Jánosi - Állatorvostudományi Doktori Iskola - Szent István Egyetem ...

More documents

Recommendations

Info

2. táblázat. A mintagyűjtés összesített adatai A mintavétel A minták A minták eredete időpontja helye száma állatfaj tüdő orr hüvely tasak 2006.09.21 Dalmand (D) a 47 szarvasmarha 47 2006.09.26 Tolnanémedi (T) 11 szarvasmarha 1 10 2006.10.04 Mezőkeresztes (M) 22 szarvasmarha 22 2006.11.14 Mohács (IV) 20 szarvasmarha 20 2006.11.20 Békés (B) 26 szarvasmarha 26 2006.12.15 Dabas (VI) 20 szarvasmarha 20 2007.02.20 Pápa (P1) 20 szarvasmarha 20 2007.03.20 Pápa (P2) 20 szarvasmarha 20 2007.04.17 Pápa (P3) 20 szarvasmarha 20 2007.05.22 Pápa (P4) 20 szarvasmarha 20 2007.09.21 Tarhos (VII) 9 szarvasmarha 9 2007.10.09 Nemesszalók (VIII) 7 szarvasmarha 6 2008.03.27 Sőlősardó (1) 40 kecske 20 20 2008.03.27 Zádorfalva (2) 40 kecske 20 19 1 2008.03.27 Kurityán (3) 40 kecske 20 20 2008.05.22 Abod (4) 50 kecske 25 24 1 2008.05.22 Szalonna (5) 32 kecske 16 15 1 2008.05.22 Szuhogy (6) 28 kecske 14 13 1 2008.09.18 Vámosújfalu (7) b 40 kecske 20 18 2 2008.09.18 Erdőbénye (8) b,c 60 kecske 30 26 4 2008.09.18 Baskó (9) b,c 34 kecske 17 14 2+1 d 2008.09.18 Baskó-Kőröshegy (10) b 46 kecske 23 22 1 Kecske eredetű minták 410 Szarvasmarha eredetű minták 242 Minták összesen 652 a a minták jelölését zárójelben tüntettük fel; b ivarzási szezonban mintázott kecskeállományok; c juhokkal közösen tartott kecskeállományok; d hermafrodita állat ivari nyílásából származó +1 minta 6.1.2 A H. somni előfordulásának vizsgálata kecskeállományokban A H. somni kecskeállományokban való jelenlétének igazolása érdekében a BAZ megyei MgSzH, Élelmiszerlánc-biztonsági és Állategészségügyi Igazgatóságával együttműködésben, 10 BAZ megyei kecskeállományban vettünk orr- és hüvely- vagy tasaktampon mintákat. Hat kecskeállomány 111 anyaállatából és 4 bakjából az ivarzási szezonon kívül eső időszakban gyűjtöttük orr- és genitális tamponmintákat, míg négy állományt az ivarzási szezonban mintáztunk meg. Az utóbbi négy állomány 80 anyakecskéjéből, 9 bakjából és 1 hermafrodita állatából az orr- és a hüvely-, vagy a tasak nyálkahártyáról gyűjtöttünk tamponmintákat. Az ivarzási szezonban mintázott állományok közül kettőt juhokkal közösen tartottak, ezekben 40 anyajuhot, 6 bakkecskét és 1 hermafrodita állatot vizsgáltunk. 6.2 A korábban izolált H. somni törzsek Tanszékünkön az elmúlt 25 évben izolált és a tanszék törzsgyűjteményében −80°C-on tárolt, Magyarország 7 megyéjének 10 szarvasmarha-állományából származó 33 borjú tüdő- és 40
orrnyálkahártya eredetű, valamint 6 juhállományból származó 25 ondó- és 2 here eredetű, primer tulajdonságai alapján H. somni-nak meghatározott baktériumtörzs állt rendelkezésünkre a vizsgálatokhoz. Ezenkívül 5, az MTA-ÁTKI által felajánlott H. somni törzset is tároltunk a gyűjteményben. A 2006 szeptembere előtt a tanszéki törzsgyűjteményben elhelyezett H. somni törzsek adatait az 1. és 2. függelék tartalmazza. Vizsgálómódszereink minőség-ellenőrzésére az ATCC-43625 és ATCC-700025 számú szarvasmarha agyvelőből és tüdőből származó H. somni törzseket vontuk be vizsgálatainkba. 6.3 A H. somni törzsek izolálása, azonosítása 6.3.1 A tampon- és szervminták tenyésztéses bakteriológiai vizsgálata A mintákat fiziológiás sóoldattal nedvesített, steril vattatamponokkal vettük, amelyeket a mintavételt követően hűtött körülmények között, 3 órán belül laboratóriumba szállítottunk. A szervmintákat az állat elhullása után hűtve, esetleg −20°C-ra fagyasztva tárolták a beküldő állatorvosok. A laboratóriumi vizsgálatra hűtött minták esetében 24 órán belül, fagyasztás esetén pedig 1 héten belül került sor. A H. somni izolálása érdekében a szarvasmarhából származó hüvelytamponmintákat, valamint a szervmintákból egy kacsnyi mennyiséget 10% juhvért tartalmazó közönséges agartáptalaj (1000 ml- ben: 5 g hús- és 5 g élesztőkivonat, 15 g pepton, 1 g glükóz, 3 g NaCl, 2,3 g Na2HPO4; Spektrum 3- D Kft., Magyarország) 20 perces 80°C-on történő