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UNIVERSITE DE BOURGOGNE - Université de Bourgogne

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log = log (N/N0) dont N0 est le nombre <strong>de</strong>s colonies formées issue <strong>de</strong> la solution<br />

témoins et N est le nombre <strong>de</strong>s colonies formées après le choc. Plus que log est négatif, plus<br />

que le choc est efficace.<br />

2.3. Dosage <strong>de</strong>s composés d’arôme<br />

2.3.1. Extraction liqui<strong>de</strong>-liqui<strong>de</strong><br />

La γ-dodécalactone est extraite du milieu <strong>de</strong> biotransformation par l’éther diéthylique<br />

(pureté 99,8%, Prolabo, Vaulx-en-Velin). La γ-undécalactone (pureté 99%, Sigma-Aldrich, St<br />

Quentin-Fallavier) a été utilisée comme étalon interne <strong>de</strong> l’extraction et du dosage<br />

chromatographique. Nous avons optimisé l’extraction : 2 mL d’éther diéthylique sont ajoutés<br />

à 2 mL <strong>de</strong> milieu dans un vial en verre <strong>de</strong> 4 mL qui est retourné ensuite une dizaine fois <strong>de</strong><br />

suite. Après 30 min <strong>de</strong> repos, la phase supérieure est prélevée et peut être injectée directement<br />

dans le chromatographe.<br />

2.3.2. Quantification par chromatographie en phase gazeuse<br />

L’appareil est un chromatographe en phase gazeuse Hewlett-Packard HP 6890 series<br />

(Agilent Technologies, Montluçon), équipé d’un injecteur split/splitless et d’un détecteur à<br />

ionisation <strong>de</strong> flamme. Il comporte une colonne capillaire HP-Innowax (longueur 30 m,<br />

diamètre 320 µm, épaisseur du film 0,25 µm) (Agilent Technologies), dont la phase<br />

stationnaire est composée <strong>de</strong> polyéthylène glycol.<br />

Le gaz vecteur est <strong>de</strong> l’azote U, son débit est <strong>de</strong> 3 mL.min -1 . Les extraits sont injectés<br />

automatiquement à l’ai<strong>de</strong> d’un passeur d’échantillons (HP-Injector modèle G1513A). Les<br />

températures <strong>de</strong> l’injecteur et du détecteur sont respectivement <strong>de</strong> 250°C et 300°C. La<br />

température du four est programmée <strong>de</strong> 60°C à 145°C à raison <strong>de</strong> 5°C par minute puis <strong>de</strong> 2°C<br />

par minute jusqu’à 180°C. Les données sont analysées grâce au logiciel d’acquisition et<br />

d’intégration HP-Chemstation (Agilent Technologies).<br />

2.4. Analyses <strong>de</strong>s stérols<br />

Les stérols dans la cellule existent sous 2 formes soit libres dont dans la membrane<br />

plasmique, soit estérifiés (forme réserve) qui sont <strong>de</strong> principaux composés <strong>de</strong>s corps<br />

lipidiques.<br />

Nous avons estimé l’évolution <strong>de</strong>s stérols en fonction du stress remis aux cellules. Les<br />

stérols sont extraits en utilisant n-heptane puis quantifiés par HPLC et spectrométrie. Les<br />

stérols libres sont extraits selon (Shobayashi et al., 2005). Les stérols totaux sont extraits<br />

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