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<strong>123bio</strong>.<strong>net</strong> - <strong>Revues</strong> - <strong>La</strong> <strong>mucoviscidose</strong><br />
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l’ATP, de manière compétitive, par interaction spécifique sur le domaine NBD2 (Riordan, 1993). Bien que, l’AMP-<br />
PNP ne puisse pas ouvrir le canal CFTR phosphorylé, une fois le canal ouvert il peut s’y lier fortement et le bloquer<br />
dans cette conformation pour quelques minutes. <strong>La</strong> liaison de l’AMP-PNP se produit probablement au niveau de<br />
l’extrémité C-terminale du domaine NBD (Gadsby et al., 1998). Bien que, la probabilité d'ouverture du canal<br />
augmente en fonction de la concentration en ATP intracellulaire, c’est le rapport entre ATP et ADP qui est le plus<br />
important dans la régulation du canal CFTR. Des changements dans l'état métabolique de la cellule qui modifient<br />
ce ratio régulent l'activité du canal (Welsh et Anderson, 1993).<br />
3 - Régulation par les seconds messagers<br />
L'activation du canal CFTR par la protéine kinase A est stimulée par l'AMPc. Le niveau d'AMPc est contrôlé par la<br />
balance entre sa synthèse par les adénylate-cyclases et son hydrolyse par les phosphodiestérases. Dans les<br />
cellules provenant d'épithéliums respiratoires, l'activité du canal CFTR sauvage est particulièrement sensible à<br />
l'activité de la phosphodiestérase de type III. L'inhibition de ce type de phosphodiestérase élève considérablement<br />
le niveau d'AMPc intracellulaire, entraînant une augmentation importante de l'efflux de chlorure (Kelley et al., 1995).<br />
Il est également possible d’activer le canal CFTR par des mécanismes indépendants de l’AMPc. Une étude menée<br />
dans des cellules provenant de carcinomes mammaires de souris C1<strong>27</strong>i, transfectées avec le gène codant pour le<br />
canal CFTR humain, a montré que l’ATP extra-cellulaire peut activer le transport de chlorure. <strong>La</strong> stimulation du<br />
canal CFTR par des analogues de l'ATP suggère une stimulation impliquant les récepteurs P2 purinergiques<br />
(Cantiello et al., 1994). Dans des cellules CFPAC transfectées avec le gène codant pour la protéine CFTR<br />
sauvage, il a été noté que le transport de chlorure est régulé par le récepteur P2y2, ainsi qu’une implication des<br />
récepteurs adénosine. Cependant, ces résultats ne peuvent pas exclure la possibilité d'une interaction directe de<br />
l'adénosine sur CFTR (O’Reilly et al, 1998).<br />
4 - CFTR et transport d'ATP : divergences sur le thème Ces dernières années une nouvelle hypothèse<br />
sur une des multiples fonctions attribuées à la protéine CFTR a été émise par les chercheurs des groupes de HF<br />
Cantiello, JF Engelhardt et WB Guggino, selon laquelle le canal CFTR serait perméant à l’ATP. Les observations<br />
montrent que les cellules qui expriment de manière endogène ou après transfection le canal CFTR (les cellules<br />
mammaires C1<strong>27</strong>i, pulmonaires Calu-3, pancréatiques CFPAC, ou encore intestinales T84 et Caco-2) sécrètent de<br />
l’ATP après activation de la voie de signalisation de l’AMPc. Dans le cas de la mutation dF508, ils ne constatent<br />
plus de sortie d’ATP stimulée par l'AMP cyclique. Le rôle physiologique attribué au transport d’ATP par CFTR est la<br />
régulation du pH intracellulaire et la libération d’acide arachidonique après activation de la voie de signalisation des<br />
récepteurs P2 purinergiques. Ces récepteurs de haute affinité à l’ATP sont exprimés dans de nombreux épithéliums<br />
et notamment dans ceux exprimant le canal CFTR (Cantiello et al., 1997).<br />
A l’inverse, un grand nombre de laboratoires montrent qu’indépendamment d’une sécrétion cellulaire d’ATP, il n’y a<br />
pas de conductance ATP dépendante de l’AMPc à travers le canal CFTR. <strong>La</strong> différence de sécrétion d'ATP en<br />
fonction de la présence ou de l’absence du canal CFTR dans les épithéliums, est provoquée par des stimulations<br />
mécaniques des cellules indépendamment du canal CFTR (Grygorczyk et Hanrahan, 1997; Watt et al., 1998). Par<br />
ailleurs, sur des cellules issues de systèmes épithéliaux non respiratoires, on ne retrouve pas de conductance<br />
unitaire ou macroscopique de l'ATP associée à CFTR. Enfin, des études sur des canaux CFTR incorporés dans<br />
des bicouches lipidiques (bilayer) montrent que ce canal ne transporte pas l'ATP (Li et al., 1996b).<br />
L’ensemble de ces résultats montrent que les mécanismes ou les régulations de la sécrétion ou du transport d'ATP,<br />
sont certainement très différents en fonction du type d'épithélium étudié. Une hypothèse avancée pour expliquer<br />
ces divergences est qu’un canal présent dans les solutions purifiées du canal CFTR, fonctionne comme une<br />
protéine transportant l'ATP. Deux possibilités sont alors avancées : 1°) un autre canal conduisant l'ATP de manière<br />
spécifique serait associé à CFTR dans ces vésicules, 2°) CFTR nécessiterait un signal additionnel ou des<br />
régulateurs qui permettraient le transport d'ATP (Schwiebert et al., 1999). Dans ce sens des études menées sur les<br />
cellules MDCK, démontrent la présence d'un canal ATP concomitant avec la présence du canal CFTR (Sujita et al.,<br />
1998).<br />
5 - Les autres types de perméabilités<br />
<strong>La</strong> complexité des mécanismes de régulation du canal CFTR et l’importance des dysfonctionnements observés<br />
dans les épithéliums de phénotypes CF, font émerger des hypothèses mettant en cause d’autres fonctions pour<br />
CFTR que le seul transport de chlorure.<br />
<strong>La</strong> perméabilité d’anions polyatomiques de taille connue, a été étudiée dans les cellules CHO transfectées de<br />
manière stable avec le gène CF humain codant pour le canal CFTR sauvage. Les anions polyatomiques testés du<br />
côté externe, donnent la séquence de perméabilité suivante NO3- > Cl - >HCO3-> formate> acétate. A l’inverse, le<br />
pyruvate, le propanoate, le méthane sulfonate, l'éthane sulfonate, et le gluconate ne sont pas perméants, quel que<br />
soit le côté de la membrane duquel ils sont testés. <strong>La</strong> perméabilité dépend de l'énergie d'hydratation des ions<br />
(Linsdell et al., 1997b).<br />
Le canal CFTR est également perméant au tripeptide glutathion : g-glutamyl-cystéinyl-glycine (GSH), qui<br />
représente l’antioxydant extra-cellulaire le plus abondant dans les poumons. Ils contiennent environ 400μM de<br />
GSH, ce qui représente cinquante fois la concentration trouvée dans le plasma et 100 fois celle trouvée dans les