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Effets de l’entraînement

Glycogène(n) - Activités Physiques Adaptées

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<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />

1. Sur les phosphagènes à hautes énergie :<br />

A. Stocks : Pas d’effets sur ATP<br />

Entr. haute intensité [PCr]<br />

Pas <strong>de</strong> modif. pour la déplétion<br />

B. Activités enzymatiques :<br />

MyosATPase : Endurance rien<br />

Force et sprint activité<br />

Viru 1994<br />

Créatine Kinase : avec entr. Force et sprint<br />

Ross et Leveritt 2001


<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />

1. Sur la glycogénolyse et glycolyse :<br />

A. Stocks : Endurance, sprint, force +++<br />

B. Activités enzymatiques :<br />

Glycogène synthétase +++<br />

Glycogène phosphorylase : sprint +++<br />

endurance rien Ross et Leveritt 2001<br />

PFK : endurance (haute intensité), sprint, force +++ (Jacobs 1987)<br />

endurance (faible intensité rien) Gillespie 1982<br />

LDH : endurance activité totale fibres II<br />

modification <strong>de</strong> rapport H/M <br />

sprint activité totale (amélioration du potentiel glycolytique)


<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />

Insuline<br />

µU.ml -1<br />

20<br />

10<br />

1. Sur la glycogénolyse et glycolyse :<br />

C. Adaptations hormonales :<br />

Diminution mois marquée <strong>de</strong> l’insulinémie<br />

Augmentation moindre du glucagon et <strong>de</strong>s catécholamines<br />

Épargne du glycogène musculaire<br />

Entraînés<br />

Non Entraînés<br />

Deuster et coll. 1989<br />

Exo max : moindre Insuline<br />

Favorable oxydation lipi<strong>de</strong>s<br />

aux hautes intensités<br />

0<br />

35 45 60 75<br />

100 % VO 2max


<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />

2. Sur les oxydations mitochondriales :<br />

A. Masse mitochondriale et contrôle respiratoire<br />

Entraînement :<br />

<strong>de</strong>nsité mitochondriale : endurance : +++<br />

sprint : +<br />

Densité mitochondriale contrôle respiratoire<br />

balance <strong>de</strong>s substrats énergétiques<br />

B. Activités enzymatiques<br />

Faible intensité : enzymes oxydatives +++ fibres lentes<br />

Forte intensité : fibres oxydatives et glycolytiques<br />

Intensité optimale : seuil ventilatoire (Dudley et coll. 1982)<br />

au <strong>de</strong>là : --- pour les fibres oxydatives


<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />

2. Sur les oxydations mitochondriales :<br />

C. Spécifiques à l’oxydation <strong>de</strong>s lipi<strong>de</strong>s<br />

ng/ml<br />

3<br />

2,8<br />

2,6<br />

2,4<br />

2,2<br />

2<br />

1,8<br />

1,6<br />

1,4<br />

Noradrénaline plasmatique<br />

0 1 2 3 4 5 6 7<br />

Semaines d'entraînement<br />

Entraînement en endurance :<br />

+++ sensibilité <strong>de</strong>s β1-récepteurs<br />

sécrétion d’insuline<br />

lactatémie<br />

favorise la mobilisation <strong>de</strong>s lipi<strong>de</strong>s


<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />

2. Sur les oxydations mitochondriales :<br />

C. Spécifiques à l’oxydation <strong>de</strong>s lipi<strong>de</strong>s : exercice modéré (30-65 %VO 2max<br />

)<br />

Composition <strong>de</strong> la dépense<br />

énergétique totale<br />

%<br />

100<br />

80<br />

60<br />

40<br />

20<br />

0<br />

gluci<strong>de</strong>s<br />

lipi<strong>de</strong>s<br />

Nonentraîné<br />

entraîné<br />

Intensité : 40 VO 2<br />

max%<br />

Oxydation lipidique :<br />

Pour une même int. Absolue<br />

Pour une même int. relative


<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />

2. Sur les oxydations mitochondriales :<br />

C. Spécifiques à l’oxydation <strong>de</strong>s lipi<strong>de</strong>s :<br />

Captation totale <strong>de</strong> palmitate exogène(nmol nmol.g tissu -1 )<br />

