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洪佳麟 - 黃慶璨研究室

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微生物與生化研究所微生物組專題報告<br />

題目 : The use of chitosan to damage Cryptococcus neoformans biofilms<br />

作者:Cale N. Street, Aaron Gibbs, Lisa Pedigo, Dane Andersen and Nicolas G. Loebel<br />

文章來源:Biomaterials 31 (2010) 669–679<br />

演講人:Jia-Lin Hong 洪佳麟 R98B47416<br />

指導老師:Ching-Tsan Huang, PhD 黃慶璨 教授<br />

演講日期:May 3, 2010<br />

演講地點:The 6 th Classroom<br />

摘要<br />

植入型醫療器材(如心律調節器、導尿管或人工關節)經常被微生物感染,感染的微生<br />

物形成生物膜後,對殺菌劑及宿主防禦機制的抗性皆會上升。本文研究甲殼素(chitosan,<br />

從甲殼類的外骨骼分離出的聚合物)對於 Cryptococcus neoformans 所形成生物膜的傷害能<br />

力。利用 XTT 還原分析、CFU 測定,發現甲殼素可有效地減少生物膜代謝活性及其細胞<br />

的存活力。利用共軛焦及掃描式電子顯微鏡,也證實甲殼素能穿透生物膜,對真菌細胞<br />

造成傷害。值得注意的是,C. neoformans 的重要致病因素,黑色素化(melanization)也不<br />

會降低甲殼素的抑菌作用。此研究中使用的甲殼素濃度對 C. neoformans 有傷害,但對人<br />

類內皮細胞則無毒性。本研究顯示,甲殼素可傷害 C. neoformans 的生物膜,為植入型醫<br />

療器材的真菌感染問題,提供新的解決方法。<br />

本研究之重要性<br />

前言<br />

生物膜是微生物附著於物體表面、利用周遭養分生長並分泌胞外聚合物之後所形成<br />

的構造,如果人工瓣膜、人工關節等物體表面形成生物膜,將會造成急性或慢性感染,<br />

常見的處理辦法,就是以手術將感染的人工植入物取出。後來有人將植入物包覆上一層<br />

抗生素或殺菌劑,希望減少生物膜的形成,但效果不彰[1]。以甲殼素(chitosan)來對抗生<br />

物膜之研究,或許能提供一個植入型醫療器材表面形成生物膜問題的解決方法。<br />

前人做過的研究<br />

甲殼素是一種便宜、無毒的聚合物,且具有抗微生物的功能[2]。前人曾以Klebsiella<br />

pneumoniae、Staphylococcus epidermidis、S. aureus、S. mutans、S. oralis等細菌為對象,<br />

研究甲殼素對其形成生物膜之影響。發現甲殼素對生物膜之形成及細菌細胞的生長,皆<br />

有抑制的效果[1, 3]。<br />

作者為何要作本研究<br />

前人的研究多以細菌生物膜為主,作者想探討甲殼素對於真菌之生物膜是否有抑制<br />

作用,因而以 Cryptococcus neoformans 為研究對象。


本研究欲完成之項目<br />

本研究欲測試甲殼素對 C. neoformans 生物膜形成之抑制作用,比較生物膜與懸浮細<br />

胞對甲殼素敏感性的不同,及 C. neoformans 產生黑色素是否會影響其對甲殼素的抗性。<br />

材料與方法<br />

1.菌株:C. neoformans B3501,以 Sabouraud dextrose broth 於 30 o C 培養 24 小時備用。<br />

2.生物膜培養:培養真菌細胞後離心收集之,以 PBS 洗兩次,重新懸浮,濃度為 10 7<br />

cells/cm 2 ,將菌液加入 96 孔盤中,於 37 o C 靜置培養,48 小時形成生物膜,以 96 孔盤清<br />

洗器清洗,餘下吸附其上的生物膜。<br />

3. XTT (2,3-bis(2-methoxy-4-nitro-5-sulfophenyl)-5-[(phenylamino) carbonyl]- 2Htetrazolium-hydroxide)reduction<br />

assay:在含有菌液的96孔盤中加入XTT溶液,於37 o C培<br />

養5小時。細胞的mitochondrial dehydrogenase會將XTT tetrazolium salt還原成橘紅色XTT<br />

formazan。以microtiter reader測量顏色變化,以反應細胞活性。<br />

4.真菌細胞黑色素化:以含有 1 mM L-dopa 的 minimal medium broth 培養生物膜 7 天,對<br />

照組則是以無 L-dopa 的 minimal medium broth 培養生物膜 7 天。<br />

5. 甲殼素對 C. neoformans 生物膜的影響:於形成生物膜的 wells 中加入 200 μl 含有不同<br />

濃度甲殼素的 PBS 作用 1 分鐘,於 37 o C 培養 0.5、1 小時,進行 XTT reduction 及 CFU<br />

測量。<br />

6.莢膜大小測量:10 μL細胞與India ink混合,以Olympus AX70 microscope觀察並測算莢<br />

