Effets de l’entraînement
Glycogène(n) - Activités Physiques Adaptées
Glycogène(n) - Activités Physiques Adaptées
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<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />
1. Sur les phosphagènes à hautes énergie :<br />
A. Stocks : Pas d’effets sur ATP<br />
Entr. haute intensité [PCr]<br />
Pas <strong>de</strong> modif. pour la déplétion<br />
B. Activités enzymatiques :<br />
MyosATPase : Endurance rien<br />
Force et sprint activité<br />
Viru 1994<br />
Créatine Kinase : avec entr. Force et sprint<br />
Ross et Leveritt 2001
<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />
1. Sur la glycogénolyse et glycolyse :<br />
A. Stocks : Endurance, sprint, force +++<br />
B. Activités enzymatiques :<br />
Glycogène synthétase +++<br />
Glycogène phosphorylase : sprint +++<br />
endurance rien Ross et Leveritt 2001<br />
PFK : endurance (haute intensité), sprint, force +++ (Jacobs 1987)<br />
endurance (faible intensité rien) Gillespie 1982<br />
LDH : endurance activité totale fibres II<br />
modification <strong>de</strong> rapport H/M <br />
sprint activité totale (amélioration du potentiel glycolytique)
<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />
Insuline<br />
µU.ml -1<br />
20<br />
10<br />
1. Sur la glycogénolyse et glycolyse :<br />
C. Adaptations hormonales :<br />
Diminution mois marquée <strong>de</strong> l’insulinémie<br />
Augmentation moindre du glucagon et <strong>de</strong>s catécholamines<br />
Épargne du glycogène musculaire<br />
Entraînés<br />
Non Entraînés<br />
Deuster et coll. 1989<br />
Exo max : moindre Insuline<br />
Favorable oxydation lipi<strong>de</strong>s<br />
aux hautes intensités<br />
0<br />
35 45 60 75<br />
100 % VO 2max
<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />
2. Sur les oxydations mitochondriales :<br />
A. Masse mitochondriale et contrôle respiratoire<br />
Entraînement :<br />
<strong>de</strong>nsité mitochondriale : endurance : +++<br />
sprint : +<br />
Densité mitochondriale contrôle respiratoire<br />
balance <strong>de</strong>s substrats énergétiques<br />
B. Activités enzymatiques<br />
Faible intensité : enzymes oxydatives +++ fibres lentes<br />
Forte intensité : fibres oxydatives et glycolytiques<br />
Intensité optimale : seuil ventilatoire (Dudley et coll. 1982)<br />
au <strong>de</strong>là : --- pour les fibres oxydatives
<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />
2. Sur les oxydations mitochondriales :<br />
C. Spécifiques à l’oxydation <strong>de</strong>s lipi<strong>de</strong>s<br />
ng/ml<br />
3<br />
2,8<br />
2,6<br />
2,4<br />
2,2<br />
2<br />
1,8<br />
1,6<br />
1,4<br />
Noradrénaline plasmatique<br />
0 1 2 3 4 5 6 7<br />
Semaines d'entraînement<br />
Entraînement en endurance :<br />
+++ sensibilité <strong>de</strong>s β1-récepteurs<br />
sécrétion d’insuline<br />
lactatémie<br />
favorise la mobilisation <strong>de</strong>s lipi<strong>de</strong>s
<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />
2. Sur les oxydations mitochondriales :<br />
C. Spécifiques à l’oxydation <strong>de</strong>s lipi<strong>de</strong>s : exercice modéré (30-65 %VO 2max<br />
)<br />
Composition <strong>de</strong> la dépense<br />
énergétique totale<br />
%<br />
100<br />
80<br />
60<br />
40<br />
20<br />
0<br />
gluci<strong>de</strong>s<br />
lipi<strong>de</strong>s<br />
Nonentraîné<br />
entraîné<br />
Intensité : 40 VO 2<br />
max%<br />
Oxydation lipidique :<br />
Pour une même int. Absolue<br />
Pour une même int. relative
<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />
2. Sur les oxydations mitochondriales :<br />
C. Spécifiques à l’oxydation <strong>de</strong>s lipi<strong>de</strong>s :<br />
Captation totale <strong>de</strong> palmitate exogène(nmol nmol.g tissu -1 )<br />