Repos<br />

• 20 tetatni/min<br />

Entraînement :<br />

- 8 sem. à 80-85% 85% VO 2max<br />

CS : +100% dans soléaire<br />

et gastrocnémien<br />

Captation totale <strong>de</strong> Palmitate<br />

uniquement à l’exercice<br />

Devenir :<br />

- estérification : pools MG,<br />

DG, TG, et PL<br />

- oxydation mitochondriale<br />

sé<strong>de</strong>ntaires<br />

entraînés<br />

(d’après Dyck et coll, , 2000)


<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />

Palmitate esterification<br />

Repos<br />

• 20 tetatni/min<br />

b a<br />

ab<br />

Estérification pool TG (+71%)<br />

au repos comme à l’exo;<br />

Oxydation (30%) après entr.<br />

Épargne <strong>de</strong>s stocks <strong>de</strong> TG musc<br />

Résultats contradictoires chez l’homme<br />

Palmitate oxydation<br />

b<br />

ab<br />

Rappel : in vivo [catécho]pl<br />

Dépendance stocks endogènes<br />

limitation <strong>de</strong> la disponibilité ?<br />

sé<strong>de</strong>ntaires<br />

entraînés<br />

(d’après Dyck et coll, , 2000)


<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />

Modélisation <strong>de</strong> l’utilisation <strong>de</strong>s substrats énergétiques à l’exercice<br />

le concept <strong>de</strong> « crossover »<br />

« A tout moment la fourniture énergétique dépend <strong>de</strong>s effets combinés<br />

<strong>de</strong> l’intensité <strong>de</strong> l’exercice et <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong>. »<br />

60<br />

lipi<strong>de</strong>s<br />

100<br />

Lipi<strong>de</strong>s (%)<br />

50<br />

40<br />

30<br />

20<br />

10<br />

gluci<strong>de</strong>s<br />

entraînement<br />

SNS<br />

90<br />

80<br />

70<br />

60<br />

50<br />

Gluci<strong>de</strong>s (%)<br />

repos 20 40 60 80 100<br />

Intensité (% <strong>de</strong> VO 2 max)<br />

(D’après Brooks et Mercier, 1994)


Interprétation :<br />

L’entraînement en endurance favorise l’utilisation <strong>de</strong>s<br />

lipi<strong>de</strong>s mais seulement à intensité faible à modérée<br />

A haute intensité, les gluci<strong>de</strong>s restent le substrat<br />

majeur<br />

recrutement <strong>de</strong> fibres glycolytiques<br />

libération massive <strong>de</strong> Ca ++<br />

<strong>de</strong> la stimulation par le SNS


La théorie du « glycogen shunt »<br />

Admis <strong>de</strong>puis <strong>de</strong>s années :<br />

La production <strong>de</strong> lactate reflète un déficit <strong>de</strong>s cellules en O2<br />

Exception à cette règle :<br />

Oxydations mitochondriales inchangées en présence <strong>de</strong> lactate<br />

NIS : oxygénation adéquate même à haute intensité<br />

Quel est le rôle du glycogène à l’exercice ?<br />

- Contenu augmenté : performance améliorée<br />

- corrélation entre apparition <strong>de</strong> la fatigue et niveau <strong>de</strong> glycogène musculaire<br />

Rôle du glycogène en présence d’une glycémie stable ( captation <strong>de</strong> glucose) ?<br />

Lien s entre la déplétion en glycogène et la fatigue ?<br />

Holloszy and Khort (1996):<br />

« Why is muscle glycogène necessary for exercise of mo<strong>de</strong>rate<br />

and high intensities ? »


Les faits expérimentaux<br />

Cycle <strong>de</strong> la contraction musculaire :<br />

- Vitesse fibre dépendante : glycolytique >> oxydative<br />

- 10 – 40 ms : problème <strong>de</strong> rapidité en fourniture d’ATP<br />

‣ Existence d’un turnover <strong>de</strong> glycogène à l’exercice :<br />

Etu<strong>de</strong> 13 C et 31 P à ~20% force maximal <strong>de</strong> contraction :<br />

utilisation nette <strong>de</strong> glycogène au début <strong>de</strong> l’exercice<br />

puis pério<strong>de</strong> d’état stable .<br />

Supplémentation en 13 C :<br />

déplétion et resynthèse simultanées pendant l’état stable !