膜大小。<br />

7. ELISA spot:以96孔盤培養生物膜,用microtiter plate washer以含0.05% Tween 20的TBS<br />

洗三次,再以200 ml含有1% BSA的PBS清洗。此後加入2 mg/mL GXM<br />

(glucuronoxylomannan)binding MAb 18B7 接著加入1 mg/mL of biotin-labeled goat<br />

anti-mouse (GAM) IgG1。以含0.05% Tween 20的TBS清洗後,加入50 ml BCIP<br />

(bromo-4-chloro-3-indolyl phosphate) ,於37 o C培養1小時,以無菌水沖洗5次後風乾。<br />

8.多醣分子大小計算:以90Plus/BI-MAS Multi Angle Particle Sizing analyzer內建的quasy<br />

elastic light scattering (QE LS)來分析所分離多醣分子的大小。<br />

9. Zeta potential測量:以Zeta potential analyzer分析樣本粒子的zeta potential,以得知細胞<br />

表面電位。


結果與討論<br />

1. 甲殼素對生物膜形成之影響<br />

在培養基中加入甲殼素,發現生物膜活性隨甲殼素濃度增高而降低。以 SEM 觀察到<br />

加甲殼素的組別,細胞外多醣量明顯減少。<br />

2. 甲殼素對於莢膜多醣釋放之影響<br />

以 ELISA spot 測試生物膜生成時,莢膜多醣的釋放情況,發現加入甲殼素的組別,<br />

其標定到的多醣較多,但大小遠不如對照組。這說明甲殼素會影響細胞釋放多醣至周圍,<br />

可能因此阻礙生物膜的附著。<br />

3. 甲殼素對成熟生物膜的影響<br />

將甲殼素加入成熟生物膜中,發現生物膜細胞活性及存活率皆隨甲殼素的濃度和處<br />

理時間的增加而減少,SEM 及 confocal microscope 的觀察結果則說明加入甲殼素後,其<br />

胞外多醣量及細胞活性皆減少。<br />

4. 甲殼素對懸浮細胞的影響<br />

將甲殼素加入懸浮細胞,發現細胞活性及存活率皆隨甲殼素的濃度增加而減少。跟<br />

生物膜比起來,懸浮細胞對甲殼素的敏感度顯然比較高。SEM 可觀察到因加入甲殼素而<br />

破損的細胞。<br />

5. 甲殼素對莢膜多醣的影響<br />

加入甲殼素培養新型隱球菌細胞,其莢膜明顯變小,且上清液中多醣含量明顯比對<br />

照組多,說明甲殼素或許可將莢膜多醣截切,免疫螢光染色及 SEM 的觀察也顯示同樣的<br />

清況。<br />

6. 甲殼素對胞外多醣及莢膜多醣結構的影響<br />

以 QE LS 儀器測量多醣分子的大小,發現加入甲殼素的組別,其莢膜多醣分子較小,<br />

而胞外多醣分子較大,與上述實驗相符。<br />

7. 甲殼素對 C. neoformans 的 zeta potential 之影響<br />

由於莢膜及黑色素的影響,菌體本身帶負電,經過甲殼素處理後,細菌表面帶有強<br />

力的正電,或許是電性的轉換,造成細胞膜受損。


8. 甲殼素對黑色素化的 C. neoformans 生物膜之影響<br />

當 C. neoformans 產生黑色素後,對免疫細胞的攻擊、氧化壓力的耐受性皆會提高<br />

[4]。而此實驗發現,黑色素化的 C. neoformans 生物膜對甲殼素的耐受性的確比對照組<br />

高,但實驗結果同時也說明,C. neoformans 所產生的黑色素並不會影響甲殼素的抑菌效<br />

果。<br />

參考文獻<br />

1. Carlson RP, Taffs R, Davison WM, Stewart PS. Anti-biofilm properties of chitosan-<br />

coated surfaces. J Biomater Sci Polym Ed 2008;19:1035–46.<br />

2. Rabea EI, Badawy ME, Stevens CV, Smagghe G, Steurbaut W. chitosan as<br />

antimicrobial agent: applications and mode of action. Biomacromolecules<br />

2003;4:1457–65.<br />

3. Busscher HJ, Engels E, Dijkstra RJ, van der Mei HC. Influence of a chitosan on<br />

oral bacterial adhesion and growth in vitro. Eur J Oral Sci 2008;116:493–5.<br />

4. Nosanchuk JD, Casadevall A. Cellular charge of Cryptococcus neoformans:<br />

contributions from the capsular polysaccharide, melanin, and monoclonal<br />

antibody binding. Infect Immun 1997;65:1836–41.

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