Repos<br />
• 20 tetatni/min<br />
Entraînement :<br />
- 8 sem. à 80-85% 85% VO 2max<br />
CS : +100% dans soléaire<br />
et gastrocnémien<br />
Captation totale <strong>de</strong> Palmitate<br />
uniquement à l’exercice<br />
Devenir :<br />
- estérification : pools MG,<br />
DG, TG, et PL<br />
- oxydation mitochondriale<br />
sé<strong>de</strong>ntaires<br />
entraînés<br />
(d’après Dyck et coll, , 2000)
<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />
Palmitate esterification<br />
Repos<br />
• 20 tetatni/min<br />
b a<br />
ab<br />
Estérification pool TG (+71%)<br />
au repos comme à l’exo;<br />
Oxydation (30%) après entr.<br />
Épargne <strong>de</strong>s stocks <strong>de</strong> TG musc<br />
Résultats contradictoires chez l’homme<br />
Palmitate oxydation<br />
b<br />
ab<br />
Rappel : in vivo [catécho]pl<br />
Dépendance stocks endogènes<br />
limitation <strong>de</strong> la disponibilité ?<br />
sé<strong>de</strong>ntaires<br />
entraînés<br />
(d’après Dyck et coll, , 2000)
<strong>Effets</strong> <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong><br />
Modélisation <strong>de</strong> l’utilisation <strong>de</strong>s substrats énergétiques à l’exercice<br />
le concept <strong>de</strong> « crossover »<br />
« A tout moment la fourniture énergétique dépend <strong>de</strong>s effets combinés<br />
<strong>de</strong> l’intensité <strong>de</strong> l’exercice et <strong>de</strong> <strong>l’entraînement</strong>. »<br />
60<br />
lipi<strong>de</strong>s<br />
100<br />
Lipi<strong>de</strong>s (%)<br />
50<br />
40<br />
30<br />
20<br />
10<br />
gluci<strong>de</strong>s<br />
entraînement<br />
SNS<br />
90<br />
80<br />
70<br />
60<br />
50<br />
Gluci<strong>de</strong>s (%)<br />
repos 20 40 60 80 100<br />
Intensité (% <strong>de</strong> VO 2 max)<br />
(D’après Brooks et Mercier, 1994)
Interprétation :<br />
L’entraînement en endurance favorise l’utilisation <strong>de</strong>s<br />
lipi<strong>de</strong>s mais seulement à intensité faible à modérée<br />
A haute intensité, les gluci<strong>de</strong>s restent le substrat<br />
majeur<br />
recrutement <strong>de</strong> fibres glycolytiques<br />
libération massive <strong>de</strong> Ca ++<br />
<strong>de</strong> la stimulation par le SNS
La théorie du « glycogen shunt »<br />
Admis <strong>de</strong>puis <strong>de</strong>s années :<br />
La production <strong>de</strong> lactate reflète un déficit <strong>de</strong>s cellules en O2<br />
Exception à cette règle :<br />
Oxydations mitochondriales inchangées en présence <strong>de</strong> lactate<br />
NIS : oxygénation adéquate même à haute intensité<br />
Quel est le rôle du glycogène à l’exercice ?<br />
- Contenu augmenté : performance améliorée<br />
- corrélation entre apparition <strong>de</strong> la fatigue et niveau <strong>de</strong> glycogène musculaire<br />
Rôle du glycogène en présence d’une glycémie stable ( captation <strong>de</strong> glucose) ?<br />
Lien s entre la déplétion en glycogène et la fatigue ?<br />
Holloszy and Khort (1996):<br />
« Why is muscle glycogène necessary for exercise of mo<strong>de</strong>rate<br />
and high intensities ? »
Les faits expérimentaux<br />
Cycle <strong>de</strong> la contraction musculaire :<br />
- Vitesse fibre dépendante : glycolytique >> oxydative<br />
- 10 – 40 ms : problème <strong>de</strong> rapidité en fourniture d’ATP<br />
‣ Existence d’un turnover <strong>de</strong> glycogène à l’exercice :<br />
Etu<strong>de</strong> 13 C et 31 P à ~20% force maximal <strong>de</strong> contraction :<br />
utilisation nette <strong>de</strong> glycogène au début <strong>de</strong> l’exercice<br />
puis pério<strong>de</strong> d’état stable .<br />
Supplémentation en 13 C :<br />
déplétion et resynthèse simultanées pendant l’état stable !
