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<strong>123bio</strong>.<strong>net</strong> - <strong>Revues</strong> - <strong>La</strong> <strong>mucoviscidose</strong><br />

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les sous-unités βγ et α des protéines G, ou des modifications locales du calcium intracellulaire. Les différentes<br />

is<strong>of</strong>ormes d’AC (Tableau 2) sont classées en trois familles (Mons et Cooper, 1995; Cooper et al., 1995):<br />

- Le type I : comprend les adénylate-cyclases I, III, et VIII. Cette famille est peu régulée par les protéines Gα s.<br />

- Le type II : comprend les isoenzymes II, IV, et VII qui ne sont pas régulées par les protéines Gαi. Les AC II et IV<br />

peuvent être co-stimulées par les sous-unités α s et βγ des protéines Gi (Federman et al., 1992).<br />

- Le type V : regroupe les isoenzymes V et VI.<br />

2 - Activation du transport de chlorure par l’ATP<br />

Dans de nombreuses cellules épithéliales il existe une conductance chlorure activée par l’ATP extra-cellulaire<br />

distincte de la perméabilité sensible à l’AMPc. Bien qu’inconnues sur le plan moléculaire, les perméabilités<br />

sensibles à l’ATP et à la voie de signalisation du calcium, sont assimilées à des canaux chlorure par le fait de leur<br />

sensibilité aux différents agents pharmacologiques spécifiques des canaux Cl-.<br />

L’ATP extra-cellulaire active le transport de chlorure par sa liaison aux récepteurs P2-purinergiques couplés à la<br />

voie de signalisation du calcium (Marunaka, 1993; Chao et al., 1995; Sahi et al., 1996; Chan et al., 1996; Chan et<br />

al., 1997; Ho et al., 1997; Zeng et al., 1997).<br />

L’effet de l'ATP dépend de plusieurs paramètres :<br />

1 - du type de récepteur purinergique (P2) présent à la surface. On mesurera ainsi des différences dans l'efficacité<br />

de stimulation et le type de réponse obtenue,<br />

2 - de la présence et de l'activité d’ecto-ATPases à la surface cellulaire,<br />

3 - de la présence de canaux Cl- sensibles au calcium. (Figure 7). <strong>La</strong> liaison de l’ATP sur son récepteur entraîne<br />

l’activation de phospholipases C (PLC). Dans les cellules de mammifères, il existe plus de 10 is<strong>of</strong>ormes de<br />

phospholipases C (PLC), regroupées en trois familles: PLC-β, PLC-δ , et PLC-γ. L’hydrolyse par les PLC des<br />

phosphatidylinositol 4,5 biphosphate (PIP2) d’une part, et des phosphatidylinositol 4-monophosphate (PIP) et<br />

phosphatidylinositol (PI) d’autre part, conduit respectivement à l'accumulation d’IP3 et de diacyl glycérol (DAG). <strong>La</strong><br />

liaison de l’IP3 sur son récepteur, au niveau du réticulum endoplasmique, provoque la libération du stock interne de<br />

calcium. Le DAG est un activateur des PKC.<br />

Cette phase rapide de la réponse ATP (augmentation transitoire du niveau de calcium interne durant quelques<br />

secondes à une minute) est généralement suivie d’une phase lente due à l’activation des phospholipases A2<br />

cytosoliques (PLA2c) par le calcium interne libéré. Les PLA2c hydrolysent les phospholipides membranaires<br />

provoquant la libération d’acide arachidonique. Les métabolites de l’acide arachidonique vont alors activer l’entrée<br />

de calcium par des canaux calciques. Cette deuxième étape d’augmentation du taux de calcium interne va de<br />

nouveau activer les PLA2c, et les PLC (Willars, 1996). Cela conduit alors à un nouveau cycle d’activation de la voie<br />

de signalisation du calcium (formation d’IP3 et de DAG, libération du stock interne, activation des PLA2c). L’arrêt de<br />

cette stimulation est en partie due à un rétrocontrôle négatif par les PKC, dont la stimulation va conduire à une<br />

inhibition des PLC et à la recapture du calcium par le réticulum endoplasmique.<br />

Ce sont les métabolites de l’acide arachidonique et le calcium qui vont activer la sortie de chlorure au pôle apical<br />

des cellules épithéliales. Cette régulation du transport de chlorure par l’ATP via la voie de signalisation des<br />

récepteurs P2 est largement décrite dans les cellules épithéliales FRTL-5 (Fischer Rat Thyroid cell Line), (Martin,<br />

1992; Carrasco, 1993; Bizzarri et Corda, 1994; Shimegi et al., 1994; Törnquist et al., 1994; Ekokoski et Törnquist,<br />

1993; Wang et al., 1995; <strong>La</strong>glia et al., 1996).<br />

2.1 - Les récepteurs purinergiques<br />

Dans les années 70, Burnstock propose l’existence de récepteurs extra-cellulaires spécifiques pour expliquer les<br />

effets physiologiques de l’adénosine (récepteurs P1) et de l’ATP (récepteurs P2). En 1985, il a proposé de<br />

subdiviser la famille des récepteurs P2 en deux groupes : les P2x et les P2y, à partir de leurs différences d’affinité<br />

aux agonistes : α,β-méthylène ATP pour les P2x et 2-méthylthioATP pour les P2y.<br />

<strong>La</strong> classification actuelle des récepteurs P2 est basée sur leurs voies de transduction et leurs structures (Figure 8).<br />

On distingue ainsi la famille des récepteurs ionotropiques (P2x), qui font partie des canaux ioniques activés par les<br />

ligands, de celle des récepteurs métabotropiques (P2y) couplés aux protéines G, essentiellement Gq/11 et dans<br />

certains cas aux protéines Gi/o.<br />

<strong>La</strong> famille des récepteurs P2x compte 7 membres notés P2x1 à P2x7 ayant entre 30 et 50 % d’homologie de<br />

séquence. Ils sont formés de 2 segments transmembranaires, et d’une large boucle extra-cellulaire contenant des

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