodologie....................................................................................................................... 65 

1.1 Matériel végétal.......................................................................................................... 65 

1.2 Etudes phytochimiques .............................................................................................. 66 

1.2.1 Réactions de caractérisation…………………………………………………....66 

1.2.2 Dosages...............................................................................................................74 

1.2.3 Extractions.......................................................................................................... 80 

1.2.4 La chromatographie sur couche mince (CCM) .................................................. 84 

1.3 Détermination des activités biologiques .................................................................... 87 

1.3.1 Détermination de l'activité antioxydante……………………………….……....87 

1.3.2 Détermination de l'activité antibactérienne………………………………….....87 

1.3.3 Détermination de l'activité antifongique…………………………………….....94 

1.4 Les pommades……..………………………………………………………………...99 

2. Résultats ............................................................................................................................ 102 

2.1 Etudes phytochimiques ................................................................................................ 102 

2.1.1 Réactions de caractérisation.................................................................................. 102

2.1.2 Dosages ................................................................................................................. 103 

2.1.3 Extractions............................................................................................................. 104 

2.1.4 Chromatographie sur couche mince...................................................................... 105 

2.2 Tests biologiques.......................................................................................................... 110 

2.2.1 Résultats de l’activité antioxydante....................................................................... 110 

2.2.2 Résultats de l’activité antibactérienne des extraits.....Erreur ! Signet non défini.11 

2.2.3 Résultats de l’activité antifongique des extraits.........Erreur ! Signet non défini.16 

2.3 Les pommades...................................................................Erreur ! Signet non défini.20 

2.3.1 Contrôle de qualité des pommades...............................Erreur ! Signet non défini.0 

2.3.2 Chromatographie sur couche mince...........................Erreur ! Signet non défini.21 

2.3.3 Activité antifongique..................................................Erreur ! Signet non défini.25 

3.COMMENTAIRES ET DISCUSSION ........................................................................... 126 

CONCLUSION............................................................................. Erreur ! Signet non défini.30 

RECOMMANDATIONS............................................................. Erreur ! Signet non défini.31 

BIBLIOGRAPHIE....................................................................... Erreur ! Signet non défini.32 

ANNEXE

ABREVIATIONS 

AcOEt : acétate d’éthyle 

ADN : acide désoxyribonucléique 

ARN : acide ribonucléique 

ARNm: ARN messager 

ARNt: ARN de transfert 

BAW: butanol-acetic acid-water 

CCM: chromatographie sur couche mince 

CHCl 3 : chloroforme 

cm : centimètre 

Cn : Cassia nigricans 

DCM : dichlorométhane 

DMT : département médecine traditionnelle 

EMB : éosine bleu de méthylène 

EtOH : éthanol 

FeCl 3 : Trichlorure ferrique 

FMPOS : faculté de médecine, de pharmacie et d’odonto-stomatologie 

Fz : Fagara zanthoxyloïdes 

g : gramme 

HCl : acide chlorhydrique 

H 2 SO 4 : acide sulfurique 

INRSP : institut national de recherches en santé publique 

l : litre 

m : mètre 

MeOH : méthanol 

mg : milligramme 

MH : Muëller Hinton 

Ms : Mitracarpus scaber 

ml : millilitre 

mn : minute 

mm : millimètre 

MTA : médicament traditionnel amélioré

NH 4 OH : ammoniaque 

nm : nanomètre 

OMS : organisation mondiale de la santé 

Pg : Psorospermum guineense 

Rf : facteur de rétention (rapport frontal) 

SIDA : syndrome immunodéficitaire acquis 

Sm : Swartzia madagascariensis 

UV : ultraviolet 

° : degré 

°C : degré Celsius 

µ : micron 

µg : microgramme 

µl : microlitre

INTRODUCTION 

Les dermatoses désignent toutes les maladies de la peau. 

Elles occupent une place importante en pathologie humaine car près de 30 % des consultants 

en médecine générale présentent une dermatose (Jaiswal, 1994). 

Les infections cutanées déterminées par les agents infectieux sont polymorphes et 

fréquentes sous les tropiques. Le climat chaud, l’insuffisance de l’hygiène corporelle, la 

promiscuité et les mauvaises conditions socio-économiques concourent à l’augmentation de 

leur fréquence. 

Au Mali, les dermatoses se composent, d’une part des affections spécifiques au climat 

chaud et à la peau noire et d’autre part des affections cutanées rencontrées dans les pays 

tempérés. Elles constituent ainsi une pathologie vaste et complexe. Les dermatoses 

représentent 11 % des motifs de consultation à Bamako (Coulibaly, 2000). En consultation 

quotidienne un malade sur sept pose un problème dermatologique à son médecin traitant, ce 

qui représente 14 % des maladies (Diarra, 1990). 

La fréquence et la gravité de certaines de ces dermatoses en font un problème de santé 

publique. 

Le coût de la prise en charge de ces affections semble non négligeable. C’est pour cette 

raison qu’une grande partie de la population se fait consulter par les tradipraticiens car ces 

derniers offrent des médicaments ayant un coût relativement bas. 

Le Mali a déjà affirmé une réelle volonté de promouvoir la médecine traditionnelle par la 

mise en place en 1968 d’une structure spécialisée, l’Institut de Phytothérapie qui après des 

étapes d’évolutions est aujourd’hui le Département de Médecine Traditionnelle (DMT). Le 

DMT travaille avec les tradipraticiens afin d’offrir aux populations des médicaments 

traditionnels améliorés (MTA). 

Parmi les MTA mis au point par le DMT il existe la psorospermine et la mitradermine, 

pommades à base respectivement des racines de Psorospermum guineense et des parties 

aériennes de Mitracarpus scaber. 

C’est dans ce souci de trouver d’autres MTA que notre travail a consisté à l’étude 

phytochimique et des activités antibactériennes et antifongiques de cinq plantes médicinales 

sur certains germes responsables de dermatoses à savoir Cassia nigricans, Fagara 

zanthoxyloïdes, Mitracarpus scaber, Psorospermum guineense et Swartzia madagascariensis. 

Notre travail sera réalisé selon le plan suivant :

- Dans un premier temps nous reportons les travaux antérieurs qui consiste en une série de 

rappels sur la peau, les dermatoses, les antibiotiques, les antifongiques, les antioxydants, les 

plantes et les pommades. 

- La partie expérimentale est présentée dans un second temps. Elle porte sur : 

‣ les études phytochimiques et biologiques des plantes ; 

‣ la formulation des pommades, leur chromatographie sur couche mince et l’étude de 

l’activité antifongique de celles-ci.

MOTIVATIONS ET OBJECTIFS 

MOTIVATIONS 

Notre travail a été motivé par : 

La volonté de valoriser et de promouvoir les plantes médicinales ; 

La volonté de faciliter l’accès des populations à des médicaments de moindre coût 

L’apparition de la résistance de plus en plus significative des germes aux 

antimicrobiens ; 

La mise au point d’un nouveau médicament traditionnel amélioré contre les 

dermatoses. 

OBJECTIFS 

Objectif général 

Etudier la phytochimie et les activités antibactérienne et antifongique de 5 plantes médicinales 

utilisées dans le traitement des dermatoses. 

Objectifs spécifiques 

- Caractériser les groupes chimiques présents dans les feuilles de Psorospermum guineense, 

les parties aériennes de Mitracarpus scaber et de Cassia nigricans, les écorces de racine de 

Fagara zanthoxyloïdes et de Swartzia madagascariensis. 

- Déterminer l’activité antibactérienne des extraits de Cassia nigricans, Fagara 

zanthoxyloïdes, Mitracarpus scaber, Psorospermum guineense et Swartzia madagascariensis. 

- Déterminer l’activité antifongique des extraits de Cassia nigricans, Fagara zanthoxyloïdes, 

Mitracarpus scaber, Psorospermum guineense et Swartzia madagascariensis. 

- Déterminer l’activité antioxydante des extraits de Cassia nigricans, Mitracarpus scaber, 

Fagara zanthoxyloïdes, Psorospermum guineense et Swartzia madagascariensis. 

- Préparer des pommades avec les extraits des plantes.

1. RAPPELS 

1.1 LES DERMATOSES (Touraine, 1984) 

1.1.1 Les dermatoses bactériennes 

1.1.1.1 Les infections streptococciques 

‣ L’impétigo 

L’impétigo est une infection cutanée suppurée et contagieuse qui peut être due au 

streptocoque, au staphylocoque ou l’association des deux. C’est une affection fréquente chez 

l’enfant de moins de 10 ans. Il débute par une ou quelques petites taches érythémateuses sur 

lesquelles surviennent des bulles fragiles à liquide clair ou légèrement trouble, entourées d’un 

liseré érythémateux. Rapidement le contenu des bulles devient purulent, leur toit se rompt, 

laissant la place à des croûtes jaunâtres mélicériques (couleur miel) et à des érosions arrondies 

groupées en élément annulaire. 

‣ L’ecthyma 

C’est un impétigo creusant habituellement localisé aux membres. Il débute par une 

pustule ou par une bulle sur une base érythémateuse et infiltrée à laquelle fait suite par un 

processus nécrotique, une ulcération qui se couvre d’une croûte grise ou brunâtre. La tendance 

à la guérison spontanée est rare, si celle-ci survient c’est toujours au prix de cicatrices à 

bords hyperpigmentés. Les facteurs prédisposant sont : 

• une hygiène insuffisante des plaies banales ; 

• une diminution du pouvoir de résistance due à la dénutrition ; 

• l’éthylisme, le diabète, terrain artéritique. 

‣ Lymphangite 

C’est une inflammation des vaisseaux lymphatiques, consécutive à un processus 

mécanique, infectieux ou tumoral. 

Une lymphangite dure de 8 à 10 jours en moyenne. L’infection entraîne généralement une 

fièvre et une sensation de malaise.

‣ Erysipèle 

L’érysipèle est défini comme une dermoépidermite aigüe ou subaigüe. 

Il s’agit d’une dermite oedémateuse avec participation lymphatique due au Streptocoque β 

hémolytique du groupe A. Il est caractérisé par un placard érythémateux douloureux, infiltré, 

chaud avec bordure périphérique saillante à extension centrifuge, accompagné d’une 

adénopathie régionale sensible. La douleur et la fièvre avec frissons peuvent précéder les 

lésions cutanées. 

Il survient volontiers chez des sujets fragiles, diabétique, éthylique ou porteurs d’une 

hypersensibilité au streptocoque avec foyers streptococciques récidivants. Il peut également 

être favorisé par une immunodépression ou être iatrogène (Anti-inflammatoires non 

stéroïdiens). 

‣ Autres infections streptococciques 

Le streptocoque peut être trouvé dans certains intertrigos, en particulier interfessier, chez 

l’enfant dans les perlèches. Les « eczématides » dites microbiennes, les dermoépidermites 

microbiennes de jambe, les « parakératoses » péribuccales ne sont pas des affections au sens 

strict du terme. 

1.1.1.2 Les infections staphylococciques 

‣ Les folliculites superficielles 

Les folliculites superficielles sont dues à une infection limitée à l’ostium folliculaire, elles 

sont caractérisées par une éruption de petites pustules, centrées par un poil et bordées d’un 

halo inflammatoire érythémateux. 

On les rencontre surtout sur le visage, en particulier au niveau de la barbe mais aussi sur 

les cuisses et la face postérieure des bras. En saison chaude, les folliculites du dos favorisées 

par la transpiration et les frottements sont fréquentes. 

‣ Les folliculites profondes 

Les folliculites profondes aiguës sont les infections staphylococciques les plus 

caractéristiques, de l’adolescent et l’adulte jeune. Elles sont favorisées ou aggravées par le 

diabète.

Le furoncle 

C’est une infection aiguë du follicule pilo-sébacé due au staphylocoque doré. L’ensemble 

du follicule pileux est alors rempli de pus. Le furoncle se caractérise tout d’abord par une 

petite élevure centrée autour d’un poil, douloureuse, chaude, recouverte d’une peau luisante. 

Après quelques jours se forme le bourbillon caractéristique du furoncle : le follicule est 

remplacé par un cône dur et jaune, laissant un cratère quand il s’élimine dont la cicatrice est 

parfois définitive. 

Le panaris 

C’est une infection aigüe des doigts, quels que soient sa nature et son mode de 

propagation, pouvant atteindre tous les éléments constitutifs du doigt. 

Un panaris, couramment appelé mal blanc, est une affection fréquente, découlant de 

l’inoculation dans le doigt d’un germe, par une écharde, une piqûre ou une plaie, même 

minime. 

L’anthrax 

C’est une lésion infectieuse de l’appareil glandulaire pilo-sébacé, d’origine 

staphylococcique, constituée par l’agglomération de plusieurs furoncles. L’anthrax qui, le plus 

souvent siège à la nuque ou au dos évolue habituellement vers la diffusion et la nécrose. 

L’orgelet 

C’est l’inflammation aiguë suppurative du bord libre de la paupière 

L’orgelet externe atteint les glandes de Zeiss et s’extériorise plutôt vers la surface cutanée 

de la paupière. 

L’orgelet interne, plus profond, atteint les glandes de Meibomius et s’extériorise plutôt 

vers la partie conjonctivale de la paupière. 

1.1.1.3 Autre affection 

‣ L’érythrasma 

C’est une dermatose considérée autrefois comme une épidermomycose, due en fait à une 

bactérie filamenteuse à Gram positif, Corynebacterium minutissimum. Elle est caractérisée 

par des plaques chamois bien limitées, prurigineuse, finement squameuses, prédominant au 

niveau des aisselles et des aines, et donnant une fluorescence rougeâtre en lumière de Wood.

1.1.2 Les dermatoses mycosiques 

Dans le large groupe des champignons, organismes sans photosynthèse, un petit nombre 

est responsable de mycoses humaines. 

Trois mycoses sont fréquentes et universelles : 

- les dermatophytoses ; 

- pityriasis versicolor ; 

- les candidoses cutanéo-muqueuses. 

D’autres sont plus rares, mais profondes et sévères. 

1.1.2.1 Dermatophytoses 

Les dermatophytes sont formés d’un ensemble de filaments : le mycélium, qui peut se 

segmenter en arthrospores qui sont les facteurs de diffusion. Ils ont une affinité élective pour 

la kératine de la peau et des phanères, avec réaction inflammatoire locale variable. Il existe 

trois genres : Microsporum, Trichophyton, Epidermophyton. 

Pour l’épidémiologie, il faut distinguer : 

- les souches adaptées à l’homme. Elles sont les plus fréquentes (Trichophyton rubrum 

surtout) avec peu de réaction inflammatoire. La contagiosité est directe, surtout chez l’enfant, 

ou indirecte par linge, vêtements et surtout sol (piscine, douches, tapis) ; 

- les souches adaptées à l’animal, soit animaux domestiques (Microsporum canis), soit 

animaux d’élevage, de laboratoire. Elles sont plus inflammatoires ; 

- les souches géophiles. 

La symptomatologie dépend autant de la souche que de la zone infectée. 

1.1.2.2 Le pityriasis versicolor 

Le pityriasis versicolor est un motif très fréquent de consultation. L’agent responsable est 

une levure lipophile. Cet agent cultivable est un saprophyte cutané peu contagieux, devenant 

pathogène dans certaines conditions.

1.1.2.3 Les candidoses cutanéo-muqueuses 

‣ Les candidoses muqueuses 

Le muguet 

Il est l’aspect classique, mais rare de la candidose buccale de l’enfant et du vieillard. Elle 

donne sur la langue ou dans la bouche des dépôts blanchâtres, laiteux, facilement détachables 

de la muqueuse enflammée. La candidose érythémateuse donne une inflammation diffuse 

avec langue dépapillée. 

Les atteintes buccales et oesophagiennes s’observent fréquemment chez les 

immunodéprimés, en particulier les sidéens. 

Les candidoses génitales 

Elles sont la principale cause de vulvo-vaginites érythémato-œdémateuses, avec 

dépôts blanchâtres, prurigineuses. Elles sont souvent d’expression modérée : prurit surtout 

prémenstruel, irritation, petites leucorrhées, petits dépôts granuleux à l’examen 

gynécologique. La balanite érosive blanchâtre ou érythémateuse de l’homme est souvent 

vénérienne mais, à l’inverse, ne joue aucun rôle dans les récidives de vulvo-vaginite chez la 

partenaire. 

‣ Candidoses des plis 

Les intertrigos péri-anaux 

Ils sont prurigineux et toujours d’origine digestive. Les intertrigos inguinaux sousmammaires, 

axillaires, bilatéraux se voient essentiellement chez les obèses et les vieillards. Le 

tableau est très évocateur quand il y a bords émiettés avec collerettes et quelques pustules. Les 

dermites irritatives ou eczématiformes, le psoriasis sont cependant des causes plus fréquentes 

et souvent méconnues. 

L’intertrigo des doigts 

Il se voit surtout chez la femme ; il siège essentiellement dans le troisième espace avec 

fissure et macération.

L’intertrigo des pieds 

Il est plus ou moins diffus. Il est souvent impossible à différencier cliniquement d’une 

dermatophytose. Les associations avec des bactéries sont fréquentes. 

‣ Autres formes 

Le péri-onyxis candidosique 

Il est fréquent chez la femme par auto ou hétéro-inoculation. Il siège aux mains. Il donne 

un gonflement semi-circulaire ou partiel parfois suppuré pseudo-staphylococcique, 

douloureux ou simplement ferme, peu inflammatoire. L’onyxis est secondaire, à début latéral 

avec bord décollé, enduit jaune verdâtre, d’extension progressive sur un ou plusieurs ongles. 

Les candidoses cutanéo-muqueuses chroniques 

Ces candidoses sont rares. Elles surviennent surtout chez l’enfant, persistantes, avec 

lésions muqueuses agressives, placards cutanés parfois papillomateux, kératosiques 

(granulome moniliasique), témoignant essentiellement d’un déficit de l’immunité cellulaire 

et/ou d’une anomalie endocrinienne. 

Les lésions cutanées des septicémies à Candida, parfois autres que Candida 

albicans sont des maculo-papules. Elles surviennent surtout dans les 

hémopathies sous chimiothérapie.

1.2 Les antibiotiques et les antifongiques 

1.2.1 Les antibiotiques (Bryskier, 1999 ; Canu, 2001 ; Touitou, 2003) 

1.2.1.1 Définition 

Les antibiotiques sont des produits du métabolisme de moisissures ou de bactéries ou leurs 

dérivés obtenus par synthèse chimique qui inhibent ou détruisent, même à très faibles 

concentrations, d’autres micro-organismes. 

1.2.1.2 Spectre d’activité 

Aucun antibiotique n’est efficace contre toutes les bactéries. Un antibiotique à spectre 

large est actif sur de nombreuses bactéries à Gram + et à Gram – alors que l’efficacité d’un 

antibiotique à spectre étroit est limitée à un nombre restreint d’espèces. 

1.2.1.3 Classification 

Les antibiotiques peuvent être classés soit par leur modalités d’action, soit par leur nature 

chimique, soit par leur mécanisme d’action. 

‣ Modalités d’action 

Les antibiotiques ont, selon les cas : 

- une action bactériostatique, c’est-à-dire qu’ils ralentissent ou abolissent la croissance 

bactérienne ; 

- une action bactéricide, c’est-à-dire qu’ils détruisent les germes. 

‣ Nature chimique 

Les antibiotiques sont de natures diverses 

- les antibiotiques de nature osidique : macrolides, 

- les antibiotiques de nature protidique : polymyxine, 

- les antibiotiques de nature lipidique : acide fucidique, 

- les antibiotiques à cycles condensés : tétracyclines,

‣ Mécanisme d’action 

Le mécanisme d’action est complexe, les antibiotiques peuvent agir : 

- en empêchant les synthèses d’acides nucléiques de la bactérie ; 

- en désorganisant la membrane cytoplasmique ; 

- en perturbant des protéines bactériennes ; 

- en agissant sur la perméabilité membranaire ; 

- en agissant sur le métabolisme intermédiaire ; 

Figure n˚1 : Sites d’action des antibiotiques (www. Sante-ujf-grenoble.fr) 

1.2.1.4 Etude de la sensibilité aux antibiotiques 

Après isolement d’une souche bactérienne, le paramètre le plus utilisé pour évaluer in vitro 

sa sensibilité à un antibiotique est la mesure de la concentration minimale inhibitrice (CMI). 

Le Comité de l’antibiogramme de la Société Française de Microbiologie (CA-SFM) la définit 

comme la plus faible concentration d’une gamme de dilutions de demi en demi qui entraîne 

une inhibition de toute croissance visible en 18 à 24 h dans des conditions de pousses bien 

définies. La CMI exprimée en µg /ml reflète donc l’activité bactériostatique d’une molécule 

pour une bactérie donnée et le phénomène s’observe macroscopiquement par l’absence d’une 

pousse. 

A partir de cette réponse quantitative, il est possible de prédire l’effet d’une thérapeutique 

sur une bactérie donnée en interprétant qualitativement la réponse pour classer la souche dans

une des trois classes suivantes : sensible, résistante, intermédiaire. En effet, pour chaque 

antibiotique, le CAS-FM fixe deux concentrations critiques c et C, dont les valeurs tiennent 

compte des données cliniques, bactériologiques, pharmacocinétiques. Elles sont révisées tous 

les ans pour tenir compte de l’évolution de la sensibilité des bactéries aux antibiotiques. De 

manière globale, c peut être considérée comme la plus basse concentration sérique 

d’antibiotique atteinte à la posologie habituellement utilisée, C étant la plus haute 

concentration qui ne peut être dépassée au cours du traitement. Une bactérie dont la CMI est 

inférieure ou égale à c est sensible à l’antibiotique et il existe une bonne probabilité de succès 

thérapeutique aux doses habituelles de traitement par voie générale. Une bactérie dont la 

CMI est supérieure à C est résistante à l’antibiotique et aucun effet thérapeutique ne sera 

obtenu quel que soit le traitement. La souche est dite de sensibilité intermédiaire quand la 

CMI est comprise entre c et C. 

1.2.1.5 Résistance des bactéries aux antibiotiques 

La résistance d’un germe peut exister d’emblée si le germe n’appartient pas au spectre de 

l’antibiotique (résistance d’espèce) ou être acquise à la suite d’un emploi abusif 

d’antibotiques qui alors n’ont plus d’effet sur des germes antérieurement sensibles (c’est la 

résistance acquise). En général, la résistance est croisée dans une même famille 

d’antibiotique (résistance à toutes les pénicillines par exemple). Les résistances acquises sont 

dues à l’apparition de germes mutants dus au traitement antibiotique lui-même ou 

apparaissent si la population bactérienne est très importante. Le caractère résistant peut être 

transfé d’une bactérie à une autre. 

Cette résistance des germes aux antibiotiques explique l’importance de l’antibiogramme 

qui permet de choisir l’antibiotique le plus efficace vis-à-vis d’un germe déterminé. 

Structures chimiques de quelques antibiotiques 

CH 2 CO NH 

O 

Penicilline G 

N 

S 

CH 3 

CH 3 

COOH

OH NH 2 

O 

OH 

C 

CHCl 2 

OH O OH 

OH 

O 

C 

O 

NH 2 

O 2 N 

H 

C 

OH 

NH 

C 

H 

CH 2 OH 

Tétracycline 

Chloramphénicol 

Tableau n˚I: Liste de quelques plantes à activité antibactérienne 

Familles Noms scientifiques Parties utilisées Références 

Anacardiaceae 

Manguifera indica L. 

Feuilles 

Aouissa, 2002 

Caricaceae 

Carica papaya L. 

Feuilles 

Ross, 1999 

Caesalpiniaceae 

Cassia nigricans Valh. 

Parties aériennes 

Mogode, 2005 

Combretaceae 

Terminalia chebula Retz. 

Fruit 

Jain, 1991 

Leguminoseae 

Tamarindus indica L. 

Fruits 

Ross, 1999 

Liliaceae 

Allium sativum L. 

Bulbes 

Ross, 1999 

Punicaceae 

Punica granatum L. 

Coque de fruit 

Ross, 1999

1.2.2 Les antifongiques (Pilly, 2004 ; Schorderet et coll, 1989) 

1.2.2.1 Définition 

Les antifongiques sont des substances capables de détruire spécifiquement les différents 

champignons isolés. 

1.2.2.2 Classification 

‣ Les polyènes 

Les substances de cette classe sont la nystatine et l’amphotéricine B. 

Ces substances agissent en augmentant la perméabilité des cellules fongiques par liaison aux 

stérols membranaires. 

‣ La flucytosine (ANCOTIL ® ) 

La flucytosine est une substance antifongique synthétique active sur les levures par sa 

transformation en fluorouracil grâce à une enzyme, la cytosine désaminase. La flucytosine, 

en interférant avec la synthèse des acides nucléiques, perturbe celle des protéines et 

provoque la mort de la levure. 

‣ Les imidazolés 

Ils agissent au niveau des stérols de la membrane des levures et notamment inhibent la 

biosynthèse de l’ergostérol présent dans la membrane des levures. 

‣ La griséofulvine (GRISEFULINE ® , FULCINE ® ) 

Elle interfère avec la synthèse des acides nucléiques et également avec la formation des 

parois des hyphes. 

‣ La terbinafine (LAMISIL ® ) 

La terbinafine empêche la biosynthèse de l’ergostérol, constituant essentiel de la 

membrane cellulaire du champignon, par inhibition spécifique de la squalène-époxydase. 

L’accumulation intracellulaire de squalène serait responsable de son action fongicide

‣ Les échinocandines (CANCIDAS ® ) 

Ils inhibent la synthèse du bêta (1,3)-D-glucane de la paroi fongique. Il s’agit de la 

caspofungine et de la micafungine. 