Les faits expérimentaux<br />
Mécanismes <strong>de</strong> cette resynthèse :<br />
perfusion <strong>de</strong> glucose 13 C pendant la phase constante :<br />
‣ Pas <strong>de</strong> changement <strong>de</strong> vitesse <strong>de</strong> la glycolyse dans les 2 phases<br />
‣ Incorporation du glucose en glycogène.<br />
Rôle <strong>de</strong> la PCr dans la contraction :<br />
‣ vue conventionnelle :<br />
‣ PCr = énergie pendant 10 secon<strong>de</strong>s, suivie <strong>de</strong> la glycolyse<br />
Faux : la déplétion <strong>de</strong> PCr et activation <strong>de</strong> la glycolyse : même temps
Les faits expérimentaux<br />
RMN 31P avec temps résolution <strong>de</strong> 1 ms :<br />
Conséquences :<br />
‣ [ATP] i<strong>de</strong>ntique durant toute la contraction (100 ms)<br />
‣[PCr] à 3 µg/g/contraction tissu avec t 1/2<br />
= 8 ms !<br />
‣ retour niveau basal [PCr] avec t 1/2<br />
= 14 ms<br />
‣ durée du cycle ~ 40ms (
Les faits expérimentaux<br />
‣ relaxation : 3 mM <strong>de</strong> PCr sont resynthétisées, impliquant :<br />
‣ qu’au moins 1.5 mM <strong>de</strong> glycogène / contraction sont consommées<br />
‣ Or, chez le rat : concentration basale <strong>de</strong> glycogène : 70 mM<br />
‣ déplétion totale en quelques contractions<br />
Traitement à l’aci<strong>de</strong> –guanidino propionic<br />
déplétion <strong>de</strong> PCr musculaire <strong>de</strong> 90 %<br />
Gastrocnémien-plantaris : contractions tétaniques <strong>de</strong> 1s<br />
Spectres RMN obtenus à 0.2, 0.4, 0.7, et 0.95 s :<br />
Résultats :<br />
À 0.2s pas <strong>de</strong> changement <strong>de</strong> la [PCr]<br />
Atténuation du signal moins rapi<strong>de</strong> chez les contrôles
Les faits expérimentaux<br />
Estimation <strong>de</strong> l’ATP nécessaire pendant 1 s : 3 mM<br />
[glucose] trop basse pour avoir pu fournir l’ATP<br />
seule source possible : glycogène<br />
Souris mutantes (-/-) en CPK, contraction isotonique<br />
<strong>de</strong> la vitesse <strong>de</strong> contraction : 20 %<br />
puissance maximale : 16 %<br />
travail : 30 %<br />
temps limite : 40%
Les faits expérimentaux<br />
Maladie <strong>de</strong> MacArdle : déficience en glycogène phosphorylase<br />
intolérance à l’effort, crampes précoces<br />
Au repos :<br />
Concentration normales <strong>de</strong> PCr, ATP et Pi<br />
pH musculaire : 7.2<br />
A l’exercice :<br />
Chute <strong>de</strong> PCr<br />
pH reste élevé<br />
Sujets normaux, pour une même déplétion en PCr :<br />
PH : production <strong>de</strong> lactate<br />
Production inférieure <strong>de</strong> lactate :<br />
Captation et dégradation <strong>de</strong> glucose insuffisante
En résumé<br />
Séquence chronologique :<br />
Étape 1 :0-15 ms : Utilisation <strong>de</strong> la PCr pour reformer les stocks d’ATP dégradés<br />
Net :<br />
3ATP 3ADP + 3Pi<br />
3PCr + 3ADP 3ATP + 3Cr<br />
3PCr 3Cr + 3Pi<br />
Étape 2 : 15-100 ms : dégradation du glycogène et glucose pour reformer<br />
les stocks <strong>de</strong> PCr :<br />
Glycogène(n+1) + Pi glycogène(n) + G6P<br />
G6P + 3ADP + 2Pi 2 lactate + 3ATP<br />
3Cr + 3ATP 3ADP + 3PCr<br />
Net :<br />
3Cr + 3Pi + Glycogène(n+1) glycogène(n) + 3PCr + 2lactate
En résumé<br />
Étape 3 : resynthèse du glycogène à partir du lactate (voie oxydative)<br />
Glycogène(n) + glucose + 2ATP glycogène(n+1) + 2ADP + 2Pi<br />
