THESE DE DOCTORAT DE L'UNIVERSITE PARIS 6 Capucine ...
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2. Electrotransfert 29<br />
La conclusion de cette étude est que très peu de lésions musculaires sont observées (figure 8 c),<br />
les rares cellules musculaires avec centralisation nucléaire observées dans quelques muscles ne sont<br />
pas significatives (figure 8 e), il n’y a pas de lésion vasculaire ou nerveuse, seules quelques lésions<br />
inflammatoires subaigües minimes ou discrètes sont observées au niveau de la gaine conjonctive<br />
périmusculaire (figure 8 d) ou en intramusculaire chez une souris (figure 8 f). On peut supposer<br />
que les lésions inflammatoires au niveau de la gaine conjonctive périmusculaire observées sur les<br />
muscles traités une et trois fois sont dues à l’inhomogénéité de la distribution du champ entre<br />
les électrodes ( [87] et paragraphe précédent).<br />
Biodistribution du plasmide<br />
Différentes études ont montré l’importance de l’accessibilité de l’ADN aux cellules cibles. Ces<br />
études, réalisées principalement sur le muscle squelettique, ont montré qu’améliorer la distribution<br />
du plasmide conduisait à une augmentation de l’expression. Une meilleure distribution peut<br />
être obtenue par exemple par la préinjection d’une solution de sucrose qui crée des espaces entre<br />
les fibres musculaires [36], ou encore avec un prétraitement à la hyaluronidase [105], une enzyme<br />
qui dégrade l’acide hyaluronique, un constituant majeur de la matrice extracellulaire [106]. Par<br />
exemple, Molnar et al. ont montré par histochimie en utilisant le gène LacZ, une augmentation<br />
de la zone du muscle transfectée de 150 à 370% grâce à un prétraitement à la hyaluronidase avant<br />
l’électrotransfert (175V/cm) dans différentes souches de souris [107] (voir aussi chapitre 1). Il est<br />
intéressant de noter que ce prétraitement à la hyaluronidase permet d’utiliser, pour un même<br />
niveau d’expression, des voltages plus faibles tout en réduisant les dommages musculaires [108].<br />
Le poly-L-glutamate a également été utilisé dans le muscle de souris pour augmenter l’expression<br />
d’un transgène : en effet, le poly-L-glutamate est un polymère anionique qui semble augmenter<br />
l’internalisation du plasmide à l’intérieur de la cellule et/ou réduire sa dégradation [109].<br />
2.5 Tissus cibles<br />
L’électrotransfert in vivo apparaît comme une technique simple et efficace de transfert de<br />
gène. Au cours de ces dernières années, cette technique a été employée sur une large variété de<br />
tissus incluant muscle squelettique, peau, foie, poumons, rein, articulations, cerveau, rétine, cornée,<br />
et bien d’autres encore (tableau 4). Différentes conditions d’électrotransfert sont appliquées<br />
selon le tissu cible car le transfert de gène est hautement dépendant de l’organisation du tissu<br />
et de la taille des cellules transfectées. Nous ne détaillerons dans les paragraphes suivants que le<br />
muscle squelettique et la peau, organes que nous avons utilisés au cours de cette thèse.<br />
Muscle squelettique<br />
L’électrotransfert d’ADN dans le muscle squelettique a été découvert de façon indépendante<br />
par trois équipes [76,140–142]. Le muscle squelettique est le tissu cible le plus largement utilisé<br />
pour l’électrotransfert car il offre de nombreux avantages :<br />
– il constitue un large volume facilement accessible,<br />
– le muscle squelettique est constitué de faisceaux musculaires formés eux-mêmes d’un ensemble<br />
de fibres musculaires. Les fibres musculaires sont des cellules très allongées et organisées<br />
en fibres parallèles : de nombreuses fibres auront ainsi une orientation optimale par<br />
rapport au champ et pourront être transfectées sur toute la longueur,<br />
– contrairement aux autres cellules de l’organisme, les cellules musculaires possèdent plusieurs<br />
noyaux plaqués contre la membrane cellulaire ce qui facilite le transfert de gène [143],