OH 

CH 3 O 

CH 3 

O OH 

Structures chimiques de quelques antifongiques 

OH 

OH 

OH 

OH O 

HO 

OH 

COOH 

CH 3 

HO 

Nystatine 

O 

O 

NH 2 

OH 

CH 3 

OCH 3 

OCH 3 O 

C 

O 

Cl 

CH 3 

OCH 3 

O 

Cl 

Cl 

H 

C 

CH 2 

N 

O 

H 2 

C 

Cl 

Cl 

Griseofulvine 

N 

Tableau n˚II: Liste de quelques plantes à activité antifongique 

Familles et noms scientifiques Parties utilisées Références 

Caesalpiniaceae 

Burkea africana Hock 

Ecorce 

Diallo, 2000 

Cassia nigricans Vahl 

Parties aériennes Mogode, 2005 

Detarium senegalensis G.F.Gmel Racines 

Kanta, 2000 

Miconazole 

Hypericaceae 

Psorospermum guineense Hochr 

Feuilles, racines 

Bathily, 2001 

Rubiaceae 

Mitracarpus scaber Zucc 

Parties aériennes 

Konipo, 2001 

Rutaceae 

Fagara xanthoxyloïdes Lam 

Racines 

Bossokpi, 2002

1.2.2.3 Les méthodes d’étude des antibiotiques et des antifongiques 

‣ La méthode de dilution 

Une série de milieux de culture (liquides ou solides) est réalisée avec une concentration 

croissante des solutions à tester. On ensemence ensuite chaque milieu avec une quantité 

connue de microorganismes, puis on incube 18 à 24 h à 37 °C. 

Après incubation la concentration minimale inhibitrice est indiquée par le milieu qui 

contient la plus faible concentration des solutions à tester et où aucune croissance n’est 

visible. 

‣ La méthode de diffusion 

Des disques blancs de 6 mm de diamètre sont imprégnés des solutions à tester. Les disques 

sont ensuite déposés à la surface d’un milieu gélosé préalablement ensemencé avec une 

culture des microorganismes à étudier. 

Après une incubation de 18 à 24 h à 37 °C, les disques s’entourent de zones d’inhibition 

circulaires correspondant à une absence de culture. 

Les diamètres des zones d’inhibition dépendent uniquement de la sensibilité du germe. 

‣ La méthode bioautographique 

Elle consiste à la dilution rapide des substances antimicrobiennes ainsi qu’à l’isolement des 

constituants actifs à travers une cible. Les chromatogrammes sont recouverts d’un milieu de 

culture incorporé de microorganismes. 

Après une incubation de 24 h à 37 °C un révélateur approprié permet d’observer l’activité.

1.3 Les antioxydants 

1.3.1 Généralités 

A l’exception des organismes spécialement adaptés à des conditions anaérobies, l’oxygène 

est la source de toute vie. Tous les organismes vivants aérobiques utilisent le haut niveau 

énergétique de l’oxygène moléculaire (O 2 ) pour oxyder les hydrates de carbone, les protéines 

et les graisses, et pour produire ainsi principalement du CO 2 , de l’eau et de l’énergie 

nécessaire au processus de la vie. En plus de son rôle dans la conversion d’énergie, l’oxygène 

est utilisé par des enzymes telles que les monoamino-oxydases ou les mono-oxygénases pour 

métaboliser des composés endogènes et exogènes. 

1.3.2 Les radicaux libres 

1.3.2.1 Définition et classification 

On définit comme un radical libre n’importe quelle molécule indépendante contenant 

un ou plusieurs électrons non appariés. 

Les radicaux libres sont divisés en radicaux hydroxyles et superoxydes : 

- Les radicaux hydroxyles sont les plus puissants et ont une durée de vie extrêmement faible. 

Ces radicaux diffusent peu et réagissent quasiment sur le lieu de leur production ; 

- Les radicaux superoxydes sont peu réactifs. Ils ont une durée de vie relativement longue et 

diffusent bien au-delà de leur lieu de production. 

Les radicaux libres centrés sur l’oxygène sont : le superoxyde, le perhydroxyle, 

l’hydroxyle, le peroxyle et l’alkoxyle. On les désigne souvent comme les espèces réactives de 

l’oxygène. Ces dernières sont utilisées par les cellules phagocytaires de l’organisme 

(macrophages) pour combattre les agents infectieux tels que les bactéries ou les virus. 

Toutefois, les bienfaits de ces composés hautement toxiques ne restent pas sans conséquences, 

principalement pour les structures biologiques des cellules (protéines, lipides, ADN). De 

nombreuses pathologies parmi lesquelles l’athérosclérose, l’arthrite, l’asthme, la maladie de 

Parkinson, le mongolisme et la neuro-dégénération sont en partie liées à l’action de ces 

formes réactives de l’oxygène (Müller,1992 ; Harman,1992). Les radicaux libres semblent 

également participer aux phénomènes de vieillissement qui pourraient être la conséquence des 

dommages oxydatifs irréversibles accumulés tout au long de l’existence (Seelert, 1992). 

Bien que le terme de radical libre ait souvent été assimilé à une espèce réactive ou à un 

oxydant, il est important de signaler que tous les radicaux libres ne sont pas forcément des

oxydants. De même tous les oxydants ne sont pas des radicaux libres. Les radicaux libres 

constituent cependant une cible particulièrement prometteuse pour améliorer les traitements 

thérapeutiques à différents stades pathologiques (Harman, 1992). 

L’homéostasie de la cellule normale est un équilibre fragile entre la formation de prooxydants 

et leur élimination (antioxydants). Si cet équilibre est rompu en faveur de la 

formation des pro-oxydants, l’organisme endure ce que l’on appelle un stress oxydatif. Il y a 

donc surproduction de pro-oxydants que la cellule ne peut plus éliminer. Dans la majorité des 

cas, les pro-oxydants ne sont pas la cause, mais jouent plutôt un rôle secondaire dans le 

processus primaire de la maladie ceci ne signifie pas pour autant que le stress oxydatif est 

sans importance. Ainsi par exemple, les dommages oxydatifs secondaires causés aux lipides 

des parois des vaisseaux sanguins contribuent significativement au développement de 

l’athérosclérose (Haliwell, 1996). 

1.3.2.2 Facteurs de production des radicaux libres 

Parmi les facteurs de production des radicaux libres dans l’organisme nous pouvons citer : 

- l’exposition prolongée au soleil ; 

- la consommation excessive d’alcool ; 

- l’alimentation déséquilibrée ; 

- la pollution de l’air ; 

- l’altération de la chaîne de transport des électrons dans la mitochondrie ; 

- le stress intellectuel ; 

- les agents infectieux ; 

- les contacts avec les agents cancérigènes ; 

- l’exposition aux radiations. 

1.3.2.3 Dommages liés aux radicaux libres 

Les radicaux libres sont caractérisés par leur grande réactivité chimique et leur courte 

durée de vie (Allain, 1996). 

De part leur nature instable les radicaux libres (ERO) sont toxiques et interagissent avec 

toute une série de substrats biologiques importants. Des dénaturations de protéines, des 

inactivations d’enzymes, une oxydation de glucose, des cassures au niveau de l’ADN avec 

possibilité de mutation et des processus de peroxydation lipidique peuvent alors apparaître 

avec des conséquences souvent irréversibles pour la cellule (Pincemail et al., 2002). C’est 

ainsi que certains radicaux libres semblent jouer un rôle dans les phénomènes de

vieillissement, qui pourraient être la conséquence des dommages oxydants irréversibles 

accumulés tout au long de l’existence. 

1.3.3 Définition d’un antioxydant 

On définit par oxydant toute substance qui, lorsqu’elle est présente en faible concentration 

comparée à celle du substrat oxydable, retarde ou prévient de manière significative 

l’oxydation de ce substrat. Le terme de substrat oxydable inclut toutes sortes de types de 

molécules in vivo. Ainsi, lorsque des espèces réactives de l’oxygène sont générées in vivo, de 

nombreux antioxydants interviennent. Il s’agira principalement d’enzymes comme la 

superoxyde dismutase, la gluthation peroxydase, la catalase et aussi des molécules de faibles 

masses moléculaires comme le tripeptide gluthation ou l’acide urique (Michiels et al, 1994). 

1.3.4 Types d’antioxydants 

Il existe deux catégories d’antioxydants : les séquestrants de métaux et les phagocytes de 

radicaux libres. 

Les séquestrants de métaux : ils précipitent un métal ou suppriment sa réactivité en 

occupant tous les sites de coordination. 

Les phagocytes de radicaux libres comprennent l’hydroxytoluène butylaté (BHT), 

l’hydroxyanisole butylaté (BAT), les tocophérols (vitamine E) et l’acide ascorbique (vitamine 

C) (Kéïta, 2005). 

1.3.5 Sources d’antioxydants 

En plus de ces substances propres à l’organisme, les médicaments et l’alimentation 

peuvent être également deux autres sources d’antioxydants. 

1.3.5.1 Souce endogène 

Elle se compose de protéines, d’oligoéléments et d’enzymes qui constituent la première de 

ligne de défense en participant à la neutralisation excédentaire en radicaux libres. 

• La superoxyde dismutase (SOD) qui contient du zinc, du cuivre et du manganèse. 

Elle transforme l’anion superoxyde en peroxyde d’hydrogène qui se transforme en O 2 

et en eau par la catalase. 

• La glutathion-peroxydase présente dans les mitochondries, elle renferme du 

sélénium et détruit les peroxydes lipidiques.

• La catalase présente dans les hématies détruit l’eau oxygénée et évite ainsi la 

formation de radicaux OH. 

• La ferritine, la transferrine, l’albumine qui par liaison aux métaux leur font perdre 

partiellement ou totalement leur activité de stimulation des réactions radicalaires. 

1.3.5.2 Les médicaments 

En ce qui concerne les médicaments, de nouveaux composés aux propriétés antioxydantes 

sont en cours de développement. Rappelons toutefois que pour trouver une application en tant 

que médicament, un composé doit non seulement posséder une activité antioxydante mais 

aussi être doté de propriétés physico-chimiques lui permettant une distribution correcte dans 

les cellules et dans les tissus, ce qui n’est pas toujours évident. Actuellement, plusieurs agents 

thérapeutiques comme les anti-inflammatoires non stéroïdiens, les antihyperlipoprotéinémiques, 

les β-bloquants et antihypertensifs ont été évalués pour leurs 

propriétés antioxydantes. Nous pouvons citer deux exemples : 

• Le probucol® est un médicament qui en plus de ses effets reconnus dans la baisse du 

taux sanguin de cholestérol, prévient l’athérogenèse en agissant comme antioxydant et 

en supprimant la modification oxydative des lipoprotéines de basse densité (LDL) ; 

• La N-acétyl cystéine est une molécule qui pénètre les cellules et agit de manière très 

efficace dans la régénération du glutathion. Des recherches ont également démontré 

que la N-acétyl cystéine peut être utile dans le traitement des blessures du poumon 

dues à des espèces réactives de l’oxygène. 

1.3.5.3 Les aliments 

L’organisme utilise des substances naturelles antioxydantes. Celles-ci contribueraient de 

manière significative à la prévention des maladies telles que les maladies cardiaques et le 

cancer. Les principaux antioxydants naturels sont les vitamines C et E, ainsi que le β-carotène 

et le sélénium. 

• La vitamine C (acide ascorbique) est un puissant réducteur et joue un rôle important 

dans la régénération de la vitamine E (Sies et Stahl, 1995). On retrouve la vitamine C 

principalement dans les aliments suivants : les légumes (surtout le brocoli : Brassica 

oleraceae var italica L.), le chou (Brassica oleraceae L.), le raifort, le poivron 

(Capsicum annuum L.), le persil (Petroselinum crispum (Mill.) Nyman ex A. W. 

Hill.), les agrumes, le cassis (Ribes nigrum) et le kiwi (Actinidia sinensis Planch.).

La vitamine C est aussi probablement la plus effective et la moins toxique de tous les 

antioxydants solubles dans l’eau identifiée dans le système des mammifères (Levine, 

1986 ; Frei et coll., 1988). 

• Le sélénium diminue la fréquence des maladies cardiaques, sans toutefois faire 

baisser la tension artérielle et a un effet positif sur le cholestérol. Il est efficace dans le 

traitement de l’arthrose (Aouissa, 2002). On le retrouve dans la viande, le poisson et 

les céréales. Il a été montré qu’un apport quotidien en sélénium de 200 μg faisait 

baisser de moitié le risque du cancer de la prostate (Aouissa, 2002). Autrefois utilisé 

comme toxique, ses effets bénéfiques sur l’organisme ne sont connus que depuis un 

quart de siècle. Il neutralise les métaux toxiques (plomb, mercure), prévient le 

vieillissement. Il aurait aussi une action préventive sur certains cancers (Martine, 

2002). 

1.3.5.4 Les plantes 

L’intérêt porté aux antioxydants d’origine naturelle ne cesse de croître ces dernières 

années. En effet, on trouve dans la littérature de plus en plus de publications sur des composés 

naturels aux propriétés antioxydantes (Potterat, 1997). Cet intérêt a plusieurs origines. Ces 

antioxydants d’origine naturelle semblent contribuer de manière significative à la prévention 

de maladies cardio-vasculaires. 

Les antioxydants naturels sont présents dans plusieurs plantes supérieures et dans toutes les 

parties de la plante. Ce sont pour la plupart des composés phénoliques. On définit par 

composé phénolique tout composé possédant un noyau aromatique comportant un ou 

plusieurs substituants hydroxyles, incluant différents groupes fonctionnels dérivés (esters, 

glycosides, etc…). Ils sont largement répandus parmi les plantes alimentaires et sont 

régulièrement consommés par un grand nombre de personnes. Parmi ces composés, les 

flavonoïdes représentent la classe de substances la plus étudiée (Bors et al, 1990). N’oublions 

cependant pas de mentionner d’autres classes de substances telles que les xanthones, les 

coumarines, les caroténoïdes, les dérivés de l’acide hydroxycinnamique et les lignanes pour 

lesquelles on a également pu établir des activités antioxydantes. 

• Les flavonoïdes 

Les flavonoïdes sont un des groupes de métabolites secondaires les plus répandus parmi les 

plantes, et par conséquent également un des groupes les plus étudiés. On les trouve dans

presque toutes les parties de la plante à différentes concentrations, où ils jouent un rôle 

déterminant dans le système de défense comme antioxydants. Les flavonoïdes sont largement 

présents dans les fruits, les légumes, le thé et le vin. L’apport quotidien de flavonoïdes au sens 

large est estimé à 1g dans les pays de l’ouest, mais ils sont généralement très mal résorbés 

dans le tractus gastro-intestinal. Les flavonoïdes sont également très intéressants du point de 

vue médical car ils sont associés à de nombreuses activités biologiques telles que antiinflammatoires, 

antihépatotoxiques, anti-tumorales, anti-hypertensives, antithrombiques, 

antibactériennes, antivirales, antiallergiques et antioxydantes (Anderson et al. 1996). 

• Les coumarines 

Les coumarines sont capables de prévenir la peroxydation des lipides membranaires et de 

capter les radicaux hydroxyles, superoxydes et peroxyles. Les conditions structurales requises 

pour l’activité antiperoxydante des coumarines sont similaires à celles signalées pour les 

flavonoïdes (Anderson et al.1996). 

Tableau n˚ III : Liste de quelques plantes à activité antioxydante au Mali 

Familles et noms scientifiques Parties utilisées Références 

Anacardiaceae 

Lannea velutina Rich. Feuilles, écorces de racine Kéita, 2002, 

Maïga, 2005 

Caesalpinaceae 

Cassia nigricans Vahl. Parties aériennes Mogode, 2005 

Combretaceae 

Combretum glutinosum Perr.ex DC. Ecorces de racines et de tronc Souley, 2005 

Hypericaceae 

Psorospermum guineense Hochr. Feuilles Bathily, 2001 

Rutaceae 

Fagara zanthoxyloïdes Lam. Ecorces de racines Bossopki, 2002

1.3.6 Quleques méthodes d’études des antioxydants (Cavin, 1999) 

1.3.6.1 Réduction du radical 1, 1-diphényl 2 -picryl hydrazyle (DPPH) 

Les extraits, fractions ou produits purs à tester sont déposés sur des plaques CCM de gel de 

silice G F 254 en aluminium et développés dans des systèmes appropriés. 

Après séchage, les plaques de CCM sont giclées avec une solution méthanolique à 2 mg/ml 

de DPPH. Les activités antiradicalaires apparaissent sous forme de spots de couleur jauneblanc 

sur fond violet. 

1.3.6.2 Test mesurant l’activité antioxydante au moyen de caroténoïdes 

Les plaques CCM sont préparées de la même manière que pour le test du DPPH, puis 

giclées avec une solution chloroformique à 0.5 mg/ml de β-carotène. La plaque CCM est 

ensuite exposée sous une lampe UV à 254 nm jusqu’à décoloration de la plaque. Les zones 

antioxydantes apparaissent en jaune sur fond blanc. 

Il faut faire particulièrement attention aux substances déjà colorées en jaune, car elles 

peuvent donner de faux positifs. 

1.3.6.3 Test mesurant l’activité antioxydante contre le lysosome 

Un mélange du lysosome (1 mg/ml) et du composé à tester à des concentrations diverses 

est incubé pendant 20 min à 40 °C dans un tampon phosphate (pH 7,4). Les composés à 

tester sont dissous dans du méthanol et 5 µl de cette solution sont ajoutés à la solution 

protéinique, ceci afin de limiter à 1 %(V/V) la quantité de solvant organique dans 

l’échantillon (volume total de 0,5 ml). L’oxydation est initiée par l’addition d’hydrochlorure 

de 2,2’-azobis (2-amidinopropane) (AAPH) dissout dans le tampon phosphate. 

L’oxydation des protéines s’effectue en présence de 10 mM d’AAPH, avec ou sans 

antioxydant, pendant 60 min. Les mesures se font ensuite par électrophorèse capillaire.

2. MONOGRAPHIE DES PLANTES 

2.1 Psorospermum guineense Hochr 

2.1.1 Données botaniques 

Synonymes 

Psorospermum senegalense Spach (Kheraro, Adams 1974; Burkill, 1997) 

Vismia guineense Guill.et Perr (Kheraro et Adams, 1974; Burkill, 1997) 

Vismia leonensis Hook (Kheraro et Adams, 1974; Burkill, 1997) 

Noms locaux 

Wolof: Eklen, inklen 

Manding,Malinke :Katidakuma, katodakuma (gale de Chat) 

Manding du yassine: Katidem Kumo 

Socé: Katen dakomo, Kunku 

Bambara: Karidjakuma 

Systématique 

Règne: Végétal 

Sous règne: Eucaryote 

Embranchement : Spermaphytes 

Sous-embranchement : Angiospermes 

Classe : Dicotylédones 

Sous classe : Dialypétales 

Série : Thalamiflores 

Sous série : Méristémones 

Ordre : Guttiférales 

Famille : Hypericaceae 

Genre : Psorospermum 

Espèce : guineense

Description botanique 

Psorospermum guineense est un arbrisseau ou un arbuste atteignant 2,50 m, à fut et 

branches tortueux. Son écorce beige rougeâtre se desquame par petites plaques. Les jeunes 

rameaux sont pubescents. 

Les feuilles sont alternes ou subopposées, ovales au sommet, cunées à la base et 

pubescentes à la face inférieure. Le pétiole a une longueur de 9 mm. Le limbe est elliptique, 

long de 6 à 12 cm, sa base est cunéiforme, parfois arrondie, son sommet est en coin ou 

arrondi avec une courte pointe brusque. Il est vert foncé sur la face supérieure et devient 

glabre sur la face inférieure (Kheraro et Adams, 1974). 

Les corymbes axillaires ou terminaux sont densément fleuris et plus courts que les feuilles. 

Les fleurs sont blanchâtres ou roses avec des pédoncules de 10 mm. 

Les fruits sont des baies globuleuses de 7 à 8 mm de diamètre avec des spathes persistants 

à la base et les vestiges des styles au sommet (Kheraro et Adams, 1974). 

L’arbre donne des feuilles assez rapidement dès Octobre. Les fleurs apparaissent en 

Novembre et les fruits mûrs entre Novembre et Décembre (Malgras, 1992). 

Figure n° 2 : Feuilles de P. guineense 

Figure n° 3 : Racines de P. guineense 

Habitat 

Cette plante est peu commune. On la rencontre ça et là, surtout dans les savanes arbustives 

et boisées soudaniennes et dans les jachères car il rejette facilement. Elle est répandue au 

Sénégal et au Cameroun. Elle est fréquente de façon dispersée dans le Sud et l’Est du Mali 

(Kheraro et Adams, 1974 ; Diarra, 1991).

2.1.2 Utilisations 

2.1.2.1 En médecine traditionnelle 

Cette plante est en général utilisée au Sénégal pour toutes les affections de la peau. Une 

décoction des écorces de racines est utilisée dans les bains pour les troubles dermiques 

communs : l’herpes, eczéma, la lèpre et les maladies syphilitiques (Burkill, 1997). 

C’est néanmoins les prescriptions antisporiques qui dominent d’où son nom Manding se 

traduisant par « gale du chat ». Les feuilles sont encore signalées dans le Saloum et le Walo 

pour leurs propriétés béchiques, eupnéiques, fortifiantes et antinauséeuses (Kheraro et Adams, 

1974). 

A Dakar, l’une des utilisations générales est en poudre contre les coliques, en décoction 

contre la blennorragie et le macéré pour traiter la lèpre. Dans la région du Ferlo une décoction 

d’écorce de la tige principale et des racines est ajoutée aux bains pour soigner les douleurs 

conjuguées aux crises de fièvre. La pulpe d’écorce et de racine est utilisée en Guinée contre 

les dermatoses et une décoction des brindilles est utilisée comme diurétique et fébrifuge. Un 

filtrat des feuilles bouillies est utilisé au Sénégal pour apaiser les troubles respiratoires et est 

pris contre la lèpre (Burkill, 1997). 

Au Mali, l’écorce et les racines de Psorospermum guineense sont employées en décoction 

contre plusieurs maladies tels les dermatites, la syphilis, l’herpès et l’eczéma. 

Le décocté aqueux des écorces ou des racines serait plus efficace dans le traitement de la 

gonococcie et de la syphilis. Une décoction aqueuse de feuilles, d’écorces ou de racines est 

prise en bain et en boisson pour soigner les arthralgies et les névralgies. Les rameaux feuillés 

et les racines sont utilisés contre le vitiligo (Diarra, 1991). 

Le décocté aqueux des tiges feuillées est utilisé contre l’hypertension artérielle et celui des 

feuilles contre les états nauséeux (Berhaut, 1975). 

2.1.2.2 Autres usages 

Les fumigations des écorces brûlées sur des braises auraient le pouvoir magique de chasser 

démons (Berhaut, 1975 ; Kerharo et Adams, 1974). 

L’écorce bouillie donnerait un produit savonneux qui, mélangé à de l’huile, sert à frotter ou 

à oindre la peau ou les plaies des animaux pour éloigner les mouches. Elle donne aussi une

solution que l’on mélange à de la viande et qui est utilisée comme piège pour les hyènes 

(Berhaut, 1975). 

2.1.3 Chimie 

Des analyses du matériel guinéen ont montré la présence de tanins catéchiques, de sucres 

et de pigments anthraquinoniques fluorescents. 

Des travaux ont montré que les flavonoïdes, les tanins galliques et les anthocyanes présents 

dans les feuilles sont absents dans les racines (Diarra, 1991). 

Il n’y a ni alcaloïdes, ni saponosides, ni hétérosides cyanogénétiques dans les feuilles et 

dans les racines (Diarra, 1991). 

L’étude de l’extrait acétonique de la racine de Psorospermum guineense a permis d’isoler 

et d’identifier dix composés dont six xanthones et quatre dérivés de l’émodine (Bilia et al, 

1999) : 

- 3-O (2-hydroxy-3-méthylbut-3-enyl) émodine ; 

- 3-O (2- méthoxy-3-méthylbut-3-enyl) émodine ; 

- 3-O (E-3-hydroxyméthyl- 4 -hydroxybut-2-enyl) émodine ; 

- 3- O (3-hydroxyméthyl- 4 – hydroxybut -2-enyl) émodine ; 

- 1, 8 Dihydoxy-3-géranyloxy-6-méthyl xanthone ; 

- 1, 8 Dihydroxy-3-isoprényloxy-6-méthyl xanthone ; 

- 1, 8 Dihydroxy-3- (2 méthoxy-3-méthylbut-3-enyloxy)-6 méthyl xanthone ; 

- 1, 8 Dihydroxy-3- (3, 7-diméthyl-7 méthoxy-oct-2 enyloxy)-6 méthyl xanthone ; 

- 1, 8 Dihydroxy- 3- (E-3 hydroxyméthylbut-2- enyloxy)-6 méthyl xanthone ; 

- 1, 8 Dihydroxy-3- (3 hydroxyméthyl 4 hydroxybut- 2- enyloxy) -6 méthyl xanthone 

Les extraits n-hexane, dichlorométhane et méthanoliques des feuilles et des racines ont été 

analysés par chromatographie liquide couplée à la spectrométrie de masse (LC-MS). Des 

anthraquinones, des vismiones, des flavonoïdes, des xanthones et des benzophénones ont été 

isolés (Politi et al. 2004). La combinaison de différentes méthodes d’analyse ont permis de 

caractériser les majeurs pics des chromatogrammes obtenus. Six nouveaux bianthrones 

isométriques et une anthraquinone ont été détectés des extraits dichlorométhanes des racines 

après une longue conservation en solution. La composition chimique des extraits a démontré

que seulement une minorité de constituants est répartie dans les deux organes (Politi et al. 

2004) 

Quelques molécules isolées de Psorospermum guineense (Bilia et al, 1999 ; Politi et al. 

