Sem título-1

CAPÍTULO VIII
SOLOS, NUTRIÇÃO E ADUBAÇÃO
Ana Lúcia Borges
Arlene Maria Gomes Oliveira
Luciano da Silva Souza
INTRODUÇÃO
Solos, nutrição e adubação
A utilização de solos de baixa fertilidade e a não-manutenção dos níveis
adequados de nutrientes durante o ciclo da planta (mãe-filho-neto) são fatores
responsáveis pela baixa produtividade da cultura da bananeira. Geralmente, as
quantidades de fertilizantes aplicadas não atendem satisfatoriamente à nutrição
da planta. E, sendo a bananeira uma cultura exigente em nutrientes, é portanto
necessário fornecê-los à planta em quantidades e épocas apropriadas, a fim de
que ela produza economicamente.
Na maioria das vezes, o desconhecimento do solo cultivado e,
principalmente, da exigência nutricional da cultura leva a práticas de preparo,
manejo e adubações inadequadas que afetarão significativamente o
desenvolvimento e a produtividade da bananeira.
Desta maneira, acredita-se que o conhecimento e a utilização de tecnologias
adequadas e disponíveis para a cultura poderão contribuir para melhoria das
condições necessárias a o desenvolvimento da bananeira, proporcionando
maiores rendimentos com menores custos.
A cultura da banana
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Solos, nutrição e adubação
SOLO
Preparo do solo
De maneira geral, o preparo do solo visa a melhorar as suas condições físicas
para o crescimento das raízes, mediante o aumento da aeração e da infiltração
de água e redução da resistência do solo ao crescimento das raízes; visa também
ao controle do mato. O adequado preparo do solo permite o uso mais eficiente
dos corretivos de acidez, dos fertilizantes e de outras práticas agronômicas.
Cuidados no preparo do solo
a) alternar o tipo de implemento e a profundidade de trabalho - o uso de
implementos com diferentes mecanismos de corte do solo (por exemplo:
arado de disco, arado de aiveca, etc.) e em diferentes profundidades é
importante para minimizar os riscos de formação de camadas compactadas
e de degradação do solo;
b) revolver o solo o mínimo possível - a quebra excessiva dos torrões, pulverizando
o solo, deixa-o mais sujeito ao aparecimento de crostas superficiais e, em
conseqüência, à erosão;
c) trabalhar o solo em condição adequada de umidade - o preparo do solo com
excesso de umidade permite maiores riscos de compactação, além de o solo
aderir aos implementos, dificultando o trabalho; o preparo com o solo
muito seco forma grandes torrões, exigindo maior número de gradagens
para destorroá-lo; a condição ideal de umidade é com o solo friável, ou
seja, o solo deve apresentar umidade suficiente para não levantar poeira e
não aderir aos implementos;
d) deixar o máximo de resíduos vegetais sobre a superfície do terreno - os resíduos
evitam ou reduzem o impacto das gotas de chuva na superfície do solo,
diminuindo a degradação da sua estrutura; também constituem um
impedimento ao fluxo das enxurradas, reduzindo a sua velocidade e, em
conseqüência, a sua capacidade de desagregação e de transporte de solo.
Na cultura da banana, o preparo da área para plantio pode ser feito
manualmente ou usando máquinas.
No caso do preparo manual, inicialmente é feita a limpeza da área,
executando-se a derrubada ou roçagem do mato, destoca, encoivaramento e
queima das coivaras; o preparo do solo restringe-se ao coveamento manual.
Em áreas com vegetação arbórea, pode-se efetuar a destoca gradativa ano a
ano, após o plantio, tendo-se o cuidado de que as árvores caídas não obstruam
os canais de drenagem naturais ou artificiais e que não interfiram nas possíveis
linhas de plantio. Os resíduos das árvores podem durar bastante tempo em
decomposição, podendo ocasionar distúrbios nas operações de cultivo e colheita
198
A cultura da banana

Solos, nutrição e adubação
da planta. Este sistema tradicional tem como vantagens não perturbar
demasiadamente o solo e manter a matéria orgânica distribuída uniformemente
sobre o solo (Soto Ballestero, 1992).
No caso do preparo mecanizado, a limpeza da área pode ser feita por
máquinas, tendo-se o cuidado de não remover a camada superficial do solo,
que é rica em matéria orgânica; em seguida é feita a aração, gradagem e o
coveamento ou sulcamento para plantio (Soto Ballestero, 1992).
Áreas que vêm sendo cultivadas com pastagens ou que apresentam subsolos
compactados ou adensados devem ser subsoladas a 50-70 cm de profundidade
(Stover & Simmonds, 1987). Godefroy (1967) observou efeitos benéficos da
subsolagem em bananeira, em um solo que apresentava uma camada adensada
a 30-35 cm de profundidade, fazendo com que o sistema radicular da cultura
penetrasse mais profundamente no solo; em solos sem problemas de camadas
compactadas a subsolagem não mostrou efeito positivo. Estes resultados
confirmam a importância de observar o perfil do solo como um todo, e não
apenas as camadas superficiais.
Como a maioria das raízes da bananeira localiza-se nos primeiros 20 a 40
cm de profundidade, a aração deve ser no mínimo a 20 cm, ou mais profunda,
se possível. Em áreas declivosas deve-se reduzir o uso de máquinas, a fim de
evitar a aceleração do processo de erosão do solo (Belalcázar Carvajal, 1991).
Em todos os casos, devem-se usar máquinas e implementos o menos pesado
possível e executar as operações sempre acompanhando as curvas de nível do
terreno (Soto Ballestero, 1992).
Em áreas sujeitas a encharcamentos deve-se estabelecer um bom sistema
de drenagem. Os excessos continuados de umidade no solo por mais de três
dias promovem perdas irreparáveis no sistema radicular, com reflexos negativos
na produção da cultura. Por esta razão, os solos cultivados com banana devem
ter uma boa drenagem interna, para que os excessos de umidade sejam drenados
rapidamente e que o nível do lençol freático mantenha-se a 1,80 m de
profundidade, no mínimo. No planejamento de um sistema de drenagem
devem-se considerar as condições climáticas, em especial o regime de
precipitação. Como fatores ligados ao solo devem-se avaliar topografia, textura,
estrutura, porosidade total, macro e microporosidade, capacidade de retenção
de água e permeabilidade dos diferentes horizontes do solo, o que permitirá
determinar a presença de camadas impermeáveis ou pouco permeáveis, a quais
influenciarão a altura do nível freático dentro do perfil (Soto Ballestero, 1992).
Manejo e conservação do solo
O princípio básico da conservação do solo deve ser o de manter a rentabilidade
do solo próxima à da sua condição original, ou recuperá-lo, se é baixa a sua
produtividade, usando para isto sistemas de manejo capazes de controlar a
A cultura da banana
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Solos, nutrição e adubação
ação dos agentes condicionantes do processo erosivo e dos agentes responsáveis
pela degradação do solo (Cintra, 1988).
O cultivo comercial de banana deve ser feito de preferência em terrenos
planos, por várias razões, entre as quais o menor desgaste do solo produzido
pelos implementos e máquinas agrícolas e a não-formação de focos de erosão,
tão comuns em áreas de declive (Alves et al., 1986).
No entanto, a maioria dos plantios de banana localiza-se em áreas com
declividade acentuada, representando a situação mais observada nas principais
regiões produtoras do País. Por este motivo, a conservação do solo na cultura
da bananeira assume grande importância como prática de cultivo,
principalmente no primeiro ciclo da cultura, quando o solo permanece
descoberto durante grande parte do ano (Alves et al., 1986). Neste particular,
a cobertura do solo é uma prática bastante recomendável, pois, sabe-se que,
isoladamente, é a que mais responde pelo controle da erosão, além de outros
efeitos benéficos.
A proteção do solo de um bananal com coberturas vegetais (vivas ou mortas)
tem como objetivo evitar o impacto das gotas de chuva no solo e manter os
teores de matéria orgânica em níveis elevados por toda a vida útil do bananal.
Evitar o impacto das gotas de chuva sobre a superfície do solo assume
importância fundamental, tendo em vista a localização da maioria dos bananais
em áreas com declive acentuado. Manter níveis elevados de matéria orgânica
proporciona ao solo melhores níveis e maiores disponibilidades de nutrientes,
além de mantê-lo com umidade satisfatória por todo o ano, evitando os estresses
hídricos tão prejudiciais à bananeira (Cintra, 1988). A cobertura do solo
também reduz o custo com capinas.
Por serem mínimas as reservas hídricas da bananeira, as plantas são obrigadas
a equilibrar constantemente, pela absorção radicular, as perdas de água por
transpiração (Aubert, 1968). Quando são submetidas a estresses de água, os
estômatos fecham-se durante o dia, impedindo a atividade fotossintética, o
que resulta em atraso do ciclo vegetativo e do crescimento dos órgãos florais.
Outro efeito marcante dos períodos de déficit hídrico é o ressecamento
acelerado das folhas mais velhas, fazendo com que, no início do florescimento,
as plantas tenham duas ou três folhas funcionais a menos do que nos períodos
de umidade normal (Soto Ballestero, 1992).
Segundo Braga (1984), em todas as fases de desenvolvimento da bananeira
a deficiência temporária de umidade no solo causa sérios danos à planta, em
face da alta sensibilidade dessa espécie às variações de temperatura e umidade.
No período vegetativo, a falta de água afeta a taxa de desenvolvimento das
folhas; no florescimento, limita o crescimento e o número de frutos; e no
período de formação do cacho, afeta o tamanho e o enchimento dos frutos.
200
A cultura da banana

Solos, nutrição e adubação
Estes aspectos são particularmente importantes na região Nordeste do Brasil,
que responde por parte expressiva da produção de banana do País. Esta região
caracteriza-se por apresentar déficits hídricos entre os meses de novembro e
março, tornando necessária a suplementação de água, para garantir as
necessidades da cultura e uma produtividade satisfatória (Manica et al., 1975).
Como, na grande maioria dos casos, não são adotados cuidados especiais
visando à suplementação de água nos períodos secos, ocorrem flutuações na
produção e, conseqüentemente, nos preços, além da má qualidade do produto
comercializado.
Nas condições climáticas do Nordeste do Brasil, para manter o solo com
umidade adequada por todo o ciclo da bananeira é necessário o uso da irrigação
convencional ou a utilização de práticas alternativas capazes de manter a
umidade do solo próxima à capacidade de campo. A adoção da irrigação em
grande escala é pouco provável por ser a maioria dos bananicultores pequenos
produtores, descapitalizados e com acesso limitado ao crédito. Diante disto, a
utilização de espécies vegetais como plantas de cobertura ou melhoradoras do
solo ou o uso de cobertura morta com resíduos vegetais podem ser soluções
alternativas para os estresses hídricos a que são submetidos os bananais desta
região, o que também protege as áreas contra a erosão e degradação do solo
(Cintra, 1988).
Plantas melhoradoras do solo
Um grande número de espécies vegetais pode ser utilizado como plantas
melhoradoras do solo. Dentre elas destacam-se as leguminosas, pela
característica que têm em obter a quase totalidade do nitrogênio de que
necessitam por meio da simbiose com bactérias específicas, as quais, ao se
associarem com as leguminosas, utilizam o nitrogênio atmosférico,
transformando-o em compostos nitrogenados (Sprague, 1975). A preferência
pelo uso das leguminosas como plantas melhoradoras do solo é função não só
da fixação simbiótica, mas também por possuírem raízes geralmente bem
ramificadas e profundas, que atuam estabilizando a estrutura do solo (Miyasaka
et al., 1983).
De maneira geral, o uso de leguminosas como plantas melhoradoras do
solo pode ocorrer sob três formas: 1) como adubo verde, cujo objetivo principal
é o enriquecimento do solo com o nitrogênio proveniente da simbiose;
2) como plantas de cobertura, visando a diminuir os efeitos do impacto das
gotas de chuva sobre o solo; e 3) como plantas recuperadoras de solos
degradados pelo cultivo intensivo. A utilização de uma ou outra planta
melhoradora do solo atende aos três objetivos citados, com maior ou menor
intensidade (Cintra, 1988).
A cultura da banana
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Solos, nutrição e adubação
Com relação à cultura da banana, Hernandez (1979) citou as seguintes
características desejáveis de uma planta para cobertura vegetal: 1) produção
de sementes de boa viabilidade; 2) deve ser perene; 3) deve tolerar alta
precipitação pluvial; 4) boa adaptação ao solo; 5) facilidade de manejo; 6)
persistência mesmo em locais onde caem folhas, talos e resíduos de colheita
da banana; 7) resistência a pragas e doenças; 8) competição com as plantas
daninhas; 9) tolerância ao sombreamento; 10) fixação de nitrogênio; 11)
adaptação às condições climáticas; e 12) compatibilidade com a bananeira.
Embora o autor não mencione, acredita-se que as características 2 e 3 acima
são importantes para regiões de alta precipitação pluvial; na região Nordeste
do Brasil, onde a bananeira é constantemente submetida a períodos de déficits
hídricos, é importante que a planta de cobertura do solo seja anual e tolere
condições de baixa pluviosidade, pois a presença de vegetação perene nas
entrelinhas do bananal, nos períodos secos, poderá exercer elevada competição
por água, com reflexos negativos na produção. Todas estas características,
atuando em conjunto, refletirão em melhor controle da erosão, aumento dos
teores de matéria orgânica, maior retenção de umidade, menor aplicação de
fertilizantes, controle de plantas daninhas e hospedeiras de pragas e doenças
e, em conseqüência, menor utilização de defensivos.
Estudando os efeitos de diferentes manejos do solo em pomar de bananeira
‘Prata’, em Cruz das Almas (BA), Cintra (1982) observou melhor
comportamento das coberturas vegetais realizadas com feijão-de-porco
(Canavalia ensiformes) e leucena (Leucaena leucocephala), considerando-se os
dados de vigor da planta na floração (Tabela 1). As coberturas vegetais com
Crotalaria retusa, soja perene (Glycine javanica) e vegetação natural ceifada
periodicamente tiveram um comportamento inferior às anteriormente citadas.
Tabela 1. Diâmetro do pseudocaule e altura da planta nos diferentes manejos
de solo estudados em pomar de bananeira, no florescimento, em
Cruz das Almas, BA.
Tratamento Diâmetro do pseudocaule Altura da planta
(cm) (m)
Cobertura morta 19,4 2,9
Herbicida 17,2 2,4
Leucena 16,1 2,3
Capina manual 16,0 2,3
Crotalaria retusa 15,4 2,2
Soja perene 15,3 2,2
Cobertura natural 13,9 2,2
Feijão-de-porco 17,1 2,7
Fonte: Cintra (1982).
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A cultura da banana