2lactate + 0.6 O 2<br />
+ 2ADP + 2Pi 0.6 CO 2<br />
+ 2ATP + 0.6 H 2<br />
O + 1.8 lactate<br />
Somme <strong>de</strong>s trois étapes :<br />
Glucose + 0.6 O 2<br />
0.6 CO 2<br />
+ 0.6 H 2<br />
O + 1.8 lactate
Supplémentation – Régimes - Performance<br />
I. Les régimes riches en lipi<strong>de</strong>s<br />
Disciplines visées : les sports d’endurance (ultra-endurance)<br />
BUT<br />
épargne du glycogène musculaire (opposition charge en gluci<strong>de</strong>s)<br />
(corrélé avec l’apparition <strong>de</strong> la fatigue musculaire)<br />
Rappel : <strong>l’entraînement</strong> en endurance l’oxydation lipidique à même me int.<br />
Durée <strong>de</strong> régime : 1 à 3 jours<br />
Résultats<br />
<strong>de</strong>s stocks hépatiques et musculaire s <strong>de</strong> glycogène<br />
Du QR à l’exercice<br />
Mais pas d’augmentation d<br />
suffisante d’oxydation d<br />
lipi<strong>de</strong>s<br />
pas <strong>de</strong> bénéfices b<br />
sur la performance en endurance
Durée du régime en lipi<strong>de</strong>s : <strong>de</strong> 7 à 28 jours :<br />
Permet d’augmenter les oxydations lipidiques à l’exercice<br />
Permet l’épargne <strong>de</strong> glycogène musculaire …<br />
Mais pas <strong>de</strong> bénéfice systématique dans les étu<strong>de</strong>s<br />
significative oxydation lipidique après 5 jours seulement<br />
Régime alternatifs : surcharge lipidique puis glucidique :<br />
But : augmenter les oxydations lipidiques et restaurer les niveaux <strong>de</strong> glycogène<br />
Peu d’étu<strong>de</strong>s mais<br />
:<br />
Durée suffisante pour l’oxydation lipidique (5- 7 jours)<br />
1-33 jours CHO charge permet <strong>de</strong> restaurer [glyco[<br />
glyco.]m/h<br />
Permet une épargne <strong>de</strong> glyco. . musculaire à l’exercice
Mécanismes :<br />
Des stocks <strong>de</strong> lipi<strong>de</strong>s intramusculaires (IMTG)<br />
De certaines enzymes u métabolisme m<br />
oxydatif lipidique:<br />
‣ β-HADH<br />
‣ CPT-1<br />
‣ PDH<br />
Question :<br />
Pourquoi la performance n’est pas systématique ?<br />
Métho<strong>de</strong> d’évaluation en laboratoire : multiples protocoles<br />
Adjonction <strong>de</strong> gluci<strong>de</strong>s durant les épreuves d’endurance (apport suffisant?)<br />
Théorie <strong>de</strong>s « répondant » et « non-répondant<br />
»<br />
Compétition entre substrats : inhibition <strong>de</strong> l’oxydation du glycogène<br />
effectuer une évaluation sur <strong>de</strong>s intensités élevées (>85 % VO 2max )
II. Les régimes riches en gluci<strong>de</strong>s<br />
Le régime dissocié scandinave : la surcompensation<br />
Jour <strong>de</strong><br />
compétition<br />
J-7<br />
Alimentation<br />
Normale<br />
Entraînement<br />
Prolongé (3h)<br />
[Glycogène]<br />
ne] musc<br />
Glycogène<br />
synthase<br />
J-6 6 à J-4J<br />
Lipido-protidique<br />
protidique<br />
L 70% - P 20%- G 10%<br />
1/2 h à 1h<br />
Mais …<br />
J-3 3 à J-1J<br />
Glucidique<br />
(pain, riz, pommes <strong>de</strong><br />
terre, semoule, pâtes)<br />
G 75% - P17 % - L 7%<br />
Repos<br />
- Mal toléré<br />
- Gain non systématique<br />
J-1<br />
Normale<br />
Repos<br />
Jour J<br />
compétition<br />
Petit déjeuner normal<br />
3h avant la<br />
compétition
Étu<strong>de</strong>s spécifiques au métabolisme lactique à l’exercice.
