12.07.2015 Views

SMT 3-2006 - Sveriges Mykologiska Förening

SMT 3-2006 - Sveriges Mykologiska Förening

SMT 3-2006 - Sveriges Mykologiska Förening

SHOW MORE
SHOW LESS
  • No tags were found...

Create successful ePaper yourself

Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.

SVAMPPRESENTATIONFig. 4. Xerocomus subtomentosus(sammetssopp).Fot med grovtådernät. Tyskland,Mainz, 1998-06-21,leg A. Taylor (AT1998029). Foto A.Taylor.dor i hatthuden kan resultera i trasiga hatthudscellersom kan ändra sin struktur och/eller ändrafärg hos vidhängande pigment. Hatthudens ändcellerkan också variera både i struktur ochform beroende på fruktkroppens mognadsgrad.Det är därför viktigt att om möjligt undersökaett antal fruktkroppar i olika mognadsstadier ien enskild kollekt. Hyfriktning och dimensioneri nyckeln och i de korta beskrivningarna nedanär baserade på omogna fruktkroppar.För att studera hatthuden gör man ett preparattaget halvvägs mellan hattkanten och hattmitteneftersom avvikande strukturer som kan förvirraofta uppträder i mitten eller i kanten. Detenklaste sättet att observera hatthuden är genomatt göra ett tunt, radiärt snitt genom huden.Enklast sker detta genom att man först delarfruktkroppen i två halvor med ett skarpt rakbladför att frilägga kött och hatthud. Alternativt kanman om man vill bevara sin fruktkropp helistället skära ut en tjock sektor av hatten därman sedan gör ett snitt. Följande metod kanockså användas på såväl färskt som torkat material:Använd ett dubbelslipat rakblad (enkelslipadeär inte skarpa nog för att åstadkomma tillräckligttunna snitt). Håll försiktigt i biten som skallsnittas med köttet och hatthuden exponeradeoch skär ett antal små, mycket tunna skivor.Försök göra dem så tunna som möjligt.Hattköttet kommer att vara ljust medan hatthudenframtäder som en mörkare linje. De flestasnitten kommer antagligen inte att vara användbaraeftersom de antingen är för tjocka ellerinnehåller en enda röra av hyfer, men med liteenvishet är det oftast möjligt att få framåtminstone några användbara snitt. Det kan därförrekommenderas att man skär ett antal snitt(10-20) och sedan väljer ut de tunnaste.Preparaten placeras i en eller två droppar KOH(2-5%) eller Kongorött löst i vatten eller ammoniak(10-25%) på objektglaset. KOH användslämpligen då pigment i hatthudscellerna skallobserveras. Att färga preparaten med Kongoröttgör det mycket lättare att observera hyalina(opigmenterade) hyfer och inkrusteringar påytan av hatthudshyferna. Infärgning kan ocksåbidra till att man kan få bra foton av mikroskopiskastrukturer.Högre koncentrationer av KOH och ammoniakgör det lättare att få de intorkade hyferna attsvälla men de kan ibland bli alltför uppsvälldavilket i sin tur påverkar mätresultaten. För att fåjämförbara och noggranna mätningar är det därförbäst att välja en standardkoncentration.KOH 2% och ammoniak 10% verkar i dettasammanhang likvärdiga.Efter att hatthudssnitten fått svälla i 3-4 minuterkan täckglaset läggas på och försiktigt tryckastill. Ett rent radergummi i änden av en penna äridealiskt för detta ändamål. Eventuella luftbubblori preparatet pressas därigenom ut mendet är viktigt att inte pressa alltför hårt eftersomdetta kan skada och deformera hyferna.38 SVENSK MYKOLOGISK TIDSKRIFT 27:3 (<strong>2006</strong>)

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!