Solos, nutrição e adubação
Tomando-se como base o início do florescimento aos oito meses após o plantio,
verificou-se um percentual de plantas floradas de 33%, 22% e 22% em leucena,
soja perene e Crotalaria retusa, enquanto os tratamentos vegetação natural e
feijão-de-porco não apresentaram, nesta época, nenhuma planta florada.
Quanto à incidência da broca-do-rizoma (Cosmopolites sordidus), Mesquita et
al. (1983) observaram não haver diferença significativa no número de insetos
adultos coletados nas coberturas vegetais estudadas (feijão-de-porco, Crotalaria
retusa, Leucaena leucocephala, soja perene e cobertura natural), o mesmo
acontecendo quanto ao coeficiente de infestação da praga no primeiro seguidor
da bananeira.
No Espírito Santo, Salgado (1983) trabalhou com a associação de
leguminosas em plantios de banana, com o objetivo principal de reduzir a
erosão na implantação da cultura, pois os plantios são realizados em áreas
com declives acentuados; o aumento do teor de matéria orgânica do solo, a
redução da adubação nitrogenada pela fixação simbiótica do nitrogênio do ar
e a reciclagem de nutrientes dos horizontes mais profundos do solo foram
outros benefícios esperados. Ele observou um bom comportamento do guandu
(Cajanus cajan), destacando-se pela velocidade de crescimento, resistência ao
sombreamento e produção de massa verde. A leucena também teve um bom
comportamento, em função do porte arbustivo, sistema radicular pivotante e
boa produção de massa, apesar do lento desenvolvimento inicial, sendo sensível
ao ataque de formigas, nesta fase. O kudzu-tropical (Pueraria phaseoloides)
apresentou resistência ao sombreamento, eliminando a vegetação natural;
entretanto, devido à sua agressividade, competiu desfavoravelmente com a
cultura da banana, atrasando-lhe o ciclo.
Em um ensaio demonstrativo conduzido em Nazaré (BA), com a cultivar
‘Terra’, Cintra (1984) observou superioridade da cobertura do solo do bananal
com soja perene e com feijão-de-porco, em relação à capina manual (Tabela 2). Já
Borges (1991) não obteve efeito favorável do uso do feijão-de-porco quando
comparado com a capina, no primeiro ciclo da bananeira, acreditando que os
benefícios proporcionados pela leguminosa somente devem surgir após vários
anos, em função da decomposição da grande quantidade de massa seca
produzida e da presença de raízes bem ramificadas e profundas, que são
importantes na melhoria da estrutura do solo. Monnet (1953), testando o
efeito da cobertura do solo com leguminosas, em bananais, considerou o feijãode-porco
como das mais promissoras, por sua tolerância à sombra, pelo grande
volume de massa verde produzido e pelo porte ereto.
Enriquez et al. (1987a) observaram que o feijão-caupi (Vigna unguiculata)
mostrou-se menos sensível ao sombreamento, quando associado com a banana,
do que o feijão-comum (Phaseolus vulgaris). A mandioca resistiu mais ao
sombreamento da banana do que o milho, enquanto o abacaxi reduziu o
tamanho do fruto para a metade ou um pouco menos (Enriquez et al., 1987b).
A cultura da banana
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Solos, nutrição e adubação
Tabela 2. Variáveis avaliadas por ocasião da colheita em ensaio demonstrativo
conduzido em Nazaré (BA), com a cultivar ‘Terra’; primeiro ciclo,
planta-mãe.
Tratamento
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A cultura da banana
N o
de pencas
N o
de frutos
N o de
folhas
vivas
Peso do
cacho (kg)
Produção
média 1
(t/ha)
Cobertura morta 8,8 136,7 6,6 46,2 51,3
Soja perene 7,9 105,0 1,3 21,0 23,3
Feijão-de-porco 7,3 98,4 0,7 16,6 18,4
Capina 6,6 85,2 0,0 7,3 8,1
1 Densidade de 1.111 plantas/ha.
Fonte: Cintra (1984).
Ternisien (1988) avaliou os efeitos de diferentes rotações de cultura com a
banana, com o propósito de promover um sistema de cultivo menos frágil
que o monocultivo, o qual se caracterizava principalmente pela baixa no
rendimento e aumento na população de parasitas no solo. A rotação com
batata-doce e com gramíneas (cana-de-açúcar, Brachiaria decumbens e sorgo,
este em associação com siratro) proporcionou uma redução drástica na
população de Radopholus similis no solo. Quanto ao efeito no rendimento da
banana, o melhor resultado foi da rotação com sorgo + siratro, vindo em
seguida a cana-de-açúcar, braquiária e Desmodium distortum.
Segovia Santacruz & Tobón Cardona (1988) avaliaram os efeitos de
diferentes associações de cultivos com a banana, concluindo que a associação
com mandioca reduziu em 62,2% a produção da banana; quatro a sete sulcos
de feijão intercalados produziram igual efeito, enquanto dois sulcos de milho
ou de milho + feijão praticamente não afetaram a produção da banana.
Cobertura morta
A prática da cobertura morta do solo com resíduos vegetais já é bastante
utilizada em muitas regiões produtoras de banana, não só pela sua alta eficiência
na proteção contra a erosão e a redução da perda de água por evaporação, mas
também pela grande quantidade de nutrientes que adiciona ao solo, além de
reduzir os custos com capinas. Uma dificuldade ao amplo uso desta prática é
a disponibilidade de material vegetal para a cobertura do solo (Cintra, 1988).
A utilização da bananeira para formação da cobertura morta representa
uma fonte substancial de matéria orgânica, através dos resíduos constituídos
por toda a planta após a colheita do cacho, pelas folhas secas provenientes das

Solos, nutrição e adubação
desfolhas e pelos rizomas e raízes que se decompõem no solo. Contudo, devido
à sua decomposição acelerada, este volume de resíduos é insuficiente para a
formação de uma cobertura morta contínua e efetiva. Uma solução testada,
no CNPMF, consiste na implantação de um pequeno bananal, contíguo à área
de produção definitiva, para suprir os resíduos vegetais necessários à formação
de uma cobertura morta eficiente. Para tal, deve-se adensar ao máximo o plantio
e usar variedades regionais de crescimento rápido, de elevada produção de
massa verde e resistentes às principais pragas e doenças (Cintra, 1988).
Vários resultados de pesquisa têm demonstrado a alta eficiência da cobertura
morta no crescimento e na produção da bananeira (Tabelas 1, 2, 3 e 4), em
relação a outros sistemas de manejo.
Com relação à possibilidade da cobertura morta com resíduos da bananeira
propiciar condições mais favoráveis à multiplicação e ao ataque da broca, os
dados obtidos por Mesquita et al. (1983) mostraram semelhantes coeficientes
de infestação no rizoma das plantas entre os manejos testados. Embora o
número de insetos nas parcelas mantidas com cobertura morta tenha sido
maior, sugerindo que os adultos têm preferência pela parcela sob cobertura
morta, isto não implica que a postura seja feita nas plantas desta parcela.
Quanto aos efeitos no solo, resultados obtidos por Borges (1991), em
amostras de solo coletadas 18 meses após a instalação do ensaio, mostraram
que o uso da cobertura morta melhorou sensivelmente o nível de nutrientes
no solo, em especial os teores de K, Ca, soma de bases, CTC, saturação por
bases e matéria orgânica, com aumentos percentuais da ordem de 139%, 183%,
140%, 21%, 100% e 12%, em relação à capina (Tabela 5). Além disto, foram
observados teores mais altos de nutrientes nas folhas das bananeiras sob
cobertura morta, com exceção de N, Cu, Fe e Mn, com destaque para o teor
de K, maior em cerca de 94% em relação à capina (Tabela 6).
Com relação ao balanço de água no solo, realizado por Cintra (1988) em
Cruz das Almas (BA), nos meses de mais baixa precipitação (setembro a
dezembro), observou-se que a cobertura morta proporcionou ao solo maior
conservação da umidade, superior em 180% à da cobertura do solo com
vegetação natural e em 92% à do solo capinado manualmente (Figura 1).
EXIGÊNCIAS E ABSORÇÃO DE NUTRIENTES
A cultura da bananeira necessita de fertilização abundante, não só porque as
quantidades de elementos exportadas pelos frutos são elevadas, como também
porque os solos da maioria das regiões produtoras são normalmente pobres
em nutrientes, pois predominam caulinita, óxidos de ferro e alumínio, ou
seja, argilas de baixa atividade, além da acidez elevada. A bananeira extrai
grande quantidade de nutrientes do solo, superando várias culturas, dentre
elas as de cacau, feijão e mandioca (Tabela 7).
A cultura da banana
205

Solos, nutrição e adubação
Tabela 3. Variáveis avaliadas na época do florescimento e da colheita, em Cruz das Almas, BA. 1
206
A cultura da banana
1 Os dados representam as médias de duas cultivares (Prata e Prata Anã) e três espaçamentos (4 x 2 x 1,5m; 4 x 2 x 2,0m; 4 x 2 x 3,0m).
Fonte: Borges (1987).

Tabela 4. Variáveis avaliadas na cultivar Terra, em Nazaré, BA; 1982/1986.
1 Variáveis avaliadas no início do florescimento; as demais foram avaliadas na colheita.
Fonte: Cintra & Borges (1988).
Solos, nutrição e adubação
A cultura da banana
207

Solos, nutrição e adubação
Tabela 5. Resultados de análises do solo do ensaio com a cultivar Terra, em Nazaré, BA; primeiro ciclo, aos 18
meses após a instalação do ensaio.
208
A cultura da banana
Fonte: Borges (1991).

Solos, nutrição e adubação
Tabela 6. Resultados de análises da 3 a folha das bananeiras do ensaio com
a cultivar Terra, em Nazaré (BA); primeiro ciclo, aos 18 meses após
a instalação do ensaio.
Fonte: Borges (1991).
N P K Ca Mg Cu Fe Mn Zn
Tratamentos % ppm
Capina 3,01 0,16 1,49 0,65 0,33 18,7 207 1.439 32,9
Cobertura morta 2,87 0,17 2,89 0,69 0,38 18,2 195 697 36,4
Quantidades absorvidas e teores na planta
Estudos sobre extração de nutrientes pela bananeira mostram que o potássio
e o nitrogênio são os nutrientes mais absorvidos pela planta (Tabelas 7, 8 e 9).
Além disso, é grande a quantidade de nutrientes extraída pelos frutos (Tabelas
9 e 10). Deve-se considerar que dois terços da parte aérea da bananeira retornam
ao solo, em forma de pseudocaule e folhas, admitindo-se haver recuperação
significativa da quantidade de nutrientes absorvida.
As quantidades e os teores de nutrientes variam entre as diversas partes da
planta (Tabelas 11 e 12). Concentrações mais elevadas de nitrogênio (N),
fósforo (P), cálcio (Ca) e enxofre (S) foram observadas nas folhas; de potássio
(K) no pseudocaule e nas bainhas; enquanto a menor concentração de Mg foi
encontrada no cacho (Tabela 12). Os teores de nutrientes variam também
durante as fases do desenvolvimento das folhas; as concentrações de N, P e K
decrescem nas folhas mais velhas (Tabelas 13 e 14). Genú (1976), trabalhando
com a cultivar Prata, observou que os teores de K e Ca nas folhas variaram
durante o crescimento da planta, mostrando que as primeiras folhas
desenroladas apresentaram valores mais altos de K, e as terceiras folhas, valores
mais elevados de Ca. Ao contrário, o Mg permaneceu mais ou menos constante
(Tabela 14). Variações também ocorrem dentro da própria folha, ou seja, teores
de N e P são mais baixos na parte interna do limbo, enquanto os de K e Ca,
mais elevados. Os teores de Mg encontram-se mais baixos na parte interna do
limbo, nas cultivares Prata, Pacovan e Mysore, e mais altos, nas cultivares
Nanicão e Nanica (Tabela 15).
As variações de concentração de nutrientes ocorrem também entre cultivares
(Tabela 16). Observa-se que as concentrações de N, P, K, cobre (Cu), ferro
(Fe) e zinco (Zn) foram maiores na cv. Nanica, enquanto cálcio (Ca) e
manganês (Mn), na ‘Mysore’ e magnésio (Mg), na ‘Prata’.
A cultura da banana
209

Solos, nutrição e adubação
210
A cultura da banana
Figura 1.
Balanço de água no solo
cultivado com bananeira,
sob diferentes sistemas de
manejo a 0-40cm de profundidade.
Fonte: Cintra (1988).