2004) 

Les anthracéniques 

OH O OH 

OH O OH 

R 

Me 

OR 

O 

3-Geranyloxyémodine 

O 

OR' 

Isoprénylémodine 

R= 

R'= H 

O OH OH 

RO 

R 1 R 2 

Les xanthones 

O CH 3 

R 4 

OR 3 

Tableau n˚IV : les vismiones 

R R 1 R 2 R 3 R 4 

H H H H C 10 H 17 

H H C 10 H 17 H H 

CH 3 CO C 10 H 17 H H H 

H H H C 10 H 17 H 

CH 3 CO H H H C 10 H 17 

H H H CH 3 C 10 H 17 

CH 3 CO H H C 10 H 17 H 

O 

OH 

Psorospermine 

O 

CH 3 

O 

Flavonoïde 

Tableau n˚ VIII : Les flavonoïdes 

HO 

R 

O 

OH 

OH 

R R 1 

Glc H 

H Glc 

R 1 

OH 

O

Les bianthrones 

H 

H 3 C 

H 3 C 

OH O OH 

H 

H 

H 

H 

R 1 

OR 2 

OR 3 

1 R 1 =R 4 =Ge (Geranyl) 

R 2 =R 3 =H 

2 R 1 =R 3 =Ge 

R 2 =R 4 =H 

3 R 2 =R 3 =Ge 

R 1 =R 4 =H 

H 

OH 

O 

OH 

R 4 

2.1.4 Données toxicologiques et pharmacologiques 

Des essais pharmacologiques ont révélé que Psorospermum guineense se montre toxique 

pour la souris blanche et provoque chez elle des phénomènes de photosensibilisation. Cette 

action comparable à celle de l’hypéricine est communiquée à la drogue par un pigment rouge 

de nature anthraquinonique. Cette action se manifeste par une hypertrophie rénale avec 

congestion et par des hémorragies intestinales (Diarra, 1991). 

Des études ont rapporté les propriétés antioxydantes de Psorospermum guineense (Bathily, 

2001). 

2.1.5 Données cliniques 

L’essai clinique de l’extrait d’acétate d’éthyle des racines de Psorospermum guineense 

mélangé au beurre de karité (la psorospermine) en application locale pendant deux semaines 

dans le traitement des eczémas a donné une disparition de 81,67 % des eczémas sur les 

patients ayant utilisé la psorospermine et une disparition de 14 % pour le placebo qui était le 

beurre de karité. Il a été aussi noté une disparition de 86,67 % de prurit chez les patients ayant 

utilisé la psorospermine contre 42 % pour le placebo. La tolérance du traitement a été 

excellente dans 83,33 % des cas (Traoré, 1995). 

Ces propriétés thérapeutiques seraient dues à la présence de composés anthracéniques 

(acide chrysophanique) et de dérivés de la géranyloxy : dihydroxyanthrone et vismione. 

2.1.6 Médicament traditionnel à base de Psorospermum guineense

Le DMT a mis au point une formulation galénique à partir de la poudre 

Psorospermine 

Formule: 1 g d’extrait acetate d’éthyle de Psorospermum guineense 

100 g de Beurre de karité 

Préparation: Triturer dans un mortier l’extrait auquel on a ajouté du Beurre de Karité 

Indication: Eczéma 

Mode d’emploi: Nettoyer les lésions à l’eau savonneuse et appliquer la pommade 

Posologie: 2 fois par jour 

Durée du traitement : 2 semaines

2.2 Mitracarpus scaber Zucc 


Synonymes 

Mitracarpus verticillatus (Schum et Thonn) Vatke 

Stauropermum verticillatum Schum et Thonn 

Mitracarpus hirtus (Linn) DC. 

Noms vulgaires (Burkill, 1997 ; Kerharo, 1974) 

Anglais: Button grass 

Bambara: Kuguruba 

Wolof: Ndotukan, ndatukan, gurguli 

Serère: Kotumbefono, nokoto, kumtura, tubadin turo, ndatukana 

Tamacheck: Tabalkadet 

Peuhl: Gududel 

Systématique 

Règne : Végétal 

Sous règne : Eucaryote 




Sous-classe : Gamopétales 

Série : Epigynes 

Sous-série : Isostémones 

Ordre : Rubiales 

Famille : Rubiaceae 

Genre : Mitracarpus 

Espèce : scaber


Cette plante est une herbe annuelle de 10 à 50 cm de hauteur. 

Les tiges sont ramifiées, évasées, rondes et pubérulentes. 

Les feuilles sont lancéolées, elles mesurent 3 à 6 cm de long sur 1cm de large. Elles sont 

subacutes, glabres dessous et scabres ou lisses dessus. 

Les fleurs sont blanches, situées à l’aisselle des feuilles et entourées de stipules 

(Adjanohoun et al, 1980). 

A 

Figures n˚4 A et 4 B : Parties aériennes de Mitracarpus scaber 

B 

Habitat 

C’est une des plantes les plus communes, elle se développe dans les cultures où elle fleurit 

et fructifie après l’enlèvement des récoltes. Elle est également présente dans les prairies 

estivales du sahel et dans les lieux ensoleillés du Sénégal, le long des routes et des pistes 

(Kerharo et Adams, 1974). 

La plante est une mauvaise herbe courante des jardins, des fermes, des cultures arables et 

des plantations. 

C’est une espèce commune dans l’Afrique intertropicale.



La sève des feuilles broyées est considérée comme ayant des propriétés fongicides. Elle est 

utilisée au Congo (Brazzaville) pour traiter l’herpès et les mycoses (Burkill, 1997). 

Dans le sud du Nigeria la plante ou l’extrait aqueux est frotté sur la face pour traiter 

l’eczéma avec de bons résultats en 4 jours. Les Yoruba et les Haoussas du Nigeria utilisent la 

plante contre les maladies parasitaires. Ils utilisent la plante avec une huile dans les salons de 

coiffure contre les poux, les teignes et pour traiter les démangeaisons. Les affections de la 

peau telles que l’érypsèle et les démangeaisons sont traitées en Côte d’Ivoire et au Burkina 

Faso par la prise d’une décoction de la plante entière (Burkill, 1997). 

Au Sénégal les feuilles figurent dans un traitement de la lèpre, pour d’autres troubles 

dermiques et comme anti syphilitique. La feuille est utilisée en poudre au Libéria pour traiter 

les plaies (Burkill, 1997). 

La plante est utilisée contre les affections de l’estomac et pour les maux de tête. La plante 

écrasée est utilisée pour soigner les plaies de la gorge et comme médicament contre la toux. 

Un pansement de feuilles broyées est placé sur les morsures de serpents et est utilisé 

comme antidote contre les poisons (Burkill, 1997). 

Le suc des feuilles est administré par voie oculaire pour traiter les convulsions et celui de 

la plante entière contre les céphalées rebelles. Le décocté de la plante entière est utilisé pour 

traiter les aménorrhées et les stomato-entérites. Le décocté des feuilles fraîches est utilisé par 

voie orale contre les hépatites virales (Adjanohoun et coll., 1980). 


Le corps frotté avec la plante ou lavé avec une infusion avant d’aller au combat est 

supposé, protégé contre les blessures (Kerharo et Adams, 1974). 

La plante est considérée dans le nord du Nigeria pour avoir les propriétés d’un philtre 

d’amour (Kerharo et Adams, 1974). 

Les bambaras utilisent la plante pour ses effets synergiques comme poison de pêche 

(Burkill, 1997).

2.2.3 Chimie 

Le criblage phytochimique de base qui utilise des tests chimiques simples a permis de 

caractériser des flavonoïdes, des anthocyanes, des coumarines, des stérols, des triterpènes, et 

des tanins catéchiques et galliques (Sanogo et coll., 1994 ; Benjamin et Hugo, 1996). 

Des études phytochimiques approfondies ont permis d’isoler des naphtoquinoides, de la 

pentalogine et un diglycoside de l’hydroquinone de la pentalogine appelé harounoside 

(Harouna et coll., 1995). 

La composition de l’huile volatile des parties aériennes de Mitracarpus scaber a été 

étudiée par chromatographie gazeuse et par la chromatographie gazeuse combinée à la 

spectrométrie de masse. Ces études ont permis d’identifier 26 constituants dont 11 acides gras 

libres comme constituants majeurs (Ekpendu et coll., 1993). 

D’autres études ont permis d’isoler à partir de l’extrait méthanolique de Mitracarpus 

scaber 7 substances polyphénoliques (Bisignano et coll., 2000). 

Structures chimiques des composés de Mitracarpus scaber (Bisignano et coll., 2000) 

HO 

OR 1 

H 3 CO 

O 

CH 3 

O 

O 

O 

O 

HO 

4-Méthoxyacétone 

Psoralen 

OR 2 

Harounoside 

H 3 CO 

OH 

H 3 CO 

O 

HO 

O 

OH 

H 3 CO 

CH 3 

3,4,5-Triméthoxyacétophénone 

OH 

O 

Rutine 

O-rutinose 

OH 

HO 

O 

OR 

OH O 

Kaempférol-3-O-rutinoside 

O 

O 

R= Glu 6-Rham 

O 

Pentalogine

2.2.4 Données pharmacologiques 

Les extraits de Mitracarpus scaber ont été surtout étudiés pour leurs propriétés 

antibactériennes et antifongiques. 

Un principe actif efficace contre des champignons responsables des mycoses a été isolé en 

Côte d’Ivoire. C’est également en Côte d’Ivoire qu’a été isolé à partir d’un extrait éther de 

pétrole des parties aériennes de la plante la pentalogine qui est un pigment naphtoquinoïde qui 

possède une activité antifongique très puissante contre Candida albicans et Trichophyton 

soudanense (Konipo, 2001). 

Irobi et Dramola (1993; 1994) ont étudié l’activité antifongique et antibactérienne des 

extraits aqueux et éthanolique des feuilles et des inflorescences de Mitracarpus sur différentes 

souches de microorganismes : les zones d’inhibition sont comprises entre 10 et 20,5 mm 

contre 9 à 19 mm pour le kétoconazole utilisé comme antifongique de référence. Les 

concentrations minimales inhibitrices des extraits sont comprises entre 0,5 et 4 μg/ml alors 

que la concentration fongicide minimale est dans un intervalle de 1 à 8 μg/ml. 

Les mêmes extraits ont donné des zones d’inhibition comprises entre 8 et 23 mm sur 

Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis et Enterococcus faecalis. Les 

concentrations minimales inhibitrices effectives des extraits sont comprises entre 0,06 et 8 

μg/ml avec une concentration bactéricide minimale de 0,06 à 32 μg/ml. Les études ont montré 

que l’extrait éthanolique est plus efficace que l’extrait aqueux (Irobi et Dramola, 1994). 

Des études effectuées par Ekpendu et coll., (1994) ont permis de mettre en évidence des 

propriétés anti-inflammatoires et antibactériennes d’extraits de Mitracarpus scaber. 

Les études de Benjamin et Hugo (1986) ont montré l’activité de l’extrait acétonique des 

parties aériennes de Mitracarpus scaber sur Staphylococcus aureus et Candida albicans. 

En outre, l’activité antibactérienne et antifongique de différents extraits de Mitracarpus 

scaber, récolté au Mali, a été évaluée contre les souches standard et cliniques de Candida et 

Staphylococcus sp responsables des infections de la peau. C’est l’extrait diétheréthylique qui 

présente une très bonne activité aussi bien antifongique que antibactérienne avec des 

concentrations minimales inhibitrices de 15,6 à 31,25 μg/ml contre les souches standard de 

Candida et de 7,5 à 125 μg/ml contre les souches cliniques de Candida. La concentration 

minimale inhibitrice sur Staphylococcus est de 3,9 à 62 μg/ml pour la souche standard et de 

1,9 à 15,6 μg/ml pour la souche clinique (Sanogo et coll., 1996).

Okunade et coll. ont démontré une bonne activité antimicrobienne de l’extrait éthanolique 

et d’un constituant isolé des parties aériennes de Mitracarpus scaber. Le même constituant 

actif a présenté une activité contre certains germes pathogènes associés au SIDA. 

L’activité antimicrobienne de l’extrait méthanolique et de 7 constituants isolés de 

Mitracarpus scaber a été confirmée contre des souches de Staphylococcus aureus et de 

Candida albicans. L’extrait méthanolique possède aussi bien une activité antibactérienne (la 

concentration minimale inhibitrice est de 31,25 μg/ml) que antifongique (la concentration 

minimale inhibitrice est de 62,5 μg/ml) (Bisignano et coll., 2000). 

Successivement, l’étude de l’activité antimicrobienne de 7 constituants polyphénoliques a 

permis de démontrer une bonne propriété antibactérienne de l’acide gallique et de l’acide 3, 

4, 5-triméthoxybenzoïque contre le Staphylococcus aureus (concentrations minimales 

inhibitrices respectivement de 3,9 μg/ml et de 0,97 μg/ml). Le 4 – méthoxyacétophénone et le 

3, 4, 5- triméthoxyacétophénone inhibent le Candida albicans (les concentrations minimales 

inhibitrices sont respectivement de 1,95 μg/ ml et de 0,97 μg/ml). Les trois autres constituants 

présentent une faible activité antimicrobienne (les concentrations minimales inhibitrices sont 

comprises entre 125 et 500 μg/ml). L’efficacité de l’extrait méthanolique de Mitracarpus 

scaber et de ses 7 constituants a été évaluée par les courbes de mortalité en fonction du temps 

chez Staphylococcus aureus et de Candida albicans (Germano et coll., 1999). 

Le décocté de Mitracarpus possède une activité antiradicalaire contre le DPPH avec une 

concentration efficace à 50 % (CE 50 de 41,64 ± 1,5 μg/ml), justifiant en partie la propriété 

hépatoprotectrice de la plante (Germano et coll., 1999). 

En outre, un brevet de numéro 9805299 A1 19980212 de 1998 de la société SEDERMA 

S.A. (protège des formulations cosmétiques et pharmaceutiques contenant des extraits de 

plantes du genre Mitracarpus, utilisées pour la beauté et la luminosité de la peau (Greff, 

1998). 

2.2.5 Médicaments traditionnels améliorés à base de Mitracarpus scaber 

Le DMT, dans le cadre de sa politique d’exploitation des ressources de la Médecine 

traditionnelle pour la production des Médicaments Traditionnels Améliorés (MTA), a mis au 

point deux formulations galéniques à partir de la poudre des parties aériennes de Mitracarpus 

scaber pour le traitement des affections dermatologiques :

Mitradermine lotion à 40 % 

Formule : 50 g de poudre Mitracarpus scaber 

125 ml d’Alcool à 60° 

Préparation : 200 g de poudre grossière auxquels sont ajoutés 500 ml d’alcool à 60° 

alcoolique. L’ensemble est laissé en macération pendant 3 jours puis filtré. 

Présentation : Flacon de 125 ml 

Indication : Dermatoses cutanées 

Posologie : 3 fois par jour 

Mitradermine pommade à 20 % 

Formule: 6 g de poudre de Mitracarpus scaber 

30 g de Beurre de Karité ou de Vaseline 

Préparation: Triturer dans un mortier la poudre fine de la drogue à laquelle on a ajouté le 

Beurre de Karité ou la Vaseline 

Présentation: Tube de 30 g 

Indication: Dermatoses cutanées 

Mode d’emploi: Nettoyer la partie malade et appliquer la pommade 

Posologie: 3 fois par jour

2.3 Cassia nigricans Vahl 


Synonyme 

Chamaecrista nigricans Vahl (Burkill, 1985) 

Noms vulgaires 

Wolof : Gengéleb 

Bambara : Dala ninkuma, Jalanikuma 

Peul Foula : Singiagel 

Diola : Diumbèmbèvèy 

Fula pulaar : Magarabubèl, Makarabu bèl 

Hausa : Madacin kas 

Systématique 


Sous-règne : Eucaryote 




Sous-classe : Dialypétales 

Série : Caliciflores 

Sous-série : Diplo-méristémones 

Ordre : Rosales 

Famille : Caesalpiniaceae 

Genre : Cassia 

Espèce : nigricans


Cassia nigricans est un sous-arbrisseau vivace pouvant atteindre 1m de haut, rarement 

plus. 

Les feuilles composées, pennées possèdent des rachis qui mesurent environ 7 cm et 10 à 20 

paires de folioles d’environ 20 mm de longs sur 5 mm de large. Ces folioles sont pubescentes 

sur les 2 faces, oblongues, arrondies aux extrémités et apiculées au sommet. 

Les fleurs sont jaunes groupées par 4 ou 6 en 1 ou 2 petits racèmes, avec dans ce dernier 

cas une disposition axiale pour l’un et supra axillaire pour l’autre. 

Les fruits sont des gousses dressées, plates, longues de 3 cm sur 5 mm et arrondies aux 

extrémités. Ils contiennent une dizaine de graines. 

A 

Figures n˚ 5 A et n˚5 B : Plants de Cassia nigricans 

B 

Habitat 

C’est une plante répandue dans toutes les savanes soudano-sahéliennes et qui se retrouve 

en Inde. 

Elle se retrouve dans des parties sèches de la région du Sénégal au nord du Nigeria et est 

largement plus répartie au centre, au Nord Est et Est de l’Afrique.



La plante fraîche ou séchée est utilisée comme antipyrétique chez l’enfant (chaleur du 

ventre) et les douleurs abdominales, la racine macérée a le même usage. 

La plante est utilisée au Tchad pour soigner les dermatoses (Mogode, 2005). 

Dans la région soudanienne les brindilles servent pour fabriquer des tisanes fébrifuges 

tandis qu’en Tanzanie la plante entière est broyée dans l’eau et bue pour les fièvres (Burkill, 

1985). 

Les feuilles sont utilisées en décoction au Sénégal comme un médicament contre la toux, 

comme fébrifuge et en Guinée comme antipyrétique et substituant de la quinine. En Ouganda, 

l’infusé des feuilles écrasées est utilisé contre les troubles stomachiques. En Afrique de 

l’ouest la poudre des feuilles est aussi appliquée sur les ulcères et une décoction est utilisée 

comme un bain pour soigner les fièvres. Au Niger, une pâte obtenue en mélangeant la plante 

avec les feuilles de Boscia angustifolia (Capparidaceae) et les urines de vache est utilisée par 

les gardiens de troupeaux pour guérir les cornes cassées (Burkill, 1985). 

La racine est donnée en infusion au Niger comme un purgatif et en Tanzanie 

contre les diarrhées. Au Sénégal et au Tchad, elle est utilisée comme un vermifuge (Burkill, 

1985). 

La plante est utilisée au Mali pour ses propriétés antibactériennes et antifongiques dans le 

traitement des dermatoses (Mogode, 2005)

Tableau n˚IX: Utilisations de Cassia nigricans en Médecine Traditionnelle 

Parties utilisées Indications Mode d’emploi Références 

Substitut de la quinine 

Décoction (Chidumé et al, 2001) 

Dermatoses suincantes et 

Poudre avec T.roka et 

(Camara, 1984) 

prurigineuses 

H.specigera 

Maladies gastro-intestinales 

Extrait méthanolique 

(Nwafor, 2001) 

Feuilles 

Fébrifuge 

Poudre 

(Chidumé et al, 2001) 

Antipyrétique 

Décoction 


Ulcère 

Poudre 


Paludisme 

Décoction 

(Fané, 2003) 

Trouble de l’estomac 

Poudre 

(Burkill, 1995) 

Insectifuge 

Poudre 

( Belmain, 2001) 

Désinfection des plaies graves 

Décocté en bain 

(Camara, 1984) 

et foetides 

Partie entière 

Antipyrétiques 

Séchée ou fraîche 

(Adjanohoun et coll, 

1985) 

Douleurs abdominales 

Séchée ou fraîche 

(Adjanohoun et coll, 

1980) 

Fièvre 

Poudre 

(Burkill, 1995)


Le feuillage est de temps en temps brouté au Sénégal par les chameaux. Les feuilles sont 

ajoutées à la nourriture et consommées comme des amuse-gueules (Burkill, 1985). 

2.3.3 Chimie de la plante 

Les tiges, feuilles et fruits contiennent quatre mois après la récolte 0,10 à 0,68 % 

d’anthraquinones et 0,35 à 0,75 % d’osides anthraquinoniques. 

Au cours des travaux réalisés en 1968, Duquenois a confirmé que Cassia nigricans 

possédait des dérivés non rhéiniques : Emodol, Emodol-anthrone ainsi qu’une 

leucoanthocyane assez abondante et que ces dérivés se retrouvaient encore dans les 

échantillons de feuilles conservées depuis plusieurs années (Kerharo et Adams, 1974). 

L’analyse phytochimique des feuilles a montré la présence des tanins, des flavonoïdes et 

des saponosides (Nwafor, 2000). 

Les coumarines, anthracénosides, flavonoïdes, tanins, mucilages, stérols et triterpènes, 

hétérosides cardiotoniques et leucoanthocyanes ont été retrouvés dans les parties aériennes de 

Cassia nigricans (Mogode, 2005). 

2.3.4 Pharmacologie 

Duquenois estime qu’on peut préjuger des propriétés laxatives meilleures des folioles 

récentes ou la proportion de formes anthracéniques réduites peut être supérieure et qu’on peut 

aussi rapporter aux leucoanthocyanes quelques autres propriétés curatives (Kerharo et Adams, 

1974). 

Cassia nigricans a une action analgésique, anti-inflammatoire et protectrice contre l’ulcère 

(Nwafor, 2001 ; Chidumé et al, 1991). Elle possède également des propriétés cytoprotectrices 

(Akah, 1998). 

L’activité contraceptive de cette plante a été testée sur des souris femelles (Nwafor, 2001). 

Mogode (2005) a étudié les propriétés antibactérienne, antifongique, antioxydante et antiinflammatoire 

de Cassia nigricans. 

L’extrait dichlorométhane avait montré la plus forte activité antibactérienne sur 

Staphylococcus aureus avec un diamètre d’inhibition de 24 mm à la concentration de 1500 

μg. 

L’extrait éther de pétrole avait montré la plus grande activité antifongique sur Candida 

albicans.

Le décocté aqueux de Cassia nigricans aux doses de 100 et 200 mg/kg avait présenté une 

inhibition de l’inflammation de la patte de souris provoquée par l’administration de 

carraghénine (Mogode, 2005).

2.4 Swartzia madagascariensis Desv 


Synonymes 

Bobgunnia madagascariensis Desv. (Schaller, 1999). 

Swartzia marginata Benth. (Schaller, 1999). 

Tounatea madagascariensis Baill. (Schaller, 1999). 

Tounatea madagascariensis Taub. (Schaller, 1999). 

Noms vulgaires 

Anglais : Snake bean 

Français : Petit dim 

Wolof : Dimbé, dnimbé, ndimbili, dimbili, dimbéli 

Bambara, Malinké : Samagara, samakara 

Manding, Socé: Numudin tibo 

Peul: Ohli, gugirki, gugiriki 

Senufo : Fomégué, formégué 

Systématique 


Sous règne : Eucaryote 


Sous embranchement : Angiospermes 


Sous classe : Dialypétales 

Série : Caliciflores 

Sous série : Diploméristémones 

Ordre : Rosales 

Famille : Papilionaceae 

Genre : Swartzia 

Espèce : madagascariensis


C’est un petit arbre de taille inférieure à 5 m mais qui peut atteindre 15 m dans un habitat 

favorable. Sa cime est étroite et ouverte. 

L’écorce grise à brun foncé présente des fissures longitudinales. Son aspect est rugueux. 

Les branches sont courbées. 

Les feuilles sont pubescentes en dessous, imparipennées et peuvent mesurer 20 cm de 

longueur. Elles possèdent 4 à 6 paires de folioles alternes et une foliole terminale. Elles sont 

de forme elliptique. Elles ont une face supérieure vert sombre et glabre, alors que la face 

inférieure possède de fins poils veloutés de couleur jaunâtre. 

Les fleurs constituant de petites grappes sont axillaires, blanches et parfumées. La corolle 

est constituée d’un grand pétale orbiculaire et de nombreuses étamines libres, jaunes à 

oranges. 

Les fruits sont spectaculaires : ce sont des gousses cylindriques, glabres, multiséminées, 

longues de 20 à 30 cm, d’un brun foncé, luisantes et très étroites. 

Swartzia madagascariensis prend des feuilles à partir de Février, fleurit de Février à 

Septembre et donne des fruits d’Avril à Novembre (Malgras, 1992). 

Figure n° 6 : Plant de Swartzia madagascariensis

A 

B 

Figures n˚ 7 A et n˚7 B : Racines de Swartzia madagascariensis 

Habitat 

On le retrouve dans la savane sèche du Sénégal, il est très répandu dans l’Est et le Sud de 

l’Afrique centrale (Burkill, 1997). 

Il est disséminé dans les savanes soudano-guinéennnes ou en sous-bois des forêts claires. 

Il n’est pas très commun. 

En dépit de son nom, on ne le trouve pas sur l’île de Madagascar. 



Les brindilles et les écorces de racines en macéré sont légèrement laxatives. Les Maninka 

de la Côte d’Ivoire préparent les racines dans l’estomac d’un bœuf et prennent le bouillon 

pour soigner les gastrites. 

L’écorce est utilisée en Afrique du sud comme un remède contre la diarrhée. L’infusé 

d’écorce est utilisé localement pour soigner la jaunisse. 

Des tribus en Zambie préparent un bain d’écorce pour traiter les verrues. 

Au Mali, les écorces de racines et des tiges grillées, pilées et macérées sont utilisées 

comme reconstituant pour les hommes. 

Toujours au Mali, les racines séchées et réduites en poudre sont utilisées contre l’ictère et 

l’ascite, les racines fraîches broyées et pulvérisées contre le paludisme et les troubles hépatobiliaires, 

les racines en décoction contre le paludisme, l’ictère, la lèpre, la syphilis, la 

conjonctivite, la cataracte et comme vermifuge. Les écorces de racines broyées et mêlées au

lait sont utilisées au Mali contre l’ictère, les intoxications alimentaires, l’ascite, la rétention 

urinaire et les parasites intestinaux. Les fruits secs non pilés sont utilisés contre la dysenterie 

(Malgras, 1992). 

Dans le sud de l’Afrique la feuille avec du sel est signalée pour être utilisée comme un 

remède contre la toux. 

Au Sénégal, le filtrat des cosses cuites, réduites en poudre et mises en macération dans 

l’eau est prise comme tonifiant par les hommes et abortif par les femmes. Cette dernière 

indication peur être rapprochée de l’observation d’avortement chez des vaches se nourrissant 

des fruits de la plante. Le macéré de racine est vermifuge et est utilisée au Sénégal où les 

préparations des racines sont aussi prescrites contre la lèpre et la syphilis. 

