B Verzeichnis der Gesamtdaten Tabelle B.61: Transkripthäufigkeiten in den in vitro gereiften Eizellen der Gruppe 150 ng/ml Analysedatum Eizelle No. GLUT1 PGR GDF9 HIF2a PAQR5 PGRMC1 PGRMC2 BMP15 08.03.2012 2015 4,77 1,33 172,91 37,89 5,15 33,68 5,67 197,25 08.03.2012 2016 2,32 1,00 209,94 16,84 1,81 18,30 4,15 174,11 08.03.2012 2017 1,49 2,15 193,19 35,60 2,72 35,11 9,15 194,53 21.03.2012 2019 2,16 1,10 263,90 22,85 2,15 31,21 6,04 175,32 Mittelwert 2,69 1,40 209,99 28,30 2,96 29,58 6,25 185,30 ±SEM ±0,72 ±0,26 ±19,50 ±5,05 ±0,75 ±3,84 ±1,05 ±6,14 Tabelle B.62: Transkripthäufigkeiten in den in vitro gereiften Eizellen der Gruppe 300 ng/ml Analysedatum Eizelle No. GLUT1 PGR GDF9 HIF2a PAQR5 PGRMC1 PGRMC2 BMP15 12.03.2012 1982 1,86 2,03 132,87 30,99 5,48 42,04 9,47 153,69 21.03.2012 1984 2,09 0,80 98,62 26,06 2,92 25,17 5,63 111,73 18.10.2011 1986 2,33 1,06 292,50 27,33 2,89 44,09 10,95 201,17 26.10.2011 1981 9,67 6,70 1108,09 104,25 10,01 151,57 29,12 839,77 Mittelwert 3,99 2,65 408,02 47,16 5,33 65,72 13,79 326,59 ±SEM ±1,90 ±1,38 ±237,15 ±19,06 ±1,68 ±28,93 ±5,23 ±172,03 Tabelle B.63: Transkripthäufigkeiten in den in vitro gereiften Eizellen der Gruppe 450 ng/ml Analysedatum Eizelle No. GLUT1 PGR GDF9 HIF2a PAQR5 PGRMC1 PGRMC2 BMP15 12.03.2012 2049 4,77 0,08 736,15 46,98 5,95 57,83 9,61 428,71 12.03.2012 2091 1,81 1,81 57,04 16,49 2,15 13,30 2,26 68,78 21.03.2012 2050 3,44 2,18 565,69 30,99 4,33 39,50 6,38 269,45 25.10.2011 2092 2,69 0,16 111,91 14,28 1,55 30,40 8,61 153,93 Mittelwert 3,18 1,06 367,70 27,19 3,50 35,26 6,72 230,22 ±SEM ±0,63 ±0,55 ±167,55 ±7,57 ±1,01 ±9,28 ±1,63 ±77,90 112
Abbildungen 2.1 Schematische Darstellung der IVP beim Rind; modifiziert nach NIEMANN und MEINECKE (1993) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 16 3.1 Schematische Darstellung des Arbeitsablaufs der OPU-Versuche . . . . . . . . 30 3.2 OPU-Equipment: (1) Vakuumpumpe, (2) Ultraschallgerät, (3) Sondenträger; Wasserbad, Schlauchsystem und Auffanggefäß nicht abgebildet; Abbildung nach HANSTEDT (2009) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 31 3.3 OPU-Sondenträger mit Nadelführung sowie Vergrößerung des vorderen Teiles; Abbildung nach HANSTEDT (2009) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 32 3.4 Schematische Darstellung der Follikelpunktion; Abbildung nach HANSTEDT (2009) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 32 3.5 Apparatur zur Separation von KOK aus Follikelpunktaten; Abbildung nach HANSTEDT (2009) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 33 3.6 IVP-taugliche bovine Kumulus-Oozyten-Komplexe, 50fache Vergrößerung . . 33 3.7 Schematische Darstellung des IVP-Versuchsteils . . . . . . . . . . . . . . . . 36 3.8 a: 8-Zell-Embryo, b: Morula, c: expandierte Blastozysten, d: geschlüpfte Blastozysten . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 39 4.1 Graphische Darstellung des Progesteronprofils während des Versuchszeitraumes; + an den Punktionstagen gemessene Werte, – Näherungsfunktion . . . . . 47 4.2 Serumprogesterongehalt (links; ¯n±SD, n=8; a:b mit P ≤0,05), Fläche (Mitte; ¯n±SD, n=8; a:b mit P ≤0,05) und Lutealphasenlänge (rechts; ¯n±SD, n=8) des natürlichen und induzierten C.l. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 48 4.3 a: gereifte Oozyten der Kontrollgruppe; b: mit EtOH gereift; c: mit P4 gereift; Maßstab in allen Bildern gleich . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 51 4.4 mRNA-Gehalte der OPU-Oozyten bezüglich GDF9, BMP15 und HIF2α; a:b mit P < 0,05, * = Tendenz . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 53 4.5 mRNA-Gehalte der OPU-Oozyten bezüglich der Progesteronrezeptoren; a:b mit P < 0,05, * = Tendenz . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 54 4.6 mRNA-Gehalte der gereiften Oozyten aus dem IVM-Versuch bezüglich GDF9 und HIF2α; a:b mit P < 0,05, * = Tendenz . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 55 4.7 mRNA-Gehalte der gereiften Oozyten aus dem IVM-Versuch bezüglich der Progesteronrezeptoren; a:b mit P < 0,05, * = Tendenz . . . . . . . . . . . . . . 56 B.1 Graphische Darstellung des Progesteronprofils der Einzeltiere während des Versuchszeitraumes; Zyklustag = Tag nach natürlicher Brunst; + gemessene Werte, – Näherungsfunktion . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 98 113
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Tierärztliche Hochschule Hannover
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Meinen Großvätern
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Inhalt 3.2.1 Herkunft der Ovarien .
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text
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1 Einleitung BONS et al. 1994, BONI
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2 Literatur 2.1 Gewinnung von Kumul
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2.2 Einfluss des OPU auf die Gesund
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2.5 Einfluss des Zyklusstandes auf
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2.6 Beurteilung der Entwicklungskom
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2.7 Einfluss des Zyklusstandes auf
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2.9 In-vitro-Maturation (IVM) bovin
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2.11 Einfluss der Maturationsbeding
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2.12 Einfluss der Steroidsupplement
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2.13 MessengerRNA-Expression entwic
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2.13 MessengerRNA-Expression entwic
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2.13 MessengerRNA-Expression entwic
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2.14 MessengerRNA-Expression von Pr
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3 Material und Methoden Die genaue
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3.1 Ovum Pick-Up (OPU) Abbildung 3.
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3.1 Ovum Pick-Up (OPU) Abbildung 3.
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3.2 In-vitro-Produktion boviner Emb
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3.2 In-vitro-Produktion boviner Emb
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3.2 In-vitro-Produktion boviner Emb
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3.3 mRNA-Analyse der Oozyten zur Da
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3.4 Auswertung der Daten und statis
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4 Ergebnisse 4.1 OPU Da alle sechs
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4.1 OPU 4.1.1 Zyklusverhalten und G
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4.1 OPU Tabelle 4.2: Punktierte Fol
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4.2 Progesteronsupplementation wäh
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4.3 mRNA-Expression verschiedener G
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4.3 mRNA-Expression verschiedener G
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5 Diskussion 5.1 Zyklusverhalten w
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5.1 Zyklusverhalten während der OP
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Abkürzungsverzeichnis pg . . . . .
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