Tabela 7. Extração de macronutrientes por algumas culturas.
Cultura Produção Extração (kg/ha)
Fonte: Malavolta (1980).
Solos, nutrição e adubação
(t/ha) N P K Ca
Banana (cachos) 30 142 18 365 13
Amendoim (frutos) 3 201 16 140 113
Batatinha (tubérculos) 40 80 5 120 49
Cacau (frutos) 1 20 6 30 3
Café (frutos) 2 33 3 52 7
Cana-de-açúcar (colmos) 100 132 8 110 13
Feijão (vagens) 1 37 4 22 4
Mandioca (raízes) 19 39 4 32 12
Milho (grãos) 6,4 122 24 30 0,4
Tomate (frutos) 41 72 18 130 7
Marcha de absorção
Montagut & Martin-Prével (1965), em trabalho conduzido nas Antilhas,
constataram pequena a absorção dos macronutrientes até o quarto mês, em
função do crescimento lento da bananeira. No entanto, do quarto mês até o
florescimento (sétimo ao décimo mês) o crescimento é grande, com acúmulo
significativo de matéria seca e conseqüentemente de nutrientes. Após o
florescimento até a colheita, é praticamente estável a absorção de nutrientes.
O N tem grande importância do início do desenvolvimento das folhas até
a emissão da inflorescência, havendo uma redução da sua absorção até a
colheita; o K é absorvido em torno de dois terços, da fase de indução floral até
a colheita; o P é requerido em menores quantidades, com a maior absorção a
partir do estádio inicial de desenvolvimento das folhas até a emissão das flores
(Martin-Prével, 1984a).
Gomes (1988) observou que, em bananeiras da cv. Prata, acima de 75% de
N, P e K são absorvidos a partir de 180 dias, enquanto mais de 70% de Ca,
Mg, B, Zn e Cu são absorvidos a partir dos estádios de 210 a 240 dias após o
plantio. Twyford & Walmsley (1968) observaram, em bananeira ‘Robusta’,
absorção estável de B e Cu durante o ciclo da planta, enquanto o Fe e o Mn
mostraram picos de absorção no início do florescimento e o Zn, acentuado
acúmulo no início da frutificação até o corte.
A cultura da banana
211

Solos, nutrição e adubação
Tabela 8. Quantidades de macronutrientes absorvidas pela bananeira, em kg/ha.
212
A cultura da banana
1 Tendência a deficiência de magnésio.
Fonte: Martin-Prevel (1980).

Solos, nutrição e adubação
Tabela 9. Quantidades médias de macro e micronutrientes contidas em
bananeiras do subgrupo Cavendish; 2.000 plantas-mãe/ha com
seguidores (raízes não incluídas). Peso médio do cacho = 25 kg.
Elementos
Quantidade
em 50t de
frutos (kg)
Quantidade no
restante da
planta (kg)
Total
(kg)
Exportação
pelos frutos
(%)
N 189 199 388 49
P 29 23 52 56
K 778 660 1.438 54
Ca 101 126 227 45
Mg 49 76 125 39
S 23 50 73 32
Cl 75 450 525 14
Na 1,6 9 10,6 15
Mn 0,5 12 12,5 4
Fe 0,9 5 5,9 15
Zn 0,5 4,2 4,7 12
B 0,7 0,57 1,27 55
Cu 0,2 0,17 0,37 54
Al 0,2 2,0 2,2 9
Mo - 0,0013 - -
Fonte:Lahav & Turner (1983).
Assim, vê-se que a bananeira é uma cultura exigente em nutrientes,
principalmente K e N, com variações entre partes da planta, idade e cultivares,
com picos de absorção do quarto mês até o florescimento.
FUNÇÃO E IMPORTÂNCIA DOS NUTRIENTES NA PLANTA
Os macro e micronutrientes exercem funções na planta que são classificadas
em estrutural, constituinte de enzimas e ativador enzimático. Quando o
nutriente faz parte da molécula de um ou mais compostos orgânicos ele tem
função estrutural. Os constituintes de enzimas, normalmente os metais, fazem
parte do grupo prostético das enzimas e são essenciais nas suas atividades. Por
último, na função de ativador enzimático, o nutriente não faz parte do grupo
prostético da enzima, mas é necessário à sua atividade (Malavolta et al., 1989).
A cultura da banana
213

Solos, nutrição e adubação
Tabela 10. Quantidades médias (kg/t) de macronutrientes extraídas pelos frutos da bananeira.
214
A cultura da banana

Fonte : EMBRAPA (1987).
Solos, nutrição e adubação
Tabela 11. Quantidades médias (g) de macro e micronutrientes em diversos
órgãos da bananeira ‘Prata Anã’ aos seis meses de idade.
EMBRAPA-CNPMF, 1985/86.
Tabela 12. Teores de macronutrientes (%) em diferentes partes da bananeira
‘Grande Naine’.
Partes da planta N P K Ca Mg S
Cacho 0,87 0,104 2,75 0,07 0,14 0,10
Folhas 1,73 0,126 2,92 1,41 0,29 0,14
Bainhas 0,90 0,086 5,33 1,35 0,31 0,06
Pseudocaule 0,97 0,094 6,21 1,18 0,31 0,07
Rizoma 0,98 0,109 4,65 0,21 0,29 0,07
Fonte: Marchal & Mallesard (1979).
Tabela 13. Concentrações (%) de N, P e K nas folhas de bananeira em
diferentes idades.
Folha N P K
1 a
3 a
5 a
7 a
Fonte: Hewitt (1955).
Orgãos Pecíolos +
Nutrientes Rizoma Bainhas Cartucho Nervuras Limbos Total
N 86,91 153,73 72,35 68,84 481,62 863,45
P 8,99 15,52 8,88 8,05 27,98 69,42
K 126,28 376,44 101,33 142,22 325,38 1.071,65
Ca 56,66 163,49 5,84 88,55 160,37 474,91
Mg 44,28 63,87 6,43 15,46 68,31 198,35
Fe 1,47 2,43 0,43 0,63 2,35 7,31
Mn 1,53 4,74 0,29 1,89 11,65 20,10
Zn 1,13 0,23 0,09 0,12 0,28 1,85
2,83 0,30 3,73
3,21 0,26 3,30
3,09 0,24 3,00
2,63 0,24 3,09
A cultura da banana
215

Solos, nutrição e adubação
Tabela 14. Concentração (%) de K, Ca e Mg em diferentes idades da bananeira
Prata, na primeira e na terceira folha inteiramente desenroladas.
Fonte: Genú (1976).
Tabela 15. Médias dos teores de macro (%) e micronutrientes (ppm) na terceira
folha, na parte interna (PI) e na parte externa (PE) do limbo da
planta-mãe de várias cultivares de banana, na época de
florescimento. Nazaré, BA; 1985/86.
Fonte: EMBRAPA-CNPMF (dados não publicados).
216
A cultura da banana
Idade da planta (meses)
Elemento Folha 6 8 10 12 14 16
K
Ca
Mg
1 a
3 a
1 a
3 a
1 a
3 a
2,94 3,07 3,37 3,80 4,13 3,68
2,16 1,97 2,37 2,54 2,91 2,92
0,23 0,45 0,36 0,29 0,35 0,30
0,31 0,40 0,48 0,41 0,47 0,47
0,22 0,27 0,36 0,23 0,27 0,29
0,21 0,27 0,35 0,23 0,31 0,32
Macronutrientes Micronutrientes
Cultivares N P K Ca Mg Cu Fe Mn Zn
Prata, PI 2,91 0,18 2,86 1,16 0,66 16,2 120 176 32
Prata, PE 3,30 0,20 2,47 0,92 0,76 13,0 120 452 36
Pacovan, PI 2,88 0,18 2,71 1,01 0,55 14,5 122 261 35
Pacovan, PE 3,35 0,21 2,52 0,85 0,73 15,2 145 611 41
Nanicão, PI 2,96 0,14 3,39 1,57 0,82 13,8 116 282 35
Nanicão, PE 3,50 0,20 3,13 0,95 0,53 17,0 150 500 36
Nanica, PI 3,21 0,21 3,75 1,27 0,79 17,2 136 166 34
Nanica, PE 3,79 0,24 3,16 0,97 0,57 15,0 117 360 38
Mysore, PI 2,58 0,17 2,99 1,25 0,42 8,6 257 199 31
Mysore, PE 2,99 0,19 2,52 1,01 0,57 9,4 110 612 30

Fonte: EMBRAPA (1985).
Solos, nutrição e adubação
Tabela 16. Concentrações médias de macro (%) e micronutrientes (ppm) na
terceira folha de diferentes cultivares de banana, na época do
florescimento Nazaré, BA, 1983/84.
Macronutrientes Micronutrientes
Cultivares N P K Ca Mg Cu Fe Mn Zn
Pacovan 3,16 0,16 2,21 0,41 0,28 15 139 681 31
Mysore 3,01 0,16 2,20 0,60 0,28 14 135 765 29
Prata 3,06 0,16 2,21 0,52 0,32 15 153 508 25
Nanica 3,68 0,20 2,70 0,55 0,31 24 173 562 36
Nanicão 3,26 0,18 2,52 0,42 0,30 17 163 357 23
Macronutrientes
Nitrogênio
O nitrogênio tem função estrutural na planta, pois faz parte de moléculas de
aminoácidos e proteínas, além de ser constituinte de bases nitrogenadas e
ácidos nucléicos. Participa ainda de processos como absorção iônica,
fotossíntese, respiração, multiplicação e diferenciação celular (Malavolta
et al., 1989).
Este nutriente é muito importante para o crescimento vegetativo da planta,
principalmente durante os três primeiros meses de crescimento, quando o
meristema está em desenvolvimento (Warner & Fox, 1977). A planta nova
tem maiores necessidades desse nutriente (Martin-Prével, 1962; 1964). Vale
lembrar que a bananeira não armazena o N absorvido (Martin Prével, 1980).
O nitrogênio é responsável pelo aumento do número de pencas e pela
emissão e crescimento dos rebentos, aumentando consideravelmente a
quantidade total de matéria seca. Existe uma correlação positiva (r2 =0,79)
entre produção de matéria seca e N absorvido (Lahav & Turner, 1983).
Fósforo
O fósforo faz parte da estrutura química de compostos essenciais, como
fosfolipídeos, coenzimas e ácidos nucléicos, sendo responsável pelos processos
de armazenamento e transferência de energia (Malavolta et al., 1989).
A cultura da banana
217

Solos, nutrição e adubação
É um dos macronutriente menos encontrados na planta, visto que 56%
são exportados pelos frutos (Tabela 9). Esse nutriente favorece o
desenvolvimento vegetativo em geral e o sistema radicular, bem como influi
nas funções dos órgãos florais. Martin Prével (1980) relatou que a absorção
de P é relativamente baixa, principalmente durante os primeiros estádios de
desenvolvimento da planta.
Acredita-se que a absorção de P é influenciada pelo suprimento de Mg, ou
seja, baixo suprimento de Mg reduz a absorção de P pelas raízes, diminuindo
a transferência do mesmo para a parte aérea da planta, reduzindo, assim, a
concentração de P na 3 a folha; no entanto, a concentração de P nas raízes não
é afetada (Martin-Prével, citado por Lahav & Turner, 1983). Porém, Turner,
citado por Lahav & Turner (1983), constatou que o baixo suprimento de Mg
não influenciou a transferência de P para a parte aérea, uma vez que a
quantidade de P total da planta retida nas raízes não foi afetada.
Potássio
O potássio está presente predominantemente na forma iônica, não tendo função
estrutural. Atua como ativador enzimático e participa de processos como
abertura e fechamento dos estômatos, fotossíntese, transporte de carboidratos
e respiração (Malavolta et al., 1989).
Este elemento é considerado o mais importante na nutrição da bananeira,
pois é encontrado em alta quantidade na planta (Tabelas 8 e 9). O potássio é
importante na translocação dos fotossintatos, no balanço de água, na produção
de cachos e pencas, e na qualidade e resistência dos frutos (Langenegger
& Du Plessis, 1980a), acelerando o seu desenvolvimento e maturação (Ho,
1969). Além disso, Lahav & Turner (1983) citaram que o baixo suprimento
de K reduz o peso específico das raízes e a taxa de crescimento relativo.
Relata-se que doenças têm sido controladas pelo uso de adubos potássicos.
O potássio, por influenciar a atividade de certas enzimas, levaria à diminuição
de compostos solúveis de baixo peso molecular, que, quando presentes,
proporcionam um meio favorável ao desenvolvimento de vários parasitas. Além
disso, este nutriente favorece a estrutura das paredes celulares, aumentando a
sua resistência mecânica à penetração de patógenos, e proporcionando uma
cicatrização mais rápida dos tecidos (D’Alejandro Vaz, 1986).
Cálcio
O cálcio é constituinte estrutural dos pectatos de cálcio da lamela média das
células. Participa nos processos e no funcionamento das membranas, além da
absorção iônica (Malavolta et al., 1989).
218
A cultura da banana

