Lokalisation von mRNA-Transkripten auf Gewebeschnitten des ...

Weitere Magazine

Empfehlungen

Info

Ergebnisse Abb.12: Nachweis von mRNA-Transkripten des Best-2-Proteins im olfaktorischen Epithel durch ISH: BCIP/NBT-Färbung coronaler Nasengewebeschnitte. ORN: olfaktorische Rezeptorneuron, SZ: Stützzelle, OE: olfaktorisches Epithel, BL: Basallamina, BD: Bowman´sche Drüse, (Sondenmenge: ca. 300 ng/Schnitt) 44
Ergebnisse Zusätzlich zu den Signalen in den ORNs sind aber auch Färbungen im respiratorischen Epithel nachweisbar (Abb.13). (A) zeigt den Übergang des olfaktorischen in das respiratorische Epithel bei schwacher Vergrößerung. Rechts der Trennlinie kann man die gefärbten Neurone des olfaktorischen Epithels von den farblosen Stützzellen unterscheiden, links sind basal und apikal im respiratorischen Epithel Färbungen sichtbar. In (B) ist ebenfalls das respiratorische Epithel zu sehen, allerdings ist die rote Färbung etwas diffuser im Epithel verteilt, so dass keine Aussage über zellspezifische Färbungen im RE möglich ist. In (C) ist die Färbung wieder spezifischer in Zellen oberhalb der Basallamina beziehungsweise im apikalen Bereich des Epithels zu erkennen. Allerdings kann auch hier kein Zelltyp der Färbung zugeordnet werden. Bei hohen Vergrößerungen (D)-(F) sind wieder deutliche Färbungen sowohl basal als auch apikal des Epithels, aber nicht median, zu erkennen. Zusammenfassend lässt sich sagen, dass die Färbung im olfaktorischen Epithel eindeutig ORNs und im respiratorischen Epithel keinem speziellen Zelltypen zugeordnet werden kann, allerdings sind die Zellen knapp über der Basallamina, bei denen es sich um Basalzellen handelt, farblos. 45
Seite 1 und 2: Lokalisation von mRNA-Transkripten
Seite 3 und 4: Ich erkläre hiermit, dass ich die
Seite 5 und 6: Inhaltsverzeichnis Inhaltsverzeichn
Seite 7 und 8: 1 Einleitung 1.1 Die Nasenhöhle de
Seite 9 und 10: Einleitung Die Basalzellen sind kle
Seite 11 und 12: Einleitung olfaktorius projizieren.
Seite 13 und 14: Einleitung Der Ca 2+ -gesteuerte Cl
Seite 15 und 16: 2.2 Verbrauchsmaterialien Deckgläs
Seite 17 und 18: 2.5.2 Puffer und Lösungen für die
Seite 19 und 20: Hybridisierungspuffer 25 % 5 x SSC
Seite 21 und 22: pGEM ® -T Easy Promega 2.8 Primer
Seite 23 und 24: K13 5’ CCA GTT CAC ACT CAA GCC TA
Seite 25 und 26: Material und Methoden Gelatinebad g
Seite 27 und 28: 2.11 Molekularbiologische Methoden
Seite 29 und 30: 2.11.5 Die cDNA-Synthese Material u
Seite 31 und 32: 2.11.8 Klonierung • Klonieren von
Seite 33 und 34: 2.11.10 DNA-Sequenzierung Material
Seite 35 und 36: Tab. 7: Hergestellte RNA-Sonden als
Seite 37 und 38: 2.11.15 Bilddokumentation Material
Seite 39 und 40: Ergebnisse Dem gegenüber stehen Ge
Seite 41 und 42: 3.1.1 OMP als Marker für reife olf
Seite 43 und 44: 3.1.2 CNG-A2 als Marker für reife
Seite 45 und 46: 3.1.3 Das Golf-Protein als Marker f
Seite 47 und 48: 3.1.4 Crb-2 als Marker für Stützz
Seite 49: Ergebnisse 3.2 Bestrophin-2 als mö
Seite 53 und 54: 3.3 Negativkontrollen zu den in sit
Seite 55 und 56: Diskussion Färbungen. Sonden, die
Seite 57 und 58: Diskussion amine-associated recepto
Seite 59 und 60: 5 Zusammenfassung Zusammenfassung D
Seite 61 und 62: Literaturverzeichnis Borisy F.F., R
Seite 63 und 64: Literaturverzeichnis Firestein S.,
Seite 65 und 66: Literaturverzeichnis Kleene S.J.; H
Seite 67 und 68: Literaturverzeichnis Pixley S.K., F
Seite 69 und 70: Literaturverzeichnis Zigman J.M., W
Seite 71: ORN Olfaktorische Rezeptor-Neurone

Lokalisation von mRNA-Transkripten auf Gewebeschnitten des ...

Erfolgreiche ePaper selbst erstellen

Template löschen?

Als Template speichern?