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8.2. Danksagung Danken möchte ich Prof. Dr. Jens Waschke für die Überlassung dieser Arbeit, sein Vertrauen in mich und seine konstruktive Kritik. Er hatte immer ein offenes Ohr für mich und ist für mich ein wahres Vorbild als Wissenschaftler. Besonderer Dank gilt meinem Betreuer Dr. Nicolas Schlegel. In unzähligen Stunden und Gesprächen unterstütze und förderte er mich. Er motivierte mich an frustrierenden Tagen und gab nötige Denkanstöße, um die Arbeit voran zu bringen. Seine Motivation und seine Neugier sind ansteckend und weckten in mir die Begeisterung für Forschung. Des Weiteren möchte ich mich beim Team der Anatomie III bedanken. Vor allem Frau Nadja Niedermeier und Frau Lisa Berberich die einem „kleinen“ Medizinstudenten das nötige Handwerkszeug beigebracht haben und die Atmosphäre im Labor durch ihre Herzlichkeit unvergleichlich gemacht haben. Frau Alexia Witchen und Veronika Heimbach für ihre Arbeit und ihre Unterstützung. Schließlich noch bei meinen Mitdoktoranden Wolfgang- Moritz Heupel, für seine Erklärung biochemischer Zusammenhänge und bei Alex, Franzi und Dominik für lustige Abende im Institut für Anatomie und Zellbiologie Entschuldigen möchte ich mich auch bei meinen Bundesbrüdern der KDStV Markomannia, die meine Erklärungen zu Rho und Caco2 Zellen an manchem Montagabend ertragen mussten. Ganz besonders danke ich meinen Eltern. Ohne sie wären das Studium der Medizin und meine Promotion nicht möglich gewesen. Sie waren immer ein Pol der Ruhe und Kraft in den letzten Jahren.
Letztlich gilt mein größter Dank meiner Freundin Juliane Rother. Sie musste für kleine Darmzellen einige Male auf mich verzichten und hat mich doch immer voll und ganz unterstützt.
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Aus dem Institut für Anatomie und
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Für Jule
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2.12. Statistische Auswertung 30 3.
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Abbildung 1: Histologische Schnitte
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Die Occludenskontakte werden von Cl
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Occludenskontaktproteine und damit
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mit dem Dsg2 bzw. Dsc der Nachbarze
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aufheben und damit die Rekrutierung
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Abbildung 3: Regulation der Rho-GTP
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damit zu einer verminderten Anzahl
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2. Material und Methoden 2.1. Zellk
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Deamidierung von Glutamin in Glutam
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2.3.2. Sekundärantikörper Tabelle
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Der Farbstoff Amidoschwarz 10B bind
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eine Horizontal-Blot-Kammer (Biorad
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ei 400 rpm und RT. Nach letztmalige
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2.9. Permeabilitätsmessung mittels
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zweimalig mit HBSS gewaschen und an
Seite 37 und 38: 3. Ergebnisse 3.1. Charakterisierun
Seite 39 und 40: Anschließend wurde untersucht welc
Seite 41 und 42: höheren Wert von 3.3 ± 0.19 cm/s*
Seite 43 und 44: Abbildung 11: Entwicklung von Zellz
Seite 45 und 46: durch die Wirkung des Antikörpers
Seite 47 und 48: Abbildung 13: ECIS (Veränderungen
Seite 49 und 50: 3.2.3 Applikation von Dsg2 ED verä
Seite 51 und 52: Abbildung 16: WB (Wirkungen von Dsg
Seite 53 und 54: Nach Inkubation mit CNF-1 für 3h (
Seite 55: Inaktivierung von Rac1 und RhoA dur
Seite 59 und 60: und RhoA führte zu einer signifika
Seite 61 und 62: erhöhten Permeabilität. Besonders
Seite 64 und 65: Abbildung 22: GLISA (Veränderung d
Seite 66 und 67: 4.1. Die Caco2 Zelllinie stellt ein
Seite 68 und 69: et al. publizierte Daten (Collins e
Seite 70 und 71: während die Immunfluoreszenz des A
Seite 72 und 73: isolierte Aktivitätssteigerung von
Seite 74 und 75: 5. Zusammenfassung Eine intakte Dar
Seite 76 und 77: 6. Literaturverzeichnis Adams, C. L
Seite 78 und 79: embryonic development and prolifera
Seite 80 und 81: Hunziker, W., T. K. Kiener, and J.
Seite 82 und 83: Nava, P., M. G. Laukoetter, A. M. H
Seite 84 und 85: Sun, D., L. X. Yu, et al. (2004). "
Seite 86 und 87: 8. Anhang 8.1. Abkürzungsverzeichn
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