Solos, nutrição e adubação
Acredita-se que o Ca contido nos tecidos das plantas influencie a incidência
de doenças, pois enzimas como as poligalacturonases de cálcio são necessárias
para manter a estabilidade da lamela média. Além disso, muitos parasitas
invadem os tecidos das plantas, devido à produção extracelular de enzimas
pectolíticas que dissolvem a lamela média; a presença de Ca inibe
significativamente a atividade dessas enzimas (Marschener, 1986).
Magnésio
O magnésio é integrante da molécula de clorofila, é ativador de enzimas e
participa nos processos de absorção iônica, na fotossíntese e na respiração
(Malavolta et al., 1989).
Esse nutriente facilita a absorção de outros elementos, ou seja, para que se
possa aplicar elevada quantidade de K no solo, requerido em grande quantidade
pela bananeira, é necessário que exista Mg suficiente, a fim de evitar o
aparecimento do azul-da-bananeira. Este distúrbio fisiológico manifesta-se
quando a relação K/Mg no solo é maior que 0,6 (Champion et al., 1958;
Garcia et al., 1978); nas folhas, K/Mg é maior que 2,0 na colheita (Garcia
et al., 1978); e no florescimento, é maior que 4,5 (Lichtemberg & Malburg,
1983).
Enxofre
O enxofre, como o nitrogênio, é componente estrutural de aminoácidos
(cisteína, cistina, metionina, taurina) e proteínas, como também de vitaminas
e coenzimas. Participa de processos como fotossíntese, respiração e síntese de
gorduras (Malavolta et al., 1989).
Segundo Murray (1959), a ausência de S afeta principalmente os órgãos
jovens, nos quais induz a perturbações metabólicas que dificultam a formação
da clorofila, culminando com a paralisação das atividades vegetativas. Já
Langenegger & Du Plessis (1980a) relataram que o S interfere na qualidade
do fruto.
Sabe-se que após o lançamento da inflorescência é reduzida a taxa de
absorção. Assim, a planta retira das folhas e do pseudocaule o S necessário
para o crescimento dos frutos.
Micronutrientes
Boro
O boro, ou seja, o ânion BO 3
- - - , não foi identificado em nenhum composto
ou enzima específica. No entanto, facilita o transporte de açúcares através das
membranas, participa no metabolismo de ácidos nucléicos e de fitormônios,
A cultura da banana
219

Solos, nutrição e adubação
na formação de paredes celulares e na divisão celular, tendo também função
na estabilidade da membrana celular (Dechen et al., 1991). Assim, a deficiência
de B inibe ou paralisa o crescimento dos tecidos meristemáticos da parte aérea
e das raízes (Gupta, 1979).
Cloro
O cloro (Cl) é essencial na fotólise da água (reação de Hill), ou seja, o cloreto
(Cl – ) é imprescindível no desdobramento da molécula de água na fotossíntese II.
Segundo Freney et al., citados por Dechen et al. (1991), os teores de alguns
aminoácidos e amidas tornam-se extremamente altos em plantas deficientes
em Cl, levando, assim, à inibição da síntese de proteínas ou à sua degradação.
Contudo, a bananeira apresenta altos teores de Cl (Tabela 9) em razão das
altas quantidades de cloreto de potássio (KCl) aplicadas.
Cobre
O cobre participa de vários processos fisiológicos, como: fotossíntese,
respiração, distribuição de carboidratos, redução e fixação de N, metabolismo
de proteínas e da parede celular. Controla a produção de DNA e de RNA e
sua deficiência severa inibe a reprodução das plantas, ou seja, reduz a produção
de sementes e o pólen torna-se estéril. Além disso, o Cu está envolvido no
mecanismo de resistência a doenças, pois o suprimento adequado do elemento
pode aumentar a resistência de plantas às doenças fúngicas (Dechen et al;
1991). Plantas mal supridas em Cu são pouco lignificadas, tornando-se mais
suscetíveis à penetração e ao desenvolvimento do patógeno. Além disso, outros
compostos fenólicos estão envolvidos na resistência a doenças fúngicas, ou
seja, muitas enzimas que necessitam de Cu atuam no metabolismo dos fenóis.
A enzima polifenoloxidase catecolase, existente na bananeira, reduz sua
atividade quando há deficiência de Cu.
Ferro
O ferro, considerado elemento essencial nas transformações energéticas, ocorre
em proteínas dos grupos heme e não-heme e encontra-se principalmente nos
cloroplastos. Está diretamente implicado no metabolismo de ácidos nucléicos
(Dechen et al., 1991).
Manganês
Como o ferro e o cobre, o manganês também é um ativador enzimático,
participando de reações bioquímicas da fotossíntese e da respiração, além
de participar na absorção iônica e no controle hormonal (Charpentier
220
A cultura da banana

Solos, nutrição e adubação
& Martin-Prével, 1965; Malavolta et al., 1989). A participação do Mn no
desdobramento da molécula de água e na evolução de oxigênio (O 2 ) no sistema
fotossintético (reação de Hill) é sua função mais estudada.
Molibdênio
O molibdênio (Mo) é constituinte das enzimas nitrogenase e redutase do
– – nitrato. Esta última catalisa a redução biológica do NO a NO2 , que é a
3
primeira transformação do N para a sua incorporação como NH nas proteínas
2
(Dechen et al., 1991).
Zinco
O zinco é componente de várias enzimas (desidrogenases, proteinases,
ribonucleases-RNAse, etc.). Dechen et al. (1991) citaram que o zinco participa
no metabolismo de carboidratos e proteínas, de fosfatos e também na formação
de auxinas, RNA e ribossomas. Segundo Malavolta et al. (1989), o zinco
estimula o crescimento e a frutificação. Assim, as plantas deficientes em zinco
mostram diminuição no nível de RNA, o qual provoca diminuição na síntese
de proteína, dificultando a divisão celular.
Vale lembrar a correlação positiva existente entre deficiência de Zn e
incidência do mal-do-panamá. O zinco é essencial na síntese do triptofano, e
este é precursor do ácido indolacético (AIA). O AIA induz à produção de
tilose, que completa efetivamente os mecanismos de resistência da planta ao
mal-do-panamá (Cordeiro, 1984).
Assim, observou-se que os macronutrientes (N, P, K, Ca, Mg e S) e os
micronutrientes (B, Cl, Cu, Fe, Mn, Mo e Zn) apresentam funções específicas,
não podendo, desta maneira, ser substituídos por outro. Portanto, na ausência
de qualquer um deles, a planta não completa seu ciclo de vida.
Os elementos carbono (C), hidrogênio (H) e oxigênio (O) não foram
abordados, pois são fornecidos à planta basicamente pelo ar e pela água.
AVALIAÇÃO DO ESTADO NUTRICIONAL
A avaliação do estado nutricional baseia-se na comparação entre amostra e
padrão. AMOSTRA é a planta que se quer avaliar e o PADRÃO, a planta
“normal” sob o ponto de vista nutricional (Malavolta et al., 1989).
Diagnose visual
Quando um elemento mineral está em deficiência ou em excesso, a planta
expressa este desequilíbrio por sintomas visuais, que normalmente se traduzem
por deformações nas folhas e frutos, redução do crescimento de vários órgãos
vegetais e mudanças na coloração, principalmente, do sistema foliar. A diagnose
A cultura da banana
221

Solos, nutrição e adubação
visual se baseia em que cada elemento desempenha um papel específico nas
funções fisiológicas das plantas que, em condições de desequilíbrios, excessos
e deficiências, apresentam sintomas muitas vezes característicos, os quais
permitem a identificação do(s) elemento(s) em desordem.
Embora, de modo geral, as deficiências de alguns macro e micronutrientes
se expressem da mesma forma em diversas plantas, o sintoma de carência de
um determinado elemento pode diferir tanto de uma espécie vegetal para
outra que este conhecimento prévio não poderá ser extrapolado. Para
estabelecer os sintomas visuais é necessário um conhecimento profundo da
cultura diagnosticada; é necessário também o desenvolvimento de ensaios
controlados, no quais se simulem desequilíbrios, deficiências e excessos dos
nutrientes, acompanhando-se sistematicamente as mudanças visuais que
ocorrem nas plantas, bem como o teor dos nutrientes nos diversos órgãos
vegetais e no solo, para que se possa correlacionar um sintoma visual de
anomalia com a carência ou toxidez determinada por um nutriente. A partir
destes conhecimentos, podem-se estabelecer os sintomas que uma cultura
específica vai demonstrar quando algum desequilíbrio nutricional estiver
ocorrendo.
Porém, não basta somente dispor dos sintomas visuais descritos para afirmar
que uma anomalia seja fruto da desordem provocada por um nutriente
específico. Vários fatores podem atuar de forma a suscitar muitas dúvidas
para emitir um diagnóstico baseado apenas na sintomatologia, como, por
exemplo: alguns elementos podem apresentar sintomas carênciais idênticos; a
planta pode já expressar danos em termos de produção e qualidade do produto
final, enquanto os sintomas visuais não se expressaram claramente; a deficiência
de vários elementos pode ocorrer ao mesmo tempo, dificultando a diagnose;
e alguns fatores como encharcamentos ou déficit hídrico, incidência de pragas
e doenças podem apresentar sintomas idênticos ao de uma desordem
nutricional. Portanto, deve-se aliar ao diagnóstico de campo a análise foliar e
de solo, para confirmar o(s) nutriente(s) em carência ou excesso e, desta forma,
especificar e orientar uma correção da adubação ou das condições de fertilidade
do solo a que uma cultura esteja sendo submetida.
Em geral, os sintomas de carência ou excesso dos nutrientes na bananeira
se expressam de três formas: sintomas generalizados – nitrogênio e cobre;
sintomas se iniciando pelas folhas jovens – enxofre, boro, cálcio, zinco, ferro e
manganês; sintomas se iniciando pelos órgãos velhos – magnésio, potássio,
fósforo; e desequilíbrios entre cátions (azul-da-bananeira).
A seguir serão descritos e ilustrados os sintomas visuais de deficiências ou
desequilíbrios nutricionais baseados em Charpentier & Martin-Prével (1968)
e Solis & López (1994), em que os autores unem fotos a informações obtidas
em ensaio em meio artificial, em observações de campo e em bibliografia.
222
A cultura da banana

Macronutrientes
Nitrogênio
Solos, nutrição e adubação
A carência nitrogenada se expressa por uma clorose generalizada, acentuada
nas folhas velhas. Observa-se também uma coloração verde-amarelo-pálida
dos limbos, verde-amarelo-rosada dos pecíolos e bainhas. O crescimento da
planta fica fortemente retardado, ocorre um engasgamento e modificação do
arranjo foliar. O tronco fica fino, os pecíolos delgados e comprimidos, enquanto
as folhas se apresentam pequenas e com uma vida mais curta (Figura 2). Existe
uma grande influência no rendimento e uma reação muito rápida da planta
tanto à carência como ao suprimento deste nutriente.
Fósforo
Na deficiência de fósforo, a folhagem se apresenta com uma coloração verdeescura
tendendo a azulada, salvo se não existir uma carência simultânea em
ferro. Algumas vezes ocorre uma descoloração marginal muito estreita,
irregular, podendo demonstrar pequenas manchas pardas. Posteriormente, as
necroses se desenvolvem em grandes dentes de serra em direção a nervura
central, a partir dos bordos do limbo, quase sem clorose prévia; pequenas
manchas pardas de aspecto oleoso podem se apresentar sobre a zona clorótica
de transição (Figura 3). Ocorre uma senescência prematura das folhas por
extensão das necroses, uma forte redução do crescimento dos novos filhos,
mas só influencia o peso do cacho no caso de a carência ser acentuada e
prolongada.
Potássio
Na deficiência de potássio, as folhas se apresentam com um amarelecimento
intenso sobre a totalidade de sua superfície, começando pelas folhas mais velhas
(murchamento rápido). Inicialmente a clorose se apresenta de cor amareloouro,
depois alaranjada quase uniforme, ganhando a totalidade do limbo em
dois ou três dias, seguido de completo murchamento. O limbo se rasga, se
dobra sobre a base e a nervura principal se quebra em torno de dois terços do
seu comprimento; a folha adquire um aspecto encarquilhado, característico,
antes de cair, dando à bananeira uma aparência seca (Figura 4). Em geral,
aparecem manchas pardas na nervura que evoluem em manchas pardo-violáceas
na face inferior dos pecíolos (azul- potássico). O murchamento atinge as folhas
cada vez mais jovens; em carência grave, a bananeira pode perder toda a sua
superfície foliar. Os cachos e frutos ficam raquíticos e de má qualidade.
A cultura da banana
223