En Tanzanie, les fruits râpés et la sève sont utilisés en instillation pour traiter les maux 

d’oreilles. Le décocté est pris comme vermifuge et comme remède contre les morsures de 

serpents (Burkill 1997). 


Les racines pilées sont utilisées dans les lagunes de la côte du Bénin comme un poison de 

pêche. 

Les feuilles bien que moins actives que les cosses des fruits sont utilisées en Guinée et au 

Mali comme un poison pour les poissons. Au Botswana elles sont mises dans les ruisseaux 

pour tuer les schistosomes pendant qu’au Zimbabwe, les cosses des fruits sont utilisées pour 

un usage similaire (Burkill 1997). 

Certaines populations indigènes utilisent le fruit broyé comme poison de pêche. Le poisson 

ainsi pêché est tout à fait comestible car les principes actifs sont des saponines qui agissent 

uniquement au niveau des branchies. Les solutions aqueuses des fruits secs broyés sont 

actives jusqu’à des dilutions del’ordre de 50 mg/ l. A signaler que les fruits secs sont plus 

actifs que les fruits verts et peuvent être stockés pendant au moins une année sans une 

diminution de l’activité. Des tests sur le terrain ont été effectués en Tanzanie. Dans les étangs 

infestés, 24 h après la dispersion des extraits aqueux des fruits de Swartzia madagascariensis, 

tous les escargots étaient morts (Hostettmann, 1997). 

Le fruit broyé est insecticide. Au Zimbabwe, les fruits sont mis dans les coffres 

d’entreposage du millet pour le protéger des termites. Dans le sud ouest de l’Afrique, la 

poudre des cosses ajoutée à une bouillie est utilisée comme rodenticide. 

Cette plante a également servi pour l’affouragement du bétail mais il s’en est suivi une 

modification du goût du lait et du beurre (Burkill, 1997).

Les fruits broyés donnent une bonne teinture pour les habits. 

Au Mali, le bois qui est très dur est utilisé pour fabriquer certains instruments de musique. 

2.4.3 Chimie de la plante (Kerharo et Adams, 1974 ; Schaller, 1999) 

Fruits 

Des travaux signalent l’absence de roténones dans les gousses. Les premières recherches 

systématiques ont été entreprises en 1947 par Mlle Beauquesne qui n’a pas trouvé 

d’alcaloïdes mais y a décelé : 

- un pigment jaune citron, dont les propriétés se rapprochent des substances flavoniques. Suite 

à l’observation du comportement physico-chimique de ce composé, elle postula la présence 

d’un aglycone de formule C 15 H 10 O 6 , qu’elle nomma provisoirement swartziol, addtionné de 

molécules deux de rhamnose et d’une molécule de glucose. Elle décrivit cependant pour 

l’aglycone des similitudes avec le kaempférol, qu’elle confirma 20 ans plus tard à l’aide de 

méthodes physico-chimiques plus modernes. De plus, la présence d’une molécule de glucose 

fut corrigée et remplacée par du galactose. La structure alors suggérée pour ce flavonoïde, 

nommé swartzioside, fut le 3-O-rhamnosyl-7-O-rhamnogalactosyl-kaempférol. 

- un saponoside qu’elle appela swartzia saponoside. A l’aide des méthodes à sa disposition, 

elle ne parvint pas à en élucider la structure. Elle mentionna par contre la présence probable 

de glucose, rhamnose et de fructose. 

- des tanins catéchiques. 

- dans les cendres (1,4 %) : chlorures, sulfates, sodium, potassium, phosphore, calcium, 

magnésium, une quantité notable de fer et beaucoup de manganèse, responsable de la couleur 

En fait, depuis les travaux de Sandberg et coll., on sait que les gousses contiennent des 

saponosides. Ce sont 2 saponosides acides triterpéniques, les swartzia saponines A et B et un 

saponoside neutre de nature stérolique. Les swartzia saponines fournissent à l’hydrolyse un 

aglycone (la swartziagénine) de formule brute C 30 H 48 O 4 et des sucres : rhamnose, xylose, 

glucose, acides galacturonique et glucuronique. Ce travail fur repris en 1971 par Jewers et al, 

établissant que la swartziagénine représentait en fait un mélange de 2 aglycones, l’acide 

oléanique et en quantité moindre toutefois, l’acide-O-acétyl oléanique. 

Les analyses de l’extrait méthanolique des fruits ont montré la présence glycosides 

triterpènes dérivés de l’acide oléanique (Hostettmann et al., 1996).

Graines 

Les extraits aqueux des graines contiennent une grande quantité de saponines avec une 

haute activité molluscicide. Les saponines les plus actives sont les glycosides de l’acide 

oléanique (Hostettmann et al., 1996). 

Bois de cœur 

En vue de rechercher les constituants responsables de la résistance de l’aubier aux 

champignons et aux insectes, Harper et coll. ont entrepris à partir de 1965 toute une série 

d’études chimiques sur cet organe. L’extrait pétrolifié est formé principalement de glycérides, 

mais donne aussi une fraction constituée par une résine représentant plus de 6% du poids sec. 

Dix composés appartenant au groupe des ptérocarpones en ont été isolés. Ce sont 3 composés 

déjà connus : homoptérocarpine, déméthyl ptérocarpine, ptérocarpine et 7 composés 

nouveaux. Il s’agit de 8 ptérocarpanes, d’un ptérocarpène et d’un coumestane. 

Ils mentionnèrent également en 1969 la présence d’un pigment pourpre dans l’extrait à 

l’éther de pétrole du bois de cœur. Ce pigment, extrait par de l’éther d’abord et de l’éthanol 

ensuite, semblait homogène chromatographiquement. N’étant parvenu à le cristalliser, ils 

décidèrent de ne pas l’étudier. 

Quelques molécules isolées des écorces de racines de Swartzia madagascariensis 

(Schaller, 1999) 

OMe 

OMe 

O 

O 

MeO 

O 

MeO 

O 

O 

Anhydrovariabiline 

Di-O-Méthyl coumestrol 

H 

H 

COOH 

COOH 

O 

Acide-O-acétyl oléanique 

HO 

Acide oléanique

HO 

O 

OH 

H 

O 

(4 bS, 8 aS)-4 b, 5, 6, 7, 8, 8 a-Hexahydro-4 –hydroxy-2- (2-hydroxyéthyl) -1, 4 b, 8, 8- 

tétraméthyl phénantrène-3, 9-dione 

2.4.4 Pharmacologie (Burkill, 1997 ; Kerharo et Adams, 1974 ; Schaller, 1999) 

Les fruits et les graines de cette plante ont des propriétés émétiques considérables : 

l’ingestion de 3 gousses induit des vomissements parfois sévères dans l’heure qui suit 

(Burkill, 1997). 

Schaller a isolé des écorces de racines de Swartzia madagascariensis 14 molécules à 

activité antifongiques dont la plus active a été la (4 bS, 8 aS)-4 b, 5, 6, 7, 8, 8 a -hexahydro- 

4 –hydroxy-2- (2-hydroxyéthyl)-1, 4 b, 8, 8-tétraméthylphénantrène- 3, 9-dione appelé 

composé B 1 testé sur 3 espèces de Candida à savoir C. albicans, C. glabrata et C. krusei. Ce 

composé a eu une forte activité par rapport aux molécules conventionnelles comme le 

Fluconazole et l’Amphotéricine B (Schaller, 1999). 

La swartzie possède de précieuses propriétés molluscicides. En effet le cycle extrêmement 

complexe des schistosomes de la bilharziose et le rôle joué, en l’occurrence par les 

mollusques aquatiques est bien connu. Répandu dans toute l’Afrique Swartzia 

madagascariensis est peut être le plus prometteur des agents de contrôle des mollusques, et 

donc des parasites dont ils favorisent le cycle. En effet, la dilution du macéré de fruits 

pulvérisés de la swartzie élimine les dits mollusques à 100 %. Cet effet radical serait lié à des 

saponosides contenus dans les gousses (Boullard, 2001). 

2.4.5 Toxicité 

L’indice hémolytique du péricarpe sec avoisine 500, alors que celui d’une préparation 

concentrée est d’environ 7000 rapporté au saponoside pur de Beauquesne. 

Les gousses sont encore plus hémolytiques que le péricarpe.

Gaudin et Vacherat ont montré l’action nettement ichtyotoxique des fruits dont le digesté à 

20 % tue les poissons en 2 h et demi alors qu’il est non toxique per os pour le cobaye à des 

doses correspondant à 5 g /kg. 

Utilisant pour ses recherches le même lot d’échantillon que Gaudin et Vacherat les seules 

différences résidant dans le temps de conservation, Mlle Beauquesne a constaté avec un 

décocté de même concentration (péricarpe seul) la mort de cyprins dorés de 13 g en 24 h. 

Dans des conditions expérimentales identiques la solution aqueuse à 1% les tuait en 5 h. Dans 

tous les cas il était noté un engourdissement prononcé, très rapide avec le décocté (15 min), 

plus tardif pour le saponoside (40 min) (Kerharo et Adams, 1974).

2.5 Fagara zanthoxyloïdes Lam 


Synonymes (Kerharo et Adams, 1974) 

Fagara senegalensis (DC) A Chev 

Zanthoxylum senegalense DC. 

Zanthoxylum polyganum Schum. 

Zanthoxylum zanthoxyloïdes Waterm. 

Zanthoxylum xanthoxyloïdes Waterm 

Noms locaux 

Anglais : Candlewood 

Français : Fagara jaune 

Senegal: Peulh: Barkeley, bulebarkele 

Benin: Fon, Goun: He 

Niger: Hausa: Fasakwari 

Nigeria: Yoruba: Iguiata, ata 

Togo: Akassélem: Bidjakogoro 

Mali : Bambara : Wo ; Gozo-ngua 

Systématique 


Sous-règne : Eucaryote 




Sous-classe : Dialypétales 

Série : Disciflores 

Sous-série : Diplostémones 

Ordre : Rutales 

Famille : Rutaceae 

Sous-famille : Rutoideae 

Genre : Fagara 

Espèce : zanthoxyloïdes

Description botanique (Adjanohoun et coll, 1980) 

Le Fagara jaune est un arbuste ou un petit arbre (atteint 12 m de hauteur), à fut souvent 

branchu et avec une cime plus ou moins en boule. 

Le tronc est garni de mamelons ligneux surmontés d’un dard acéré. 

Les rameaux très armés, avec aiguillons très recourbés et aigus, en forme de griffe sont 

petits ou atteignent jusqu’à 1 cm de longueur. Ils sont de teinte brune avec un socle plus clair. 

Les feuilles sont composées, alternes, imparipennées et possèdent un pétiole de 2 à 5 cm et 

des rachis plus ou moins cylindriques ou aplatis canaliculés, garnis d’aiguillons, 5 à 9 folioles 

opposées, subopposées ou alternes, oblongues-elliptiques à oblongues, lancéolées, atteignant 

6 sur 2,5 cm. Le limbe aigu à la base est sur un pétiolule de 2 mm articulé inférieurement. Le 

sommet du limbe très nettement arrondi est émarginé ou garni d’un large mucron triangulaire. 

Le limbe est de consistance coriace avec marge rebordée au dessous, la nervure médiane est 

déprimée au-dessus et fortement saillante au-dessous. Cette nervure est très souvent garnie 

d’aiguillons sur les deux faces. Les nervures secondaires et les nervilles sont très peu visibles. 

Les inflorescences en panicules terminales ou subterminales, en général plus courtes que 

les feuilles sont densément fleuries et possèdent de jeunes axes pubérulents à pubescents. 

Les tiges se présentent sous forme de fragments cylindriques de 3 à 5 cm de diamètre. 

Le bois est jaune clair (d’où le nom de xanthoxylum) et très dur. 

L’écorce, relativement mince de 2 à 3 mm, d’un brun légèrement violacé, est assez 

lisse et de saveur amère ; sa mastication entraîne un picotement de la langue et un 

accroissement de la salivation. 

Les racines mesurent 2 à 4 cm de diamètre, le bois jaune, à texture compacte et l’écorce 

peu épaisse (1 à 2 mm) se détache facilement. Sa surface externe brun clair, striée 

longitudinalement et sillonnée transversalement présente des tâches jaune vif. La saveur, plus 

intense que celle des tiges, est aromatique, amère et poivrée. 

Les fleurs sont sessiles et garnies de petites bractéoles triangulaires à la base. Le calice 

possède 5 petits lobes triangulaires souvent brièvement fimbriés sur leurs bords et 5 pétales 

blanc crème. Les fleurs mâles possèdent 5 étamines et un pistil rudimentaire fusiforme subulé 

sur un disque central épais et ventru 5-lobé. Les fleurs femelles possèdent un disque 

cylindrique peu élevé supportant un carpelle globuleux (± 0,8 mm) avec un style latéral 

courbé et un stigmate capité. 

Les infructescences sont formées de petits follicules solitaires qui sont très peu stipités, 

subglobuleux (±5 mm), glanduleux et possédant chacune une graine.

Le fruit est une capsule qui a un diamètre de 5 à 6 mm et contient une graine qui est 

brillante et bleu noir. 

A 

B 

Figures n˚ 8 A et n˚ 8 B: Fagara zanthoxyloïdes (jeunes plants) 

A 

Figures n˚ 9 A et n˚ 9 B: Racines de Fagara zanthoxyloïdes 

B 

Habitat et distribution géographique 

Espèce des savanes préforestières et des fourrés littoraux répandue en Afrique tropicale 

dans l’aire des massifs forestiers guinéo-congolais. Fagara zanthoxyloïdes Lam est connu au 

Ghana, au Mali, en Côte d’Ivoire, en Guinée, au Nigeria, au Sénégal, au Togo et au Bénin. Il 

pousse spontanément en Afrique et de préférence dans les sols frais et humides.

La plante est assez fréquente dans les bosquets de la zone soudano-guinéenne ou en forêt 

claire (Malgras, 1992). 



De jeunes pousses et de petites branches sont utilisées comme bâtons à mâcher (Mali, Côte 

d’Ivoire, Ghana) pour le nettoyage des dents pour combattre les caries dentaires, les gingivites 

et pour réprimer les maux de dents. Les rameaux feuillus sont aussi utilisés en bouillie contre 

l’onchocercose, en décoction contre l’urticaire et en instillation contre le larmoiement des 

yeux. 

Au Sénégal 

Les peuples du Sénégal, utilisent un macéré du bois pour soulager des affections 

psychologiques connues. 

Les feuilles sont utilisées dans l’aromathérapie contre les migraines et les névralgies 

(Malgras, 1992) 

Des préparations de racines sont prescrites dans les envenimations par morsure de serpent. 

La décoction des feuilles et des racines est signalée efficace pour le traitement des urétrites 

(Kerharo et Adams, 1974). 

Au Mali 

Le décocté aqueux de l’écorce de tige est utilisé en bain de bouche dans les affections 

bucco-pharyngées. Elles sont aussi utilisées, en décoction contre l’hypertension, séchées et 

réduites en poudre pour le soin des plaies et les maux d’estomac (Adjanohoun et coll. 1985). 

Une décoction d’écorce est utilisée pour les gonorrhées, les coliques, diarrhées, gastrites et 

pour obtenir un cycle menstruel régulier. Elle est aussi utilisée comme vermifuge. Les feuilles 

ont une odeur de citronnelle lorsqu’elles sont écrasées. Une décoction aqueuse des feuilles 

est utilisée pour le traitement des ulcères, des chancres syphilitiques, des plaies et des ulcères 

lépreux. La décoction est utilisée en fumigation et comme un gargarisme pour soigner les 

maux de dents (Adjanohoun et coll. 1985). 

Au Nigeria 

Les racines servent comme bâton à mâcher pour soigner les maux de dents et pour alléger 

les effets des caries dentaires. Plusieurs rapports indiquent la présence de substances avec une

activité antimicrobienne, d’autres rapports ne présentent pas d’action antibiotique. Il a été 

signalé que l’extrait aqueux des racines est actif dans la réduction de la progression de la 

drépanocytose. Au nord du Nigeria l’écorce est utilisée contre les fièvres. 

Le fruit est mâché dans le nord du Nigeria pour les irritations des gencives. Il a une action 

antiparasitaire (Malgras, 1992). 

L’écorce a une propriété analgésique et est ajoutée à la préparation d’applications topiques 

contre les rhumatismes, les douleurs arthritiques, les maux de dents et des troubles, 

notamment les conjonctivites avec du pus (Malgras,1992). 

Au Bénin et au Togo 

Un bain de siège du décocté aqueux chaud d’une botte de racines est utilisé pour traiter les 

hémorroïdes. La racine sèche de la plante est pilée avec les tiges de Ostryoderris stuhlmanii 

Taub. Dunn ex Harm., des bulbes d’oignons et du poivre et administrée pour soigner les 

aménorrhées et les ictères. Le filtrat des feuilles fraîches triturées dans de l’eau et laissées en 

macération est utilisé contre les leucorrhées. Au Bénin et au Togo, les écorces sèches des 

racines de la plante seule ou associée soit aux feuilles et racines de Flacourtia flavescens 

Willd. ou de Uvaria chamae Pal. Beauv., soit aux tiges feuillées séchées de Hibiscus 

surratensis L. sont utilisées dans le traitement de la drépanocytose (Adjanohoun et coll. 

1986). 

Au Togo un décocté de racines est utilisé pour soigner les oedèmes. Le décocté d’un 

mélange s’utilise contre les plaies chroniques (Adjanohoun et coll.1986). 

Au Congo 

Un mélange d’écorces de racines réduites en poudre et d’huile de palme est appliqué sur 

tout le corps au Congo contre la gale (Adjanohoun et coll. 1985). 


Dans la région de Tiebissou en Côte d’Ivoire les jeunes branches sont régulièrement 

utilisées comme torches dans les occasions festives et les épines provenant du tronc sont 

jetées dans un feu de bois pour exhaler une fumée parfumée ou de l’encens. Les branches 

semblent posséder plusieurs vertus magiques capables de chasser les mauvais esprits. 

Les graines du fruit sont ficelées en collier au Sénégal. 

Les jeunes tiges sont utilisées au Mali pour faire des supports de filets ou chevilles de lits 

indigènes (Malgras).

Les graines ont un fort goût épicé de cannelle ou de poivre. Sèches ou écrasées, elles sont 

parfois utilisées pour aromatiser la nourriture ou pour servir comme du poivre. Elles sont 

aussi ajoutées au beurre. 

Les racines sont utilisées comme poison de pêche au Congo (Adjanohoun et coll. 1985). 

2.5.3 Chimie de la plante 

Toutes les études concernant Fagara zanthoxyloïdes ont été pratiquées sur des échantillons 

d’Afrique occidentale (Sénégal, Togo, Côte d’Ivoire, Nigeria). 

L’écorce des racines contient de nombreux alcaloïdes, dont le principal est aussi appelé 

artarine, et une base en faible quantité caractérisée par sa couleur rouge sang du nom de 

fagarine. 

L’extrait aqueux ou éthéré des racines renferme des acides phénoliques. La présence des 

acides P coumarique, coumarique, caféique, ferulique a été signalée, ainsi que le xanthoxylol. 

Les feuilles sont riches en huiles essentielles (dipenthène, linalol, méthylnonylcétone), et en 

coumarine (bergaptène). 

Il a été isolé des tiges de la gomme et des fruits des huiles essentielles et une coumarine 

(Bagayoko, 2001). 

Tableau n˚ X: Constituants chimiques isolés de Fagara zanthoxyloïdes 

Partie de 

la plante 

Groupe des 

substances 

Substances isolées 

Dipenthène 

Références 

Stamm (1984) 

Feuilles 

Linalol 

Stamm (1984) 

Huile 

essentielle 

Méthylnonylcétone 

Stamm (1984) 

Coumarine Bergaptène Stamm (1984)

Tableau n˚ X (suite): Constituants chimiques isolés de Fagara zanthoxyloïdes 

Partie de 

la plante 

Groupe des 

substances 


Références 

Arabinose 

Stamm (1984) 

Tige 

Gomme 

Galactose 

Acide 4 –méthylglucuronique 

Stamm (1984) 

Stamm (1984) 

Acide aldobiuronique 

Méthylnonylcétone 

Torto (1966) 

Stamm (1984) 

Linalol 

Stamm (1984) 

Fruit 

Huile 

essentielle 

Ester caprique 

Ester acétique 

Stamm (1984) 

Stamm (1984) 

Racines 

sesquiterpènes 

Stamm (1984) 

Coumarine Xanthotoxine Kerharo (1973) 

3-diméthylallyl 4 –méthoxy-2-quinone Stamm (1984) 

Skimmianine 

Paris (1947) 

Berbérine 

Hegnauer (1969) 

Chélérythrine 

Hegnauer (1969) 

Artarine (9-éthoxychélérythrine) Paris (1947) 

Angoline (9-méthoxychélérythrine) Palmer (1956) 

Alcaloïdes 

Fagaronine 

Messmer (1972) 

Magnoflorine 


N-méthylcorydine 


Tembétarine 


Candine-6-one 

Sofowara (1979)

Tableau n˚ X (suite et fin): Constituants chimiques isolés de Fagara zanthoxyloïdes 

Partie de Groupe des 


Références 

la plante substances 

Lignane 

Fagarol 

Sésamine 

Thoms (1911) 

Kerharo (1973) 

Phénol Xanthoxylol Eshiet (1966) 

Amide N-iso-butyldécadiennamide Bowden (1963) 

Racines 

Acide 

phénol 

Acide 2-hydroxyméthylbenzoïque 

Acide vanillique 

Acide para hydroxybenzoïque 

Sofowara (1979) 



Quelques molécules isolées de Fagara zanthoxyloïdes 

(Harbone et Baxter, 1993 ; Chaaib, 2004). 

OCH 3 

N 

O 

OCH 3 

Fagarine 

CH3 

CH3 

NH 

O 

Fagaramide 

O 

O 

O 

O 

O 

Fagarol 

H 

H 

O 

O 

O 

O 

O 

H 

O 

O 

H 

Sesamine 

O 

HN 

O 

Cis-fagaramide

2.5.4 Pharmacologie 

Le professeur Sofowara du Nigeria a constaté, en examinant les propriétés antibactériennes 

d’un extrait sur un milieu de culture qui contenait du sang, que ce sang restait rouge très 

longtemps. Il en a déduit que la plante devait empêcher l’hémolyse des hématies (Sofowara, 

1971). 

La xanthotoxine des fruits est connue pour ses propriétés ichtyotoxiques déjà manifestées à 

la concentration de 1/100.000 et serait même plus active que la picrotoxine. 

L’artarine irrite le système musculaire, coagule la myosine et provoque des mouvements 

spasmodiques comme la vératrine. Elle augmente l’énergie des battements du cœur, cet effet 

étant totalement indépendant du vague et des autres nerfs inhibiteurs du cœur. 

La fagaramide de Thoms et Thumes serait douée de propriétés narcotiques, mais 

uniquement sur les animaux à sang froid. Il y a lieu de signaler également que la Sésamine est 

connue pour son action synergétique avec les pyréthrines dont elle exalte les propriétés 

insecticides. 

Les essais concernant la pharmacologie de la skimmianine se sont soldés par des échecs en 

raison des quantités importantes d’acide chlorhydrique à mettre en œuvre pour la dissoudre. 

La N-isobutyl décadiene amide est un léger anesthésique local des muqueuses et donne la 

saveur piquante aux écorces de tiges et surtout de racines. 

Il a été signalé en 1947 l’emploi des écorces comme poison de pêche en Côte d’Ivoire 

bien que n’ayant pu mettre en évidence ni anthotoxine ni Fagaramide dans les écorces de 

racine. Il a été constaté que celles-ci sont fortement ichtyotoxiques. Dès la concentration de 

1/4000, elles produisent la perte de l’équilibre en quelques secondes. Les écorces de tige sont 

moins actives et les feuilles encore moins toxiques. L’essence est aussi fortement 

ichtyotoxiques : l’action est nette à partir d’une concentration de 1/500000 et instantanée à 

1/100000 (Kerharo et Adams, 1974). 

Fagara zanthoxyloïdes possède la propriété de redonner aux globules rouges leur forme 

ronde normale chez les malades drépanocytaires et de permettre un meilleur apport 

d’oxygène. A partir d’un extrait aqueux de racine de la plante qui diminuait fortement le 

nombre de cellules falciformes, on a isolé l’acide hydroxy-2-méthyl-benzoïque, responsable 

de cette activité. Au Nigeria, le principe actif de la plante a été formulé sous forme de 

comprimés (Sofowara et al, 1985). 

Les nombreuses études effectuées sur Fagara zanthoxyloïdes portent surtout sur l’activité 

antimicrobienne des extraits des racines (Metou et al, 1988).

Les alcaloïdes de Fagara zanthoxyloïdes possèdent en outre un nombre important 

d’activités physiologiques : antileucémique (Guissou, 1990), anticancéreuse et antivirale 

(Metou et al, 1988). 

L’acide hydroxy-2-méthyl benzoïque a été isolé et commercialisé sous forme de 

comprimés par un laboratoire togolais, qui a reçu une autorisation de mise sur le marché, sous 

le nom de Drépanostat® pour le traitement de la drépanocytose (Chaaib, 2004). 

Les travaux de Bossokpi ont montré que les extraits aqueux des écorces de racines de 

Fagara zanthoxyloïdes agissent sur l’inflammation et la douleur, les extraits aqueux et 

organiques empêchent l’oxydation, réduisent le temps de coagulation sanguine et inhibent le 

développement des champignons. La meilleure activité fongicide avait été obtenue avec 

l’extrait éther de pétrole. Les effets antalgiques et anti-inflammatoires des extraits aqueux 

avaient été dose dépendante. Des doses de 1500 mg d’extrait aqueux avaient permis d’obtenir 

respectivement 53 % et 52 % de la suppression de la douleur et de l’inflammation. De bonnes 

activités antioxydante et hémostatique avaient été obtenues avec les extraits butanoliques de 

la poudre d’écorces de racines de Fagara (Bossokpi, 2003). 

