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Klonierung und Charakterisierung von reifungsassoziierten ...

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Material <strong>und</strong> Methoden<br />

Streptavidin-Peroxidase-Lösung: 25 µl (1:2000) Streptavidin-biotinylated horseradish<br />

peroxidase complex (Amersham)<br />

ad 50 ml mit Blocking-Lösung<br />

Detection-Reagent 1 + 2 (Amersham)<br />

Diese Färbung wurde in erster Linie zur Detektion <strong>von</strong> biotinmarkierten<br />

Oberflächenantigenen auf Westernblots verwendet.<br />

Die Membran wurde nach dem Blotten über Nacht bei 4°C in Blocking-Lösung<br />

inkubiert. Nach dreimaligem Waschen mit Wasch-Lösung (je 10´ bei RT) wurde die<br />

Membran mit der Streptavidin-Peroxidase-Lösung für 1 h geschwenkt <strong>und</strong><br />

anschließend nochmal gewaschen (dreimal je 10´ bei RT). Die Färbung erfolgte mit<br />

dem ECL-Detektions-Kit der Firma Amersham nach dem Protokoll des Herstellers<br />

<strong>und</strong> die Detektion wurde mit Autoradiographiefilmen durchgeführt.<br />

3.4.8.4 Mikrosequenzanalyse<br />

Über den monoklonalen Antikörper MAX.11 affinitätschromatographisch gereinigtes<br />

Protein wurde durch N-Glykosidase F (NGF) deglykosyliert <strong>und</strong> anschließend<br />

Chloroform-extrahiert. Über Affinitätschromatographie gereinigtes MAX.3-Antigen<br />

wurde ohne Deglycosylierung Chloroform-extrahiert. In beiden Fällen wurden die<br />

gefällten Proteine in reduzierendem Probenpuffer gelöst, der zusätzlich zu den in<br />

Kapitel 3.4.5 aufgeführten Substanzen β-Mercaptoessigsäure (5%) enthielt. Die<br />

reduzierten Proben wurden durch SDS-PAGE aufgetrennt, auf PVDF-Membran<br />

geblottet <strong>und</strong> mit Coomassie Blue gefärbt. Spezifische Banden wurden<br />

ausgeschnitten <strong>und</strong> die NH2-terminale Sequenz <strong>von</strong> R. Deutzmann (Lehrstuhl für<br />

Biochemie I, Universität Regensburg) auf einem Protein-Sequenziergerät (Applied<br />

Biosystems Modell 477A) mit angeschlossenem PTH-Analyser (Modell 120A)<br />

bestimmt.<br />

3.4.9 Enzymassay für Carboxypeptidase M<br />

benötigte Reagenzien:<br />

HEPES-Puffer: 4.76 g (0.2 M) HEPES/NaOH pH 7.5<br />

2 ml (0.2%) NP-40 (10 %)<br />

ad 100 ml mit aqua bidest<br />

Stoplösung: 21.0 g (1 M) Zitronensäure x H2O/NaOH pH 3.2<br />

ad 100 ml mit aqua bidest<br />

Substrat: 4.64 mg (1 mM) Dansyl-Ala-Arg<br />

ad 10 ml mit aqua bidest (in 1 ml Portionen bei -20°C)<br />

Inhibitor: 0.237 mg (100 µM) MGTA<br />

ad 10 ml mit entgastem Wasser<br />

Standards: 0, 0.5, 1, 2, 5, 10 <strong>und</strong> 20 nmol Dansyl-Ala pro 50 µl<br />

8.4 mg (100 nmol / 50 µl) als Stammlsg.<br />

(in 1 ml Portionen bei -20°C lagern)<br />

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