Solos, nutrição e adubação
224
Figura 2. Coloração verde-amarela pálida da folhagem
pela deficiência de nitrogênio.
Figura 3. Deficiência grave de fósforo, com as folhas de
coloração verde-escura tendendo a azulada,
apresentando necroses em forma de dentes de
serra.
A cultura da banana

Figura 4. Deficiência de potássio.
Solos, nutrição e adubação
A cultura da banana
225

Solos, nutrição e adubação
Cálcio
Na deficiência de cálcio ocorre uma clorose localizada em dentes de serra,
principalmente nas extremidades das folhas, sem caráter de continuidade e já
visível sobre o cartucho; os dentes cloróticos amarelo-pálidos sobre as folhas
mais jovens, passam a amarelo-ouro e, à medida que a folha envelhece, a
coloração passa ao amarelo-púrpura. Cada folha passa pelo mesmo estádio de
evolução da carência, que chega ao fim em torno da sexta ou sétima folha,
quando então as manchas necrosadas não aumentam mais em tamanho. Esses
sintomas são irreversíveis. Observa-se um raquitismo vegetativo, engasgamento
com modificação do arranjo foliar, aspecto deformado do cartucho, espessamento
das nervuras, que são a sede de escoriações superficiais, e as folhas
apresentam-se com ondulações das margens. A influência no rendimento
quantitativo é quase nula, porém produz frutos de má qualidade, com
tendências a rachaduras antes do amadurecimento (Figura 5).
Magnésio
Quando a bananeira está com deficiência de magnésio, observa-se um
amarelecimento paralelo às margens foliares que caminha até o interior da
folha; as porções do limbo próximas à nervura central ficam verdes. Esta clorose
aparece sobre as folhas mais velhas e passa, a seguir, às folhas mais novas,
acentuando-se sobre as folhas mais iluminadas (Figura 6).
226
A cultura da banana
Figura 5. Deficiência de cálcio, com folhas
e cartucho apresentando sintomas
típicos.

Solos, nutrição e adubação
Em carência muito acentuada, as margens cloróticas se necrosam e
encarquilham. Ocorrem, também, irregularidades no crescimento e grandes
deformações morfológicas: emissão de folhas irregulares com largura reduzida,
dispostas no mesmo plano (em leque), descolação das bainhas, que se quebram
e apodrecem, provocando a senescência antecipada das folhas (Figura 7).
O sintoma conhecido como azul-da-bananeira, que é uma desordem
fisiológica causada pelo desequilíbrio entre K e Mg, evidencia-se pelo
mosqueamento pardo-violáceo da face inferior dos pecíolos e da base das
nervuras centrais, que quando cortadas podem apresentar apodrecimento
interno e exalar mau cheiro.
Observa-se uma influência muito acentuada no rendimento quantitativo e
na qualidade dos frutos. A planta reage rapidamente tanto à carência como ao
suprimento de magnésio.
Enxofre
Figura 6. Clorose magnesiana.
Na deficiência de enxofre as bananeiras jovens apresentam uma clorose em
duas ou três das folhas mais novas, cobrindo toda a superfície foliar, sendo
reversível e acompanhada somente de um retardamento do crescimento. Em
bananeiras mais idosas ocorrem problemas na diferenciação foliar: deformações
morfológicas (redução dos limbos, espessamento das nervuras secundárias,
ondulação das margens das folhas), descolorações internervais e, sobre a face
inferior das folhas, alinhamento de pontos claros perpendiculares às nervuras.
Em casos graves, ocorre a morte por abortamento do ponteiro vegetativo.
Em caso de deficiência parcial, observa-se grande influência no rendimento.
A cultura da banana
227

Solos, nutrição e adubação
Micronutrientes
228
Figura 7. Descolamento das bainhas e folhas mais
novas com a largura reduzida devido a
deficiência de magnésio.
Boro
A carência de boro se expressa em deformações acentuadas sobre as folhas
jovens. O limbo se mostra fortemente reduzido (nervura central) e irregular,
com ondulações das margens. Observam-se necroses sem clorose prévia sobre
a borda das folhas (principalmente na sua extremidade, que se encarquilha),
clorose internerval e estriação perpendicular às nervuras secundárias –
alinhamento dos pontos descoloridos, escoriados, na face inferior das folhas
(Figura 8). Os filhos, que são emitidos em abundância, apresentam sintomas
ainda mais pronunciados. Em carência muito acentuada todo o crescimento é
paralisado. Existem numerosas analogias em relação à carência de enxofre.
A cultura da banana

Cobre
Figura 8. Estrias perpendiculares decorrentes da
deficiência de boro.
Solos, nutrição e adubação
A carência em cobre é observada geralmente em bananais cultivados em
turfeiras; é muito facilmente confundida com uma carência em nitrogênio
devido à clorose generalizada que dela se acompanha. Entretanto, a clorose
cúprica é uniforme, de aspecto escuro sob o conjunto do vegetal: limbos,
nervuras, pecíolos e pseudocaule. A planta fica extremamente sensível ao ataque
de trips, fungos e ao vírus-do-mosaico. Podem-se observar também necroses
marginais não regulares nas folhas velhas. O retardamento do crescimento
lembra igualmente a carência em nitrogênio. A planta apresenta o porte caído,
em guarda-sol ou em sino; palidez geral dos limbos, pecíolos e bainhas; e os
frutos apresentam manchas de ferrugem.
A cultura da banana
229

Solos, nutrição e adubação
Ferro
A deficiência de ferro caracteriza-se por uma clorose marginal atingindo
rapidamente o interior pelos espaços internervais, deixando inicialmente faixas
mais verdes. Em carência mediana, as nervuras verdes se recortam finamente
sobre o fundo amarelado do limbo. Em carência muito aguda, as nervuras
transversais se descolorem, em primeiro lugar somente pelo lado direito
(estriação das nervuras); a bananeira passa então de verde-pálida a
esbranquiçada. Estes sintomas são substituídos então por uma clorose difusa
generalizada. As zonas cloróticas dificilmente retomam a cor verde. Ocorre
ainda folhas com tendência lanceolada, que se agrupam em roseta com forma
de buquê, como na carência de zinco (Figura 9).
Manganês
Na deficiência de manganês, observa-se uma clorose em pente, marginal, por
vezes com persistência de uma fina barra verde na bordadura das folhas. Depois
ela atinge a nervura central, porém, a progressão é muito mais rápida nas
nervuras transversais principais do que nas nervuras transversais secundárias,
ou do que nos espaços internervais, que ficam muito tempo verdes. Esta clorose
com aspecto estriado aparece nas segunda, terceira e quarta folhas, depois
ganha muito rapidamente as folhas mais jovens e mais idosas. A totalidade da
folhagem toma então uma coloração verde-amarelo-escura (cor cáqui),
sobretudo nas partes do limbo mais iluminadas.
230
Figura 9. Deficiência de ferro.
A cultura da banana

Solos, nutrição e adubação
Eventualmente, ocorre o desenvolvimento do fungo Deightoniella torulosa,
provocando necroses marginais mais ou menos consideráveis, podendo
contaminar o cacho (Figura 10). Em caso de carência, ocorre uma grave
influência no rendimento.
Zinco
Em deficiência de zinco observam-se cloroses em faixas, freqüentemente quase
brancas, no sentido das nervuras secundárias e de largura muito variável,
alternando com faixas perfeitamente verdes (Figura 11). Ocorre também uma
pigmentação antocianínica (de cor vinho) no cartucho e na face inferior das
folhas jovens, notadamente sobre a nervura central; esta coloração desaparece
rapidamente e não é suficiente para diagnosticar uma carência em zinco.
Em carência muito acentuada, observa-se uma clorose geral do limbo das
folhas jovens, com pontuações brancas se destacando sobre o fundo amarelopálido;
folhas de tamanho reduzido, pontiagudas, muito alongadas, agrupandose
em roseta, em forma de buquê e não de leque. Uma carência pronunciada
em zinco pode conduzir a problemas graves de diferenciação e produzir frutos
deformados.
Figura 10. Clorose acentuada das folhas velhas e
pontuações escuras do fungo Deightoniella
torulosa devido à deficiência de manganês.
A cultura da banana
231

Solos, nutrição e adubação
Sódio
232
Figura 11. Deficiência de zinco.
Embora o sódio (Na) não seja um micronutriente essencial para a maioria das
plantas, merece ser mencionado devido a sua presença em teores elevados no
complexo de troca do solo das regiões áridas e semi-áridas. O sintoma da
toxidez de sódio se apresenta nas folhas como queimaduras que começam por
um halo marginal regular e terminam em uma larga faixa marrom-acinzentada,
ressecada, contínua, em torno de toda a folha. Na maioria dos casos, essa faixa
não ultrapassa 3 a 5 cm; entretanto, danos em maiores extensões já foram
observados (Figura 12). Toxidez de Na e sintomas semelhantes foram
detectados em regiões semi-áridas dos estados da Bahia e do Rio Grande do
Norte, recomendando-se que maiores cuidados devem ser tomados com a
qualidade e o manejo da água de irrigação (Borges & Cintra, 1991).
A cultura da banana

Figura 12. Toxicidade provocada por sódio.
Solos, nutrição e adubação
Diagnose foliar
A diagnose foliar consiste na utilização da planta como solução extratora dos
elementos nutritivos disponíveis no solo. Segundo Hewitt (1955) e Hewitt
& Osborne (1962), as folhas são os locais de maior atividade química da vida
da planta e a análise desse órgão parece ser o melhor indicador do estado
nutricional do bananal.
A análise foliar é importante para diagnosticar o elemento deficiente quando
há sintomas visuais semelhantes (exemplo N e Cu) ou quando várias deficiências
estão ocorrendo simultaneamente (Lahav & Turner, 1983). Assim, informações
sobre a concentração de nutrientes na planta são úteis para diagnosticar
deficiências e/ou toxidez; entretanto, os teores ótimos devem ser conhecidos.
Amostragem
Somente folhas sadias, livres de queimaduras de sol e danos por insetos devem
ser amostradas. Além disso, não se devem misturar folhas com sintomas de
deficiência com folhas de desenvolvimento normal. Cada amostra deve ser
coletada em plantas da mesma cultivar, com a mesma idade e que representem
a média da plantação (Comissão Estadual de Fertilidade do Solo, 1989).
Em razão de vários fatores (órgão amostrado, idade, cultivar, época de
amostragem, etc.) influenciarem a concentração de nutrientes na planta, tornouse
necessário o desenvolvimento de uma técnica padrão de amostragem para
que os resultados pudessem ser comparados.
A cultura da banana
233

Solos, nutrição e adubação
Segundo norma internacional (Martin-Prével, 1984b), a folha amostrada
é a terceira a contar do ápice com a inflorescência no estádio de todas as
pencas femininas descobertas (sem brácteas) e apresentando até três pencas
de flores masculinas. A coleta nesta época apresenta a vantagem de já ser possível
verificar a quantidade de pencas e, assim, estimar a produção da área. Coletamse
10 a 25 cm da parte interna mediana do limbo, eliminando-se a nervura
central (Figura 13).
Recomenda-se amostrar 10 a 20 plantas em uma plantação de 1 a 4 ha,
quando 70% das plantas já estiverem floradas (Martin-Prével, 1984b).
Sugere-se proceder à análise foliar para fazer ajustes no programa de
adubação e, principalmente, avaliar a necessidade de micronutrientes.
Vale ressaltar que a amostra deve ser identificada, com data da coleta, estádio
de desenvolvimento da planta, e cultivar; além disso, recomenda-se, também,
medir a altura da planta, o diâmetro do pseudocaule a 30 cm do solo, o número
de folhas vivas e o número de pencas.
Preparo da amostra
Após a coleta, as amostras devem ser acondicionadas em sacos de papel comum
e encaminhadas para análise pela via de transporte mais rápida.
No laboratório, fazer lavagem rápida com água destilada, para não haver
lixiviação de potássio. Caso a amostra esteja suja, limpá-la com detergente
bem diluído (0,1%). Recomenda-se também não colocar o material muito
molhado na estufa, pois formará uma película na superfície com maior
concentração de nutrientes, os quais serão perdidos na moagem.
Figura 13. Procedimento de amostragem para análise foliar.
234
A cultura da banana