Les activités antibactérienne, antifongique, larvicide et molluscicide de Fagara 

zanthoxyloïdes ont été étudiées par Chaaib. Les extraits dichlorométhane et méthanolique ont 

montré des activités antifongique contre Candida albicans et Cladosporium cucumerinum, 

antibactérienne contre Bacillus subtilis, larvicide contre Aedes aegypti, inhibitrice de 

l’acétylcholinestérase et antiradicalaire. L’extrait dichlorométhane a montré une activité 

importante sur Streptococcus mutans ATCC 25175 tandis que l’extrait méthanolique s’est 

montré inactif (Chaaib, 2004). 

2.5.5 Etudes cliniques 

Une étude a été effectuée sur 50 malades, présentant une moyenne de 25 crises 

drépanocytaires douloureuses par mois. Chez ces malades traités trois fois par jour par 5 ml 

d’une solution correspondant à 1 mg/ml d’extrait aqueux de Fagara zanthoxyloides, les crises 

disparaissaient complètement et l’hématocrite restait constant (Isaac-Sodoyé et al, 1975). 

Au Burkina Faso, une étude clinique comparative entre la Dihydroergotoxine 

(Hydergine®) d’une part, et l’association de poudres de Fagara zanthoxyloïdes et de 

Calotropis procera d’autre part a été réalisée chez les enfants en crise drépanocytaire. La 

poudre des deux plantes associées sous forme de gélules s’est révélée, in vitro, inhibitrice de 

la falciformation des globules rouges et in vitro sur la crise drépanocytaire (Guissou, 1990).

Au Mali, une étude clinique a été réalisée sur l’efficacité d’un extrait hydroalcoolique de 

Fagara zanthoxyloïdes comparée à celle du kétoprofène dans le traitement des crises vasoocclusives 

chez les drépanocytaires. L’extrait hydroalcoolique de Fagara zanthoxyloïdes a 

montré un pouvoir inhibiteur de la falciformation des hématies, il est aussi bien toléré avec un 

taux de sédation des crises douloureuses de 70 % (Diallo et al, 1998). 

2.5.6 Toxicité 

Chez la souris, par voie sous-cutanée à une dose correspondant à 10 g/mg, l’écorce de 

racine provoque la mort de 80 % des animaux. Chez le chien chloralosé, l’extrait d’écorce de 

racine provoque par voie intraveineuse une action dépressive sur le cœur. Sur l’intestin isolé, 

l’infusé provoque une diminution de l’amplitude et surtout du tonus. 

Les essais de toxicité sur la souris pour les alcaloïdes ont conduit aux résultats suivants : 

par voie sous-cutanée la dose tolérée est de 0,125 g/kg pour la fagaridine et de 0,05 g/kg pour 

la skimmianine et l’artarine (Kerharo et Adams, 1974).

3. LES POMMADES (Le Hir, 1986; Konipo, 2001) 

3.1 Définition 

Les pommades sont des préparations de consistance semi-solide destinées à être appliquées 

sur la peau ou sur certaines muqueuses afin d’exercer une action locale de réaliser la 

pénétration percutanée de principes médicamenteux. Elles présentent un aspect homogène (Le 

Hir, 1986). 

3.2 Fiche technique des excipients 

La vaseline est une substance de consistance onctueuse, pâteuse, de couleur blanchâtre, 

translucide en couche mince, insipide et sans odeur. Elle présente un caractère plus ou moins 

marqué et fond entre 36 et 60 °C. C’est une dispersion plus grossière d’hydrocarbures plus ou 

moins solides et liquides. Elle est soluble, comme les autres produits du groupe dans les 

solvants organiques mais insolubles dans l’eau et l’alcool. 

Elle est inattaquable par les bases et les acides. Inaltérable, la vaseline ne se laisse absorber 

ni par la peau ni par les muqueuses ce qui limite son action aux pommades d’action 

superficielle. 

Le beurre de Karité est extrait à partir des noix de Butyrospermum parkii (G. Don) 

Kotschy. C’est une Sapotaceae qui croît spontanément dans plusieurs pays africains dont le 

Mali. C’est un produit de couleur jaune clair. Il a un point de fusion qui oscille ordinairement 

entre 33 et 42 °C. Sa densité à 15 °C est comprise entre 0,915 et 0,920. 

Le beurre de Karité contient une proportion importante de substances insaponifiables, 

d’environ 6-17 %. Les insaponifiables du Karité sont constitués par environ 1/3 par 

hydrocarbures (les karitènes A, B, C et D) et de 2/3 par des alcools triterpéniques β amyrine, 

basseol, butyrospermol, parkeol, luseol et des stérols (Karistérols A et B). Le Beurre de Karité 

est également riche en vitamines A et D. 

Comme excipient le beurre de Karité possède toutes les propriétés qu’une substance 

pharmaceutique ou cosmétique peut nécessiter : 

- agréable au tact et à la vue

- très bon émulsionnant et stabilisant, ce qui le rend très apprécié par les préparateurs 

car il empêche la séparation des crèmes en phase grasse et aqueuse 

- des propriétés antioxydantes et probablement bactériostatiques 

Tout ceci justifie la grande utilisation de ce produit. C’est l’excipient le plus utilisé en 

médecine traditionnelle pour la préparation des pommades. L’industrie pharmaceutique et 

cosmétique l’utilise comme excipient pour la fabrication des crèmes, pommades 

suppositoires et produits de beauté

1. METHODOLOGIE 

1. 1 Matériel végétal 

Les parties aériennes de Cassia nigricans ont été récoltées en janvier 2006 dans le bosquet 

de l’Association des Thérapeutes et des Herboristes du District de Bamako par Mr Salifou 

TRAORE. 

Les parties aériennes de Mitracarpus scaber ont été récoltées en janvier 2006 à SOTUBA 

dans le jardin du Département de Médecine Traditionnelle (DMT) de l’Institut National de 

Recherche en Santé Publique (I.N.R.S.P). 

Les feuilles de Psorospermum guineense, les racines de Swartzia madagascariensis et de 

Zanthoxylum zanthoxyloides ont été achetées à l’herboristerie du marché de Médine. Elles ont 

été achetées en Janvier et Mars 2006 à Monsieur Mamadou DIARRA respectivement pour 

Psorospermum guineense, Zanthoxylum zanthoxyloïdes et Swartzia madagascariensis. 

Un spécimen de chaque échantillon est disponible au DMT sous les numéros 528, 2649, 

809, 703 et 1524 respectivement pour Swartzia madagascariensis, Psorospermum guineense, 

Mitracarpus scaber, Fagara zanthoxyloides et Cassia nigricans. 

Après réception, les drogues ont été séchées à l’ombre à la température ambiante du 

laboratoire du D.M.T. 

Les écorces de Zanthoxylum zanthoxyloides ont été concassées dans un mortier en bois 

traditionnel. 

Les drogues sèches ont été pulvérisées avec le moulin Retsch SM 2000 excepté Swartzia 

madagascariensis dont les parties jaunes des écorces de racines ont été râpées avec un 

couteau.

1.2. Etudes phytochimiques 

1.2.1. Réactions de caractérisation 

Les réactions de caractérisation ont porté sur la recherche dans les poudres des plantes des 

principaux groupes chimiques. Ces réactions permettent d’avoir des informations sur la 

composition chimique des plantes. 

Les groupes chimiques présents dans nos échantillons ont été caractérisés par des 

réactions en tubes. 

Les résultats sont classés selon : 

- réaction franchement positive : + + + + 

- réaction positive : + + + 

- réaction moyennement positive : + + 

- réaction louche : + 

- test négatif : - 

Matériel 

- Balance analytique de précision (type SARTORIUS) 

- Tubes à essai, éprouvette 

- Entonnoir, coton, papier filtre 

- Pipettes, erlenmeyer, poire 

- Ampoule à décanter 

- Bain-marie Buchi 461 water bath 

1.2.1.1 Alcaloïdes 

Ils forment un groupe important de substances naturelles d’intérêt thérapeutique par leur 

diversité structurale et l’éventail de leurs activités pharmacologiques. Ce sont des substances 

azotées qui agissent comme des bases. 

Solution à analyser 

Nous avons ajouté à de la poudre végétale (10 g) de l’acide sulfurique dilué au 1/10 

(50 ml) dans un erlenmeyer de 250 ml. L'ensemble a été laissé en macération à la température

du laboratoire pendant 24 heures puis filtré. Le filtrat a été complété à 50 ml avec de l’eau 

distillée. 

Caractérisation 

Nous avons pris 2 tubes à essai dans lesquels nous avons introduit le filtrat (1 ml). Nous 

avons ajouté 5 gouttes de réactif de Mayer (solution aqueuse de mercuri-iodure de 

potassium) dans le premier tube et 5 gouttes de réactif de Dragendorff (solution aqueuse 

d’iodo-bismuthate de potassium) dans le second. La présence d'alcaloïdes est caractérisée par 

la formation d’un précipité dans chaque tube. 

1.2.1.2 Substances polyphénoliques 


La solution à analyser est un infusé à 5 %. Nous avons ajouté à de la poudre végétale (5 g) 

de l’eau bouillante (100 ml) contenue dans un erlenmeyer de 250 ml. Nous avons arrêté 

l’ébullition, surmonté d’un entonnoir et laissé infuser 15 mn. Le filtrat a été complété à 100 

ml avec de l’eau distillée. 


‣ Tanins 

Ce sont des esters de l’acide gallique ou de glucose. Leurs propriétés biologiques sont liées 

à leur pouvoir de former des complexes avec les macromolécules en particulier les protéines 

Dans un tube à essai contenant 1 ml de l'infusé, nous avons ajouté 1 ml d'une solution 

aqueuse diluée de FeCl 3 à 1 %. En présence de tanins, il se développe une coloration verdâtre 

ou bleu noirâtre. 

• Tanins catéchiques 

A 5 ml d’in fusé à 5 %, nous avons ajouté 1 ml d’alcool chlorhydrique (5 ml d’alcool 95°, 

5 ml d’eau distillée, 5 ml d’HCl concentré). Nous avons porté à ébullition pendant 15 

minutes. 

En présence de tanins catéchiques, il y a formation d’un précipité rouge soluble dans 

l’alcool amylique.

A 30 ml d’infusé à 5 % nous avons ajouté 15 ml de réactif de Stiasny (10 ml de formol à 

40 %, 15 ml d’acide chlorhydrique concentré). Nous avons chauffé au bain-marie à 90°C 

pendant 15 minutes. L’obtention d’un précipité montre la présence de tanins catéchiques. 

• Tanins galliques 

Filtrer et saturer le filtrat d’acétate de sodium pulvérisé. Ajouter 1 ml goutte à goutte d’une 

solution de FeCl 3 à 1 %. Le développement d’une teinte bleu noir montre la présence de 

tanins galliques. 

‣ Flavonoïdes 

Ce sont les pigments universels des végétaux responsables de la coloration des fruits, des 

fleurs et souvent des feuilles. 

A l'infusé à 5 % présentant une coloration plus ou moins foncée, nous avons ajouté un 

acide (5 ml de H 2 SO 4 ) puis une base (5 ml de NH 4 OH). Si la coloration s'accentue par 

acidification puis vire au bleu violacé en milieu basique, on peut conclure à la présence 

d'anthocyane. 

• Réaction à la cyanidine 

Nous avons introduit dans un tube à essai 5 ml de l’infusé à 5 %, ajouté 5 ml d’alcool 

chlorhydrique (éthanol à 95 %, eau distillée, HCl concentré à parties égales en volumes) ; puis 

quelques copeaux de magnésium et 1 ml d’alcool isoamylique. 

L’apparition d’une coloration rose orangé (flavones) ou rose violacée (flavanones) ou 

rouge (flavonols, flavanonols) rassemblée dans la couche surnageante d’alcool isoamylique 

indique la présence d’un flavonoïde libre (génine). Les colorations sont moins intenses avec 

les hétérosides flavoniques. 

La réaction est négative avec les chalcones, les dihydrochalcones, les aurones, les 

catéchines et les isoflavones. 

‣ Leucoanthocyanes 

Nous avons effectué la réaction à la cyanidine sans ajouter les copeaux de magnésium et 

chauffé pendant 15 mn au bain-marie.

En présence de leucoanthocyanes, il se développe une coloration rouge cerise ou violacée. 

Les catéchols donnent une teinte brune rouge. 

1.2.1.3 Dérivés anthracéniques 

Ils appartiennent au groupe des quinones. Ils se caractérisent par leur pouvoir oxydant 

élevé. 

‣ Anthracéniques libres 


A de la poudre végétale (1 g), nous avons ajouté du chloroforme (10 ml) et chauffé 

pendant 3 minutes. Nous avons filtré à chaud et complété à 10 ml si nécessaire. 


A 1 ml de l’extrait chloroformique obtenu nous avons ajouté 1 ml d’ammoniaque dilué au 

1/2 et agité. 

La coloration plus ou moins rouge indique la présence d’anthraquinones libres. 

‣ Anthracéniques combinés 

• O-hétérosides 

Nous avons préparé un hydrolysat à partir du résidu de la drogue épuisée par le 

chloroforme auquel nous avons ajouté 10 ml d’eau et 1 ml d’acide chlorhydrique concentré. 

Nous avons maintenu le tube à essai au bain-marie bouillant pendant 15 minutes. Nous avons 

filtré et complété le filtrat à 10 ml. 

Nous avons agité 5 ml de l’hydrolysat avec 5 ml de chloroforme. Nous avons soutiré la 

phase organique et l’avons introduit dans un tube à essai. Nous avons gardé la phase aqueuse 

A la phase organique, nous avons ajouté 1 ml d’ammoniaque dilué au 1/2. Une coloration 

rouge plus ou moins intense indique la présence d’anthraquinones. 

Si la réaction est négative ou faiblement positive, rechercher les O-hétérosides à génine 

réduite. 

Nous avons prélevé 5 ml de l’hydrolysat et ajouté 3 à 4 gouttes de FeCl 3 à 10 %. Nous 

avons chauffé pendant 5 mn au bain-marie puis refroidi sous courant d’eau. Nous avons agité

avec 5 ml de chloroforme puis soutiré la phase chloroforme. Nous l’avons introduite dans un 

tube à essai. 

Nous avons ajouté 1 ml d’ammoniaque dilué et agité. 

En présence de produits d’oxydation des anthranols ou des anthrones, la coloration rouge 

est plus intense que précédemment. 

• C-hétérosides 

La solution à analyser est la phase aqueuse obtenue avec la solution à analyser des O- 

hétérosides. A cette solution nous avons ajouté de l’eau (10 ml) et du FeCl 3 (1 ml). Le tube à 

essai a été maintenu au bain-marie pendant 30 mn puis refroidi sous un courant d’eau. Nous 

avons agité avec du CHCl 3 (5 ml) puis soutiré la phase chloroformique. Nous y avons ajouté 

de l’ammoniaque dilué au ½ (1 ml). 

L’apparition d’une coloration rouge plus ou moins intense indique la présence de 

génines de C-hétérosides. 

• Différentiation des Quinones 

A de la poudre de drogue végétale (1 g) humectée avec de l’acide sulfurique à 10 % nous 

avons ajouté un mélange à volume égal d’éther et de chloroforme (20 ml). Après une 

macération de 24 heures, 5 ml du filtrat obtenu ont été évaporés à l’air, puis le résidu a été 

repris par quelques gouttes d’éthanol à 95 %. Nous avons ajouté goutte à goutte une solution 

aqueuse d’acétate de nickel à 5 %. 

La réaction positive se caractérise par une coloration rouge. 

1.2.1.4 Stérols, triterpènes et caroténoïdes 


L’extrait à tester a été obtenu à partir de la poudre de drogue végétale (1 g) et de l’éther 

(20 ml) laissés en macération pendant 24 heures. Nous avons filtré et complété à 20 ml avec 

de l’éther. 

Caractérisations 

‣ Stérols et triterpènes 

Nous avons évaporé à sec dans un tube à essai 10 ml d’extrait, puis fait dissoudre le résidu 

dans 1 ml d’anhydride acétique et dans 1 ml de chloroforme. Nous avons partagé dans deux

tubes à essai, l’un servant de témoin puis avons mis dans le fond du second tube à l’aide d’une 

pipette 1 à 2 ml d’acide sulfurique concentré. 

A la zone de contact des deux liquides il y a formation d’un anneau rouge brunâtre ou 

violet, la couche surnageant devenant verte ou violette révèle la présence de stérols et tri 

terpènes. 

‣ Caroténoïdes 

Après évaporation jusqu’à sec de 5 ml d’extrait, nous avons ajouté 2 à 3 gouttes d’une 

solution saturée de trichlorure d’antimoine dans le chloroforme. 

Il se développe en présence de caroténoïdes une coloration bleue devenant rouge par la 

suite. 

1.2.1.5 Hétérosides cardiotoniques 

Ils forment un groupe homogène possédant un intérêt thérapeutique réel. Ils demeurent des 

médicaments majeurs de l’insuffisance cardiaque. 


Nous avons introduit 1 g de poudre, 10 ml d’alcool à 60 % et 5 ml d’une solution d’acétate 

neutre de plomb à 10 % dans un tube à essai puis porté à ébullition au bain-marie bouillant 

pendant 10 minutes. Nous avons filtré sur coton. 


La phase chloroformique obtenue après agitation du filtrat avec 10 ml de chloroforme a été 

partagée entre 3 tubes à essai et évaporée au bain-marie bouillant jusqu’à sec. Les résidus ont 

été repris avec 0,4 ml d’isopropanol et dans les 3 tubes nous avons ajouté respectivement 1 

ml de réactif de Baljet, 1 ml de réactif de Kedde, 1 ml de réactif de Raymond-Marthoud. Nous 

avons introduit dans chaque tube 5 gouttes de KOH à 5 % dans l’éthanol et observé après 10 

minutes environ. 

En présence d’hétérosides cardiotoniques, les colorations suivantes se sont développées : 

Tube 1 : orangé 

Tube 2 : rouge violacé 

Tube 3 : violet fugace

1.2.1.6 Saponosides 

Ce sont des hétérosides caractérisés par leurs propriétés tensioactives. 


La solution à analyser est un décocté à 1 %.Nous avons porté à ébullition dans un 

erlenmeyer de l’eau distillée (100 ml) et y avons projeté de la poudre de drogue végétale (1g). 

Une ébullition modérée a été maintenue pendant 15 mn. Nous avons filtré et après 

refroidissement ajusté à 100 ml. 


Dans une série de 10 tubes à essai numérotés de 1 à 10, nous avons réparti successivement 

1, 2, ….10 ml du décocté à 1%. Le volume de chaque tube a été ajusté à 10 ml avec de l’eau 

distillée. Chaque tube a été agité pendant 15 secondes dans le sens de la longueur puis laissé 

au repos pendant 15 minutes puis la hauteur de la mousse a été mesurée. 

L’indice de mousse (I.M.) a été calculé a partir du tube dans lequel la hauteur de la mousse 

a été de 1 cm (N). 

1000 

Indice de mousse = 

N 

1.2.1.7 Autres caractérisations 

‣ Composés réducteurs 

Le décocté aqueux à 10 % (5 ml) a été évaporé au bain-marie jusqu’à sec. Nous avons 

ajouté au résidu 1 ml de réactif de Fehling (0,5 ml réactif A + 0,5 ml réactif B, mélange 

extemporané). 

L’obtention d’un précipité rouge brique indique la présence de composés réducteurs. 

‣ Oses et holosides 

Le décocté aqueux à 10 % (5 ml) a été évaporé à sec. Nous avons ajouté au résidu 2 à 3 

gouttes de H 2 SO 4 concentré, puis après 5 minutes 3 à 5 gouttes d’alcool saturé avec du 

thymol. 

Le développement d’une coloration rouge révèle la présence d’oses et holosides.

‣ Mucilages 

Nous avons ajouté à 1 ml de décocté à 10 % de l’éthanol absolu (5 ml). 

L’obtention d’un précipité floconneux, par mélange, indique la présence de mucilages. 

‣ Coumarines 

Nous avons évaporé à sec l’extrait éthérique (5 ml) obtenu après une macération de 24 

heures, puis avons repris le résidu avec de l’eau chaude (2 ml). Nous avons partagé la 

solution entre deux tubes à essai. Nous avons ajouté dans l’un des tubes de l’ammoniaque à 

25 % (0,5 ml) et observé la fluorescence sous UV 366 nm. 

Une fluorescence intense dans le tube où il a été ajouté de l’ammoniaque indique la 

présence de coumarines. 

‣ Hétérosides cyanogénétiques 

Nous avons ajouté à de la poudre végétale (1g), un mélange à volume égal d’eau et de 

toluène (5 ml). Nous avons bien agité, nettoyé la partie supérieure du tube à essai et y avons 

fixé à l’aide d’un bouchon le papier picrosodé fraîchement préparé. 

La présence d’hétérosides cyanogénétiques est indiquée par la coloration rouge plus ou 

moins rapide du papier picrosodé.

1.2.2 Dosages 

1.2.2.1 Teneur en eau 

Deux méthodes ont été utilisées pour le dosage de l’eau : 

Méthode gravimétrique 

Principe 

C’est une méthode pondérale qui consiste en la détermination de la perte en masse d’une 

quantité connue de poudre par dessiccation à l’étuve ou au four réglée à la température de 

105 °C pendant 24 h. 

Matériel : 


- Four 

- Pince 

- Spatule métallique 

- Verre de montre (ou creuset) 

- Dessiccateur 

Technique 

Nous avons taré cinq verres de montre et y avons introduit des prises d’essai (PE) de 1 à 2 

g (pesées au mg près). Nous avons ensuite pesé les verres de montre contenant les poudres 

avant de les introduire dans le four réglé à 103 ± 2 °C pour une dessiccation pendant 24 h. Au 

sortir du four nous avons refroidi les poudres dans un dessiccateur contenant un desséchant 

(chlorure de calcium, anhydride phosphorique) et les avons ensuite pesées. 

Le calcul suivant permet d’obtenir le pourcentage en eau : 

Calcul: Masse prise d’essai = masse avant four - tare 

Masse eau = masse avant four – masse après four 

% eau = (masse eau ÷ masse PE) × 100

Méthode azéotropique 

Principe 

Cette méthode encore appelée méthode volumétrique consiste à mesurer le volume d’eau 

entraîné par distillation à température constante d’un solvant non miscible à l’eau auquel une 

masse de drogue végétale est ajoutée. L’eau se condense dans la partie inférieure du tube 

collecteur gradué et son volume est lu. 

Matériel et solvants : 

- Ballon de 250 millilitres en verre. 

- Réfrigérant à reflux tube droit de 20 centimètres de long 

- Tube collecteur gradué surmonté d’un tube cylindrique de condensation 

- Source de chaleur (chauffe-ballon) 

- Eau distillée 

- Solvant non miscible à l’eau (toluène, benzène, xylène, …) 

Technique 

Nous avons introduit dans un ballon sec de l’eau distillée (1 ml) et du toluène (100 ml). 

Nous avons fait distiller pendant une heure (1 h) et avons laissé reposer pendant trente 

minutes (30 mn). 

Le volume initial (Vi) d’eau distillée a été lu. 

Nous avons ensuite introduit dans le ballon une prise d’essai (PE) de 5 g de poudre de 

drogue et avons fait bouillir l’ensemble pendant 1h. Nous avons laissé reposer pendant 30 

mn. 

Le volume final (Vf) d’eau dans l’appareil a été lu. 

Nous avons recherché le pourcentage d’eau dans la drogue par le calcul suivant. 

Calcul : % d’eau dans la drogue = 

(Vf – Vi) × 100 

PE

1.2.2.2 Substances extractibles par l’eau 

Nous avons fait une décoction pendant 15 mn avec de la poudre végétale (1 g) dans de 

l’eau distillée (20 ml). Le filtrat a été mis dans une capsule ou dans un ballon préalablement 

taré puis évaporé à sec. Nous avons ensuite pesé la capsule ou le ballon à froid et déduit la 

masse du résidu. 

1.2.2.3 Substances extractibles par l’éthanol 70 % 

Nous avons fait macérer de la poudre végétale (1g) dans de l’éthanol 70 % (20 ml) 

pendant 24 h. Le filtrat a été mis dans une capsule tarée et évaporé à sec (au bain-marie). 

Nous avons ensuite pesé la capsule à froid et déduit la masse du résidu. 

1.2.2.4 Cendres 

Matériel 


- Four 

- Creusets en porcelaine ou en fer 

- Spatule métallique 

- Dessiccateur 

- Pince 

‣ Cendres totales 

Les cendres proviennent des tissus de la plante ou des éléments étrangers (sable, terre…) 

adhérant à la drogue végétale. Elles sont obtenues par calcination complète de la matière 

végétale dans l’air. 

La teneur en cendres est obtenue par dosage pondéral des cendres blanches obtenues par 

calcination de la drogue végétale dans un four. 

• Mode opératoire 

Nous avons pesé 3 prises d’essai de la drogue (M) dans 3 creusets en silice préalablement 

tarée (T).

Après incinération au four à une température d’environ 600 °C pendant 6 h, et 

refroidissement dans un dessiccateur, nous avons déterminé la masse des creusets contenant 

les prises d’essai et les avons noté M’ 1 , M’ 2 et M’ 3 . 

La masse moyenne en cendres totales (MCt) contenues dans le creuset est donnée par la 

formule : 

MCt = 

(M’ 1 -T 1 ) + (M’ 2 -T 2 ) + (M’ 3 -T 3 ) 

3 

La masse moyenne de la prise d’essai (PE) est donnée par la formule : 

(M 1 +M 2 +M 3 ) 

PE = 

3 

Le pourcentage des cendres totales (% Ct) est donné par la formule : 

% Ct = 100 × 

MCt 

PE 

‣ Détermination de la teneur en cendres sulfuriques 

C’est une méthode d’évaluation des substances inorganiques de la drogue végétale. Les 

cendres sulfuriques sont obtenues après une attaque de la drogue par l’acide sulfurique. 

La teneur est déterminée par dosage pondéral des sulfates non volatils obtenus par calcination 

de la matière végétale préalablement traitée avec de l’acide sulfurique dilué au ½. Les sulfates 

résultent de la conversion des sels organiques. 

Dans un creuset en quartz sec préalablement taré (T), nous avons introduit une prise 

d’essai de la poudre et pesé l’ensemble (M). 

