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Tierärztliche Hochschule Hannover Einfluss unterschiedlicher ...

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Abbildungen<br />

2.1 Schematische Darstellung der IVP beim Rind; modifiziert nach NIEMANN und<br />

MEINECKE (1993) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 16<br />

3.1 Schematische Darstellung des Arbeitsablaufs der OPU-Versuche . . . . . . . . 30<br />

3.2 OPU-Equipment: (1) Vakuumpumpe, (2) Ultraschallgerät, (3) Sondenträger;<br />

Wasserbad, Schlauchsystem und Auffanggefäß nicht abgebildet; Abbildung nach<br />

HANSTEDT (2009) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 31<br />

3.3 OPU-Sondenträger mit Nadelführung sowie Vergrößerung des vorderen Teiles;<br />

Abbildung nach HANSTEDT (2009) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 32<br />

3.4 Schematische Darstellung der Follikelpunktion;<br />

Abbildung nach HANSTEDT (2009) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 32<br />

3.5 Apparatur zur Separation von KOK aus Follikelpunktaten;<br />

Abbildung nach HANSTEDT (2009) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 33<br />

3.6 IVP-taugliche bovine Kumulus-Oozyten-Komplexe, 50fache Vergrößerung . . 33<br />

3.7 Schematische Darstellung des IVP-Versuchsteils . . . . . . . . . . . . . . . . 36<br />

3.8 a: 8-Zell-Embryo, b: Morula, c: expandierte Blastozysten, d: geschlüpfte Blastozysten<br />

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 39<br />

4.1 Graphische Darstellung des Progesteronprofils während des Versuchszeitraumes;<br />

+ an den Punktionstagen gemessene Werte, – Näherungsfunktion . . . . . 47<br />

4.2 Serumprogesterongehalt (links; ¯n±SD, n=8; a:b mit P ≤0,05), Fläche (Mitte;<br />

¯n±SD, n=8; a:b mit P ≤0,05) und Lutealphasenlänge (rechts; ¯n±SD, n=8) des<br />

natürlichen und induzierten C.l. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 48<br />

4.3 a: gereifte Oozyten der Kontrollgruppe; b: mit EtOH gereift; c: mit P4 gereift;<br />

Maßstab in allen Bildern gleich . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 51<br />

4.4 mRNA-Gehalte der OPU-Oozyten bezüglich GDF9, BMP15 und HIF2α; a:b<br />

mit P < 0,05, * = Tendenz . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 53<br />

4.5 mRNA-Gehalte der OPU-Oozyten bezüglich der Progesteronrezeptoren; a:b<br />

mit P < 0,05, * = Tendenz . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 54<br />

4.6 mRNA-Gehalte der gereiften Oozyten aus dem IVM-Versuch bezüglich GDF9<br />

und HIF2α; a:b mit P < 0,05, * = Tendenz . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 55<br />

4.7 mRNA-Gehalte der gereiften Oozyten aus dem IVM-Versuch bezüglich der<br />

Progesteronrezeptoren; a:b mit P < 0,05, * = Tendenz . . . . . . . . . . . . . . 56<br />

B.1 Graphische Darstellung des Progesteronprofils der Einzeltiere während des Versuchszeitraumes;<br />

Zyklustag = Tag nach natürlicher Brunst; + gemessene Werte,<br />

– Näherungsfunktion . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 98<br />

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