Protokoll 1 (Wallner)
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Modul Immunologie Januar 2013<br />
2. Indirekter Sandwich-ELISA<br />
Einleitung<br />
In diesem Versuch möchten wir den prozentuellen Anteil an Bet v 1 im Birkenpollenextrakt<br />
herausfinden.<br />
Material und Methoden<br />
Geräte<br />
Pipetten (10er, 200er, 1000er)<br />
Eppendorf-Gefäße (1,5ml)<br />
96er well Polystyrol Mikrotiterplatte (Nunc Maxisorp)<br />
Medien und Lösungen<br />
Genaue Zusammensetzung siehe Praktikumsunterlagen zum Übungsteil <strong>Wallner</strong>, Modul Immunologie 2013<br />
Capture Antibody (BIP-1, c=1,8mg/ml in PBS)<br />
Rabbit Anti Bet v 1 Antibody (c=1µg/ml in TBST<br />
Goat Anti Rabbit Antibody (c=1µg/ml in TBST)<br />
Phosphate buffered saline (PBS)<br />
Tris-buffered saline (TBS), ph 7.4, 0,05% Tween-20<br />
0,5% Rinderserumalbumin (BSA), TBS ph 7.4, 0,05% Tween-20<br />
Substratlösung (4-NAG in Diethanolamin)<br />
Durchführung<br />
1. Coating:<br />
Verdünnen des Capture-Antikörpers auf auf ein Endvolumen 1,4ml und einer<br />
Konzentration c=2µg/ml mit PBS<br />
=<br />
Endvolumen entspricht 1,5 µl BIP-1 für 1,4 ml Lösung<br />
Überführen von jeweils 50 µl in insgesamt 24 wells der Mikrotiterplatte<br />
2. Inkubation für 20h bei 4°C<br />
3. Waschen:<br />
Ableeren der Antikörperlösung durch schwungvolles Umdrehen der Mikrotiterplatte<br />
Zweimaliges Waschen mit 200µl TBS pro Well<br />
Das Enzymdetektionssystem, das wir in diesem Experiment benutzen wird durch<br />
Phosphatgruppen im Puffer inhibiert, deswegen benutzen wir in den folgenden<br />
Schritten einen Tris-Puffer.<br />
4. Blockieren:<br />
Zugabe von 200µl 0,5% BSA, TBS pro Well.<br />
Wobei Tween -20 Plastik- Proteinbindungen blockiert und BSA den Effekt zusätzlich<br />
verstärkt, so dass restliche Bindestellen abgedeckt werden und nur noch der<br />
Antikörper als Interaktionsfläche vorhanden ist.<br />
Universität Salzburg 5 / 13