Nous avons ensuite humecté la poudre avec une quantité suffisante d’acide sulfurique 

dilué au ½ et trituré avec une baguette. 

Le creuset a été laissé à l’étuve jusqu’à évaporation à sec puis au four à la température de 

600 °C pendant 6 heures. Nous avons pesé le creuset après refroidissement (M’). La masse 

des cendres sulfuriques (MCs) s’obtient comme suit :

MCs = M’ – T 

La masse de la prise d’essai est : PE = M – T 

Le pourcentage des cendres sulfuriques (% Cs) est donné par la formule : 

% Cs = 100 × 

MCs 

PE 

‣ Cendres insolubles dans l’acide chlorhydrique à 10 % 

C’est une évaluation du contenu en constituants siliceux de la matière végétale. Les 

cendres sont obtenues à partir de l’action de l’acide chlorhydrique dilué à 10 % sur les 

cendres totales. 

Nous avons introduit les cendres totales dans un erlenmeyer et ajouté 20 ml d’acide 

chlorhydrique à 10 %. L’ensemble a été porté à ébullition pendant 15 mn au bain-marie. 

Après refroidissement, nous avons recueilli, lavé la matière non soluble sur un papier filtre 

sans cendre, puis transféré le filtre dans un creuset sec préalablement taré (T). 

Le creuset contenant le papier filtre a ensuite été séché à l’étuve pendant 24 heures et 

calciné pendant 6 heures au four à la température de 600 °C. Après refroidissement dans un 

dessiccateur, nous avons pesé le creuset contenant les cendres (M’). 

La masse des cendres chlorhydriques (MCc) est donnée par la formule : 

MCc = M’ – T 

La masse de la prise d’essai est donnée par la formule : 

PE = M’ – T 

Le pourcentage des cendres chlorhydriques (% Cc) s’obtient de la manière suivante : 

% Cc = 100 × 

MCc 

PE

1.2.2.5 Alcaloïdes 

Nous avons mélangé et laissé sous agitation magnétique de la poudre végétale (3 g), de 

l’acide sulfurique à 10 % (25 ml) et de l’eau distillée (5 ml). Le filtrat a été complété à 50 ml 

avec de l’eau distillée. Nous avons ajouté de l’ammoniaque diluée au ½ jusqu’à ce que le pH 

soit compris entre 8 et 9. Une extraction a été faite avec 50 ml de chloroforme. Nous avons 

recueilli le filtrat dans un erlenmeyer puis l’avons séché sur sulfate de sodium anhydre. Ce 

filtrat a été évaporé au bain-marie dans une capsule préalablement pesée. La capsule a encore 

été pesée avec le résidu. 

Masse alcaloïdes = 

poids avant étuve – poids après étuve 

Masse alcaloïdes 

% alcaloïdes = × 100 

Prise d’essai

1.2.3 Extractions 

Matériel et solvants 

- Erlenmeyer, ballons 

- Agitateur et baguettes magnétiques 

- Eprouvette graduée, coton, entonnoir 

- Balance analytique de précision de type Sartorius 

- Rotavapor de type Buchi R-200 

- Lyophilisateur type Heto 

- Soxhlet, réfrigérant, cartouche 

- Ethanol 60% 

- Acétate d’éthyle 

- Dichlorométhane 

- Ether de pétrole 

- Congélateur de marque Zanker 

1.2.3.1 Macération à l’éthanol 60 % 

Nous avons repris 500 g de poudre de Mitracarpus scaber avec 5000 ml d’éthanol 60 % 

dans un erlenmeyer. Nous avons laissé le mélange sous agitation pendant 24 h à la 

température ambiante du laboratoire. Nous avons répété cette opération successivement 3 fois 

à des intervalles de 24 h en renouvellant à chaque fois le solvant dans les proportions 

indiquées. Les macérés ont été filtrés sur des compresses, concentrés au Rotavapor à sec sous 

vide à 55 °C, lyophilisés et conservés dans des flacons stériles hermétiquement fermés. 

Poudre des parties 

aériennes de M.s 

500 g 

Ethanol 60 % (5000 ml) 

Marc 

Macéré 

éthanolique 

Figure n˚10: Schéma de l’extraction éthanolique de la poudre des parties aériennes de 

Mitracarpus scaber (M.s).

1.2.3.2 Extraction à l’acétate d’éthyle 

Nous avons repris 100 g de poudre de Psorospermum guineense avec 500 ml d’acétate 

d’éthyle et les avons laissé sous agitation magnétique pendant 30 mn. Le filtrat a été 

concentré au Rotavapor et laissé évaporer à sec à l’air libre. 

Poudre de feuilles de P.g 

50 g 

Acétate d’éthyle (500 ml) 

Marc 

Extrait acétate 

d’éthyle 

Figure n˚11 : Schéma de l’extraction à l’acétate d’éthyle de la poudre de feuilles de 

Psorospermum guineense (P.g). 

1.2.3.3 Extractions au soxhlet 

Le soxhlet est un appareil qui permet l’épuisement en continu d’une quantité de drogue 

avec une quantité donnée de solvant. La procédure expérimentale est la suivante : 

On place dans une cartouche la drogue qui est épuisée avec le solvant. Le solvant est introduit 

dans le ballon auquel le soxhlet s’adapte exactement. Un réfrigérant qui s’adapte au soxhlet 

permet de condenser les vapeurs du solvant qui montent du ballon qui est chauffé ; le 

condensat tombe dans la cartouche et extrait ainsi la drogue. Quand le soxhlet se remplit 

jusqu’au niveau de la partie supérieure du siphon, le solvant riche en produits se déverse dans 

le ballon : c’est le siphonage et le mécanisme reprend. Seules les vapeurs pures du solvant 

arrivent au niveau du réfrigérant. 

Après épuisement de la drogue, l’extrait obtenu est concentré et conservé. 

‣ Extraction à l’éther de pétrole 

Nous avons mis dans une cartouche 600 g de poudre de Cassia nigricans et la cartouche a 

été placée dans un soxhlet. Nous avons ensuite versé 3000 ml d’éther de pétrole sur la 

cartouche. L’extraction a été faite de manière continue jusqu’à ce que l’extrait devienne clair.

L’extrait a été concentré au Rotavapor puis laissé à sécher à l’air libre. 

Poudre des 

rameaux feuillés de C. n 

600 g 

Ether de pétrole (3000 ml) 

Marc 

Extrait 

éther de pétrole 

Figure n˚12 : Schéma de l’extraction à l’éther de pétrole de la poudre de parties aériennes de 

Cassia nigricans (C.n). 

‣ Extraction au dichlorométhane de Fagara zanthoxyloïdes 

Nous avons extrait au soxhlet 600 g de poudre de Fagara zanthoxyloides avec 3000 ml de 

dichlorométhane. L’extrait a été concentré au Rotavapor et laissé sécher à l’air libre. 

Poudre des écorces de 

racines de F. z 

600 g 

Dichlorométhane (3000 ml) 

Marc 

Extrait 

dichlorométhane 

Figure n˚13 : Schéma de l’extraction au dichlorométhane de la poudre d’écorces de 

racines de Fagara zanthoxyloides (F.z). 

‣ Extraction au dichlorométhane de Swartzia madagascariensis 

Nous avons extrait au soxhlet de manière continue 10 g de Swartzia madagascariensis par 

100 ml de dichlorométhane jusqu’à ce que l’extrait devienne clair. 

L’extrait a été concentré au Rotavapor et séché à l’air libre.

Poudre des écorces de 

racines de S. m 

10 g 

Dichlorométhane (100 ml) 

Marc 

Extrait 

dichlorométhane 

Figure n˚14: Schéma de l’extraction au dichlorométhane de la poudre d’écorces de 

racines de Swartzia madagascariensis (S.m). 

Les différents extraits obtenus et pesés nous ont permis de calculer le rendement de chaque 

extraction. 

Me 

R = × 100 

PE 

R : rendement 

Me : masse de l’extrait 

PE : prise d’essai

1.2.4 La chromatographie sur couche mince (CCM) 

1.2.4.1 Définition et appareillage 

La chromatographie sur couche mince repose principalement sur des phénomènes 

d’adsorption : la phase mobile est un solvant ou un mélange de solvants, qui progresse le long 

d’une phase stationnaire fixée sur une plaque de verre, de métal ou un autre support. 

Après le dépôt de l’échantillon sur la phase stationnaire, les substances migrent à une vitesse 

qui dépend de leur nature et de celle du solvant. 

Les principaux éléments d’une séparation chromatographique sur couche mince sont : 

-la cuve chromatographique : un récipient habituellement en verre, de forme variable, fermé 

par un couvercle étanche. 

-la phase stationnaire : une couche de gel de silice ou d’un autre adsorbant est fixée sur une 

plaque à l’aide d’un liant. 

-l’échantillon : une solution du mélange à analyser, déposé en un point repère situé au-dessus 

de la surface de l’éluant. 

-l’éluant : un solvant pur ou un mélange : il migre lentement le long de la plaque en 

entraînant les composants de l’échantillon. 

1.2.4.2 Principe 

Lorsque la plaque sur laquelle l’échantillon a été déposé est placée dans la cuve, l’éluant 

monte à travers la phase stationnaire, essentiellement par capillarité. En outre, chaque 

composant de l’échantillon se déplace à sa propre vitesse derrière le front du solvant. Cette 

vitesse dépend d’une part, des forces électrostatiques retenant le composant sur la plaque 

stationnaire et, d’autre part, de sa solubilité dans la phase mobile. Les composés se déplacent 

donc alternativement de la phase stationnaire à la phase mobile, l’action de rétention de la 

phase stationnaire étant principalement contrôlée par des phénomènes d’adsorption. 

Généralement, en chromatographie sur couche mince, les substances de faible polarité 

migrent plus rapidement que les composants polaires.

1.2.4.3 Mode opératoire 

‣ Matériel 

- Spatule - balance analytique de type Sartorius 

- pince - micropipettes 

- crayon - cuves de développement avec couvercles 

- règle - lampe UV 

- cutter - plaque de silice G 60 F 254 avec indicateur de fluorescence 

- sèche-cheveux 

‣ Solutions à analyser 

Nous avons dissous 10 mg des extraits dans 1ml de solvant approprié. 

-l’extrait éthanolique dans le mélange méthanol-eau (1-1) 

-l’extrait éther de pétrole dans de l’éther de pétrole 

-l’extrait acétate d’éthyle dans de l’acétate d’éthyle 

-les extraits dichlorométhane dans du dichlorométhane 

‣ Dépôt 

Les dépôts ont été faits sur les plaques de CCM avec une micro-pipette. 

Nous avons déposé 10 µl de la solution de chaque extrait sur les plaques que nous avons 

séchées avant de les introduire dans les cuves de migration. 

‣ Migration 

La migration s’est faite dans les systèmes de solvants suivants : 

-Butanol : Acide acétique : Eau (60 : 15 : 25) pour l’extrait éthanolique 

-Ether de pétrole : Acétate d’éthyle (8 : 1) pour l’extrait éther de pétrole 

-Ether de pétrole : Acétate d’éthyle (5 : 2) pour l’extrait acétate d’éthyle 

-Ether de pétrole : Acétate d’éthyle (1 : 1) pour les extraits au dichlorométhane 

Après migration, nous avons séché les plaques et procédé à l’observation à la lampe 

ultraviolette aux longueurs d’ondes 254 et 366 nm. 

A 254 nm les taches ont été entourées en traits pleins et à 366 nm elles ont été entourées en 

pointillés. 

Nous avons ensuite calculé les facteurs de rétention de chacune des taches observées.

Rf = 

dx 

ds 

dx : distance parcourue par le composé (mesuré au centre de la tache) 

ds : distance parcourue par le front du solvant 

‣ Révélation 

Nous avons révélé les plaques avec le réactif de Godin et celui de Dragendorff qui est 

spécifique des alcaloïdes. 

Les spots qui ont réagi après la révélation ont été marqués entre crochets

1.3 Détermination des activités biologiques 

Le test antioxydant a été réalisé au DMT. Les tests antifongiques et antibactériens se sont 

déroulés au Département de Diagnostic et Recherche Biomédicale (D.D.R.B) de l’INRSP. 

1.3.1 Détermination de l’activité antioxydante 

Cette activité a été déterminée par le principe de la réduction du radical DPPH (1-1 

Diphényl -2- pycril hydrazile) sur plaque CCM. 

Tous les extraits ont été soumis à ce test. Les solutions d’extraits préalablement préparées 

pour la CCM ont été utilisées. 

Des dépôts de 10 μl de chaque solution d’extrait ont été réalisés sur des plaques de 

Silicagel. 

Les systèmes de solvants Ether de pétrole : Acétate d’éthyle (8 : 1), (5 : 2), (1 : 1) et BAW 

(60 : 15 : 25) ont été respectivement employés pour la migration des extraits apolaires et 

polaires. 

Après la migration des substances, les chromatogrammes ont été révélés avec une solution 

méthanolique à 2 mg/ml de 1-1 Diphényl-2- pycril hydrazile. 

Les zones d’activités ont été déterminées par l’apparition d’une coloration jaune sur fond 

violet. 

1.3.2 Détermination de l’activité antibactérienne 

La méthode de diffusion en agar a été utilisée pour ce test. 

‣ Souches cliniques 

Elles ont été obtenues à partir des prélèvements pathologiques du laboratoire de 

bactériologie de l’INRSP. Il s’agit de : 

Staphylococcus aureus 

Escherichia coli 

Proteus mirabilis 

Streptococcus β hémolytique 

Klebsiella pneumoniae 

La souche ATCC 25922 d’Escherichia coli a été utilisée comme souche de référence. Elle 

nous a été fournie par le laboratoire de bactériologie de l’hôpital Gabriel TOURE.

Les souches de Staphylococcus aureus et de Streptococcus β hémolytique 

ont été choisies pour ce test car elles sont responsables de la majorité des dermatoses 

bactériennes. 

‣ Matériels techniques 

- Etuve réglée à 37 °C - Eau physiologique 

- Réfrigérateur - Microscope 

- Milieux de cultures - Micro pipettes 

- Boîtes de Pétri - Gaz butane 

- Pipettes Pasteur stériles - Eau distillée 

- Disques non imprégnés de 6 mm de diamètre 

- Flacons stériles 

- Balance de précision 

- Spatule, embouts. 

‣ Extraits à tester 

Les extraits devant subir ce test ont été utilisés à des concentrations progressives de 500, 

1000 et 1500 µg. Les extraits suivants ont été utilisés pour le test antibactérien : 

-Macéré éthanolique de Mitracarpus scaber 

-Extrait éther de pétrole de Cassia nigricans 

-Extrait dichlorométhanique de Fagara zanthoxyloides 

-Extrait acétate d’éthyle de Psorospermum guineense 

-Extrait dichlorométhanique de Swartzia madagascariensis

‣ Antibiotiques témoins 

Tableau n˚XI : Antibiotiques témoins testés par germe 

Germes testés Antibiotiques témoins Concentrations des antibiotiques 

Escherichia coli 

Amikacine 

Ciprofloxacine 


Tétracycline 

30 UI 

5 UI 

30 UI 

30 UI 

Staphylococcus 

aureus 

Kanamycine 


Oxacilline 

Pristinamycine 

Erythromycine 

30 UI 

30 UI 

15 µg 

15 UI 

Klebsiella 

pneumoniae 

Gentamycine 

Amoxicilline 

Ciprofloxacine 


Colistine 

Amikacine 

10 UI 

25 UI 

15 UI 

30 UI 

50 UI 

30 UI 

Proteus mirabilis 

Doxycycline 

Nitroxoline 

Acide nalidixique 

Péfloxacine 

Amoxicilline + acide 

clavulanique 

Ceftriaxone 

30 µg 

20 µg 

30 µg 

5 µg 

20+10 µg 

30 µg 

UI: Unité internationale

Tableau n˚XI (suite): Antibiotiques témoins testés par germe 

Germes testés Antibiotiques témoins Concentrations des 

antibiotiques 

Escherichia coli (souche de 

référence) 

Doxycycline 

Nitroxoline 

Acide nalidixique 

Péfloxacine 


clavulanique 

Ceftriaxone 

30 µg 

20 µg 

30 µg 

5 µg 

20+10 µg 

30 µg 

Streptococcus β hémolytique 

Streptomycine 

Pénicilline G 

Ampicilline 

Erythromycine 

Kanamycine 

Pristinamycine 

Lincomycine 

10 UI 

6 µg 

10 µg 

15 UI 

30 UI 

15 µg 

15 µg 

UI: Unité internationale 

‣ Mode opératoire 

Nous avons étalé le frottis sur lame, l’avons coloré au Gram puis l’avons observé au 

microscope. Nous avons ensuite procédé à une mise en culture suivie de l’identification. 

• Isolement des colonies 

Les germes ont été isolés à partir de prélèvements d’urine provenant de sujets présentant 

des signes d’infections urinaires et des prélèvements vaginaux. 

Après identification, les germes ont été conservés dans des tubes de gélose nutritive 

étiquetés à la température ambiante du laboratoire. 

Les milieux de culture utilisés ont été la gélose de Drigalski pour les bacilles à Gram 

négatif et la gélose de Chapman pour les Staphylocoques. 

L’identification a été faite à l’aide de la galerie API 20 E, de la catalase et du milieu de 

Chapman.

L’API 20 E (Appareils et Procédés d’identification) est un système standardisé pour 

l’identification des Entérobactéries et autres bacilles à Gram négatif non fastidieux, 

comprenant 21 tests biochimiques miniaturisés, ainsi qu’une base de données. 

Son principe est le suivant : la galerie API 20 E comporte 20 microtubes contenant des 

substrats déshydratés. Les microtubes sont inoculés avec une suspension bactérienne qui 

constitue les tests. L’utilisation de substrat par la bactérie se traduit par un changement de 

couleur du milieu ou par apparition de couleur après addition de réactif. La lecture de ces 

réactions se fait à l’aide de tableau de lecture et l’identification est obtenue à l’aide du 

catalogue analytique ou d’un logiciel d’identification. 

Pour l’identification de Staphylocoque doré, nous avons réalisé dans un premier temps la 

coloration de Gram permettant d’apprécier la morphologie et l’ensemencement sur gélose de 

Chapman, milieu de culture spécifique pour le germe. Quand au Streptocoque β hémolytique, 

nous avons réalisé la coloration de Gram pour voir les cocci à Gram positif. Nous avons 

ensemencé ensuite sur la gélose au sang sous CO 2 pendant 24 heures. Nous avons réalisé 

enfin le test à la catalase. 

Les souches identifiées ont été conservées dans des tubes à essai contenant la gélose 

nutritive et laissée à la température du laboratoire. 

‣ Préparation des milieux de cultures utilisés pour le test 

• Milieu EMB 

Nous avons mis en suspension de la poudre du milieu EMB (34,5 g) dans de l’eau distillée 

(1l). Nous avons ensuite porté le mélange à ébullition en agitant jusqu’à la dissolution 

complète de la poudre. La solution a été ensuite stérilisée à l’autoclave à 121°C pendant 15 

min. 

• Gélose de Drigalski 

Nous avons mis en suspension de la poudre du milieu de Drigalski (4 g) dans de l’eau 

distillée (1l). Nous avons ensuite porté le mélange à ébullition en agitant jusqu’à dissolution 

complète de la poudre. La solution a ensuite été stérilisée à l’autoclave à 121°C pendant 15 

min. 

• Gélose de Chapman 

Nous avons mis en suspension de la poudre du milieu Chapman (111g) dans de l’eau 

distillée (1l). Nous avons ensuite porté le mélange à ébullition sous agitation jusqu’à

dissolution complète de la poudre. La solution a ensuite été stérilisée à l’autoclave à 121°C 

pendant 15 min. 

• Gélose de Mueller Hinton 

Nous avons mis en suspension de la poudre du gélose de Mueller Hinton (38 g) dans de 

l’eau distillée (1l). Nous avons ensuite porté le mélange à ébullition en agitant jusqu’à la 

dissolution complète de la poudre. La solution a ensuite été stérilisée à l’autoclave à 121°C 

pendant 15 min. 

• Gélose au sang 

Nous avons mis en suspension de la poudre du milieu Soja (40 g) dans de l’eau distillée 

(1l). Nous avons ensuite porté le mélange à ébullition en agitant jusqu’à dissolution complète 

de la poudre. La solution a ensuite été stérilisée à l’autoclave à 121°C pendant 15 min. Après 

refroidissement nous avons ajouté à la solution 50 ml de sang frais de mouton. 

‣ Le processus pour le test 

Jour 1 

• Réisolement des colonies 

Les souches conservées sur la gélose nutritive ont été repiquées sur les milieux de culture 

spécifiques. Ainsi Escherichia coli a été repiqué sur le milieu Drigalski, Staphylococcus 

aureus sur Chapman, Klebsiella pneumoniae sur EMB (Eosine Bleu de Méthylène) et 

Streptococcus β hémolytique sur la gélose au sang. 

La méthode par stries a été utilisée pour le repiquage à côté de la flamme. Les milieux de 

culture ont été incubés à l’étuve à 37 ° C pendant 24 h 

Jour 2 

• Préparation des solutions 

Le macéré éthanolique a été dissous dans l’eau distillée, tandis que les extraits 

dichlorométhane, acétate d’éthyle et éther de pétrole ont été dissous dans le

diméthylsulfoxyde (DMSO). 100 mg de l’extrait ont été dissous dans 1 ml du solvant indiqué 

(100 μg/μl). 

• Imprégnation des disques 

Les disques blancs de 6 mm de diamètre ont été imprégnés de 5 ; 10 et 15 μl de la solution 

d’essai préparée. Les disques ont été placés dans des boîtes de Pétri où ils ont été séchés. Les 

dosages correspondaient à 0,5 et 1 et 1,5 mg de l’extrait par disque. 

• Préparation de la suspension bactérienne : 

Les suspensions bactériennes ont été préparées par rapport à une solution de référence 

(Mac Farland 0,5). 

• Mise en test 

La suspension bactérienne préparée a été coulée sur la gélose de Müeller Hinton pour les 

bacilles et le Staphylocoque. Après l’inondation de toute la surface du milieu par la 

suspension bactérienne, le surnageant a été jeté par aspiration avec une pipette Pasteur. 

Chacune des boîtes a reçu 5 disques déposés sur un numéro d’identification apposé à la face 

inférieure de la boîte. Les milieux ont été incubés à l’étuve pendant 18 heures environ. Les 

milieux de réisolement ont été conservés au congélateur. 

Jour 3 

Nous avons procédé à la mesure du diamètre des zones d’inhibition, dans le cas de 

sensibilité autour des disques de 6 mm (Bauer et coll., 1966).

1.3.3 Détermination de l’activité antifongique 

La méthode bioautographique 

‣ Matériel d’étude 

• Matériel végétal testé 

Il s’agit des extraits des poudres des parties aériennes de Cassia nigricans, des écorces de 

racines Zanthoxylum zanthoxyloides, des feuilles de Psorospermum guineense, des parties 

aériennes de Mitracarpus scaber et des écorces de racines Swartzia madagascariensis 

• Solution de référence 

La Nystatine dissoute dans du chloroforme à la concentration de 1 mg /5 ml. 

‣ Champignon 

Une souche de C. albicans provenant de prélèvements vaginaux. 

‣ Milieux de culture 

Nous avons utilisé les milieux suivants : 

-Sabouraud gélose + chloramphénicol + actidione 

-Sabouraud gélose liquide (SDA : Sabouraud Dextrose Agar) 

-Malt agar 

• Préparation du milieu de Sabouraud gélose 

Nous avons dissous de la poudre de la gélose de Sabouraud (15 g) dans de l’eau distillée 

(1l). Nous avons attendu 5 mn puis bien agité afin d’obtenir une suspension homogène. Nous 

avons chauffé en agitant jusqu'à dissolution complète. Le milieu ainsi préparé a été stérilisé à 

l’autoclave à la température de 121°C pendant 15 mn. 

• Préparation du milieu de Sabouraud gélose + Chloramphénicol + Actidione 

Nous avons utilisé la même méthode que précédemment en ajoutant le chloramphénicol et 

l’actidione qui ont permis l’isolement de C. albicans en éliminant les germes saprophytes.

• Préparation du milieu Malt Agar 

Nous avons ajouté de la poudre du milieu Malt Agar (48 g) à de l’eau déminéralisée (1l) 

par chauffage dans un bain-marie bouillant ; passé avec précaution à l’autoclave pendant 10 

mn à la température de 121° C sans surchauffer. 

‣ Identification de Candida albicans 

Les travaux ont porté uniquement sur les prélèvements vaginaux. L’identification de C. 

albicans a été faite soit par examen microscopique, par culture, suivi de l’examen à l’état 

frais et du test de filamentation. 

• Examen microscopique : 

Nous avons fait des observations du prélèvement entre lame et lamelle. Les caractères 

microscopiques considérés ont eu trait à l’aspect des cellules. Candida albicans présente un 

aspect de cellules lévuriformes, rondes, ovalaires ou parfois bourgeonnantes. 

• Culture 

La culture a été réalisée sur le milieu Sabouraud gélose + chloramphénicol + actidione 

coulé dans la boîte de Pétri. La culture a été effectuée par passage de l’écouvillon de 

prélèvement sur le milieu de culture incorporé dans la boîte de Pétri et incubé à 37 ° C 

pendant 48 heures. 

Les caractères d’identification ont été constitués par l’aspect des colonies blanches, 

crémeuses de Candida albicans à odeur caractéristique. 

• Test de filamentation 

C’est un test préalable aux tests biologiques qui atteste de l’authenticité de la souche de 

Candida albicans. 

Ce test met en évidence la production de tubes germinatifs caractéristiques de Candida 

albicans. La souche a été ensemencée dans un tube contenant du sérum humain. L’inoculum 

doit être suffisant pour donner un très léger trouble dans le milieu (0,5 ml de sérum pour une 

colonie). L’observation des tubes germinatifs a été faite au microscope à l’objectif 40 après 3 

heures d’incubation à 37 ° C.

‣ Conservation des souches 

Elle a été faite sur milieu Sabouraud + chloramphénicol + actidione coulé en tube incliné. 