Les faits expérimentaux<br />

Mécanismes <strong>de</strong> cette resynthèse :<br />

perfusion <strong>de</strong> glucose 13 C pendant la phase constante :<br />

‣ Pas <strong>de</strong> changement <strong>de</strong> vitesse <strong>de</strong> la glycolyse dans les 2 phases<br />

‣ Incorporation du glucose en glycogène.<br />

Rôle <strong>de</strong> la PCr dans la contraction :<br />

‣ vue conventionnelle :<br />

‣ PCr = énergie pendant 10 secon<strong>de</strong>s, suivie <strong>de</strong> la glycolyse<br />

Faux : la déplétion <strong>de</strong> PCr et activation <strong>de</strong> la glycolyse : même temps


Les faits expérimentaux<br />

RMN 31P avec temps résolution <strong>de</strong> 1 ms :<br />

Conséquences :<br />

‣ [ATP] i<strong>de</strong>ntique durant toute la contraction (100 ms)<br />

‣[PCr] à 3 µg/g/contraction tissu avec t 1/2<br />

= 8 ms !<br />

‣ retour niveau basal [PCr] avec t 1/2<br />

= 14 ms<br />

‣ durée du cycle ~ 40ms (


Les faits expérimentaux<br />

‣ relaxation : 3 mM <strong>de</strong> PCr sont resynthétisées, impliquant :<br />

‣ qu’au moins 1.5 mM <strong>de</strong> glycogène / contraction sont consommées<br />

‣ Or, chez le rat : concentration basale <strong>de</strong> glycogène : 70 mM<br />

‣ déplétion totale en quelques contractions<br />

Traitement à l’aci<strong>de</strong> –guanidino propionic<br />

déplétion <strong>de</strong> PCr musculaire <strong>de</strong> 90 %<br />

Gastrocnémien-plantaris : contractions tétaniques <strong>de</strong> 1s<br />

Spectres RMN obtenus à 0.2, 0.4, 0.7, et 0.95 s :<br />

Résultats :<br />

À 0.2s pas <strong>de</strong> changement <strong>de</strong> la [PCr]<br />

Atténuation du signal moins rapi<strong>de</strong> chez les contrôles


Les faits expérimentaux<br />

Estimation <strong>de</strong> l’ATP nécessaire pendant 1 s : 3 mM<br />

[glucose] trop basse pour avoir pu fournir l’ATP<br />

seule source possible : glycogène<br />

Souris mutantes (-/-) en CPK, contraction isotonique<br />

<strong>de</strong> la vitesse <strong>de</strong> contraction : 20 %<br />

puissance maximale : 16 %<br />

travail : 30 %<br />

temps limite : 40%


Les faits expérimentaux<br />

Maladie <strong>de</strong> MacArdle : déficience en glycogène phosphorylase<br />

intolérance à l’effort, crampes précoces<br />

Au repos :<br />

Concentration normales <strong>de</strong> PCr, ATP et Pi<br />

pH musculaire : 7.2<br />

A l’exercice :<br />

Chute <strong>de</strong> PCr<br />

pH reste élevé<br />

Sujets normaux, pour une même déplétion en PCr :<br />

PH : production <strong>de</strong> lactate<br />

Production inférieure <strong>de</strong> lactate :<br />

Captation et dégradation <strong>de</strong> glucose insuffisante


En résumé<br />

Séquence chronologique :<br />

Étape 1 :0-15 ms : Utilisation <strong>de</strong> la PCr pour reformer les stocks d’ATP dégradés<br />

