peste porcina clasica: diagnostico y caracterizacion ... - Inicio - CENSA

Debido a la presencia de lipoproteínas en su envoltura, el virus se inactiva rápidamente
con solventes orgánicos como cloroformo y éter, así como con detergentes, como Nonidet
P-40, desoxicolato y saponina. También, es sensible a la acción de radiaciones
ultravioletas y a pH entre 3-4 y entre 11-12 (Terpstra, 1991). La infectividad se pierde
fácilmente sometiendo al virus a la temperatura de 60°C durante un mínimo de 10 min o a
una temperatura menor si se aumenta el tiempo de exposición, por ejemplo 56°C por 60
min, 50°C por 3 días o 35°C durante 15 días (Terpstra, 1991). Las enzimas proteolíticas
como la tripsina ejercen una inactivación moderada de la infectividad (Liess, 1981).
El virus es muy estable en un amplio rango de pH que va desde 5 hasta 10 (Terpstra,
1991), a temperaturas de -20°C y -70°C y liofilizado. La inactivación del virus se alcanza
con hipoclorito al 2%, cresol al 6%, fenol al 5% e hidróxido de sodio al 2% (Moennig y
Plagemann, 1992).
La supervivencia del virus en la naturaleza depende tanto del medio ambiente como del
sustrato en que se encuentre (sangre, saliva, heces). Es relativamente resistente a la
desecación, sobre todo, cuando se encuentra protegido en exudados, sangre, saliva o
heces. Debido a la supervivencia del virus en un amplio rango de pH , la acidez cadavérica
no lo destruye, por lo que se conserva durante un tiempo variable en carnes frescas,
ahumadas y congeladas (Helwig y Keast, 1966; Stewart y col., 1979). La estabilidad del
virus es de particular importancia práctica, porque el tiempo relativamente largo de
sobrevivencia en productos cárnicos contribuye a la diseminación del mismo y a la
aparición de brotes de la enfermedad en áreas libres de PPC (Terpstra, 1991).
Las primeras investigaciones sobre el virus de la PPC estuvieron dirigidas hacia la
identificación y caracterización del ácido núcleico viral y describieron que el genoma viral
es una molécula de ARN de banda simple, con polaridad positiva y coeficiente de
sedimentación de 40-45s (Enzmann, 1988). Estudios previos, que emplearon
electroforesis en geles de agarosa después de marcajes metabólicos, representaron una