Nous avons pris une jeune colonie de 24 heures et l’avons ensemencée sur la gélose en 

tube. Nous avons incubé pendant 24 heures à 37 ° C puis gardé le tube en aérobiose (les tubes 

ne doivent pas être hermétiquement fermés). 

NB : Les souches de C. albicans doivent être repiquées tous les deux mois. 

‣ Solutions à tester et témoin 

• Solution à tester 

Les extraits des plantes devant subir le test biologique ont été utilisés à des concentrations 

progressives de 10, 30 et 60 mg/ml. L’extrait éthanolique a été dissous dans le mélange 

méthanol-eau, les extraits organiques dans les solvants appropriés. 

• Témoin pour le test 

Le test antifongique sur C.albicans recommande la nystatine comme témoin en solution 

chloroformique à la concentration de 1 mg/5 ml. 


• Préparation des plaques CCM 

Nous avons chromatographié les solutions correspondant aux concentrations de 10 ; 30 et 

60 mg /ml (M/V) des extraits et le témoin qui était constitué d’une solution de nystatine en 

solution chloroformique à la concentration de 1 mg / 5 ml (M/V). Les plaques ont été mises 

dans les systèmes de solvants suivants : 

-Butanol-Acide acétique-Eau (60 :15 :25) : pour l’extrait éthanolique de Mitracarpus scaber 

-Ether de pétrole-Acétate d’éthyle (1 :1) : pour les extraits dichlorométhaniques de Swartzia 

madagascariensis et de Fagara zanthoxyloides 

-Ether de pétrole-Acétate d’éthyle (8 :1) : pour l’extrait éther de pétrole de Cassia nigricans 

-Ether de pétrole- Acétate d’éthyle (5 :2) : pour l’extrait acétate d’éthyle de Psorospermum 

guineense. 

Chaque plaque en verre a été visualisée à l’UV 254 nm, puis à 366 nm. Les plaques ont 

été ensuite séchées à la température ambiante du laboratoire du DMT avant le test, afin 

d’éliminer toute trace de solvant.

Quant aux plaques témoins, elles ont été révélées avec le réactif de Godin pour permettre 

l’identification des substances après le test biologique. 

• Technique 

Jour 1 

1 : Une culture de C.albicans a été repiquée sur le milieu de culture Sabouraud gélosé + 

chloramphénicol + actidione en boîte de Pétri. 

2 : Nous avons laissé incuber à 30 ° C pendant 24 heures. 

Jour 2 

3 : Deux erlenmeyers contenant 50 ml de milieu de culture Sabouraud liquide ont été préparés 

et stérilisés à l’autoclave pendant 15 mn à 121° C. 

4 : Nous avons ajouté à froid à l’aide d’une pointe de spatule une colonie issue de l’étape 2 

dans l’un des milieux préparés à l’étape 3. 

Jour 3 

5 : En début de matinée, nous avons pris 0,5 ml du milieu précédent (trouble) et l’avons ajouté 

au milieu préparé à l’étape 3. 

6 : Nous avons laissé reposer pendant environ 7 heures sous agitation. Ce temps est nécessaire 

pour atteindre la phase de croissance exponentielle de C. albicans. 

7 : Pendant ce temps les milieux de culture à base de Malt Agar qui seront la base de 

l’inoculum versé sur les plaques CCM ont été préparés et répartis en erlenmeyers de 50 ml. 

La quantité du milieu de culture est fonction de la dimension de la plaque ; pour une plaque 

de 10 X 10 cm, la quantité de Malt Agar a été de 10 ml. 

8 : Le Malt Agar fondu a été maintenu au bain-marie à 48 ° C car au-dessus de cette 

température, les levures ne survivent pas et en dessous de 43 ° C, le milieu se solidifie. 

9 : Nous avons ajouté 0,5 ml de cette solution obtenue à l’étape 6 à chaque fraction de 50 ml 

de Agar fondu, afin d’obtenir un inoculum contenant 10 cellules/ml. 

10 : Nous avons laissé à nouveau se reposer à 48 ° C. 

11 : L’inoculum a été versé sur les plaques à l’aide de pipettes stériles à raison de 10 ml par 

plaque de 10X10 cm. 

12 : Nous avons laissé incuber à 30 ° C pendant une nuit en atmosphère humide en utilisant 

des boîtes en plastique contenant un papier buvard trempé.

13 : les plaques ont été révélées à l’aide d’une solution aqueuse de bleu de tétrazolium 

(méthylthiozolyl tétrazolium 2,5 mg/ml). Les zones d’inhibition de croissance apparaissent 

sous forme de taches incolores sur fond violet, après une nouvelle incubation de 4 heures. 

Tous les extraits des plantes ont été soumis à la même technique et au même test. 

14 : De l’éthanol a été giclé sur les plaques afin de tuer les microorganismes. 

15 : Les plaques ont été ensuite recouvertes de feuilles de plastiques transparentes afin de les 

conserver ; (chauffer alors préalablement l’Agar avec précaution) (Rahalison et coll., 1991).

1.4 Les pommades 

1.4.1 Préparation et contrôle de qualité des pommades 

Matériel 

- Pilon et mortier en porcelaine - Cuves 

- Papier pH - Lampe UV 

- Eau distillée - Beurre de Karité 

- Balance - Vaseline blanche officinale 

- Spatule - Micropipettes 

- Plaques de silice G 60 F 254 

1.4.1.1 Préparation 

Nous avons préparé les pommades avec tous les extraits (éthanolique, éther de pétrole, 

acétate d’éthyle, dichlorométhane) et deux types d’excipients (beurre de karité et vaseline). 


Les pommades ont été préparées de la manière suivante : nous avons trituré avec un pilon, 

dans un mortier en porcelaine 1g de l’extrait et 99 g de l’excipient. Nous avons ajouté 

l’excipient en petite quantité jusqu’à l’obtention d’un mélange homogène. Une spatule nous a 

permis de détacher la pommade du pilon et de mettre la pommade dans les pots.

Tableau n˚XII : Formules des différentes pommades préparées 

Extraits 

Formules des pommades 

Extrait éthanolique de Mitracarpus 

scaber 

PBK 

PVA 

Extrait éther de pétrole de Cassia 

nigricans 

PBK 

PVA 

Extrait acétate d’éthyle de Psorospermum 

guineense 

PBK 

PVA 

Extrait dichlorométhane de Swartzia 

madagascariensis 

PBK 

PVA 

Extrait dichlorométhane de Fagara 

zanthoxyloïdes 

PBK 

PVA 

PBK : Pommade avec beurre de Karité 

PVA : Pommade avec vaseline 

1.4.1.2 Contrôle de qualité 

Il a consisté : 

- en l’observation des caractères macroscopiques (couleur, consistance, odeur) 

- à la mesure du pH 

- à l’établissement du profil chromatographique de chaque pommade

‣ Les caractères macroscopiques 

Nous avons noté la couleur, la consistance et l’odeur de chaque pommade par l’observation 

à l’œil nu. 

‣ L’homogénéité 

Nous avons vérifié l’homogénéité des pommades en les étalant en couche mince sur une 

surface plane à l’aide d’une spatule. 

Nous avons noté la répartition régulière ou non des extraits dans les excipients. 

‣ Le pH 

Le pH a été déterminé en mesurant celui d’une dilution au dixième de chaque pommade 

dans de l’eau distillée. 

Nous avons utilisé un papier pH (Universalindikator Merck) pour sa détermination. 

Il doit être proche de celui de la peau (4,2-5,8). 

‣ Chromatographie sur couche mince 

Nous avons trituré 1 g de chaque pommade dans 10 ml de dichlorométhane puis nous 

avons laissé évaporer à sec. Le résidu a été repris avec quelques gouttes d’acétate d’éthyle. 

La suspension ainsi obtenue a été utilisée pour la CCM. 

Le mode opératoire et les conditions ont été ceux utilisés pour la CCM des extraits. 

Après la migration les plaques ont été révélées avec le réactif de Godin. 

1.4.2 Détermination de l’activité antifongique des pommades 

Le test antifongique a été réalisé sur une souche clinique de Candida albicans. 

Nous avons réalisé le test antifongique des pommades de la même manière que pour les 

extraits. Les différentes pommades ont été testées aux concentrations de 1 %, 5 % et 10 %.

2. RESULTATS 

2.1 Etudes phytochimiques 

2.1.1 Réactions de caractérisation 

Tableau n˚XIII : Résultats des réactions de caractérisations sur les plantes 

Groupes chimiques PAMs PACn ERFz ERSm FPg 

Coumarines +++ +++ +++ +++ - 

Caroténoides - ++ - +++ - 

Anthracénosides libres - ++++ - ++ +++ 

Anthracénosides combinés C-hétérosides - ++++ - - - 

Anthracénosides combinés O-hétérosides - ++ - - ++ 

Flavonoïdes ++ ++ - - ++ 

Alcaloïdes - - +++ - - 

Saponosides - +++ - ++++ - 

Tanins : réaction avec FeCl 3 ++ ++ - - +++ 

Tanins : réaction avec HCl ++ ++ - - +++ 

Tanins catéchiques ++ ++ - - +++ 

Tanins galliques ++ - - - +++ 

Oses et holosides +++ +++ +++ - +++ 

Polyuronides (mucilages) - +++ - - - 

Stérols et triterpènes - +++ ++++ +++ +++ 

Hétérosides cardiotoniques (Baljet) ++ +++ ++ ++++ - 

Hétérosides cardiotoniques (Kedde) - ++ ++ ++++ - 

Hétérosides cardiotoniques (Raymond-Marthoud) ++ +++ +++ ++++ - 

Leucoanthocyanes ++++ ++ ++ - +++ 

PAMs : parties aériennes de Mitracarpus scaber 

PACn : parties aériennes de Cassia nigricans 

ERFz : écorces de racines de Fagara zanthoxyloïdes 

ERSm : écorces de racines de Swartzia madagascariensis 

FPg : feuille de Psorospermum guineense

Aucune de nos plantes ne contient d’anthocyanes. Seules les écorces de racines de Fagara 

zanthoxyloïdes contiennent des alcaloïdes. La mousse est abondante dans les écorces de 

racines de Swartzia madagascariensis ce qui traduit la présence de saponosides dans la plante. 

Les stérols et triterpènes sont présents dans toutes les plantes excepté dans les parties 

aériennes de Mitracarpus scaber. Les hétérosides cardiotoniques sont présents dans toutes les 

drogues excepté dans les feuilles de Psorospermum guineense. 

2.1.2 Dosages 

Tableau n˚XIV : Résultats des substances dosées dans les différentes plantes étudiées 

Nature du dosage PAMs PACn ERFz ERSm FPg 

Cendres totales (%) 11,95 14,66 7,74 11,92 4,85 

Cendres sulfuriques (%) 14,74 16,05 10,99 4,61 6,54 

Cendres chlorhydriques (%) 3,49 7,15 0,38 7,08 0,73 

Méthode azéotropique (%) 4 4 6 6 

Eau 

Méthode gravimétrique (%) 4,64 5,23 6,91 4,68 6,45 

Substances extractibles par l’eau (%) 12 9 10 9 28 

Substances extractibles par l’éthanol à 70° (%) 24 15 25 34 24 

Indice de mousse - 200 - >1000 - 

PAMs : parties aériennes de Mitracarpus scaber 

PACn : parties aériennes de Cassia nigricans 

ERFz : écorces de racines de Fagara zanthoxyloïdes 

ERSm : écorces de racines de Swartzia madagascariensis 

FPg : feuilles de Psorospermum guineense 

Le tableau XIV donne les valeurs des différents dosages effectués sur les poudres des 

différentes plantes.

La teneur en eau a été déterminée par les méthodes gravimétrique et azéotropique. Celle-ci 

étant inférieure à 10 % dans toutes les plantes, nous pouvons présager d’une bonne 

conservation des drogues. 

Le taux élevé des cendres chlorhydriques de Cassia nigricans et de Swartzia 

madagascariensis pourrait faire penser à une éventuelle souillure des drogues par des 

constituants siliceux. 

2.1.3 Extractions 

Les rendements, l’aspect et la couleur des extraits de chaque plante sont reportés dans le 

tableau XV 

Tableau n˚XV : Rendement de chaque extraction 

Plante Extraits Rendement (%) Aspect /Couleur 

Mitracarpus scaber Ethanolique 24,16 Paillette / Vert 

Cassia nigricans Ether de pétrole 1,40 Pâteux/Vert 

Psorospermum guineense Acétate d’éthyle 15,02 Poudreux /Vert 

Swartzia madagascariensis Dichlorométhane 50 Cristallisé/Marron 

Fagara zanthoxyloïdes Dichlorométhane 3,02 Gélatineux/Marron 

Un rendement de 50 % a été obtenu avec l’extraction au dichlorométhane de Swartzia 

madagascariensis tandis qu’un rendement de 1,40 % a été obtenu avec l’extraction à l’éther 

de pétrole de Cassia nigricans.

2.1.4 Chromatographie sur couche mince 

Tableau n˚XVI : Résultats de la CCM de l’extrait éthanolique de Mitracarpus scaber dans le 

BAW (60-15-25) 

Rf 254 nm 366 nm Godin 

0,14 Visible Violet - 

0,19 Visible Marron - 

0,4 Visible Violet Jaune 

0,46 Visible Rouge Gris 

0,58 Visible - - 

0,7 Visible - Vert 

0,78 Visible - Rose 

Tous les composants présents dans l’extrait éthanolique de Mitracarpus scaber sont visibles à 

254 nm. Les colorations jaune et verte après révélation avec le réactif de Godin, nous oriente 

vers la présence de flavonoïdes et de stérols.

Tableau n˚XVII: Résultats de la CCM de l’extrait éther de pétrole de Cassia nigricans dans 

le système de solvants Ether de pétrole- Acétate d’éthyle (8-1) 


0,03 Visible Rouge - 

0,06 - Rouge Gris 

0,14 Visible - Violet 

0,19 - Bleu Gris 


0,31 Visible - Gris 

0,36 - Jaune Violet 


0,48 - Rose Gris 


0,89 - Marron - 

0,91 Visible Jaune Violet 

Presque tous les extraits ont donné avec le réactif de Godin des colorations. 

La coloration violette au Godin oriente vers la présence de terpénoïdes. 

8 cm 

Front du solvant : 8 cm 

Support : Plaque silicagel 

Dépôt : 10 µl 

Eluant : Ether de pétrole-Acétate 

d’éthyle (8 : 1) 

Révélateur : Godin 

0 

Figure n˚15 : Chromatogramme de l’extrait éther de pétrole de Cassia nigricans révélé avec 

le réactif de Godin.

Tableau n˚XVIII : Résultats de la CCM de l’extrait DCM de Fagara zanthoxyloides dans le 

système de solvants Ether de pétrole – Acétate d’éthyle (1-1) 

Rf 254 nm 366 nm Godin Dragendorff 

0,09 Visible - - - 

0,14 Visible - Violet - 

0,18 Visible - - - 

0,19 - Bleu - - 

0,28 - Violet - - 

0,29 Visible - - - 

0,35 Visible Bleu Gris - 

0,43 - Violet - Orange 

0,53 - Violet - - 

0,54 Visible - - - 

0,6 - Jaune - - 

0,63 Visible - - Orange 

0,65 - Jaune - - 


0,73 - Jaune - Orange 

0,78 Visible - Gris - 

0,81 Visible Jaune - Orange 

0,86 - Bleu Violet - 

0,91 - Jaune Violet Orange 

0,93 Visible - Gris Orange 

Les tâches oranges observées avec le réactif de Dragendorff révèlent la présence d’alcaloïdes 

dans l’extrait

Tableau n˚XIX: Résultats de la CCM de l’extrait DCM de Swartzia madagascariensis dans 

le système de solvant Ether de pétrole-Acétate d’éthyle (1-1) 


0,05 - Marron Beige 


0,3 Visible - Orange 


0,37 - Jaune Beige 


0,54 - Marron - 


0,66 Visible - Marron 


0,73 - Marron - 

0,83 - Marron - 


0,88 Visible - Vert 

Presque toutes les tâches observées à 366 nm sont marrons. Nous observons une 

prédominance de tâches beige avec le réactif de Godin 

F.z 

S.m 

8 cm 

0 







F.z : Fagara zanthoxyloïdes 

S.m : Swartzia madagascariensis 

Figure n˚16 : Chromatogramme des extraits dichlorométhanes de Fagara zanthoxyloïdes et 

de Swartzia madagascariensis révélés au Godin.

Tableau n˚XX: Résultats de la CCM de l’extrait acétate d’éthyle de Psorospermum 

guineense dans le système de solvants Ether de pétrole- Acétate d’éthyle (5-2) 


0,06 - Violet - 

0,13 - Violet - 

0,43 - Violet Vert 

0,54 - Rouge Gris 

0,6 Visible Rouge Vert 

0,69 Visible Rouge Rose 

0,83 Visible Violet - 

Presque tous les composants de l’extrait acétate d’éthyle de Psorospermum guineense ont 

présenté des taches à 366 nm. Ces taches étaient rouges ou violettes.

2.2 Tests biologiques 

2.2.1 Résultats de l’activité antioxydante 

Tableau n˚XXI : Résultats de l’activité antioxydante 

Extraits 

Rf 

Extrait éthanolique de Mitracarpus scaber 0,23 

0,54 

Extrait dichlorométhane de Swartzia madagascariensis 0,13 

0,65 

0,79 

0,84 

0,91 

Extrait dichlorométhane de Fagara zanthoxyloïdes 0,88 

L’extrait dichlorométhane de Swartzia madagascariensis a présenté le plus de substances 

antiradicalaires. 




Eluant : Ether de pétrole- 

Acétate d’éthyle (1 : 1) 

Révélateur : DPPH 

F.z 

S.m 

F.z : Fagara zanthoxyloïdes 

S.m : Swartzia madagascariensis 

Figure n˚17 : Chromatogramme de l’activité antioxydante des extraits de Fagara 

zanthoxyloïdes et de Swartzia madagascariensis.

2.2.2 Résultats de l’activité antibactérienne des extraits 

Tableau n˚XXII: Résultats de l’activité antibactérienne des extraits et antibiotiques standard 

sur Staphylococcus aureus 

Extraits Dose (μg) Diamètre de la zone d’inhibition (mm) 

Extrait acétate d’éthyle de Psorospermum 1000 10 

guineense 

Extrait éthanolique de Mitracarpus scaber 500 10 

1000 7 

1500 10 


500 8 


1000 6 

1500 10 


500 12 


1000 13 

1500 13 

Extrait éther de pétrole de Cassia nigricans 500 11 

1000 16 

Kanamycine 30 20 (S) 

Chloramphénicol 30 25 (I) 

Oxacilline 5 13 (R) 

Pristinamycine 15 30 (S) 

Erythromycine 15 35 (S) 

S = Sensible R = Résistant I= Intermédiaire (-) = diamètre non déterminé 

La plus forte activité antibactérienne sur Staphyloccoccus aureus a été obtenue avec l’extrait 

éther de pétrole de Cassia nigricans à la concentration de 1000 µg.

Tableau n˚XXIII: Résultats de l’activité antibactérienne des extraits et antibiotiques standard 

sur Escherichia coli 


E coli 

(Souche clinique) 

E coli 

(Souche de référence) 

Extrait acétate d’éthyle de 500 10 - 

Psorospermum guineense 

1000 - 7 

Extrait éther de pétrole de 500 7 - 

Cassia nigricans 

1500 8 - 

Extrait éthanolique de 

1000 - 7 

Mitracarpus scaber 

1500 - 7 

Extrait dichlorométhane de 1500 - 7 

Swartzia madagascariensis 

Extrait dichlorométhane de 1000 - 8 

Fagara zanthoxyloïdes 

1500 - 7 

Doxycycline 30 - 22 (S) 

Nitroxoline 20 - 20 (S) 

Acide nalidixique 30 - 22 (S) 

Péfloxacine 5 - 30 (S) 

Ceftriaxone 30 - 32 (S) 


20+10 - 17 (I) 

clavulanique 

Amikacine 30 13 (R) - 

Ciprofloxacine 5 0 - 

Norfloxacine 10 0 - 

Chloramphénicol 30 18 (R) - 

Tétracycline 30 0 - 

S = Sensible R = Résistant I= Intermédiaire (-) = diamètre non déterminé

La plus forte activité antibactérienne sur Escherichia coli a été obtenue avec l’extrait à 

l’acétate d’éthyle de Psorospermum guineense à la concentration de 500 µg. 

Tableau n˚ XXIV: Résultats de l’activité antibactérienne des extraits et antibiotiques standard 

sur Streptococcus β hémolytique 


Extrait acétate d’éthyle de 

500 9 

Psorospermum guineense 

Extrait éther de pétrole de 

1000 7 

Cassia nigricans 

Extrait éthanolique de 

500 7 


Extrait dichlorométhane de 500 7 


1000 8 

1500 7 

Extrait dichlorométhane de 1000 7 


1500 7 

Streptomycine 10 17 (S) 

Pénicilline G 6 24 (I) 

Ampicilline 10 26 (S) 

Erythromycine 15 26 (S) 

Kanamycine 30 30 (S) 

Pristinamycine 15 24 (S) 

Lincomycine 15 24 (S) 

S = Sensible R = Résistant I= Intermédiaire (-) = diamètre non déterminé 

La plus forte activité antibactérienne sur Streptococcus β hémolytique a été obtenue avec 

l’extrait acétate d’éthyle de Psorospermum guineense à la concentration de 500 µg.

Tableau n˚XXV: Résultats de l’activité antibactérienne des extraits et antibiotiques standard 

sur Proteus mirabilis 

Extraits Dose (μg) Diamètre de la zone 

d’inhibition (mm) 

Extrait acétate d’éthyle de Psorospermum guineense 500 - 

Extrait éther de pétrole de Cassia nigricans 500 8 


1000 7 

1500 7 

Extrait dichlorométhane de Swartzia madagascariensis 500 7 

1000 10 

1500 10 

Extrait dichlorométhane de Fagara zanthoxyloïdes 1000 7 

1500 8 

Doxycycline 30 15 (R) 

Nitroxoline 20 11 (R) 

Acide nalidixique 30 17 (I) 

Péfloxacine 5 21 (I) 

Amoxicilline + Acide clavulanique 20 + 10 20 (I) 

Ceftriaxone 30 27(S) 

S = Sensible R = Résistant I= Intermédiaire (-) = diamètre non determiné 

Les plus fortes activités antibactériennes sur Proteus mirabilis ont été obtenues avec les 

extraits de Cassia nigricans et de Fagara zanthoxyloïdes aux concentrations respectives de 

500 et 1500 µg.

Tableau n˚XXVI: Résultats de l’activité antibactérienne des extraits et antibiotiques standard 

sur Klebsiella pneumoniae 

Extraits 

Dose 

(μg) 

Diamètre de la zone 

d’inhibition (mm) 

Extrait acétate d’éthyle de Psorospermum 1000 - 

guineense 

1500 - 

Extrait éther de pétrole de Cassia nigricans 1000 - 

1500 - 


1500 8 





1000 - 

1000 9 

1500 11 

Amoxicilline 25 0 (R) 

Ciprofloxacine 5 30 (S) 

Chloramphénicol 30 8 (R) 

Gentamicine 10 21 (S) 

Colistine 50 14 (S) 

Amikacine 30 24 (S) 

S = Sensible R = Résistant (-) = diamètre non determine 

La plus forte activité antibactérienne a été obtenue avec l’extrait dichlorométhane de Fagara 

zanthoxyloïdes à la concentration de 1500 µg.

2.2.3 Résultats de l’activité antifongique des extraits 

Tableau n˚ XXVII: Résultats de l’activité antifongique de l’extrait éthanolique de 


Extrait éthanolique de Mitracarpus scaber 

Concentrations µg/ µl 

Rf 100 300 600 Nystatine 

0,41 - - - + 

0,85 + + + 

L’extrait éthanolique de Mitracarpus scaber a inhibé la pousse d’une culture de Candida 

albicans au Rf 0,85 aux concentrations de 100 ; 300 et 600 µg. 

La nystatine a inhibé la pousse de Candida albicans au Rf 0,41. 

Tableau n˚ XXVIII: Résultats de l’activité antifongique de l’extrait DCM de Swartzia 


Extrait dichlorométhane de Swartzia madagascariensis 

Concentrations (µg/µl) 

Rf 100 50 25 10 

0,06 + - - - 

0,11 + - - - 

0,18 + - - - 

0,2 + - - - 

0,35 + + - - 

0,40 + + - - 

0,44 + + - - 

0,56 + + - - 

0,71 - - + + 

0,73 + + - - 

0,86 + + - - 

0,91 + + - - 

0,93 - - + + 

0.98 + + + +

La nystatine n’a pas migré dans notre système de solvants. Nous avons observé une zone 

d’inhibition à son point de dépôt. 

Nous avons observé des zones d’inhibition aux mêmes Rf aux concentrations de 25 et 10 

µg/µl. L’extrait dichlorométhane de Swartzia madagascariensis est très actif puisqu’une 

concentration de 10 µg/µl inhibe la pousse de Candida albicans 


Support : Plaque de Silice G 60F 254 

Eluant : Ether de pétrole-Acétate d’éthyle (1 : 1) 

Révélateur : Bleu de tétrazolium 

N 

N : Nystatine 

Figure n˚18 : Chromatogramme de l’activité antifongique de l’extrait dichlorométhane de 


Tableau n˚XXIX: Résultats de l’activité antifongique de l’extrait DCM de Fagara 


Extrait dichlorométhane de Fagara zanthoxyloïdes 


Rf 600 300 100 

0,58 + - - 

0,64 + - - 

0,65 + - - 

0,79 + - - 

0,8 + - - 

0,85 + + 

0,88 + - - 

0,94 + + +

Au Rf 0,94 la pousse de Candida albicans a été inhibée par l’extrait dichlorométhane de 

Fagara zanthoxyloïdes aux concentrations de 100 ; 300 et 600 µg. 