Net :<br />

3ATP 3ADP + 3Pi<br />

3PCr + 3ADP 3ATP + 3Cr<br />

3PCr 3Cr + 3Pi<br />

Étape 2 : 15-100 ms : dégradation du glycogène et glucose pour reformer<br />

les stocks <strong>de</strong> PCr :<br />

Glycogène(n+1) + Pi glycogène(n) + G6P<br />

G6P + 3ADP + 2Pi 2 lactate + 3ATP<br />

3Cr + 3ATP 3ADP + 3PCr<br />

Net :<br />

3Cr + 3Pi + Glycogène(n+1) glycogène(n) + 3PCr + 2lactate


En résumé<br />

Étape 3 : resynthèse du glycogène à partir du lactate (voie oxydative)<br />

Glycogène(n) + glucose + 2ATP glycogène(n+1) + 2ADP + 2Pi<br />

2lactate + 0.6 O 2<br />

+ 2ADP + 2Pi 0.6 CO 2<br />

+ 2ATP + 0.6 H 2<br />

O + 1.8 lactate<br />

Somme <strong>de</strong>s trois étapes :<br />

Glucose + 0.6 O 2<br />

0.6 CO 2<br />

+ 0.6 H 2<br />

O + 1.8 lactate


Supplémentation – Régimes - Performance<br />

I. Les régimes riches en lipi<strong>de</strong>s<br />

Disciplines visées : les sports d’endurance (ultra-endurance)<br />

BUT<br />

épargne du glycogène musculaire (opposition charge en gluci<strong>de</strong>s)<br />

(corrélé avec l’apparition <strong>de</strong> la fatigue musculaire)<br />

Rappel : <strong>l’entraînement</strong> en endurance l’oxydation lipidique à même me int.<br />

Durée <strong>de</strong> régime : 1 à 3 jours<br />

Résultats<br />

<strong>de</strong>s stocks hépatiques et musculaire s <strong>de</strong> glycogène<br />

Du QR à l’exercice<br />

Mais pas d’augmentation d<br />

suffisante d’oxydation d<br />

lipi<strong>de</strong>s<br />

pas <strong>de</strong> bénéfices b<br />

sur la performance en endurance


Durée du régime en lipi<strong>de</strong>s : <strong>de</strong> 7 à 28 jours :<br />

Permet d’augmenter les oxydations lipidiques à l’exercice<br />

Permet l’épargne <strong>de</strong> glycogène musculaire …<br />

Mais pas <strong>de</strong> bénéfice systématique dans les étu<strong>de</strong>s<br />

significative oxydation lipidique après 5 jours seulement<br />

Régime alternatifs : surcharge lipidique puis glucidique :<br />

But : augmenter les oxydations lipidiques et restaurer les niveaux <strong>de</strong> glycogène<br />

Peu d’étu<strong>de</strong>s mais<br />

:<br />

Durée suffisante pour l’oxydation lipidique (5- 7 jours)<br />

1-33 jours CHO charge permet <strong>de</strong> restaurer [glyco[<br />

glyco.]m/h<br />

Permet une épargne <strong>de</strong> glyco. . musculaire à l’exercice


Mécanismes :<br />

Des stocks <strong>de</strong> lipi<strong>de</strong>s intramusculaires (IMTG)<br />

De certaines enzymes u métabolisme m<br />

oxydatif lipidique:<br />

‣ β-HADH<br />

‣ CPT-1<br />

‣ PDH<br />

Question :<br />

Pourquoi la performance n’est pas systématique ?<br />

Métho<strong>de</strong> d’évaluation en laboratoire : multiples protocoles<br />

Adjonction <strong>de</strong> gluci<strong>de</strong>s durant les épreuves d’endurance (apport suffisant?)<br />

Théorie <strong>de</strong>s « répondant » et « non-répondant<br />

»<br />

Compétition entre substrats : inhibition <strong>de</strong> l’oxydation du glycogène<br />

effectuer une évaluation sur <strong>de</strong>s intensités élevées (>85 % VO 2max )