Solos, nutrição e adubação
Se não for possível encaminhar as amostras ao laboratório até 24 horas
após a coleta, lavá-las com água destilada, colocar em saco de papel, secar em
forno de cozinha (70 o C) ou ao sol e encaminhar para o laboratório (Malavolta
et al., 1989).
Interpretação dos resultados
Na interpretação dos resultados, estabeleceram-se teores padrões, baseandose
na correlação entre a concentração do nutriente nas folhas e o
desenvolvimento ou produtividade da cultura. Entretanto, outros experimentos
devem ser conduzidos com o objetivo de estabelecer, para diferentes cultivares,
a concentração do nutriente abaixo da qual espera-se resposta à aplicação do
adubo, pois não existem ainda estudos que possam definir, para nossas
condições, os níveis críticos de nutrientes para bananeira.
Lahav & Turner (1983) apresentaram resultados de níveis críticos obtidos
por vários autores, na terceira folha de bananeiras do subgrupo Cavendish:
2,5% N; 0,2% P; 3,0% K; 0,5% Ca; 0,3% Mg; 0,6% Cl; 0,23% S; 25 ppm
Mn; 80 ppm Fe; 18 ppm Zn; 11 ppm B; 9 ppm Cu; 1,5-3,2 ppm Mo.
Na Tabela 17 estão apresentados os teores padronizados de nutrientes que
podem ser usados como referência.
Esses índices deveriam ter aplicação universal; no entanto, estão relacionados
com fatores ambientais. Assim, os valores de referência quase sempre precisam
ser adaptados às condições locais, embora alguma extrapolação sempre seja
possível (Bataglia & Dechen, 1986).
ANÁLISE QUÍMICA DO SOLO
Para fertilizar um bananal é essencial considerar os teores de nutrientes na
planta e a disponibilidade deles no solo.
A análise química do solo, por ser mais simples, é mais utilizada, sendo
largamente aceita como uma ferramenta essencial na formulação de um bom
programa de adubação e calagem. Pela análise do solo é possível determinar
os teores de nutrientes nele existentes e assim recomendar as quantidades de
corretivo e de adubo que devem ser aplicadas.
Amostragem
A amostragem do solo é considerada uma etapa crítica de todo o processo de
análise, pois ocorrem nesta fase as maiores falhas, principalmente no que diz
respeito à representatividade da área.
A cultura da banana
235

Solos, nutrição e adubação
Tabela 17. Teores padronizados de nutrientes na parte interna do limbo da
terceira folha no estádio da inflorescência descoberta (amostra
internacional de referência).
Elemento Deficiência Baixo Ótimo Toxidez
N % 1,6-2,1 2,0-2,5 2,7-3,6
P (%) 0,12-0,16 0,16-0,27
K (%) 1,3-2,6 2,7-3,2 3,2-5,4
Ca (%) 0,15 0,66-1,20
Mg (%) 0,07-0,25 0,27-0,60
S (%) 0,16-0,30
Cl (%) 0,90-1,80 3,5
Fe (ppm) 80-360
Mn (ppm) 40-150 200-1.800 >3.000
Zn (ppm) 6-17 20-50
Cu (ppm)

Solos, nutrição e adubação
Vale lembrar que, em áreas novas, é importante amostrar o solo em
profundidade, com o objetivo de conhecer as limitações químicas e físicas que
possam afetar a produtividade da cultura.
A amostragem do solo pode ser feita com diversas ferramentas: enxadão,
pá, tubo para amostragem ou sonda, trado (mais comum), etc. Em qualquer
caso, é sempre necessário que as subamostras sejam retiradas de maneira
uniforme em volume e profundidade (Raij, 1991).
Após a retirada das subamostras e formada a amostra composta, esta deve
ser bem misturada, colocada na caixinha própria para amostra de solo e
encaminhada para o laboratório. É conveniente, se a terra estiver muito
molhada, secá-la ao ar antes de colocá-la na embalagem para remessa ao
laboratório.
Interpretação dos resultados
Uma das premissas básicas do uso da análise de solo e de sua interpretação é a
existência de correlações entre resultados da análise química e a resposta da
cultura à adubação ou à calagem, em condições de campo. Por essa razão, os
manuais de recomendação de adubação e calagem são restritos às regiões onde
foram feitas as experimentações agronômicas.
Os resultados da análise de solo são, normalmente, classificados em faixas
de teores, as quais foram obtidas mediante correlação entre os resultados da
análise e a resposta da cultura, como apresentadas na Tabela 18, para o Estado
da Bahia.
Tabela 18. Faixas para interpretação de alguns parâmetros avaliados nos
solos do Estado da Bahia.
Parâmetros Baixa Média Alta
Fósforo (ppm) 20
Potássio (ppm) 120
Cálcio (meq/100cm 3 ) 3,0
Magnésio (meq/100 cm 3 ) 1,0
Alumínio (meq/100cm 3 ) 1,0
Matéria orgânica (%) 3,0
Fonte: Comissão Estadual de Fertilidade do Solo (1989).
A cultura da banana
237

Solos, nutrição e adubação
Recomendações de calagem e adubação
As recomendações de calagem e adubação para a bananeira, apresentadas nos
diversos boletins existentes, foram elaboradas em função dos resultados de
pesquisa, especialmente pesquisa de campo, os quais relacionam a resposta da
cultura à adubação, aos preços dos insumos e a outros produtos envolvidos.
As recomendações de adubos e corretivos devem sempre procurar atingir a
meta do máximo retorno líquido por área.
Calagem
Grande parte das terras agricultáveis brasileiras apresentam valores de pH na
faixa de 4,5 a 5,5, afetando a disponibilidade e a absorção dos nutrientes.
Na cultura da bananeira, segundo Lahav & Turner (1983), a influência do
pH do solo não tem sido muito estudada; as plantas desenvolvem-se em pH
extremos de 3,5 a 9,0, embora a faixa de 5,5 a 8,0 seja a mais comum.
Langenegger & Du Plessis (1980a, b), na África do Sul, recomendaram calagem
da bananeira quando o pH é menor que 5,8, pois o ideal é entre 5,8 a 6,5.
Cunha & Fraga Júnior (1963) não verificaram efeito da calagem sobre a
produção da bananeira em solos onde o pH variava de 5,17 a 5,95. Godefroy
et al. (1978), trabalhando em solo orgânico, elevaram o pH de 3,4 para 6,7 e
não constataram efeito no crescimento e na produção da bananeira ‘Poyo’.
No entanto, em bananeira ‘Prata’, em Latossolo Amarelo álico, Borges (1994)
constatou que o aumento de 0,5 unidade de pH proporcionou acréscimo de
32 cm na altura da planta, como também aumento significativo de 60% e
36%, respectivamente, no peso do cacho e do fruto. Moreira (1971) verificou
que a elevação do pH do solo de 4,3 para 6,5 retardou em 12 meses o
aparecimento dos sintomas do mal-do-panamá em banana ‘Maçã’.
A prática da calagem, além de elevar o pH do solo, contribuindo para
aumentar a disponibilidade de N, P, K, S e Mo, neutraliza o alumínio (Al) e/
ou o manganês (Mn) trocáveis, fornece Ca e Mg para plantas, elevando a
saturação por bases (V%) e equilibrando a relação K:Ca:Mg (0,3:2:1 e
0,5:3:1), além de melhorar a atividade microbiana.
Na cultura da bananeira, a falta de Ca e Mg no solo pode levar ao
aparecimento do distúrbio fisiológico conhecido por azul-da-bananeira; além
disso, o desbalanceamento nutricional pode favorecer o surgimento do maldo-panamá,
em bananeira tolerante à doença (Moreira, 1983).
Assim, a calagem é importante para a bananeira, sendo a quantidade aplicada
baseada na análise de solo.
Para o Estado da Bahia (Comissão Estadual de Fertilidade do Solo, 1989),
a necessidade de calcário (NC) é calculada empregando-se a fórmula:
238
A cultura da banana

Solos, nutrição e adubação
NC (t/ha) = [4 – (meq Ca ++ + Mg ++ /100cm 3 ] . f (f = 100/PRNT)
Para o Estado de São Paulo, a calagem é determinada com base na elevação
da saturação por bases (V) a 60%, mantendo o teor de magnésio acima de
0,9meq/100 cm 3 (Raij et al., 1996).
Desta maneira, a aplicação de calcário, quando recomendada, deve ser feita
com antecedência mínima de 30 dias do plantio, preferencialmente. O calcário
deve ser aplicado a lanço, após a aração, e incorporado por meio da gradagem.
Caso não seja possível o uso de máquina, a incorporação pode ser efetuada na
época da capina. Recomenda-se o uso do calcário dolomítico, que contém
cálcio e magnésio, para evitar a ocorrência do distúrbio fisiológico azul-da-
-bananeira.
Carvalho et al. (1986) recomendaram o gesso agrícola no caso do subsolo
apresentar teor muito baixo de Ca (menor que 0,3 meq Ca ++ /100cm 3 ) e/ou
Al (maior que 0,5 meq Al +++ /100cm 3 ou saturação superior a 20%), pois
como o gesso é carreador de Ca para as camadas mais profundas do solo,
promove maior desenvolvimento do sistema radicular.
Adubação
O sucesso das respostas à adubação, além das quantidades adequadas, depende
da localização e da época de aplicação, que quando adequadas facilitam a
absorção pela planta e evitam perdas.
Produção de mudas
A adubação é um fator muito importante para o desenvolvimento e a obtenção
de mudas de alta qualidade.
A produção de mudas pode ser feita em canteiros, pelo método do
fracionamento do rizoma, ou em viveiros, que são áreas estabelecidas em
espaçamentos mais adensados (2 x 2m; 2 x 1m; 3 x 1 x 1,5m).
Canteiros
Os canteiros devem ser preparados colocando-se aproximadamente 20 litros
de esterco de curral/m 2 bem incorporado ao solo.
Viveiros
Os solos mais indicados são os aluviais bem drenados e ricos em matéria
orgânica. Este componente é muito importante. Desta maneira, recomendamse
três litros de esterco de curral curtido por cova (Moreira, 1987).
A cultura da banana
239

Solos, nutrição e adubação
A United Brands Company (1979) recomendou adubar cada touceira
mensalmente com 114g de uréia, aplicando o adubo ao redor da touceira
numa faixa de 60 cm de largura e a 45 a 60 cm da base da planta. Além da
adubação nitrogenada, recomenda-se, dois meses após o plantio, aplicar a cada
três meses 140g de cloreto de potássio.
Já Soto Ballestero (1992) recomendou somente a adubação nitrogenada,
aplicando-se 115g de uréia/touceira mensalmente ou a cada dois meses. Moreira
(1987) recomendou, quando as mudas estiverem com 40 a 50 cm de altura,
30g de sulfato de amônio ao redor de cada muda, mensalmente.
Campo
Orgânica
Em geral, a adição de adubos orgânicos aos solos tropicais proporciona a
melhoria das suas propriedades físicas, químicas e biológicas, obtendo-se boas
respostas das plantas à aplicação. A fase de maior importância da adição de
resíduos orgânicos no bananal é no plantio, pois estimula o desenvolvimento
radicular e o estabelecimento da planta.
Os adubos orgânicos, como tortas de mamona e de cacau, estercos de
animais e compostos diversos, em geral, são pobres em macronutrientes,
apresentando o nitrogênio em maior quantidade quando comparado aos outros
nutrientes. Porém, os adubos orgânicos contribuem com micronutrientes,
como boro, zinco, cobre, manganês e ferro, fornecendo uma fertilização mais
equilibrada para a bananeira (Kiehl, 1985).
Alguns cuidados devem ser tomados quando da utilização de estercos. Devese
conhecer a procedência dos mesmos, para evitar aqueles de propriedades
que utilizem em suas pastagens herbicidas hormonais, como o 2,4 D + picloran
e 2,4 D + picloran + triclopyr (Tordon BR e Togar, respectivamente), que
provocam fitotoxicidade na maioria das plantas de folha larga, como por
exemplo a bananeira. Além disso, se o esterco utilizado não for compostado,
deve-se misturá-lo à terra de enchimento da cova com antecedência mínima
de 30 dias, para que o processo de fermentação não prejudique o desenvolvimento
das raízes novas.
Lahav, citado por Lahav & Turner (1983), observou que a aplicação de até
80 t/ha/ano de resíduos de estábulos favoreceu o crescimento, antecipou o
florescimento e reduziu o tempo entre o florescimento e a colheita da bananeira.
Os resíduos por si só incrementaram o rendimento em 33%, sendo sempre
vantajosa a aplicação conjunta de fertilizantes minerais com a matéria orgânica.
Em um bananal bem conduzido, estima-se um fornecimento de 180 a 200
t/ha/ano de restos da cultura. Em alguns trabalhos desenvolvidos na Jamaica,
citados por Oschatz (1962), observou-se que a aplicação de 45 kg de esterco/
planta aumentou significativamente a produção no segundo ano.
240
A cultura da banana