Zones d’inhibition 





N : nystatine 

N 

Figure n˚19 : Chromatogramme de l’activité antifongique de l’extrait dichlorométhane de 


Tableau n˚XXX: Résultats de l’activité antifongique de l’extrait éther de pétrole de Cassia 

nigricans 

Extrait éther de pétrole de Cassia nigricans 


Rf 600 300 100 

0,44 + - - 

0,48 + - - 

0,53 + - - 

0,74 + - - 

0,76 + - - 

0,9 + + + 

La pousse de Candida albicans a été inhibée par l’extrait éther de pétrole de Cassia nigricans 

aux concentrations de 100 ; 300 et 600 µg.

Zones d’inhibition 





N 

N : nystatine 

Figure n˚20 : Chromatogramme de l’activité antifongique de l’extrait éther de pétrole de 

Cassia nigricans

2.3 Les pommades 

2.3.1 Contrôle de qualité des pommades 

Le tableau XXXI résume les paramètres du contrôle de qualité des pommades 

Tableau n˚XXXI : Résultats du contrôle de qualité des pommades 

Extrait Couleur Odeur Consistance Homogénéité pH 

AcOEt de P. 

guineense 

PBK 

PVA 

Vert olive 

Vert foncé 

Beurre 

de karité 

Brûlé 

Pâteux 

Molle 

Bonne 

Bonne 

5 

5 

Ethanolique de M. 

scaber 

PBK 

PVA 

Verdâtre 

Vert 

Beurre 

de karité 

Brûlé 

Pâteux 

Molle 

Bonne 

Bonne 

5 

5 

Ether de pétrole de 

C. nigricans 

PBK 

PVA 

Vert clair 

Vert 

Beurre 

de karité 

Vaseline 

Pâteux 

Molle 

Bonne 

Bonne 

5 

5 

DCM de F. 


PBK 

PVA 

Jaunâtre 

Jaune 

Beurre 

de karité 

Vaseline 

Pâteux 

Molle 

Bonne 

Bonne 

5 

5 

DCM de S. 


PBK 

PVA 

Marron 

clair 

Marron 

foncé 

Beurre 

de karité 

Vaseline 

Pâteux 

Molle 

Bonne 

Bonne 

5 

5 

PBK : Pommade à base de beurre de Karité 

PVA : Pommade à base de vaseline 

Nous avons préparé 15 g de chaque pommade. 

Les pommades à base de beurre de Karité sont de consistance pâteuse tandis que celles à 

base de vaseline sont de consistance plus molle. Toutes les pommades ont un pH égal à 5 et 

ont une bonne homogénéité. 

A 

Figures n˚ 21 A et n˚B : Pots de pommades 

B

2.3.2 Chromatographie sur couche mince 

Les résultats de la chromatographie sur couche mince effectuée sur les pommades obtenues 

avec les différents extraits sont reportés dans les tableaux XXXII, XXXIII, XXXIV et XXXV. 

Chaque extrait a été chromatographié avec ses pommades. 

Tableau n˚XXXII : Résultats de la CCM de l’extrait et des pommades de Cassia nigricans 

Extrait PV PBK 

Rf 254 366 Godin 254 366 Godin 254 366 Godin 

0,04 Visible Rouge Noir - Rouge - - - - 

0,09 - Rouge Gris - - - - - - 

0,18 - Bleu Violet - - Violet - - Violet 

0,2 - - - Visible - - Visible - Violet 

0,26 Visible - Violet Visible - Violet Visible - Violet 

0,33 - Jaune Violet - - Violet Visible - Violet 

0,4 Visible - Violet - - - - - - 

0,46 - Rose Violet - - Violet - - Violet 

0,58 - - Gris - - - - - - 

0,68 - - - - - Violet - - Violet 

0,74 Visible - Gris - - - - - - 

0,86 - Marron - - - Violet - - Violet 

0,93 Visible Jaune Violet - - - - - - 

Aucune des tâches retrouvées dans l’extrait à l’UV 366 nm n’a été retrouvée dans la 

pommade à base de beurre de Karité à la meme longueur d’onde 

Ether de pétrole-Acétate d’éthyle (8:1) Front du solvant : 8 cm 

Dépôt : 10µl 





E PV PBK 

E : Extrait 

PV : Pommade avec la vaseline 

PBK : Pommade avec le beurre de 

Karité 

Figure n˚ 22 : Chromatogramme de l’extrait éther de pétrole de Cassia nigricans et de ses 

pommades

Tableau n˚XXXIII : Résultats de la CCM de l’extrait dichlorométhane de Fagara 

zanthoxyloïdes et de ses pommades 



0,04 Visible - - Visible - - Visible - - 

0,09 Visible - - Visible Bleu - Visible - - 

0,16 Visible Bleu Violet Visible - Godin Visible - - 

0,24 - - Gris Visible - Gris Visible - Gris 

0,3 - - - Visible - - - - - 

0,34 Visible Bleu Violet - Bleu Violet Visible - Violet 

0,44 - Violet Violet Visible - Violet Visible - Violet 

0,64 - - Violet - - Violet - - Violet 

0,7 Visible - - - - - Visible - Bleu 

0,84 - Bleu Violet - - - Visible - Violet 

Nous retrouvons pratiquement les mêmes tâches dans l’extrait et dans les pommades à l’ UV 

254 nm. 

Ether de pétrole-Acétate d’éthyle (1 : 1) 

E 

PV 

PBK 

Figure n˚ 23 : Chromatogramme de l’extrait dichlorométhane de Fagara zanthoxyloïdes et de 

ses pommades 


Dépôt : 10µl 





E : Extrait 



Karité

Tableau n˚ XXXIV : Résultats de la CCM de l’extrait acétate d’éthyle de Psorospermum 

guineense et de ses pommades 



0,11 - Violet - - - - - - - 

0,19 Visible - - - - - - - - 

0,3 Visible - - - Violet - - - - 

0,44 Visible Violet Bleu - Violet Gris - Violet Violet 

0,58 Visible Rouge - - - Gris - - Violet 

0,63 - - Bleu - - - - - - 

0,7 Visible Rouge - - - - - - Violet 

0,9 Visible Violet Bleu - - - - - Violet 

Nous ne retrouvons aucune des tâches observées dans l’extrait à l’UV 254 nm dans les 

pommades. 

Ether de pétrole-Acétate d’éthyle (6: 1) 

E 

PV 

PBK 

Figure n˚ 24 : Chromatogramme de l’extrait acétate d’éthyle de Psorospermum guineense et 

de ses pommades 





d’éthyle (6: 1) 


E : Extrait 



Karité

Tableau n˚ XXXV : Résultats de la CCM de l’extrait dichlorométhane de Swartzia 

madagascariensis et de ses pommades 



0,05 - Marron Beige Visible - Orange - Marron Orange 

0,13 Visible Marron Beige Visible - Orange Visible Marron Orange 

0,25 Visible Marron Orange Visible - Orange Visible Marron Orange 

0,35 - Marron Beige - - - - - Bleu 

0,4 Visible - Gris - - - Visible - - 

0,5 - - Gris - - - - - Bleu 

0,65 Visible - Gris - - - Visible - Gris 

Nous retrouvons les presque tous les constituants de l’extrait dans la pommade à base de 

beurre de Karité. 

Ether de pétrole-Acétate d’éthyle (6: 1) 

E PBK PV 

Figure n˚ 25 : Chromatogramme de l’extrait dichlorométhane de Swartzia madagascariensis 

et de ses pommades 




Eluant : Ether de pétrole-Acétate d’éthyle 

(6: 1) 


E : Extrait 


PBK : Pommade avec le beurre de Karité

2.3.3 Activité antifongique 

Tableau n˚XXXVI : Résultats de l’activité antifongique des pommades à base de Swartzia 


Pommade avec la vaseline Pommade avec beurre de Karité 

Concentrations 

Rf 1 % 5 % 10 % 1 % 5 % 10 % 

0,09 - + + - + + 

0,14 - + + - + - 

0,2 + + + + + + 

0,27 - + + - - + 

0,35 - + + - + + 

0,53 - + + - + + 

Toutes les pommades de Swartzia madagascariensis ont donné une activité sur la 

souche de Candida albicans. Les meilleures activités ont été obtenues avec les pommades aux 

concentrations de 5 et 10 %.

3. COMMENTAIRES ET DISCUSSION 

Notre étude a porté sur les activités antibactériennes et antifongiques de cinq plantes 

médicinales utilisées dans le traitement des dermatoses au Mali. 

Le matériel végétal était constitué des feuilles de Psorospermum guineense, des écorces de 

racines de Fagara zanthoxyloïdes et Swartzia madagascariensis et des parties aériennes de 

Cassia nigricans et de Mitracarpus scaber. 

La teneur en eau par la méthode gravimétrique a été de 4,64 % pour Mitracarpus scaber, 

5,23 % pour Cassia nigricans, 6,91 % pour Fagara zanthoxyloïdes, 4,68 % pour Swartzia 

madagascariensis et 6,45 % pour Psorospermum guineense. 

La teneur en eau de tous nos échantillons étant inférieure à 10 %, nous pouvons prétendre 

à une bonne conservation des drogues. En effet une teneur en eau supérieure à 10 % 

favoriserait les réactions d’oxydation, de fermentation ainsi que la formation de moisissures 

qui sont souvent préjudiciables à l’activité thérapeutique de la drogue (Paris et Hurabielle, 

1981). 

Dans l’ensemble la teneur en substances extractibles par l’éthanol dans tous nos 

échantillons est supérieure à celle des substances extractibles par l’eau excepté Psorospermum 

guineense qui a présenté 28 % de substances extractibles par l’eau contre 24 % par l’éthanol. 

Le meilleur rendement a été obtenu avec l’extraction au dichlorométhane de Swartzia 

madagascariensis soit 50 % et le plus faible avec l’extraction à l’éther de pétrole de Cassia 

nigricans soit 1,40 % 

Les réactions de caractérisation ont révélé la présence de plusieurs composés chimiques 

dans nos plantes. Les plus abondants étaient les coumarines, saponosides, tanins, flavonoïdes, 

stérols et triterpènes, hétérosides cardiotoniques, leucoanthocyanes et oses et holosides. Les 

alcaloïdes ont été retrouvés uniquement chez Fagara zanthoxyloïdes et les mucilages 

uniquement chez Cassia nigricans. Les dérivés anthracéniques ont été retrouvés chez Cassia 

nigricans, Swartzia madagascariensis et Psorospermum guineense. 

Les hétérosides cyanogénétiques, les composés réducteurs et les anthocyanes n’ont été 

retrouvés dans aucun de nos échantillons.

L’observation à la lampe UV et la révélation des chromatogrammes des extraits avec les 

réactifs de Godin et de Dragendorff ont permis de confirmer la présence de plusieurs 

composés notamment les stérols et triterpènes, les flavonoïdes et les alcaloïdes. 

L’extrait dichlorométhane de Swartzia madagascariensis a présenté plus de substances qui 

décolorent la solution de DPPH que les autres. L’activité antioxydante des extraits pourrait 

s’expliquer par la présence de substances polyphénoliques comme les tanins et les 

flavonoïdes. De nombreuses études ont déjà montré les propriétés antioxydantes des tanins 

(Ohnishi et coll 1994), des flavonoïdes, anthocyanes et leucoanthocyanes (Bruneton, 1993 ; 

Cavin, 1999 ; Madhavi et coll, 1996). 

Pour l’activité antibactérienne des extraits aux concentrations de 500, 1000, 1500 µg ont 

inhibé la croissance de souches cliniques de Staphylococcus aureus, Escherichia coli, 

Streptococcus β hémolytique, Klebsiella pneumoniae, Proteus mirabilis et de la souche 

standard d’Escherichia coli ATCC 25922. Les diamètres des zones d’inhibition étaient 

compris entre 7 et 16 mm. 

Le diamètre le plus grand a été obtenu avec l’extrait éther de pétrole de Cassia nigricans 

sur Staphylococcus aureus soit 16 mm. Ces résultats concordent avec ceux obtenus par 

Mogode (2005) qui avait obtenu un diamètre de 20 mm avec le même extrait et 24 mm avec 

l’extrait dichlorométhane de Cassia nigricans sur Staphylococcus aureus. Mogode a obtenu 

de meilleurs résultats avec les souches d’Escherichia coli et de Streptococcus beta 

hémolytique. En effet elle a obtenu des diamètres de 14 et 13 mm respectivement avec 

Streptococcus beta hémolytique et Escherichia coli tandis que lors de notre étude nous avons 

obtenu des diamètres d’inhibition de 7 mm pour ces deux bactéries. 

L’extrait éthanolique de Mitracarpus scaber a donné un diamètre d’inhibition de 10 mm 

sur la souche de Staphylococcus aureus. L’étude de Sanogo et coll. (1996) avait permis 

l’obtention d’un résultat semblable avec un diamètre d’inhibition de 10 mm avec le même 

extrait sur une souche de Staphylococcus aureus. Irobi et Dramola (1993 et 1994) avaient 

obtenu des zones d’inhibition comprises entre 9 et 23 mm sur Escherichia coli, Staphyloccus 

aureus, Bacillus subtilis et Enterococcus faecalis avec des extraits aqueux et éthanoliques des 

feuilles et des inflorescences de Mitracarpus scaber contre des diamètres de 7 et 10 mm 

obtenus lors de notre étude respectivement sur Escherichia coli et Staphyloccus aureus.

L’extrait acétate d’éthyle de Psorospermum guineense a donné ses plus grands diamètres 

d’inhibition sur les souches cliniques de Staphylococcus aureus et d’Escherichia coli (10 

mm). 

L’extrait de Fagara zanthoxyloïdes a eu la plus forte activité à la dose de 1500 µg sur 

Klebsiella pneumoniae (11 mm). 

L’extrait de Swartzia madagascariensis a donné son activité la plus élevée sur 

Staphylococcus aureus (11 mm). 

L’activité anti-bactérienne de nos extraits serait due aux tanins, aux flavonoïdes, 

coumarines, mucilages et terpènes. Ces composés possèderaient des propriétés 

antibactériennes (Bruneton 1993 ; Cowan, 1999 ; Scalbert, 1991). 

Sur les cinq extraits testés, ceux de Swartzia madagascariensis, Fagara zanthoxyloïdes, 

Mitracarpus scaber et Cassia nigricans ont montré une activité antifongique sur Candida 

albicans. L’extrait dichlorométhane de Swartzia madagascariensis a montré l’activité la plus 

grande. En effet une dose de10 µg a permis d’inhiber une culture de Candida albicans. Ces 

résultats sont en accord avec ceux de Schaller (1999) qui a isolé de nouveaux composés 

antifongiques de nature quinoniques de cette plante. 

Une dose 300 µg des extraits éther de pétrole de Cassia nigricans et dichlorométhane de 

Fagara zanthoxyloïdes a permis d’inhiber la pousse d’une culture de Candida albicans. 

Les activités antifongiques de Cassia nigricans et Fagara zanthoxyloïdes avaient déjà été 

rapportées par Mogode (2005), Bossokpi (2003) et Chaaib (2004). Celles de Mitracarpus 

scaber ont été rapportées par Irobi et Dramola (1993 et 1994) et Sanogo et coll. (1996). 

L’activité antifongique de ces plantes pourrait s’expliquer par la présence de saponosides, 

alcaloïdes, composés quinoniques et de tanins dans nos échantillons (Bruneton 1993 ; 

Schaller, 1999). Il faut toutefois signaler la toxicité des dérivés quinoniques. 

Nous avons réalisé des pommades avec la vaseline et le beurre de Karité à la concentration 

de 1 %. La couleur, l’odeur, l’homogénéité, le pH et le profil chromatographique ont servi 

comme éléments de contrôle de qualité pour chaque pommade. Le pH de toutes les pommades 

a été égal à 5.

En comparant les chromatogrammes des pommades avec ceux des extraits respectifs nous 

retrouvons des tâches avec les mêmes Rf. 

L’analyse des différents chromatogrammes nous montre que le beurre d Karité semble 

mieux libérer les différents constituants chimiques des extraits. 

L’activité antifongique des pommades à base de vaseline et de beurre de Karité a été 

évaluée aux concentrations de 1 ; 5 et 10 %. Cette activité a été évaluée sur une souche 

clinique de Candida albicans. La meilleure activité antifongique a été obtenue avec les 

pommades réalisées avec l’extrait dichlorométhane de Swartzia madagascariensis. Les 

pommades à base des autres extraits n’ont pas donné d’activité. 

Les différents résultats obtenus au terme de notre étude pourraient expliquer l’usage 

des cinq plantes étudiées dans le traitement traditionnel des dermatoses

CONCLUSION 

Au terme de ce travail visant à étudier les activités antibactérienne et antifongique de 

Mitracarpus scaber, Psorospermum guineense, Fagara zanthoxyloïdes, Cassia nigricans et 

Swartzia madagascariensis il ressort que ces plantes possèdent des vertus pouvant justifier 

leur utilisation en médecine traditionnelle. 

En effet les études phytochimiques ont révélé la présence de nombreux composés tels que 

les tanins, coumarines, leucoanthocyanes, saponosides, stérols et triterpènes. 

L’extrait dichlorométhane de Swartzia madagascariensis a donné le plus grand nombre de 

substances antiradicalaires. 

La plus forte activité antibactérienne a été obtenue avec l’extrait éther de pétrole de Cassia 

nigricans à la dose de 1000 µg sur une souche de Staphylococcus aureus. 

L’extrait dichlorométhane de Swartzia madagascariensis a donné la meilleure activité 

antifongique sur Candida albicans et cela à la dose de 100 µg. L’activité de cet extrait s’est 

révélée meilleure que celle du médicament standard utilisé qui était la nystatine. 

De toutes les pommades préparées au cours de notre travail, celle avec l’extrait 

dichlorométhane de Swartzia madagascariensis s’est montrée la plus active sur la souche de 

Candida albicans. 

Ces différentes activités pourraient s’expliquer par la présence dans les extraits des drogues 

de tanins, saponosides, dérivés quinoniques et coumarines. 

Nous espérons par ce travail avoir marqué un point de départ vers la mise au point d’un 

médicament traditionnel amélioré (MTA) indiqué dans les dermatoses après 

approfondissement de certains aspects de la présente étude et la réalisation d’essais cliniques.

RECOMMANDATIONS 

Au terme de notre travail nous recommandons 

Au DMT : 

‣ de tester l’activité antifongique des extraits sur les dermatophytes, 

‣ de tester la tolérabilité cutanée des pommades, 

‣ de mener les essais cliniques des pommades. 

A la population : 

‣ de se servir prudemment et rationnellement des plantes pour éviter les accidents 

graves qu’elles peuvent engendrer et la disparition de certaines espèces regorgeant de 

potentialités thérapeutiques.

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102. www. Sante-ujf-grenoble.fr

ANNEXE : Composition des réactifs 

► Réactif de BALJET 

Acide picrique………………………………………………………………………1 g 

Ethanol à 50° alcoolique q s p………………………………………………………100 ml 

► Réactif de DRAGENDORFF 

Nitrate de bismuth pulvérisé………………………………………………………20,80 g 

Iode………………………………………………………………………………..38,10 g 

Iodure de sodium anhydre…………………………………………………………200 g 

Eau distillée q s p………………………………………………………………….1000 ml 

Agiter pendant 30 mn 

► Réactif du DPPH 

1,1 diphényl 2 picrylhydrazyle en solution méthanolique à 2 mg / ml (M / V). 

► Réactif de FEHLING 

Solution A : 

CuSO 4 ………………………………………………………………………………35 g 

Eau distillée…………………………………………………………………………500 ml 

H 2 SO 4 ………………………………………………………………………………..5 ml 

Laisser refroidir et compléter à 1 litre avec de l’eau distillée. 

Solution B : 

Sel de Seignette…………………………………………………………………….150 g 

Eau distillée………………………………………………………………………...500 ml 

Refroidir et ajouter 300 ml de lessive non carbonatée à 1 litre avec de l’eau distillée. 

NB : Mélanger les deux solutions à volume égal au moment de l’emploi. 

► Réactif de GODIN 

Solution A : 

Vanilline……………………………………………………………………………..1 g 

Ethanol à 95° alcoolique…………………………………………………………1000 ml

Solution B : 

Acide perchlorique………………………………………………………………..3 ml 

Eau distillée……………………………………………………………………….100 ml 

Mélanger les deux solutions au moment de l’emploi, ensuite pulvériser sur les plaques CCM 

avec une solution de H 2 SO 4 à 4 %. 

► Réactif de GUIGNARD (Papier picrosodé) 

Acide picrique……………………………………………………………………..1 g 

Carbonate de sodium………………………………………………………………10 g 


► Réactif de KEDDE 

Acide dinitro 3,5 benzoique………………………………………………………..1 g 

Ethanol à 95 ° alcoolique q s p……………………………………………………100 ml 

► Réactif de MAYER 

Iodure de potassium……………………………………………………………….25 g 

Chlorure mercurique……………………………………………………………….6,77 g 


► Réactif de RAYMOND MARTHOUD 

1,3 dinitrobenzène…………………………………………………………………1 g 

Ethanol à 96° alcoolique q s p……………………………………………………..100 ml

FICHE SIGNALYTIQUE 

NOMS : EYANG ESSENG 

PRENOM : Marjorie 

TITRE DE LA THESE : Etude de la phytochimie et des activités antibactérienne et 

antifongique de cinq plantes médicinales utilisées dans le traitement des dermatoses au Mali 

VILLE DE SOUTENANCE : Bamako 

LIEU DE DEPOT : Bibliothèque de la Faculté de Médecine de Pharmacie et d’Odonto 

Stomatologie 

SECTEUR D’INTERET : Médecine traditionnelle 

RESUME 

Notre étude a concerné cinq plantes utilisées dans le traitement traditionnel des dermatoses 

au Mali à savoir Cassia nigricans, Fagara zanthoxyloïdes, Mitracarpus scaber, 

Psorospermum guineense, Swartzia madagascariensis. 

Dans un premier temps nous avons effectué un screening phytochimique de ces plantes. 

Les réactions de caractérisation en tube ont montré la présence de plusieurs groupes 

chimiques qui pourraient être responsables des activités pharmacologiques retrouvées au 

cours de l’étude notamment les coumarines, les stérols et triterpènes, les tanins, les 

flavonoïdes. La chromatographie sur couche mince réalisée sur les extraits a permis de mettre 

en évidence quelques uns de ces groupes chimiques. 

Après la phytochimie, nous avons procédé à l’évaluation des activités biologiques : 

antioxydante, antibactérienne et antifongique. 

Le test antioxydant a surtout été positif avec l’extrait dichlorométhane de Swartzia 

madagascariensis. 

L’activité antibactérienne la plus élevée a été observée avec l’extrait éther de pétrole de 

Cassia nigricans avec un diamètre d’inhibition maximal de 16 mm sur la souche clinique de 

Staphylococcus aureus. 

La meilleure activité antifongique sur Candida albicans a été obtenue avec l’extrait 

dichlorométhane de Swartzia madagascariensis. 

Les pommades à base de l’extrait dichlorométhane de Swartzia madagascariensis ont 

donné la meilleure activité antifongique sur Candida albicans. 

Mots clés : Cassia nigricans, Fagara zanthoxyloïdes, Mitracarpus scaber, Psorospermum 

guineense, Swartzia madagascariensis, antibactérienne, antioxydante, antifongique, 

pommade, Candida albicans, Staphylococcus aureus.

Je jure en présence des maîtres de la faculté, des conseillers de l’ordre des 

pharmaciens et de mes condisciples : 

D’honorer ceux qui m’ont instruit dans les préceptes de mon art et de leur 

témoigner ma reconnaissance en restant fidèle à leur enseignement ; 

D’exercer dans l’intérêt de la Santé Publique ma profession, avec 

conscience et de respecter non seulement la législation en vigueur mais aussi les 

règles de l’honneur, de la probité et du désintéressement ; 

De ne jamais oublier ma responsabilité et mes devoirs envers le malade et sa 

dignité humaine. 

En aucun cas, je ne consentirai à utiliser mes connaissances et mon état pour 

corrompre les mœurs et favoriser les actes criminels. 

Que les hommes m’accordent leur estime si je suis fidèle à mes promesses. 

Que je sois couvert d’opprobre et méprisé de mes confrères si j’y manque. 

Je le jure !

Etude de la phytochimie et des activités antibactériennes et 

antifongiques de cinq plantes médicinales utilisées dans le traitement 

traditionnel des dermatoses au Mali. 

RESUME 

Notre étude a concerné cinq plantes utilisées dans le traitement traditionnel des dermatoses au 

Mali à savoir Cassia nigricans, Fagara zanthoxyloïdes, Mitracarpus scaber, Psorospermum 

guineense, Swartzia madagascariensis. 

Dans un premier temps nous avons effectué un screening phytochimique de ces plantes. Les 

réactions de caractérisation en tube ont montré la présence de plusieurs groupes chimiques qui 

pourraient être responsables des activités pharmacologiques retrouvées au cours de l’étude 

notamment les coumarines, les stérols et triterpènes, les tanins, les flavonoïdes. La chromatographie 

sur couche mince réalisée sur les extraits a permis de mettre en évidence quelques uns de ces 

groupes chimiques. 

Après la phytochimie, nous avons procédé à l’évaluation des activités biologiques : 

antioxydante, antibactérienne et antifongique. 

Le test antioxydant a surtout été positif avec l’extrait dichlorométhane de Swartzia 

madagascariensis. 

L’activité antibactérienne la plus élevée a été observée avec l’extrait éther de pétrole de Cassia 

nigricans avec un diamètre d’inhibition maximal de 16 mm sur la souche clinique de 

Staphylococcus aureus. 

La meilleure activité antifongique sur Candida albicans a été obtenue avec l’extrait 

dichlorométhane de Swartzia madagascariensis. 

Les pommades à base de l’extrait dichlorométhane de Swartzia madagascariensis ont donné la 

meilleure activité antifongique sur Candida albicans. 

Mots clés : Cassia nigricans, Fagara zanthoxyloïdes, Mitracarpus scaber, Psorospermum 

guineense, Swartzia madagascariensis, antibactérienne, antioxydante, antifongique, pommade, 

Candida albicans, Staphylococcus aureus.

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