II. Les régimes riches en gluci<strong>de</strong>s<br />

Le régime dissocié scandinave : la surcompensation<br />

Jour <strong>de</strong><br />

compétition<br />

J-7<br />

Alimentation<br />

Normale<br />

Entraînement<br />

Prolongé (3h)<br />

[Glycogène]<br />

ne] musc<br />

Glycogène<br />

synthase<br />

J-6 6 à J-4J<br />

Lipido-protidique<br />

protidique<br />

L 70% - P 20%- G 10%<br />

1/2 h à 1h<br />

Mais …<br />

J-3 3 à J-1J<br />

Glucidique<br />

(pain, riz, pommes <strong>de</strong><br />

terre, semoule, pâtes)<br />

G 75% - P17 % - L 7%<br />

Repos<br />

- Mal toléré<br />

- Gain non systématique<br />

J-1<br />

Normale<br />

Repos<br />

Jour J<br />

compétition<br />

Petit déjeuner normal<br />

3h avant la<br />

compétition


Étu<strong>de</strong>s spécifiques au métabolisme lactique à l’exercice.


Diminution <strong>de</strong> la concentration en lactate musculaire et MCTs<br />

Green et al. 2002<br />

Background<br />

L’entraînement en endurance :<br />

Freine l’utilisation <strong>de</strong>s phosphates à hautes énergie : PCr<br />

Augmente le contrôle respiratoire : meilleur rapport ADP / O<br />

Besoin <strong>de</strong> moins d’oxygène pour utiliser la même qté. . d’ADP<br />

Réduit la déplétion glycogénique souvent accompagnée d’une<br />

réduction <strong>de</strong> la conc. . lactate musculaire<br />

Hypothèse explicative métabolique :<br />

L’entr. [ADP] f , [AMP] f et Pi puissants stimulateurs <strong>de</strong> PHOS et PFK


But <strong>de</strong> l’étu<strong>de</strong><br />

Vérifier que les adaptations du métabolisme lactique<br />

sont indépendantes <strong>de</strong>s adaptations métabolique induites<br />

par <strong>l’entraînement</strong> en endurance à long terme<br />

Méthodologie<br />

• 1 seule séance d’entrainement <strong>de</strong> 5-65<br />

6 h à 60% VO2max<br />

• Exercices <strong>de</strong> 15 min à 60% VO2max à 2, 4, 6 jours <strong>de</strong> la séance d’entr.<br />

Enzyme du métabolisme oxydatif et glycolytique<br />

Conc. . Lactate musculaire<br />

Mesures :<br />

Volume plasmatique, catécholamines<br />

PCr et [ATP] f<br />

MCT1 et MCT4


Résultats (mesures après les 15 mn d’exercice)<br />

Pas <strong>de</strong> variation<br />

Activités CS HAD MDH et HK<br />

Concentration en adrénaline<br />

Volume plasmatique à 2 , 4, 6 jours après ent.<br />

Lactate musculaire


Résultats (suite)<br />

Temps , jours<br />

Pré<br />

Post-2<br />

Post-4<br />

Post-6<br />

MCT1<br />

100<br />

121 ± 6.2 *<br />

143 ± 11 *<br />

114 ± 9.3 *<br />

MCT4<br />

100<br />

120 ± 8.3 *<br />

137 ± 14 *<br />

114 ± 9.8 *<br />

* Significativement différent / pré<br />

du nombre <strong>de</strong> transporteurs du lactate à 2, 4 et 6 jours après


Discussion<br />

La <strong>de</strong> [Lac] musculaire intervient sans modifications :<br />

- <strong>de</strong> la conc. . <strong>de</strong>s composés phosphorés à haute énergie (ATP et PCr)<br />

- <strong>de</strong> l’utilisation <strong>de</strong> glycogène musculaire<br />

- <strong>de</strong>s activités enzymatiques glycolytiques et oxydatives (HK, MDH, HAD)<br />

Question :<br />

Comment peut s’expliquer une diminution <strong>de</strong> la [Lac]m<br />

sans modification <strong>de</strong> l’utilisation <strong>de</strong> glycogène musculaire ?<br />

Diminution <strong>de</strong> l’utilisation <strong>de</strong> glucose sanguin, malgré l’hypervolémie<br />

Pas <strong>de</strong> variation même après 5 jours d’entr. . en endurance


Conclusion<br />

La diminution <strong>de</strong> la [Lac]m est probablement due aux effets<br />

combinés <strong>de</strong> l’augmentation du nombre <strong>de</strong> transporteurs<br />

du lactate et <strong>de</strong> l’hypervolémie

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