Solos, nutrição e adubação
Em geral, recomenda-se a aplicação de 10 a 20 litros de esterco de curral
por cova, porém, a quantidade e o tipo de material orgânico dependerá da
disponibilidade e economicidade da aplicação. No entanto, recomenda-se dar
preferência ao esterco de curral, em razão do maior volume utilizado.
Mineral: macronutrientes
A adubação é um dos principais fatores atuantes na produção da maioria das
culturas, influenciando a produtividade, a qualidade dos frutos e a resistência
às doenças. A adubação mineral da bananeira apresenta algumas
particularidades que a difere de outras plantas, pois, após o primeiro ano de
produção, encontram-se no bananal plantas em diferentes estádios de
desenvolvimento, sendo portanto necessário o suprimento constante de todos
os nutrientes. Sabe-se ainda que, da parte vegetativa aérea que a bananeira
produz durante seu ciclo, são devolvidos aproximadamente dois terços ao
solo na forma de pseudocaule e folhas. Considerando que somente os cachos
da bananeira são retirados do campo, e que as folhas – que contêm em torno
de 3% de K – retornam ao solo, acredita-se haver uma recuperação significativa
da quantidade de K aplicada pelo processo de mineralização dos resíduos
vegetais (Martin-Prével, 1964). Lacoeuilhe (1974) observou que em solos
com elevado teor de K, à medida que se fornece mais N, a bananeira absorve
mais K.
As necessidades de adubação da bananeira citadas na literatura são muito
variáveis, pois as mesmas são dependentes não só das condições de solo e
clima, mas também das exigências nutricionais diferenciadas que demonstram
as variedades. Lahav & Turner (1983) apresentaram as quantidades de NPK
utilizadas em diversos países e em diferentes variedades de banana (Tabela 19).
As quantidades de adubo extraídas pela colheita representam, portanto,
quanto dos nutrientes estão saindo da área, podendo-se, desta forma,
comparando-se com as doses aplicadas, estimar se as adubações que estão
sendo efetuadas estão mantendo, enriquecendo ou empobrecendo o solo. Devese
lembrar, também, que os adubos aplicados não são apenas imobilizados
pelas diferentes partes da planta, mas também perdidos por lixiviação, por
imobilização pelas plantas daninhas, por fixação em partículas minerais do
solo e por volatilização. Portanto, no suprimento de nutrientes para a bananeira,
não basta somente repor o que está sendo exportado pela colheita. Para estimar
as doses de máxima eficiência econômica, ensaios de campo são necessários
nas condições edafoclimáticas de cada local, de forma a definir as adubações
com base nos níveis de nutrientes no solo.
A cultura da banana
241

Solos, nutrição e adubação
As Tabelas de 20 a 26 apresentam as recomendações de adubação para
alguns estados brasileiros com base nas análises de seus solos. Após a adoção
de um esquema de adubação, é necessário o acompanhamento do bananal
para detectar possíveis sintomas de deficiências e/ou desequilíbrios, devendose
efetuar a análise foliar e de solo anualmente e observar a produtividade da
cultura, de forma a adequar a adubação para obter os níveis nutricionais e de
produtividade desejados.
Tabela 19. Doses de NPK usadas em plantações de bananeira em diferentes
países (kg/ha/ano).
País Cultivar N P K
Austrália (NSW) Williams 180 40-100 300-600
Austrália (N.Territory) Williams 100 100 630
Austrália (Qld.) Mons Mari 280-370 70-200 400-1.300
Canaries Dwarf Cavendish 400-560 100-300 400-700 1
Caribean Is. Robusta, Poyo 160-300 35-50 500
Costa Rica Valery 300 - 550
Honduras Valery 290 - -
India Robusta 300 150 600 1
India (Assam) Dwarf Cavendish 600 140 280 1
Israel (Coastal Plain) Williams 400 90 1.200 1
Israel (Jordan Valley) Williams 400 40 - 1
Ivory Coast (Azaguine) Grand Nain 110 - 190
Ivory Coast (Nieky) Grand Nain 180 - 310
Jamaica Valery 225 65 470
Taiwan Fairyman 400 50 750
1 Adicionam anualmente consideráveis quantidades de esterco.
Fonte: Lahav & Turner (1983).
242
A cultura da banana

Solos, nutrição e adubação
Tabela 20. Recomendações de uso de fertilizantes em bananeira ‘Prata’, no
Espírito Santo.
Produtividade esperada: 10 t/ha
Adubação após 30 dias do plantio:
Fósforo (ppm) N-P2 O5 = (g/cova)
20 20-15
Adubação após o quarto mês do plantio:
Potássio (ppm)
80
N-K2O = g/cova
30-80 30-50
Adubação após o nono mês do plantio:
Potássio (ppm)
< 80 >80
N-K2O = g/cova
35-100 35-70
Adubação de produção:
Potássio (ppm)
80
N-P N-P2O5-K2o = g/touceira
2O5-K2O = g/touceira
90-50-200 90-50-150
Fonte: Prezotti (1992).
- Acrescentar, por touceira, 15 g de sulfato de zinco.
- Parcelar as adubações em três vezes: setembro, dezembro e março. Distribuir o adubo a 40 cm, na
parte da frente da touceira.
Para efetuar a adubação potássica (elemento mais requerido pela bananeira) é necessário que
os nutrientes Ca + + e Mg + + estejam em níveis adequados. Um desequilíbrio destes três nutrientes
pode causar o azul-da-bananeira – alteração no metabolismo da planta que favorece o ataque do
mal-do-panamá. A relação K/Mg acima de 0,4 pode favorecer a ocorrência desta doença.
A cultura da banana
243

Solos, nutrição e adubação
Tabela 21. Recomendações de uso de fertilizantes em bananeira não irrigada, na Bahia.
244
A cultura da banana
1 Em bananais já implantados (a partir do primeiro ano), utilizar as doses anuais recomendadas na tabela, após análise de solo, sendo o P aplicado de
uma única vez e o N e K divididos em três ou quatro aplicações. Dentro de cada época prevista, a aplicação dos adubos deve ocorrer em períodos de
boa umidade no solo, de modo a facilitar o aproveitamento dos nutrientes.
Fonte: Comissão Estadual de Fertilidade do Solo (1989).

Informações complementares da Tabela 21:
Cultivares Produtividades
médias (t/ha)
Produtividades
esperadas (t/ha)
Espaçamento
(m)
Solos, nutrição e adubação
Densidade
(covas/ha)
A cultura da banana
Ciclo
(meses)
Prata 6 - 8 10 - 15 3,0 x 3,0 1111 14 - 16
Terra 12 - 16 25 - 35 3,0 x 3,0 1111 14 - 18
D’Angola 7 - 9 10 - 15 3,0 x 2,0 1667 14 - 18
Prata Anã 8 - 10 12 - 18 2,5 x 2,5 1600 14 - 16
Pacovan 8 - 10 12 - 18 3,0 x 2,0 1111 14 - 16
Mysore 9 - 12 15 - 20 3,0 x 2,0 1667 14 - 16
Tabela 22. Recomendações de uso de fertilizantes em bananeira irrigada, na
Bahia.
Nutrientes Plantio Em cobertura - dias após o plantio
90 180 270 360 A partir
do 1 o ano 1
.................................... N(kg/ha) .................................
Nitrogênio min.l min. ou org.
25 50 50 50 50 300
Fósforo no solo - ppm P
(Mehlich) .................................. P2O5 (kg /ha) .............................
Até 10 150 - - - - 100
11 a 20 120 - - - - 70
21 a 40 80 - - - - 40
Potássio no solo - ppm K
(Mehlich) ................................. K2O(kg/ha) ................................
Até 60 50 50 50 50 50 400
61-120 35 35 35 35 35 300
121-160 20 20 20 20 20 150
1 A partir do primeiro ano, as doses de N e K2O deverão ser divididas em quatro aplicações
a cada período de 90 dias.
Fonte: Comissão Estadual de Fertilidade do Solo (1989).
245

Solos, nutrição e adubação
Informações complementares da Tabela 22:
Variedades: Pacovan e Prata Anã
Espaçamento: 4,0 x 2,0 x 2,0m
Densidade: 1.667 plantas/ha.
Produtividade esperada: 20.000 kg/ha
Adubação orgânica: Aplicar 15 litros de esterco de curral por cova e por família, no
plantio, e a cada ano.
Tabela 23. Recomendações de uso de fertilizantes em bananeira, em Minas
Gerais.
Produtividade esperada: 10 t/ha
Espaçamento: 4,0 a 5,0 m x 2,0 m
Adubação mineral:
A. Adubação da cova de plantio:
246
A cultura da banana
Quantidade (g/cova)
P2O5
K2O
Total 120 90
Observações:
• Sugere-se usar metade da dose de P2O5 na forma solúvel em água e metade na
forma de fosfato natural, com base no teor de P2O5 solúvel.
• Recomenda-se, ainda, aplicar, misturados à terra de enchimento da cova e aos
fertilizantes, 20 litros de esterco de curral, ou 5 litros de esterco de galinha, ou
2 litros de torta de mamona, 60 dias antes do plantio, e 100g de calcário
dolomítico para cada tonelada aplicada na área total.
B. Adubação de crescimento e frutificação:
Quantidade (g/planta)
Parcelamentos Planta-mãe Planta-filha
N K2O N P2O5 K2O
A 20 - 60 70 -
B 80 180 40 - 120
C 140 240 - - -
Total 240 420 100 70 120
Fonte: Comissão de Fertilidade do Solo do Estado de Minas Gerais (1989).

Solos, nutrição e adubação
Observações da Tabela 23:
• Época dos parcelamentos da planta-mãe: (A), (B) e (C) são parcelamentos
realizados nos períodos de pegamento da muda (A), dois meses após (B) e no
aparecimento da inflorescência (C).
• Época do parcelamento da planta-filha: (A) refere-se à época em que se realiza
a colheita da planta-mãe e (B), passados dois meses da época (A).
• Encontrando-se pela análise de solo teores de P e/ou K em níveis baixos, usar
o total da adubação estabelecida; se em níveis médios, aplicar dois terços da
adubação; e, em níveis altos, adicionar um terço da adubação recomendada.
C. Níveis de P e K utilizados na interpretação da fertilidade do solo.
Classificação
Características Unidade Baixo Médio Alto
K (disponível) ppm 0-45 46-80 > 80
P (disponível), solo textura argilosa ppm 0-5 6-10 > 10
P (disponível), solo textura média ppm 0-10 11-20 > 20
P (disponível), solo textura arenosa ppm 0-20 21-30 > 30
Fonte: Comissão de Fertilidade do Solo do Estado de Minas Gerais (1989).
A cultura da banana
247

Solos, nutrição e adubação
Tabela 24. Recomendações de uso de fertilizantes em bananeira, no Rio
Grande Sul e em Santa Catarina.
1. NITROGÊNIO
Adubações de formação e de reposição
Cultivares
Fonte: Comissão de Fertilidade do Solo-RS/SC (1995).
248
Teores de
matéria
orgânica
no solo
Observações da Tabela 24.
Adubação de pré-plantio: aplicar na instalação do povoamento, preferentemente
a lanço, com incorporação, no mínimo, na camada arável. No caso de
plantio em encostas muito declivosas, sugere-se a aplicação dos fertilizantes após
o coveamento, colocando-se metade das doses nas covas, homogeneizando-se
bem com o solo; o restante deve ser aplicado em torno das mesmas.
Adubação de plantio: aplicar na cova ou sulco de plantio. Misturar, juntamente
com o fertilizante fosfatado, 15-20 litros de esterco de bovinos ou 3-4 litros de
composto ou esterco de aves curtido, por cova, e misturar bem com o solo. O
plantio ocorre, principalmente, nos meses de outubro e novembro.
Adubação de formação (ou crescimento): corresponde à adubação do
primeiro ciclo, ou seja, do primeiro ano. Visa a suprir as quantidades de nutrientes
extraídas pelos cachos e o necessário para a formação dos demais órgãos da
planta. As doses devem ser divididas em partes iguais, conforme o número de
famílias.
A cultura da banana
Adubação nitrogenada
Formação Reposição
Meses subseqüentes ao plantio das mudas
Jan. Abr. Ago. Dez. Abr.
....%.... .................................................. kg N/ha ......................................
Nanica 5,0