Diminution <strong>de</strong> la concentration en lactate musculaire et MCTs<br />
Green et al. 2002<br />
Background<br />
L’entraînement en endurance :<br />
Freine l’utilisation <strong>de</strong>s phosphates à hautes énergie : PCr<br />
Augmente le contrôle respiratoire : meilleur rapport ADP / O<br />
Besoin <strong>de</strong> moins d’oxygène pour utiliser la même qté. . d’ADP<br />
Réduit la déplétion glycogénique souvent accompagnée d’une<br />
réduction <strong>de</strong> la conc. . lactate musculaire<br />
Hypothèse explicative métabolique :<br />
L’entr. [ADP] f , [AMP] f et Pi puissants stimulateurs <strong>de</strong> PHOS et PFK
But <strong>de</strong> l’étu<strong>de</strong><br />
Vérifier que les adaptations du métabolisme lactique<br />
sont indépendantes <strong>de</strong>s adaptations métabolique induites<br />
par <strong>l’entraînement</strong> en endurance à long terme<br />
Méthodologie<br />
• 1 seule séance d’entrainement <strong>de</strong> 5-65<br />
6 h à 60% VO2max<br />
• Exercices <strong>de</strong> 15 min à 60% VO2max à 2, 4, 6 jours <strong>de</strong> la séance d’entr.<br />
Enzyme du métabolisme oxydatif et glycolytique<br />
Conc. . Lactate musculaire<br />
Mesures :<br />
Volume plasmatique, catécholamines<br />
PCr et [ATP] f<br />
MCT1 et MCT4
Résultats (mesures après les 15 mn d’exercice)<br />
Pas <strong>de</strong> variation<br />
Activités CS HAD MDH et HK<br />
Concentration en adrénaline<br />
Volume plasmatique à 2 , 4, 6 jours après ent.<br />
Lactate musculaire
Résultats (suite)<br />
Temps , jours<br />
Pré<br />
Post-2<br />
Post-4<br />
Post-6<br />
MCT1<br />
100<br />
121 ± 6.2 *<br />
143 ± 11 *<br />
114 ± 9.3 *<br />
MCT4<br />
100<br />
120 ± 8.3 *<br />
137 ± 14 *<br />
114 ± 9.8 *<br />
* Significativement différent / pré<br />
du nombre <strong>de</strong> transporteurs du lactate à 2, 4 et 6 jours après
Discussion<br />
La <strong>de</strong> [Lac] musculaire intervient sans modifications :<br />
- <strong>de</strong> la conc. . <strong>de</strong>s composés phosphorés à haute énergie (ATP et PCr)<br />
- <strong>de</strong> l’utilisation <strong>de</strong> glycogène musculaire<br />
- <strong>de</strong>s activités enzymatiques glycolytiques et oxydatives (HK, MDH, HAD)<br />
Question :<br />
Comment peut s’expliquer une diminution <strong>de</strong> la [Lac]m<br />
sans modification <strong>de</strong> l’utilisation <strong>de</strong> glycogène musculaire ?<br />
Diminution <strong>de</strong> l’utilisation <strong>de</strong> glucose sanguin, malgré l’hypervolémie<br />
Pas <strong>de</strong> variation même après 5 jours d’entr. . en endurance
Conclusion<br />
La diminution <strong>de</strong> la [Lac]m est probablement due aux effets<br />
combinés <strong>de</strong> l’augmentation du nombre <strong>de</strong> transporteurs<br />
du lactate et <strong>de</strong> l’hypervolémie