hőkezelésével (Barrow és Feltham, 1993) elkészített CSA lemezekre oltottunk. Az orrtamponokat és a kecske genitális tamponmintákat 100 µg/ml ciklohexamidot tartalmazó (Slee és Stephens, 1985) CSA lemezekre szélesztettük. Az agarlemezeket 5% CO2 jelenlétében, 37°C-on 48 órán át inkubáltuk. A tenyésztési tulajdonságai, telepmorfológiája és pigmenttermelése alapján H. somni-ra emlékeztető baktériumtelepekből nyert színtenyészeteket morfológiai tulajdonságaik alapján, valamint elsődleges és másodlagos biokémiai módszerekkel vizsgáltuk. Az izolált törzseket 25% steril glicerint tartalmazó közönséges levestáptalajban szuszpendálva −80°C-on több példányban tároltuk. 6.3.2 A kórokozó azonosítása morfológiai és biokémiai tulajdonságai alapján A H. somni-szerű baktériumtörzsek genus-szintű meghatározása érdekében, morfológiai és biokémiai tulajdonságaikat klasszikus, standard bakteriológiai módszerek alkalmazásával vizsgáltuk (Barrow és Feltham, 1993). 41
Page 1 and 2: Szent István Egyetem Állatorvos-t
Page 3 and 4: Tartalom 1. Összefoglalás .......
Page 5 and 6: 8.1 A H. somni előfordulása hazai
Page 7 and 8: PFGE pulzáló mezejű gélelektrof
Page 9 and 10: A szénforrás-hasznosítási és a
Page 11 and 12: Examining the antimicrobial suscept
Page 13 and 14: 4. Célok Munkánk első célja az
Page 15 and 16: Actinobacillus csoportjától elkü
Page 17 and 18: munkacsoportja (1981) a primer teny
Page 19 and 20: Hemolizáló képesség A H. somni
Page 21 and 22: 5.7 A H. somni biokémiai tulajdons
Page 23 and 24: 5.7.2 Szénhidrátbontás Az 1. tá
Page 25 and 26: 129Pt törzs genomjában, míg a NA
Page 27 and 28: A H. somni által előidézett kór
Page 29 and 30: interlobularis sövények kifejezet
Page 31 and 32: 5.9.3 A kosok here- és mellékhere
Page 33 and 34: somni képes volt a monocyták phag
Page 35 and 36: 5.11 A H. somni jelentősebb antig
Page 37 and 38: somni törzsek antibiotikum-érzék
Page 39: 6. Anyagok és módszerek 6.1 Minta
Page 43 and 44: 6.3.4 A baktérium azonosítása a
Page 45 and 46: fordulatszámon (~15 000 rpm, ~20 0
Page 47 and 48: Dermedés után 1 ml lízispufferbe
Page 49 and 50: A homogén baktériumszuszpenziók
Page 51 and 52: 6.6.6 Kórbonctani vizsgálatok és
Page 53 and 54: A vizsgált antibiotikumok és az a
Page 55 and 56: 6.7.3 Az eredmények elbírálása,
Page 57 and 58: A 10 kecskeállományból származ
Page 59 and 60: 7.2 A H. somni törzsek azonosítá
Page 61 and 62: 7.2.4 Azonosítás a 16S rDNS rész
Page 63 and 64: 10. táblázat. A BIOLOG MICROSTATI
Page 65 and 66: 12. táblázat. A BIOLOG adatbázis
Page 67 and 68: 5. ábra. A szarvasmarha légzősze
Page 69 and 70: 7.4 A H. somni törzsek vizsgálata
Page 71 and 72: 7.5 A H. somni klinikai és kórtan
Page 73 and 74: 14. táblázat. A kísérleti és k
Page 75 and 76: A kontroll csoport állataiban a t
Page 77 and 78: Enrofloxacin Az enrofloxacin MIC é
Page 79 and 80: Tetraciklin A tetraciklin vizsgála
Page 81 and 82: megkönnyítette a más mikroorgani
Page 83 and 84: első vizsgálat során. Az ilyen i
Page 85 and 86: A két szarvasmarha eredetű csopor
Page 87 and 88: különböző időpontban (1995, 19
Page 89 and 90: ugyanakkor saját vizsgálataink so
Page 91 and 92:
H. somni törzsek kevésbé érzék
Page 93 and 94:
9. Új tudományos eredmények 1. M
Page 95 and 96:
13. Behling-Kelly, E., Vonderheid,
Page 97 and 98:
38. De Ley. J., Mannheim, W., Mutte
Page 99 and 100:
63. Hajtós, I.: Isolation of Actin
Page 101 and 102:
90. Kwiecien, J. M., Little, P. B.
Page 103 and 104:
116. Pritchard, D. G. and Macleod,
Page 105 and 106:
142. Stephens, L. R., Little, P. B.
Page 107 and 108:
167. Van Tonder, E. M.: Actinobacil
Page 109 and 110:
11. A témában megjelent tudomány
Page 111 and 112:
2. függelék A 2006 szeptembere el
Page 113 and 114:
4. függelék A 2006 szeptembere ut
Page 115 and 116:
8. függelék A szarvasmarha hüvel
show all

Jánosi - Állatorvostudományi Doktori Iskola - Szent István Egyetem ...

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

Delete template?

Save as template?