Tabela 24. Continuação.
2. FÓSFORO
Adubações de pré-plantio, de plantio, de formação e de reposição:
Cultivares Teor de
P no solo
Fonte: Comissão de Fertilidade do Solo-RS/SC (1995).
Adubação fosfatada
Formação
Pré-plantio Plantio Meses subseqüentes
ao plantio das mudas
Solos, nutrição e adubação
Abr. Ago. Dez. Abr. Reposição
...................... kg P205/ha ...............................
Limitante 120 40 25 25 25 25 45
Nanica Muito baixo 90 40 25 25 25 25 45
Nanicão Baixo 60 40 25 25 25 25 45
Grande Naine Médio 30 30 25 25 25 25 30
Suficiente 0 15 25 25 25 25 25
Alto 0 ≤15 ≤25 ≤25 ≤25 ≤25 ≤25
Limitante 120 25 13 13 13 13 22
Muito baixo 90 25 13 13 13 13 22
Prata Baixo 60 25 13 13 13 13 22
Branca Médio 30 20 13 13 13 13 15
Enxerto Suficiente 0 15 13 13 13 13 13
(S. Catarina) Alto 0 ≤15 ≤13 ≤13 ≤13 ≤13 ≤13
3) POTÁSSIO
Adubação de pré-plantio, plantio, formação e reposição:
Cultivares Teor de
K no solo
Préplantio
Fonte: Comissão de Fertilidade do Solo-RS/SC (1995).
Adubação Potássica
Formação
Meses subseqüentes
ao plantio de mudas
Jan. Abr. Ago. Dez. Abr.
A cultura da banana
Reposição
.................................................. kg K 20/ha .....................................
Limitante 130 65 65 65 65 65 65
Muito baixo 100 65 65 65 65 65 65
Nanica Baixo 70 65 65 65 65 65 65
Nanicão Médio 40 65 65 65 65 65 65
Grande Naine Suficiente 20 65 65 65 65 65 65
Alto 0 ≤65 ≤65 ≤65 ≤65 ≤65 ≤65
Limitante 130 33 33 33 33 33 33
Muito baixo 100 33 33 33 33 33 33
Prata Baixo 70 33 33 33 33 33 33
Branca Médio 40 33 33 33 33 33 33
Enxerto Suficiente 20 33 33 33 33 33 33
(S. Catarina) Alto 0 ≤33 ≤33 ≤33 ≤33 ≤33 ≤33
249

Solos, nutrição e adubação
Adubação de reposição (ou manutenção): aplicada no bananal em fase de
produção. Visa a restituir os nutrientes contidos nos cachos e as perdas ou
imobilizações temporárias. As doses indicadas devem ser aplicadas a cada quatro
meses, após a adubação de formação. O cálculo das doses foi baseado na
produtividade de 30 toneladas/ha/ano para as cultivares Nanica, Nanicão e Grande
Maine. Para as cultivares Prata, Branca e Enxerto, assumiu-se a produtividade de
15 toneladas/ha/ano. É recomendado o ajuste das doses indicadas na Tabela 25,
ocorrendo produtividades diferentes das especificadas.
Tabela 25. Recomendações de uso de fertilizantes em bananeira ‘Prata’, no
Estado de São Paulo.
Produtividade P resina (mg/dm 3 ) K + trocável (mmolc/dm 3 )
250
esperada Nitrogênio 0-5 6-12 13-30 >30 0-0,7 0,8-1,5 1,6-3,0 >3,0
(t/ha) (kg/ha) ------- P2O5 (kg/ha) ------ ------- K2O (kg/ha) --------
< 20 120 80 60 40 20 330 330 130 0
20-30 190 100 80 50 30 410 310 210 150
30-40 270 140 110 70 40 490 390 290 210
40-50 350 180 140 90 50 570 470 370 270
50-60 430 220 170 110 60 650 550 450 330
> 60 500 260 200 130 70 730 630 530 390
Observações da Tabela 25:
Espaçamento:
- Cultivares de porte baixo e médio: 2x2m ou 2 x 2,5m (2.500 a 2.000 famílias/ha).
- Cultivares de porte alto: 2,5 x 3m ou 3 x 3 m (1.111 a 1.333 famílias/ha).
Adubação de plantio: aplicar por cova 10 litros de esterco de curral ou 2 litros
de esterco de aves, e a metade das doses de fósforo da Tabela 25, estabelecidas
pela análise de solo e pela produtividade esperada. Em solos com menos de 1,3
mg/dm 3 de zinco, aplicar, no plantio, 5 kg/ha de zinco.
Adubação de formação: aos 30-40 dias após o plantio, utilizar 20% das doses
de N e K recomendadas na Tabela 25. Aos 70-90 dias, aplicar o restante da
adubação fosfatada e 50% das doses de N e K. Aplicar os fertilizantes em círculos
de 100 cm de diâmetro ao redor da planta.
Adubação de formação e de produção: aplicar, em função dos resultados
da análise de solo e da produtividade esperada, as doses de fertilizantes da Tabela 25.
A cultura da banana

Solos, nutrição e adubação
Adubação de produção: as adubações anuais de N, P e K, por família, deverão
ser ajustadas em função da produtividade esperada, e teores de P e K revelados
pela análise de solo. Em áreas sujeitas a períodos de seca sazonais, parcelar a
adubação em três aplicações, no início, meado e final do período chuvoso. Em
áreas irrigadas ou sem déficit hídrico, parcelar a adubação em seis vezes.
Distribuir os adubos em semicírculos de 100 cm de raio, na frente do rebento
mais jovem (no sentido do deslocamento da família).
Utilizar fontes de N ou P capazes de fornecer anualmente 30 kg/ha de enxofre.
Adubação com micronutrientes: aplicar anualmente 25 g de sulfato de zinco
(quando for constatada a deficiência de zinco nas folhas) e 10 g de ácido bórico
no orifício aberto no rizoma, por ocasião do debaste.
Nas adubações iniciais, deve-se colocar o N na forma de sulfato para prevenir
deficiências de S, caso se pense em utilizar nas fertilizações subseqüentes a
uréia e o superfosfato triplo, adubos com menor quantidade de S. Às vezes,
pode-se observar sintomas de deficiência de potássio onde o solo é rico neste
nutriente, o que pode indicar problemas no sistema radicular, que não deve
estar em boas condições para absorvê-lo do solo (Tezenas du Montcel, 1987).
Malavolta & Vitti (1984), em caso de deficiências, recomendaram:
Mg – aplicação foliar de MgSO 4 a 1%; S – misturas de NPK com 4% de S ou
30-50 kg de S/ha/ano. Tezenas du Montcel (1987) sugeriu: N – doses de
75 a 300 kg/ha; K – 250 a 600 kg de K/ha; Mg – 50 a 100 kg de sulfato de
magnésio. Para correção do azul-da-bananeira, Charpentier & Martin-Prével
(1968) recomendaram 50 a 110 kg de MgO/ha.
Mineral: micronutrientes
Acredita-se que os micronutrientes necessários ao desenvolvimento da
bananeira são fornecidos pelo solo e pela adubação orgânica. Porém, pode-se
efetuar adubações na cova ou em cobertura com micronutrientes, para evitar
futuros problemas. O Zn é um dos elementos cuja importância tem sido mais
relatada na planta de bananeira, recomendando-se a aplicação de 10 a 15 g de
sulfato de zinco/touceira, em cobertura, parcelado em três aplicações.
No caso de constatar sintomas de deficiência, Malavolta & Vitti (1984)
recomendaram: boro (B) – 1 a 2 kg/ha de B na mistura de adubos; cobre
(Cu) – aplicação foliar de CuSO 4 a 0,5% neutralizado com cal ou aplicação
no solo de 0,25 kg/ha de Cu; ferro (Fe) – fornecimento foliar de FeSO 4 a
0,5% ou de quelato (Fe-EDTA); manganês (Mn) – aplicação foliar de MnSO 4
a 0,25% ou de 7-11 kg/ha de Mn no solo; molibdênio (Mo) – fornecimento
foliar de molibdato de Na ou amônio com 4 ppm de Mo; zinco (Zn) – aplicação
foliar de ZnSO 4 a 0,5% ou 2 a 3 kg/ha de Zn.
O excesso de Na pode ser corrigido com gesso, isto é, para cada meq/100g
de Na no solo, a 15 cm de profundidade, recomendam-se 2,1 t/ha de gesso.
(Comissão Estadual de Fertilidade do Solo, 1989).
A cultura da banana
251

Solos, nutrição e adubação
Época e localização dos adubos
As plantas têm necessidades diferenciadas durante todo o seu ciclo de vida.
Portanto, a quantidade de adubo juntamente com a época de aplicação e
localização adequadas determinam o sucesso da adubação, com a obtenção de
boas produções.
Teoricamente, a partir das necessidades nutricionais fisiológicas de um
bananal, deve-se fazer um parcelamento mensal da adubação, mas isto, muitas
vezes, não é viável.
Em bananais recém-plantados, recomenda-se o seguinte esquema de
adubação: primeira fase (do plantio até a diferenciação floral) – N, P, S, Ca,
Mg e micronutrientes; segunda fase (da diferenciação floral até a colheita) – K
(Moreira, 1987).
Como os sintomas de deficiência de potássio aparecem no florescimento,
Tezenas du Montcel (1987) indicou aplicar potássio dois a três meses antes da
data estimada do florescimento, de forma a garantir um bom desenvolvimento
dos frutos. Gomes (1988) sugeriu para a cv. Prata, cultivada em solos com
teores de médio a alto de potássio, parcelar este nutriente em três vezes, de
forma que a primeira dose seja aplicada aos 180 dias após o plantio.
No Estado da Bahia, a Comissão Estadual de Fertilidade do Solo (1989)
recomendou para a bananeira, em condições de sequeiro, a aplicação de P na
cova, enquanto N deve ser parcelado em quatro doses e K, em três doses. Em
bananais adultos, o P é aplicado de uma única vez, enquanto o N e o K podem
ser parcelados em três ou quatro vezes. Já para a bananeira sob irrigação
recomenda-se, do plantio ao final do primeiro ano, a aplicação de todo o P na
cova, e o N e o K em cinco doses: no plantio, aos 90, 180, 270 e 360 dias. A
partir do primeiro ano, as doses de NPK devem ser divididas em quatro
aplicações a cada período de 90 dias.
No Estado do Espírito Santo, Prezotti (1992) propôs aplicar, após 30 dias
do plantio, N e P; após o quarto e o nono mês de plantio, N e K. Já na fase de
produção, a adubação deve ser parcelada em três vezes.
Além da questão econômica e da época de maior exigência por cada
nutriente, o parcelamento deve levar em conta a classe do solo e as suas
condições de umidade. Em solos arenosos o parcelamento mais freqüente é
necessário, pois as perdas dos adubos por lixiviação é maior, assim como em
plantios estabelecidos em áreas inclinadas, que ficam sujeitos à perda de adubo
por arraste. Nestes casos, recomenda-se a aplicação parcelada em quatro doses
por ano.
Em termos gerais, o nitrogênio deve ser fracionado em três ou quatro
vezes no ano, devendo a sua aplicação iniciar-se no primeiro mês após o plantio.
As aplicações devem ser maiores no início do crescimento, pois, quanto mais
próximo do florescimento, menor é a exigência da bananeira por esse nutriente.
Em regiões com pluviosidade elevada, devem-se fazer adubações mensais com
este nutriente. Já o fósforo tem pouca mobilidade no solo e deve ser aplicado
252
A cultura da banana

Solos, nutrição e adubação
todo, de uma única vez, junto com o adubo orgânico, na cova de plantio, e
repetido anualmente quando a análise de solo assim o determinar. Em solos
com mais de 27 ppm não se recomenda adubar com fósforo, e com menos de
4 ppm já começam a aparecer sintomas de deficiência (Langenegger & Du
Plessis, 1980a). O potássio deve ser aplicado antes da emissão da inflorescência,
ou seja, mais ou menos quatro meses após o plantio, pois este elemento é de
grande importância na fase de diferenciação floral. A quantidade total
recomendada deve ser parcelada e aplicada de quatro em quatro meses ou de
três em três meses, sendo o maior parcelamento recomendado principalmente
para solos arenosos.
As adubações devem ser efetuadas após o desbaste, antes da desfolha, de
forma a que somente a família se beneficie dos nutrientes e que as folhas
cortadas sirvam para cobrir o adubo. Não se deve colocar o adubo sobre os
restos da cultura, mas sim diretamente no solo. Na cova deve-se colocar como
fonte de nitrogênio apenas o adubo orgânico, pois as plantas ainda não têm
raízes para se beneficiarem do adubo mineral, que pode, em caso de covas
pequenas, causar salinização e queima das raízes recém-nascidas (Moreira, 1987).
As adubações em cobertura, quando se tem apenas uma planta por cova,
devem ser feitas em círculos, com 10-20 cm de largura e 20-40 cm distante da
muda, aumentando-se a distância com a idade da planta (Figura 14). Quando
a touceira está formada devem-se distribuir os adubos em meia lua, circundando
a planta-neta (Figura 14). Em terrenos inclinados deve-se proceder à
distribuição do adubo em meia-lua, circundando a planta acima da inclinação
e incorporando-o ligeiramente ao solo. Em terrenos planos, com alta densidade
de plantio, pode-se distribuir o adubo a lanço, nas ruas.
Figura 14. Localização dos adubos aplicados em cobertura.
a) planta-mãe; b) planta adulta.
A cultura da banana
253

Solos, nutrição e adubação
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